JP2013013375A - 電極上における核酸の増幅反応を伴う電気化学的検出方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】検出対象となる標的核酸の相補鎖の部分配列を電極上に固定し、電極上で増幅反応を行わせ、酸化還元活性を有する物質の存在のもと増副核酸を電気化学的に検出する。
【選択図】なし
Description
すなわち、本願は以下の(1)から(7)に記載の態様を包含する:
(1)試料中の核酸を定量しおよび/または解析するための方法であって、(a)試料中の核酸あるいはその相補鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸を電極上に固定し、(b)固定化した核酸をプライマーとして利用した増幅反応を行うことにより、電極上で検出対象とする核酸の一部、もしくは全部を増幅させ、二本鎖核酸として電極上に配置し、(c)電気化学応答の測定を行う、工程を含んでなる方法。
(2)(1)の工程(b)で電極上に配置した二本鎖核酸に、酸化還元活性を有する物質を結合させる工程を含む(1)に記載の方法。
(3)酸化還元活性を有する物質がフェロセン化ナフタレンジイミド(FND)であることを特徴とする(2)に記載の方法。
(4)酸化還元活性を有する物質がルテニウム錯体であることを特徴とする(2)に記載の方法。
(5)試料中の検出対象とする核酸がRNAであることを特徴とする(1)から(4)のいずれかに記載の方法。
(6)増幅反応に逆転写酵素を用いることを特徴とする(5)に記載の方法。
(7)試料中の核酸あるいはその相補鎖にストリンジェントな条件下でにハイブリダイズする核酸を固定した電極と、(1)に記載の工程(b)における増幅反応に必要な試薬を含む(1)から(6)のいずれかに記載の方法による核酸検出用キット。
Primer)を例示することができる。
電極ホルダーに金電極、電極マット、導電板をセットし測定ウェルを組み立てた(羽野製作所製)。CUTE 1MPR(フェムトサイエンス社製)を用いて0.5Torr、30sccm Air、出力70%で30秒のプラズマ照射を行った。5、50、100、200nMに調製した配列番号1に記載した合成DNA(Genet社製)を100mM NaCl、1mM 6−メルカプトヘキサノールになるように調整した溶液300μLをそれぞれ測定ウェルに加えて密閉し、37℃で2時間インキュベートし上述のDNAを固定化しプローブとした。なお、プローブ(配列番号1)の5’端の−SS−は、プローブを電極に固定するために付加したチオール結合を示すものであり、またプローブ(配列番号1)の5’端側に存在する8個の「t」は、プローブ中に含まれ、後述するTRC法に基づく増幅においてリバースプライマーとして機能する3’端の18塩基部分を電極から一定程度離間させるためのものである。このように、プローブは電極から一定程度離間させた方が好ましく、そのためには適当な塩基をプローブの、リバースプライマーとして機能する部分の5’側に付加すれば良いが、当該付加部分による非特異的な結合を抑制するためには、測定対象に含まれていない塩基(又は塩基配列)を選択することが好ましく、またその塩基数は5から15mer程度、好ましくは8から10mer程度である。
アスピレータで溶液を除去後、測定ウェルをRNase
Free水300μLで2回洗浄した。次いで、300μLの0.1M 酢酸カリウム緩衝液(pH5.5)で洗浄した後、20μMのFNDを含む0.1Mの酢酸カリウム緩衝液(Sato等,Molecules,14,693−707(2005))を添加し、室温で10分間静置し電気化学測定を行った。電気化学測定には参照電極としてAg/AgCl、対極にPt電極を用いて、Init E(V)=0、Final E(V)=0.6、Incr E(V)=0.01、Amplitude(V)=0.05、Frequency(HZ)=100、Quit Time(S)=3、Sensivity(A/V)=1e−5のパラメータでALS Electrochemical Analyzer(CH Instrument Inc.社製)を用いて矩形波ボルタンメトリー測定を行った。
