JP2015111154A - オートタキシン測定による悪性リンパ腫の検査方法および検査薬 - Google Patents

Abstract

【課題】新規悪性リンパ腫の検査方法の提供。
【解決手段】抗体を用いた免疫化学的測定方法でヒト検体中のオートタキシン濃度を測定し、その値が健常人測定値からなる正常値に対し有意差をもって高値を示した場合に悪性リンパ腫と判断することを特徴とする悪性リンパ腫の検査方法。
【選択図】図１７

Description

本発明は、天然形態ヒトオートタキシンを特異的に認識、結合する抗体及びそのスクリーニング方法、並びにヒト検体中のオートタキシン濃度の測定による慢性肝疾患の検査方法および検査薬に関する。

ヒトオートタキシンは、１９９２年Ｍ．Ｌ．ＳｔｒａｃｋｅらによってＡ２０５８ヒト黒色腫細胞培養培地から細胞運動性を惹起する物質として単離された分子量約１２５kDaの糖蛋白質である（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２５６，２５２４，１９９２）。その後、１９９４年にＪ．ＭｕｒａｔａらによるｃＤＮＡクローニングにより構造解析が進められアミノ末端側で単一膜貫通部分を有すること、細胞ガイドメインに２つのソマトメジンＢ領域、Ｉ型ホスホジエステラーゼ活性ＶおよびＥＦハンドのループ領域を含み、ホスホジエステラーゼ活性を有することなどが明らかとなった（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６９，３０４７９，１９９４）。しかし、オートタキシンが細胞運動性を惹起する機能に関しての明確な証拠は得られぬままであった。２００２年、新規リゾホスフォリパーゼＤの同定がヒト（Ａ．Ｔｏｋｕｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７７，３９４３６，２００２）およびウシ血清（Ｍ．Ｕｍｅｚｕ−Ｇｏｔｏ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，１５８，２２７，２００２）からなされ、本酵素活性により生成されるリゾホスファチジン酸が細胞運動性を惹起することがはじめて明らかとなった。

オートタキシンの運動性惹起機能から推測し、Ｓｔｒａｃｋｅらはヒト癌の浸潤性能力に対するマーカーとしてのオートタキシンの使用を米国特許第５，４４９，７５３号（１９９５年）に記載している。また、Ｓｔｒａｃｋｅらは、毒素と結合された抗オートタキシン抗体の投与による癌治療に関しても米国特許第５，７３１，１６７号（１９９８年）に示唆している。この様にヒトオートタキシンを特異的に認識する抗体が切望されているが、オートタキシンは動物血清中に様々な形態で比較的多量に含まれているため、血清中に通常存在する変性を受けていないオートタキシン（天然形態のオートタキシン）に対し特異性かつ強い結合力を有する抗体取得は非常に困難なことが予想される。実際、オートタキシン自体の定量法はなく、オートタキシンが有するリゾホスフォリパーゼＤ活性の評価により間接的にその定量が行われているのが現状である。かかる活性測定は手法が煩雑であり、また酵素活性発揮させるために通常数時間にも及ぶ基質とのインキュベーション時間を要する。また、ヒト検体中にはオートタキシンとは異なるリゾホスフォリパーゼＤ活性を有する酵素が存在することが予想されること、酵素活性測定におけるリゾホスファチジルコリン基質分解により生じるリゾホスファチジン酸およびコリンがヒト検体中に内在する、などいった妨害因子が存在する。酵素活性測定におけるこれら内在性因子はヒトオートタキシンの特異的定量に少なからず影響を及ぼし、精度の高いヒトオートタキシン定量法ではない。実際、ヒト精漿中には数十ｍＭ程度の濃度のコリンが含まれており、コリン除去の前処理なしには、リゾホスファチジルコリンを基質としたコリン生成量による精漿の活性測定は困難である。

我々を含めいくつかのグループによりヒトオートタキシンの合成部分ペプチドや部分配列を大腸菌により発現させた可溶性ヒトオートタキシンを免疫することにより多数のモノクローナル抗体が樹立されている（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２６９，３０４７９−３０４８４，１９９４，ＦＥＢＳ ｌｅｔｔｅｒ ５７１，１９７−２０４，２００４）。しかし、これら抗体を利用し、ウェスタンブロッティングによりヒトオートタキシンを検出することはできるが、これらの抗体はヒト検体中の天然形態なヒトオートタキシンとの反応性は示さない、あるいはきわめて低い反応性しか示さない。よって、ヒト検体を対象としたＥＬＩＳＡ測定法などの免疫学的測定方法への適用は非常に困難であり、実用には至っていない。

本発明によれば、ヒト検体中の天然形態ヒトオートタキシンと特異的に反応するモノクローナル抗体を非常に効率よく樹立可能である。すなわち、抗原免疫、細胞融合によりモノクローナル抗体を作製する際のスクリーニング方法において、溶液中に存在する天然形態の抗原との反応性を指標に抗体を選択することにより、ＥＬＩＳＡ法などの汎用的なヒトオートタキシン定量測定系を確立することができる。また、本手法で取得した抗体は、血液などに含まれるヒトオートタキシンを効率よく結合捕捉できることより、サンプルからの抗原の除去はもとより、抗原精製も可能な高性能な抗体である。

オートタキシンのヒト組織あるいは体液中の存在濃度が様々な疾病により変動することを示唆する報告がなされているが、これまでその定量方法がないことより、その詳細な解析が行なわれていない。還元剤存在下など変性条件下でのオートタキシンの有無や存在比などの定性的な解析はなされてきたが、構造、機能を維持した状態で通常生体内に存在する天然形態のヒトオートタキシンを効率よく認識、結合可能な抗体がなかったことより、汎用可能なヒトオートタキシンの定量法は確立されていなかった。また、オートタキシンが有するリゾホスフォリパーゼＤ活性を指標に、酵素活性測定によりリゾホスフォリパーゼＤ活性の変動と疾病との因果関係の解析が行なわれているが、本酵素活性測定ではヒト検体中に含まれるオートタキシン以外の他のリゾホスフォリパーゼＤ活性を含んだ測定値が得られてしまうこと、活性測定の際に用いるリゾホスファチジルコリン基質や活性測定の際に生じるコリンが検体中に内在的に含まれること、などのため、真のオートタキシン特異的定量方法としては信頼性が十分でない。

我々は、天然形態のヒトオートタキシンに対する抗体を効率よく取得する手法を見出し、その方法により取得した天然形態のヒトオートタキシンに対する抗体を用いることにより、活性測定時に問題となる内在性物質の影響を受けることなく、また、検体を還元処理、グアニジン塩酸塩、尿素などの蛋白変性剤などにより変性させるなどの前処理を必要とすることなくヒトオートタキシンを精度よく定量可能な測定方法ならびに定量試薬の提供に成功した。

詳しくは、本願は下記の発明を包含する：
（１）変性を受けることなく生体内での存在状態にある天然形態のヒトオートタキシンを特異的に認識する抗体のスクリーニング方法であって、以下の段階：
当該抗体の候補抗体を補足可能な結合因子を固相に結合させ；
当該結合因子に当該抗体の候補抗体を結合させ；
当該候補抗体を作用させた系に天然形態ヒトオートタキシンを作用させ；次いで
当該天然形態ヒトオートタキシンの前記抗体に対する結合力を指標に、当該天然形態ヒトオートタキシンを特異的に認識する抗体を選定する；
を含んでなる方法。
（２）前記結合因子が抗体である、（１）の方法。
（３）前記天然形態ヒトオートタキシンがポリヒスチジンタグを有する組換ヒトオートタキシン抗原である、（１）又は（２）の方法。
（４）前記ポリヒスチジンタグを有する組換ヒトオートタキシン抗原に対し特異的に結合する標識された抗ポリヒスチジン抗体を利用し、前記天然形態ヒトオートタキシンの前記抗体に対する結合力を測定する、（３）の方法。
（５）前記標識された抗ポリヒスチジン抗体が酵素標識化抗ポリヒスチジン抗体である、（４）の方法。
（６）変性を受けることなく生体内での存在状態にある天然形態のヒトオートタキシンを特異的に認識する抗体であって、以下の段階：
当該抗体の候補抗体を補足可能な結合因子を固相に結合させ；
当該結合因子に当該抗体の候補抗体を結合させ；
当該候補抗体を作用させた系に天然形態ヒトオートタキシンを作用させ；次いで
当該天然形態ヒトオートタキシンの前記抗体に対する結合力を指標に、当該天然形態ヒトオートタキシンを特異的に認識する抗体を選定する；
を含んでなる方法により獲得可能な抗体。
（７）前記結合因子が抗体である、（６）の抗体。
（８）前記天然形態ヒトオートタキシンがポリヒスチジンタグを有する組換ヒトオートタキシン抗原である、（６）又は（７）の抗体。
（９）前記ポリヒスチジンタグを有する組換ヒトオートタキシン抗原に対し特異的に結合する標識された抗ポリヒスチジン抗体を利用し、前記天然形態ヒトオートタキシンの前記抗体に対する結合力を測定する、（８）の抗体。
（１０）前記標識された抗ポリヒスチジン抗体が酵素標識化抗ポリヒスチジン抗体である、（９）の抗体。

上記発明によれば、天然形態のヒトオートタキシンを特異的に認識結合可能なモノクローナル抗体が効率よく取得可能であり、本抗体を用いたヒト検体中のオートタキシンを前処理などする必要なく定量可能な測定方法を構築可能である。上記発明により得られた天然形態ヒトオートタキシン測定試薬を用い、ヒト血清を測定することにより癌の診断、あるいは慢性肝疾患の診断が可能である。また、上記方法によればリゾホスフォリパーゼＤ酵素活性によるオートタキシン量の推察において問題であった内在性の測定妨害因子や競合酵素の影響を受けることなく、かつ短時間でヒトオートタキシンを定量可能な方法、試薬を提供することが可能である。

さらに、本発明者は、ヒト検体中の天然形態ヒトオートタキシンと特異的に反応するモノクローナル抗体を使用したＥＬＩＳＡ法などの汎用的なヒトオートタキシン定量測定系を用いることにより簡便かつ短時間で血液などに含まれるヒトオートタキシンを定量することが可能であることを見出した。そして、本測定系を使用し鋭意検討を行なったところ、リンパ腫、特に濾胞性リンパ腫患者において血清中のオートタキシン濃度が高値を示すことが明らかとなった。悪性リンパ腫には、大きく分けてホジキンリンパ腫と非ホジキンリンパ腫の２つがあり、日本では約90％が非ホジキンリンパ腫に分類される。非ホジキンリンパ腫は形態学的特徴（病理学的分類）、細胞系質的特徴（“Ｂ細胞性、Ｔ細胞性、ＮＫ細胞性”）、染色体・遺伝子情報などをもとに分類され、ＷＨＯ分類において非常に多様な分類がなされており、その一分類である濾胞性リンパ腫は日本において悪性リンパ腫の10〜15％との報告があり、年々増加傾向がある。悪性リンパ腫の診断は、リンパ節生検や胸部Ｘ線検査 、コンピュータ断層撮影（CT）、核磁気共鳴検査（MRI）、ガリウム（Ga）シンチグラフィー、ポジトロン・エミッション・トモグラフィー（PET）などによる病気の進行度などの検査がなされる。血液検査としては乳酸脱水素酵素（LDH）、Ｃ反応性蛋白（CRP）、可溶性インターロイキン‐２（IL-2）受容体 などがあるが、いずれも悪性リンパ腫特異的な診断マーカーではなく、悪性リンパ腫の診断マーカーが切望されている。

