JP2012184268A - ヘテロ二官能性全セレクチン阻害剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】セレクチン結合によって媒介されるin vitro及びin vivoプロセスを調節するための化合物及び方法を示す。より具体的には、セレクチンモジュレーター及びそれらの使用について記載し、セレクチン媒介性機能を調節(例えば、阻害又は増強)するこれらのセレクチンモジュレーターは、特定の糖模倣物を単独で、或いはBASA(ベンジルアミノスルホン酸)と呼ばれる化合物のクラスのメンバー又はBACA(ベンジルアミノカルボン酸)と呼ばれる化合物のクラスのメンバーと結合して含む。
【選択図】図2
Description
(発明の分野)
本発明は一般的に、セレクチン結合によって媒介されるプロセスを調節するための化合物、組成物、及び方法に関する。より具体的には、セレクチンモジュレーター及びそれらの使用に関し、セレクチン媒介性機能を調節するこれらのセレクチンモジュレーターは、特定の糖模倣物を単独で、或いはBASA(ベンジルアミノスルホン酸)と呼ばれる化合物のクラスのメンバー又はBACA(ベンジルアミノカルボン酸)と呼ばれる化合物のクラスのメンバーと結合して含む。
組織が感染又は損傷すると、炎症性プロセスによって、白血球及びその他の免疫系構成要素が感染又は損傷の部位に誘導される。このプロセスにおいては、白血球が、微生物の飲み込み及び消化において重要な役割を果たす。従って、感染又は損傷した組織への白血球の動員は、有効な免疫防御を備える上で極めて重要である。
簡潔に述べると、本発明は、セレクチン媒介性プロセスを調節するための化合物、組成物、及び方法を提供する。本発明において、セレクチン媒介性機能を調節(例えば、阻害又は増強)する化合物は、特定の糖模倣物を単独で、或いはBASA又はBACAに結合して含む。このような化合物は、薬学的に許容される担体又は希釈剤と組み合わせて、薬学的組成物を形成する場合がある。本化合物又は組成物は、セレクチン媒介性機能(例えば、セレクチン媒介性細胞間接着の阻害)を調節(例えば、阻害又は増強)する方法で使用される場合がある。
R2が、H、−C(=O)OX(式中、XはC1−C8アルカニル、C1−C8アルケニル、C1−C8アルキニル、又はC1−C14アリールである)、−C(=O)NH(CH2)nNH2、−[C(=O)NH(CH2)nNHC(=O)]m(L)mZ(式中、nは0〜30であり、mは0〜1であり、Lはリンカーであり、Zはベンジルアミノスルホン酸、ベンジルアミノカルボン酸、ポリエチレングリコールである)、或いは二量体を形成するために上記の化学式を有する第二の化合物又はその塩であって、この場合、該第二の化合物又はその塩のR2がm=0であって、Zを有さず、且つ結合点であり;
R3が、−OH、
R4が、
R5がHであるか、或いはR4及びR5が一緒になって、
R6が、H、フコース、マンノース、アラビノース、ガラクトース、又はポリオールであり;
R7が、H、C1−C8アルカニル、C1−C8アルケニル、C1−C8アルキニル、又は
化合物が提供される。
例えば、本願発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
以下の化学式を有する化合物であって:
式中:
R 1 が、
(式中、nは0〜2であり、nが2の場合に、R 8 は独立して選択される)であり;
R 2 が、H、−C(=O)OX(式中、XはC 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、又はC 1 −C 14 アリールである)、−C(=O)NH(CH 2 ) n NH 2 、−[C(=O)NH(CH 2 ) n NHC(=O)] m (L) m Z(式中、nは0〜30であり、mは0〜1であり、Lはリンカーであり、Zはベンジルアミノスルホン酸、ベンジルアミノカルボン酸、ポリエチレングリコールである)、或いは二量体を形成するために上記の化学式を有する第二の化合物又はその塩であって、この場合、該第二の化合物又はその塩のR 2 がm=0であって、Zを有さず、且つ結合点であり;
R 3 が、−OH、
、−O−C(=O)−X、−NH 2 、−NH−C(=O)−NHX、又は−NH−C(=O)−X(式中、nは0〜2であり、Xは、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、
(式中、nは0〜10である)から独立して選択され、上記の環式化合物の何れもが、Cl、F、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、C 1 −C 14 アリール、又はOY(式中、Yは、H、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、又はC 1 −C 14 アリールである)から独立して選択される1個〜3個で置換される場合がある)であり;
