JP2018507175A - 牛樟芝化合物、その製造方法及び用途 - Google Patents
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Abstract
Description
牛樟芝菌糸体をn-ヘキサンで二回に還流抽出し、それぞれ一時間から三時間まで行った後、二回の抽出液を混合して濾過する;
70−320ウェルのシリカゲル(silica gel)(70−230mesh)を取り菌糸体と1:1(w/w)の重量比でカラムに充填し、n-Hexane/酢酸エチル(Ethyl acetate)の勾配で溶出し、溶出物はF1、F2とF3という割合に分けられ、それぞれの勾配は17−22%のEthyl acetate、23−27%のEthyl acetate及び28−33%のEthyl acetateであり、F3を保持時間(retention time)の順序に基づいて三つの段階F3-1~F3-3に分ける;
F3-1を取って移動相であるジクロロメタン/アセトン(CH2Cl2/Acetone)を用いて、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し(極性は50:1から20:1まで勾配溶出する)、40:1−15:1という段階を取り、更に順相MPLCでカラムを半分取しn-Hexane/Ethyl acetate(4:1)で分離純化してから化合物AC006を得る;
F3-2を順相MPLCシリカゲルカラムクロマトグラフィーで、移動相であるCH2Cl2/Acetoneを用いて勾配分離し(100%:0% to 70%:30%)、95%:5%から85%:15%までの段階を取ってF3-2-1からF3-2-3まで三つの段階に分ける;
F3-2-3を更に分離純化し、移動相であるn-hexane/Acetoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し(100%:0% to 0%:100%)、n-hexane/Acetone=90/10から70/30までの段階を取って移動相であるn-hexane/Acetoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し続けて(100%:0% to 0%:100%)、n-hexane/Ethyl acetate=60/40にAC007を得る;
F-3-3を順相MPLCシリカゲルカラムクロマトグラフィーで、移動相であるCH2Cl2/Acetoneを用いて勾配溶出分離し(100%:0% to 0%:100%)、90%:10%から70%:30%までの段階を取ってF3-3-1からF3-3-5まで五つの段階に分ける;F-3-3-5(CH2Cl2/Acetone=73/27の段階)を更に分離純化し、移動相であるn-hexane/Acetoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離して(95%:5% to 50%:50%)、85%:15% to 70%:30%段階を取ってF3-3-5-1からF3-3-5-5まで五つの段階に分ける;
F3-3-5-1(n-hexane/Acetone=90/10-80/20)を更に逆相MPLC C-18カラムクロマトグラフィーで分離純化し、移動相である1%のメタノール/Methanol=35%/65%から20%/80%まで勾配溶出し、28%/72%-22%/78%の段階を取って移動相であるn-hexane/Ethyl acetate=80%:20%から50%:50%までシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し、n-hexane/Ethyl acetate=75%:25%-65%:35%にAC012を得る;
F3-3-5-3を更に逆相MPLC C-18シリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離純化し、移動相である1%のメタノール/Methanol=25/75などの勾配で15mL/minの流速で溶出し、AC009が主とする段階(保持時間は130‐170min)を取って更に純化し、移動相であるCH2Cl2/Ethyl acetateを用いて(silica gel)シリカゲルカラムクロマトグラフィーで勾配溶出し(90%:0% to 0%:100%)、CH2Cl2/Ethyl acetate=80%/20%- 60%/40%にAC009を得る;
F3-3-5-4(n-hexane/Acetone=76/24)を取って逆相MPLC C-18カラムクロマトグラフィーで分離純化し、移動相である1%のメタノール/Methanol=25%:75%などまで勾配溶出し、純化産物はAC011である;
ここにおいて、該AC006、AC007、AC009、AC011、AC012はすなわち生物活性を有する化合物である。
1モル当量のメタノールで該生物活性を有する化合物を加水分解させる;
加水分解反応が終わった後アンバライト樹脂を加えて濾紙で濾過した後中間産物を得る;
シリカゲルカラムクロマトグラフィーで該中間産物を分離し、n-ヘキサンと酢酸エチルを移動相とし、勾配比例をn-ヘキサンと酢酸エチル4:1から1:1までとして、勾配比例が1:1である時点に産物を収集する;
該産物を逆相HPLC及びC18によりカラムを半取分し純化し、メタノール/FAバッファで75:25で勾配溶出し、C4がヒドロキシル基である誘導体を得ることができる。
また、本発明は血管の新生と癌細胞の増殖を抑制する組成物を提供し、それは上記牛樟芝抗生物質、適当な希釈剤、賦形剤を含み、該組成物は高い増殖能力を持つ細胞の増殖を抑制できる。
AC012-1の保持時間(retention time)は約31minから25minまで;AC012-H2は39minから43minまで。
物が癌細胞の増殖及び血管の新生を抑制し、それにより癌を治療することができる。
Cinnamomum kanchirai Hayata、lauraceae)の空洞部に寄生するキノコで、台湾だけに生
息するキノコである。昔から伝承医療に、樟芝は優れた解毒剤として、食物中毒や農薬中
毒に適用でき、民間には肝炎や肝臓関連の病気の治療に用いる。樟芝は高度な薬用価値が
