JP2015502551A - Aβ凝集体の選択的定量化方法 - Google Patents
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Abstract
Description
a)試験すべきサンプルを基体に施与する工程、
b)Aβ凝集体への特異的な結合によりこのAβ凝集体をマークする、検出用に標識されたプローブを添加する工程、及び
c)マークされたAβ凝集体を検出する工程
を含み、ここで、工程a)を工程b)の前に行うことができることを特徴とする方法により解決される。
・ 超音波浴又はプラズマ洗浄装置におけるガラス製の基体又はガラス支持体の洗浄、またこれに代えて、5M NaOH中での少なくとも3時間にわたるインキュベーション。
・ 水でのすすぎ、次いで窒素下での乾燥、
・ ヒドロキシル基の活性化のための、3:1の比の濃硫酸及び過酸化水素からの溶液中への浸漬、
・ 中性pHとなるまでの水でのすすぎ、次いでエタノールでのすすぎ、及び窒素雰囲気下での乾燥、
・ 無水トルエン中の3−アミノプロピルトリエトキシシラン(APTES)(1〜7%)を含有する溶液中か、又はエタノールアミンの溶液中への浸漬、
・ アセトン又はDMSO及び水でのすすぎ、及び窒素雰囲気下での乾燥。
− (サンプルの沸点までの温度への)加熱、
− 1回以上の凍結・融解サイクル、
− 水又はバッファーでの希釈、
− 例えばプロテアーゼ、ヌクレアーゼ、リパーゼといった酵素での処理、
− 遠心分離処理、
− 沈殿処理、
− 存在し得る抗Aβ抗体を排除するための、プローブによる競合。
− 互いに共有結合していない、複数の、好ましくは同一の構成単位からなる粒子、及び/又は、
− 複数のモノマーの、共有結合していない集合体。
プローブの共有結合のための厳密に定義された数のエピトープを含むデンドリマー、
Aβペプチドのエピトープを含むデンドリマー、
タンパク質凝集性疾患を特徴付ける生体固有のタンパク質からの病原性の凝集体よりも水性物質中での溶解度が高いことを特徴とするデンドリマー、
官能基を含むデンドリマー、
少なくとも1つのスペーサー分子を含むデンドリマー、及び/又は
分光光度定量のための染料及び/又は芳香族アミノ酸を含むデンドリマー。
第一の工程において、標準物質又はデンドリマーをプローブでマークして、標準物質又はデンドリマーに結合しているプローブの数を測定し、
第二の工程において、タンパク質凝集性疾患を特徴付ける生体固有のタンパク質からの病原性の凝集体又はオリゴマーをプローブでマークして、その都度病原性の凝集体又はオリゴマーに結合しているプローブの数を測定し、
第三の工程において、第一の工程からのその都度標準物質又はデンドリマーに結合しているプローブの数を、第二の工程からの数と比較し、さらに
第四の工程において、それにより体液からのオリゴマーの数及びサイズを決定する。
・疎水性物質、好ましくはデキストラン、好ましくはカルボキシメチルデキストランで被覆されているガラス製の基体;
・標準物質;
・キャプチャー分子;
・プローブ;
・キャプチャー分子を有する基体。
1.基体の準備
ガラス製の支持体を超音波浴中で15分間洗浄した。表面を水で3回すすぎ、窒素ガス流中で乾燥させた。洗浄した支持体を、濃硫酸と過酸化水素の3:1(V/V)の混合物に少なくとも30分間浸漬させ、それによりヒドロキシル基を活性化させた。次いで、すすぎ水のpHが中性になるまで水ですすいだ。第二のすすぎ工程において99%エタノールを使用し、次いで、支持体を窒素ガス流中で乾燥させた。このガラス支持体を、無水トルエン中の1〜7%の3−アミノプロピルトリエトキシシラン(APTES)の溶液に、1〜4時間浸漬させた。5%APTES溶液を用い、2時間のインキュベーション時間で、良好な結果が達成された。次いで、スライドをアセトン及び水ですすぎ、窒素ガス流中で乾燥させた。