R 4 が、
、6’硫酸化GlcNAc、6’カルボキシル化GlcNAc、6’硫酸化GalNAc、6’硫酸化ガラクトース、6’カルボキシル化ガラクトース、又は
(式中、R 9 は、アリール、ヘテロアリール、シクロヘキサン、t−ブタン、アダマンタン、又はトリアゾールであり、且つR 9 の何れもが、Cl、F、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、又はOY(式中、Yは、H、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、又はC 1 −C 14 アリールである)から独立して選択される1個〜3個で置換される場合がある)であり;
R 5 がHであるか、或いはR 4 及びR 5 が一緒になって、
(式中、R 10 はアリール、ヘテロアリール、
(式中、nは0〜10である)を形成し、上記の環式化合物の何れもが、Cl、F、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、又はOY(式中、Yは、H、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、又はC 1 −C 8 アルキニルである)から独立して選択される1個〜3個で置換される場合がある)であり;
R 6 が、H、フコース、マンノース、アラビノース、ガラクトース、又はポリオールであり;
R 7 が、H、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、又は
であり;並びに
R 8 が、H、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、
(式中、nは0〜3であり、Xは、H、OH、Cl、F、N 3 、NH 2 、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、C 1 −C 14 アリール、OC 1 −C 8 アルカニル、OC 1 −C 8 アルケニル、OC 1 −C 8 アルキニル、及びOC 1 −C 14 アリールから独立して選択され、上記の環式化合物の何れもが、Cl、F、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、C 1 −C 14 アリール、又はOY(式中、Yは、H、C 1 −C 8 アルカニル、C 1 −C 8 アルケニル、C 1 −C 8 アルキニル、又はC 1 −C 14 アリールである)から独立して選択される1個〜3個で置換される場合がある)である、
化合物;或いはその生理学的に許容される塩。
(項目2)
R 6 が
である、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目3)
R 7 がHである、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目4)
R 4 が
である、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目5)
R 4 が
(式中、R 9 は項目1に従って定義される)である、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目6)
R 9 がシクロヘキサンである、項目5に記載の化合物又はその塩。
(項目7)
R 6 がガラクトースである、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目8)
R 8 が
である、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目9)
R 2 が、−[C(=O)NH(CH 2 ) n NHC(=O)] m (L) m Z(式中、n、m、L及びZが項目1に従って定義される)である、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目10)
Zが、ベンジルアミノスルホン酸、ベンジルアミノカルボン酸、又はポリエチレングリコールである、項目9に記載の化合物又はその塩。
(項目11)
R 3 が、−O−C(=O)−X、又は−NH−C(=O)−X(式中、Xが項目1に従って定義される)である、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目12)
Xが