あり、栽培しにくくて成長は遅いため、今まで樟芝に対するゲノミクス及びメタボロミク
スは研究され(Lu et al. 2014 PNAS、Lin et al. 2011 J Agr Food Chem)、それによっ
て、牛樟芝の医薬用途及び栽培方法をより理解することを意図している。
有する物質がが含有され、それが薬物として利用できる。そのうち多糖類は様々な単糖が
結合したもので存在し、スペクトルで分析すると多糖類は1,3- β‐D‐グルカン(1,3-β
-D-glucan)という成分を有している。公表された牛樟芝多糖にある多種類の医療用途は
、血管新生を抑制すること(Yang et al. 2009 J Ethnopharmacol、Cheng et al. 2005 L
ife Sci)、免疫を抑制すること(Meng et al. 2012 Nutrition)、免疫反応を調節し且
つ喘息を抑制すること(Liu et al. 2010 Immunology)、B型肝炎ウイルスを抑制するこ
と(Lee et al. 2002 FEMS Microbiol Lett)、癌細胞の成長を抑制すること(Liu et al
. 2004 Toxicol Appl Pharmacol、Lee et al. 2014 Food Funct)などを含む。更にアン
トロダン(antrodan)は、牛樟芝から抽出された糖タンパク質(glycoprotein、protein-
bound polysaccharide)で、肝臓が受ける損傷を避ける機能を有する(Ker et al. 2014
PLoS ONE、TW500628、US 7763723)。
、牛樟芝にある苦味の主な根源でもある。初期にはCherng et al.がエルゴスタン(ergos
tane)である三種類の新型なトリテルペン類化合物、antcins A-C(Cherng et al.1995 J
Nat Prod)及び四種類の新型なトリテルペン類化合物、antcins E-F、methyl antcinate
G、methyl antcinate H(Cherng et al. 1996 Phytochemistry)を開示した。その後、何十
種類ものトリテルペン類化合物には、癌細胞の成長を抑制すること(Wu et al. 2010 J N
at Prod)、免疫反応を抑制すること(Liaw et al. 2013 J Nat Prod)、肝癌及び肝炎を
治療すること(Lien et al. 2014 Molecules)、疲労を低減すること(Huang et al. 201
2 Evid Based Complement Altern Med)などを含む医療効果があると発表された。
示され、その用途は炎症及び腫瘍への抵抗を含む。US7732482には前記化合物が器官線維
症を抑制する効果を有することが開示された。US7342137には、多種類の癌細胞の成長を
抑制する効果を有する新規な牛樟芝化合物群が開示された。US7745647には子実体から分
離した新型なジテルペン類化合物が開示され、それは神経細胞を保護する効果を有する。
US7994158には牛樟芝から純化されたデヒドロスルフレン酸(dehydrosulphurenic acid)
が開示され、それは腫瘍細胞、特に白血病や膵癌を抑制する効果を有する。US7531627に
は分子量が29kDaである新型な牛樟芝タンパク質ACA1が開示され、それは免疫を促進する
効果及び癌を治療する潜在力を有する。
l.はセスキテルペンラクトンアントロシン(sesquiterpene lactone antrocin)がJAK2
/STAT3のメッセージ伝送経路を抑制し、それによりアポトーシス(apoptosis)を誘発
することを発表した(Yeh et al. 2013 Carcinogenesis)。Yang et al.は牛樟芝でHER-2
/neuのメッセージ伝送を抑制するほか、卵巣癌を抑制できることを発表した(Yang et a
l. 2013 J Ethnopharmacol)。Wang et al.はアントロキノノールD(antroquinonol D)
がDNAを脱メチル化し、且つ癌を抑制する潜在力を有することを発表した(Wang et al. 2
014 J Agric Food Chem)。
があることがすでに検証されたが、まだ新型な化合物が存在しているかどうか及びどんな
化合物が抗癌効果を有するかということについてはほとんど知られていない。牛樟芝から
新型な化合物を精製する上で、その構造と効果を分析できれば、癌の治療に応用でき、新
薬の開発に有効である。
化合物及び少なくとも一種類の薬学的に許容されるキャリア、塩類又はプロドラッグが含
まれる。この化合物はAC006、AC007、AC009、AC011、AC012、AC007-H1、AC009-H1及びAC0
12-H1からなるグループから選択されるか又は前記化合物の少なくとも二つから任意に組
み合わることができる。
性の基剤、界面活性剤、懸濁化剤、ゲル化剤、補助剤、防腐剤、酸化防止剤、安定剤、色
素、香料を含む。
医薬組成物は静脈注射、皮下注射、経口又は塗布の方法で患者に投与される。
医薬組成物は溶液、乳剤、懸濁剤、粉末、錠剤、油剤、軟膏剤、経口剤、カプセルを含
む剤形を有する。
本発明はまた癌を治療する方法を提供し、有効な量の医薬組成物を投与し、該医薬組成
物は治療に有効な量の前記化合物を含む。
癌は前立腺癌、肝癌、黒色腫、脳腫瘍、大腸癌からなるグループから選択される。なか
でも、大腸癌及び肝癌に対して有効である。
医薬組成物は静脈注射、皮下注射、経口又は塗布の方法で患者に投与される。
提供し、それは以下のステップを含む。
牛樟芝菌糸体をn-ヘキサンで二回還流抽出する。それぞれ一時間から三時間まで行っ
た後、二回の抽出液を混合して濾過する。
70−320ウェルのシリカゲル(silica gel)(70−230mesh)を取り、菌糸
体と1:1(w/w)の重量比でカラムに充填し、n-ヘキサン/酢酸エチルの勾配で溶
出する。溶出物はF1、F2とF3に分画され、それぞれの勾配は17−22%の酢酸エチル、
23−27%の酢酸エチル及び28−33%の酢酸エチルである。F3を保持時間(retent
