JP2015513905A - カドヘリン調節に基づく組成物および処置 - Google Patents
カドヘリン調節に基づく組成物および処置 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本願は、2013年3月15日に出願した米国出願第13/844,553号に対する優先権を主張する。米国出願第13/844,553号は、2012年3月27日に出願した米国仮出願第61/616,393号の通常出願であり、その利益を主張する。これらの出願の各々は、その内容全体がここで参考として援用される。
本発明は、カドヘリンタンパク質の調節に関わる組成物および方法に関する。これらの発明は、創傷治癒を促進すること、ならびに創傷、特に急性創傷、および予測される速度で治癒しない創傷、例えば、治癒が遅延している創傷、治癒が不完全な創傷、慢性創傷など、および離開創を処置することを含めた種々の状況において有用である。
以下は、本発明の理解に有用でありうる情報を含む。このことは、本明細書に記載される情報が、本明細書に記載または特許請求されている発明に対する先行技術であるか、もしくはこれに関連していることを認めるものでも、明示的にもしくは暗黙に言及される刊行物もしくは文書が先行技術であることを認めるものでもない。
本明細書で記載および特許請求される発明は、この「簡単な概要」において説明または記載または言及される属性および実施形態を含むがこれらに限定されない多くの属性および実施形態を有する。それは包括的であることが意図されるものでなく、本明細書で記載および特許請求される発明は、限定ではなくて例示だけを目的として組み入れられているこの「簡単な概要」に限定されるものでも、「簡単な概要」において特定される特徴または実施形態により限定されるものでもない。
定義
本出願で用いられる場合、「障害」とは、創傷治癒(急性創傷、離開創、および治癒が緩徐である創傷、治癒が遅延している創傷および慢性創傷を含む)を開始、加速、促進もしくは増強する、炎症を軽減する、瘢痕を軽減または減少させる、瘢痕の質を改善する、線維症を軽減する、かつ/または癒着を軽減する薬剤から利益を得る任意の障害、疾患または状態である。例えば、疾患、障害、および状態には急性創傷が含まれる。疾患、障害、および状態には、離開創、および治癒が緩徐である創傷、治癒が遅延している創傷および慢性創傷も含まれる。また、細胞外マトリックス内の線維状物質の過剰生成を含めた線維状物質の過剰生成を特徴とする疾患、障害、および状態もまた含まれる。また、マトリックス関連成分の異常で、非機能的で、かつ/または過剰な蓄積による正常な組織エレメントの置換を特徴とする疾患、障害、および状態も含まれる。また、癒着形成を特徴とする疾患、障害、および状態も含まれる。また、創傷治癒を促進し、かつ/または腫脹、炎症、および/もしくは瘢痕形成(ケロイド瘢痕、肥厚性瘢痕、広汎性(伸展型)瘢痕、および萎縮性(陥没型)瘢痕を含めた、異常かつ過剰な瘢痕形成を含めた)を軽減する薬剤から利益を得る任意の障害、疾患、または状態も含まれる。例えば、手術または外傷から生じる創傷と、予測される速度で治癒しない創傷(治癒が遅延している創傷、治癒が不完全な創傷、慢性創傷、および離開創など)と、神経障害性、虚血性、微小血管性の病態、骨領域全体(尾骨(仙骨)、股関節部(転子骨)、臀部(坐骨)、または足のかかと)にわたる圧迫、再灌流による傷害、ならびに弁逆流による病因および状態と関連する創傷関連の異常とが含まれる。また、望ましくないZO−1タンパク質もしくは望ましくないZO−1タンパク質活性を特徴とするか、またはZO−1タンパク質もしくはZO−1タンパク質活性を減少させることから利益を得る、疾患、障害および状態も含まれる。また、Rac1もしくはRac1活性の望ましくない減少を特徴とするか、またはRac1もしくはRac1活性を増大させることから利益を得る、疾患、障害および状態も含まれる。また、RhoA GTPアーゼもしくはRhoA GTPアーゼ活性の望ましくない減少を特徴とするか、またはRhoA GTPアーゼもしくはRhoA GTPアーゼ活性を増大させることから利益を得る、疾患、障害および状態も含まれる。また、細胞の移動を増強すること、細胞接着を減少させること、本明細書に記載の細胞の細胞骨格変化、および/または本明細書に記載の細胞の葉状仮足突出を増加させることから利益を得ることを特徴とする疾患、障害および状態も含まれる。
伴う。本発明の別の態様において、結果は、瘢痕化(scarring)および異常な瘢痕化の予防および/または軽減のほか、過剰な瘢痕形成(scar formation)、ならびにケロイド瘢痕、肥厚性瘢痕、広汎性瘢痕、および萎縮性瘢痕を含めた、他の種類の異常な組織増殖の予防および/または軽減を伴う。
慢性創傷、治癒が緩徐な創傷、および治癒の不完全な創傷は、結果として感染症をもたらすことが多く、切断術または死亡をもたらしうる。本出願で記載または言及される化合物を含めた特定の化合物の使用により、細胞連絡を遮断することも、阻害することも、変化させることもでき、これにより、慢性創傷、治癒が緩徐な創傷、および治癒が不完全な創傷における閉鎖および治癒を促進することができる。
切開、切除、裂傷、表皮剥離、穿通創における刺し傷、手術による創傷、挫傷、血腫、圧挫傷害、および潰瘍を含む。また、予測される速度で治癒しない創傷も含まれる。
本発明の他の態様内では、患者に抗コネキシンポリヌクレオチドを投与することにより、癒着、手術による癒着、および/または手術による続発性癒着を処置し、これらの発生を低下させるかもしくはこれらの重症度を軽減し、かつ/またはこれらを予防するかもしくは遅延させるための方法が提供される。
本明細書に記載の本発明の抗カドヘリン剤は、カドヘリンの活性および機能、カドヘリン複合体の形成および維持、接着結合の形成および維持、ならびに細胞間接着を調節すること(例えば、遮断または阻害または下方制御すること)またはそれらに影響を及ぼすことができる。したがって、本明細書に記載の特定の抗カドヘリン剤により、細胞接着(すなわち、細胞間接着)が調節される。特定の抗カドヘリン剤は、接着結合調節剤である。そのような抗コネキシン剤は、一般に、翻訳されるとカドヘリンタンパク質の合成、およびそれが接着結合の形成のために利用されうる細胞膜への局在化をもたらすメッセンジャーRNA(mRNA)分子(またはそれらをコードする遺伝子)に標的化される。他の抗カドヘリン剤は、カドヘリン複合体および/または接着結合の形成に干渉する。したがって、本明細書において提供される抗カドヘリン剤は、直接的に、または間接的に、細胞間のカップリングおよび情報伝達を減少させる、または隣接細胞間の情報伝達(または分子の伝達)を減少させるもしくは遮断することができる。カドヘリンはN−カドヘリンであることが好ましい。
抗カドヘリンポリヌクレオチドは、コネキシンアンチセンスポリヌクレオチドのほか、それらによるカドヘリン発現の下方調節を可能とする機能性を有するポリヌクレオチドも含む。他の適切な抗カドヘリンポリヌクレオチドは、miRNA、RNAiポリヌクレオチドおよびsiRNAポリヌクレオチドを含む。抗N−カドヘリンポリヌクレオチドが好ましい。