である、項目11に記載の化合物又はその塩。
(項目13)
R 5 がHである、項目1に記載の化合物又はその塩。
(項目14)
Lがポリエチレングリコール又はチアジアゾールである、項目1〜13の何れか1項に記載の化合物又はその塩。
(項目15)
薬学的に許容される担体又は希釈剤と組み合わせて、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩を含む、組成物。
(項目16)
項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩を含み、更に、診断薬又は治療薬も含む、化合物又はその生理学的に許容される塩。
(項目17)
薬学的に許容される担体又は希釈剤と組み合わせて、項目16に記載の化合物又はその塩を含む、組成物。
(項目18)
セレクチン媒介性機能を調節する方法であって、セレクチンを発現する細胞を、該セレクチンの機能を調節するのに有効な量で、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩と接触させることを含む、方法。
(項目19)
セレクチン媒介性機能を調節する方法であって、セレクチンを発現する細胞を、該セレクチンの機能を調節するのに有効な量で、項目15に記載の組成物と接触させることを含む、方法。
(項目20)
患者を処置する方法であって、過剰なセレクチン媒介性機能に関連する病態の発症を阻害する必要がある該患者に、当該病態の発症を阻害するのに有効な量で、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩を投与することを含む、方法。
(項目21)
患者を処置する方法であって、過剰なセレクチン媒介性機能に関連する病態の発症を阻害する必要がある該患者に、当該病態の発症を阻害するのに有効な量で、項目15に記載の組成物を投与することを含む、方法。
(項目22)
移植した組織の拒絶を阻害する方法であって、移植した組織の受容者である患者に、該移植した組織の拒絶を阻害するのに有効な量で、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩を投与することを含む、方法。
(項目23)
移植した組織の拒絶を阻害する方法であって、移植した組織の受容者である患者に、該移植した組織の拒絶を阻害するのに有効な量で、項目15に記載の組成物を投与することを含む、方法。
(項目24)
薬剤をセレクチン発現細胞に標的化する方法であって、セレクチンを発現する細胞を、該細胞に診断薬又は治療薬を標的化するのに有効な量で、項目16に記載の化合物又はその塩と接触させることを含む、方法。
(項目25)
薬剤をセレクチン発現細胞に標的化する方法であって、セレクチンを発現する細胞を、該細胞に診断薬又は治療薬を標的化するのに有効な量で、項目17に記載の組成物と接触させることを含む、方法。
(項目26)
セレクチン媒介性機能を調節する方法において使用する、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩。
(項目27)
過剰なセレクチン媒介性機能に関連する病態の発症を阻害する必要がある患者を処置する方法において使用する、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩。
(項目28)
移植した組織の拒絶を阻害する方法において使用する、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩。
(項目29)
診断薬又は治療薬を細胞に標的化する方法において使用する、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩。
(項目30)
セレクチン媒介性機能を調節するための医薬品を調製するための、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩の使用。
(項目31)
過剰なセレクチン媒介性機能に関連する病態の発症を阻害する医薬品を調製するための、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩の使用。
(項目32)
移植した組織の拒絶を阻害する医薬品を調製するための、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩の使用。
(項目33)
細胞に診断薬又は治療薬を標的化する医薬品を調製するための、項目1〜14の何れか1項に記載の化合物又はその塩の使用。
