JP2014172893A - Nrf2活性化剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 下記一般式(1)〔式中、Rは水素原子又はメチル基を示す。〕で示されるメトキシカルコンを有効成分とするNrf2活性化剤。
【選択図】なし
Description
1)下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とするNrf2活性化剤。
2)下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とするグルタチオン産生促進剤。
3)下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とする酸化ストレス低減剤。
メチルヘスペリジンの加水分解物には、以下に示すフラバノン型化合物(A)とカルコン型化合物(B)が含まれることが知られている(崎浴、日本化學雑誌、79(6)、736−740(1958))。カルコン型化合物(B)は、本発明の一般式(1)で示されるメトキシカルコンを包含することから、本発明において用いられるメチルヘスペリジンの加水分解物は、カルコン型化合物(B)を多く含むものが好ましい。
「グルタチオン産生の促進」とは、生体内のグルタチオン産生を促進することを意味する。グルタチオンは、生体内でNADPやNADなどを介して、生体の酸化−還元反系に関与しエネルギー産生に寄与し、また、その分子内にチオール基を有することから、自ら酸化されることにより、生体内に及ぼされる酸化ストレスから生体を保護する働きを有する。更に、グルタチオンは、生体内における各種抱合解毒反応に関与する酵素活性を高め、優れた解毒作用を発揮する。したがって、グルタチオン産生促進は、細胞の増殖、代謝、修復などの機能の活性化、酸化ストレス又は異物侵入により起因して引き起こされる疾患の予防、治療又は改善を図ることができる。
「酸化ストレスの低減」とは、生体内に発生するフリーラジカルや活性酸素等の活性酸素種を低減し、タンパク、脂質、DNA等の過酸化物量を低減することを意味する。 タバコや加齢によって発生する活性酸素種は、細胞・組織障害、炎症などを引き起こし、各種疾患の悪化や皮膚老化等を招く。酸化ストレスを低減することにより、皮膚老化(しみ、シワ、たるみ等)、糖尿病・動脈硬化等の酸化ストレス関連疾患の予防、治療又は改善を図ることができる。
また、当該製剤には既知の薬効成分を適宜配合することもできる。斯かる成分としては、例えば、ビタミンC、Eなどビタミン類、アミノ酸やペプチド及びその誘導体、核酸及びその誘導体、糖類及びその誘導体、その他、カロチノイド、大豆イソフラボン、カテキン類、クロロゲン酸等の抗酸化剤等が挙げられる。
食品中における有効成分の含有量は、その使用形態により異なるが、メトキシカルコンとして、通常好ましくは0.0001質量%以上、より好ましくは0.001質量%以上である。そして好ましくは50質量%以下、より好ましくは10質量%以下である。また好ましくは0.0001〜50質量%であり、より好ましくは0.001〜10質量%である。
<1>下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とするNrf2活性化剤。
<2>下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とするグルタチオン産生促進剤。
<3>下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とする酸化ストレス低減剤。
<4>Nrf2活性化剤を製造するための、下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンの使用。
<5>グルタチオン産生促進剤を製造するための、下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンの使用。
<6>酸化ストレス低減剤を製造するための、下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンの使用。
<8>Nrf2活性化に使用するための、下記一般式(1)で示されるメトキシカルコン。
<9>グルタチオン産生促進に使用するための、下記一般式(1)で示されるメトキシカルコン。
<10>酸化ストレス低減に使用するための、下記一般式(1)で示されるメトキシカルコン。
