JP2012523432A - 虚血再灌流に関係する浮腫を治療する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
この出願は2009年4月9日に出願された米国特許出願No. 61/168,089の利益を主張し、その開示は参照によりその全体が本書に援用される。
本書に開示される主題は、虚血再灌流に関連した浮腫を予防又は減少させるための方法及び組成物に関する。
℃=摂氏温度
AGP =アミノアルキルグルコサミニドリン酸塩
AMs =肺胞マクロファージ
ARDS =成人呼吸窮迫症候群
BAL =気管支肺胞洗浄
BMT =骨髄移植
β-gal =β-ガラクトシダーゼ
CO2 =二酸化炭素
dpi =1インチあたりのドット数
EBD =エバンスブルー染料
EDTA =エチレンジアミン四酢酸
EGTA =エチレングリコール四酢酸
FBS =ウシ胎仔血清
FiO2 =吸気中酸素濃度
Fluc =ホタルルシフェラーゼ
g =相対遠心力
Gy =グレイ
HCl =塩酸
HEPES = N-2-ヒドロキシエチルピペラジン-N'-2-エタンスルホン酸
HMVECs =ヒト肺微小血管内皮細胞
hr =時間
ICAM-1 =細胞間接着分子-1
IRI =虚血再灌流障害
LDH =乳酸脱水素酵素
LPS =リポ多糖類
MAPKs =マイトジェン活性化プロテインキナーゼ
μg =マイクログラム
μL =マイクロリットル
μm =ミクロン
μM =マイクロモル
mg =ミリグラム
min=分
mL =ミリリットル
NF-κB=核因子-κB
NHBD =心停止ドナー
nm =ナノメートル
O2 =酸素
PAMP =病原体関連分子パターン
PBS =リン酸緩衝生理食塩水
PEEP =呼気終末陽圧
PGN =ペプチドグリカン
PMSF =フッ化フェニルメタンスルホニル
RPMI =ロズウェルパーク記念研究所
SDS-PAGE =ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動
SIRS =全身性炎症反応症候群
TBS =トリス緩衝食塩水
TLR2 = Toll様受容体2
TLR4 = Toll様受容体4
TPCK = L-1-トシルアミド-2-フェニルエチルクロロメチルケトン
Tris=トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン
W/D =湿乾燥重量比
nは、1〜6の整数であり、
X1は酸素原子又はイオウ原子であり、
X2は酸素原子又はイオウ原子であり、
R1,R2及びR3は、それぞれ独立して、C2〜C16アシル基であり、ここでR1,R2及びR3のうち少なくとも1つはC2〜C7アシル基であり、
R4は、水素原子,ヒドロキシルアルキル基、−C(=O)NH2、及び−(CH2)mC(=O)OH(式中、mは0〜2の整数を表す。)からなる群より選択され、
R5,R6及びR7は、それぞれ独立して、C10〜C12アルキル基である、方法を提供する。
以下の用語は、当業者により良く理解されると信ずるが、以下の定義は本書で開示される主題の説明を円滑にするために示すものである。
が、これらに制限されない。
"Toll様受容体"又は"TLR"は、胚発生及び病原体関連分子パターン(PAMPs)の認識の両方における役割を含む、複数の役割を持つ。Sioudら, J. Mol. Biol., 364(5), 945-954 (2006); 並びにJanssens 及びBeyaert, Clin. Microbiol. Rev., 16(4), 637-646 (2003)を参照のこと。TLRは、その細胞外ドメイン、及びToll/IL1受容体(TIR)ドメインと呼ばれる保存領域を含む細胞質尾部に、反復(repeated)ロイシンリッチモチーフを含むI型膜貫通タンパク質である。少なくとも10のヒトTLRタンパク質が、Toll様受容体1-10として同定されている。TLRは、微生物又は有害な環境因子を感知することにより、病原体を襲うための早期の自然免疫における役割を果たす。これらの進化的に保存された受容体、ショウジョウバエのToll遺伝子の同族体(homologue)は、微生物病原体(すなわち、PAMPs)によって表される高度に保存された構造モチーフを認識し、さらに例えば二本鎖RNA、ヒアルロン酸の断片、フィブロネクチン及び他である有害物質又は組織損傷による組織の障害の生成物を感知する。