ion time)の順序に基づいて三つの段階F3-1〜F3-3に分ける。
F3-1を取って移動相であるジクロロメタン/アセトン(CH2Cl2/Acetone)を用いて、シ
リカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し(極性は50:1から20:1まで勾配溶出する)
、40:1−15:1という段階を取り、更に順相MPLCでカラムを分取しn-ヘキサン/酢酸エ
チル(4:1)で分離、精製してから化合物AC006を得る。
F3-2を順相MPLCシリカゲルカラムクロマトグラフィーで、移動相であるCH2Cl2/Acetone
を用いて勾配分離し(100%:0% to 70%:30%)、95%:5%から85%:15%までの段階を
取ってF3-2-1からF3-2-3まで三つの段階に分ける。
F3-2-3を更に分離、精製し、移動相であるn−ヘキサン/アセトンを用いてシリカゲル
カラムクロマトグラフィーで分離し(100%:0% to 0%:100%)、n−ヘキサン/アセトン=9
0/10から70/30までの段階を取って、移動相であるn−ヘキサン/アセトンを用いてシリ
カゲルカラムクロマトグラフィーで分離し続け(100%:0% to 0%:100%)、n−ヘキサン/
酢酸エチル=60/40にAC007を得る。
F-3-3を順相MPLCシリカゲルカラムクロマトグラフィーで、移動相であるCH2Cl2/Aceton
eを用いて勾配溶出分離し(100%:0%から 0%:100%)、90%:10%から70%:30%までの
段階を取ってF3-3-1からF3-3-5まで五つの段階に分ける。
F-3-3-5(CH2Cl2/Acetone=73/27の段階)を更に分離、精製し、移動相であるn-hexane/
Acetoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離して(95%:5%から 50%:50%
)、85%:15%から70%:30%段階を取ってF3-3-5-1からF3-3-5-5まで五つの段階に分ける。
フィーで分離、精製し、移動相である1%のメタノール/Methanol=35%/65%から20%
/80%まで勾配溶出し、28%/72%-22%/78%の段階を取って移動相であるn-hexane/Ethyl ac
etate=80%:20%から50%:50%までシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し、n-hexane
/Ethyl acetate=75%:25%-65%:35%にAC012を得る。
F3-3-5-3を更に逆相MPLC C-18シリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離、精製し、
移動相である1%のメタノール/Methanol=25/75などの勾配で15mL/minの流速で溶出
し、AC009が主とする段階(保持時間は130‐170min)を取って更に精製し、移動相である
CH2Cl2/Ethyl acetateを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで勾配溶出し(90%:
0% から0%:100%)、CH2Cl2/Ethyl acetate=80%/20%- 60%/40%にAC009を得る。
F3-3-5-4(n-hexane/Acetone=76/24)を取って逆相MPLC C-18カラムクロマトグラフィ
ーで分離、精製し、移動相である1%のメタノール/Methanol=25%:75%などまで勾配溶
出し、精製物はAC011である。
これらAC006、AC007、AC009、AC011、AC012はすなわち生物活性を有する化合物である
。
導体の製造に用いられ、下記ステップを含む。
1モル当量のメタノールで該生物活性を有する化合物を加水分解させる。
加水分解反応が終わった後アンバライト樹脂を加えて濾紙で濾過した後、中間産物を得
る。
シリカゲルカラムクロマトグラフィーで該中間産物を分離し、n-ヘキサンと酢酸エチル
を移動相とし、勾配比例をn-ヘキサンと酢酸エチル4:1から1:1までとして、勾配比例が1:
1である時点に生成物を収集する。
この生成物を逆相HPLC及びC18によりカラムを取分して精製し、メタノール/FAバッフ
ァにて75:25で勾配溶出し、C4がヒドロキシル基である誘導体を得る。
また、本発明は血管の新生と癌細胞の増殖を抑制する組成物を提供する。それは上記牛
樟芝抗生物質、適当な希釈剤、賦形剤を含む。この組成物は高い増殖能力を持つ細胞の増
殖を抑制することができる。
、全部当業者が理解できる共通的意味を持つ。本発明は下記実施例で説明されるが、それ
らの例に限られない。別に説明されるものを除き、本発明が使用する材料は全部市販され
て取得しやすく、下記はただ取得できるルートの例を示す。
な病気及び該病気による相関的な病症を遅延、改善、緩和又は逆転する方法及び該病気や
それが属するいずれかの病症を予防する方法を指す。
用語「薬学的に許容される」とは、物質及び組成物が、その薬学的な製剤にあるほかの
成分を含むことができ、患者の病症を悪化させないことを意味する。
本発明が提供する化合物及び組成物は当業者に知られている技術で、本発明が提供する
化合物及び組成物を、少なくとも一種類の薬学的に許容されるキャリア(vehicle)と組
み合わせ、本発明の組成物に適用する剤形を製造できるものを指す。剤形は溶液、乳剤、
懸濁液、粉末、錠剤、経口剤、タブレット、チューインガム、カプセル及びほかの類似物
、本発明に適用する剤形を含むがそれらに限定されない。
用語「薬学的に許容されるキャリア」は下記から選択される一種類又は多種類のタイプ
を含む。溶剤、乳化剤、懸濁剤、分解剤、結合剤、賦形剤、安定化剤、キレート剤、希釈
剤、ゲル化剤、防腐剤、潤滑剤、界面活性剤及びほかの類似物、本発明に適用するキャリ
ア等である。
する溶解補助剤、緩衝剤、着色剤、調味剤などを適切に添加できる。
用語「薬学的に許容される賦形剤」はポリマー、樹脂、可塑剤、充填剤、潤滑剤、希釈
剤、結合剤、崩壊剤、溶媒、共溶媒、界面活性剤、防腐剤、甘味剤、香味剤、医薬グレー
ドの染料及び顔料ならびに増粘剤の少なくとも一つを含むが、それらに限定されない。
