JP2010031049A - 血液製剤から小有機化合物を減少させるための方法および装置 - Google Patents

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Abstract

【課題】生物学的流体中の小有機化合物の濃度を減少させながら、精製された流体の生物学的活性を実質的に維持する、より簡単で、より安全かつより経済的な手段を提供すること。
【解決手段】血液製剤中の小有機化合物の濃度を減少させながら、該血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する装置であって、高度に多孔質の吸着剤粒子を含み、ここで該吸着剤粒子が不活性媒体によって固定化されている、装置。上記装置はフロー装置であり得る。
【選択図】なし

Description

（関連出願の相互参照）
本出願は同時係属中の出願番号０８／７７９，８３０および０８／７７９，８８５（１９９７年１月６日出願）の継続出願であり、これらは参考としてその全体が援用される。
（技術分野）
本発明は血液製剤から小有機化合物（ｓｍａｌｌ ｏｒｇａｎｉｃ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ）を減少させるための方法および装置に関する。
（背景技術）
血液製剤からの物質の除去に関する広範囲な一連の研究が存在する。この研究の大部分は、白血球を減少させることに関する。例えば、Ｍ．Ｎ．Ｂｏｏｍｇａａｒｄら、Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ ３４：３１１（１９９４）； Ｆ． Ｂｅｒｔｏｌｉｎｉら、Ｖｏｘ Ｓａｎｇ ６２：８２（１９９２）； およびＡ．Ｍ． Ｊｏｕｓｔｒａ−Ｄｉｊｋｈｕｉｓら、Ｖｏｘ Ｓａｎｇ ６７：２２（１９９４）参照。血小板の濾過が、血小板濃縮物から白血球を減少させる場合に使用される最も一般的な方法である。例えば、Ｍ．Ｂｏｅｃｋら、Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ ３１：３３３（１９９１）（Ｓｅｐａｃｅｌｌ ＰＬ−５Ａ， Ａｓａｈｉ， Ｔｏｋｙｏ， Ｊａｐａｎ）；Ｊ．Ｄ． Ｓｗｅｅｎｅｙら、Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ ３５：１３１（１９９５）（Ｌｅｕｋｏｔｒａｐ Ｐｌ， Ｍｉｌｅｓ Ｉｎｃ．， Ｃｏｖｉｎａ， ＣＡ）；およびＭ． ｖａｎ Ｍａｒｗｉｊｋら、Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ ３０：３４（１９９０）（Ｃｅｌｌｓｅｌｅｃｔ， ＮＰＢＩ， Ｅｍｍｅｒ−Ｃｏｍｐａｓｃｕｕｍ， Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ； Ｉｍｍｕｇａｒｄ Ｉｇ−５００， Ｔｅｒｕｍｏ， Ｔｏｋｙｏ， Ｊａｐａｎ）参照。しかし、これらの現在の濾過機構は、比較的低分子量の化合物（例えば、ソラレン、光付加産物（ｐｈｏｔｏａｄｄｉｔｉｏｎ ｐｒｏｄｕｃｔ）、および生物学的流体の処理に通常使用される他の化合物を包含する）の除去にはなじみにくい。
吸着プロセスを用いて、選択的な血液成分がリン脂質ポリマー上で単離されている。例えば、種々の電荷を有するいくつかのコポリマーが、血小板接着およびタンパク質吸着などの血液成分との相互作用について評価されている。Ｋ．Ｉｓｈｉｈａｒａら、Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ． Ｍａｔ． Ｒｅｓ． ２８：１３４７（１９９４）。しかしこのようなポリマーは低分子量化合物の吸着のために設計されているわけではない。
種々の透析手段により、血漿および全血から低分子量化合物を除去することが可能である。例えば、透析により、低分子量毒素および薬学的化合物が首尾良く除去され得る。従って、透析は、例えばソラレンおよびソラレン光産物を血液製剤から除去するために使用され得る。残念なことに、現在の透析手順は非常に複雑かつ高価な装置を含む。それゆえ、透析装置の使用は、大量の血液製剤の浄化のためには実用的ではない。
メチレンブルーの吸着のためにポリスチレンジビニルベンゼン、シリカゲル、およびアクリルエステルポリマーを使用することが以前に記載されている。例えば、ＰＣＴ公開公報ＷＯ ９１／０３９３３は、遊離の吸着樹脂（例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅｓ（Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ （Ｆｒａｎｋｆｕｒｔ， Ｇｅｒｍａｎｙ）およびＢｉｏ Ｂｅａｄｓ （Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ （Ｍｕｎｉｃｈ， Ｇｅｒｍａｎｙ））を用いたバッチの研究を記載する。しかし、これらの方法では、吸着樹脂を血液製剤に曝露した後に非常に注意深く除去しなければ、樹脂粒子を輸血する危険が生じる。