PAMPsは、フラジェリン、細菌DNA及びウイルス性二本鎖RNAと同様、リポ多糖類(LPS)、ペプチドグリカン(PGN)及びリポペプチドのような、様々な細菌の細胞壁成分を含む。TLRは、病原性微生物の生成物に対し"自然免疫"応答を起こすことにより、ウイルス、細菌、寄生的病原体(parasitic agent)又は真菌のような病原性微生物から、及び組織損傷から哺乳動物を保護する。それらはさらに、細胞を破壊すると共に、二本鎖RNA又はTLRと相互作用しうる他のPAMPsを放出する有害な環境因子から動物を保護する。
IIIA.化学式(I)の化合物
幾つかの実施形態において、本書に開示される主題は、虚血再灌流に関係する浮腫を含む、浮腫を予防又は減少させる化合物の使用に関する。幾つかの実施形態において、この化合物は、単糖類類似体を含むリピドA模擬体である。幾つかの実施形態において、単糖類類似体はアミノ糖である。幾つかの実施形態において、アミノ糖はグルコサミンである。幾つかの実施形態において、この化合物は、アミノアルキルグルコサミニドリン酸塩(AGP)又はこれらの医薬的に許容された塩である。
ここで:
nは、1〜6の整数であり、
X1は酸素原子又はイオウ原子であり、
X2は酸素原子又はイオウ原子であり、
R1,R2及びR3は、それぞれ独立して、C2〜C16アシル基であり、
R4は、水素原子,ヒドロキシルアルキル基、−C(=O)NH2、及び−(CH2)mC(=O)OHからなる群より選択され、mは0〜2の整数を表し;及び
R5,R6及びR7は、それぞれ独立して、C10〜C12アルキル基である。
本書に開示される主題の化合物(例えば、化学式(I)の化合物)との関連で用いられる表現"医薬的に許容された塩"は、医薬的に許容されたカチオン性の塩を含む。表現"医薬的に許容されたカチオン性の塩"は、アルカリ金属塩(例えば、ナトリウム及びカリウム)、アルカリ土類金属塩(例えば、カルシウム及びマグネシウム)、アルミニウム塩、アンモニア塩、及びベンザチン(N,N'-ジベンジルエチレンジアミン),コリン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、エチレンジアミン、メグルミン(N−メチルグルカミン)、ベネタミン(N−ベンジルフェネチルアミン)、エタノールアミン、ジエチルアミン、ピペラジン、トリエタノールアミン(2−アミノ−2−ヒドロキシメチル−1,3−プロパンジオール)及びプロカインのような有機アミンの塩、のような塩を定義することを意図するがこれらに限らない。幾つかの実施形態において、本明細書で用いられる用語"医薬的に許容された塩"は、ヒトにおいて医薬的に許容された塩を表す。
幾つかの実施形態において、本書に開示される主題は、浮腫を治療する方法に関する。幾つかの実施形態において、本書に開示される主題は、組織内の浮腫を予防又は減少させる方法を提供し、この方法は、化学式(I)
nは、1〜6の整数であり;
X1は酸素原子又はイオウ原子であり;
X2は酸素原子又はイオウ原子であり;
R1,R2及びR3は、それぞれ独立して、C2〜C16アシル基であり;
R4は、水素原子,ヒドロキシルアルキル基、−C(=O)NH2、及び(CH2)mC(=O)OHからなる群より選択され、mは0〜2の整数であり;及び
R5,R6及びR7は、それぞれ独立して、C10〜C12アルキル基である。
幾つかの実施形態において、本書に開示される主題は、臓器又は組織移植の対象における虚血再灌流に関連する浮腫を予防又は減少させる方法を提供し、この方法は:移植用の臓器又は組織を準備し;その臓器又は組織を化学式(I)の化合物又はその医薬的に許容された塩と接触させ、それによって治療を受けた臓器又は組織を提供し;その移植を必要とする対象に治療を受けた臓器又は組織を移植することを含み、ここで、前記化合物で治療を受けていない臓器又は組織を用いて実行される移植の対象における虚血再灌流に関係する浮腫と比較して、その対象における虚血再灌流に関係する浮腫が予防又は低減される。