オートタキシンのヒト組織あるいは体液中の存在濃度が様々な疾病により変動することを示唆する報告がなされているが、これまでその定量方法がないことより様々な疾病との因果関係の解析がなされてこなかった。本発明によれば、血清などのヒト検体中のオートタキシン濃度を簡便、短時間、かつ信頼性高く定量可能となった。本測定方法、測定試薬を用いることによりこれまで明らかにされていなかった様々な疾患とオートタキシン濃度の関係を明らかにすることが可能となった。さらに、本測定系を用い鋭意検討を重ねた結果、これまで血清マーカーがなかったことより診断が煩雑、困難であった悪性リンパ腫、特に濾胞性リンパ腫の検査が可能となった。

本発明者はヒトオートタキシンに対する抗体を用いた免疫化学的測定方法を構築したことにより、活性測定時に問題となる内在性物質の影響を受けることなく、また、検体について前処理を必要とすることなくヒトオートタキシンを精度よく定量可能となった。本測定試薬を用い鋭意検討を重ねた結果、悪性リンパ腫、特に濾胞性リンパ腫患者において血清中のオートタキシン濃度が高値を示すことを見出し、濾胞性リンパ腫の検査あるいは検査補助が可能な検査試薬の提供が可能となった。また、煩雑さや精度は劣るもののオートタキシンが有するリゾホスフォリパーゼＤ酵素活性測定によっても濾胞性リンパ腫の検査あるいは検査補助が可能である。

従って、本願は下記の発明をも包含する：
（１１）ヒト検体中のオートタキシン濃度を測定し、その値が健常人測定値からなる正常値に対し有意差をもって高値を示した場合に悪性リンパ腫と判断することを特徴とする悪性リンパ腫の検査方法。
（１２）（１１）の悪性リンパ腫が濾胞性リンパ腫であることを特徴とする検査方法。
（１３）（１１）のオートタキシンが完全長のオートタキシン、部分的に切断を受けたオートタキシン、一部遺伝子の変異を受けたオートタキシンであることを特徴とする（１１）又は（１２）の検査方法。
（１４）（１１）の検体が、全血、血球、血清、血漿などのヒト血液成分あるいはヒト細胞、組織の抽出液であることを特徴とする（１１）〜（１３）のいずれかに記載の検査方法。
（１５）（１１）のオートタキシン濃度測定方法が、抗体を用いた免疫化学的測定方法である（１１）〜（１４）のいずれかに記載の検査方法。
（１６）（１５）の抗体がモノクローナル抗体であることを特徴とする（１１）〜（１５）のいずれかに記載の検査方法。
（１７）（１５）の抗体を検体と接触させ、検体に結合あるいは結合しなかった抗体を検出することにより検体中のオートタキシン濃度の測定を行なうこと特徴とする（１１）〜（１６）のいずれかに記載の検査方法。
（１８）（１４）の抗体を検体と接触させ、抗体に結合あるいは結合しなかったオートタキシンを検出することにより検体中のオートタキシン濃度の測定を行なうことを特徴とする（１１）〜（１６）のいずれかに記載の検査方法。
（１９）（１５）〜（１８）のいずれかに記載の方法が酵素標識、アイソトープ標識、蛍光標識などを利用した競合法、サンドイッチ法あるいは蛍光偏光法等を利用したホモジニアス測定法、表面プラズモン共鳴分析法を利用した結合測定等であることを特徴とする（１１）〜（１８）のいずれかに記載の検査方法。
（２０）（１１）〜（１９）のいずれかに記載の測定方法を原理とすることを特徴とする悪性リンパ腫検査薬。
（２１）（１１）〜（１４）のいずれかに記載の方法がオートタキシンの有するリゾホスフォリパーゼＤ活性の測定であり、その値が健常人測定値からなる正常値に対し有意差をもって高値を示した場合に悪性リンパ腫と判断することを特徴とする検査方法。
（２２）（２１）の測定方法を原理とすることを特徴とする悪性リンパ腫検査薬検体中のオートタキシンを測定することによるリンパ腫の検査方法。

上記発明によれば、ヒト検体中のオートタキシンを前処理などする必要なくヒトオートタキシン特異的モノクローナル抗体を用いた定量試薬を使用しヒト検体中のオートタキシン濃度を定量することにより悪性リンパ腫、特に濾胞性リンパ腫の検査が可能である。本免疫学的定量試薬を用いれば検体中に含まれる内在性の測定妨害因子や競合酵素の影響を受けることなく、かつ短時間でヒトオートタキシンを定量可能な検査薬を提供することが可能である。また、上記発明によればリゾホスフォリパーゼＤ酵素活性測定によっても前記免疫化学的定量方法に煩雑さ、精度は劣るものの悪性リンパ腫の判断が可能であり、その検査薬の提供も可能である。

図１は、ポリヒスチジンタグ標識ヒトオートタキシン精製品のＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび、抗オートタキシンペプチド抗体を用いたウェスタンブロッティングの結果を示す。 図２は、ヒトオートタキシンをイムノプレートに直接結合させた際の抗体の反応性を示す。 図３は、抗ラットＩｇＧ抗体を介してイムノプレートに結合させた抗ヒトオートタキシン抗体の溶液中に存在するヒトオートタキシンとの反応性を示す。 図４は、抗体による血清中ヒトオートタキシンのリゾホスフォリパーゼＤ活性の吸収性能を示す。 図５は、抗体による動物血清中オートタキシンのリゾホスフォリパーゼＤ活性の吸収性能を示す。 図６は、全長ヒトオートタキシン精製品のＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび、抗オートタキシンペプチド抗体を用いたウェスタンブロッティングの結果を示す。 図７は、抗ヒトオートタキシンモノクローナル抗体による２抗体サンドイッチ法によるヒトオートタキシンとの反応性を示す。 図８は、取得した抗ヒトオートタキシン抗体群を用いた組み合わせ評価によるサンドイッチＥＬＩＳＡ測定系での反応性を示した。 図９は、２抗体２ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法を用い、６濃度（０,０．３４,０．６７５，１．３５，２．７０，５．４０μｇ／ｍＬ）のヒトオートタキシン既知濃度標準品を測定した際のオートタキシン濃度と４５０nmの吸光度の関係を示したグラフである。 図１０は、ヒト血清４２検体の２抗体２ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法によるヒトオートタキシン濃度とリゾホスフォリパーゼＤ活性の相関性を示す。 図１１は、２抗体１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法を用い、６濃度（０,０．３４,０．６７５，１．３５，２．７０，５．４０μｇ／ｍＬ）のヒトオートタキシン既知濃度標準品を測定した際のオートタキシン濃度と４５０nmの吸光度の関係を示したグラフである。 図１２は、ヒト血清４２検体の２抗体１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法によるヒトオートタキシン濃度とリゾホスフォリパーゼＤ活性の相関性を示す。 図１３は、２抗体１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法を用いＰＳＡ、ＣＡ１９−９、ＣＡ１５３、ＣＡ１２５測定値がカットオフを超える検体を用い、健常人に対するオートタキシン濃度を検証した結果を示す。いずれの検体群においても健常人に対し有意差ｐ＜０．００１を示した。 図１４は、２抗体１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法を用い慢性肝疾患患者および健常人の血清中のヒトオートタキシン濃度を測定した結果を示す。 図１５は、精漿中のリゾホスフォリパーゼＤ活性測定の結果を示す。 図１６は、６濃度標準品を用いた際の検量線を示す。回帰式はＬｏｇ（Ｒａｔｅ）＝ａＬｏｇ（Ｃｏｎｃ）³＋ｂＬｏｇ（Ｃｏｎｃ）²＋ｃＬｏｇ（Ｃｏｎｃ）＋ｄで示され、表示している検量線の各定数は、ａ＝−０．１２２７８７７０、ｂ＝−０．３００６８２５５、ｃ＝１．２６８６１６１８、ｄ＝１．５６２０１６００である。Ｒａｔｅは単位時間当たりの４−メチルウンベリフェロンの生成量（ｎｍｏｌ／Ｌ・ｓｅｃ）を示す。 図１７は、男性血清のオートタキシン濃度を測定し、白血病、悪性リンパ腫ごとに分類した結果を示す。縦軸はオートタキシン（ＡＴＸ）濃度、横軸は各病態分類を示し、健常人（ＮＨＳ）、ＡＬ（急性白血病）、ＣＬ（慢性白血病）、ＨＤ（ホジキンリンパ腫）、ＮＨＬ（非ホジキンリンパ腫）、その他白血病、リンパ腫（others）を示す。 図１８は、女性血清のオートタキシン濃度を測定し、白血病、悪性リンパ腫ごとに分類した結果を示す。縦軸はオートタキシン（ＡＴＸ）濃度、横軸は各病態分類を示し、健常人（ＮＨＳ）、ＡＬ（急性白血病）、ＣＬ（慢性白血病）、ＨＤ（ホジキンリンパ腫）、ＮＨＬ（非ホジキンリンパ腫）、その他白血病、リンパ腫（others）を示す。 図１９は、男性血清のオートタキシン濃度を測定し、非ホジキンリンパ種ごとに分類した結果を示す。縦軸はオートタキシン（ＡＴＸ）濃度、横軸は各病態分類を示し、健常人（ＮＨＳ）、Ｂｕｒｋｉｔｔ（バーキットリンパ腫）、ＬＢＬ（リンパ芽球性リンパ腫）、ＮＨＬ（ＭＣＬ）（マントル細胞リンパ腫）、ＮＨＬ（ＤＬＢＣＬ）（びまん性大細胞型B細胞リンパ腫）、ＮＨＬ（ＦＬ）（濾胞性リンパ腫）を示す。 図２０は、女性血清のオートタキシン濃度を測定し、非ホジキンリンパ種ごとに分類した結果を示す。縦軸はオートタキシン（ＡＴＸ）濃度、横軸は各病態分類を示し、健常人（ＮＨＳ）、ＮＨＬ（ＤＬＢＣＬ）（びまん性大細胞型B細胞リンパ腫）、ＮＨＬ（ＦＬ）（濾胞性リンパ腫）を示す。 図２１は、オートタキシン（ＡＴＸ）濃度とリゾホスファチジン酸（ＬＰＡ）濃度の相関性試験の結果を示す。