上述の通り、本発明は、セレクチンモジュレーター、それらの組成物、及びセレクチン媒介性機能を調節する方法を提供する。このような調節因子は、以下で更に詳細に述べる種々の状況において、セレクチン媒介性機能を調節(例えば、阻害又は増強)するためにin vitro又はin vivoで使用される場合がある。セレクチン媒介性機能の例には、細胞間接着及び血管新生の間の新しい毛細管の形成が含まれる。
セレクチンモジュレーター
本明細書で使用される「セレクチンモジュレーター」という用語は、セレクチン媒介性機能(例えば、セレクチン媒介細胞間相互作用)を調節(例えば、阻害又は増強)する分子を指す。セレクチンモジュレーターは、本発明の糖模倣化合物から全体が構成される場合もあれば、BASA(ベンジルアミノスルホン酸)又はBACA(ベンジルアミノカルボン酸)に結合したこのような糖模倣物から構成される場合もあり、或いは上述の何れかの1つ以上の更なる分子構成要素を含む場合もある。
R2が、H、−C(=O)OX(式中、XはC1−C8アルカニル、C1−C8アルケニル、C1−C8アルキニル、又はC1−C14アリールである)、−C(=O)NH(CH2)nNH2、−[C(=O)NH(CH2)nNHC(=O)]m(L)mZ(式中、nは0〜30であり、mは0〜1であり、Lはリンカーであり、Zはベンジルアミノスルホン酸、ベンジルアミノカルボン酸、ポリエチレングリコールである)、或いは二量体を形成するために上記の化学式を有する第二の化合物又はその塩であって、この場合、該第二の化合物又はその塩のR2がm=0であって、Zを有さず、且つ結合点であり;
R3が、−OH、
R4が、
R5がHであるか、或いはR4及びR5が一緒になって、
R6が、H、フコース、マンノース、アラビノース、ガラクトース、又はポリオールであり;
R7が、H、C1−C8アルカニル、C1−C8アルケニル、C1−C8アルキニル、又は
化合物;或いはその生理学的に許容される塩である。
が含まれる。
vitroでの細胞の同定及び選別を容易にし、セレクチン(又は異なるセレクチンレベル)を発現する細胞の選択を可能にするために使用される場合もある。好ましくは、このような方法で使用するモジュレーターは、検出可能なマーカーに結合する。好適なマーカーは当該技術分野で周知であり、これらには、放射性核種、発光基、蛍光基、酵素、色素、免疫グロブリン定常ドメイン及びビオチンが含まれる。好ましい一実施形態では、蛍光マーカー(例えば、フルオレセイン)に結合したモジュレーターを、細胞と接触させ、次いでこれを、蛍光活性化細胞選別(FACS)によって分析する。
BASA(図1A)の合成
化合物4の合成:市販の2(1g)のニトロ化は、記載の手順に従って行う(文献の条件については、米国特許第4,534,905号;Allison, F., et al., Helv. Chim. Acta 4:2139 (1952)を参照)。
BASA(図1B)の合成
化合物4の合成:3−ニトロベンジルヨウ化物(1)(48.3g)を、市販の8−アミノナフタレン−1,3,5−トリスルホン酸(2)(29.5g)の水溶液(pH11)に、室温にて攪拌しながら加える。その溶液のpHを1に調整し、その溶媒を蒸発除去した後、生成物3(6.4g)をエタノールから沈殿させる。
BACA(図2)の合成
1(8.9g)、パラホルムアルデヒド(8.9g)、及び硫酸(125mL)の懸濁液を90℃にて14時間加熱し、後処理の後に2の粗生成物(7.8g)を得る。その粗生成物をHPLCにより精製し(純度77%)、1H−NMRによって同定する。
糖模倣物(図3)の合成
中間体IIの合成:メタノール(200mL)及び硫酸(2mL、98%)中の(−)シキミ酸(20g)を、室温にて50時間攪拌する。反応混合物を2Nの冷NaOH水溶液によって中和する。蒸発乾固後、その残留物をシリカゲルクロマトグラフィーにより精製し、II(19.2g)を得る。
糖模倣物(図4)の合成
化合物XXIの合成:ピリジン(60mL)中の化合物XX(1.5g、以前に公開された手順(Carbohydrate Chemistry and Biochemistry 2000, vol.1, page 345−365)に従って合成)の溶液に、無水安息香酸(0.73g)及びジメチルアミノピリジン(0.02g)を加える。反応混合物を室温にて20時間攪拌する。溶媒を蒸発除去し、残留物をジクロロメタンに溶解させる。溶液を1Mの冷塩酸及び水で連続して洗浄する。溶液を乾燥させ(酢酸ナトリウムにより)、乾固状態まで濃縮する。残留物をカラムクロマトグラフィー(シリカゲル)により精製し、化合物XXI(1g)を得る。
PEG化BASA(図7B)の合成
DMF(1mL)中の3,6−ジオキサオクタン二酸(PEG、200mg、市販)の溶液にヒューニッヒ塩基(0.4mL)を加え、5分後にHATU(0.35g)を加える。溶液を室温にて10分間攪拌した後、DMF(0.1mL)中に溶解させた実施例2(50mg)のBASAの溶液を加える。反応混合物を室温にて4時間攪拌し、溶媒を蒸発除去する。残留物をHPLC(逆相C18カラム)により精製し、XXXIII(40mg)を得る。