本明細書で用いるように、用語"活性化合物"は、化学式(I)の化合物及びその医薬的に許容された塩を表す。この活性化合物は、何れかの適切な方法により細胞と接触されることができる。本明細書で用いるように、用語"有効量"は、本書に記載した様々な病理学的状態及び後遺症を阻害できる活性化合物又は複数の活性化合物の量を表わす。用語"阻害"又は"阻害する"は、浮腫の危険に曝される対象の組織損傷(例えば、肺組織)に関する又はその結果である疾患(condition)のような、しかしこれに制限されない、進行の妨げ、予防、治療、緩和、改善、停止、抑制、低減、遅延若しくは逆転、又は病状の重篤性の低減を表す。従って、本書に開示される活性化合物の投与方法は、必要に応じて、医学的治療(急性)及び/又は予防(防止)投与の両者を含む。
幾つかの実施形態において、本書に開示される主題において治療される対象は、好ましくはヒトであるが、本書に記載された方法は、用語"対象"に含めることが意図されるすべての脊椎動物種に関して有効であるということを理解すべきである。本書に記載された方法は、温血脊椎動物の虚血再灌流に関連した浮腫の治療及び/又は予防において特に有用であるが、これに限定されない。従って、この方法は、哺乳動物及び鳥の治療として用いることができる。幾つかの実施形態において、本書に開示された方法の対象は、臓器移植レシピエントである。
一般的方法
C3H/HeJ、C3H/OuJ、TLR4-/-及びC57BL/6Jの雄のマウスは、Jackson Laboratories(バーハーバー、メイン州、アメリカ合衆国)から購入され、MyD88-/-マウスは、審良静男博士(大阪大学、大阪、日本)により提供された。足立ら、Immunity, 9, 143-150 (1998)を参照のこと。マウスは、25〜30グラムの重さで8〜10週齢になるまで無菌設備で保持された。特に定めがない限り、試薬はシグマ(セントルイス、ミズーリ州、アメリカ合衆国)からのものとされた。
マウスは、ケタミン(0.1mg/gm体重)とキシラジン(0.01mg/gm)で腹腔内に(interperitoneally)麻酔され、続いて初期投与量の1/3で毎時麻酔された。気管切開は、Columbus Instruments Ventilator CIV-101 (Columbus Instruments、コロンバス、オハイオ州、アメリカ合衆国)を使用した人工呼吸器(0.4 mLの換気量、120/minの呼吸数、I/E 0.4 、PEEP 3cm H2O、FiO2、1.0で)を許容した。水和(hydration)を維持するため、右頸静脈は、シリンジポンプ(Medfusion 2010i、Medex、カールズバッド、カリフォルニア州、アメリカ合衆国)により、450μL/時間、0.9%生理食塩水中2.5%アルブミンの注入のためカニューレを挿入された。直腸温度がモニターされ、加温パッドで維持された。左肺門は、左開胸を介して微小血管クランプで1時間閉塞された。再灌流は、クランプの除去で始まった。動物は、噴門切除術によって15分から3時間の間隔で屠殺され、両方の肺が摘出された。各肺尖部は切除されて直ちに秤量され、その後、湿乾燥重量比(W/D)を決定するため、60℃のオーブンで48時間乾燥されて再秤量された。残りの肺組織は、液体窒素で急速冷凍され、-80℃で保存された。犠牲の後にすぐに切除された肺が対照として用いられた。
1時間IRI後の血管外アルブミン溢出が上記EBD法により評価された。Sariaら、J. Neurosci Methods, 8(1), 41-49 (1983)を参照のこと。左門(left hilum)を閉塞した後、0.9%生理食塩水の250μL中に溶解された30mg/kgのEBDが右頸静脈に注射された。1時間の再灌流の後、胸骨正中切開を介して胸が開かれ、マウスは右心室切開術で安楽死され、肺動脈幹が18ゲージの血管カテーテルでカニューレ挿入され、左心耳が切断された。血管内EBDを除去するため、両方の肺は、通常の生理食塩水で洗い流され、摘出及び秤量された。肺組織はホルムアミド(100mg肺組織/1mLホルムアミド、Roche Diagnostics(インディアナポリス、インディアナ州、アメリカ合衆国)に懸濁され、50℃で24時間培養された。標本は、その後(13,000g×30分)遠心分離され、50μLの上清が96-ウェルプレート(well plates)に置かれてμQuant分光光度計(Bio-Tek Instruments, Inc.,ウィヌースキ、バーモント州、アメリカ合衆国)で620nmにて比色評価された。相対光学濃度値は、試料の重量によって正規化された。
