JP2014527820A - 造血幹細胞及び前駆細胞のエクスビボ増殖のための方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本明細書において、造血幹細胞又は「HSC」という用語は、自己再生能力と、顆粒球(例えば、前骨髄球、好中球、好酸球、好塩基球)、赤血球(例えば、網状赤血球、赤血球)、血小板(例えば、巨核芽球、巨核球産生血小板、血小板)、及び単球(例えば、単球、マクロファージ)を含むさらに成熟した血液細胞に分化する能力と、を有する未成熟血液細胞を指す。このような細胞はCD34+細胞を含む場合も含まない場合もあることが当技術分野において知られている。CD34+細胞は、CD34細胞表面マーカーを発現する未成熟細胞である。CD34+細胞は、上記幹細胞特性を有する細胞の小集団を含むものと考えられる。
適切な供給源(例えば、臍帯血又は骨髄)由来のHPC又はHSC集団の増殖能力は医療に実質的な利点を与え、高用量の細胞が必要とされる造血又は腫瘍学的疾患のための治療、移植手術、又は他の療法を成功裡に実施する可能性を増大させる。
本発明において、本発明者らはまた、細胞培養を酸素の周囲濃度未満のレベルで行う場合に、クローン形成能に影響を与えないか影響が非常に制限されている状態で標的集団の純度の改善などの成長特性の増大がもたらし得る酸素の量を決定した。
インビボにおけるHSC及び/又はHPCなどの造血細胞集団の増殖は、これらの細胞が通常見出される骨髄環境内の、複数の因子の複合化した影響と関係している。この領域は「造血ニッチ」と称するのが一般的である。
本発明のさらなる態様において、低酸素環境下、並びに成長因子、及びフィコリン−1、フィコリン−2若しくはフィコリン−3又はその断片若しくは機能的等価物又はそれらの組合せなどの薬剤の存在下、並びに周囲レベルと比較して低減された酸素濃度の存在下でのHSC及び/又はHPC培養のための方法及び組成物が提供される。
先に議論したように、本発明の方法及び組成物に関連して特に注目すべき成長因子は造血成長因子である。すなわち、本発明のさらなる態様は、本発明の方法において使用するための、HPC及び/又はHSC集団のエクスビボでの生存或いは通常の成長培地でのHSC及び/又はHPC集団の培養又は増殖を延長するための培養組成物を提供することを対象とする。
本発明のさらなる態様において、HSC及び/又はHPCをインビトロ培養して造血起源の分化細胞を製造するための方法が提供され、当該方法では、第1の培養ステップにおいて、第1の量の造血前駆細胞を、培養造血前駆細胞の数を前記第1の量に対して増加させる条件下の環境及び期間で増殖して造血前駆細胞の数を増加させ、これにより第2の量の造血前駆細胞を生ずる。培養造血前駆細胞の数を増加させるために必要な時間は、当分野の専門家に既知の測定法、例えば培養の細胞数、光学密度又はpHの測定によって、又は細胞の倍加時間を算出することによって決定することができる。
本発明のさらなる態様において、本発明の方法に従って培養される造血細胞は対象の骨髄移植に利用される。
CD34+細胞富化:
臍帯血は、Barwon Health,Geelong Hospital及びSt.John of God Hospital(ジーロング,オーストラリア)での満期分娩から、バーロンヘルスヒト研究倫理委員会(97/14及びSJOG 139)及びDeakin大学ヒト研究倫理委員会(EC 72−2009)の承認下、すべての参加者から書面によるインフォームドコンセントを得て採取した。
凍結保存細胞を37℃で解凍し、10倍体積のStemline II培地(Sigma Aldrich)に滴下して移し、400rcfで10分間、室温で遠心分離して、ダルベッコリン酸緩衝食塩水(D−PBS)(Invitrogen)に再懸濁して、トリパンブルー染色(Sigma Aldrich)を用いて生存細胞を手動で計数した。