<11>上記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを、ヒト若しくは動物に投与するNrf2活性化方法。
<12>上記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを、ヒト若しくは動物に投与するグルタチオン産生促進方法。
<13>上記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを、ヒト若しくは動物に投与する酸化ストレス低減方法。
<14><1>〜<13>において、メトキシカルコンは、メチルヘスペリジン加水分解物である。
<15><8>〜<10>において、使用は非治療的使用である。
<16><11>〜<13>において、方法は非治療的方法である。
メチルヘスペリジン加水分解物及びメトキシカルコンの調製
(i)メチルヘスペリジン加水分解物の調製
メチルヘスペリジン(MHES)(アルプス薬品工業社製)5.0gを50%EtOH250mLに溶解させ、濃塩酸15mLを加え、16時間、加熱還流した。冷却後、水酸化ナトリウム水溶液で中和した。エバポレーターでエタノールを留去後、酢酸エチルで抽出し、洗浄、乾燥、ろ過、濃縮を経て、粗生成物(MHES加水分解物)を得た。
(ii)4'−ヒドロキシ−3,4,2',6'−テトラメトキシカルコン及び4',6'−ジヒドロキシ−3,4,2'−トリメトキシカルコンの調製
(i)で得られたMHES加水分解物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン−酢酸エチル−メタノール)で分画した。更に、目的の画分を再結晶し、4'−ヒドロキシ−3,4,2',6'−テトラメトキシカルコン(化合物1)156mg、及び4',6'−ジヒドロキシ−3,4,2'−トリメトキシカルコン(化合物2)112mgを単離した。
2',4',6'−トリヒドロキシアセトフェノン・一水和物2.0gをTHF50mLに溶解させ、0℃に冷却した。そこにジイソプロピルエチルアミン19mL及びクロロメチルメチルエーテル3.3mLを加え、室温で9.5時間攪拌した。再び冷却後、水を加え、有機層を酢酸エチルで抽出し、洗浄、ろ過、濃縮を経て、粗生成物を得た。これをシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン−酢酸エチル)で精製し、2'−ヒドロキシ−4',6'−ビスメトキシメトキシアセトフェノン1.7gを得た。
上記で得た2'−ヒドロキシ−4',6'−ビスメトキシメトキシアセトフェノン1.1gをメタノール20mLで溶解させ、それにベラトルアルデヒド728mg及び水酸化カリウム2.9gを2mLの水に溶かしたものを加え、室温で55時間攪拌した。その後塩酸で中和し、酢酸エチルで抽出、洗浄、乾燥し、粗生成物を得た。これをシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン−酢酸エチル)で精製し、6'−ヒドロキシ−3,4−ジメトキシ−2',4'−ビスメトキシメトキシカルコン1.1gを得た。
この6'−ヒドロキシ−3,4−ジメトキシ−2',4'−ビスメトキシメトキシカルコン1.1gをメタノール60mLに溶解させ、1M塩酸30mLを加え、50分間、加熱還流した。冷却後、水を加えて希釈し、酢酸エチルで抽出した。有機層を洗浄、乾燥させ、粗生成物を得た。これをシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン−酢酸エチル)で精製し、2',4',6'−トリヒドロキシ−3,4−ジメトキシカルコン(比較化合物1)585mgを得た。
(iv)5,7−ジヒドロキシ−3',4'−ジメトキシフラバノン及び7−ヒドロキシ−5,3',4'−トリメトキシフラバノンの調製
(i)で得られたメチルヘスペリジン加水分解物をシリカゲルカラムクロマトグラフィー(ヘキサン−酢酸エチル−メタノール)で分画した。更に、目的の画分を再結晶し、5,7−ジヒドロキシ−3',4'−ジメトキシフラバノン(比較化合物2)865mg、及び7−ヒドロキシ−5,3',4'−トリメトキシフラバノン(比較化合物3)476mgを単離した。
(1)方法
1)プラスミド作製
ヒトにおいてARE配列として機能検証のされている配列(GCLC: TCCCCGTGACTCAGCGCTTTG(配列番号1)、NQO1: GATTCTGCTGAGTCACTGTGA(配列番号2))をpGL3−promoter vector(Promega)に組み込んだプラスミドを以下のように作製した。
