JP2012162483A - ステロール−o−アシルトランスフェラーゼ抑制剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】グァーガム分解物を含むことを特徴とするSOATの発現抑制剤を提供することにより上記課題を解決する。
【選択図】なし
Description
コレステロールは脂溶性であり、水にはわずかしか溶けない。そのため、コレステロールは、血液中で主にリポタンパク質がミセルを形成したミセル化コレステロールの状態で存在している。ミセル化コレステロールはその比重の違いにより、低比重リポタンパクコレステロール(LDLコレステロール)や、高比重リポタンパクコレステロール(LDLコレステロール)などに分類される。
食事を通して体内に入ったコレステロールは、肝臓でつくられた胆汁酸と十二指腸で一緒になり、吸収されやすい形になって小腸へ送られる。そして小腸から吸収されると、SOATによりエステル化が起こる。エステル化されたコレステロールはカイロミクロンに取り込まれ吸収される。また、コレステロールは細胞内の小胞体でアセチルCoAを出発原料として合成される。
プラバスタチン、シンバスタチン、ロスバスタチンなどの総称であるスタチンは高コレステロール血症の治療薬として世界各国で使用されている。体内に吸収されたスタチンは、主に肝臓に分布し、肝臓でのコレステロール生合成を低下させる。
SOATは別名ACAT(アシルCoA:コレステロールアシルトランスフェラーゼ)とも呼ばれ、これまでにSOAT1とSOAT2の存在が知られている。SOAT1はほとんどの組織、特にマクロファージで強く発現しており、SOAT2は肝臓と腸で主に発現している。
すなわち、本発明はSOATの発現抑制剤、もしくはSoat遺伝子のmRNAの発現抑制剤である。本発明の発現抑制剤は単独で用いることもできるが、血中コレステロールの抑制という点よりスタチンとの併用が好ましい。
本願発明におけるグァーガム分解物は、水溶性の食物繊維で、インド・パキスタン等で食用にされている一年生豆科植物グァー(学名 Cyamopsis tetragonoloba)由来の豆を原料とし、その胚乳に含まれるガラクトマンナン多糖を加水分解し低分子化することにより得られるものである。加水分解の方法としては、酵素分解法、酸分解法など、特に限定するものではないが、分解物の分子量が揃い易い点から酵素分解法が好ましい。酵素分解法に用いられる酵素は、マンノース直鎖を加水分解する酵素であれば市販のものでも天然由来のものでも特に限定されるものではないが、アスペルギルス属菌やリゾップス属菌などに由来するβ−マンナナーゼが好ましい。また、グァーガム分解物の平均分子量分布は、上限値が1.8×105以下であり、好ましくは、1.0×105以下、さらに好ましくは、2.5×104以下である。グァーガム分解物の平均分子量分布の下限値は5×102以上であり、好ましくは、3.0×103以上、さらに好ましくは、1.0×104以上である。平均分子量分布が5×102以下では本願発明のSOAT抑制剤を供することが不可能となり、平均分子量が1.8×105を超えると、粘度が高く飲食品に含有させる場合に不都合が生じる。平均分子量分布の測定方法は、特に限定するものではないが、例えばポリエチレングリコール(平均分子量:2×102、2×103、2×104及び1×105)をマーカーに高速液体クロマトグラフ法(カラム:YMC−Pack Diol−120(ワイエムシイ社製、検出器:示差屈折計)を用いて、平均分子量分布を測定する方法等を用いることにより求めることができる。
本願発明のグァーガム分解物は、特に限定するものではないが、上記平均分子量分布のものが70%以上、好ましくは80%以上含まれるものが用いられる。市販品としては、サンファイバー(太陽化学社製)、ファイバロン(大日本住友製薬社製)、グアファイバー(明治フードマテリアル社製)などが挙げられる。
水900gに0.1N塩酸を加えてpH4.5に調整し、これにアスペルギルス属細菌由来のβ−マンナナーゼ(ノボノルディスクバイオインダストリー社製)0.2gとグァーガム粉末(太陽化学株式会社製)100gを添加、混合し、40〜45℃で24時間に渡り、グァーガムの酵素分解を行った。反応後、90℃で15分間加熱して酵素を失活させた。濾過分離(吸引濾過)して、不溶物を除去して得られた透明な溶液を減圧濃縮(Yamato製エバポレーター)した後(固形分量:20重量%)、噴霧乾燥装置〔大川原化工機(株)製〕により乾燥し、グァーガム分解物を粉末として65g得た。