これに加えて、白血球およびウイルス不活化剤（例えば、ソラレン、ヒペリシン、ならびにメチレンブルー、トルイジンブルー、およびクリスタルバイオレットのような色素）の除去のための装置およびプロセスもまた開示されている。具体的には、ＰＣＴ公開公報 ＷＯ ９５／１８６６５は、機械的に安定なポリマー物質を含むテキスタイルウェブが敷設されたフィルタを記載する。ウェブそれ自体は内部連結（ｉｎｔｅｒｌｏｃｋ）されたテキスタイル繊維を含み、これが空間を含むマトリクスを形成し、この空間内に繊維化粒子が配置される。しかし、この装置は第ＸＩ因子活性の著しい低下を引き起こす。
従って、生物学的流体中の小有機化合物の濃度を減少させながら、精製された流体の生物学的活性を実質的に維持する、より簡単で、より安全かつより経済的な手段が必要とされる。
上記課題を解決するために、本発明は、例えば、以下を提供する：
（項目１）血液製剤中の小有機化合物の濃度を減少させながら、該血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する装置であって、高度に多孔質の吸着剤粒子を含み、ここで該吸着剤粒子が不活性媒体によって固定化されている、装置。
（項目２）上記吸着剤粒子が約７５０ｍ ２ ／ｇを越える表面積を有する、項目１に記載の装置。
（項目３）上記装置がフロー装置であり、そしてここで上記吸着剤粒子が直径約２００μｍ未満かつ直径１０μｍより大きい、項目１に記載の装置。
（項目４）上記吸着剤粒子が活性炭を含み、そしてここで該活性炭が合成または天然源由来である、項目１に記載の装置。
（項目５）上記不活性マトリクスが繊維ネットワークである、項目１に記載の装置。
（項目６）上記不活性マトリクスが焼結媒体である、項目１に記載の装置。
（項目７）上記装置がバッチ装置であり、そしてここで上記吸着剤粒子が直径約１２００μｍ未満かつ直径３００μｍより大きい、項目１に記載の装置。
（項目８）上記装置が血液製剤中のアクリジン、アクリジン誘導体、メチレンブルーまたはチオールの濃度を減少させる、項目１に記載の装置。
（項目９）上記装置が血液製剤中のソラレン、ソラレン誘導体、アミノソラレンまたはイソソラレンの濃度を減少させる、項目１に記載の装置。
（項目１０）上記吸着剤粒子がポリ芳香族化合物を含む、項目１に記載の装置。
（項目１１）上記装置がさらに血液バッグを含む、項目１に記載の装置。
（項目１２）上記血液製剤が血小板、赤血球または血漿からなる群から選択される、項目１に記載の装置。
（項目１３）上記吸着剤粒子が約１０００ｍ ２ ／ｇを越える表面積を有する、項目３に記載の装置。
（項目１４）上記合成活性炭が、高度スルホン化ポリスチレンビーズを高温活性化プロセスで処理することによって得られる、項目４に記載の装置。
（項目１５）上記装置が血液製剤中の４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの濃度を減少させる、項目９に記載の装置。
（項目１６）上記ポリ芳香族化合物が高次架橋したポリスチレンジビニルベンゼンコポリマーネットワーク中に含まれる、項目１０に記載の装置。
（項目１７）血液製剤中の環式化合物の濃度を減少させながら、該血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する方法であって：
ａ）該血液製剤を項目１に記載の装置と接触させる工程；および
ｂ）該血液製剤を該装置との接触から除去する工程
を包含する、方法。
（項目１８）上記吸着剤粒子が約７５０ｍ ２ ／ｇを越える表面積を有する、項目１７に記載の方法。
（項目１９）上記装置がフロー装置であり、そしてここで上記吸着剤粒子が直径約２００μｍ未満かつ直径１０μｍより大きい、項目１７に記載の方法。
（項目２０）上記吸着剤粒子が活性炭を含み、そしてここで該活性炭が合成または天然源由来である、項目１７に記載の方法。
（項目２１）上記装置の不活性マトリクスが繊維ネットワークである、項目１７に記載の方法。
（項目２２）上記装置の不活性マトリクスが焼結媒体である、項目１７に記載の方法。
（項目２３）上記装置がバッチ装置であり、そしてここで上記吸着剤粒子が直径約１２００μｍ未満かつ直径３００μｍより大きい、項目１７に記載の方法。
（項目２４）上記装置が血液製剤中のアクリジン、アクリジン誘導体、メチレンブルーまたはチオールの濃度を減少させる、項目１７に記載の方法。
（項目２５）上記装置が血液製剤中のソラレン、ソラレン誘導体、アミノソラレンまたはイソソラレンの濃度を減少させる、項目１７に記載の方法。
（項目２６）上記吸着剤粒子がポリ芳香族化合物を含む、項目１７に記載の方法。
（項目２７）上記装置がさらに血液バッグを含む、項目１７に記載の方法。
（項目２８）上記血液製剤が血小板、赤血球または血漿からなる群から選択される、項目１７に記載の方法。
（項目２９）上記装置が血液製剤中の４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの濃度を減少させる、項目２５に記載の方法。
（項目３０）上記ポリ芳香族化合物が高次架橋したポリスチレンジビニルベンゼンコポリマーネットワーク中に含まれる、項目２６に記載の方法。
（項目３１）溶液中の環式化合物の濃度を減少させる方法であって：
ａ）ｉ）溶液中の所定濃度の環式化合物であって、単環式化合物、多環式化合物、および複素環式化合物からなる群から選択される環式化合物、およびｉｉ）繊維状樹脂を提供する工程；および