本明細書では、相同性および相同体(例えば、ポリヌクレオチドは、カドヘリンmRNA中の配列に対する相補体の相同体でありうる)について論じる。このようなポリヌクレオチドは、例えば、(相同配列の)少なくとも約15、少なくとも約20、少なくとも約25、少なくとも約30、少なくとも約40、少なくとも約50、または少なくとも約100以上の連続ヌクレオチドの領域にわたって、対象の配列と少なくとも約70%の相同性、好ましくは少なくとも約80%、少なくとも約90%、少なくとも約95%、少なくとも約97%、または少なくとも約99%の相同性を有することが典型的である。
ペプチド、ペプチド模倣剤、抗体、抗原結合抗体フラグメントなどを含むカドヘリン結合タンパク質もまた、接着結合に適する調節剤である。
本明細書に記載の特定の抗カドヘリン剤は、細胞間の接着を調節することまたはそれに影響を及ぼすこと(例えば遮断または阻害すること)ができる。したがって、本明細書に記載の特定の接着結合調節剤により、細胞接着が調節される。本明細書で用いられる場合、「接着結合調節剤」とは、広範に、接着結合の活性、機能、形成、または安定性を全体的または部分的に妨げる、減少させる、または調節する任意の薬剤または化合物を包含する。ある特定の実施形態では、接着結合調節剤は、接着結合の機能を全体的または部分的に妨げるかまたは減少させる。例示的な接着結合調節剤としては、ポリヌクレオチド、ポリペプチド(例えばペプチド模倣剤(peptiditomimetics)、抗体、その結合フラグメント、および合成構築物)、ならびに他の接着結合調節剤が挙げられ得るがこれらに限定されない。
治療有効量の本発明の各薬剤は、同時投与、個別投与、または逐次投与が、しかも任意の順序で可能である。薬剤は、個別投与される場合もあり、固定の組合せとして投与される場合もある。固定の組合せとして投与されない場合、好ましい方法には、単独の、または1または複数の他の治療剤(他の抗カドヘリン剤、抗コネキシン剤、抗ZO−1剤および/または抗オステオポンチン剤を含む)と組み合わせた1または複数の抗カドヘリン剤の逐次投与が含まれる。
おいて公知であるかまたは将来的に開発される任意の方法は、他の抗カドヘリン剤または他の治療剤と組み合わせて用いるのに適する抗カドヘリン剤のスクリーニングにおける使用が意図される。
一態様において、1もしくは複数の活性成分は、包帯材またはマトリックスの形態で提供される。一部の実施形態では、本発明の1または複数の薬剤が直接的な適用のための液体組成物、半固体組成物、もしくは固体組成物の形態で提供されるか、あるいは組成物が包帯材ガーゼもしくはマトリックスなどの固体接触層の表面へと適用されるか、またはこの中へと組み込まれる。包帯材組成物は、例えば、流体またはゲルの形態で提供することができる。1または複数の活性成分は、局所適用のための従来の医薬賦形剤と組合せて提供することができる。適切な担体は、プルロニックゲル、ポロキサマーゲル、セルロース誘導体(ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、およびこれらの混合物を含む)を含有するヒドロゲル;ならびにポリアクリル酸を含有するヒドロゲル(Carbopols)を含む。適切な担体はまた、局所医薬調製物に用いられるクリーム/軟膏、例えば、セトマクロゴール乳化軟膏に基づくクリームも含む。上記の担体は、アルギン酸塩(増粘剤または刺激剤として)、ベンジルアルコールなどの防腐剤、リン酸水素二ナトリウム/リン酸二水素ナトリウムなどのpH調整のための緩衝液、塩化ナトリウムなどの浸透圧を調整するための薬剤、およびEDTAなどの安定化剤を含みうる。
含みうる。
一般的な態様
本発明は、治療有効量の、単独のまたは1もしくは複数の他の治療剤を組み合わせた1もしくは複数の抗カドヘリン剤を含む医薬組成物およびそれらの使用法に関する。組成物は、例えば、急性創傷、および慢性創傷などの予測される速度では治癒しない創傷、ならびに従来の創傷処置または創傷治癒促進療法に対して治癒が遅いかあるいは不応な場合もある他の創傷を含む創傷、ならびに炎症または望ましくない炎症によって特徴付けられる疾患、障害および状態を含めた、本明細書中に記載される他の疾患、障害および状態の治癒を増強または促進するのに有用である。慢性創傷はしばしば、望ましくない炎症によって特徴付けられる。
したがって、一態様において、本発明は、抗カドヘリン剤および/または抗ZO−1剤を含む、治療的な創傷の処置において用いられる組成物を提供する。別の態様において、本発明は、抗カドヘリン剤の少なくとも1種および少なくとも1種の他の治療剤(例えば、抗コネキシン剤および/または抗ZO−1剤)を含む、治療的な創傷の処置において用いられる組成物を提供する。好ましい実施形態において、組成物は、薬学的に許容される担体またはビヒクルをさらに含む。
場合によって、単独か、または1もしくは複数の他の治療剤と組み合わせたかのいずれかの、1または複数の抗カドヘリン剤および/または抗ZO−1剤もまた、医薬の製造において用いることができる。
本発明の組成物および製剤は、創傷の治癒を促進するための組成物と共に用いることもでき、これと組み合わせて用いることもでき、これらはまた、例えば、腫脹、炎症、および/または瘢痕形成を軽減するために用いることも可能である。本発明の組成物および製剤はまた、急性創傷または慢性創傷(治癒が緩徐な創傷および治癒が遅延している創傷を含む)の治癒を促進および/または改善するための組成物と共に用いることもでき、これと組み合わせて用いることもできる。一態様において、創傷は、手術もしくは外傷、または、例えば、糖尿病、末梢浮腫、血管炎、もしくは心血管疾患などの基礎的な医学的状態の結果である。
N−カドヘリンを標的化するオリゴヌクレオチド
本実施例は、N−カドヘリンAS ODN(アンチセンスオリゴデオキシリボヌクレオチド)およびshRNA(低分子ヘアピン型RNA分子)のいくつかの候補を記載する。
静脈性脚部潰瘍(venous leg ulcer)において異常に上方制御されているCx43およびN−カドヘリンを標的化することにより、Rho GTPアーゼの移動、接着、および活性化が影響を受ける
概要
静脈性脚部潰瘍は、治癒することが非常に困難であり、現在利用可能な有効な治療的処置がなく、著しい医学的必要性が示されている。本実施例に記載の実験では、ヒト静脈性脚部潰瘍由来の創縁生検材料において、皮膚のN−カドヘリン(N−cad)、Zonular Occludens−1(ZO−1)、およびギャップジャンクションタンパク質であるコネキシン43(Cx43)の、インタクトな皮膚において観察されたこれらのタンパク質レベルと比較して著しい上方制御が見出され、また、著しく対照的に、急性の治癒中の創傷においてCx43発現の下方制御が見出された。3T3線維芽細胞においてこれらのタンパク質の発現を標的化して、静脈性脚部潰瘍の治癒におけるそれらの役割を評価した。掻創−治癒アッセイにおいて、Cx43およびN−cadをノックダウンすることにより、細胞移動が加速した。Cx43を減少させることによりゴルジ再配向が増加したが、細胞接着および増殖が減少した。さらに、コネキシン43およびN−cadのノックダウンにより、掻創を生じさせた後の線維芽細胞骨格ダイナミクスに対する極めて大きな効果が導かれた。細胞は、創傷を生じさせた対照細胞の前縁において見られるF−アクチン帯を欠く、より長い葉状仮足突出を示した。フェルスター共鳴エネルギー移動およびプルダウン実験により明らかになった通り、この表現型はRac−1 GTPアーゼおよびRhoA GTPアーゼの活性化の増大を伴った。とりわけ、これらの結果により、Cx43およびN−cadが、少なくとも一部において、細胞接着、移動、増殖、および細胞骨格ダイナミクスの別個の寄与を通じて作用することにより、静脈性脚部潰瘍の治癒を促進することにおける治療標的になることが示されている。