標的細胞純度は、フローサイトメトリー(FACSCalibur,Becton Dickinson)による培養前及び培養後に決定し、HSC、HPC及び多分化能細胞(CD133−PE Miltenyi Biotec)に関してはCD45−FITC+CD34−PE+7AAD、CD34−FITC+CD133−PE+7AAD、及びCD38−FITC+CD34−PE+7AADを、抗原感作細胞系列に関してはCD61−FITC+CD34−PE+7AAD、CD11b−FITC+CD14−PE+7AAD、CD3−FITC+CD19+7AAD(CD11b−FITCはBeckman Coulter;他はBD Biosciences)を使用した(Figure4)。生存CD45+CD34+集団は、Miltenyi Biotec改変ISHAGEプロトコールを用いて決定し、CD34+CD38−ゲートは、公開されている推奨に従って決定した。増殖実験のために使用したCD34+富化試料は、80%を超える7AAD生存率及びCD34+純度を有していた。
培養前及び培養後細胞を、製造業者の指示に従って、組換えサイトカイン(H4434;STEMCELL Technologies)を添加した「完全」メチルセルロース細胞に播種し、14日間インキュベートし、芽球形成単位−赤血球(BFU−E)、コロニー形成単位−顆粒球/マクロファージ(CFU−GM)、コロニー形成単位−顆粒球/赤血球/単球/マクロファージ細胞(CFU−GEMM)、及び全芽球/コロニー形成単位を数え上げた(Figure4)。
培養前及び培養後試料をトリゾール(Invitrogen)で保存した後、RNAスピン・ミニ(spin mini)RNA単離キット(Illustra)を用いてRNAを単離し、NanoDrop分光光度計(Thermo Scientific)を用いて定量した。逆転写を、Superscript III ファーストストランド合成キット(Invitrogen)でランダムヘキサマーを用いて行った。リアルタイムPCRは、7500FASTリアルタイムPCRシステム(Applied Biosystems)を用いて行った。サイバーグリーンPCRマスターミックス(Applied Biosystems)を、HoxB4及びNf−yαに対応するプライマー対[HoxB4(フォワード:5’−CCTGGATGCGCAAAGTTCA−3’(配列番号7);リバース:5’−GCTTGGGCTCCCCGC−3’(配列番号8));Nf−yα(フォワード:5’−GATGGTCATGATGGTTCCTG−3’(配列番号9);リバース:5’−GGTATTGTTTGGCATTCACG−3’(配列番号10))](Sigma Genosys)に使用した。Taqman PCRマスターミックス(Applied Biosystems)をCD34最適化前遺伝子発現アッセイ(Hs00156373_m1;Applied Biosystems)に使用し、また、ハウスキーピング遺伝子であるβアクチン(フォワード:5’−GACAGGATGCAGAAGGAGATTACT−3’(配列番号11);リバース:5’−TGATCCACATCTGCTGGAAGG−3’(配列番号12);プローブ:fam−ATCATTGCTCCTCCTGAGCGCAAGTACTC−tamra(配列番号13))及びGAPDH(フォワード:5’−CCACATCGCTCAGACACCAT−3’(配列番号14);リバース:5’−CCAGGCGCCCAATACG−3’(配列番号15);プローブ:fam−AAGGTGAAGGTCGGAGTCAACGGATTTG−tamra(配列番号16))(Sigma Genosys)に使用した。
細胞の評価は、単一ステップ増殖については培養前及び培養後に、連続増殖については週毎に行った。培養前及び培養後の標的集団の純度及びコロニー形成単位クローン形成能を用いて、細胞集団の比率の全体的な変化を決定した(Figure5)。