EDC/NHSの溶液(200又は50mM)で、表面の第二の活性化を5分間行った。抗体の溶液をこれに添加し、4℃で2時間インキュベートした。これにより、抗体を、CMDで被覆されたガラス表面に共有結合させた。次いで、CMDスペーサー上の残りの活性カルボキシル末端基を失活させるために、これをDMSO中の1Mエタノールアミンで15分間インキュベートした。次いで、基体をPBSで3回洗浄した。
アッセイを行うべきサンプルを基体上で1時間インキュベートし、次いで、これをTBST(0.1%)(W/W)、TBSバッファー中のTween 20、TBS:50nM Tris−HCl、0.15M NaCl、pH7.4で2回洗浄した。
Nab 228、抗マウスAlexa 633、及び6E10−Alexa488抗体を用いた。Nab 228抗体を、製造者の使用説明書に従って、キット(蛍光標識キットAlexa−647、分子プローブ、Karlsruhe、ドイツ在)で標識した。標識した抗体を、2mMアジ化ナトリウムを含むPBS中で暗所で4℃で貯蔵した。
使用した抗体の数は、所望のマーキング度合いに依存していた。プローブを添加し、室温で1時間インキュベートし、次いで、TBSTで5回、TBSで2回洗浄した。
共焦点レーザー走査型顕微鏡LSM 710(Carl Zeiss社、Jena、ドイツ在)を用いて測定を行った。この顕微鏡は、1つのアルゴンイオンレーザーと、3つのヘリウムネオンレーザーを具備していた。レーザービームを、容量0.25フェムトリットルの回折限界スポットに集束させた。1000×1000ピクセルの面の蛍光強度を測定した。種々のプローブを用いたため、共局在化解析を行った。代表値を求めるために、この面を支持体上の複数の箇所で測定した。
異なる患者のCSFの26個のサンプルを、本発明による方法で解析した。これらのサンプルは、それぞれ14人のAD患者と、(年齢の異なる、タンパク質凝集性疾患に関して健康な)12人の対照患者とからのものである。結果を図1にまとめた。この結果から、群間で明確な区別ができることが明らかである。AD群におけるAβオリゴマーの平均は、対照群の場合よりも著しく高かった。
本発明による解析の結果を、ドナーのMMSE(Mini Mental Status Test)と比較した。この結果を図2にまとめた。この結果から、MMSE試験の評価と本発明による解析の評価との相関関係が明らかである。
1.凝集体標準物質の調製
一実施例において、N末端に結合するAβ抗体に対する16個のエピトープ(エピトープはAβ(1−11)に相当する。配列:DAEFRHDSGYE)を有するAβオリゴマー標準物質を調製した。まず、4つのN末端AβエピトープAβ1−11からなる多抗原ペプチド(MAP)を合成した。これらのエピトープは図3Aに相応してトリプルリシンコアに結合しており、このトリプルリシンコアは、UV/VIS分光法によりMAP濃度を厳密に測定するために2つのトリプトファンを含んでいた。さらに、ビオチンタグをN末端につけた。これを、図3のBに示すように、それぞれ4つの4−MAP単位をストレプトアビジン四量体に結合するのに用いた。4−MAP及びストレプトアビジンをインキュベーションした後に、図3のCに示すように16−MAPを形成させた。サイズ排除クロマトグラフィーにより、16−MAPをインキュベーション混合物の他の成分と分離した。
ガラス製のマイクロタイタープレートを超音波浴中で15分間洗浄し、次いでプラズマ洗浄装置で10分間処理した。ガラス表面の活性化のために、ウェルを5M NaOH中で少なくとも3時間インキュベートし、水ですすぎ、その後、窒素ガス流中で乾燥させた。デキストランで被覆するために、ガラス表面をヒドロキシル化し、次いでアミノ基で活性化させた。このために、ガラスプレートをDMSO中の5Mエタノールアミンの溶液中で一晩インキュベートした。次いで、このガラスプレートを水ですすぎ、窒素ガス流中で乾燥させた。カルボキシメチルデキストラン(CMD)を20mg/mlの濃度で水中に溶解させ、N−エチル−N−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(EDC)(200mM)及びN−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)(50mM)と混合した。10分間のプレインキュベーションの後、この溶液を室温でさらに2時間インキュベートした。次いで、このガラスプレートを水で洗浄した。