糖尿病性足部潰瘍、褥瘡、および静脈性脚部潰瘍(VLU)などの慢性創傷は、増加しつつある世界的問題であり、西洋諸国における人口の1〜2%において生涯のうちに慢性創傷が発生すると推定されている。慢性創傷は、健康管理サービスに対する主要な経済的負担を示し、USAの年間支出は250億ドルであると見積もられている。人口の中で高齢者および糖尿病患者の数が増えており、この支出数は年々上昇することが予想される。残念ながら、これらの消耗性創傷に対する有効な治療の選択肢はほとんどなく、有効な新しい処置の著しい必要性が残っている。
ヒト慢性VLUおよび対応するインタクトな皮膚試料
書面のインフォームドコンセントを得た後、適用可能なガイドラインに従って、慢性静脈性潰瘍脚部創傷からの創縁パンチ生検材料および正常な腕生検材料の採取を実施した。簡単に述べると、VLUについては、静脈性潰瘍形成が臨床的に確認された患者において、局部麻酔下で創縁から単一の4mmのパンチ生検材料を取得した。同じ対象の前腕の正常な皮膚から第2の4mmのパンチ生検材料を取得した。全部で、VLUが臨床的に確認された対象6人(男性3人、女性3人;38〜79歳にわたる)から生検材料を取得した。潰瘍持続時間の中央値は6カ月であり(1.5〜36カ月にわたる)、サイズの中央値は10cm2であった(2〜113cm2にわたる)。VLU生検材料を、最初に、4%パラホルムアルデヒド(PFA)を用いて一晩固定し、次いで、25%スクロースに移し、処理するまで4℃で保管した。免疫組織化学的検査のために、組織生検材料をOCT(BDH、UK)に包埋した。免疫組織化学的分析のために試料を凍結切片(10μm)にした。正常な(急性)創傷生検材料については、最初に、健康な男性ボランティア3人(20〜36歳にわたる)の大腿前外側部において局部麻酔下で6mmのパンチ生検を実施し、次いで4時間後に、パンチ生検を受けた創傷部位をより大きな10mmのパンチで切除し、生じた創傷を縫合して閉鎖した。2mm幅のドーナツ状の生検材料をすぐにOCTに埋め込み、液体窒素中で急速凍結させ、次いで、分析前に凍結切片にされるまで−80℃で保管した。
UCL’s Biological Services Unitからの雄の8週齢のICRマウスまたはSprague−Dawleyラットを、UK Home Office動物規制に従って維持した。切除損傷作製を以前に記載されている通り実施した(Moriら(2006年)、J Cell Sci、119巻:5193〜5203頁)。30%プルロニックF−127ゲル(Sigma)中、10μMの修飾されていないCx43asODNおよび対照Cx43sODN(Sigma−Genosys)の単回の局所適用を、2つの独立した創傷のそれぞれに送達した。創傷を生じさせた2日後に、動物を人道的に屠殺し、創傷組織を回収した。
3T3線維芽細胞を、5%CO2、37℃で、10%FBS(Gibco、Invitrogen)を補充したDMEM−GlutaMAX(商標)−1(Gibco、Invitrogen)中で増殖させた。ODN処理のために、線維芽細胞をPBSで洗浄していかなる痕跡量の血清も排除し、無血清培地中、20μMのCx43asODNまたはCx43sODNと一緒に(Qiuら、(2003年)、Curr Biol、13巻:1697〜1703頁)(Sigma−Genosys)または10μMのZO−1asODNまたはZO−1sODN(Underwoodら(1999年)、Am J Physiol、277巻:C330〜342頁)(Sigma−Genosys)と一緒に2時間にわたってインキュベートした。このインキュベーション後、ODNを伴う培地を除去し、DMEM中10%FBSと交換した。
本明細書ではCx43shRNAと称される、Cx43特異的shRNA標的配列5’−GGTGTGGCTGTCAGTGCTC−3’(配列番号9;van Zeijlら(2007年),J Cell Biol,177巻:881〜891頁)を含有するレトロウイルスpSuperベクターを使用して、3T3線維芽細胞においてCx43の安定なノックダウンを確立した。pSuppressor(p.Sup)レトロウイルスベクター(Imgenex Co)を対照として使用した。パッケージング細胞株GP2−293(Clontech)に、p.Sup構築物およびCx43shRNA構築物を以前に記載(CarrおよびWhitmore(2005年)、Nat Cell Biol、7巻:319〜321頁)されている通りトランスフェクトした。偽形質導入構築物およびN−cad shRNA構築物(Hosokawaら(2010年)、Blood、116巻:554〜563頁)をHEK 293T細胞に、記載(Demaisonら(2002年)、Hum Gene Ther、13巻:803〜813頁)されている通りトランスフェクトした。3T3線維芽細胞に、2日間にわたってレトロウイルスまたはレンチウイルスを形質導入し、Cx43shRNAを形質導入した細胞およびN−cadshRNAを形質導入した細胞および偽形質導入細胞を、2μg/mlのピューロマイシンまたは500μg/mlのジェネティシン(p.Supについて)に対する抵抗性に基づいて選択した。
創傷を生じさせたラットおよびマウスの皮膚の6μmのクリオスタット切片、または10μmのヒト慢性VLU皮膚または対応する創傷のない皮膚について、アセトン中に固定し、4℃で5分間にわたって免疫染色を行った。Cx43に対する一次抗体(Ab)(1:2000希釈;Sigma、6219)、N−カドヘリンに対する一次抗体(Ab)(1:100希釈;Abcam、ab18203)、およびZO−1に対する一次抗体(Ab)(1:100希釈;Zymed Laboratories、61−7300)を室温で1時間にわたってインキュベートした。切片をPBSで洗浄し、次いで、それぞれの二次抗体ブタ抗ウサギFITCコンジュゲート(DAKO)およびヤギ抗マウスCy3−コンジュゲート(Pierce)と一緒にインキュベートした。一次抗体の不在下での二次抗体インキュベーションを陰性対照として使用した。次いで、切片を、5μg/mlの核色素Hoechst 33342(Sigma)を用いて10分間対比染色し、Leica SP2共焦点顕微鏡(Leica Microsystems、UK)において単一の光学切片を取得した。8ビットデジタル画像のすべてを直接比較することを可能にするために、画像取得中のすべてのパラメータを各実験を通して一定に保った。ImageJソフトウェア(NIH)を使用し、よく確立された画素計数方法(Wangら(2007年)、Diabetes、56巻:2809〜2817頁)を用いて免疫染色レベルを単位面積ごとに定量した。画像を、同一の閾値を使用して2値画像に変換した。条件間で比較するための単位面積当たりの陽性画素の数の読み取り値を生成するために、2画素を超える目的物を計数した。