主要な臨床的関心は、移植可能な細胞用量の増加を表す細胞集団の増殖倍数である。トロンボポエチン(T)単独では、臨床的に有効な増殖を確実にするには不十分であり、生存細胞数は2倍増(2.0±0.3)にすぎず、CD45+CD34+細胞数に変化はなく、CD34+CD38−−細胞数は2倍増(2.6±0.8)にすぎなかった(Figure2)。CD133+細胞の分析、又はCFUアッセイに十分な細胞数はなかった。幹細胞因子(S)の添加により、生存細胞の増殖は25±4倍に増大し、対応して全体の標的集団も増加した。増大が最小となる場合は、Flt−3リガンド(F)の添加で観察された。しかしながら、インターロイキン−6(I)を培養培地に含めることにより、生存細胞の増殖倍数(99±7倍)及びすべての標的集団の増殖倍数が大きく増大した(p≦0.01)(Figure2)。具体的には、CD45+CD34+、CD133+、及びCD34+CD38−−細胞数は、それぞれ21±3、19±2、及び78±10倍増殖した。TSGでは、生存細胞について同様の増殖倍数が生じたが、標的HSC及びHPC集団についてはそれが生じなかった。このことは、分化(主に顆粒球系列へ分化)の程度が高いことを示唆した(データは示さず)。適度の酸素効果が生存細胞の増殖倍数について観察され、5%及び10%酸素では全体的に増大したが、20%酸素では低下した(p≦0.04)。
最適条件の臨床的有効性を決定するために、10個の独立した臍帯血ユニットを各々、5%及び10%酸素下のTSFIで培養して、増殖倍数を評価した。すべての集団の平均値は、Figure1及び2に示されるデータによるものと一致し、生存細胞の増殖倍数は87±13であり、CD45+CD34+、CD133+、及びCD34+CD38−−細胞の増殖倍数はそれぞれ19±3、17±5、及び73±15であった。クローン形成集団(BFU−E、CFU−GM、CFU−GEMM、全芽球/コロニー形成単位)の平均増殖は25±5〜36±6であった(表1)。標的集団にわたって値の幅は見られたものの、5%及び10%酸素下のTSFIという最適条件はすべての試料で全集団の増殖をもたらし、複数の臍帯血ユニットにわたる確固たる効果が実証された(表1)。
増殖条件によっては、HSCの枯渇が生じ、同時に長期再増殖能力の低減が生じる場合がある。累積的な増殖倍数を調べることを通じて、連続増殖によりその低減を間接的に評価する。5%及び10%酸素下のTSFIという最適条件を20%酸素下のTSGの場合と比較した。
長期培養:
CD34+造血前駆細胞はヒト臍帯血に由来するものであった。これを、磁気抗ヒトCD34+ビーズ(Miltenyi Biotec)を用いて単離した。すべての培養条件において、1〜2×104細胞を、実施例1と同様の成長因子及び他の添加剤を含むStemline培地(Millipore)に添加した。培養は各培養条件につき3連で実施した。したがって、各培養条件で3つの培養ウェルを使用し、各培地に1ml当たり1〜2×104CD34+細胞を播種した。すべての実験は、少なくとも3種の異なる臍帯血試料について独立に行った。細胞を、低酸素インキュベーター中、2%、5%、10%又は20%(雰囲気中)酸素分圧下で培養した。酸素分圧は培養期間を通じて定期的に監視した。
HPCがミエロイド及び赤血球コロニーを産生する能力を維持しているかどうかを決定するために、メチルセルロースアッセイを次のように実施した。サイトカイン(IL−3 20ng/ml;GMCSF 30ng/ml;エリスロポエチン 3IU/ml;幹細胞因子 50ng/ml;すべてStem Cell Technologies,バンクーバー)と0.5mlのDMEM(2% FCS、10IV/ml ペニシリン、10ug/ml ストレプトマイシン、1mM L−グルタミン)とを含む3.0mlのメチルセルロース培地に細胞を1×104/mlで添加した。この混合物の1mlを、シリンジを用いてスコア化したペトリ皿に加え、泡を鈍い針で除いた。各条件について3連のアッセイを行った。次いで、ペトリ皿を、5%CO2、37℃のインキュベーター内に10〜14日間置いた。10〜14日後、コロニーの数を手動の計数によって決定した。陽性コロニーを、40以上の細胞の蓄積に基づいてスコア化した。赤血球コロニーは、14〜21日後、ゴールドブラウンの色素(ヘモグロビンを示す。)に基づいてスコア化した。ミエロイドコロニーは主として透明な外観により同定した。ミエロイド細胞、赤血球細胞及び巨核球前駆体を含有するコロニーを混合コロニーとした。