免疫抗原の調製のためのヒトオートタキシン遺伝子をコードする核酸分子は、ヒトオートタキシンの遺伝子情報をもとにしたポリヌクレオチドプローブを使用して、ｃＤＮＡライブラリーあるいはゲノムライブラリーよりスクリーニングすることにより得られる。ｃＤＮＡライブラリーは、公知の方法を利用して組織からＲＮＡを単離することにより容易に調製可能であり、また市販のものを利用してもかまわない。得られたヒトオートタキシンｃＤＮＡを用い、発現用ベクターに組換えることにより、種々の発現系での抗原発現を行なうことができる。また、以降の抗原精製操作を簡便にするためにポリヒスチジンタグやＭｙｃタグ等の汎用されているマーカータグをヒトオートタキシン遺伝子の末端に導入することも有効である。蛋白質発現系は大腸菌、酵母、昆虫細胞、動物細胞などいずれでもかまわないが、大量発現が可能であり、かつ糖鎖付加など天然形態なヒトオートタキシンに近い構造を有する蛋白質発現が可能である昆虫細胞−バキュロウイルス系が好ましい。ポリヒスチジンタグを有するオートタキシンを発現させた場合は、金属キレートカラムなどにより容易に精製可能である。また、ｃ−ｍｙｃタグなどは抗ｃ−ｍｙｃ抗体アフィニティーカラムによる精製が可能である。これらの方法は標準的であり充分技術確立されている。

本発明に用いる抗原免疫は技術確立されていれば手法を選ばず、例えば精製抗原を動物に免疫することにより抗体の産生は可能である。使用する動物は抗体産生能を有するものであれば特に制限されるものではなく、マウス、ラット、ウサギなどの通常用いられる哺乳動物でもかまわないし、ニワトリ等を用いることも可能である。たとえば、マウスを用いる場合、精製ヒトオートタキシン抗原とフロイント完全アジュバントのエマルジョンを皮下、足底球（ｆｏｏｔｐａｄ）、あるいは腹腔などに投与することにより免疫を行う。必要に応じ精製抗原とフロイント不完全アジュバントによる繰り返し追加免疫を行なうことにより抗体価の上昇が望める場合もある。細胞融合の数日前に最終免疫として、アジュバントとエマルジョン化することなく抗原のみを動物に投与する。投与する抗原量は動物体重あたり約０．４μｇ／ｇ−体重程度を目安に行えば良いが、抗原過少、過多による免疫寛容を受けない抗原量であれば問題ない。

本発明に用いるハイブリドーマ細胞作製は技術確立されていれば手法を選ばず、電気的融合、ポリエチレングリコールなどの試薬を用いた融合手段を選ばない。例えば免疫を行なった動物のＢ細胞とミエローマ細胞とをポリエチレングリコール存在下細胞融合を行い、ＨＡＴ培地により抗体産生細胞の選択を行うことにより得ることが可能である。選択したハイブリドーマ細胞は限界希釈法によりモノクローン化を行なうことによりモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ細胞として樹立可能である。

本発明に用いるハイブリドーマ選択方法は、通常のＥＬＩＳＡ方法で行なわれるような免疫抗原を固相に結合させ、固相表面に結合した抗原に対する反応性による選択を行なわないことを特徴とする。その理由は、抗原を固相に結合させたＥＬＩＳＡ法によるスクリーニング方法では、反応性を有する多くの抗体を取得可能であるものの、これら抗体のほとんどが血清中に存在するヒトオートタキシンを効率よく捕捉できないためである。本発明に用いる抗体スクリーニング方法においては、ハイブリドーマ細胞培養上清中に含まれる抗体を捕捉可能な１次抗体、又はその他の抗体結合性因子、例えばプロテインＡ、プロテインＣなどをイムノプレートに結合させる。例えば、ラット抗体取得を目的とする場合、抗ラットイムノグロブリン抗体をイムノプレートに結合させる。非特異的結合を防ぐため、１次抗体などを結合させたイムノプレート表面をウシ血清アルブミンなどでブロッキング処理を行った後、細胞融合により得られたハイブリドーマ細胞の培養上清をイムノプレートに添加し、１次抗体などに捕捉させる。未反応物質を除去するため、ＰＢＳ（リン酸緩衝液）などの緩衝液によりイムノプレートを洗浄後、ポリヒスチジン−タグを有する組換ヒトオートタキシン抗原（ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン）を添加する。ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンは、リゾホスフォリパーゼＤ活性を有することを確認したものが好ましい。一定時間の反応によりハイブリドーマ培養上清中の抗体によりポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンを捕捉させる。この際、捕捉されるポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンは生体中と同様に溶液中においても天然形態を維持した状態を反映しているものと推測でき、本反応によりポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンを捕捉可能なハイブリドーマ培養上清中の抗体がヒト検体中のオートタキシンを捕捉可能なことが期待できる。続いて捕捉されたポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンのポリヒスチジンタグに対し、酵素標識抗ポリヒスチジン抗体や酵素標識プローブであるＨｉｓＰｒｏｂｅ−ＨＲＰ（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．，Ｃａｔ．Ｎｏ．１５１６５）等により、抗体により捕捉されたポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンの検出を行なう。最終的な検出は酵素に対する発色、蛍光、化学発光基質等を用い行なうことが可能であり、例えばペルオキシダーゼの基質であるＴＭＢ（テトラメチルベンジジン）などにより波長４５０nmの吸光度の発色検出が可能である。本方法で取得した抗体群のほとんどが、ヒトオートタキシンを直接イムノプレートに結合させた通常のＥＬＩＳＡ法では反応性を示さず、さらに直接結合抗原に反応性を示した抗体を用いての２抗体サンドイッチ免疫測定系構築は不可能であった。すなわち、直接イムノプレートに結合させた通常のＥＬＩＳＡ法では天然形態のヒトオートタキシンを有効に捕捉可能な抗体取得は非常に困難であることが示唆される。

本発明に使用する抗体の精製方法は、技術確立されている手法であればその手法は問わない。例えば目的の抗体産生ハイブリドーマの選択後、限界希釈によりモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを樹立し、細胞の培養上清を回収する。必要に応じ硫酸アンモニウム沈殿による抗体濃縮後、プロテインＡやプロテインＧ固相化担体を用いたアフィニティークロマトグラフィーによりモノクローナル抗体の精製を行うことが可能である。また、精製した抗体はビオチン標識あるいはアルカリ性ホスファターゼ等の酵素により標識を施すことによりヒトオートタキシン２抗体サンドイッチ免疫測定系構築の検証に使用することが可能である。これらの方法は標準的であり充分技術確立されている。

本発明において開示される天然形態ヒトオートタキシン測定方法は、天然形態ヒトオートタキシンを特異的に捕捉し、その結果精製した抗体−天然形態ヒトオートタキシン複合体を検出可能な方法であれば手法を選ばない。好ましくはイムノアッセイで汎用されている標識抗原と検体中の天然形態ヒトオートタキシンの抗体に対する競合を利用した競合法、エピトープの異なる２抗体を用い天然形態ヒトオートタキシンとの３者の複合体を形成させるサンドイッチ法が簡便かつ汎用しやすい。抗体を担体に結合させる場合、担体としてはイムノプレート、ラテックス粒子、磁性微粒子、ニトロセルロース膜、ＰＶＤＦ膜などイムノアッセイで使用されるものであれば特に担体を選ばない。担体を用いる場合、担体に固定化した抗体により捕捉したヒトオートタキシンの酵素活性を検出する方法、あるいは抗体を固定化したチップに検体を接触させて天然形態ヒトオートタキシン結合依存的なシグナルを検出する表面プラズモン共鳴などの方法でヒトオートタキシンの検出が可能である。また、蛍光標識した抗体が天然形態ヒトオートタキシンと結合することによる蛍光偏光を検出するようなホモジニアス測定方法においてもヒトオートタキシンの定量は可能である。これら試薬、装置は十分技術確立されている。

前記の測定方法において特異性、感度、汎用性などの点からエピトープの異なる２抗体サンドイッチ免疫測定方法が優れている。本測定系が構築可能な抗ヒトオートタキシンモノクローナル抗体の組み合わせの選択は、精製した抗体群と標識抗体群を用い、組換えヒトオートタキシンをサンプルとしてサンドイッチ測定系が構築可能であるかの検証により行なう。具体的には、精製した未標識の抗天然形態ヒトオートタキシンモノクローナル抗体をイムノプレートに結合させ、ウシ血清アルブミンなどでイムノプレート表面のブロッキング処理を行う。続いて、組換えヒトオートタキシンをイムノプレートに添加し、固相抗体に捕捉させる。未反応物質を除去するためＰＢＳなどの緩衝液でイムノプレートを洗浄後、標識を施した天然形態ヒトオートタキシンに対する抗体を反応させ２種類の抗体での天然形態ヒトオートタキシンのサンドイッチ複合体を形成させる。未反応物質を除去するためＰＢＳなどの緩衝液でイムノプレートを洗浄後、抗体標識に酵素標識を行った場合は基質の添加を行い、ビオチン標識などさらに反応が必要な場合は酵素により標識ストレプトアビジンなどを反応させる。標識酵素に対する発色、蛍光、化学発光基質等を用い２種の天然形態ヒトオートタキシン抗体により捕捉された組換えヒトオートタキシンの検出を行なう。以上の実験を組換えヒトオートタキシンを含まない緩衝液で同様に行いバックグラウンド値として用いる。組換えヒトオートタキシンを用いた測定値がバックグラウンド低値でありかつ測定値に対し有意に高い組み合わせをヒトオートタキシン免疫測定系候補とする。

前記の通りに選択したヒトオートタキシン２抗体サンドイッチ免疫測定系候補の信頼性を検証するため、組換ヒトオートタキシンおよびヒト血清の希釈系列サンプルを準備し、希釈倍率依存的に反応性が認められるか検証を行う。依存性が認められた抗体の組み合わせにおいては、さらにリゾホスフォリパーゼＤ酵素活性既知のヒト血清検体を使用し、ヒトオートタキシン定量を実施し検証を行う。すなわちリゾホスフォリパーゼＤ酵素活性に対するヒトオートタキシン濃度の相関性を検証し、リゾホスフォリパーゼＤ酵素活性とヒトオートタキシン濃度に相関性が認められる免疫測定系を選択することにより天然形態ヒトオートタキシン測定法として選択する。