核酸増幅反応は、TRC法(Ishiguro T et al. Anal. Biochem. 314::77−86, 2003)により実施した。また、核酸増幅反応には、市販の結核菌群検出試薬(東ソー社製)を用いた。すなわち、陽性酵素反応液として結核菌群rRNA検出試薬の基質試薬15μL、陰性標準液6μL、陽性標準液1.5μL(陰性酵素反応液の場合は陰性標準液に変更)に、別途調製したプライマー試薬15μL(300mM KCl、39% Dimethyl suloxide、3μM リバースプライマー(配列番号2)、3μM フォワードプライマー(配列番号3)、0.48μM シザープローブ(配列番号4))を混合し、実施例1にて調製した、プローブが固定された電極を有する測定ウェルに添加した後42℃に加温し、さらに42℃に加温しておいた酵素試薬7.5μLを素早く混和し以下の操作に用いた。
inhibitor(Novagen社製)を加えたRNase Free水300μlで2回洗浄した。アスピレータで溶液を除去した後、調製した陽性酵素反応溶液あるいは対照となる陰性酵素反応溶を10μLずつ加え、42℃で20分間インキュベートしTRC反応を進行させた。
反応終了後、反応液をアスピレータで除去した後、測定ウェルをPBS溶液300μLで2回洗浄した。次いで、実施例2と同様に、0.1M 酢酸カリウム緩衝液(pH5.5)300μLで洗浄した後、20μM FND溶液を含む酢酸カリウム緩衝液(pH5.5)300μLを加え、室温で10分間静置し電気化学測定を行った。電気化学測定には参照電極としてAg/AgCl、対極にPt電極を用いて、Init E(V)=0、Final E(V)=0.6、Incr E(V)=0.01、Amplitude(V)=0.05、Frequency(HZ)=100、Quit Time(S)=3、Sensivity(A/V)=1e−5パラメータでALS Electrochemical Analyzer(CH Instrument Inc.製)を用いて矩形波ボルタンメトリー測定を行った。得られた電流値と実施例2の電流値を比較し、電流増加率を比較した。電極への固定化に用いるDNA濃度を5nM、50nM、100nM、200nMに設定し、それぞれ3ないし4回試験を行った。陽性酵素反応および陰性酵素反応における電流増加の結果を表1に示した。表1の通り、固定化時に用いたDNA濃度50から200nMの各試験区において、陽性反応のみ電流が増加した。以上の結果から、電極上に固定化した核酸をプライマーとして利用することで、標的となる核酸が増幅され、さらに、電気化学的に検出できることが示された。
Claims (7)
- 試料中の核酸を定量しおよび/または解析するための方法であって、(a)試料中の核酸あるいはその相補鎖にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸を電極上に固定し、(b)固定化した核酸をプライマーとして利用した増幅反応を行うことにより、電極上で検出対象とする核酸の一部、もしくは全部を増幅させ、二本鎖核酸として電極上に配置し、(c)電気化学応答の測定を行う、工程を含んでなる方法。
- 請求項1の工程(b)で電極上に配置した二本鎖核酸に、酸化還元活性を有する物質を結合させる工程を含む請求項1に記載の方法。
- 酸化還元活性を有する物質がフェロセン化ナフタレンジイミド(FND)であることを特徴とする請求項2に記載の方法。
- 酸化還元活性を有する物質がルテニウム錯体であることを特徴とする請求項2に記載の方法。
- 試料中の検出対象する核酸がRNAであることを特徴とする請求項1から4のいずれかに記載の方法。
- 増幅反応に逆転写酵素を用いることを特徴とする請求項5に記載の方法。
- 試料中の核酸あるいはその相補鎖にストリンジェントな条件下でにハイブリダイズする核酸を固定した電極と、請求項1に記載の工程(b)における増幅反応に必要な試薬を含む請求項1から6のいずれかに記載の方法による核酸検出用キット。
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