用語「医薬組成物」は固体又は液体組成物を指し、それは患者に投与しやすい適切な製
剤、濃度、純度を有し、投与された後、意図する生理的変化を誘発することができる。医
薬組成物は無菌及び/又は非発熱性のもの(non-pyrogenic)である。
用語「有効な量」は意図する生体反応を生じさせ、引き起こす必要な使用量を指すが、
治癒する必要な定量ではない。当業者には理解でき、医薬組成物の有効な量が下記原因で
変化する可能性はある。希望の生物終点、予定に提供する生物活性剤、カプセル化マトリ
ックス(encapsulating matrix)の組成、目的組織などである。
牛樟芝の液体発酵菌糸体をn−ヘキサン(n-hexane)で二回還流(reflux)させ、各回
は1−3時間行う。排気し濾過した後、二回のn-hexane抽出液を合わせる。70−230
ウェルのシリカゲル(70‐230mesh)を取って菌糸体と1:1(w/w)の重量比で
カラムに充填し、n-Hexane/酢酸エチル(Ethyl acetate)で勾配溶出する。溶出物を、F
1、F2及びF3の三層に分ける(fraction)。勾配はそれぞれ17-22%のEthyl acetate、23-2
7%のEthyl acetate及び28-33%のEthyl acetateで、F3を保持時間(retention time)の順
序によって三つの段階F3-1〜F3-3に分ける。
カゲルカラムクロマトグラフィーで分離し(極性が50:1から20:1まで勾配溶出す
る)、40:1−15:1の段階を取り、順相HPLC(Medium pressure liquid chromatog
raphy)でカラムを取分し、精製、n-Hexane / Ethyl acetate (4:1)で分離、精製し
て化合物AC006を得る。
トグラフィーで、移動相であるCH2Cl2/ Acetoneで勾配分離し(100%:0% to 70%: 30%)、
95%:5%から85%:15%までの段階を取り三つの段階に分ける。
F3-2-3を更に分離純化し、移動相であるn-hexane/Acetoneを用いてシリカゲルカラムク
ロマトグラフィーで分離し(100%:0% to 0%:100%)、n-hexane/Acetone=90/10から70/30
までの段階を取って移動相であるn-hexane/Ethyl acetateを用いてシリカゲルカラムクロ
マトグラフィーで分離し(100%:0% to 0%:100%)n-hexane/Ethyl acetate=60/40にAC007
を得る。
Acetoneで勾配分離し(100%:0% to 0%: 100%)、90%:10%から70%:30%までの段階
を取り五つの段階に分ける。
F-3-3-5(CH2Cl2/Acetone=73/27の段階)を更に分離、精製し、移動相であるn-hexane/Ac
etoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し(95%:5%から50%:50%
)、85%:15%から70%:30%までの段階を取って五つの段階に分ける。
F3-3-5-1(n-hexane/Acetone=90/10-80/20)を取り逆相MPLC C-18カラムクロマトグラ
フィーで更に分離、精製し、移動相である1%のメタノール水溶液/ Methanol=35%/65%
から20%/80%を勾配として、28%/72%−22%/78%の段階を取って更に移動相である n-
hexane/Ethyl acetate=80%:20%から50%/50%までシリカゲルカラムクロマトグラフィー
で分離し、n-hexane/Ethyl acetate=75%:25%-65%:35%にAC012を得る。
純化し、移動相である1%のメタノール水溶液/ Methanol=25/75を用いて15ml/minの流
速で勾配(isocratic)溶出し、AC009を主とする段階(保持時間は130−170min)
を取って更に精製し、移動相であるCH2Cl2/Ethyl acetate以(silica gel)シリカゲルカ
ラムクロマトグラフィーで分離して勾配溶出し(90%:0% to 0%:100%)、CH2Cl2/Ethyl ac
etate=80%/20%- 60%/40%にAC009を得る。
である1%のメタノール水溶液/ Methanol=25%/75%を用いて15ml/minの流速で勾配溶出
し、精製物はAC-05-01である。
グラフィーで分離、精製し、移動相である1%のメタノール水溶液/ Methanol=25%/75%を
用いて15ml/minの流速で勾配溶出し、精製物はAC011である。
抽出物はAC006、AC007、AC009、AC011、AC012すなわち牛樟芝にある抗がん活性を有す
る化合物である。
前記抽出された化合物は、スペクトル分析でその化学構造を識別し、1D/2D NMR及び
質量分析計の使用が含まれる。この化合物の構造分析結果は下記のとおりである。
, H-4), 5.18 (1H, t, J = 5.6 Hz, H-12), 5.16 (1H, t, J = 6.4 Hz, H-8), 5.11 (1H,
dt, J = 1.6, 8.8 Hz, H-16), 4.43 (1H, q, J=6.8, H-15), 4.00 (3H, s, H-24), 3.62
(3H, s, H-23), 2.53 (1H, m, H-6), 2.29 (1H, m, H-7a), 2.24 (2H, m, H-14), 2.11
(2H, m, H-11), 2.10 (3H, s, -OAc), 2.08 (1H, m, H-10a), 2.02 (1H, m, H-7b), 1.94
(1H, m, H-10b), 1.92 (1H, m, H-5), 1.71 (3H, d, J = 1.2 Hz, H-18), 1.66 (3H, d,
J = 1.2 Hz, H-19), 1.64 (3H, s, H-20), 1.58 (3H, s, H-21), 1.18 (3H, d, J = 6.8
Hz, H-22); 13C NMR (100 MHz, CD3OD) δ 199.2 (s, C-1), 171.6 (s, - COCH3), 160.