EDC/NHSの溶液(200又は50mM)で、第二の活性化を5分間行った。抗体の溶液をこれに添加し、4℃で2時間インキュベートした。これにより、抗体を、CMDで活性化されたガラス表面に共有結合させた。次いで、CMDスペーサー上の残りの活性カルボキシル末端基を失活させるために、これをDMSO中の1Mエタノールアミンで5分間インキュベートした。次いで、ガラスをPBSで3回洗浄した。
アッセイを行うべきMAP−16を含むサンプルをガラス上で1時間インキュベートし、次いで、TBST(0.1%)(W/W)、(TBSバッファー中のTween 20、TBS:50nM Tris−HCl、0.15M NaCl、pH7.4)で3回洗浄した。
6E10−Alexa488抗体及びIC−16抗体を使用した。IC−16抗体を、製造者の使用説明書に従い、キット(蛍光標識キットAlexa−647、分子プローブ、Karlsruhe社、ドイツ在)でマーキングした。標識した抗体を、2mMアジ化ナトリウムを含むPBS中で暗所で4℃で貯蔵した。
プローブを添加し、室温で1時間インキュベートし、次いで、TBSTで5回、水で2回洗浄した。
共焦点レーザー走査型顕微鏡LSM 710(Carl Zeiss社、Jena、ドイツ在)を用いて測定を行った。この顕微鏡は、1つのアルゴンイオンレーザーと3つのヘリウムネオンレーザーを具備していた。タイルスキャンモードで測定を行い、その際、1つのウェル内の隣接する面を測定して画像化した。各タイルスキャンは3×2個の各画像を含んでおり、各画像の面積は213×213μmであった。また、倒立型顕微鏡DMI 6000、レーザーボックス及びHamamatsu−EM−CCD C9100カメラから構成されているTIRF顕微鏡(TIRF=total internal reflection)で測定を行った。タイルスキャンモードでは、それぞれ109.9×109.9μmのサイズを有する3×3個の各画像が存在していた。
1.sFIDAによる測定
sFIDAによってAβモノマーもが検出されてAβオリゴマーのシグナルが変わってしまうことを排除し得るために、合成AβからなるAβモノマー及びAβオリゴマーをJohannson et al., FEBS J. 2006, 273, p.2618-2630のプロトコルに従って調製し、この系を用いて試験した。さらに、Aβオリゴマーを順にPBSで希釈し、一連の濃度で試験の線形性を確認した。すでに上に記載した通りに測定を行い、検出にZeiss社製LSM 710顕微鏡を使用し、それぞれサイズ213×213μm、1024×1024ピクセルの2×25個の画像を撮影した。結果を図5に示す。AβオリゴマーはクリアなsFIDAシグナルをもたらすが、AβモノマーはクリアなsFIDAシグナルをもたらさなかった。図5Bから、sFIDAシグナルがAβオリゴマーの濃度と相関関係にあり、さらに、ポジティブなシグナルが生じるのに必要なAβオリゴマーは極めて少量であることが認められる。
sFIDAについて、今までに選択した数の相互相関ピクセルとは異なるシグナルも生じ得るか否かを確認するために、FRET測定を行った。FRETとは、フェルスター共鳴エネルギー移動を表す。FRETでは、励起した蛍光色素のエネルギーが第二の蛍光色素に移動する。FRET強度は特にドナーとアクセプターとの間の距離に依存し、10nmまでの範囲で観測可能である。従って、AβモノマーとAβオリゴマーとを区別するために、FRETをsFIDAにおいて利用し得ることが望まれる。