グァーガム分解物を水に溶解させて得た、グァーガム分解物量換算で0.5(w/v)%濃度の水溶液をポリエチレングリコール(平均分子量:2×102、2×103、2×104及び1×105)を分子量マーカーとする高速液体クロマトグラフィー〔(株)ワイエムシイ製カラム:YMC−Pack Diol−120〕に供して平均分子量を求めたところ約20,000であった。
水900gに0.1N塩酸を加えてpH3に調整し、これにアスペルギルス属細菌由来のβ−マンナナーゼ(ノボノルディスクバイオインダストリー社製)0.15gとグァーガム粉末(太陽化学株式会社製)100gを添加、混合し、40〜45℃で24時間に渡り、グァーガムの酵素分解を行った。反応後、90℃で15分間加熱して酵素を失活させた。濾過分離(吸引濾過)して、不溶物を除去して得られた透明な溶液を減圧濃縮(Yamato製エバポレーター)した後(固形分量:20重量%)、噴霧乾燥装置〔大川原化工機(株)製〕により乾燥し、グァーガム分解物を粉末として68g得た。
得られたグァーガム分解物について、調製例1−1と同様にして平均分子量を求めたところ約25,000であった。
水900gに0.1N塩酸を加えてpH4に調整し、これにアスペルギルス属細菌由来のβ−マンナナーゼ(ノボノルディスクバイオインダストリー社製)0.25gとグァーガム粉末(太陽化学株式会社製)100gを添加、混合し、50〜55℃で12時間に渡り、グァーガムの酵素分解を行った。反応後、90℃で15分間加熱して酵素を失活させた。濾過分離(吸引濾過)して、不溶物を除去して得られた透明な溶液を減圧濃縮(Yamato製エバポレーター)した後(固形分量:20重量%)、噴霧乾燥装置〔大川原化工機(株)製〕により乾燥し、グァーガム分解物を粉末として70g得た。
得られたグァーガム分解物について、調製例1−1と同様にして平均分子量を求めたところ約15,000であった。
前記特開平5−117156号公報の実施例(第4頁第3行〜第4頁第10行)の記載に従ってグァーガム分解物の調製を行った。調製例1−1に準じて平均分子量を求めたところ5,500であった。当該加水分解物中、グァーガム分解物は91重量%含まれており、タンパク質が0.1重量%含まれていた。
調製例1−4で分子量測定のために高速液体クロマトグラフィーを行った際に、低分子量のピークを分取した。再度、高速液体クロマトグラフィーを行い、平均分子量を求めたところ約800であった。
実験動物は、BKS.Cg−Dock7m+/+Leprdb/Jマウス(4週齢、オス)を、1週間、AIN−93G標準飼料で予備飼育して、異常のない個体を選別し、対照群(以下、a群)およびグァーガム分解物群(b群およびc群)の計3群(1群3匹)に分け、実験に供した。予備飼育が終了した日から試験終了日(摂取期間28日間)まで、a群にはAIN−93G標準飼料(組成は表1を参照)を、b群にはAIN−93G標準飼料中のセルロースパウダー5%の内、2.5%を調製例1−1〜1−5で調製したグァーガム分解物に置換した実験飼料を、c群にはAIN−93G標準飼料中のセルロースパウダー5%を調製例1−1〜1−5で調製したグァーガム分解物に置換した実験飼料を自由摂取させた。
グァーガム分解物は調製例1−1で示したものを用い、実施例1と同様の方法で、マウスを飼育した。ただし、予備飼育終了後から摂取期間終了後まで毎日200mg/kgのプラバスタチンを経口投与した。摂取期間終了後、麻酔下でヘパリンを通した注射針を用いて採血を行った。遠心(3,000rpm、10分)後、上清を回収し、血漿とした。
Claims (4)
- グァーガム分解物を含有することを特徴とするSOAT発現抑制剤。
- Soat mRNA発現抑制を特徴とする請求項1記載のSOAT発現抑制剤。
- グァーガム分解物の平均分子量が、5×102〜1.8×105である請求項1又は2記載のSOAT発現抑制剤。
- 請求項1〜3いずれか記載のSOAT発現抑制剤とスタチンとの併用剤。
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