JP2014001157A - ルテニウムに結合するペプチド - Google Patents
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Abstract
【課題】ルテニウムに結合するペプチドを提供する。
【解決手段】SQMMGHMGHGNMNHMNHGGKFDFHH（配列番号：０１）によって表されるアミノ酸配列からなるペプチドは、ルテニウムを認識する。
【選択図】なし
【解決手段】SQMMGHMGHGNMNHMNHGGKFDFHH（配列番号：０１）によって表されるアミノ酸配列からなるペプチドは、ルテニウムを認識する。
【選択図】なし
Description
本発明は、ルテニウムに結合するペプチドに関する。
今までにルテニウムに結合するペプチドは知られていない。
George et. al., "Effect of Surface Wettability on the Adsorption of Proteins and Detergents", Journal of the American Chemical Society, Vol. 120, pp 3464-3473 (1998)
本発明の目的は、ルテニウムに結合するペプチドを提供することである。
本発明は、ルテニウムに結合するペプチドであって、配列番号：０１によって表されるアミノ酸配列からなる。
本発明は、ルテニウムに結合するペプチドを提供する。
以下、本発明の実施形態が説明される。
本発明者は、SQMMGHMGHGNMNHMNHGGKFDFHH（配列番号：０１）によって表されるアミノ酸配列からなるペプチドは、ルテニウムを認識することを見出した。本発明は、その知見に基づいて提供される。
配列番号：０１により表されるアミノ酸からなるペプチドは、ＣｕｅＯの３８２番目のアミノ酸から４０６番目のアミノ酸のアミノ酸配列に由来する。用語「ＣｕｅＯ」は、大腸菌Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ Ｋ−１２株のマルチ銅酸化酵素を意味する。
（実施例）
以下の実験例は、本発明をより詳細に説明する。
以下の実験例は、本発明をより詳細に説明する。
（実験例１）
実験例１は、実施例１および比較例１から構成される。
実験例１は、実施例１および比較例１から構成される。
実験例１では、プルダウン法が実施された。実施例１によるプルダウン法が、以下、簡単に説明される。
実験例１によるプルダウン法では、アビジン、ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド、およびルテニウムナノ粒子の３成分複合体が水溶液中で形成される。３成分複合体を含有する水溶液が遠心分離に供された後、３成分複合体は上清として回収されない。言い換えれば、３成分複合体は沈殿物（残渣）として水溶液中に残る。その後、３成分複合体が熱により分解され、そして水溶液が電気泳動に供される。電気泳動の後、アビジンのサブユニットモノマーのバンドが観察される。
一方、アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体は、ルテニウムナノ粒子と結合しない。２成分複合体を含有する水溶液が遠心分離に供された後、２成分複合体は上清として除去される。水溶液が加熱された後、水溶液が電気泳動に供される。しかし、アビジンは上清に含まれる１つの化学成分として既に除去されているので、アビジンのサブユニットモノマーのバンドは観察されない。
実験例１では、以下の溶液が調製された。
ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド溶液
ビオチン−ＰＥＧ１２溶液
Ｔｒｉｓ塩酸緩衝液
アビジン水溶液
アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体水溶液（図１参照）
アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの複合体水溶液（図２参照）
ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液
ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレートを含有する緩衝液
ドデシル硫酸ナトリウム溶液
グリセロール水溶液
変性ポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動用の水溶液
ルテニウムナノ粒子分散液
これらの試薬を調製する詳細な方法が以下、記述される。
ビオチン−ＰＥＧ１２溶液
Ｔｒｉｓ塩酸緩衝液
アビジン水溶液
アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体水溶液（図１参照）
アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの複合体水溶液（図２参照）
ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液
ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレートを含有する緩衝液
ドデシル硫酸ナトリウム溶液
グリセロール水溶液
変性ポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動用の水溶液
ルテニウムナノ粒子分散液
これらの試薬を調製する詳細な方法が以下、記述される。
（ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド溶液の調製）
本発明者は、下記の式（Ｉ）によって表される化合物（以下、「ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド」という）の合成を、シグマアルドリッチジャパン（株）に依頼した。固相合成法がビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの合成のために用いられた。
（化１）
ビオチン−ＰＥＧ１２−ＳＱＭＭＧＨＭＧＨＧＮＭＮＨＭＮＨＧＧＫＦＤＦＨＨ（配列番号：０１） (I)
シグマアルドリッチジャパン（株）によって調製されたビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドは、９６．２％の純度を有していた。
本発明者は、下記の式（Ｉ）によって表される化合物（以下、「ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド」という）の合成を、シグマアルドリッチジャパン（株）に依頼した。固相合成法がビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの合成のために用いられた。
（化１）
ビオチン−ＰＥＧ１２−ＳＱＭＭＧＨＭＧＨＧＮＭＮＨＭＮＨＧＧＫＦＤＦＨＨ（配列番号：０１） (I)
シグマアルドリッチジャパン（株）によって調製されたビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドは、９６．２％の純度を有していた。
式（Ｉ）から明らかなように、ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドでは、配列番号：０１によって表されるアミノ酸からなるペプチドのＮ末端が、ビオチン−ポリエチレングリコールによって化学的に修飾されている。
ビオチン−ポリエチレングリコールでペプチドのＮ末端側を修飾させる方法は公知である。一例として、ＥＺ−Ｌｉｎｋ ＮＨＳ−ＰＥＧ１２−ビオチン（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社より入手可能）が用いられ得る。
ＥＺ−Ｌｉｎｋ ＮＨＳ−ＰＥＧ１２−ビオチンは、以下の（ＩＩ）に示される化学構造を有する。
「ＰＥＧ」とは、ポリエチレングリコールを意味する。より詳細には、以下の化学式（ＩＩＩ）により表される。
−（−ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ）n− （ＩＩＩ）
ここで、ｎは自然数である。
ここで、ｎは自然数である。
ｎの値は１以上２０以下であることが望ましい。「ＰＥＧ１２」とは、ｎ＝１２であるＰＥＧを意味する。
ポリエチレングリコールを介して結合された２つの分子間での非特異的な相互作用は、ポリエチレングリコールによって抑制されると考えられる。言い換えれば、このようなポリエチレングリコールは、ポリエチレングリコールの両端に化学的に結合された２つの分子間での非特異的な相互作用を抑制すると考えられる。なぜなら、化学式（ＩＩ）からも明らかなように、２つの分子に挟まれるポリエチレングリコールにより、２つの生体分子は互いに遠くに位置するためである。詳細について必要ならば、非特許文献１を参照せよ。
従って、式（Ｉ）において、ビオチンおよび配列番号：０１により表されるアミノ酸配列からなるペプチドは、ＰＥＧ１２により、相互作用しない。
（ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド溶液の調製）
シグマアルドリッチジャパン（株）から入手したビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドが、超純水を用いて溶解され、０．１ｍＭの濃度を有するビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド溶液を調製した。調製されたビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド溶液は、−３０℃の温度下で保管された。
シグマアルドリッチジャパン（株）から入手したビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドが、超純水を用いて溶解され、０．１ｍＭの濃度を有するビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド溶液を調製した。調製されたビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド溶液は、−３０℃の温度下で保管された。
（ビオチン−ＰＥＧ１２溶液の調製）
ＥＺ−Ｌｉｎｋ ＮＨＳ−ＰＥＧ１２−Ｂｉｏｔｉｎ （Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）が、ジメチルスルホキシドを用いて溶解され、１０ｍＭの濃度を有するＮＨＳ−ＰＥＧ１２−Ｂｉｏｔｉｎ溶液を調製した。
ＥＺ−Ｌｉｎｋ ＮＨＳ−ＰＥＧ１２−Ｂｉｏｔｉｎ （Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）が、ジメチルスルホキシドを用いて溶解され、１０ｍＭの濃度を有するＮＨＳ−ＰＥＧ１２−Ｂｉｏｔｉｎ溶液を調製した。
次に、表１に示される試薬が混合された。混合液は２５℃の温度下で１時間放置された。