ドナー染料と結合した抗Aβ抗体(例えば6E10−Alexa488)と、これに適したアクセプター染料と結合した抗Aβ抗体(例えばIC−16−Alexa647)とが、互いに直に接してAβオリゴマーに結合すると、空間的な近接によりFRETが可能となる。6E10−Alexa488及びIC−16−Alexa647が、偶然にも互いに10nm未満の距離で固定化されている2つのAβモノマーに結合することは、統計学的にかなり考えにくい。キャプチャー抗体と重複するエピトープを有する抗体が検出に使用される場合には、この確率はゼロに低下し得る。試験のために、サイズ排除クロマトグラフィーによりAβモノマー及びAβオリゴマーを調製し、上記の通り、sFIDA測定のために固定化した。次いでLeica社製蛍光顕微鏡での測定において、蛍光色素を波長488nmで励起させ、FRET発光を波長705nmで検出した。対照として、それぞれ蛍光染料が結合した抗体を1つだけ添加した2つのサンプルも測定した。
さらなる試験において、sFIDAがアルツハイマーマウスモデルの脳脊髄液中のAβ凝集体の検出にも適しているか否か、また、適している場合には、どのような希釈で適しているかを試験した。試験手順に関して、APP/Ps1マウスの脳脊髄液と、非遺伝子導入対照動物の脳脊髄液を、PBSバッファーで1:10、1:50及び1:250に希釈し、sFIDAによるアッセイを行った。
図1:
患者のCSF中のAβ凝集体の測定。
図1からの結果とMMSEとの相関関係。
Aβの最初の11個のアミノ酸に相応するN末端に結合するAβ抗体について16個のエピトープ(配列:DAEFRHDSGYE)を有するAβオリゴマー標準物質の調製。A)UV/VIS分光法により濃度を測定するために2つのトリプトファンを含むトリプルリシンコアに結合した4つのN末端Aβエピトープ1−11からなる4−MAPを合成した。B及びC)16−MAPを製造するために、それぞれ4つの4−MAPをストレプトアビジン四量体を介して結合させた。サイズ排除クロマトグラフィーにより、MAP−16をインキュベーション混合物の他の成分から分離した。
PBSバッファーで希釈した種々の濃度でのMAP−16のsFIDA測定。MAP−16を含まないPBSバッファーを陰性対照として使用した。A)レーザー走査型顕微鏡(Zeiss社製 LSM 710)で測定を行った。B)TIRF顕微鏡(Leica社製)で測定を行った。
A)sFIDAはAβモノマーに対して非感受性であるが、B)Aβオリゴマーを、濃度に依存して線形的に高感度で検出する。このAβモノマー及びAβオリゴマーは、合成Aβからサイズ排除クロマトグラフィーにより調製し、PBSバッファーで希釈したものである。
Aβモノマー及びAβオリゴマーに対するFRETシグナルでのsFIDA測定。PBSを陰性対照として使用した。さらなる対照として、それぞれ染料が結合した抗体を1つのみ添加したサンプルのアッセイを行った。ドナー染料はAβ抗体6E10に結合したAlexa 488であり、アクセプター染料はAβ抗体IC−16に結合したAlexa 647であった。
遺伝子導入(Tg)アルツハイマーマウスモデル(APP/PS1)の脳脊髄液及び非遺伝子導入対照動物(K)の脳脊髄液中のAβオリゴマーのsFIDA検出。陰性対照として、純粋なバッファーサンプルを使用した。
Claims (27)
- Aβ凝集体の選択的定量化及び/又は特性決定のための方法において、以下の工程:
a)試験すべきサンプルを基体に施与する工程、
b)Aβ凝集体への特異的な結合によりこのAβ凝集体をマークする、検出用に標識されたプローブを添加する工程、及び
c)マークされたAβ凝集体を検出する工程
を含み、ここで、工程a)を工程b)の前に行うことができることを特徴とする方法。 - 工程a)の前に、基体上へのキャプチャー分子の固定化を行う、請求項1に記載の方法。
- サンプルの前処理を行う、請求項1又は2に記載の方法。
- ガラス製の基体を使用する、請求項1から3までのいずれか1項に記載の方法。
- 基体が親水性被覆を有している、請求項1から4までのいずれか1項に記載の方法。