ｂ）該環式化合物を該繊維状樹脂に接触させる工程であって、それにより該環式化合物の濃度を減少させる工程、
を包含する方法。
（項目３２）血液バッグであって：
ａ）生体適合性ハウジング；および
ｂ）繊維ネットワーク中に固定化された樹脂を含み、該固定化樹脂が該生体適合性ハウジング内に収納される、血液バッグ。
（項目３３）溶液中の病原体を不活化させる方法であって：
ａ）任意の順序で：ｉ）環式化合物、ｉｉ）該病原体が混入していると推測される溶液、およびｉｉｉ）繊維状樹脂を提供する工程；
ｂ）該溶液を該環式化合物で処理して、該病原体が不活化した処理溶液産物を作製する工程；および
ｃ）該処理溶液産物を該繊維状樹脂と接触させる工程を包含し、
改良点が、血液製剤中の小有機化合物濃度を減少させながら該血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する装置を包含し、該装置が高度に多孔質の吸着剤粒子を含み、ここで該吸着剤粒子が不活性マトリクスで固定化されている、方法。
（発明の開示）
本発明は、血液製剤中の小有機化合物濃度を減少させながら、この血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する装置を意図し、この装置は、高度に多孔質の吸着剤粒子を含み、そしてここで吸着剤粒子は不活性マトリクスで固定化される。１つの実施態様では、この不活性マトリクスは繊維ネットワークまたは焼結媒体であり得る。
血液製剤中の小有機化合物濃度の減少のために、吸着剤粒子を不活性マトリクス中に固定化することは、今までの系に比べていくつもの利益および利点を有する。１つの利点は、ルーズな（ｌｏｏｓｅ）吸着剤粒子が血液製剤中に漏出することが少なくなる点であり、これはより安全な血液製剤を製造することにつながる。他の利点は、吸着剤粒子が小有機化合物を吸着する能力が高められることである。これは、一部には、固定化されていない粒子を血液製剤（例えば、赤血球を含む物質）と共に使用した場合に関連する凝集の問題が排除されることによる。さらなる利点は、ルーズな吸着剤を取り扱いに関する問題が減ることである。そのため製造が簡単になる。不活性マトリクスで固定化された吸着剤粒子を使用することによる驚くべき利点は、血液製剤、例えば、血小板、赤血球、および白血球を含む保存された膜の損傷が減ることである。
１つの実施態様では、吸着剤粒子は約７５０ｍ２／ｇを越える表面積を有する。他の実施態様では、吸着剤粒子は約１０００ｍ２／ｇを越える表面積を有し得る。
１つの実施態様では、装置はフロー装置であり、ここで吸着剤粒子は直径約２００μｍ未満であり、かつ直径１０μｍより大きい。他の実施態様では、装置はバッチ装置であり、ここで吸着剤粒子は直径約１２００μｍ未満であり、かつ直径３００μｍより大きい。
本発明は、吸着剤粒子がポリ芳香族化合物または活性炭を含むことを意図する。１つの実施態様では、ポリ芳香族化合物は高次架橋した（ｈｙｐｅｒｃｒｏｓｓｌｉｎｋｅｄ）ポリスチレンジビニルベンゼンコポリマーネットワーク中に含まれる。１つの実施態様では、活性炭は天然源由来であり得る。他の実施態様では、活性炭は、高度スルホン化ポリスチレンビーズを高温活性化プロセスで処理することによって得られる合成源由来であり得る。
さらに、血液製剤中のアクリジン、アクリジン誘導体、メチレンブルーまたはチオールの濃度を減少させる装置が意図される。また、ソラレン、ソラレン誘導体（例えば、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、イソソラレンまたはアミノソラレンを包含する）の濃度を減少させる装置もまた意図される。血液製剤は、血小板、赤血球または血漿からなる群から選択され得る。
さらなる構成要素として、本発明はこの装置がさらに血液バッグを含むことを意図する。
本発明は、血液製剤中の環式化合物の濃度を減少させながら、この血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する方法を意図し、この装置は：ａ）血液製剤を本発明の装置に接触させる工程、およびｂ）血液製剤を本発明の装置との接触から除去する工程を包含する。１つの実施態様では不活性マトリクスは繊維ネットワークまたは焼結媒体であり得る。
１つの実施態様では、吸着剤粒子は約７５０ｍ２／ｇを越える表面積を有する。他の実施態様では、吸着剤粒子は約１０００ｍ２／ｇを越える表面積を有し得る。
１つの実施態様では、装置はフロー装置であり、ここで吸着剤粒子は直径約２００μｍ未満であり、かつ直径１０μｍより大きい。他の実施態様では、装置はバッチ装置であり、ここで吸着剤粒子は直径約１２００μｍ未満であり、かつ直径３００μｍより大きい。
本発明は、吸着剤粒子がポリ芳香族化合物または活性炭を含むことを意図する。１つの実施態様では、ポリ芳香族化合物は高次架橋したポリスチレンジビニルベンゼンコポリマーネットワーク中に含まれる。１つの実施態様では、活性炭は天然源由来であり得る。他の実施態様では、活性炭は、高度スルホン化ポリスチレンビーズを高温活性プロセスで処理することによって得られる合成源由来であり得る。