選択した２種の抗体組み合わせを用い、天然形態ヒトオートタキシン測定試薬の調製を行う。２ステップサンドイッチ測定試薬の場合、２種の抗体の一方をイムノプレート、磁性粒子などＢ／Ｆ分離可能な担体に結合させる。結合方法は、疎水結合を利用した物理的結合、２物質間を架橋可能なリンカー試薬などを用いた化学的結合、いずれでもかまわない。非特異的結合を避けるため担体表面を牛血清アルブミン、スキムミルクあるいは市販のイムノアッセイ用ブロッキング剤などでブロッキング処理を行ない１次試薬とする。２次試薬として標識を施した、異なるエピトープを認識するもう一方の抗体を含む溶液を準備する。抗体標識はペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼなどの酵素、蛍光物質、化学発光物質、ラジオアイソトープなどの検出可能な物質、ビオチン、アビジンなどの特異的結合パートナーが存在する物質などでの標識が好ましい。また、２次試薬溶液は抗原抗体反応が良好に行える緩衝液、例えばリン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液などが好ましい。実検体の測定は、１次試薬と実検体を一定時間、一定温度のもと接触させる。反応条件は４〜４０℃の温度で５分〜３時間の反応が好ましい。未反応物質をＢ／Ｆ分離により除去し、続いて２次試薬と一定時間、一定温度のもと接触させサンドイッチ複合体を形成させる。反応条件に関しては４〜４０℃の温度で５分〜３時間の反応が好ましい。未反応物質をＢ／Ｆ分離により除去し、標識抗体の標識物質を定量し、既知濃度ヒトオートタキシンを標準とし作成した検量線により、実検体中のヒトオートタキシン濃度を定量する。１ステップサンドイッチ測定試薬の場合、２ステップサンドイッチ測定試薬と同様、担体に抗体を結合させブロッキング処理を行ったものを準備する。本抗体固相化担体に標識抗体を含む緩衝液を添加し試薬とする。必要に応じ、試薬を凍結乾燥品とすることも可能である。１ステップ試薬では抗原−抗体の使用量バランスにより抗原あるいは抗体の過不足が生じ測定系構築が困難であることが多い。本発明ではＥＬＩＳＡ法の場合、担体に結合させる抗体量を９６穴イムノプレート１ウェルあたり５〜５００ng、好ましくは１００ng、標識抗体１〜１００ng、好ましくは１０ngを使用することにより良好な結果が得られる。測定に用いるヒト検体は、血清、血漿、尿、精漿、脳脊髄液などがあるが、用いる検体の希釈倍率は無希釈〜１００倍希釈での使用が好ましく、特に血清、血漿においては５倍希釈検体を１００μＬ、精漿においては無希釈検体を１００μＬ用いることにより良好な結果が得られる。

本発明による測定試薬により定量した検体中のヒトオートタキシン濃度はオートタキシンの有するリゾホスフォリパーゼＤ活性と良好な相関性を示す。

本発明による測定試薬を用い、癌患者血清中のヒトオートタキシンを測定することによる癌の診断が可能である。前立腺癌マーカーＰＳＡ、消化器癌マーカーＣＡ１９−９、乳癌マーカーＣＡ１５３、卵巣癌マーカーＣＡ１２５測定値がカットオフを超える検体のオートタキシン濃度と、特に臨床症状を有しない健常人のオートタキシン濃度とを比較すると、いずれの癌患者検体においても健常人群に対し有意差ｐ＜０．００１を示し、癌の診断あるいは診断補助が可能である結果を示した。特に、乳癌、卵巣癌、においては健常人に比較し顕著に高値を示し、本測定試薬を用いた癌の診断あるいは診断補助に有効な測定試薬である結果が得られた。

特に、本測定試薬を用い、患者検体中のヒトオートタキシンを測定することにより悪性リンパ腫、特に濾胞性リンパ腫の検査が可能である。白血病、悪性リンパ腫と判断された患者検体中のオートタキシン濃度と、特に臨床症状を有しない健常人のオートタキシン濃度とを比較すると、非ホジキンリンパ腫患者において有意差をもって高値を示した。また、特に濾胞性リンパ腫において顕著に高値を示し、本測定試薬を用いた悪性リンパ腫、特に非ホジキンリンパ腫、さらには濾胞性リンパ腫の検査あるいは検査補助に有効な測定試薬である結果が得られた。

本発明による測定試薬を用い、慢性肝疾患患者血清中のヒトオートタキシンを測定することによる慢性肝疾患の診断が可能である。慢性肝疾患患者ならびに健常人検体中のヒトオートタキシン濃度を測定した結果、有意差ｐ＜０．０００１にて慢性肝疾患患者血清中のオートタキシン濃度が高い結果が得られ、慢性肝疾患診断あるいは診断補助に有用である結果が示された。さらに、他の慢性肝疾患マーカーとヒトオートタキシン濃度の相関性を検証した結果、ヒアルロン酸濃度、血清アルブミン濃度、総ビリルビン濃度、血小板数、プロトロンビン時間とヒトオートタキシン濃度の間に相関性が認められ慢性肝疾患の程度を反映しており血清ヒトオートタキシン濃度測定が慢性肝疾患診断に非常に有効であることが示された。

以下に実施例を示すが、本発明は実施例に記載された例に限られるものではない。
実施例１：組換えヒトオートタキシンの発現
Ａｕｔｏｔａｘｉｎ−ｔ（Ｇｅｎｂａｎｋ ａｃｃｅｓｓｉｏｎ ｎｕｍｂｅｒ Ｌ４６７２０）の塩基番号１−２５８９（配列番号１）をヒト肝臓ｃＤＮＡライブラリーよりＲＴ−ＰＣＲを用い常法に従いクローニングした。本ｃＤＮＡをバキュロウイルス用トランスファーベクターｐＦＡＳＴＢａｃ−１（インビトロジェン）に導入し、Ｂａｃ−ｔｏ−Ｂａｃシステム（インビトロジェン）を用い、全長ヒトオートタキシン発現用バキュロウイルスをプロトコールに従い調製した。クローニングした全長ヒトオートタキシンｃＤＮＡから停止コドン（ＴＡＡ塩基配列２５９０−２５９２）を除去しヒスチジン６残基を追加し、ポリヒスチジンを有するポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン発現用バキュロウイルスをプロトコールに従い調製した。本バキュロウイルスを用い、常法に従い、ｓｆ９あるいはｓｆ２１などに感染させることにより全長ヒトオートタキシンおよびポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンを含む発現培養上清を調製することができる。

実施例２：ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンの精製
ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン発現用バキュロウイルスを昆虫細胞ｓｆ２１細胞（５×１０⁵cells／ｍＬ）１Ｌに感染させ、２８℃にて４日間培養した。培養終了後、遠心分離（３０００rpmにて１０分間）により細胞を分離し、さらに０．４５μｍのフィルターにより細胞破砕物などの沈殿物を除去した。回収した培養上清をＴＢＳ（Ｔｒｉｓ ｂｕｆｆｅｒ ｓａｌｉｎｅ；１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，pH７．４）により透析後、ＢＤ−ＴＡＬＯＮ Ｍｅｔａｌ Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｒｅｓｉｎ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｃａｔ．ＮＯ．６３５０１）金属キレートカラムを用い添付マニュアルに従い精製を行った。具体的には５ｍＬ容量のレジンをカラムに充填する。本カラムに５０ｍＭのＣｏＣｌ₂溶液を５０ｍＬ添加し、コバルトを結合させた。３００ｍＭのＮａＣｌを含む水溶液によりカラムを洗浄後、５０ｍＭリン酸ナトリウム、３００ｍＭのＮａＣｌ、ｐＨ７．７の水溶液（洗浄緩衝液）によりカラムを平衡化した。ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンを含むサンプル５０ｍＬを添加した。１００ｍＬの洗浄緩衝液により未結合物質を洗浄し、カラム通過溶液の２８０nmの吸光度が０．０１以下になったことを確認した。１０ｍＭのイミダゾールを含む洗浄緩衝液約１５ml、続いて１００ｍＭのイミダゾールを含む洗浄緩衝液により目的物をカラムから溶出した。溶出サンプルは１ｍＬごとに回収し、各画分中のポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンの純度をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより検証した。初期画分は不純物を多く含むため回収せず、目的ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンを主要に含む画分を回収混合し、精製ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン抗原として用いた。図１はポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン精製品のＳＤＳ−ＰＡＧＥ像および、抗オートタキシンペプチド抗体を用いたウェスタンブロッティングの結果を示す。レーンＭは分子量マーカーを示す。レーン１は１μｇ／レーンにて精製抗原を還元条件下ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行い、ＣＢＢにより染色した像を示す。レーン２〜５はウェスタンブロッティング像を示す。０．２５μｇ／レーンにて精製抗原を還元条件下ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った後、ＰＶＤＦ膜に転写しＰＶＤＦ膜は３％スキムミルクを含むＴＢＳにより一昼夜ブロッキング処理を行った。ＴＢＳにより洗浄後、１％ブロックエース（大日本製薬社製）および０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０を含むＴＢＳに浸透させた。レーン２は１μｇ／ｍＬのラット抗オートタキシンペプチドモノクローナル抗体（アミノ酸配列４９−５９（配列番号２）を認識）、レーン４は１μｇ／ｍＬのウサギ抗オートタキシンペプチドポリクローナル抗体（アミノ酸配列６７１−６８６（配列番号３）を認識）を加え２時間反応させた（レーン３，５のサンプルには抗体を加えない）。０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２０を含むＴＢＳ（ＴＢＳＴ）による洗浄後、レーン２および３のサンプルには０．３μｇ／ｍＬのアルカリ性ホスファターゼ標識抗ラットＩｇＧ抗体（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｑｕａｌｅｘ社製；Ｃａｔ．Ｎｏ．Ａ１０３ＡＴ）および１％ブロックエースを含むＴＢＳＴを添加し、レーン４および５のサンプルには０．３μｇ／ｍＬのアルカリ性ホスファターゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（Ｚｙｍｅｄ社製）および１％ブロックエースを含むＴＢＳＴを添加した。２時間反応後、ＴＢＳＴにより十分洗浄し、ＣＤＰ−ＳＴＡＲ（Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ社製）を用いた化学発光を感光フィルムにより検出した。レーン１に示すとおりＣＢＢ染色像においては単一バンドとして確認された。また、抗ペプチド抗体を用いたウェスタンブロッティングの結果では、アミノ酸配列４９−５９（配列番号２）、ならびにアミノ酸配列６５２−６６６（配列番号３）を認識する２種の抗体により検出されることより、本精製抗原が目的であるポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンであることを確認した。ウェスタンブロッティングでは２本のバンドが検出されており糖鎖の差、あるいは培養、精製過程での分解を示唆する結果が得られた。