IRI(n= 4/系統(strain)/集団(group))の60又は180分後、肺の塊は、25cm H2Oの一定圧で、室温で24時間にわたり4%緩衝パラホルムアルデヒドで気管を介して拡張固定された後、パラフィン内に包理された。5ミクロンの切片がヘマトキシリン及びエオシンで染色された。気管切開後すぐに屠殺された動物の肺(n= 4/系統(strain))が対照として用いられた。
1:100希釈でウサギポリクローナルp65抗体(ab 31481; Abcam plc、ケンブリッジ、イギリス)を用いて、拡張固定された肺組織の免疫組織化学的染色が行われた。試料は5μmの薄片にされ、一晩乾燥され、さらに60℃で1時間焼かれた。切片は脱パラフィンされ、100℃で30分間、6.0 pHのシトラール抗原賦活化用バッファー(Citra Antigen Retrieval Buffer)(Dakocytomation, Carpinteria、カリフォルニア州、アメリカ合衆国)でエピトープ賦活化(epitope retrieval)がされた。バックグラウンドは、ペルオキシダーゼブロック、無血清タンパク質ブロック、及びアビジン/ビオチンブロック(Dakocytomation、Carpinteria、カリフォルニア州、アメリカ合衆国)を使用してブロック(block)された。切片は、4℃で一次抗体p65に一晩培養された。可視化のため、DABクロモゲン(chromagen)とともにLSAB +二次抗体を用いて検出が終了した(Dakocytomation、Carpinteria、カリフォルニア州、アメリカ合衆国)。対比染色は適用されなかった。標本グループを知らされていない等級病理医により、1+(軽度、幾つかの核染色が明らか)、2+(適度、幾分強い染色であるが安定的でない)又は3+(実質的にすべての核の濃い安定した染色)の等級で、スライドがp65核染色に対して採点(scored for)された。
上記したように、タンパク質濃度測定及び免疫ブロット法(immunoblotting)が行われた。Wuら, Respir Res, 6(1), 26 (2005)を参照のこと。簡単に言えば、凍結肺組織が10μL/ mgの氷冷RIPA溶解緩衝液(100mM Tris- HCl pH 8.0、100mM NaCl、5mM NaF、2mM EDTA、1% NP- 40、1mM Na3VO4、100μM TPCK、1μMペプスタチンA、2μMロイペプチン、1mM PMSF、100μM ケルセチン)に懸濁され、加圧型細胞破砕(Dounce homogenized)され、さらに不溶性物質を除去するために4℃で10分間13200 rpmで遠心分離された。上清タンパク質濃度は、クマシー(Coomassie)タンパク質アッセイ試薬(Pierce Biotechnology、ロックフォード、イリノイ州、アメリカ合衆国)を用いて決定された。β-メルカプトエタノール(5%)及び追跡用色素を添加した後、試料は変性させられ、等量のタンパク質がSDS- PAGE(10%トリス-グリシン又は4%-12%ビス-トリスゲル;Invitrogen、カールズバッド、カリフォルニア州、アメリカ合衆国)によって分離(resolve)され、さらにイモビロン(Immobilon)- Pメンブレン(Millipore Corp、ビルリカ、マサチューセッツ州、アメリカ合衆国)に転写された。ブロット(blot)は、0.1%のTween-20及び5%脱脂粉乳パウダーを加えたTBS中に1時間ブロックされ、一次抗体及びその後に二次抗体で培養され、続いてペルオキシダーゼの化学発光検出(Millipore Corp、ビルリカ、マサチューセッツ州、アメリカ合衆国)が行われた。リン酸化又は全(total)JNK、p38、ERK、及びIκBαに対する抗体は、Cell Signaling Technology(ビバリー、マサチューセッツ州、アメリカ合衆国)から購入された。フィルムは、Epson Precision 4180フラットベッドスキャナ(Epson America, Inc.、ロングビーチ、カリフォルニア州、アメリカ合衆国)の16ビットグレースケールでの600 dpiでスキャンされた。濃度測定は、METAMORPH(登録商標)ソフトウェア(MDS Analytical Technologies, Inc,、サニーベール、カリフォルニア州、アメリカ合衆国)を用いて行われた。