（Ｔｒｉｓ塩酸緩衝液の調製）
塩酸がＴｒｉｓ緩衝液に添加され、表２に示される４種類のＴｒｉｓ塩酸緩衝液を調製した。
塩酸がＴｒｉｓ緩衝液に添加され、表２に示される４種類のＴｒｉｓ塩酸緩衝液を調製した。
アビジン（商品名：ＮｅｕｔｒＡｖｉｄｉｎ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製、１０ミリグラム）が、超純水で溶解されて、１０ミリグラム／ミリリットルのアビジン水溶液を調製した。図１において、アビジンは、参照符号１０１を有する。
（アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体水溶液の調製）
下記の表３に示す試薬が混合された。図１において、ビオチン−ＰＥＧ１２は、参照符号１０２を有する。混合物は、２３℃の温度下で２時間放置された。
下記の表３に示す試薬が混合された。図１において、ビオチン−ＰＥＧ１２は、参照符号１０２を有する。混合物は、２３℃の温度下で２時間放置された。
１０ｍＭの濃度を有するＴｒｉｓ塩酸緩衝液（ｐＨ：８、４５０マイクロリットル）が、濃縮液に混合された。濃縮液は、再度、上記の条件で遠心分離に供され、約５０マイクロリットルの濃縮液を再度、得た。これがもう一度繰り返された。
濃縮液は、１０ｍＭの濃度を有するＴｒｉｓ塩酸緩衝液（ｐＨ：８）で希釈され、アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体を含有する水溶液を得た。この水溶液は、５００マイクロリットルの容量を有していた。図１において、アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体は、参照符号１０３を有する。
（アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの複合体の調製）
表３に示される試薬に代えて、下記の表４に示す試薬が混合されたこと以外は、アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の複合体の調製と同様の手順が実行され、アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの複合体を含有する水溶液を調製した。
表３に示される試薬に代えて、下記の表４に示す試薬が混合されたこと以外は、アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の複合体の調製と同様の手順が実行され、アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの複合体を含有する水溶液を調製した。
（ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液の調製）
１０重量％の濃度を有するポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート（ＡＮＡＰＯＥ―２０；Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）の水溶液が、超純水で希釈され、１重量％の濃度を有するポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液が調製された。同様に、０．１重量％の濃度を有するポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液も調製された。ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレートは、界面活性剤として用いられ得る。
１０重量％の濃度を有するポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート（ＡＮＡＰＯＥ―２０；Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）の水溶液が、超純水で希釈され、１重量％の濃度を有するポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液が調製された。同様に、０．１重量％の濃度を有するポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液も調製された。ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレートは、界面活性剤として用いられ得る。
（ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレートを含有する緩衝液の調製）
表５に示される２種類の緩衝液が調製された。
表５に示される２種類の緩衝液が調製された。
ドデシル硫酸ナトリウム（和光純薬工業社製）が、超純水で溶解され、１０重量％の濃度を有するドデシル硫酸ナトリウム水溶液を調製した。
（グリセロール水溶液の調製）
グリセロール（ライフテクノロジーズ社製）が、超純水で溶解され、５０重量％の濃度を有するグリセロール水溶液を調製した。
グリセロール（ライフテクノロジーズ社製）が、超純水で溶解され、５０重量％の濃度を有するグリセロール水溶液を調製した。
（変性ポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動用の水溶液の調製）
下記の表６に示す試薬が混合され、水溶液を得た。さらにおよそ１ミリグラムのブロモフェノールブルー（粉末）が水溶液に添加された。その後、水溶液はよく攪拌された。このようにして、変性ポリアクリルアミド電気泳動用の水溶液が調製された。