実施例３：モノクローナル抗体作製
ウィスター・ルイス・ラット７週令メスに対し、抗原２５０μｇをフロイントの完全アジュバントと共に後足にエーテル麻酔下により免疫を行なった。１カ月後、ラットより鼠頚リンパ節ならびに腸骨リンパ節を採取し、Ｂ細胞を回収した。マウスミエローマ細胞株ＰＡＩとポリエチレングリコール存在下、細胞融合を常法に従い行い、約１０日間のＨＡＴ培地による選択を行ない、実施例４に従い抗体産生細胞ハイブリドーマのスクリーニングにより目的抗体の選択を行った。スクリーニング陽性ウェル中の細胞を限界希釈法によりモノクローナル化を行いハイブリドーマとして樹立した。この際、ＨＴ培地により約１０日間の培養を行った後、最終的にハイブリドーマ用培地により培養を続け、抗体回収のために培養上清を回収した。ＧＩＴ培地（大日本住友製薬）５００ｍＬに対し、ＮＣＴＣ−１０９培地（インビトロジェン）２７．５ｍＬ、不必須アミノ酸（インビトロジェン）５．５ｍＬ、ペニシリン／ストレプトマイシン／グルタミン酸（インビトロジェン）５．５ｍＬをろ過滅菌し添加したものをハイブリドーマ細胞培養用培地とした。本培地にＨＡＴ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｃｏ．，ＨＹＢＲＹＭＡＸ，Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｈ０２６２）を添加したものをＨＡＴ培地として、ＨＴ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ Ｃｏ．，ＨＹＢＲＹＭＡＸ，Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｈ０１３７）を添加したものをＨＴ培地として用いた。

実施例４：ハイブリドーマスクリーニング
抗ラットイムノグロブリン抗体（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｑｕａｌｅｘ，Ｃａｔ．Ｎｏ．Ａ１０３ＵＴ）を９６穴イムノプレート（ＭａｘｉＳｏｒｐ；Ｎａｌｇｅ ＮＵＮＣ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，Ｃａｔ．Ｎｏ．４３０３４１）に２５０ｎｇ／ウェルにてコーティングした。具体的には、抗ラットイムノグロブリン抗体をＴＢＳにより希釈し、５μｇ／ｍＬ溶液を調製した。本溶液を５０μＬ／ウェルにてイムノプレートに添加し、４℃にて一昼夜保存した。続いてＴＢＳにより３回の洗浄後、３％−ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ；ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ）を含むＴＢＳ溶液を２５０μＬ／ウェルにて各ウェルに添加し、室温で２時間放置した。ＴＢＳにより３回洗浄を行い、ハイブリドーマ細胞の培養上清を５０μＬ／ウェルにて添加し、室温で２時間放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行なった後、０．６μｇ／ｍＬのポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン、０．１％ Ｔｗｅｅｎ−２０、１％ ＢＳＡを含むＴＢＳを５０μＬ／ウェルにて添加し、室温で２時間放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行ない、続いて１μｇ／ｍＬのＨｉｓＰｒｏｂｅ−ＨＲＰ（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｃｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．，Ｃａｔ．Ｎｏ．１５１６５）、０．１％ Ｔｗｅｅｎ−２０、１％ ＢＳＡを含むＴＢＳを５０μＬ／ウェルにて添加し室温３０分放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行ない、ＴＭＢ基質（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ ＆ Ｐｅｒｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，Ｃａｔ．Ｎｏ．５０−７６−００）を５０μｌ／ウェルで添加し室温３０分放置した。１Ｎ−リン酸にて反応を停止しＯＤ４５０の吸光度を測定した。この際、ポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシンを含まず、それ以外の操作を同時に行なったものを対照データとして取得しバックグラウンドとした。対照データに対しポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン存在下で反応性を示したものを陽性クローンとして選択し、限界希釈によりモノクローナル抗体産生細胞株の樹立を行った。

実施例５：抗体精製とビオチン標識
モノクローン化した抗体産生細胞の培養上清を回収し、ＨｉＴｒａｐ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ ＨＰ（ＧＥヘルスケア バイオサイエンス（株），Ｃａｔ．Ｎｏ．１７−０４０５−０１）により抗体の精製を行った。ＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ ｓａｌｉｎｅ；１０ｍＭ リン酸、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、pH７．４）で緩衝液置換した上記カラムに対し、培養上清を流速２０ｍＬ／minにて通過させた。カラム容量の５倍以上のＰＢＳにより十分カラムを洗浄し、未結合蛋白質の除去を行った。この際、カラムを通過した緩衝液のＯＤ２８０による吸光度が０．０１以下になったことを確認することにより、未結合蛋白質が残っていないことの確認が可能である。カラム洗浄後、１００ｍＭ グリシン、ｐＨ２．５溶出液により結合抗体を溶出させた。溶出抗体は速やかに１／１０容量の１Ｍ Ｔｒｉｓ、ｐＨ８を添加し、中性にするとともにＴＢＳにより速やかに透析を行った。精製抗体の一部は抗体評価用にＥＺ−Ｌｉｎｋ Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ−ＬＣ−ＬＣ−ｂｉｏｔｉｎ（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｃｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．，Ｃａｔ．Ｎｏ．２１３３８）によりビオチンによる標識を行った。

実施例６：モノクローナル抗体のヒトオートタキシンに対する反応性評価
実施例５により精製を行ったモノクローナル抗体のヒトオートタキシンに対する反応性を直接イムノプレートにヒトオートタキシンをコーティングした際の反応性と溶液中に存在するヒトオートタキシンへの反応性の２通りの方法で検証した。はじめにイムノプレートにヒトオートタキシンをコーティングした実施例を示す。精製した組換え全長ヒトオートタキシンを５０ｎｇ／ウェル（１μｇ／ｍＬ溶液を５０μＬ／ウェル）にて９６穴イムノプレート（ｍａｘｉＳｏｒｐ；Ｎａｌｇｅ ＮＵＮＣ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，Ｃａｔ．Ｎｏ．４３０３４１）に添加し、４℃にて一昼夜保存しコーティングを行った。続いてＴＢＳにより３回の洗浄後、３％−ＢＳＡを含むＴＢＳ溶液を２５０μＬ／ウェルにて各ウェルに添加し、室温で２時間放置しブロッキングを行った。ＴＢＳにより３回洗浄を行い、１μｇ／ｍＬの精製抗体および１％ ＢＳＡを含むＴＢＳＴを５０μＬ／ウェルにて添加し、室温で２時間放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行なった後、０．３μｇ／mLのＨＲＰ標識ヤギ抗ラットＩｇＧ抗体、１％ ＢＳＡを含むＴＢＳＴを５０μＬ／ウェルにて添加し、室温で２時間放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行ない、ＴＭＢ基質を５０μｌ／ウェルで添加し室温３０分放置した。１Ｎ−リン酸により反応を停止しＯＤ４５０の吸光度を測定した結果を図２に示す。縦軸にモノクローナル抗体の種類を、横軸に４５０nmの吸光度を示す。

続いて、溶液中のヒトオートタキシンに対する反応性を実施例４にならい検証した結果を示す。抗ラットイムノグロブリン抗体を９６穴イムノプレート（ＭａｘｉＳｏｒｐ）に２５０ng／ウェルにてコーティングした。ＴＢＳにより３回の洗浄後、３％−ＢＳＡを含むＴＢＳ溶液を２５０μＬ／ウェルにて各ウェルに添加し、室温で２時間放置しブロッキングした。ＴＢＳにより３回洗浄を行い、１０μｇ／ｍＬ濃度の精製抗体を５０μＬ／ウェルにて添加し、室温で２時間放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行なった後、０．６μｇ／ｍＬのポリヒスチジン−タグ付ヒトオートタキシン、０．１％ Ｔｗｅｅｎ−２０、１％ ＢＳＡを含むＴＢＳを５０μＬ／ウェルにて添加し、室温で２時間放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行ない、続いて１μｇ／mLのＨｉｓＰｒｏｂｅ−ＨＲＰ、０．１％ Ｔｗｅｅｎ−２０、１％ ＢＳＡを含むＴＢＳを５０μＬ／ウェルにて添加し、室温で３０分放置した。ＴＢＳＴにより６回洗浄を行ない、ＴＭＢ基質を５０μｌ／ウェルで添加し、室温で３０分放置した。１Ｎ−リン酸により反応を停止しＯＤ４５０の吸光度を測定した結果を図３に示す。縦軸にモノクローナル抗体の種類を、横軸に４５０nmの吸光度を示す。また、バックグランドは抗ヒトオートタキシン抗体を含まない緩衝液での反応性を示す。

図２，３の結果は通常のモノクローナル抗体作製時のスクリーニング方法である抗原を結合させたＥＬＩＳＡ方法においては、今回得られた血清中に存在するような天然形態のヒトオートタキシンを効率よく捕捉可能な抗体群の取得が非常に困難であることを示している。

実施例７：モノクローナル抗体による血清中のリゾホスフォリパーゼＤ活性の吸収
抗体による血清中ヒトオートタキシンの吸収を血清リゾホスフォリパーゼＤ活性の吸収により検証した。抗ラットＩｇＧ抗体が固定化された磁性微粒子ＢｉｏＭａｇ Ｇｏａｔ Ａｎｔｉ−Ｒａｔ ＩｇＧ Ｆｃ（ＱＩＡＧＥＮ，Ｃａｔ．Ｎｏ．３１０１４４）５０μＬ（５０％サスペンジョン溶液）に対し精製抗ヒトオートタキシン抗体１０μｇを添加し、抗ヒトオートタキシン固定化磁性微粒子を準備した。未反応の抗体をＴＢＳＴにより洗浄後、ＴＢＳＴにより４倍希釈したヒト血清２００μＬを添加し、２時間反応させた。反応後、磁石により磁性微粒子を除去し上清中のリゾホスフォリパーゼＤ活性を測定した。抗ヒトオートタキシン抗体未添加の抗ラットＩｇＧ抗体が固定化磁性微粒子により処理を行ったヒト血清のリゾホスフォリパーゼＤ活性に対する活性の阻害率を検証した結果を図４に示す。縦軸にモノクローナル抗体の種類を、横軸に活性阻害率（吸収率）を示す。活性吸収率は抗ヒトオートタキシン抗体を含まない緩衝液での残存活性に対する阻害活性を示す。リゾホスフォリパーゼＤ活性測定はＦＥＢＳ ｌｅｔｔｅｒｓ ５７１，１９７−２０４，２００４を若干変更し行った。具体的には、サンプル２０μＬと２ｍＭのリゾホスファチジルコリン（１４：０−リゾホスファチジルコリン）、１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、５００ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＭｇＣｌ₂、０．０５％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００（ｐＨ９．０）を含む基質溶液２０μＬを混合し、３７℃にて６時間から一昼夜反応させた。続いて本酵素反応により生成したコリンを定量するため、０．５ｍＭ ＴＯＯＳ（Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルフォプロピル）−３−メチルアニリン）、１０Unit／ｍＬ 西洋ワサビペルオキシダーゼ、０．０１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（pH８．０）からなるＲ１溶液１５０μＬを加え５分間放置した後、１ｍＭ ４−アミノアンチピリン、１０Unit／ｍＬ コリンオキシダーゼ、０．０１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）からなるＲ２溶液５０μＬを加えた。３０分後、既知濃度塩化コリンを対象に５５０nmの吸光度を測定し活性値とした。抗体Ｒ１０．３０およびＲ１０．３１を除く抗体では吸収性能を発揮しており、実施例６におけるＨｉｓＰｒｏｂｅを用いた溶液中の天然形態のヒトオートタキシンの結合性能を反映した結果を示しており、抗原を直接イムノプレートに結合させた結果を反映しない。抗体Ｒ１０．３０およびＲ１０．３１において血清から吸収性能とＨｉｓＰｒｏｂｅ−ＨＲＰを用いた測定での差は組換えヒトオートタキシンと血清中に存在するヒトオートタキシンの構造あるいは存在状態に差がありこれら抗体が血清中のヒトオートタキシンを認識できないことが推測される。