NheIおよびXhoI認識サイトを末端に付加し、リンカーを入れた3×AREタンデムリピート配列のオリゴを設計し合成した。アニーリング後、あらかじめNheIおよびXhoIで処理したpGL3−promoter vectorとライゲーションし、大腸菌(ECOSTM Competent E. coli DH5α)に形質転換した。アンピシリン選択培地のコロニーからプラスミドを抽出し、配列を確認した。
CTAGCTCCCCGTGACTCAGCGCTTTGCCCTCCCCGTGACTCAGCGCTTTGCCCTCCCCGTGACTCAGCGCTTTGC(配列番号3)
GCLC 3xARE R
TCGAGCAAAGCGCTGAGTCACGGGGAGGGCAAAGCGCTGAGTCACGGGGAGGGCAAAGCGCTGAGTCACGGGGAG(配列番号4)
NQO1 3xARE F
CTAGCCAGTCACAGTGACTCAGCAGAATCTCCCCAGTCACAGTGACTCAGCAGAATCTCCCCAGTCACAGTGACTCAGCAGAATCTC(配列番号5)
NQO1 3xARE R
TCGAGAGATTCTGCTGAGTCACTGTGACTGGGGAGATTCTGCTGAGTCACTGTGACTGGGGAGATTCTGCTGAGTCACTGTGACTGG(配列番号6)
正常ヒト新生児包皮表皮角化細胞(NHEK)(Invitrogen)を24wellプレートに播種し、サブコンフルエントになったところでARE−Lucプラスミドおよび内部標準としてphRL−TK(Promega)をSuperFect Transfection Reagent(QIAGEN)にてトランスフェクションした。その後、MHES加水分解物を最終濃度が3.3,6.6,16.5μg/ml(約10,20,50μM)で処理し、16時間後にDual−Luciferase Reporter Assay System(Promega)を用いてルシフェラーゼ活性を測定した。ARE−Luc活性(ホタルルシフェラーゼ活性)はphRL−TK活性(ウミシイタケルシフェラーゼ活性)によって補正した。
MHES加水分解物濃度依存的なGCLC−Luc、NQO1−Lucの活性上昇が認められた(図1)。
(1)方法
正常ヒト新生児包皮表皮角化細胞(NHEK)(Invitrogen)を10 cmディッシュに播種し、サブコンフルエントになったところで、MHES加水分解物を最終濃度16.5μg/ml(約50μM)で16時間処理した。細胞をPBS wash後、Nuclear Extract Kit (Active Motif)を用いて、細胞質画分と核画分に分けた。核タンパク10μgをウエスタンブロッティングに供した。一次抗体はanti−Nrf2(Santa Cruz:sc−722)、anti−Histon H1(Santa Cruz:sc−10806)を、二次抗体はAnti Rabbit IgG,HRP Linked(GEヘルスケア)を用いた。
(2)結果
MHES加水分解物処理により核内NRF2量の増加が認められた(図2)。
(1)方法
正常ヒト新生児包皮表皮角化細胞(NHEK)(Invitrogen)を12wellプレートに播種し、サブコンフルエントになったところでNrf2 siRNA(Santa Cruz:sc−37030)もしくはControl siRNA(Santa Cruz:sc−37007)をHiPerFect Transfection Reagent (QIAGEN)にてトランスフェクションした。翌日に、MHES加水分解物を最終濃度16.5μg/ml(約50μM)で10時間処理した。細胞からRNAを抽出し、定量RT−PCRにて遺伝子発現量を解析した。
(2)結果
MHES加水分解物処理によりHMOX1(heme oxygenase(decycling) 1)、GCLC(glutamate−cysteine ligase,catalytic subunit)、NQO1(NAD(P)H dehydrogenase, quinone 1)などの抗酸化遺伝子発現が誘導された(図3)。また、MHES加水分解物による抗酸化遺伝子発現誘導作用はNrf2ノックダウンにより見られなくなった(図3)。このことからMHES加水分解物はNrf2を介して抗酸化遺伝子発現を亢進することが明らかとなった。
(1)方法
正常ヒト新生児包皮表皮角化細胞(NHEK)(Invitrogen)を12wellプレートに播種し、サブコンフルエントになったところで実験を行った。MHES加水分解物及び化合物1、化合物2、比較化合物1−3を最終濃度50μMとなるように処理し、8時間後に細胞を回収した。それぞれRNAを抽出し、定量RT−PCRに供した。