キメラマウスは、前述の手順を使用したBMTによって生まれた。Schwallerら、 Embo J, 17(18), 5321-5333 (1998)を参照のこと。レシピエントマウスは、4時間離れた2回の線量(700cGY、その後500cGY)で供給される12Gyの致死照射(Gammacell 40137 Csγ-線源、Nordion、オタワ、カナダ)に暴露された。骨髄は、その大腿骨及び脛骨を培地(Roswell Park Memorial Institute (RPMI)緩衝液 + 10%ウシ胎仔血清(FBS) + 100単位ヘパリン + 1 M HEPES)で洗い流すことにより、ドナーマウスから得られた。採取された骨髄細胞は、0.2μmフィルタを通過され、200μLの無菌PBS + 10%FBS内に106個の細胞の濃度に数え上げられると共に再懸濁された。その後に骨髄細胞は、γ-放射線の2回目の線量を受けた直後にレシピエントの眼窩に注入された。完全な体液再構成(humoral reconstitution)を可能にするため、レシピエントマウスは無菌マイクロアイソレータ(microisolator)ケージに12週間保持された。
3組で行われた別々の実験では、P35ディッシュ(dish)上にコンフルエンス(confluence;集密状態)まで増殖したHMEVCsは模擬IRIを受けた。製造者の取扱説明書に従い、同一時点で、細胞及び細胞培養培地又は乳酸リンゲル液は、CytoTox96非放射活性細胞毒性アッセイ(Promega、マディソン、ウィスコンシン州、アメリカ合衆国)を用いて乳酸脱水素酵素(LDH)活性を評価された。実験モデルとは別に細胞生存率を評価するため、時間ゼロ及び24時間の時点で対照試料も採取された。他の試料からの吸光度を規格化するため、培養培地及び乳酸リンゲル液がバックグランド対照として用いられた。細胞毒性は、培地LDH活性を全LDH活性(細胞ペレットと培地の和)で除して計算された。生存率は逆数であり、各時点における%生存率として表された。
HeJ及びOuJマウス由来のAMsは、BMT後に120日のBALで採取された。気管は、オーダーメード(tailored)の18ゲージカテーテル(Becton Dickinson、サンディ、ユタ州、アメリカ合衆国)でカニューレ挿入された。BALは、0.2mMのEGTAを含み、予め温められ滅菌された、エンドトキシン、カルシウム、及びマグネシウムを含まないPBSの4アリコート(aliquot)(35μL×グラム表示の体重)のゆっくりした気管放出によって実行された。洗浄液は、穏やかな吸引によって回収され、各マウスについて貯められ、250gで5分間遠心分離された。細胞は、10%熱不活性化FBS(Atlanta Biologicals、ローレンスビル、ジョージア州)、ペニシリンG(100 U/ mL)、及びストレプトマイシン(100μg/mL)を含むRPMI 1640(Gibco BRL、ロックビル、メリーランド州、アメリカ合衆国)中に再懸濁された。生存率は、トリパンブルー色素排除(trypan blue exclusion)により安定して>95%であった。細胞は、96-ウェルプレートのウェルあたり20,000個播かれた(plate)。2時間の培養後、非接着性(non-adherent)細胞を除去するため、プレートがPBSで洗浄された。接着AMsは、5%CO2を含む加湿培養器内で37℃でRPMI 1640中に培養された。
組換え第一世代のE1、E3欠失アデノウイルス血清型5ベクターが調製され(Sanliogluら、J. Biol. Chem., 276, 30188-30198 (2001)を参照のこと)、上皮細胞について前述したようにHMVECs及びAMsが導入(transfect)された。Wuら、Respir. Res., 6, 26 (2005)を参照のこと。
すべてのデータは平均±SEMとして報告される。群は、STATISTICA(登録商標)(StatSoft, Inc.、タルサ、オクラホマ州、アメリカ合衆国)を使用したTukeyの事後検定とANOVA、又は対応のある(paired)若しくは対応のない(unpaired)t検定によって比較された。
虚血再灌流に関連する肺水腫のTLR4媒介