実施例８：モノクローナル抗体の他動物種オートタキシンへの反応性確認
実施例５により精製した代表的な抗体による動物血清中オートタキシンへの反応性を血清リゾホスフォリパーゼＤ活性の吸収により検証した。ストレプトアビジンが固定化された磁性微粒子ＢｉｏＭａｇストレプトアビジン（ＱＩＡＧＥＮ，Ｃａｔ．Ｎｏ．３１１７１１）２０μＬ（５０％サスペンジョン溶液）に対し実施例５で作製したビオチン標識抗ヒトオートタキシン抗体１０μｇを添加し、抗ヒトオートタキシン固定化磁性微粒子を準備した。未反応の抗体をＴＢＳＴにより洗浄後、ＴＢＳＴにより２．５倍希釈した動物血清１２５μＬを添加し、２時間反応させた。反応後、磁石により磁性微粒子を除去し、上清中のリゾホスフォリパーゼＤ活性を測定した。抗ヒトオートタキシン抗体未添加のストレプトアビジン固定化磁性微粒子により処理を行った動物血清のリゾホスフォリパーゼＤ活性に対する活性の阻害率を検証した結果を図５および表１に示す。縦軸に動物血清の種類を、横軸に活性阻害率（吸収率）を示す。活性吸収率は抗ヒトオートタキシン抗体を含まない緩衝液での残存活性に対する阻害活性を示す。Ｒ１０．２３に代表されるようにヒトオートタキシンに特異的な抗体から、何種かの動物オートタキシンと交差反応性を示すものまで多様性に富んだ抗体群が取得できた。エピトープ位置の詳細な解析を、オートタキシン断片を大腸菌発現させた抗原を用いて試みたが、ほとんど全ての抗体が可溶性オートタキシン断片と反応性を示さず、エピトープの特定に至らなかった。しかし、取得したモノクローナル抗体はヒトオートタキシン上の異なるエピトープを認識する抗体群で構成されていることが予想され２抗体を用いたサンドイッチイムノアッセイ構築が可能性を示唆する結果を得た。

実施例９：ヒトオートタキシン標準品の調製
実施例５で精製した抗体を用い抗体固定化担体を作製し、抗原の精製ならびにヒト血清から抗原の除去を行なったヒトオートタキシンゼロ血清の調製を行った。これらを材料として用いヒトオートタキシン免疫測定に用いる標準品（ヒトオートタキシン既知濃度サンプル）の調製を行った。具体的には実施例５に従い精製を行ったモノクローナル抗体Ｒ１０．２３をＨｉＴｒａｐ ＮＨＳ−活性化５ｍＬカラム（ＧＥヘルスケア バイオサイエンス（株），Ｃａｔ．Ｎｏ．１７−０７１７−０１）に対し２５ｍｇの抗体をマニュアルに従い結合させた。本Ｒ１０．２３結合カラムを用い、０．８μｍのフィルターにより不純物を除去したヒト血清２００ｍＬを１ｍＬ／ｍｉｎの流速で送液しカラム素通り画分を回収した。本素通り画分中のヒトオートタキシンは実施例６記載のＥＬＩＳＡ測定法において反応性を示さないことを確認した。本品を標準品作製用のベース血清としさらに、ゼロ濃度標準品とした。精製抗原の調製は昆虫細胞・バキュロウイルス系で発現させた全長ヒトオートタキシンを材料に行った。培養上清１ＬをＲ１０．２３結合カラムに流速１ｍＬ／ｍｉｎの流速にて送液し、続いてＰＢＳにより未結合蛋白質の洗浄を行った。カラムを通過したＰＢＳの２８０nmの吸光度が０．０１以下になったことを確認し、続いて１００ｍＭグリシン緩衝液ｐＨ３．５を用い結合蛋白質を溶出させた。溶出液は１／１０容量の１Ｍ−Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０を添加することにより中性に戻した後、ＴＢＳにより速やかに透析処理を行なった。図６は全長ヒトオートタキシン精製品のＳＤＳ−ＰＡＧＥ像および、抗オートタキシンペプチド抗体を用いたウェスタンブロッティングの結果を示す。図中レーンＭは分子量マーカーを示す。レーン１は１μｇ／レーンにて精製抗原を還元条件下ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行い、ＣＢＢにより染色した像を示す。レーン２〜５はウェスタンブロッティング像を示す。すなわち０．２５μｇ／レーンにて精製抗原を還元条件下ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った後、ＰＶＤＦ膜に転写した。ブロッキング処理後、レーン２はラット抗オートタキシンペプチドモノクローナル抗体（アミノ酸配列４９−５９を認識（配列番号２）、レーン４はウサギ抗オートタキシンペプチドポリクローナル抗体（アミノ酸配列６７１−６８６（配列番号２）を認識）、レーン３，５は抗ヒトオートタキシンを含まない非特異的結合検出のためのバックグラウンドとして検出を行った。精製抗原はＣＢＢ染色像においては２本バンドとして確認され、抗ペプチド抗体を用いたウェスタンブロッティングにおいては実施例２同様分子量１０５ｋＤａ付近に２本以上のバンドが検出されており糖鎖の差、あるいは培養、精製過程での分解を示唆する結果が得られた。本精製全長ヒトオートタキシンをＢＣＡ蛋白定量キット（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．，Ｃａｔ．Ｎｏ．２３２２５）により濃度測定し、ヒトオートタキシン濃度とした。本精製ヒトオートタキシン抗原を上記ヒトオートタキシン除去ヒト血清に添加し既知濃度標準品を調製した。

実施例１０：サンドイッチＥＬＩＳＡ測定系用抗体組み合わせの選択
精製抗体ならびにビオチン標識抗体を用い、サンドイッチＥＬＩＳＡ測定系が構築可能な抗体の組み合わせ評価を行なった。９６穴イムノプレート（ＮＵＮＣ）に、精製抗体２μｇ／ｍＬを含むＴＢＳ溶液を５０μＬ／ウェルにて添加し、一昼夜、４℃にて抗体プレートに結合させる。ＴＢＳにより３回洗浄後、実施例９により精製した組換え全長ヒトオートタキシンをＥＬＩＳＡアッセイ緩衝液（３％ ＢＳＡ、１０ｍＭ ＭｇＣｌ₂、０．１％ Ｔｗｅｅｎ ２０を含むＴＢＳ）にて精製ヒトオートタキシン１００ng／ｍＬになるよう希釈し、５０μＬ／ウェルにて添加した。室温で２時間放置後、ＴＢＳＴにより４回洗浄し、０．８μｇ／ｍＬのビオチン標識抗体を含むＥＬＩＳＡアッセイ緩衝液を５０μＬ／ウェルにて添加した。室温で２時間放置後、ＴＢＳＴにより４回洗浄し、１０００倍希釈したＨＲＰ標識ストレプトアビジン（Ｚｙｍｅｄ社製）を含むＥＬＩＳＡアッセイ緩衝液を５０μＬ／ウェルにて添加した。１時間室温で放置後、ＴＢＳＴにより６回洗浄し、ＴＭＢ基質を５０μＬ／ウェルで添加した。室温１０分後、１Ｎ−リン酸により反応を停止しＯＤ４５０の吸光度を測定した。図７に代表的な結果を示す。Ｒ１０．２１およびＲ１０．２３に関してそれぞれをイムノプレートに１次抗体としてコーティングし、ヒトオートタキシンと反応させた後、他の抗体群を用いて２抗体サンドイッチＥＬＩＳＡにより反応性を検出した結果を上段（左図Ｒ１０．２１、右図Ｒ１０．２３をプレートコートした際の結果）を示す。また、同様に取得抗体群をイムノプレートに１次抗体としてコーティングし、Ｒ１０．２１およびＲ１０．２３を２次抗体として用い反応性を検出した結果を下段（左図Ｒ１０．２１、右図Ｒ１０．２３を検出用２次抗体とした際の結果）に示す。横軸は使用した抗体（上段：２次抗体、下段：１次抗体）、縦軸は４５０nmの吸光度による反応性を示す。グラフ上段、下段の比較より同じ抗体の組み合わせにおいても１次抗体、２次抗体の用い方により反応性を示す場合、示さない場合が確認された。図８に取得した抗ヒトオートタキシンモノクローナル抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡでの反応性の一覧を示した。本結果で反応性を示さないものは、サンドイッチＥＬＩＳＡ構築が不可能である組み合わせを示しており、反応性を示した組み合わせは構築可能なことを示唆している。横方向にイムノプレートに結合させた１次抗体を、縦方向に２次抗体の名称を示している。また、表中の数値は４５０nmの吸光度を示しており、−は吸光度０．５以下を示している。組み合わせ評価全５２９通りのうち０．５以上の反応性を示した組み合わせは、１６通りであり、全体の約３％であった。また、実施例６との関連で図２に示したヒトオートタキシンを直接イムノプレートに結合させたＥＬＩＳＡに反応性を示したＲ１０．１６、Ｒ１０．４８、Ｒ１０．４９の３種のモノクローナル抗体を用いた組み合わせではサンドイッチＥＬＩＳＡを構築できなかった。すなわち、ヒトオートタキシンを直接イムノプレートに結合させた通常のスクリーニング方法により取得した抗体ではサンドイッチＥＬＩＳＡを構築できない、あるいは構築することが非常に困難であることを示唆しており、本発明の手法による抗体スクリーニング方法は非常に効果的な手法であることを示している。