ペグ化BASA(図7A)の合成
この合成は、実施例1のBASAを使用することを除き実施例6で説明したのと同じ方法で実施し、XXXII(50mg)を得る。
ペグ化BACA(図7C)の合成
中間体XXXIV(方法1)の合成:実施例3のBACA(0.5g)をメタノール−水(1mL、9:1)に懸濁させ、Cs2CO3の水溶液を加えてpHを8.2に調整する。溶媒をトルエンで共蒸発させて除去する。残留物をDMF(1mL)に溶解させる。臭化ベンジル(0.5mL)を加え、室温にて20時間攪拌する。ジクロロメタン(15mL)を加え、冷水で洗浄する。有機層を乾燥させ(無水硫酸ナトリウムにより)、溶媒を蒸発除去する。残留物をカラムクロマトグラフィー(シリカ)により精製し、XXXIV(0.48g)を得る。
ペグ化BACA(図7C)の合成
中間体XXXIVaの合成:THF(25mL)中のTiCl4−テトラヒドロフラン錯体(0.705g)及びZn−粉末(0.28g)の懸濁液を、不活性雰囲気下で攪拌しながら75℃にて2時間還流する。この混合物に実施例3のBACA(0.3g)及びN−フルオレニルメトキシカルボニル3アミノプロパノール(0.312g、参考文献Casimiro−Garcia, et al., Bioorg. Med. hem. 1979 (2001) 2827に記載の通り調製)の溶液を加える。反応混合物を不活性雰囲気下で75℃にて2.5時間攪拌する(McMurrayカップリング)。室温まで反応物を冷却し、H2O(30mL)を加え、セライトベッドを通して濾過し、濾液をEtOAcで3回洗浄する(各30mL)。有機層を収集し、乾燥させて(Na2SO4により)、濾過して乾固状態まで濃縮する。残留物をカラムクロマトグラフィーにより精製し、XXXIVaを得る。
糖模倣BASA(図8A)の合成
実施例7(0.015g)のXXXIIのDMF(0.1mL)中の溶液に、ヒューニッヒ塩基(0.015mL)を加えた後、HATU(0.007g)を加える。反応混合物を室温にて10分攪拌する。実施例4のEDA−XIX(DMFmL中に0.010g)の溶液を加え、反応混合物を室温にて8時間攪拌する。溶媒を蒸発除去し、残留物をセファデックスG−25クロマトグラフィーにより精製し、図8Aの糖模倣BASA(0.008g)を得る。
糖模倣BACA(図8B)の合成
EDA−XIX及びXXXVI間のカップリング:実施例8のXXXVIのDMF中の溶液にジイソプロピルエチルアミンを加えた後、HATUを加える。溶液を室温にて3分間攪拌する。その後、円錐形のバイアル瓶中で攪拌しながら上記の溶液をEDA−XIXに加える。反応混合物を室温にて2時間攪拌する。溶媒を蒸発除去し、粗中間体XXXVIbを得る。これは精製せずに次の段階で使用する。
糖模倣BASA(図8C)の合成
この合成は、実施例6のXXXIII及び実施例4のEDA−XIXを使用して、実施例10で説明したのと同じ方法で実施し、図8Cの糖模倣BASAを得る。或いは、EDA−XIXとの反応に、XXXIIIを実施例18のXLVに置き換えることも可能である。
糖模倣BASA(図9A)の合成
この合成は、実施例7のXXXII及び実施例5のEDA−XXVIIIを使用して、実施例10で説明したのと同じ方法で実施し、図9Aの糖模倣BASAを得る。
糖模倣BACA(図9B)の合成
EDA−XXVIII及びXXXVI間のカップリング:このカップリング反応は、XXXVIbの合成について説明したのと全く同じ方法で実施し、粗生成物XXXVIdを得る。
糖模倣BASA(図9C)の合成
この合成は、実施例6のXXXIII及び実施例5のEDA−XXVIIIを使用して、実施例10で説明したのと同じ方法で実施し、図9Cの糖模倣BASAを得る。或いは、EDA−XXVIIIとの反応に、XXXIIIを実施例18のXLVに置き換えることも可能である。
糖模倣物(図12)の合成
中間体XXXVIIの合成:中間体XXVの合成について実施例5で説明したのと同じ方法により、実施例5の中間体XXIV(0.1g)のピリジン溶液を、ピリジン中の塩化ニコチニル(0.08mL)及びジメチルアミノピリジン(0.04g)で処理して、中間体XXXVII(0.075g)を得る。
糖模倣物(図13)の合成
XLIの合成:t−BuOH−水(4mL、1:1)中の化合物XVI(0.1g)の懸濁液に、1−エチニル−3−フルオロベンゼン(0.9g)、1%のCuSO4(0.1mL)、及びL−アスコルビン酸Na(4mg)を加える。混合物を20時間攪拌しながら加熱する(70℃)。溶媒を蒸発除去し、残留物をジクロロメタンに溶解させる。有機層を水で洗浄し、乾燥させ(無水硫酸ナトリウムにより)、乾固状態まで濃縮する。残留物をカラムクロマトグラフィー(シリカゲル)により精製し、化合物XLI(0.08g)を得る。