虚血再灌流に関連する肺水腫へのTLR4の影響は、TLR4が十分な(OuJ)マウス及びTLR4欠損(HeJ)マウスの肺における虚血後の体液貯留を比較することにより検討された。図1Aに示すように、1時間の肺門クランプが引き起こす、3時間の再灌流まで続く再灌流の15分以内にOuJマウスの左肺内の早期で顕著な体液貯留(W/Dの上昇に見られるように)により、左肺の再灌流は虚血性を表す。これに対し、HeJマウスは、15及び30分の再灌流の後に著しく少ない浮腫となり、より早い回復を示した。1及び3時間の再灌流の後のHeJマウスのW/Dは正常であった。
肺IRIに起因してTLR4によって媒介された早期のMAPK及びNF-κB活性化
タンパク質濃度測定は、肺の虚血後の早期の浮腫形成における役割に加え、機能的(functioning )TLR4が炎症に関連するシグナル伝達経路の早期活性化を媒介することを示した。図2A及び図2Bに示すように、OuJマウス中の機能的TLR4は、p38の早期リン酸化反応(虚血中に観察された)、ERK及びJNKの早期リン酸化反応、及び再灌流の後のNF-κBの早期活性化をもたらした。比較として、TLR4欠損HeJマウスは、p38、ERK、NF-κB及びJNK活性化の遅延又は減少を示した。しかしながら、ある程度のMAPK及びNF-κB活性化がHeJマウスで観察され、TLR4以外の代替活性化経路(alternative activation pathways)の関与を示唆した。
肺実質細胞対(versus)骨髄由来細胞へのTLR4
肺実質細胞対骨髄由来細胞、特に肺胞マクロファージ(AMs)への機能性TLR4の重要性を判断するため、各系統のマウス(OuJ及びHeJ)に致死量の放射線を照射し、骨髄移植(BMT)により骨髄を再構成することによって、実施例1に記載されるようなキメラマウスが作り出された。図4Aに示すように、リポ多糖類(LPS)刺激は、天然OuJ AMs、並びにキメラ系統P-M+から回収されたAMs、TLR4を発現する骨髄由来細胞を有するキメラ、及びTLR4を発現しない実質細胞の双方で、ルシフェラーゼ活性の約60倍の増加をもたらした。従って、キメラ動物におけるAMsの置換(replacement)は、BMT後12週間で実質的に完了したと思われる。同じ系統の骨髄で再構成され、放射線照射したマウスから取り出したAMsは、同様に作用した。
虚血再灌流による肺水腫を予防するTLR4の拮抗阻害剤
左肺門クランプの60分前に開始され、OuJマウスに30分静脈内投与(生理食塩水200μL中に10μg)された競合的TLR4阻害剤CRX-526は、虚血再灌流の1時間に続く浮腫を予防した。図5Aを参照のこと。CRX-526はまた、LPSに曝された培養ヒト肺微小血管内皮細胞(HMVECs)におけるNF-κB活性化を予防した。図5Bを参照のこと。TLR4阻害剤は、NF-κB活性化のTNF刺激に影響を与えないように見えた。
TLR2及び虚血再灌流
虚血再灌流関連浮腫に対する機能性TLR2の効果は、C57BL/6J(BL6)のバックグラウンド系統に交配されたTLR2欠損(TLR2-/-)マウスにおける1時間の肺門閉塞及び再灌流後のW/Dと、TLR2が十分なBL6マウスのW/Dと、を比較することにより調査された。図6に示すように、、TLR-/-マウスは、IRIによる浮腫を発症したが、BL6マウスに比べて遅かった。TLR2-/-マウスの左肺のW/Dは再灌流の15分後に正常であったが、BL/6マウスのW/Dは上昇した。
Claims (58)
- 組織内の浮腫を予防又は減少させる方法であって、化学式(I)
nは、1〜6の整数であり、
X1は酸素原子又はイオウ原子であり、
X2は酸素原子又はイオウ原子であり、
R1,R2及びR3は、それぞれ独立して、C2〜C16アシル基であり、ここでR1,R2及びR3のうち少なくとも1つはC2〜C7アシル基であり、
R4は、水素原子,ヒドロキシルアルキル基、−C(=O)NH2、及び−(CH2)mC(=O)OHからなる群より選択され、ここで、mは0〜2の整数であり、
かつR5,R6及びR7は、それぞれ独立して、C10〜C12アルキル基である、方法。 - nが1である請求項1に記載の方法。
- X1及びX2が、それぞれ、酸素原子である請求項1に記載の方法。
- R4が、−C(=O)OHである請求項1に記載の方法。