実施例１１：２ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ測定法によるヒトオートタキシンの定量 実施例９で反応性を示した抗ヒトオートタキシン抗体の組み合わせを用い、２ステップ２抗体サンドイッチＥＬＩＳＡによる血清中のヒトオートタキシン測定系を構築した。固相用抗体としてＲ１０．２３を用い、２次抗体としてＲ１０．２１を用い測定系の検証を行った。固相用抗体Ｒ１０．２３はペプシン消化によりＦ（ａｂ）₂化し使用した。実施例９と同様にＲ１０．２３を９６穴イムノプレート（ＮＵＮＣ社製）に２μｇ／ｍＬ濃度で５０μＬ／ウェルにて添加し、一昼夜、４℃にてプレートに結合させた。ＴＢＳにより３回洗浄後、３％ ＢＳＡを含むＴＢＳを２５０μＬ／ウェルで添加し２時間ブロッキング処理を行った。ＴＢＳにより３回洗浄後、実施例１０で作製した標準品ならびに濃度未知のヒト血清をＥＬＩＳＡアッセイ緩衝液で１／５に希釈し５０μＬ／ウェルにて添加した。室温で２時間反応後、ＴＢＳＴにより４回洗浄し、０．８μｇ／ｍＬのビオチン標識Ｒ１０．２１を含むＥＬＩＳＡアッセイ緩衝液を５０μＬ／ウェル添加した。室温で２時間放置後、ＴＢＳＴにより４回洗浄し、１０００倍希釈したＨＲＰ標識ストレプトアビジン（Ｚｙｍｅｄ社製）を含むＥＬＩＳＡ緩衝液を５０μＬ／ウェル添加した。１時間室温放置後、ＴＢＳＴにより６回洗浄し、ＴＭＢ基質を５０μＬ／ウェルで添加した。室温３０分後、１Ｎ−リン酸により反応を停止し４５０nmの吸光度を測定した。図９にヒトオートタキシン既知濃度の標準品６濃度（０,０．３４,０．６７５，１．３５，２．７０，５．４０μｇ／ｍＬ）による検量線を示す。検量線の回帰は３次回帰により行った。ヒトオートタキシン濃度依存的に４５０nmの吸光度上昇が確認された。本検量線を用い未知濃度のヒト血清で得られた４５０ｎｍの吸光度より検体中のヒトオートタキシンの濃度を算出した。また、測定に用いたヒト血清中のリゾホスフォリパーゼＤ活性を実施例７に従い決定し、ヒトオートタキシン濃度との相関性を検証した。図１０はヒト血清４２検体の結果を示しており、横軸にリゾホスフォリパーゼＤ活性を、縦軸にヒトオートタキシン濃度を示す。血清中のヒトオートタキシン濃度とリゾホスフォリパーゼＤ酵素活性は相関係数ｒ＝０．８９３４と良好な相関関係を示しており、本サンドイッチＥＬＩＳＡ法により血清中のオートタキシン濃度定量が可能なことが示された。

実施例１２：１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ測定法によるヒトオートタキシンの定量 実施例１０で反応性を示した抗ヒトオートタキシン抗体の組み合わせを用い、２抗体１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡによる血清中のヒトオートタキシン測定系を構築した。固相用抗体としてＲ１０．２３を用い、２次抗体としてＲ１０．２１を用い測定系の検証を行った。固相用抗体Ｒ１０．２３はＦ（ａｂ）₂化し使用した。２次抗体となるＲ１０．２１はアルカリ性ホスファターゼとＳｕｌｆｏ−ＳＭＣＣを用い酵素標識を行なった。実施例９と同様にＲ１０．２３を９６穴イムノプレート（ＮＵＮＣ社製）に２μｇ／ｍＬで添加し、一昼夜、４℃にてプレートに結合させた。ＴＢＳにより３回洗浄後、３％ ＢＳＡを含むＴＢＳを２５０μＬ／ウェルで添加し２時間ブロッキング処理を行った。０．５７μｇ／ｍＬのアルカリ性ホスファターゼ標識Ｒ１０．２１を含むＥＬＩＳＡアッセイ緩衝液をＴＢＳ ５０μｌ／ウェルで添加し、速やかに−４０℃にて凍結した。一昼夜をかけて減圧下凍結乾燥品とし、１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ測定試薬を作製した。測定は、実施例１０で作製した標準品ならびに濃度未知のヒト血清を０．１２５％ Ｔｗｅｅｎ ２０水溶液により１／５倍希釈し５０μＬ／ウェルにて添加した。室温で２時間反応後、ＴＢＳＴにより４回洗浄し、ＴＭＢ基質を５０μＬ／ウェルで添加した。室温３０分後、１Ｎ−リン酸により反応を停止し４５０nmの吸光度を測定した。図１１にヒトオートタキシン既知濃度の標準品６濃度（０,０．３４,０．６７５，１．３５，２．７０，５．４０μｇ／mL）による検量線を示す。検量線の回帰は３次回帰により行った。ヒトオートタキシン濃度依存的に４５０nmの吸光度上昇が確認された。本検量線を用い未知濃度のヒト血清で得られた４５０nmの吸光度より検体中のヒトオートタキシンの濃度を算出した。また、測定に用いたヒト血清中のリゾホスフォリパーゼＤ活性を実施例７に従い決定し、ヒトオートタキシン濃度との相関性を検証した。図１２は横軸にリゾホスフォリパーゼＤ活性を、縦軸にヒトオートタキシン濃度を示す。血清中のヒトオートタキシン濃度とリゾホスフォリパーゼＤ酵素活性は相関係数ｒ＝０．９１８５と良好な相関関係を示しており、本サンドイッチＥＬＩＳＡ法により血清中のオートタキシン濃度定量が可能なことが示された。

実施例１３：１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ測定法による癌患者検体のヒトオートタキシンの定量と診断
健常人検体および癌患者血清検体のヒトオートタキシン濃度の定量を行い、健常人に対する有意差を検証した。癌患者血清としては、前立腺癌マーカーＰＳＡ（Ｐｒｏｓｔａｒｅ Ｓｐｅｃｉｆｉｃ Ａｎｔｉｇｅｎ）、消化器癌マーカーＣＡ１９−９、乳癌マーカーＣＡ１５３、卵巣癌マーカーＣＡ１２５がカットオフを超える検体を用い、実施例１２に従い１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡを実施した。それぞれの癌マーカーは全自動エンザイムイムノアッセイ装置ＡＩＡ−６００II（Ｔｏｓｏｈ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、ならびに体外診断薬として製造承認を得ている各マーカー測定試薬を用い実施した。癌患者血清の陽性判断は、ＰＳＡ（＞１０ng／ｍＬ）、ＣＡ１９−９（＞３８ng／ｍＬ）、ＣＡ１５３（＞２３ng／ｍＬ）、ＣＡ１２５（＞３２ng／ｎＬ）とした。図１３および表２に結果を示す。健常人血清中オートタキシン濃度に対し、いずれの癌検体群も有意（ｐ＜０．００１）に高値を示した。本結果より、血清中のオートタキシン濃度定量は癌の診断に有効であることが示された。

実施例１４：１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ測定法による慢性肝疾患患者検体のヒトオートタキシンの定量と診断
健常人検体１４６検体および慢性肝疾患（ＣＬＤ：Ｃｈｒｏｎｉｃ ｌｉｖｅｒ ｄｉｓｅａｓｅ）患者血清検体２９検体のヒトオートタキシン濃度の定量を行い、健常人に対する有意差を検証した。実施例１２に従い１ステップサンドイッチＥＬＩＳＡを実施した。図１４に結果を示す。健常人（１４９検体）及び慢性肝疾患群（２７検体）の測定値平均±標準偏差はそれぞれ、０．７５６±０．０４５、０．１８６６±１．２４４ng／ｍＬであり、有意差ｐ＜０．０００１を示した。また、表３に慢性肝疾患患者検体１７例を用い既存肝疾患マーカーであるヒアルロン酸、血清アルブミン、総ビリルビン濃度、血小板数、プロトロンビン時間を測定値とオートタキシン濃度との関係を示した。いずれの既存マーカーに対してもヒトオートタキシン濃度は相関性を示した。本結果より、血清中のオートタキシン濃度定量は慢性肝疾患の診断あるいは診断補助に有効であり、かつその疾患の程度を反映することが示された。

実施例１５：ヒト精漿の測定
健常人精漿中のオートタキシンの定量とリゾホスフォリパーゼＤ活性測定を行った。オートタキシンの定量は、全自動エンザイムイムノアッセイ装置ＡＩＡ−６００II（承認番号１３Ｂ３Ｘ９０００２０００００３）を用いて行った。２抗体１ステップサンドイッチ測定試薬は、実施例１２同様、固相用抗体としてＦ（ａｂ）₂化Ｒ１０．２３を１．２μｇ、２次抗体としてアルカリ性ホスファターゼ標識Ｒ１０．２１を０．５７μｇ用い、５％ゼラチン、１０ｍＭ ＭｇＣｌ２を含むＥＬＩＳＡアッセイ緩衝液５０μＬを測定カップに分注し、一昼夜凍結乾燥を行った。本測定試薬を用い、自動化装置により測定を行った。測定条件は、２０μＬの検体と１３０μＬの０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００溶液を測定カップに分注し、３７℃にて１０分間反応を行った。反応後コハク酸緩衝液により洗浄後、４−メチルウンベリフェリルリン酸塩を添加し、アルカリ性ホスファターゼにより分解、生成した４−メチルウンベリフェロンの単位時間当たりの生成濃度を測定することにより定量を行った。ヒトオートタキシン既知濃度の標準品６濃度（０,０．３４,０．６７５，１．３５，２．７０，５．４０μｇ／ｍＬ）による検量線を用いた際の、健常人オートタキシン濃度は０．１６４μｇ／ｍＬであった。一方、実施例７に従い、精漿中のリゾホスフォリパーゼＤ活性を測定した結果、図１５左に示すとおり、基質であるリゾホスファチジルコリン存在、非存在下においてコリン生成量に大きな差が認められず、１０倍希釈した精漿においても非常に高値を示した。基質非存在下で高値を示すことより、内在性のコリンを測定していることが推測され、その測定値から健常人精漿中のコリン濃度は、約４０ｍＭと非常に高濃度であり、実施例７によるリゾホスフォリパーゼＤ活性測定時の基質濃度が２ｍＭであることより、本コリン濃度を排除した測定を行うためには、精漿検体を１０００倍程度希釈する必要がある。本希釈操作によりオートタキシンも同時に希釈されるため、酵素活性測定には長時間が必要であることが予測される。精漿中のリゾホスフォリパーゼＤ高値活性が内在性コリンによるものであることを確認するため、精漿検体を８時間ＴＢＳにて充分透析し低分子物質を除去した後のリゾホスフォリパーゼＤ活性を図１５中央に示す。透析により、高値を示していたリゾホスフォリパーゼＤ活性であるコリン生成量は１／１００程度まで低下した。また、透析後の精漿のリゾホスフォリパーゼＤ活性を測定した結果、図１５右に示すとおり、基質非存在下に対し基質存在下で酵素活性を確認できた。基質非存在下では、反応温度４℃での酵素反応を停止制御した際の測定値と同等であった。これら、結果より、精漿中には非常に高濃度のコリンが存在し、コリン生成度を指標としたリゾホスフォリパーゼＤ活性測定は困難であり、本発明による免疫測定方法によりはじめて定量可能なことを示す結果である。