集密線維芽細胞単層に創傷を生じさせ、3時間後に4%PFAを用いて10分間固定し、0.1%トリトンX−100を用いて透過処理した。Cx43に対する一次抗体(1:2000希釈;Sigma)、ZO−1に対する一次抗体(1:100希釈;Zymed Laboratories)、N−カドヘリンに対する一次抗体(1:100希釈;Abcam)、β−カテニンに対する一次抗体(1:200希釈;ab6302 Abcam)、α−カテニンに対する一次抗体(1:200希釈;C2081 Sigma)、チロシン化チューブリンに対する一次抗体(1:400希釈;YL1/2;Ab6160 Abcam)、およびアセチル化チューブリンに対する一次抗体(1:200希釈;T7451 Sigma)を製造者の推奨に従って使用した。適切な二次抗体(Alexa 488または633;Molecular Probes)と一緒にインキュベートした後、5μg/mlの核色素Hoechst 33342(Sigma)を10分間適用した。一次抗体の不在下での二次抗体インキュベーションを陰性対照として使用した。F−アクチンを可視化するために、いくつかの実験にTRITC−ファロイジン(Sigma)を含めた。Leica SP2共焦点顕微鏡(Leica Microsystems、UK)において63×、1.25NA対物レンズを使用して細胞を画像化した。すべての取得パラメータを各実験を通して一定に保ち、画素数に基づいて染色を定量した(Wangら(2007年)、上記)。
ゴルジ再配向の測定を以前に記載(Magdalenaら(2003年)、J Cell Sci、116巻:743〜756頁)されている通り実施した。集密線維芽細胞を引っ掻き、3時間インキュベートした。この時間の後、細胞を、4%PFAを用いて固定し、抗GM130(BD Biosciences)およびHoechst 33342核染色(Sigma)を用いて染色した。10個の無作為に選択した視野内の細胞100個をゴルジの配向について評価した。
pSup構築物を形質導入した3T3線維芽細胞(細胞1×104個)、Cx43shRNA構築物を形質導入した3T3線維芽細胞(細胞1×104個)、偽構築物を形質導入した3T3線維芽細胞(細胞1×104個)およびN−cadshRNA構築物を形質導入した3T3線維芽細胞(細胞1×104個)を96ウェルプレートにプレーティングし、IncuCyte(商標)生細胞画像化システム(Essen Instruments、Ann Arbor、MI)を使用して細胞増殖をリアルタイムでモニターした。実験を少なくとも3回、2連で実施し、データを集密百分率として表した。
Cx43shRNA構築物を形質導入した集密線維芽細胞、p.Sup構築物を形質導入した集密線維芽細胞、N−cadshRNA構築物を形質導入した集密線維芽細胞、および偽構築物を形質導入した集密線維芽細胞、またはpGFP、Cx43−DN、もしくはCx43−WTをトランスフェクトした集密線維芽細胞に創傷を生じさせ、3時間後に4%PFAを用いて固定した。次いで、細胞を、Hoechst 33342核染色(Sigma)を用いて染色した。突出長さを定量するために、創縁細胞の核から前縁までの距離を測定した。3つの独立した実験のそれぞれにおいて、無作為に選択した視野内のトランスフェクトされた細胞3〜5個、または形質導入された細胞30個を分析して平均突出長さを算出した。
回収された線維芽細胞(Cx43shRNAまたはp.Supを形質導入した)由来の細胞ペレットを、プロテアーゼ阻害剤を添加した氷冷RIPA緩衝液に4℃で懸濁させた。等量のタンパク質をLaemmli 4×試料緩衝液に再懸濁させ、10%SDS−PAGEによって分離し、Cx43に対する一次Ab(1:2000希釈;Sigma)、ZO−1に対する一次Ab(1:500希釈;Zymed Laboratories)、α−カテニンに対する一次Ab(1:200希釈;Sigma)、β−カテニン β−カテニンに対する一次Ab(1:1000希釈;Abcam)、またはN−カドヘリンに対する一次Ab(1:500希釈;Abcam)を用いて可視化した。α−チューブリンに対する抗体またはアクチンに対する抗体(どちらもSigmaから)をローディング対照として使用した。二次抗体はHRP−コンジュゲートであり、増強化学発光(ECL)システム(Amersham)を使用してタンパク質レベルを可視化した。タンパク質/チューブリン比またはタンパク質/アクチン比を、ImageJソフトウェア(NIH)を使用してバンドを走査し、定量することによって決定した。
色素注射を以前に記載されている方法(Beckerら(1995年)、J Cell Sci、108巻(第4部):1455〜1467頁)に従って行った。視覚制御下で細胞を刺し、イオントフォレーシスによって色素を満たした。イオントフォレーシスを休止した1分後に情報伝達を評価した。実験条件の各セットについて少なくとも10回の注射を実施した。a)Cx43sODNで処理した細胞、Cx43asODNで処理した細胞、または対照の無処理細胞;b)Cx43−DN、Cx43−WT、またはpGFPを一過性にトランスフェクトした細胞;およびc)Cx43shRNAを形質導入した細胞またはp.Supを形質導入した細胞においてカップリングを試験した。微量注射した細胞の画像を、Leica DMLFS顕微鏡(Leica Microsystems、UK)において40×0.8NA対物レンズを用い、Volocity取得ソフトウェア(Improvision/Perkin Elmer)を使用して取得した。
Cx43sODNで処理した線維芽細胞、Cx43asODNで処理した線維芽細胞、ZO−1asODNで処理した線維芽細胞、およびZO−1sODNで処理した線維芽細胞;またはCx43shRNAを形質導入した細胞、p.Supを形質導入した細胞、N−cadshRNAを形質導入した細胞、および偽形質導入細胞、ならびにCx43−WTをトランスフェクトした線維芽細胞、Cx43−DNをトランスフェクトした線維芽細胞、およびpGFPをトランスフェクトした線維芽細胞の集密培養物に機械的掻創を受けさせた。いくつかの実験において、Cx43shRNA線維芽細胞およびp.Sup線維芽細胞を、記載されている(Francisら(2011年)、PloS one、6巻:e26379頁)通りに、血清を欠乏させた(SS)か、または血清(FBS)の存在下で、48時間にわたってインキュベートした。この時間の後、細胞に創傷を生じさせ、血清を補充したDMEM中でインキュベートした。創傷を生じさせた後すぐに、5分間隔で3〜4時間にわたって微速度撮影画像を取得し、これはOrca CCDカメラ(Hamamatsu、UK)を備えた倒立Zeiss LSM AxioPlan400蛍光顕微鏡(Zeiss、UK)において、40×1.2NA対物レンズを使用して取得し、インキュベーションチャンバーは37°および5%CO2にした。OpenLab画像取得ソフトウェア(Improvision/Perkin Elmer、UK)を使用して微速度撮影画像を捕捉した。個々の線維芽細胞の移動速度を、Volocity4解析ソフトウェア(Improvision/Perkin Elmer)を使用し、前縁細胞の最初の位置と創傷を生じさせた3時間後の最後の位置との間の距離を測定することによって定量した。各実験条件について、速度を平均±SD(μm/秒)として示した。