(2)結果
MHES加水分解物及び化合物1及び2に高いHMOX1、GCLC遺伝子発現誘導作用が認められた(図4)。
(1)方法
正常ヒト新生児包皮表皮角化細胞(NHEK)(Invitrogen)を12wellプレートに播種し、サブコンフルエントになったところで実験を行った。MHES加水分解物、化合物1、化合物2の他、Nrf2活性化作用を有する成分として公知(前記非特許文献5)の、スルフォラファン、クルクミン、レスベラトロール、カテキン、エピガロカテキンガレート(EGCG)、クロロゲン酸を最終濃度20μMとなるように処理し、8時間後に細胞を回収した。それぞれRNAを抽出し、定量RT−PCRに供した。
(2)結果
MHES加水分解物、化合物1、化合物2の抗酸化遺伝子発現誘導作用は、スルフォラファン、クルクミン、レスベラトロール等と同等以上の活性を示すことが明らかとなった(図5)。
(1)方法
正常ヒト新生児包皮表皮角化細胞(NHEK)(Invitrogen)を12wellプレートに播種し、サブコンフルエントになったところで実験を行った。
(実験1)MHES加水分解物を最終濃度16.5μg/ml(約50μM)で0,4,8,24時間処理した。
(実験2)MHES加水分解物を最終濃度16.5μg/ml(約50μM)で16時間処理後、UVB照射(20mJ/cm2)を行い、0,3,6時間後に細胞を回収した。
細胞をPBS洗浄後、5% MPA (Metaphosphoric acid)を添加し、凍結融解操作により細胞を壊した。1.5 mlチューブに回収し遠心操作により除タンパクを行い、上清をGSH測定に用いた。ペレットはRIPAで再懸濁し、タンパク定量を行い、GSHの補正値に用いた。グルタチオン測定キット(JaICA)を用いて総グルタチオン(tGSH =GSH+GSSG)を定量した。
(2)結果
MHES加水分解物処理後、時間依存的なグルタチオン量の増加が認められた(図6(A))。UVB照射により細胞内グルタチオン量は低下するが、あらかじめMHES加水分解物処理をしておくことで細胞内グルタチオン量を維持できることが明らかとなった(図6(B))。
(1)方法
正常ヒト新生児包皮表皮角化細胞(NHEK)(Invitrogen)をBiocoat Poly−D−Lysine 96well Black/Clear plateに播種し、サブコンフルエントになったところで実験を行った。MHES加水分解物を最終濃度16.5μg/ml(=約50μM)で16時間処理した。H2DCFDA(2’,7’−dichlorodihydbrofluorescein diacetate)(Invitrogen)を最終濃度10μMに調製したHBSS(Hank’s Balanced salt solution)(Invitrogen)に置換し、37℃、20分処理した。
(実験1)H2DCFDA処理後、UVB(0,20,60mJ/cm2)照射を行い、15分後に蛍光マイクロプレートリーダーにより蛍光強度を測定した。
(実験2)H2DCFDA処理後、30%過酸化水素水(Sigma)をH2O2最終濃度が0,100,200,500μMとなるように処理し、30分後に蛍光マイクロプレートリーダーにて蛍光強度を測定した。
(2)結果
UVB照射により細胞内活性酸素量は増加した(図7(A))。MHES加水分解物をあらかじめ処理しておくことによりUVB誘導の細胞内活性酸素量は低減した(図7(B))。また、MHES加水分解物はH2O2処理細胞における細胞内活性酸素量も低減させた(図7(C))。以上のことから、MHES加水分解物は酸化ストレス低減作用を有することが明らかとなった。
Claims (4)
- 下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とするNrf2活性化剤。
- 下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とするグルタチオン産生促進剤。
- 下記一般式(1)で示されるメトキシカルコンを有効成分とする酸化ストレス低減剤。
- メトキシカルコンがメチルヘスペリジン加水分解物である請求項1記載のNrf2活性化剤、請求項2記載のグルタチオン産生促進剤又は請求項3記載の酸化ストレス低減剤。
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