培養条件の最適化:
10個の異なる臍帯血試料由来の細胞を、50ng/mlのトロンボポエチン、80ng/mlのFlt−3リガンド、100ng/mlのインターロイキン−6、50ng/mlの幹細胞因子(SCF)、及び100ng/mlのG−CSFからなる成長因子の種々の組合せの存在下、2%、5%、10%又は20%酸素の存在下で8日間培養した(Figure1)。試験したすべての試料のうち、5%又は10%O2下のトロンボポエチン、Flt−3リガンド、SCF及びインターロイキン−6(TFSI)の組合せにおいてCD34+CD45+造血細胞の増殖が最大となり、平均して30倍の増加(培養前の値と比較)となった(Figure6)。このことは、コロニーアッセイにおいてさらに明らかとなった(Figure7)。
フィコリンの効果:
実施例3で最良であった方法(5%又は10%O2でのTFSI)を採用し、フィコリン−1、フィコリン−2、又はフィコリン−3を、50ng/ml、100ng/ml又は200ng/mlのいずれかで、TFSI成長因子の存在下、培養培地に添加して、効果を試験した。すべてのフィコリンに関して、200ng/mlの添加はいずれの実験でも顕著な有効性を示さなかった(データは示さず)。フィコリン−1は、全細胞数並びにCD34+細胞、CD34+CD133+細胞及びCD34+CD38−細胞の一貫した増加を50ng/ml及び100ng/mlの両方の濃度で誘導し、10%O2で最も顕著であった(Figure8)。増殖の増大はコロニー形成単位の増加にも反映されていた(Figure9)。5%O2では表現型的増殖に対するフィコリン−1の効果はあまり顕著でなかった(Figure10)が、この培養条件はコロニー形成単位の増殖で最も有効であり、5%O2での100ng/mlの添加により、全コロニーがTFSI単独と比較して3倍を超えて増加した(Figure11)。
Claims (35)
- HPC及び/又はHSC集団のエクスビボでの生存或いはHPC及び/又はHSC集団の培養又は増殖を延長する方法であって、HPC及び/又はHSC集団を、フィコリン−1、フィコリン−2、フィコリン−3又はその断片若しくは機能的等価物のうちの少なくとも1つの存在下で培養するステップを含む方法。
- HPC及び/又はHSCの再生能力及び/又は多能性が維持又は増加される、請求項1に記載の方法。
- HSC及び/又はHPCは、酸素濃度が通常の周囲酸素濃度未満の環境でさらに培養される、請求項1又は2に記載の方法。
- HSC及び/又はHPCは、約50ng/ml〜200ng/mlの濃度のフィコリン−1、フィコリン−2、フィコリン−3及びその断片若しくは機能的等価物のうちの少なくとも1つの存在下で培養される、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。
- HSC及び/又はHPCは、フィコリン−1又はその断片若しくは機能的等価物の存在下で培養される、請求項4に記載の方法。
- 酸素濃度は約20%未満である、請求項3〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 酸素濃度は約12%未満である、請求項3〜6のいずれか一項に記載の方法。
- 酸素濃度は約5〜10%である、請求項3〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 酸素濃度は約5%である、請求項3〜8のいずれか一項に記載の方法。
- HSC及び/又はHPCは、インターロイキン3、6及び11、幹細胞因子、幹細胞リガンド、FLT−3リガンド、及びトロンボポエチンを含む群から選択される成長因子の存在下で培養される、請求項1〜9のいずれか一項に記載の方法。
- HSC及び/又はHPCは、成長因子のトロンボポエチン、幹細胞因子、Flt−3リガンド、及びインターロイキン6の存在下で培養される、請求項1〜10のいずれか一項に記載の方法。