新鮮な溶解産物を、以前に記載されている通り(Mendoza−Naranjoら(2007年)、J Cell Sci、120巻:279〜288頁)に、PAKのRac/Cdc42結合ドメイン(p21結合ドメイン、PBD)またはRhoA−GTPの相対量を検出するためのGST−Rhotekinを使用したRac1/Cdc42プルダウンアッセイおよびRhoAプルダウンアッセイのために使用した。結合したタンパク質(GTPと結合したRac1、Cdc42、またはRhoA)レベルをウエスタンブロットによって検出した。総細胞溶解産物由来の総Rac1、総Cdc42、および総RhoAもローディング対照として分析した。
FRETプローブであるRaichu−Rac1、Raichu−Cdc42(Itohら(2002年)、Mol Cell Biol、22巻:6582〜6591頁)、およびRhoAバイオセンサー(Pertzら(2006年)、Nature、440巻:1069〜1072頁)をコードするプラスミドを、Fugene HD(Roche)を使用してCx43shRNAを形質導入した線維芽細胞またはp.Supを形質導入した線維芽細胞にトランスフェクトした。共焦点蛍光顕微鏡法およびアクセプター光退色を使用してEYFP−ECFP融合構築物を発現している細胞のFRET効率を測定した。前縁トランスフェクト細胞を、Olympus FluoView 1000レーザー走査共焦点顕微鏡および60×1.4NA油浸対物レンズ(Olympus Microscopes、UK)を使用して画像化した。CFPチャネルおよびYFPチャネルを、それぞれ440nmのレーザーおよび515nmのレーザーを使用して励起させた。2つの放出チャネルは、CFPについては460〜510nmであり、YFPについては520〜620nmであった。各チャネルについての増加はおよそ75%のダイナミックレンジ(12ビット、4096グレーレベル)に設定し、オフセットをバックグラウンドがゼロになるように設定した。退色前および退色後のCFP画像およびYFP画像を取得し、FRETモードを用いて、515nmのアルゴンレーザー線を最大出力で(YFPを退色させるため)10〜12回走査することでアクセプター退色後の各チャネルについての画像を収集した。Olympus FluoView 1000ソフトウェアを使用して、退色前(pre)および退色後(post)のドナーおよびアクセプターの強度値を分析し、次いで、値を対象とする細胞の内側、ならびに同等のサイズの、細胞の外側の退色した領域に入る画素から抽出し、各領域について平均比を決定した。細胞全体にわたるFRET効率比を、次式を使用して算出した:FRET効率=[ID(post)−ID(pre)]/ID(post)、式中、IDpreおよびIDpostは、アクセプター(YFP)の光退色前(pre)および光退色後(post)のドナー(CFP)の強度を指す。
単細胞およそ20,000個をDMEM中10%FBSの液滴35μlに、24ウェルディッシュの蓋から4時間にわたって懸濁させた。各ウェルの底部に水を入れて湿度を維持した。液滴を、200μlのイエローチップを用いて5回、上下にピペッティングし、4%パラホルムアルデヒドで固定し、アリコートをカバーガラス上に広げた。試験した各条件(p.Supを形質導入した細胞およびCx43shRNAを形質導入した細胞)について6つの個々の試料からの6つの無作為の視野の画像を、倒立Axiovert Zeiss LSM顕微鏡において4×0.1NA対物レンズを用いて取得した。およそ2.5×102〜7.5×102μm2の面積は細胞1〜3個のクラスターに対応し、2.5×103μm2は細胞約10個に対応する。各細胞クラスターの面積を、ImageJソフトウェア(NIH)用の特注のプラグインを使用して決定した。単細胞が占める面積を並行して測定して、単位面積当たりの細胞の量を見積もった。
対のあるデータに対するウィルコクソンマッチドペア符号順位検定、または複数比較のデータセットに対する一元配置分散分析(ANOVA)を使用して統計学的な差を決定した。接着の懸滴アッセイにおいて細胞クラスターサイズを分析するために両側カイ二乗検定を使用した。記載されている場合を除き、データはすべて、平均±SDとして示されている。個々の検定についての基準レベルが以下の結果に示されている。
Cx43、N−カドヘリンおよびZO−1はヒトVLUの真皮において劇的に上方制御される
健康なヒトボランティアからの皮膚パンチ生検材料2mm、および6例のヒトVLUからの慢性創縁生検試料4mm、それと併せて同じ患者由来の対応するインタクトな皮膚試料を使用して、慢性創傷の真皮と急性創傷の真皮におけるCx43タンパク質レベルを分析した。図1に示されている通り、皮膚Cx43タンパク質レベルはヒト慢性VLUにおいて著しく上方制御される。図1Dは、創縁パンチ生検材料を取得した患者の下腿部における慢性VLUの代表的な像である(写真中の白い点線の円、図1D)。
Cx43の下方制御により、皮膚治癒プロセスが有意に加速することが以前に示されている(Qiuら(2003年)、Curr Biol、13巻:1697〜1703頁;Moriら(2006年)、J Cell Sci、119巻:5193〜5203頁)。本実施例に記載の実験では、Cx43ノックダウンの影響を、ZO−1タンパク質およびN−カドヘリンタンパク質の発現に関してin vivoで調査した。この目的のために、創傷治癒のin vivoマウスモデルを使用し(n=6)、全層皮膚切除創を、Cx43アンチセンス対照オリゴデオキシリボヌクレオチドまたはCx43センス対照オリゴデオキシリボヌクレオチド(それぞれCx43asODNおよびCx43sODN)を用いて処置した。
Cx43をノックダウンの標的とすることにより、in vivoにおける創傷閉鎖の速度が加速する(Qiuら(2003年)、上記)。本明細書では、いくつかの実験により、Cx43発現が減少した後の細胞移動の増加がZO−1タンパク質レベルの低下または細胞接着の減少(それぞれZO−1の下方制御またはN−カドヘリンの下方制御)と関連するかどうかを調査した。
細胞間接着の機構を下方制御することは、皮膚細胞を含めた種々の細胞型において、それら自体を再活性化して移動性表現型を獲得するやり方の1つである。細胞間接着の強度を特徴付けるために、懸滴アッセイが以前から使用されてきた(Elbertら(2006年)、Mol Biol Cell、17巻:3345〜3355頁;Redfieldら(1997年)、J Cell Biol、138巻:1323〜1331頁)。したがって、このアプローチを使用して、懸濁液滴中に形成されてかつマイクロピペットチップを用いたトリチュレーションに抵抗性である細胞クラスターのサイズを測定することによって細胞間接着性を比較した。クラスターを形態計測画像分析によって評価し、それらの面積に応じて3つのサイズ群に分類した。Cx43shRNAを形質導入した細胞およびN−cadshRNAを形質導入した細胞では、細胞間接着の減少に特徴的な、より少ないトリチュレーション抵抗性クラスター(面積>2.5×103μm2)、およびより小さなクラスター(面積<7.5×102μm2)が形成された(図5Aおよび図5B;p<0.005)。