実施例１６：オートタキシン測定試薬の調製
水不溶性担体（内部にフェライトを練り込んだ粒子径約1.5ｍｍのエチレンビニルアルコール性）に抗ヒトオートタキシンモノクローナル抗体（R10.23）を１００ｎｇ／担体になるように３７℃にて一昼夜物理的に吸着させ、その後１％ＢＳＡを含む１００ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ８．０）にて４０℃、４時間ブロッキングを行ない抗体固定化担体とした。標識抗体は抗ヒトオートタキシンモノクローナル抗体（R10.21）をペプシン処理によりＦ（ａｂ）２化した後、ＳＰＤＰ（N-スクシニミジル3-[2-ピリジルジチオ]プロピオネート）を用いアルカリ性ホスファターゼと結合させ酵素標識抗体とした。磁力透過性の容器（容量１．２ｍＬ）に１２個の抗体固定化担体を入れた後、１μｇ／ｍＬの標識抗体を含む緩衝液（３％ＢＳＡを含むトリス緩衝液、ｐＨ８．０）５０μＬを容器に添加し凍結乾燥を施しオートタキシン測定試薬とした。オートタキシン測定試薬は窒素充填下密閉封印シールを施し測定まで４℃にて保管した。

実施例１７：ヒトオートタキシン標準品の調製
抗ヒトオートタキシンモノクローナル抗体（R10.23）を用い抗体固定化担体を作製し、抗原の精製ならびにヒト血清から抗原の除去を行なったヒトオートタキシンゼロ血清の調製を行った。これらを材料として用いヒトオートタキシン免疫測定に用いる標準品（ヒトオートタキシン既知濃度サンプル）の調製を行った。具体的にはR10.23をＨｉＴｒａｐ ＮＨＳ−活性化５ｍＬカラム（ＧＥヘルスサイエンス，Ｃａｔ．Ｎｏ．１７−０７１７−０１）に対し２５ｍｇの抗体をマニュアルに従い結合させた。本Ｒ１０．２３結合カラムを用い、０．８μｍのフィルターにより不純物を除去したヒト血清２００ｍＬを１ｍＬ／ｍｉｎの流速で送液しカラム素通り画分を回収した。本素通り画分中のヒトオートタキシンは実施例１６記載の測定試薬にて反応性を示さないことを確認した。本品を標準品作製用のベース血清としさらに、ゼロ濃度標準品とした。精製抗原の調製は昆虫細胞・バキュロウイルス系で発現させた全長ヒトオートタキシンを材料に行った。培養上清１ＬをＲ１０．２３結合カラムに流速１ｍＬ／ｍｉｎの流速にて送液し、続いてＰＢＳにより未結合蛋白質の洗浄を行った。カラムを通過したＰＢＳの２８０nmの吸光度が０．０１以下になったことを確認し、続いて１００ｍＭグリシン緩衝液ｐＨ３．５を用い結合蛋白質を溶出させた。溶出液は１／１０容量の１Ｍ−Ｔｒｉｓ ｐＨ８．０を添加することにより中性に戻した後、ＴＢＳにより速やかに透析処理を行なった。精製全長ヒトオートタキシンをＢＣＡ蛋白定量キット（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．，Ｃａｔ．Ｎｏ．２３２２５）により濃度測定し、ヒトオートタキシン濃度とした。本精製ヒトオートタキシン抗原を上記ヒトオートタキシン除去ヒト血清に添加し既知濃度標準品を調製した。

実施例１８：オートタキシン測定試薬の評価
実施例１６にて作製したオートタキシン測定試薬を用い実施例１７で作製した標準品を用い試薬性能評価を実施した。評価用装置として全自動エンザイムイムノアッセイ装置 AIA-1800（東ソー株式会社製：製造販売届出番号１３Ｂ３Ｘ９０００２０００００２）を用いた。標準品濃度は０、０．３１３、０．６２５、１．２５、２．５及び５．０μｇ／ｍＬの６濃度標準品を使用した。全自動エンザイムイムノアッセイ装置 AIA-1800の測定原理は標準品あるいはヒト血清検体２０μＬと界面活性剤を含む希釈液１３０μＬを実施例１６で作製したオートタキシン測定試薬容器に自動で分注される。３７℃恒温下１０分間の抗原抗体反応を経て、界面活性剤を含む緩衝液にて８回の洗浄が行われた後、４−メチルウンベリフェリルリン酸塩を添加し単位時間当たりの４−メチルウンベリフェロン生成濃度をもって測定値（ｎｍｏｌ／Ｌ・ｓｅｃ）とする。標準品測定時の測定値を表４に、そしてそれを用いた検量線を図１６に示す。また、本検量線およびゼロ濃度標準品の（平均値＋２×標準偏差）より算出した最小検出感度は１１０ｎｇ／ｍＬであった。

実施例１９：オートタキシン測定試薬の再現性試験
オートタキシン測定試薬で得られる結果の再現性を検証するため、実施例１８で作成した検量線を用いてコントロール検体３例にて再現性試験を実施した。同時再現性として検体を１０重測定し変動係数（％ＣＶ：coefficient variation ＝ 標準偏差／平均値×１００）を算出し、表５に示す。また、数日おきに検体を測定し０日目測定値からの変動ならびに全測定値の変動係数を算出し、その結果を表６に示す。

いずれの変動係数も１０％以下を示しておりオートタキシン測定試薬にて得られる結果は信頼しうることが証明された。

実施例２０：白血病、悪性リンパ腫検体の測定
全自動エンザイムイムノアッセイ装置ＡＩＡ−６００IIを使用し、健常人１２０例、白血病、悪性リンパ腫２１５例の血清検体をオートタキシン測定試薬にて測定した。その結果を表７に示す。

男性健常人７４例の測定値は平均値 ０．６５６μｇ／ｍＬ、標準偏差０．１２１μｇ／ｍＬ、最小値０．４０１μｇ／ｍＬ、最大値１．０８８μｇ／ｍＬであった。また、女性健常人４６例の測定値は平均値 ０．８５２μｇ／ｍＬ、標準偏差０．１８４μｇ／ｍＬ、最小値０．６２１μｇ／ｍＬ、最大値１．５９０μｇ／ｍＬであった。白血病および悪性リンパ腫２１５例の測定を実施した。対象検体は健常人、急性白血病（急性リンパ性白血病、急性骨髄性白血病）、慢性白血病（慢性リンパ性白血病、慢性骨髄性白血病、前駆リンパ球性白血病）、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫（びまん性大細胞型B細胞リンパ腫、濾胞性リンパ腫、マントル細胞リンパ腫、バーキットリンパ腫、リンパ芽球性リンパ腫）、その他白血病、悪性リンパ腫（慢性活動性EBV感染症、骨髄異形成症候群、多発性骨髄腫）であり、それぞれの検体数も表７に示す。測定結果は図１７及び１８に示すとおり、非ホジキンリンパ腫において男性、女性いずれも有意差ｐ＜０．０１をもって高値を示した。

実施例２１：非ホジキンリンパ腫の詳細な評価
実施例２０で測定した非ホジキンリンパ腫をさらに詳細に分類し、評価を実施した。その結果を表８、並びに図１９、２０に示す。濾胞性リンパ腫において男性、女性それぞれにおいて有意差ｐ＜０．０５、ｐ＜０．０１をもって高値を示した。

実施例２２：オートタキシン濃度とリゾホスファチジン酸濃度の相関性試験
オートタキシンは生理活性脂質であるリゾホスファジン酸（ＬＰＡ）産生を介して、癌の浸潤及び転移と係わっていることが明らかとなっている。そこで、血清中のオートタキシン濃度を測定し、ＬＰＡ濃度との相関性を検討した。ＬＰＡ測定はＣｌｉｎ．Ｃｈｉｍ．Ａｃｔａ ３３３，５９−６７，２００３に従い行った。具体的には、測定試薬として以下の組成を含む１００ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ ７．６）を準備した。

（測定試薬組成）
２０ｋＵ／Ｌ リゾホスフォリパーゼ（ＥＣ．３．１．１．５）
１．３ｋＵ／Ｌ ペルオキシダーゼ
１００ｋＵ／Ｌ グリセロール３リン酸オキシダーゼ（Ｇ３ＰＯ；ＥＣ１．１．３．２１）
１０ｋＵ／Ｌ グリセロール３リン酸脱水素酵素（Ｇ３ＰＤＨ；ＥＣ１．１．１．８）
１０ｋＵ／Ｌ α−ヒドロキシステロイド脱水素酵素（ＨＳＤ；ＥＣ１．１．１．５０）
１０μＭ ニコチンアミド・アデニン・ジヌクレオチド（ＮＡＤＨ）
１ｍＭ コール酸（ｃｈｏｌｉｃ ａｃｉｄ）
０．５ｍＭ ＴＯＯＳ
１ｍＭ ４−アミノアンチピリン
０．０１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００
測定は９μＬの血清およびＬＰＡ濃度既知の標準品を上記測定試薬２４０μＬと混合後、３７℃にてインキュベートし７分後および９分後での５７０ｎｍの吸光度を測定した。７分から９分までの測定値の増加量（ｒａｔｅ値＝吸光度／分）を算出し、標準品測定値より作成した検量線を用い血清検体中のＬＰＡ濃度を算出した。測定検体中のオートタキシン抗原濃度とＬＰＡ濃度の相関性を検証した結果、図２１に示す通り、相関係数ｒ＝０．６２１と良好な相関が認められた（なお、一般的にｒ＝０．５以上であればかなり高い相関性があると判断できる）。

従来ＬＰＡ濃度の測定はＬＰＡ自身が不安定であり、かつ、採血後血清中に自然に生成されることから臨床での測定が困難であったが、本発明によるオートタキシン測定は容易であり、かつ、ＬＰＡ濃度と良好な相関性が得られた。

本発明は、ヒト検体中に含まれる天然形態のヒトオートタキシンに対する抗体、ならびにそれを用いたヒトオートタキシンの定量方法ならびに定量試薬に関する。これらを用いることにより癌の診断方法および肝臓疾患の診断方法が可能となる。さらに、本発明は、ヒト検体中に含まれるヒトオートタキシンを免疫学的に定量する方法によって濃度を測定することにより、これまで明確な血清診断マーカーがなかった悪性リンパ腫、特に日本人の大多数を占める非ホジキンリンパ腫、さらには濾胞性リンパ腫の検査、あるいは検査補助が可能となる。

Claims (5)

1. 抗体を用いた免疫化学的測定方法でヒト検体中のオートタキシン濃度を測定し、その値が健常人測定値からなる正常値に対し有意差をもって高値を示した場合に慢性肝疾患と判断することを特徴とする慢性肝疾患の検査方法。
2. 抗体を用いた免疫化学的測定方法でヒト検体中のオートタキシン濃度を測定し、その値に基づき慢性肝疾患の程度を判断することを特徴とする慢性肝疾患の検査方法。
3. 検体が、血清、血漿、尿、精漿、脳脊髄液のいずれかであることを特徴とする請求項１又は２記載の検査方法。
4. 抗体がモノクローナル抗体であることを特徴とする請求項１〜３のいずれか１項記載の検査方法。
5. 請求項１〜４のいずれか１項記載の検査方法を原理とすることを特徴とする慢性肝疾患検査薬。