さらに、血液製剤中のアクリジン、アクリジン誘導体、メチレンブルーまたはチオールの濃度を減少させる装置が意図される。また、ソラレン、ソラレン誘導体（例えば、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、イソソラレンまたはアミノソラレンを包含する）の濃度を減少させる装置もまた意図される。血液製剤は、血小板、赤血球または血漿からなる群から選択され得る。
さらなる構成要素として、本発明はこの装置がさらに血液バッグを含むことを意図する。
本発明はまた、溶液中の病原体を不活化させる方法を意図し、ここでこの方法は：ａ）任意の順序で：ｉ）環式化合物、ｉｉ）病原体が混入していると推測される溶液、およびｉｉｉ）繊維状樹脂を提供する工程；ｂ）この溶液を環式化合物で処理して、病原体が不活化した処理溶液産物を作製する工程；およびｃ）処理溶液産物を繊維状樹脂と接触させる工程を包含する。改良点は、血液製剤中の小有機化合物濃度を減少させながらこの血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する装置を包含し、この装置は高度に多孔質の吸着剤粒子を含み、そしてここで吸着剤粒子は不活性マトリクスで固定化される。
本発明はまた、溶液中の環式化合物の濃度を減少させる方法を意図し、この方法は：ａ）ｉ）溶液中の所定濃度の環式化合物（この環式化合物は、単環式化合物、多環式化合物、および複素環式化合物からなる群から選択される）、およびｉｉ）繊維状樹脂を提供する工程；およびｂ）環式化合物を繊維状樹脂に接触させる工程であって、それにより環式化合物の濃度を減少させる工程、を包含する。
本発明は、血液バッグを意図し、これは：ａ）生体適合性ハウジング；およびｂ）繊維ネットワーク中に固定化された樹脂を含み、この固定化樹脂は生体適合性ハウジング内に収納される。
図１は、繊維の１つの実施態様の斜視図を図示的に示したものであり、内部コアおよび外部シースを示し、これが繊維状樹脂の繊維ネットワークを形成する。 図２は、本発明の繊維状樹脂の１つの実施態様の部分を模式的に表す。 図３は、繊維状樹脂の１つの実施態様の断面図を図示的に表し、ここで吸着剤ビーズが繊維に固定し、これが繊維状樹脂を作り上げている。 図４は、繊維状樹脂の１つの実施態様の断面図を図示的に表し、ここで吸着剤ビーズは繊維状樹脂の繊維および熱シール内に固定化され、これが繊維状樹脂の試料を包含する。 図５は、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰのルーズな吸着ビーズならびにＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含む繊維状樹脂による血小板からのアミノソラレンの除去に関する吸着速度論の比較を示すグラフである。 図６は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含む繊維状樹脂および２つの異なる負荷率（ｌｏａｄｉｎｇ）の活性炭を含む繊維状樹脂による血小板からのアミノソラレンの除去に関する吸着速度論の比較を示すグラフである。 図７は、ｐ（ＨＥＭＡ）コーティングおよび未コーティングのＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３ビーズによる血小板からのアミノソラレンの除去に関する吸着速度論の比較を示すグラフである。 図８は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３についての相対アミノソラレン吸着能力に対する予備処理溶液のグリセロール含量の影響の比較を示すグラフである。 図９は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６（下）およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（上）について、１００％血漿における乾燥吸着剤に関する４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン吸着能力に対する濡れ溶液の影響の比較を示すグラフである。エタノール溶液中の濡らさなかった試料を「Ｎｏ Ｔｘ」で示す。吸着能力は至適に濡れた吸着剤の能力に対する百分率で表される。 図１０は、いくつかの異なる溶液中で濡らしたＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を用いた、血漿からのアミノソラレンの３時間にわたる吸着の比較を示すグラフである。 図１１は、血漿からのメチレンブルーの２時間にわたる吸着の速度論の比較を示すグラフである。 図１２は、アクリジン、アクリジンオレンジ、９−アミノアクリジン、および５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンの化学構造を示す。 図１３は、種々の樹脂について、アデニン容量（ｙ軸）および５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン容量（ｘ軸）に対してデータをプロットしたものを示すグラフである。 