掻創アッセイを使用して、創縁における極性化Cx43ノックダウン細胞が通常の葉状仮足突出よりも大きく伸長することが観察された。指向的細胞ロコモーションには、アクチンフィラメント(F−アクチン)と微小管との間の複雑な相互作用が必要であり、したがって、線維芽細胞において、Cx43発現を標的化した後に、創傷を生じさせた単層におけるF−アクチン、およびチロシン化チューブリンおよびアセチル化チューブリンの分布を分析した。最前列の対照Cx43sODNをトランスフェクトした線維芽細胞、pGFPをトランスフェクトした線維芽細胞、およびp.Sup線維芽細胞では、極性化した移動性細胞に典型的なF−アクチン帯が示され(図6A、および図7A、矢じり;図12A)、これは、接着結合によって調節される(Yonemuraら(1995年)、J Cell Sci、108巻(第1部):127〜142頁)。対照的に、Cx43asODN創縁細胞、Cx43−DN創縁細胞、およびCx43shRNA創縁細胞では、移動の方向に向いた豊富な葉状仮足突出が発生し、対照細胞において見出されるF−アクチン帯はなかった(図6A、および図7B、矢じり;図12A)。対照条件下では、チロシン化微小管およびアセチル化微小管(それぞれTyrTubおよびAcetTub)が、創傷を生じさせた線維芽細胞単層実験において以前に記載された通り非常に多く配置され(GundersenおよびBulinski(1988年)、Proc Natl Acad Sci USA、85巻:5946〜5950頁)、核周囲の領域から創縁(wound margin)に向かって広がった。より伸長する傾向があったCx43asODN細胞、Cx43shRNA細胞、およびCx43−DN細胞では、チロシン化微小管は、主に創縁に対して垂直に向いた(図6A、および図7B、矢じり;図12A)。Cx43を過剰発現している細胞(Cx43−WT)では、pGFPをトランスフェクトした対照細胞よりも狭い範囲にわたる微小管および葉状仮足が示された(図7C)。
Rho GTPアーゼは、アクチンおよび微小管のダイナミクスの重要な調節因子であり、細胞の運動性および走化性応答にとって重大なアクチンに基づく種々の構造の制御において不可欠な役割を果たす。線維芽細胞におけるRhoファミリーGTPアーゼ活性化に対するCx43ノックダウンおよびN−カドヘリンノックダウンの影響を、活性化されたRac1、Cdc42、およびRhoA(GTPと結合した形態)に対して特異的なGST融合タンパク質結合ドメインを用いたプルダウンアッセイを使用して検査した。定量的分析により、Cx43shRNA細胞およびN−cadshRNA細胞において、p.Sup対照および偽対照と比較して、それぞれ、Rac1活性およびRhoA活性の増強が示された(図8Aおよび図8B)。対照的に、Cdc42 GTPアーゼ活性の差異は検出されなかった。
慢性創傷は、著しい、増加している世界的問題であり、これにより、患者および健康管理システムリソースの両方に大きな負荷がかかっている。慢性創傷は、身体のどこにでも起こり得るが、大部分がVLU、糖尿病性足部潰瘍および褥瘡のカテゴリーに入り、組織化された規則正しく時を得た一連の創傷修復を通して行われることができない。多くの場合、感染し炎症を起こし、数が増加している高齢の患者および糖尿病患者に対して有痛性および消耗性になり、当該患者を下肢切断の危険性にさらすこれらの慢性創傷には創傷閉鎖の加速またはさらなる刺激が重要である。本明細書では、STZ糖尿病ラットの創縁表皮において見出されたのと同様に、移動および治癒が減損したことの基礎をなす特徴である(Wangら(2007年)、Diabetes、56巻:2809〜2817頁)、ヒト慢性VLUの真皮においてCx43が著しく上方制御されることが実験により示される。
糖尿病性足部潰瘍におけるCx43、N−Cad、およびZO−1の過剰発現により、線維芽細胞移動が遅延する
諸言
糖尿病性足部潰瘍の不十分な治癒は、非常に消耗性であり可能性があり、下肢切断に至る可能性がある主要な臨床的問題である。通常の急性創傷では、細胞移動および治癒の前兆として創縁においてコネキシン43(Cx43)ギャップジャンクションタンパク質が下方制御される。本実施例では、ヒト慢性糖尿病性足部潰瘍の創縁由来の線維芽細胞を使用する実験により、創傷のない皮膚と比較して、コネキシン43タンパク質の著しく有意な10倍の上昇、ならびにN−カドヘリン(N−Cad)の6倍の増加およびZonular Occludin−1(ZO−1、閉鎖帯(zona occludens)タンパク質の1種)の2倍の増加が示される。ストレプトゾトシン糖尿病ラットにおいて、インタクトな皮膚線維芽細胞では、血中グルコースレベルと正比例してCx43が上方制御され、創傷に応答してさらに2倍上昇することが見出された。糖尿病を模倣するために、3T3線維芽細胞を種々の濃度のグルコースまたはマンニトールの下で培養し、Cx43タンパク質細胞間情報伝達および移動速度を決定した。非常に高い(40mM)グルコース条件下の線維芽細胞の培養物では、免疫染色およびウエスタンブロットによって示されている通り、Cx43タンパク質レベルの有意な上昇、ならびに、転染によって示されている通り、ギャップジャンクション情報伝達の有意な増加が示された。掻創治癒アッセイにおいて、高グルコースによるCx43のレベルの上昇により、糸状仮足の伸長の抑圧、および標準の条件(5.5mMのグルコース)またはマンニトールの浸透圧対照のいずれにおけるものよりも有意に遅い移動速度がもたらされた。逆に、Cx43shRNA形質導入を用いてグルコース誘導性コネキシン43上方制御を妨げた場合、線維芽細胞は、糸状仮足を長く伸長させ、有意に速く移動した。コネキシン43タンパク質は、糖尿病性足部潰瘍における線維芽細胞において、ならびに培養中の高グルコース曝露後に上方制御され、これは線維芽細胞移動の阻害と相関し、創傷治癒の減損に寄与する可能性がある。
糖尿病の人は、治癒が不十分になる創傷を有す可能性および足で最も頻繁に見られる非治癒性皮膚潰瘍の高い発生率にさらされる可能性がある。そのような潰瘍は非常に消耗性であり得、著しい数が最終的に下肢切断に至る。
2.1 ヒト皮膚生検材料
慢性糖尿病性足部潰瘍の縁部からの4mmのパンチ生検材料の採取はWestern Institutional Review Board、Olympia、Washington State、USAにより認可された。この試料を潰瘍の創縁ならびに対応する創傷のない皮膚の前腕生検材料から取得した。別の非糖尿病コホートが前腕皮膚の生検を受けた。すべての生検材料を、書面のインフォームドコンセントを得た後に取得した。
雄のSprague−Dawleyラット(350〜400g)において、STZ(65mg/Kg)を腹腔内注射することにより糖尿病を誘導し、グルコース尿ストリップ(glucose urinary strip)(Clinistix、Bayer、UK)を使用して糖尿病を確認した。糖尿病を誘導した2週間後に創傷治癒試験に取りかかり、これは以前に記載されている(Wang、Lincoln(2007年)、Diabetes、56巻:2809〜17頁)通り実施した。50μlの、10μMの修飾されていないCx43asODN(5’−GTA ATT GCG GCA GGA GGA ATT GTT TCT GTC−3’;配列番号10)または対照Cx43sODN(5’−GAC AGA AAC AAT TCC TCC TGC CGC AAT TAC;配列番号11;Sigma)の単回の局所適用を創傷に送達し、創傷を生じさせた24時間後に組織を回収した。血中グルコースの読み取りを取得し、すべてのラットが、重度に高血糖であることが確認された(血中グルコース27.07+1.09mmol/L)。