下記の表６に示す試薬が混合され、水溶液を得た。さらにおよそ１ミリグラムのブロモフェノールブルー（粉末）が水溶液に添加された。その後、水溶液はよく攪拌された。このようにして、変性ポリアクリルアミド電気泳動用の水溶液が調製された。
２〜６ナノメートルの直径を有するルテニウムナノ粒子の分散液（ルネッサンス・エナジー・リサーチ社製、０．５ミリリットル）に超純水（０．５ミリリットル）が混合された。
その後、混合物は遠心分離型限外ろ過ユニット（Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ−０．５、ＭＷＣＯ： ３０，０００；メルク社製）を用いて濾過され、残渣を得た。遠心分離は、１３，０００ｘｇのｒｐｍで、２３℃の温度下で、１０分間行われた。このようにして、混合物は濃縮され、約５０マイクロリットルの濃縮液を得た。
次いで、０．１重量％ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液（０．３ミリリットル）が濃縮液に添加された。その後、濃縮液は、上記の条件で、濾過に供された。このようにして、５０マイクロリットルの容量を有する濃縮液を得た。
もう一度、０．１重量％ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液（０．３ミリリットル）が濃縮液に添加された。その後、濃縮液は、上記の条件で、再度、濾過に供された。このようにして、５０マイクロリットルの容量を有する濃縮液が再度、得られた。
濃縮液に、０．１重量％ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレート水溶液が添加され、０．５ミリリットルの容量を有するルテニウムナノ粒子分散液を得た。
（実験例１）
下記の表７に示される試薬が混合された。混合物は、２５℃の温度下で１０分間放置された。
下記の表７に示される試薬が混合された。混合物は、２５℃の温度下で１０分間放置された。
混合物は、２９０，０００ｘｇのｒｐｍで、４℃の温度下で、３０分間、遠心分離に供された。その後、上清が除去され、未反応のビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドを除去した。このようにして、混合物は濃縮され、１０マイクロリットルの容量を有する濃縮液（残渣）を得た。
次いで、０．１重量％ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレートを含有するＴｒｉｓ塩酸緩衝液（ｐＨ：８、１０ｍＭ、２００マイクロリットル）が濃縮液に添加された。その後、濃縮液は、上記の条件で、再度、遠心分離に供され、上清が除去された。このようにして、１０マイクロリットルの容量を有する濃縮液（残渣）が得た。
もう一度、０．１重量％ポリオキシエチレン（２０)ソルビタンモノラウレートを含有するＴｒｉｓ塩酸緩衝液（ｐＨ：８、１０ｍＭ、２００マイクロリットル）が濃縮液に添加された。その後、濃縮液は、上記の条件で、再度、遠心分離に供され、上清が除去された。このようにして、１０マイクロリットルの容量を有する濃縮液（残渣）が再度、得られた。この濃縮液は、茶褐色を有していた。ルテニウムナノ粒子分散液は茶褐色を有するので、得られた濃縮液は、ルテニウムナノ粒子を含有していたことが肉眼で確認された。
変性ポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動用の水溶液が、濃縮されたルテニウムナノ粒子分散液に添加された。添加後の水溶液の容量は２０マイクロリットルであった。
その後、超音波が、超音波洗浄機（ＵＳＫ−１Ａ，アズワン社製、設定：Ｈｉｇｈ）を用いて、水溶液に印加された。
濃縮されたルテニウムナノ粒子分散液は、９８℃の温度下で、１０分間、加熱され、アビジン分子をアビジンサブユニットモノマーに分解した。
濃縮されたルテニウムナノ粒子分散液は、９８℃の温度下で、１０分間、加熱され、アビジン分子をアビジンサブユニットモノマーに分解した。
加熱後、濃縮されたルテニウムナノ粒子分散液は、１０，０００ｘｇのｒｐｍで１分間、遠心分離に供された。このようにして実施例１によるサンプル溶液が得られた。
（比較例１）
ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドに代えて、ビオチン−ＰＥＧ１２が用いられたこと以外を除き、実施例１と同様の手順が行われた。このようにして、比較例１によるサンプル溶液が得られた。
ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドに代えて、ビオチン−ＰＥＧ１２が用いられたこと以外を除き、実施例１と同様の手順が行われた。このようにして、比較例１によるサンプル溶液が得られた。
（実験例１の電気泳動）
実施例１および比較例１によるこれらの２種類のサンプル溶液が、電気泳動に供された。以下、電気泳動の詳細が説明される。
実施例１および比較例１によるこれらの２種類のサンプル溶液が、電気泳動に供された。以下、電気泳動の詳細が説明される。
ポリアクリルアミドゲル（プレキャストゲル；バイオ・ラッド ラボラトリーズ社製、商品名：１２％ミニプロティアン ＴＧＸ）が電気泳動槽にセットされた。電気泳動バッファーとして、プレミックスバッファー（バイオ・ラッド ラボラトリーズ社製、商品名：プレミックスバッファー １０ｘＴｒｉｓ／グリシン／ＳＤＳ）が超純水で１０倍に希釈された。この希釈液が電気泳動槽に注がれた。