図１４Ａおよび１４Ｂは、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＰｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−２００およびＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰによる５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンの除去に関する吸着速度論の比較を示すグラフである。 図１４Ａおよび１４Ｂは、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＰｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−２００およびＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰによる５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンの除去に関する吸着速度論の比較を示すグラフである。 図１５は、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３による９−アミノアクリジンおよびアクリジンオレンジの除去に関する吸着速度論の比較を示すグラフである。 図１６は、固定化吸着装置（ＩＡＤ）のためのフローおよびバッチの構成である。 図１７は、種々のＡｍｂｅｒｓｏｒｂについての吸着等温線の比較をＰｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００との比較で示すグラフである。 図１８は、４℃で４週間の保存にわたって、繊維化Ｐｉｃａ Ｇ２７７ ＩＡＤ（５００ｇ／ｍ２）に連続的曝露した、または２４時間後に曝露を停止した、３００ｍＬのＰＲＢＣ単位の上清における５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンおよびＧＳＨのレベルの比較を示すグラフである。 図１９は、ＩＡＤに曝露したＰＲＢＣ中の５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンに対するエンクロージャ物質（ｅｎｃｌｏｓｕｒｅ ｍａｔｅｒｉａｌ）の影響を示すグラフである。 図２０は、非固定化および固定化吸着剤粒子Ｐｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２７７についての、溶血パーセントの比較を示すグラフである。 図２１は、非固定化および固定化吸着剤粒子Ｐｉｃａ Ｇ−２００活性炭についての、溶血パーセントの比較を示すグラフである。 図２２は、血小板濃縮物からの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去についての速度論を示すグラフである。
（発明を実施するための最良の形態）
本発明は、処理された血液製剤から小有機化合物の濃度を減少させるための方法、材料および装置を提供する。小有機化合物は環式および非環式の化合物を包含し得る。化合物の例としては、病原体不活化化合物、色素およびチオールが挙げられる。不活性マトリクスによって固定化された吸着剤分子の三次元ネットワークを含む装置が提供される。この固定化により、ルーズな吸着剤粒子が血液製剤中に漏出する危険が軽減される。さらに、不活性マトリクスによる吸着剤粒子の固定化により、ルーズな吸着剤粒子の取り扱いに関する問題が減ることによって、製造が簡単になる。吸着剤粒子の固定化はまた、赤血球、および／または血小板、および／または血漿を含む組成物中の小有機化合物を吸着する吸着剤粒子の能力を高める。最後に、不活性マトリクスにより固定化された吸着剤粒子を使用することによって、細胞膜を含む血液製剤（例えば、血小板、赤血球、および白血球）を含む組成物の損傷が軽減する。
（定義）
用語「アクリジン誘導体」は、アクリジン（ジベンゾ［ｂ，ｅ］ピリジン；１０−アザアントラセン）の三環式構造を含む化合物を意味する。この化合物は、核酸に対して、相互作用を通じての非共有的な親和性を有する（そして結合し得る）。用語「アミノアクリジン」は１つ以上の窒素含有官能基を有するアクリジン化合物を意味する。アミノアクリジンの例としては９−アミノアクリジンおよびアクリジンオレンジが挙げられる（図１２に示す）。
用語「吸着剤粒子」は、液体中で分子と相互作用し得、そのため分子を液体から除去することが可能な、任意の天然または合成物質を広範囲に意味する。天然に生じる吸着剤の例としては、活性炭、シリカ、ケイソウ土、およびセルロースが挙げられるがこれらに限定されない。合成吸着剤の例としては、ポリスチレン、ポリアクリル、および炭素性吸着剤が挙げられるがこれらに限定されない。吸着剤粒子はしばしば多孔質であり、しばしば大きな表面積を有し、そして吸着剤と分子との相互作用の仕方に影響を与え得る種々の官能基（例えば、イオン性、疎水性、酸性、塩基性）で修飾され得る。
用語「芳香族」、「芳香族化合物」などは、非局在化電子を有する原子の環を有する化合物を広範囲に意味する。単環式化合物ベンゼン（Ｃ６Ｈ６）が一般的な芳香族化合物である。しかし、電子の非局在化は、１つより多い隣接の環（例えば、ナフタレン（二環）およびアントラセン（三環））にわたって生じ得る。種々の芳香族化合物のクラスとしては、芳香族ハロゲン化物（ハロゲン化アリール）、芳香族複素環式化合物、芳香族炭化水素（アレーン）、および芳香族ニトロ化合物（アリールニトロ化合物）が挙げられるがこれらに限定されない。