NIH 3T3線維芽細胞の集密単層を、10%ウシ胎児血清およびペニシリン/ストレプトマイシンを補充した5.5%グルコースDMEM(D5796:Invitrogen、UK)中で増殖させた。いくつかの実験では、グルコースのレベルを25mMまたは40mMまで上昇させたか、あるいは19.5mMまたは34.5mMのマンニトールの浸透圧対照とした。細胞をこれらの条件で2週間にわたって培養した後に実験を実施した。色素注射をBeckerら(Journal of Cell Science(1995年)、108巻、4部:1455〜67頁)に記載されている方法に従って行った。線維芽細胞の集密単層に対して掻創アッセイをMoriら(Journal of Cell Science(2006年)119巻:5193〜203頁)に記載されている通り実施し、移動を、Olympus IX81顕微鏡において微速度画像化によって4時間にわたってモニターした。
創傷を生じさせた皮膚およびインタクトな皮膚の培養細胞またはクリオスタット切片に対して、Wangら(Diabetes(2007年)、56巻:2809〜17頁)に記載されている通り免疫染色を行った。Cx43に対する一次抗体(1:2000希釈(Sigma、Poole、UK))、N−カドヘリンに対する一次抗体(1:100希釈(Abcam、ab18203))、およびZO−1に対する一次抗体(1:100希釈(Zymed Laboratories、61−7300))を室温で1時間インキュベートした。組織をPBSで洗浄し、次いで、二次抗体ブタ抗ウサギFITCコンジュゲート(DAKO)と一緒にインキュベートした。一次抗体の不在下での二次抗体インキュベーションを陰性対照として使用した。次いで、組織を、5μg/mlの核色素Hoechst 33342(Sigma、Poole、UK)を用いて10分間にわたって対比染色し、Leica SP2共焦点顕微鏡(Leica Microsystems、UK)において画像を取得した。8ビットデジタル画像のすべてを直接比較することを可能にするために、各実験を通して画像取得中のすべてのパラメータを一定に保った。画像化の際、主要な皮膚付属器は、相当に多くのCx43を発現し、結果が歪められることになるので、視野に入れなかった。ImageJソフトウェア(NIH)を使用し、よく確立された画素計数方法を使用して単位面積あたりの免疫染色レベルを定量した。画像を、同一の閾値を使用して2値画像に変換した。2画素を超える目的物を計数して、条件間で比較するための単位面積当たりの陽性画素の数の読み取りを生成した。
ANOVA、その後、チューキーの分析を使用し、P<0.05を有意として統計学的差異を決定した。
ヒト生検材料におけるCx43タンパク質レベル、N−カドヘリンタンパク質レベルおよびZO−1タンパク質レベル
基礎をなす糖尿病の状態の、インタクトな創傷のない真皮由来のヒト線維芽細胞Cx43タンパク質レベルに対する影響は、糖尿病性足部潰瘍(DFU)の影響とは対照的にCx43タンパク質レベルに関して無視できた。DFUにおける線維芽細胞では、Cx43タンパク質の著しい上方制御が示され、これは比較できるインタクトな糖尿病患者または非糖尿病患者の皮膚よりも約10倍高かった(P<0.05)。Cx43タンパク質は、多くの場合、密着結合タンパク質ZO−1および接着タンパク質N−カドヘリンと密接に関連し、これらのタンパク質はどちらも、同様にDFU試料において上昇することが見出された。N−カドヘリンタンパク質レベルはDFUにおいてインタクトな皮膚と比較して6倍上昇し(P<0.05)、平均ZO−1タンパク質レベルは2倍上昇したことが見出された。インタクトなヒト皮膚では、エラスチンの自己蛍光束(autofluorescent bundle)が見られうる(しかしラット皮膚では見られない)こと、およびこれらがDFUの創縁ではプロテアーゼによって分解されていて存在しないことも観察された。
創傷を生じさせた24時間後のSTZ糖尿病ラットの創縁領域における皮膚線維芽細胞のCx43免疫染色は、対照ラットにおけるものの2倍よりも多かった。この糖尿病創縁線維芽細胞におけるCx43タンパク質の異常な増加は、創傷を生じさせたすぐ後にCx43特異的アンチセンスゲル(Cx43asODN;配列番号13)を単回局所適用することによって効率的に妨げられた(p<0.001)。インタクトな糖尿病ラット皮膚では、Cx43タンパク質レベルが血中グルコースレベルに直接関連して(r=0.625)有意に上昇することが見出された。
p.Sup構築物またはCx43shRNA構築物を形質導入した3T3線維芽細胞を、これらの細胞における糖尿病の状態を模倣するために、グルコースを漸増させた条件下で(5.5mM、25mMおよび40mM)2週間培養した。グルコース容量オスモル濃度の上昇の影響を調節するために、線維芽細胞を、それぞれ19.5mMまたは34.5mMのマンニトールを補充した5.5mMのグルコースDMEM中でもインキュベートした。ウエスタンブロット法および免疫染色によって示されている通り、40mMのグルコースレベルにより、Cx43タンパク質のレベルが有意に上昇した(p<0.01)。このCx43タンパク質レベルの上昇は、Cx43shRNAを形質導入することによって大きく妨げられた(p<0.001)。種々の濃度のグルコースの下で培養した線維芽細胞における細胞情報伝達の程度を分析し、最も高いグルコース濃度(40mM)において、より低いグルコースまたは対照の高マンニトール条件と比較して色素カップリングの発生率の有意な上昇が見られた(p<0.01)。
4時間にわたって画像化したところ、グルコースを漸増させた条件下で2週間培養した細胞の掻創に応答した移動は5.5mMのグルコースよりも有意に遅かった(25mMのグルコースおよび40mMのグルコースについて、それぞれP<0.05およびp<0.001)。浸透圧の影響が除外される19.5mMのマンニトールと一緒にインキュベートした線維芽細胞および34.5mMマンニトールと一緒にインキュベートした線維芽細胞については移動の速度に有意な変化はなかった。Cx43shRNAまたはp.Supを安定に形質導入した線維芽細胞を、グルコースおよびマンニトールを漸増させた条件下でインキュベートした場合、Cx43shRNAにより、40mMのグルコース条件において見られるCx43の上方制御が大きく妨げられ、すべての条件について移動速度が有意に増強された(P<0.05;p<0.001)。Cx43shRNA 40mM高グルコース用量についての移動速度は、p.Sup 40mMグルコースの2倍に増大したが、他のCx43shRNA処理条件のすべてにおいて見られる速さには達しなかった。しかし、その移動速度は、p.Supをトランスフェクトした線維芽細胞の培養物のすべてにおいて得られる速度に匹敵したかまたはそれを超えた。さらに、Cx43shRNAにより、より急速な移動開始およびより大きな運動性と一致して、移動する細胞の前縁における葉状仮足伸長が生じる速度およびそのサイズも増強された。
この試験では、初めて、ヒトDFU創縁の生検材料由来の皮膚線維芽細胞において定量したギャップジャンクションタンパク質Cx43の発現レベルにおいて著しい10倍の上昇が観察された。この通常は急性創傷治癒において一過性に下方制御されなければならないタンパク質であるCx43の異常な発現により、線維芽細胞がそのような慢性創傷に移動し、それを治癒する能力が阻害されると考えられている。