7 (s, C-3), 138.9 (s, C-2), 138.8 (s, C-9), 134.9 (s, C-17), 132.9 (s, C-13), 12
9.6 (d, C-16), 128.4 (d, C-12), 122.2 (d, C-8), 70.4 (d, C-4), 68.1 (d, C-15), 6
1.2 (q, C-23), 60.4 (q, C-24), 49.2 (t, C-14), 44.4 (d, C-5), 42.6 (d, C-6), 40.
9 (t, C-10), 28.1 (t, C-7), 27.6 (t, C-11), 26.1 (q, C-18), 21.0 (q, - COCH3), 1
8.5 (q, C-19), 16.8 (q, C-20), 16.5 (q, C-21), 13.3 (q, C-22).
, H-4), 5.57 (1H, m, H-16), 5.55 (1H, m, H-15), 5.16 (1H, t, J = 7.3 Hz, H-12),
5.15 (1H, t, J = 7.1 Hz, H-8), 3.99 (3H, s, H-24), 3.61 (3H, s, H-23), 2.52 (1H,
m, H-6), 2.27 (1H, m, H-7a), 2.11 (2H, m, H-11), 2.10 (3H, s, -OAc), 2.02 (1H,
m, H-7b), 2.00 (2H, m, H-10), 1.93 (1H, m, H-5), 1.59 (3H, s, H-20), 1.58 (2H, d
, J = 8.0 Hz, H-14), 1.57 (3H, s, H-21), 1.25 (3H, s, H-19), 1.25 (3H, s, H-18),
1.17 (3H, d, J = 7.0 Hz, H-22); 13C NMR (100 MHz, CD3OD) δ 199.1 (s, C-1), 171
.4 (s, - COCH3), 160.6 (s, C-3), 140.5 (d, C-16), 138.9 (s, C-2), 138.7 (s, C-9)
, 135.1 (s, C-13), 126.2 (d, C-15), 126.1 (d, C-12), 122.1 (d, C-8), 71.1 (s, C-
17), 70.3 (d, C-4), 61.1 (q, C-23), 60.2 (q, C-24), 44.2 (d, C-5), 43.5 (t, C-14
), 42.5 (d, C-6), 40.8 (t, C-10), 30.0 (q, C-18), 30.0 (q, C-19), 28.0 (t, C-7),
27.5 (t, C-11), 20.8 (q, - COCH3), 16.3 (q, C-21), 16.1 (q, C-20), 13.1 (q, C-2
2).
z, H-4), 5.39 (1H, td, J = 7.2, 1.2 Hz, H-16), 5.16 (1H, td, J = 7.2, 0.8 Hz, H-
12), 5.16 (1H, td, J = 7.2, 0.8 Hz, H-8), 4.00 (3H, s, H-23), 3.91 (2H, s, H-18)
, 3.62 (3H, s, H-24), 2.53 (1H, m, H-6), 2.28 (1H, m, H-7a), 2.14 (2H, m, H-11),
2.14 (2H, m, H-15), 2.10 (3H, s, -OAc), 2.04 (1H, m, H-7b), 2.03 (2H, m, H-10),
2.03 (2H, m, H-14), 1.92 (1H, m, H-5), 1.64 (3H, s, H-19), 1.62 (3H, s, H-20),
1.58 (3H, s, H-21), 1.18 (3H, d, J = 7.2 Hz, H-22); 13C NMR (100 MHz, CD3OD) δ
199.2 (s, C-1), 171.6 (s, - COCH3), 160.8 (s, C-3), 138.9 (s, C-2), 138.8 (s, C-
9), 136.0 (s, C-13), 136.0 (s, C-17), 126.7 (d, C-16), 125.7 (d, C-12), 122.2 (d
, C-8), 70.5 (d, C-4), 69.1 (t, C-18), 61.3 (q, C-24), 60.4 (q, C-23), 44.4 (d,
C-5), 42.6 (d, C-6), 41.0 (t, C-10), 40.7 (t, C-14), 28.1 (t, C-7), 27.6 (t, C-1
6), 27.5 (t, C-11), 21.0 (q, - COCH3), 16.5 (q, C-21), 16.3 (q, C-20), 13.9 (q,
C-19), 13.1 (q, C-22).
, H-4), 5.16 (1H, t, J = 7.6 Hz, H-8), 5.13 (1H, t, J = 7.2 Hz, H-12), 4.00 (3H,
s, H-24), 3.62 (3H, s, H-23), 3.38 (1H, d, J = 10.2 Hz, H-18a), 3.31 (1H, d, J
= 5.6 Hz, H-18b), 2.53 (1H, m, H-6), 2.26 (1H, m, H-7a), 2.13 (2H, m, H-11), 2.1
0 (3H, s, -OAc), 2.04 (1H, m, H-7b), 2.00 (2H, m, H-10), 1.96 (2H, m, H-14), 1.9
3 (1H, m, H-5), 1.60 (3H, s, H-20), 1.58 (3H, s, H-21), 1.56 (1H, m, H-17), 1.36
(2H, m, H-15), 1.06 (2H, m, H-16), 1.06 (3H, d, J = 4.8 Hz, H-22), 0.90 (3H, d,
J = 6.8 Hz, H-19); 13C NMR (100 MHz, CD3OD) δ 198.9 (s, C-1), 171.3 (s, - COCH
3), 160.5 (s, C-3), 138.7 (s, C-9), 138.6 (s, C-2), 136.2 (s, C-13), 125.3 (d,
C-12), 122.0 (d, C-8), 70.3 (d, C-4), 68.4 (t, C-18), 61.1 (q, C-23), 60.2 (q, C
-24), 44.2 (d, C-5), 42.5 (d, C-6), 41.0 (t, C-14), 40.9 (t, C-10), 36.8 (d, C-1
7), 34.0 (t, C-16), 28.0 (t, C-7), 27.4 (t, C-11), 26.5 (t, C-15), 20.9 (q, - CO
CH3), 17.2 (q, C-19), 16.4 (q, C-21), 16.0 (q, C-20), 13.2 (q, C-22).