- R1,R2及びR3が、それぞれ、C2〜C7アシル基である請求項1に記載の方法。
- 前記化学式(I)の化合物が、
nが1であり、
X1が酸素原子であり、
X2が酸素原子であり、
R1,R2及びR3が、それぞれ、−C(=O)(CH2)4CH3であり、
R4が−C(=O)OHであり、及び
R5,R6及びR7が、それぞれ、−(CH2)10CH3である化合物、又は医薬的に許容された該化合物の塩である請求項1に記載の方法。 - 前記浮腫が虚血再灌流に関係する請求項1に記載の方法。
- 前記虚血再灌流は心筋梗塞又は脳卒中に関連する請求項7に記載の方法。
- 前記虚血再灌流が、心臓手術中の心臓マヒ、又は整形外科手術に起因する骨格筋内の虚血に関連する請求項7に記載の方法。
- 前記虚血再灌流が臓器又は組織移植に関連する請求項7に記載の方法。
- 前記組織移植は、皮膚移植、筋肉移植又は軟部組織移植である請求項10に記載の方法。
- 前記組織移植は、自己組織移植である請求項11に記載の方法。
- 前記組織と前記化合物の有効量とを接触させることは、虚血の前、虚血の間、又は虚血の間隔を置いた後に起きる請求項7に記載の方法。
- 前記組織は心臓、肝臓、腎臓、脳、小腸、大腸、膵臓、骨格筋、皮膚、軟部組織、及び肺組織からなる群から選択される請求項1に記載の方法。
- 前記組織は、臓器ドナーからのものである請求項14に記載の方法。
- 前記組織は、肺移植ドナーからの肺組織である請求項15に記載の方法。
- 前記肺移植ドナーは、ヒト肺移植ドナーである請求項16に記載の方法。
- 前記臓器ドナーは、心停止ドナーである請求項15に記載の方法。
- 前記化合物は、Toll様受容体2(TLR2)及びToll様受容体4(TLR4)の一方又は両方の拮抗薬である請求項1に記載の方法。
- 前記化合物は、TLR2及びTLR4の両方の拮抗薬である請求項19に記載の方法。
- その治療を必要とする対象における浮腫を予防又は減少させる方法であって、前記対象に化学式(I)
nは、1〜6の整数であり、
X1は酸素原子又はイオウ原子であり、
X2は酸素原子又はイオウ原子であり、
R1,R2及びR3は、それぞれ独立して、C2〜C16アシル基であり、ここでR1,R2及びR3のうち少なくとも1つはC2〜C7アシル基であり、
R4は、水素原子,ヒドロキシルアルキル基、−C(=O)NH2、及び−(CH2)mC(=O)OHからなる群より選択され、ここで、mは0〜2の整数であり、
かつR5,R6及びR7は、それぞれ独立して、C10〜C12アルキル基である、方法。 - nが1である請求項21に記載の方法。
- X1及びX2が、それぞれ、酸素原子である請求項21に記載の方法。
- R4が、−C(=O)OHである請求項21に記載の方法。
- R1,R2及びR3が、それぞれ、C2〜C7アシル基である請求項21に記載の方法。
- 前記化学式(I)の化合物が、
nが1であり、
X1が酸素原子であり、
X2が酸素原子であり、
R1,R2及びR3が、それぞれ、−C(=O)(CH2)4CH3であり、
R4が−C(=O)OHであり、及び
R5,R6及びR7が、それぞれ、−(CH2)10CH3である化合物、又は医薬的に許容された該化合物の塩である請求項21に記載の方法。 - 前記浮腫が虚血再灌流に関係する請求項21に記載の方法。
- 前記虚血再灌流は心筋梗塞又は脳卒中に関連する請求項27に記載の方法。
- 前記虚血再灌流が、心臓手術中の心臓マヒ、又は整形外科手術に起因する骨格筋内の虚血に関連する請求項27に記載の方法。
- 前記虚血再灌流が臓器又は組織移植に関連する請求項27に記載の方法。
- 前記組織移植は、皮膚移植、筋肉移植又は軟部組織移植の1つである請求項30に記載の方法。
- 前記組織移植は、自己組織移植である請求項31に記載の方法。
- 前記化合物は、予測される虚血イベントの前、虚血の間、又は虚血の間隔を置いた後に前記対象に投与される請求項27に記載の方法。
- 前記化合物は、Toll様受容体2(TLR2)及びToll様受容体4(TLR4)の一方又は両方の拮抗薬である請求項21に記載の方法。
- 前記化合物は、TLR2及びTLR4の両方の拮抗薬である請求項34に記載の方法。
- 臓器又は組織移植の対象における虚血再灌流に関係する浮腫を予防又は減少させる方法であって、
移植のための臓器又は組織を準備し、