実施例１および比較例１による２つのサンプル溶液（各１５マイクロリットル）が、ポリアクリルアミドゲルの上部に設けられたウェルに添加された。
ベンチマーク タンパク質ラダー（ライフテクノロジーズ社製、５マイクロリットル）が、分子量マーカーとして、ポリアクリルアミドゲルの上部に設けられたウェルに添加された。
一定電圧１５０ボルトの電圧下で、電気泳動が行われた。
水溶液に含まれるブロモフェノールブルーがポリアクリルアミドゲルの下端付近まで泳動されたら泳動を停止した。その後、ＣＢＢ染色キット（ＣＢＢ Ｒ−２５０ステイン＆デステインキット；バイオ・ラッド ラボラトリーズ社製）を用いて、ＣＢＢ染色が行われた。
染色されたポリアクリルアミドゲルの画像が、フラットベッドスキャナ（ＣａｎｏＳｃａｎ Ｄ２４００Ｕ；キャノン社製）で読み込まれた。読み込まれた画像に基づいて、画像処理ソフトウェア ＩｍａｇｅＪ（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ製）を用いて、アビジンのサブユニットモノマーのバンドが定量された。
図４は、電気泳動の結果を示す。
図４に示されるように、実施例１では、明瞭なバンドが観察された。一方、比較例１では、そのような明瞭なバンドが観察されなかった。
画像処理ソフトウェアによれば、実施例１によるバンドは、比較例１によるバンドよりも１．５倍のアビジンのサブユニットモノマーを含有していた。
図４に示される電気泳動の結果、すなわち、プルダウン法の結果から、ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドがルテニウムナノ粒子に結合して、凝集物（すなわち、沈殿物）を形成することが分かった。ＰＥＧ１２によってビオチンおよびペプチドが相互作用しないので、配列番号：０１によって表されるアミノ酸配列からなるペプチドはルテニウムに結合することが見出された。言い換えれば、配列番号：０１によって表されるアミノ酸配列からなるペプチドはルテニウムを認識することが見出された。
本発明は、ルテニウムに結合するペプチドを提供する。
１０１、１０４ アビジン
１０２ ビオチン−ＰＥＧ１２
１０３ アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体
１０５、１１０ ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド
１０６ アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの複合体
１０７ ルテニウムナノ粒子
１０８ ルテニウムナノ粒子、アビジン、およびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの３成 分複合体
１０９ アビジンのサブユニットモノマー
１０２ ビオチン−ＰＥＧ１２
１０３ アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２の２成分複合体
１０５、１１０ ビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチド
１０６ アビジンおよびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの複合体
１０７ ルテニウムナノ粒子
１０８ ルテニウムナノ粒子、アビジン、およびビオチン−ＰＥＧ１２−ペプチドの３成 分複合体
１０９ アビジンのサブユニットモノマー
Claims (2)
- 配列番号：０１によって表されるアミノ酸配列からなる、ルテニウムに結合するペプチド。
- ペプチドをルテニウムに結合させる方法であって、以下の工程を具備する：
ルテニウムを、配列番号：０１によって表されるアミノ酸配列からなるペプチドを含む溶液に混合し、配列番号：０１によって表されるアミノ酸配列からなるペプチドをルテニウムに結合させる工程。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2012136609A JP2014001157A (ja) | 2012-06-18 | 2012-06-18 | ルテニウムに結合するペプチド |
Applications Claiming Priority (1)
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|---|---|
| JP2014001157A true JP2014001157A (ja) | 2014-01-09 |
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ID=50034696
Family Applications (1)
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| JP2012136609A Pending JP2014001157A (ja) | 2012-06-18 | 2012-06-18 | ルテニウムに結合するペプチド |
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-
2012
- 2012-06-18 JP JP2012136609A patent/JP2014001157A/ja active Pending
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