, H-4), 5.57 (1H, m, H-16), 5.55 (1H, m, H-15), 5.15 (1H, t, J = 6.8 Hz, H-12),
5.12 (1H, t, J = 7.2 Hz, H-8), 3.99 (3H, s, H-23), 3.62 (3H, s, H-22), 2.66 (1H,
d, J = 5.2 Hz, H-14), 2.38 (2H, m, H-6), 2.09 (3H, s, -OAc), 2.05 (2H, m, H-11
), 2.03 (1H, m, H-7a), 2.01 (2H, m, H-10), 1.99 (1H, m, H-7b), 1.92 (1H, m, H-5)
, 1.58 (3H, s, H-20), 1.58 (3H, s, H-21), 1.25 (3H, s, H-19), 1.25 (3H, s, H-18)
; 13C NMR (100 MHz, CD3OD) δ 197.1 (s, C-1), 171.6 (s, - COCH3), 161.8 (s, C-3)
, 140.5 (d, C-15), 139.5 (s, C-2), 135.2 (s, C-13), 126.2 (d, C-16), 126.0 (d, C
-12), 122.2 (d, C-8), 121.9 (s, C-9), 71.1 (s, C-17), 71.1 (d, C-4), 61.1 (q, C-
22), 60.0 (q, C-23), 43.5 (t, C-14), 40.8 (t, C-10), 39.2 (t, C-6), 38.3(d, C-5)
, 30.1 (t, C-7), 30.0 (q, C-18), 30.0 (q, C-19), 27.5 (t, C-11), 20.7 (q, - COCH
3), 16.3 (q, C-21), 16.2 (q, C-20).
, H-12), 5.20 (1H, t, J = 4.8 Hz, H-8), 4.69 (1H, m, H-15), 4.16 (1H, q, J = 4.1
Hz, H-4), 2.73 (1H, m, H-17), 2.36 (1H, m , H-14a), 2.31 (1H, m, H-6), 2.29 (1H
, m, H-7a), 2.27 (2H, m, H-3), 2.23 (1H, m, H-14b), 2.19 (1H, m, H-16a), 2.16 (2
H, m, H-11), 2.08 (2H, m, H-10), 2.02 (1H, m, H-7b), 1.98 (1H, m, H-16b), 1.88 (
2H, m, H-2), 1.67 (3H, s, H-20), 1.65 (3H, s, H-21), 1.41 (1H, m, H-5), 1.23 (3H
, d, J = 4.9 Hz, H-19), 1.06 (3H, d, J = 4.3 Hz, H-22); 13C NMR (100 MHz, CD3OD)
δ 213.8 (s, C-1), 182.7 (s, H-18), 137.9 (s, C-9), 131.8 (s, C-13), 129.3 (d,
C-12), 122.7 (d, C-8), 78.8 (d, C-15), 76.2 (d, C-4), 48.6 (d, C-6), 48.2 (d, C-
5), 46.0 (t, C-14), 40.6 (t, C-10), 36.6 (t, C-3), 35.7 (t, C-16), 35.1 (d, C-17
), 32.9 (t, C-7), 29.6 (t, C-2), 27.5 (t, C-11), 16.5 (q, C-20), 16.3 (q, C-21),
16.0 (q, C-19), 11.8 (q, C-22).
前記牛樟芝化合物の化学構造を分析した後、そのC3とC4置換基を修飾する。その置換基
で改造された産物がC4に水酸基(−OH)で置換されたものは、H1で標識される。その置換
基で改造された産物がC4に水酸基で置換され且つC4にジメトキシ(dimethoxy)で置換さ
れたものは、H2で標識される。
分解反応させる。加水分解プロセスをTLC(thin layer chromatography)で監視測定し、完
全に反応した後、アンバーライト樹脂(amberlite)を加えて中和反応させ、またamberli
teを濾紙で濾過した後、中間産物を得る。
、シリカゲルで樹脂を分離し、hexane/ethyl acetateを流動相とする。溶出比例はhexane
:ethyl acetate=4:1から1:1まで、溶出プロセスをTLCで監視測定し、AC012-H1とAC012-H2
の混合物はhexane:ethyl acetate=1:1である時点に溶出され、それを収集して濃縮し、濃
縮された産物を得る。
動相であるエタノール:0.1%のリン酸緩衝生理食塩水(phosphate buffered saline)=
75:25を用いて単一比例で溶出する。
AC012-1の保持時間(retention time)は約31minから25minまでである。AC012-H2は39m
inから43minまでである。
初期半応物がAC007であれば、AC007-H1の保持時間は36‐43分であり、AC007-H2の保持
時間は47‐53分である。
初期反応物がAC009であれば、AC009-H1の保持時間は27‐32分であり、AC009-H2の保持
時間は35‐40分である。
本発明はSR8試験及び血管形成試験(matrigel capillary tube formation assay)を使
用し、牛樟芝から精製された化合物が血管新生を抑制することを確認する。
SRB試験はヒト内皮前駆細胞(EPC、endothelial progenitor cells)を5*103の細胞/培
養皿ウェル(cell/well)の数量比例で96ウェルの培養皿に置き、且つそれを無血清(ser
um free)の培地に置いて48時間飢餓状態にさせた後、10%のFBS培地及び異なる濃度のAC
012に入れて48時間培養する。AC012の濃度はそれぞれ0.1、0.3、1、3、10と30マイクログ
ラム/ミリリットル(μg/ml)である。処理薬物で培養した後の培地を取り出して、培養
皿のウェルに100マイクロリットル(μl)10%のトリクロロ酢酸(trichloroacetic acid
)(w/v)を加え、4℃で1時間放置することで細胞を固定する。培養皿を脱イオン水で
洗浄して乾燥する。それぞれのウェルに50マイクロリットル0.4%のSulforhodamine B (S
RB) (w/v)(また1%の酢酸を含む)を加えて室温で5分放置する。次に1%の酢酸で細胞と
結合しないSRBを洗浄してから乾燥する。細胞と結合したSRBを100マイクロリットル10mM
のTrisバッファ(pHは10.5)で溶解し、且つ光度計で495nmに定量する。
lで15ウェルの培養皿に加え、37℃で30min放置してゲル層を形成する。その後、5*103のE