- 基体がデキストランで被覆されている、請求項1から5までのいずれか1項に記載の方法。
- キャプチャー分子が基体又は被覆と共有結合している、請求項1から6までのいずれか1項に記載の方法。
- キャプチャー分子が蛍光染料で標識されている、請求項1から7までのいずれか1項に記載の方法。
- キャプチャー分子が抗Aβ抗体である、請求項1から8までのいずれか1項に記載の方法。
- 抗Aβ抗体が、Aβ凝集体のエピトープに特異的に結合する、請求項1から9までのいずれか1項に記載の方法。
- Aβペプチド特異的プローブを使用する、請求項1から10までのいずれか1項に記載の方法。
- プローブが、蛍光染料で標識された抗Aβ抗体である、請求項1から11までのいずれか1項に記載の方法。
- 2つ以上の異なるプローブを使用する、請求項1から12までのいずれか1項に記載の方法。
- 異なって標識された蛍光染料を有する2つ以上のプローブを使用する、請求項1から13までのいずれか1項に記載の方法。
- 少なくとも1つのプローブが、AβペプチドのN末端エピトープに特異的に結合する抗Aβ抗体である、請求項1から14までのいずれか1項に記載の方法。
- 空間分解性の蛍光顕微鏡法により検出を行う、請求項1から15までのいずれか1項に記載の方法。
- 任意に相互相関及び単一粒子イムノソルベントレーザー走査式アッセイ、レーザー走査型顕微鏡法(LSM)、Wetfeld顕微鏡法、及び/又はTIRF顕微鏡法と組み合わせた、共焦点蛍光顕微鏡法、蛍光相関分光法(FCS)、並びに、相応する超解像改変体STED、SIM、STORM、dSTORMにより検出を行う、請求項1から16までのいずれか1項に記載の方法。
- 検出の際に、バックグラウンドシグナルに対して単一の凝集体の検出が可能となるような数のデータ点を収集する、請求項17に記載の方法。
- 空間的に分解される事象の存在数と同じ数の値を読取る、請求項18に記載の方法。
- 測定サンプルとして、脳脊髄液(CSF)、血液及び/又は尿を使用する、請求項1から19までのいずれか1項に記載の方法。
- 内部標準物質又は外部標準物質をAβ凝集体の定量化に使用する、請求項1から20までのいずれか1項に記載の方法。
- Aβ凝集体の定量化のための標準物質が、ポリペプチド配列から構成されたポリマーであって、このポリペプチド配列は、その配列に関して、相応するサブセグメントにおいて、タンパク質凝集性疾患、又はアミロイド変性、又はタンパク質ミスフォールディング疾患を引き起こす生体固有のタンパク質と同一であるか、又は、相応するサブセグメントにわたって、この生体固有のタンパク質と少なくとも50%の相同性を示し、その際、このポリマーは凝集しない、請求項1から21までのいずれか1項に記載の方法。
- 以下の構成要素を1つ以上含む、請求項1から22までのいずれか1項に記載のAβ凝集体の選択的定量化のためのキット:
・疎水性物質で被覆されているガラス製の基体;
・標準物質;
・キャプチャー分子;
・プローブ;
・キャプチャー分子を有する基体;
・溶液;
・バッファー。 - ADを治療するための活性物質及び/又は処置の有効性を測定するための方法において、請求項1から22までのいずれか1項に記載の方法を実施し、かつ活性物質及び/又は処置を、Aβ凝集体形成に対するその効果に関して互いに比較し、その際、対照よりも低いAβ凝集体形成を示す活性物質及び/又は処置を選択することを特徴とする方法。
- 臨床研究又は臨床試験への個人の受け入れを決定するための方法において、請求項1から22までのいずれか1項に記載のAβ凝集体の定量化及び/又は特性決定を行い、かつ測定値を閾値と比較することを特徴とする方法。
- Aβ凝集体特異的プローブ。
- 所定のAβ凝集体又はAβオリゴマーへの特異的な結合のための、Aβ凝集体特異的プローブ又はAβオリゴマー特異的プローブの使用。
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