糖模倣BASA(図14)の合成
化合物XLVの合成:DMF(1mL)中の3,6−ジオキサオクタン二酸(PEG、200mg、市販)の溶液にヒューニッヒ塩基(0.4mL)を加え、5分後にHATU(0.35g)を加える。溶液を室温にて10分間攪拌した後、8−アミノナフタレン−1,3,6トリスルホン酸(50mg、市販)のDMF溶液を加える。反応混合物を室温にて4時間攪拌して、溶媒を蒸発除去する。残留物をHPLC(逆相C18カラム)により精製し、XLV(25mg)を得る。
糖模倣BASA(図15)の合成
XLVIIの合成:この合成は、化合物XXIVを出発物質として、XLIの合成について説明したのと同じ方法で実施し、化合物XLVIを得る。
糖模倣物(図16)の合成
化合物Iの合成:参考文献[J. Org. Chem. 54, 3738−3740 (1989);Liebigs Annalen der Chemie 575,
1 (1952)]に記載の通り合成する。
中間体VIIIの合成:DMF(30mL)中のVII(640mg、1.71mmol)及びNaN3(555mg、8.55mmol)の混合物を、アルゴン雰囲気下で80℃にて攪拌する。TLCにより反応の完了を示したら(1時間後)、反応混合物を室温に冷却し、ジクロロメタン(50mL)で希釈して、水(50mL)で洗浄する。次に、水層をジクロロメタンで2回抽出し(50mLで2回)、収集した有機層をNa2SO4で乾燥させ、濾過して、蒸発させる。残留物をシリカゲルクロマトグラフィー(トルエン/EtOAc=6:1)により精製して、化合物VIII(391mg、87%)を得る。[α]D−69.39°(c=2.330、CH2Cl2)。
基本手順A
中間体XIIの合成:乾燥ジクロロメタン(3mL)中のXl(100mg、0.077mol)の攪拌溶液に、塩化酢酸(27μL、0.387mmol)を加える。5分後、PPh3(101mg、0.387mmol)を加え、溶液を室温にて攪拌する。22時間後、TLC対照が反応の完了を示したら、溶媒を除去し、残留物をシリカゲルクロマトグラフィー(トルエン/EtOAc=2:1)で処理して、化合物XII(43mg、43%)を得る。[α]D−55.33°(c=2.185、CH2Cl2)。
中間体XVの合成:手順Aに従って:Xl(45mg、0.035mmol)及びビフェニル−2−カルボン酸塩化物(125mg0.577mmol)、及びPPh3(151mg、0.577mmol)を使用して、5時間後、(トルエン/EtOAc6:1)で処理して、化合物XV(22mg、44%)を得る。[α]D−19.54°(c=1.10、CH2Cl2)。
基本手順B
中間体XVIの合成:CH2Cl2(2mL)及び水(100μL)中のXl(120mg、0.093mmol)及びPPh3(30mg、0.116mmol)の混合物を、室温にて44時間攪拌する。次に、溶媒を除去し、残留物をCH2Cl2(2mL)に溶解させ、DIC(11.8mg、0.094mmol)及びバニリン酸(24mg、0.139mmol)を加える。混合物を室温にて更に62時間攪拌し、溶媒を除去して、粗生成物をシリカゲルクロマトグラフィー(トルエン/EtOAc=2.5:1)により精製し、化合物XVI(62mg、47%)を得る。[α]D−29.58°(c=2.86、CH2Cl2)。
基本手順C
中間体XVIIの合成:XII(40mg、0.0306mmol)、Pd(OH)2(30mg)、ジオキサン(2mL)、及び水(0.4mL)の混合物を、室温にて5barにてParrシェーカーで水素化する。20時間後、TLC対照が反応の完了を示す。反応混合物をセライトで濾過し、蒸発乾固する。クロマトグラフィー(CH2Cl2/メタノール=9:1)によって粗生成物を精製し、XVII(20mg、69%)を得る。[α]D−43.50°(c=1.00、MeOH)。
基本手順D
生成物XXIIの合成:乾燥メタノール(1mL)中のXVII(27mg、0.0278mmol)の溶液、及び新たに調製した触媒量のNaOMeを、アルゴン雰囲気下で室温にて攪拌する。1時間後、TLCにより反応の完了を確認する。反応混合物を粉末状のAmberlyst−15で中和し、セライトで濾過して、濾液を蒸発乾固する。残留物をメタノール(20mL)に溶解させて、イオン交換ダウエックスNa(登録商標)で濾過する。濾液を蒸発乾固して、粗生成物をクロマトグラフィー(CH2Cl2/メタノール/水=10:4:0.8)で処理し、XXII(12mg、56%)を得る。[α]D−97.49°(c=0.546、MeOH)。