PC細胞、VEGF(vascular endothelia growth factor)及び濃度が異なっているAC012(0、0
.1、0.3、1μg/ml)を培養皿のウェルに入れ、37℃、5%の二酸化炭素という条件で16時
間放置する。その後、位相差顕微鏡(inverted contrast phase microscope (Nikon, Jap
an))で細胞の生成を観察する。
IC50は29μg/ml;1μg/mlのAC012は31.89%の血管新生を抑制できる。
SRB試験で牛樟芝から精製された化合物及びその誘導体が癌細胞の増殖を抑制する効果
を確認する。
この実施例はすなわちAC006、AC007、AC009、AC011とAC012及びその加水分解で置換基
を改造した生成物が、多種類の癌細胞株の増殖を抑制するかどうかを確認する。
を無血清(serum free)の培地で48時間飢餓状態にさせた後、10%のFBS培地及び0.1、0.
3、1、3、10及び30μg/mlなどの濃度のAC006、AC007、AC009、AC011、AC012に入れて48時
間培養する。処理薬物で培養した後の培地を取り出して培養皿のウェルに100マイクロリ
ットル(μl)10%のトリクロロ酢酸(trichloroacetic acid)(w/v)を加え、4℃で1
時間放置することで細胞を固定する。培養皿を脱イオン水で洗浄して乾燥する。それぞれ
のウェルに50マイクロリットル0.4%のSulforhodamine B (SRB) (w/v)(また1%の酢酸を
含む)を加えて室温で5min放置し、次に1%の酢酸で細胞と結合しないSRBを洗浄してから
乾燥する。細胞と結合したSRBを100マイクロリットル10mMのTris緩衝液(pHは10.5)で
溶解し、且つ光度計で495nmに定量する。
AC006で4種類の異なる癌をテストする。7種類の異なる癌細胞株が含まれ、それは半数
の癌細胞の増殖を抑制できる有効な濃度、すなわちIC50効果である。
その結果をは表1に示す。
析し、それが低濃度で血管新生を抑制する効果を開示する。該牛樟芝化合物に基づき、本
発明も化学的に新規な化合物を合成する方法を提供する。本発明に開示された新規な抽出
方法は該化合物を大量に精製することができ、牛樟芝子実体を培養するコストを軽減する
。
本発明は、また、該化合物が癌細胞の増殖を抑制できる効果を有することを開示し、癌
治療用薬物の製造に適用できる。その他、牛樟芝化合物の加水分解により、その置換基を
改造して得る新規な化合物H1は、化合物が癌細胞、特に大腸癌細胞株の増殖を抑制する
効果を効果的に向上させることができる。ここでHCT116は低い表現量を特徴とするBax(W
ang et al. 2012)、及びgrowth factor(TGFα and EGFR)-independent (Howell et al. 1
998)である。更に、本発明で提供される化合物は肝癌細胞にとってもその増殖を抑制する
高度な効果を有し、特にアジア人からの上皮様肝癌細胞株(epithelial-like tumorigeni
c cells)であるHuh-7に対してHFE突然変異を特徴とする(Vecchi et al. 2009)。
本発明は牛樟芝化合物を精製する方法を提供し、その化学構造及びそれが血管新生及び
癌細胞の増殖を抑制する効果に関する。
Claims (14)
- 癌を治療する医薬組成物は、治療に有効な量の化合物、及び少なくとも一つの薬学的に許容されるキャリア、塩類やプロドラッグを含むことを特徴とする;該化合物はAC006、AC007、AC009、AC011、AC012、AC007-H1、AC009-H1、及びAC012-H1からなるグループから選択されるか、又は前記化合物のいずれかの少なくとも二つからなる組成物から選択される。
- 該キャリアは賦形剤、希釈剤、増粘剤、充填剤、結合剤、崩壊剤、潤滑剤、油性や非油性の基剤、界面活性剤、懸濁化剤、ゲル化剤、補助剤、防腐剤、酸化防止剤、安定剤、色素や香料を含むことを特徴とする請求項4に記載の医薬組成物。
- 該医薬組成物は癌細胞の増殖を抑制することで治療することを特徴とする請求項4に記載の医薬組成物。
- 該医薬組成物は静脈注射、皮下注射、経口や塗抹の方法で患者に投与することを特徴とする請求項4に記載の医薬組成物。
- 該医薬組成物は溶液、乳剤、懸濁剤、粉末、錠剤、油剤、軟膏剤、経口剤、カプセルを含む剤形をすることを特徴とする請求項4に記載の医薬組成物。
- 癌を治療する方法は、有効な量の請求項4に記載の医薬組成物を投与することを特徴とする。
- 該癌は前立腺癌、肝癌、黒色腫、脳腫瘍、大腸癌からなるグループから選択されることを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 該癌は大腸癌と肝癌であることを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 該医薬組成物は静脈注射、皮下注射、経口、や塗抹の方法で患者に投与することを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 牛樟芝菌糸体で生物活性を有する化合物及びその誘導体を調製する方法は、以下のステップを含む:
牛樟芝菌糸体をn-ヘキサンで二回に還流抽出し、それぞれ一時間から三時間まで行った後、二回の抽出液を混合して濾過する;
70−320ウェルのシリカゲル(silica gel)(70−230mesh)を取り菌糸体と1:1(w/w)の重量比でカラムに充填し、n-Hexane/酢酸エチル(Ethyl acetate)で勾配溶出し、溶出物はF1、F2とF3という割合に分けられ、それぞれの勾配は17−22%のEthyl acetate、23−27%のEthyl acetate及び28−33%のEthyl acetateであり、F3を保持時間(retention time)の順序に基づいて三つの段階F3-1~F3-3に分ける;
F3-1を取って移動相であるジクロロメタン/アセトン(CH2Cl2/Acetone)を用いて、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し(極性は50:1から20:1まで勾配溶出する)、40:1−15:1という段階を取り、更に順相MPLCでカラムを半分取しn-Hexane/Ethyl acetate(4:1)で分離純化してから化合物AC006を得る;
F3-2を順相MPLCシリカゲルカラムクロマトグラフィーで、移動相であるCH2Cl2/Acetoneを用いてに勾配分離し(100%:0% to 70%:30%)、95%:5%から85%:15%までの段階を取ってF3-2-1からF3-2-3まで三つの段階に分ける;
F3-2-3を更に分離純化し、移動相であるn-hexane/Acetoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し(100%:0% to 0%:100%)、n-hexane/Acetone=90/10から70/30までの段階を取って移動相であるn-hexane/Acetoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し続けて(100%:0% to 0%:100%)、n-hexane/Ethyl acetate=60/40にAC007を得る;