この試験では、糖尿病性足部潰瘍由来のヒト生検材料の皮膚線維芽細胞においてCx43タンパク質レベルの10倍の上昇が見出された。さらに、DFUにおいてN−カドヘリンおよびZO−1のレベルがそれぞれ6倍および2倍上昇することが見出された。STZ糖尿病ラット真皮においてCx43が血中グルコースのレベルに比例して上昇したこと、およびSTZ糖尿病ラットの創縁真皮において観察されたCx43の3倍の上昇を、Cx43特異的アンチセンスを創傷に適用することによって補正することができることも示された。培養した線維芽細胞において、高レベルのグルコースによりCx43タンパク質レベルの上昇が誘導されうること、およびそのようなグルコースレベルによりin vitroにおける線維芽細胞移動が遅延することも示された。これらの結果により、Cx43発現の増加が、糖尿病性潰瘍における不十分な線維芽細胞移動および治癒速度低下の基本的な原因であることが確認される。
ZO−1を標的とするオリゴヌクレオチド
本実施例では、ZO−1 AS ODN(アンチセンスオリゴデオキシリボヌクレオチド)、shRNA(低分子ヘアピン型RNA分子)、およびsiRNA(低分子干渉RNA分子)のいくつかの候補が記載されている。
囲内であるとみなされることが理解されるはずである。
Claims (16)
- カドヘリンタンパク質スーパーファミリーのメンバーであるタンパク質、場合によって、ヒトカドヘリンタンパク質、場合によって、N−カドヘリン、E−カドヘリン、P−カドヘリン、カドヘリン11、カドヘリン12、プロトカドヘリンタンパク質、デスモグレインタンパク質、およびデスモコリンタンパク質からなる群から選択されるカドヘリンタンパク質をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)に対するポリヌクレオチド、場合によって、アンチセンスポリヌクレオチド、RNA、shRNA、miRNAまたはsiRNAであって、前記ポリヌクレオチドが、場合によって約5〜約100ヌクレオチドの長さ、場合によって約6〜約40ヌクレオチドの長さである、ポリヌクレオチド。
- オリゴデオキシヌクレオチド、場合によって、修飾されていないホスホジエステルオリゴデオキシヌクレオチドまたは化学修飾されたデオキシオリゴヌクレオチド、場合によって、ホスホロチオエート、メチルホスホネート、ホスホルアミデート、ホスホロジチオエート、N3’P5’−ホスホルアミデート、オリゴリボヌクレオチドホスホロチオエートおよびそれらの2’−O−アルキル類似体、2’−O−メチルリボヌクレオチドメチルホスホネート、および混合骨格オリゴヌクレオチドからなる群から選択される化学修飾されたオリゴヌクレオチドである、請求項1に記載のポリヌクレオチド。
- N−カドヘリン遺伝子オープンリーディングフレーム内の標的ヌクレオチド配列であって、配列5’−GACTGGATTTCCTGAAGAT−3’(配列番号7)を含む約100未満のヌクレオチドを含む標的ヌクレオチド配列、またはそのRNA等価物に結合する、請求項1に記載のポリヌクレオチド。
- アンチセンスポリヌクレオチド、RNA、shRNA、またはsiRNAであり、場合によって、前記標的ヌクレオチド配列を含むmRNAまたはメッセンジャーRNAの一部に対して少なくとも約70%、少なくとも約80%、少なくとも約90%、少なくとも約95%、または100%の相補性を有する、請求項3に記載のポリヌクレオチド。
- 異常なまたは望ましくないカドヘリン活性と相関する疾患または状態の処置において使用するための医薬の製造における、請求項1に記載の少なくとも1つのアンチセンスポリヌクレオチドの使用であって、前記疾患または状態が、場合によって、急性創傷、慢性創傷、炎症性疾患、肺疾患(場合によって、喘息)、腎疾患、肝疾患(場合によって、NASH)、関節炎(場合によって、若年性関節炎、変形性関節症、および関節リウマチ)、炎症性腸疾患(場合によって、クローン病および潰瘍性大腸炎)、皮膚病、感染症、虚血(場合によって、再灌流傷害)、および心疾患(場合によって、アテローム性動脈硬化症)からなる群から選択される使用。
- 請求項1に記載の少なくとも1つのアンチセンスポリヌクレオチドおよび生理的に許容される担体またはビヒクルを含む組成物であって、場合によって、経口投与、局所投与、および注射からなる群から選択される経路による投与のために製剤化された組成物。
- クリーム、軟膏、ゲル、乳剤、ローション、泡沫、またはペイントの形態である請求項6に記載の組成物であって、前記組成物がゲルである場合には、前記ゲルは、場合によって、非イオン性ポリオキシエチレン−ポリオキシプロピレンコポリマーゲルを含む、組成物。
- ポリヌクレオチドの細胞への浸透を補助する界面活性剤または尿素をさらに含む、請求項6に記載の組成物。
- カドヘリンタンパク質スーパーファミリーのメンバーであるタンパク質をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)に対するアンチセンスポリヌクレオチドを送達する方法であって、前記タンパク質の調節剤を用いた処置を必要とする対象、場合によってヒトまたは非ヒト動物、場合によって哺乳動物に、請求項6に記載の組成物を投与し、それにより、前記タンパク質をコードするmRNAに対するアンチセンスポリヌクレオチドを送達することを含む方法。
- 前記対象が、創傷、場合によって、急性創傷、治癒が遅延している創傷、治癒が不完全な創傷、慢性創傷(場合によって、糖尿病性潰瘍、静脈性潰瘍、褥瘡、血管性潰瘍、または動脈性潰瘍)、および離開創からなる群から選択される創傷を受けており、前記組成物が、場合によって、創傷の修復または閉鎖の前に適用される、請求項9に記載の方法。
- 対象におけるカドヘリンタンパク質スーパーファミリーのメンバーであるタンパク質の発現を減少させる方法であって、前記対象に請求項6に記載の組成物を投与し、それにより、前記タンパク質の発現を減少させることを含む方法。
- 治療有効量の第1の創傷治癒剤および第2の創傷治癒剤を含む組成物を、処置を必要とする対象に投与することを含む処置方法であって、前記第1の創傷治癒剤が請求項1に記載のアンチセンスポリヌクレオチドであり、前記第2の薬剤が、抗コネキシン43ポリヌクレオチド、抗コネキシン43ペプチド、またはペプチド模倣剤、ヘミチャネル閉鎖剤または遮断剤、コネキシン43カルボキシ末端ポリペプチドギャップジャンクション閉鎖剤または遮断剤、および抗オステオポンチンポリヌクレオチドからなる群から選択される方法。
- 前記第1の創傷治癒剤および第2の創傷治癒剤が組み合わせて投与され、場合によって、別々に、場合によって、ほぼ同時にまたは逐次的に投与される、請求項12に記載の方法。
- 前記第1の創傷治癒剤または第2の創傷治癒剤が最初に投与される、請求項12に記載の方法。
- 前記第1の創傷治癒剤および第2の創傷治癒剤が、互いから約1〜約7日以内、場合によって、互いから約1〜約2日以内、場合によって、互いから約6〜約24時間以内、場合によって、互いから約1〜約6時間以内に投与される、請求項12に記載の方法。
- 請求項1に記載のポリヌクレオチドを使用のための指示書と一緒に含有する包装材料を含む製品。
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