用語「生体適合性コーティング」は、親水性ポリマーによる表面（例えば、ポリスチレンビーズの表面）の被覆を広範囲に意味し、この親水性ポリマーは、血液製剤と接触したときに損傷性、毒性、または免疫性の応答を生じず、そして細胞接着、タンパク質吸着の減少によって表面をより生体適合性とし、あるいは細胞機能を向上させる。適切なコーティングは、そのコーティングに曝露された生物学的物質に対してたとえ影響を与えるとしても最小限の影響しか与えない場合に生体適合性である。「最小限」の影響とは、コントロールと比較したときに有意な差異が見られないことを意味する。好ましい実施態様では、生体適合性コーティングはポリマー構造の表面の血液適合性（ｈｅｍｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙ）を向上させる。例えば、ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）（ｐＨＥＭＡ）は、医用装置（例えば血液フィルタ）で用いられる物質のコーティングにしばしば用いられる。
用語「生体適合性ハウジング」は、全血、血小板濃縮物、および血漿のような生物学的物質を入れるのに適したフィルタハウジング、容器、バッグ、管、レセプタクルなどを広範囲に意味する。適切な容器は、その中に入れた生物学的物質に対してたとえ影響を与えるとしても最小限の影響しか与えない場合に生体適合性である。「最小限」の影響とは、赤血球、血小板および血漿について、本明細書に記載のように、コントロールと比較したときに血液製剤の機能において有意な差異が見られないことを意味する。それゆえ、血液製剤はレシピエントへの輸液の前に生体適合性ハウジング中に保存され得る。好ましい実施態様において、生体適合性ハウジングは血液バッグであり、これは血小板保存容器を包含する。
用語「生物学的流体」は、ヒトまたは非ヒトの全血、血漿、血小板、赤血球、白血球、血清、リンパ液、唾液、乳、尿、または上記のいずれかの単独または混合物から誘導される産物または上記のいずれかの単独または混合物を含む産物を包含し、化学添加溶液を含むかあるいは含まない。好ましくは、この流体は化学添加溶液を含むかあるいは含まない血液または血液製剤であり、より好ましくは、血漿、血小板および赤血球であり、最も好ましくはアフェレーシスの血漿および赤血球である。
用語「血液バッグ」は、血液製剤容器のことを意味する。
用語「血液製剤」は、体内の循環系を通る流体および／または関連の細胞要素など（例えば、赤血球、白血球、血小板など）を意味する；血液製剤としては、血液細胞、血小板混合物、血清、および血漿が挙げられるがこれらに限定されない。用語「血小板混合物」は、血液製剤の１つのタイプを意味し、ここで細胞要素は主として、あるいは唯一、血小板である。血小板濃縮物（ＰＣ）は血小板混合物の１つのタイプであり、ここで血小板は通常よりも少ない血漿部分を伴う。血液製剤において、合成媒体が通常は血漿によって占められる容量を補填し得る；例えば、血小板濃縮物は、３５％血漿／６５％合成媒体中に懸濁された血小板を必要とし得る。しばしば、合成媒体はリン酸塩を含む。
用語「血液分離手段」は、血液を血液製剤（例えば、血小板および血漿）に分離し得る装置、機械などを広範囲に意味する。アフェレーシス系は血液分離手段の１つのタイプである。アフェレーシス系は一般に、血液分離装置、管およびフィルタの複雑なネットワーク、採取バッグ、抗凝固剤、および全ての構成要素を制御するコンピュータ制御された手段を含む。
用語「架橋」は、線状分子が互いに結合して、二次元または三次元のネットワークを形成したものを広範囲に意味する。例えば、ジビニルベンゼン（ＤＶＢ）はスチレン−ジビニルベンゼンコポリマーの形成において架橋剤として働く。この用語はまた、「高次架橋（ｈｙｐｅｒｃｒｏｓｓｌｉｎｋｉｎｇ）」を包含し、ここで高次架橋ネットワークは、線状ポリスチレン鎖を溶液中または膨潤状態のいずれかで二官能性試薬で架橋することによって生成される。種々の二官能性試薬が架橋のために使用され得る（例えば、ＤａｖａｎｋｏｖおよびＴｓｙｕｒｕｐａ， Ｒｅａｃｔｉｖｅ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ １３：２４−４２（１９９０）； Ｔｓｙｕｒｕｐａら、Ｒｅａｃｔｉｖｅ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ ２５：６９−７８（１９９５）を参照のこと）。
用語「環式化合物」は、１つ（すなわち単環式化合物）または１つより多く（すなわち多環式化合物）の原子環を有する化合物を意味する。この用語は特定の数の原子を含む環を有する化合物に限定されない。大部分の環式化合物は５個または６個の原子を有する環を含むが、他の数の原子を有する環（例えば、３個または４個の原子）もまた本発明で意図される。環中の原子の同一性は限定されないが、原子は通常、主として炭素原子である。一般的に言って、多環式化合物の環は互いに隣接している；しかし、用語「多環式」化合物は互いに隣接しない複数の環を含む化合物を包含する。