- 成長因子は約50ng/mL〜100ng/mLの濃度で供給される、請求項10又は11に記載の方法。
- トロンボポエチンは約50ng/mL、幹細胞因子は約50ng/mL、Flt−3リガンドは約80ng/mL、インターロイキン6は約100ng/mLで供給される、請求項11に記載の方法。
- HPCは、HPC数を初期のHPC数に対して増加させて第2の量のHPCを生じさせるように培養される、請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 第2の量のHPCは単離され、別の培養培地でさらに培養される、請求項14に記載の方法。
- 別の培養培地は、インターロイキン3、6及び11、幹細胞因子、幹細胞リガンド、FLT−3リガンド、及びトロンボポエチンを含む群から選択される成長因子を含み、成長因子は、HPCの維持、増殖及び/又は分化を促進して造血起源の分化細胞を産生する、請求項15に記載の方法。
- 培地は、接種間質細胞を含み、及び/又は間質細胞馴化培地である、請求項16に記載の方法。
- HPCは、HPC及び/又はHSCの増殖及び/又は分化前に6〜8週間培養される、請求項1〜17のいずれか一項に記載の方法。
- HSCは、分画されていない骨髄、臍帯、末梢血、肝臓、胸腺、リンパ及び脾臓を含む群から選択される血液産物から得られたものである、請求項1〜18のいずれか一項に記載の方法。
- 培養HSC及び/又はHPCのインビトロでの生存を延長するための培地であって、インターロイキン3、6及び11、幹細胞因子、幹細胞リガンド、FLT−3リガンド、及びトロンボポエチンを含む群から選択される造血成長因子と、HSC若しくはHPCの自己再生を増強し、及び/又はHSC若しくはHPCの分化を阻害する少なくとも1種の薬剤と、を含む培地。
- 薬剤は、フィコリン−1、フィコリン−2、フィコリン−3及びその断片若しくは機能的等価物から選択される、請求項20に記載の培地。
- フィコリン−1、フィコリン−2、フィコリン−3又はその断片若しくは機能的等価物は約50ng/ml〜200ng/mlの濃度で存在する、請求項21に記載の培地。
- 少なくとも1種の薬剤はフィコリン−1又はその断片若しくは機能的等価物である、請求項22に記載の培地。
- 請求項1〜19のいずれか一項に記載の方法に従って培養された、HSC及び/又はHPCに由来する細胞の集団。
- 請求項20〜23のいずれか一項に記載の培地を用いて培養された、HSC及び/又はHPCに由来する細胞の集団。
- 請求項20〜23のいずれか一項に記載の培養培地を用い、請求項1〜19のいずれか一項に記載の方法に従って培養された、HSC及び/又はHPCに由来する細胞の集団。
- 細胞は、増殖したHSC及び/又はHPC細胞である、請求項24〜26のいずれか一項に記載のHSC及び/又はHPCに由来する細胞の集団。
- 細胞は、CD34+細胞、CD34+CD133+細胞及びCD34+CD38−細胞である、請求項24〜26のいずれか一項に記載のHSC及び/又はHPCに由来する細胞の集団。
- 細胞は、必要とする対象における臨床的造血幹細胞移植又は造血機能増強のために処方可能である、請求項24〜28のいずれか一項に記載の細胞の集団。
- 対象はヒトである、請求項29に記載の細胞の集団。
- 造血機能の欠如に関連する状態の治療方法であって、治療が必要な対象に治療有効量の請求項24〜28のいずれか一項に記載の細胞の集団を投与するステップを含む方法。
- 対象は哺乳動物である、請求項31に記載の方法。
- 哺乳動物はヒトである、請求項32に記載の方法。
- 実施例及び/又は図面のいずれかを参照して実質的に本明細書に記載されている、請求項1に記載の方法。
- 実施例及び/又は図面のいずれかを参照して実質的に本明細書に記載されている、請求項20に記載の培地。
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