E−セレクチン拮抗薬活性の検定(図17A)
マイクロタイタープレート(プレート1)のウェルをE−セレクチン/hIgキメラ(GlycoTech Corp.[米国メリーランド州ロックビル])により、37℃にて2時間インキュベートすることによってコーティングする。50mMのTris HCl、150mMのNaCl、2mMのCaCl2、pH7.4(Tris−Ca)でプレートを5回洗浄した後、Tris−Ca/Stabilcoat(SurModics[米国ミネソタ州エデン・プレーリー])(1:1,v/v)中の1%BSA(100μL)を、各ウェルに添加して、非特異的結合をブロッキングする。試験化合物を、第2の低結合丸底プレート(プレート2)において、Tris−Ca(60μL/ウェル)中、順次希釈する。ストレプトアビジン−HRP(Sigma[米国ミズーリ州セントルイス])をSLea−PAA−ビオチン(GlycoTech Corp.[米国メリーランド州ロックビル])と混合させて予め形成しておいた結合体を、プレート2の各ウェルに添加する(60μL/ウェルの1μg/mL)。プレート1を、Tris−Caで数回洗浄し、100μL/ウェルをプレート2からプレート1に移す。正確に2時間室温にてインキュベートした後、プレートを洗浄し、100μL/ウェルのTMB試薬(KPL labs[米国メリーランド州ゲイザースバーグ])を各ウェルに加える。3分間室温にてインキュベートした後、100μL/ウェルの1MのH3PO4を加えることによってこの反応を停止させ、450nmでの吸光度をマイクロタイタープレートリーダーによって測定する。
P−セレクチン拮抗薬活性の検定(図17B)
ネオ糖タンパク質であるシアリルLea−HSA(Isosep AB[スウェーデン])を、マイクロタイタープレート(プレート1)のウェル上にコーティングした後、そのウェルをダルベッコのリン酸緩衝化生理食塩水(DPBS)中で希釈された2%のウシ血清アルブミン(BSA)を添加することによりブロックする。第2のマイクロタイタープレート(プレート2)において、試験拮抗薬をDPBS中の1%BSAにおいて順次希釈する。ブロック後、プレート1を洗浄し、プレート2の内容物をプレート1に移す。P−セレクチン/hIg組換えキメラタンパク質(GlycoTech Corp.[米国メリーランド州ロックビル])をプレート1における各ウェルに更に加え、この結合プロセスを室温にて2時間インキュベートする。次いで、プレート1をDPBSで洗浄し、ペルオキシダーゼ標識ヤギ抗ヒトIg(γ)(KPL Labs[米国メリーランド州ゲイザースバーグ])の1μg/mLを各ウェルに加える。室温にて1時間インキュベーションした後、そのプレートをDBPSで洗浄した後、TMB基質(KPL Labs)を各ウェルに加える。5分後、1MのH3PO4を添加して反応を停止させる。その後、450nmでの吸光度をマイクロタイタープレートリーダーを使用して測定する。
抗炎症性マウスモデル。in vivoでの空気嚢に対するIL−1β−誘発性好中球遊走についての試験化合物の効果(図19)
動物
雄の非近交系スイスアルビノマウス(15〜18g体重)を、Bantin and Kingmanから購入し(T.O. stain;ハル、ハンバーサイド)、標準の固形飼料を与え、水道水を自由に摂取できるようにして、12時間の明/暗サイクルで飼育する。全ての動物は、実験前の7日間飼育し、実験日(6日目;以下を参照)には体重が約25gに達する。
実験設計
0日目及び3日目に空気注入(2.5mL、皮下注射)により、マウスの背部に空気嚢を形成する(Perretti & Flower, 1993)。カルボキシメチルセルロース(CMC)の均質な懸濁液を、PBSにおいて0.5%w/vで調製し、その懸濁液にマウス組換え型IL−1βを20ng/mLの濃度で加える。
化合物投与
実験当日、試験化合物の新鮮な溶液を、1mMのCaCl2及びMgCl2を補ったPBSのダルベッコ緩衝剤において調製する。マウスのP−セレクチン又はE−セレクチンに対するモノクローナル抗体(mAb)を、BD Pharmingenから購入し、一方、抗L−セレクチンmAbはSerotecから購入する。
ラット抗マウスP−セレクチン(クローンRB40.34):0.5mg/mL
ラット抗マウスE−セレクチン(クローン10E9.6):0.5mg/mL
図19
6日後のマウス空気嚢は、0時間の時点でIL−1β(10ng)によって炎症を起こしている。実施例17の糖模倣BASA(図13)及び実施例12の糖模倣BASA(図8C)を、0時間及び4時間の時点で静脈内に投与する。抗セレクチンmAbの混合物を0時間の時点で静脈内に投与する。
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