用語「色素」は、色を与える化合物を広範囲に意味する。色素は一般に、１つ以上の環式化合物に結合した発色団および助色団基を含む。色は発色団に依存するが、染色の親和性は助色団に依存する。色素は多くのカテゴリーに分けられ、これにはアジン色素（例えば、ニュートラルレッド、サフラニン、およびアゾカーマインＢ）；アゾ色素；アゾカーマイン色素；ジフェニルメタン（ｄｅｐｈｅｎｙｍｅｔｈａｎｅ）色素、フルオレセイン色素、ケトンイミン（ｋｅｔｏｎｉｍｉｎｅ）色素、ローザニリン色素、およびトリフェニルメタン色素が包含される。本発明の方法および装置は環式化合物である任意の色素と組み合わせて実施され得ることが意図される。
用語「繊維状樹脂（ｆｉｂｅｒｉｚｅｄ ｒｅｓｉｎ）」は、繊維ネットワーク中、繊維ネットワーク上、または繊維ネットワークに取り込まれて固定化された吸着剤物質（例えば樹脂を包含する）を一般的に意味する。１つの実施態様では、繊維ネットワークはポリマー繊維から構成される。他の実施態様では、繊維は、高融点のポリマーコア（例えば、ポリエチレンテレフタレート［ＰＥＴ］）が比較的低融解温度のポリマーシース（例えば、ナイロンまたは修飾ＰＥＴ）で囲まれたものからなる。繊維状樹脂は、繊維ネットワークを、樹脂の吸着能力に対して有意な程度の悪影響を与えない条件下で加熱することによって製造され得る。樹脂がビーズを含む場合、加熱は、吸着ビーズが外側のポリマーシースに付着して「繊維化ビーズ」を形成するように行われる。規定された面積当たり既知量の吸着ビーズを含む繊維状樹脂を製造することにより、環式化合物（例えば、ソラレン、および特にアミノソラレン）および他の産物の除去に使用するための繊維状樹脂の試料は、吸着したビーズを計量するのではなく、むしろ繊維状樹脂の規定面積を切断することにより得られ得る。
用語「フィルタ」は、混合物の特定の成分を通過させ、他の成分を保持し得る装置、物質などを広範囲に意味する。例えば、フィルタは、血液製剤（例えば血漿）を通過させ、他方、樹脂粒子のような他の成分を保持する孔サイズを有するメッシュを含み得る。用語「フィルタ」は特定の成分が保持される手段に限定されない。
用語「フローアダプタ」は、血液製剤のような特定の物質のフローを制御し得る装置を意味する。フローアダプタは、吸着剤樹脂物質の断片の通過を妨げるなどの追加的な機能を果たし得る。
用語「複素環式化合物」は、環の１つ以上が１つより多いタイプの原子を含む環式化合物を広範囲に意味する。一般に、炭素が主たる原子を表し、他方、他の原子としては例えば、窒素、硫黄、および酸素が包含される。複素環式化合物の例としては、フラン、ピロール、チオフェン、およびピリジンが挙げられる。
語句「高温活性化プロセス」は、処理された物質の表面積、多孔度および表面化学が、出発物質の熱分解および／または酸化によって典型的には変化する結果となる高温プロセスを意味する。
用語「固定化吸着装置（ＩＡＤ）」は、不活性マトリクス中、不活性マトリクス上、または不活性マトリクスに取り込まれた固定化吸着剤物質を意味する。不活性マトリクスが繊維ネットワークである場合、用語「ＩＡＤ」は用語「繊維状樹脂」と相互交換可能に使用され得る。
用語「不活性マトリクス」は、任意の合成または天然の繊維またはポリマー性物質であって、吸着剤粒子の固定化に使用され得、血液製剤の所望の生物学的活性に実質的に影響を与えないものを意味する。マトリクスは小有機化合物の濃度の減少に寄与し得るが、典型的には吸着または除去プロセスに実質的に寄与しない。これに加えて、不活性マトリクスは細胞成分またはタンパク質成分と相互作用し得、その結果、細胞が除去され（例えば、白血球の枯渇（ｌｅｕｋｏｄｅｐｌｅｔｉｏｎ））あるいはタンパク質または他の分子が除去される。
用語「直列カラム」は、通常は円筒形の容器であって、入口端および出口端を有し、そしてその中に配置された物質を含み、血液製剤から小有機化合物の濃度を減少させるものを意味する。
用語「単離」は、１つより多くの成分を含む混合物から物質を分離することを意味する。例えば、血小板は全血から単離され得る。単離された産物はかならずしも他の成分からのその産物の完全な分離を意味しない。
用語「マクロポア」は一般に約５００Åより大きい直径の孔を意味する。用語ミクロポアは約２０Å未満の直径の孔を意味する。用語メソポアは、直径が約２０Åより大きく、かつ約５００Å未満の孔を意味する。
用語「マクロ多孔質」は、直径が約５００Åより大きい実質的な数の細孔を有する多孔質構造を説明するのに用いられる。
用語「マクロ網状」は相対的な用語であり、その構造が高度な物理的多孔度を有し（すなわち多数の細孔が存在する）、多孔性吸着剤構造がマクロ細孔およびミクロ細孔の両方を有することを意味する。
用語「メッシュエンクロージャ」、「メッシュパウチ」などは、複数の細孔を含むように製造されたエンクロージャ、パウチ、バッグなどをいう。例えば、本発明は、固定化吸着剤粒子を含むパウチであって、血液製剤が固定化吸着剤粒子に接触することを可能とするが、固定化吸着剤粒子はパウチ内に保持されるようなサイズの細孔を有するパウチを意図する。