F-3-3を順相MPLCシリカゲルカラムクロマトグラフィーで、移動相であるCH2Cl2/Acetoneを用いて勾配溶出分離し(100%:0% to 0%:100%)、90%:10%から70%:30%までの段階を取ってF3-3-1からF3-3-5まで五つの段階に分ける;F-3-3-5(CH2Cl2/Acetone=73/27の段階)を更に分離純化し、移動相であるn-hexane/Acetoneを用いてシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離して(95%:5% to 50%:50%)、85%:15% to 70%:30%段階を取ってF3-3-5-1からF3-3-5-5まで五つの段階に分ける;
F3-3-5-1(n-hexane/Acetone=90/10-80/20)を更に逆相MPLC C-18カラムクロマトグラフィーで分離純化し、移動相である1%のメタノール/Methanol=35%/65%から20%/80%まで勾配溶出し、28%/72%-22%/78%の段階を取って移動相であるn-hexane/Ethyl acetate=80%:20%から50%:50%までシリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離し、n-hexane/Ethyl acetate=75%:25%-65%:35%にAC012を得る;
F3-3-5-3を更に逆相MPLC C-18シリカゲルカラムクロマトグラフィーで分離純化し、移動相である1%のメタノール/Methanol=25/75などの勾配で15mL/minの流速で溶出し、AC009が主とする段階(保持時間は130‐170min)を取って更に純化し、移動相であるCH2Cl2/Ethyl acetateを用いて(silica gel)シリカゲルカラムクロマトグラフィーで勾配溶出し(90%:0% to 0%:100%)、CH2Cl2/Ethyl acetate=80%/20%- 60%/40%にAC009を得る;
F3-3-5-4(n-hexane/Acetone=76/24)を取って逆相MPLC C-18カラムクロマトグラフィーで分離純化し、移動相である1%のメタノール/Methanol=25%:75%などまで勾配溶出し、純化産物はAC011である;
ここにおいて、該AC006、AC007、AC009、AC011、AC012はすなわち生物活性を有する化合物である。 - 該生物活性を有する化合物は更にC4が水酸基である誘導体の調製に適用でき、以下のステップを含むことを特徴とする請求項13に記載の方法:1モル当量のメタノールで該生物活性を有する化合物を加水分解させる;加水分解反応が終わった後アンバライト樹脂を加えて濾紙で濾過した後中間産物を得る;シリカゲルカラムクロマトグラフィーで該中間産物を分離し、n-ヘキサンと酢酸エチルを移動相とし、勾配比例をn-ヘキサンと酢酸エチル4:1から1:1までとして、勾配比例が1:1である時点に産物を収集する;該産物を逆相HPLC及びC18によりカラムを半取分し純化し、メタノール/FAバッファで75:25で勾配溶出し、C4がヒドロキシル基である誘導体を得ることができる。
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C21 | Notice of transfer of a case for reconsideration by examiners before appeal proceedings |
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A912 | Re-examination (zenchi) completed and case transferred to appeal board |
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C211 | Notice of termination of reconsideration by examiners before appeal proceedings |
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C22 | Notice of designation (change) of administrative judge |
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C22 | Notice of designation (change) of administrative judge |
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C13 | Notice of reasons for refusal |
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A524 | Written submission of copy of amendment under article 19 pct |
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C22 | Notice of designation (change) of administrative judge |
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C13 | Notice of reasons for refusal |
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A524 | Written submission of copy of amendment under article 19 pct |
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C22 | Notice of designation (change) of administrative judge |
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C23 | Notice of termination of proceedings |
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C03 | Trial/appeal decision taken |
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C30A | Notification sent |
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