前記臓器又は組織と化学式(I)
nは、1〜6の整数であり、
X1は酸素原子又はイオウ原子であり、
X2は酸素原子又はイオウ原子であり、
R1,R2及びR3は、それぞれ独立して、C2〜C16アシル基であり、ここでR1,R2及びR3のうち少なくとも1つはC2〜C7アシル基であり、
R4は、水素原子,ヒドロキシルアルキル基、−C(=O)NH2、及び−(CH2)mC(=O)OHからなる群より選択され、ここで、mは0〜2の整数であり、
かつR5,R6及びR7は、それぞれ独立して、C10〜C12アルキル基であり、及び、
前記治療を受けた臓器又は組織を該治療を必要とする対象に移植し、ここで前記化合物で治療を受けていない臓器又は組織を用いて実行される移植の対象における虚血再灌流に関係する浮腫と比較して、前記対象における虚血再灌流に関係する浮腫が予防又は低減される方法。 - 前記臓器又は組織は、心臓又は心臓組織、肝臓又は肝臓組織、腎臓又は腎臓組織、膵臓又は膵臓組織、小腸組織、大腸組織、皮膚組織、骨格筋組織、軟部組織、肺又は肺組織、及び脳組織からなる群から選択される請求項36に記載の方法。
- 前記臓器又は組織は、肺又は肺組織である請求項37に記載の方法。
- 前記接触は、肺組織ドナー、肺静脈、及び生体外灌流回路の肺動脈の気道の一つを介して行われる請求項38に記載の方法。
- 前記組織は、皮膚組織、骨格筋組織又は軟部組織である請求項37に記載の方法。
- 前記組織移植は、自己組織移植である請求項40に記載の方法。
- 前記臓器又は組織は、心停止臓器ドナーからのものである請求項36に記載の方法。
- 前記化合物は、Toll様受容体2(TLR2)及びToll様受容体4(TLR4)の一方又は両方の拮抗薬である請求項36に記載の方法。
- 前記化合物は、TLR2及びTLR4の両方の拮抗薬である請求項43に記載の方法。
- nが1である請求項36に記載の方法。
- X1及びX2が、それぞれ、酸素原子である請求項36に記載の方法。
- R4が、−C(=O)OHである請求項36に記載の方法。
- R1,R2及びR3が、それぞれ、C2〜C7アシル基である請求項36に記載の方法。
- 前記化合物は化学式(I)のアミノアルキルグルコサミニドリン酸塩又は医薬的に許容された該化合物の塩であり、ここで、
nが1であり、
X1が酸素原子であり、
X2が酸素原子であり、
R1,R2及びR3が、それぞれ、−C(=O)(CH2)4CH3であり、
R4が−C(=O)OHであり、及び
R5,R6及びR7が、それぞれ、−(CH2)10CH3である請求項36に記載の方法。 - 化学式(I)
nは、1〜6の整数であり、
X1は酸素原子又はイオウ原子であり、
X2は酸素原子又はイオウ原子であり、
R1,R2及びR3は、それぞれ独立して、C2〜C16アシル基であり、ここでR1,R2及びR3のうち少なくとも1つはC2〜C7アシル基であり、
R4は、水素原子,ヒドロキシルアルキル基、−C(=O)NH2、及び−(CH2)mC(=O)OHからなる群より選択され、ここで、mは0〜2の整数であり、
かつR5,R6及びR7は、それぞれ独立して、C10〜C12アルキル基である、保存液。 - nが1である請求項50に記載の保存液。
- X1及びX2が、それぞれ、酸素原子である請求項50に記載の保存液。
- R4が、−C(=O)OHである請求項50に記載の保存液。
- R1,R2及びR3が、それぞれ、C2〜C7アシル基である請求項50に記載の保存液。
- 前記化学式(I)の化合物が、
nが1であり、
X1が酸素原子であり、
X2が酸素原子であり、
R1,R2及びR3が、それぞれ、−C(=O)(CH2)4CH3であり、
R4が−C(=O)OHであり、及び
R5,R6及びR7が、それぞれ、−(CH2)10CH3である化合物、又は医薬的に許容された該化合物の塩である請求項50に記載の保存液。 - 前記化合物は、Toll様受容体2(TLR2)及びToll様受容体4(TLR4)の一方又は両方の拮抗薬である請求項50に記載の保存液。
- 前記化合物は、TLR2及びTLR4の両方の拮抗薬である請求項56に記載の保存液。
- 前記生体外臓器又は臓器組織は、肺又はその一部である請求項50に記載の保存液。
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