用語「パーティション」は、全体を区画または部分に分離または分割し得る任意のタイプの装置または要素をいう。例えば、本発明は、血液バッグを血液製剤を入れるのに適合するように２つの部分に分割するパーティションの使用を意図する。血液製剤は、処理の前および処理中はバッグの片方の部分を占め、他方吸着剤樹脂はもう一方の部分を占める。１つの実施態様では、血液製剤の処理の後に、パーティションを除去し（例えば、パーティションの完全性を変化させる）、それにより処理された血液製剤を吸着剤樹脂と接触させる。パーティションはバッグの内部またはその外部のいずれかに位置し得る。用語「パーティション」と共に使用される場合、用語「除去」は血液バッグの２つの部分の隔離がもはや存在しないことを意味する。これは必ずしもパーティションがある意味でもはやバッグに付随しないことを意味するのではない。
用語「光産物」はソラレンが紫外線照射に曝露されることで受ける光化学反応の結果得られる生成物をいう。
用語「ポリ芳香族化合物」は、芳香族基を骨格に含むポリマー性化合物（例えばポリエチレンテレフタレート）、またはペンダント基として含むポリマー性化合物（例えばポリスチレン）、あるいはその両方をいう。
用語「ポリスチレンネットワーク」はスチレン（Ｃ６Ｈ５ＣＨ＝ＣＨ２）モノマーを含むポリマーを広範囲に意味し、このポリマーは線状であり得、フェニル置換基を有する単独の共有結合アルカン鎖から構成され、あるいは一般にｍ−またはｐ−フェニレン残基または他の二官能性または高次架橋構造と架橋して、二次元ポリマー骨格を形成し得る。
用語「ソラレン除去手段」は、例えば血液製剤から約７０％を越える（好ましくは約９０％を越えることが好ましく；最も好ましくは約９９％を越える）ソラレンを除去し得る物質または装置をいう。ソラレン除去手段はまた、ソラレン光産物のような他の血液製剤の成分も除去し得る。
語句「濃度を減少させる」は、水性溶液から芳香族化合物のいくらかの部分を除去することをいう。濃度の減少は好ましくは約７０％を越えるオーダーであり、より好ましくは約９０％のオーダーであり、そして最も好ましくは約９９％のオーダーである。
語句「溶液中で遊離の実質的に全ての小有機化合物（例えば、ソラレン、ソラレン誘導体、イソソラレン、アクリジン、アクリジン誘導体、または色素）の該部分を除去する」は、好ましくは溶液中で遊離の化合物の約８０％より多くを除去、より好ましくは約８５％より多くを除去、さらにより好ましくは約９０％より多くを除去、そして最も好ましくは約９９％より多くを除去することを意味する。
用語「樹脂」は、種々の小有機化合物（ソラレンを包含する）と溶液中または流体（例えば血液製剤）中で相互作用し得、そして付加し得、それにより溶液中でのこれらの要素の濃度を低下させる固体支持体（例えば粒子またはビーズなど）をいう。除去プロセスは任意の個々の機構に限定されない。例えば、ソラレンは疎水性またはイオン性相互作用（すなわち、親和性相互作用）によって除去され得る。用語「吸着剤樹脂」は、天然有機物質および合成物質の両方ならびにそれらの混合物を広範囲に意味する。
用語「振盪装置」は、血小板濃縮物のような血液製剤を完全に混合し得る任意のタイプの装置をいう。この装置は混合を特定の期間に制限することが可能な時限装置を有し得る。
用語「焼結媒体」は、多孔質プラスチック（例えば粉末熱可塑性ポリマーを包含する）に熱および圧力を与えることによって形成される構造をいう。多孔質プラスチックは比較的低融点のポリマーの粉末を混合し、そしてこれを加熱して、その結果、プラスチック粒子が部分的に融合しているが、まだ流体が多孔質の塊に浸透する通路を与えるようにすることによって調製され得る。焼結吸着剤媒体は同様にして、炭素または他の高融点または非溶融吸着剤粒子を低融点粉末に配合し、そして加熱することによって調製され得る。多孔質プラスチック物質の製造方法は、米国特許第３，９７５，４８１号、同第４，１１０，３９１号、同第４，４６０，５３０号、同第４，８８０，８４３号および同第４，９２５，８８０号に記載される。これらは本明細書中に参考として援用される。このプロセスにより粉末粒子の融合が生じ、その結果多孔質の固体構造が形成される。焼結媒体は、焼結プロセスの際にポリマー粉末を成形用具に入れることによって、種々の形状に形成され得る。吸着剤粒子は、焼結プロセスに供する前に吸着剤粒子を粉末熱可塑性ポリマーに混合することによって、焼結媒体中に導入され得る。
用語「安定化剤」は、特定の樹脂の吸着能力を最適化し得る化合物または組成物をいう。一般的に言って、許容可能な安定化剤は、水およびエタノール（または他の湿潤剤）に可溶であり、水およびエタノールに比べて不揮発性であり、そして少量が輸液されても安全であるべきである。安定化剤の例としては、グリセロールおよび低分子量ＰＥＧが挙げられるがこれらに限定されない。「湿潤剤」は、高次架橋していない樹脂（すなわち非マクロネット（ｎｏｎ−ｍａｃｒｏｎｅｔ）樹脂）の吸着剤細孔を再度開放すると考えられる点で、「安定化剤」と区別され得る。湿潤剤は一般に乾燥条件下で細孔が崩壊することを防止しないが、他方、安定化剤は防止する。湿潤および湿潤剤の一般的な議論はＰａｌｌらの米国特許第５，５０１，７９５に記載されており、これは本明細書中に参考として援用される。
語句「血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する」は、治療的な設定においてその製剤の潜在的な性能を示すと考えられている血液製剤の特性を実質的に維持することをいう。例えば、赤血球が関連する場合、本明細書中で記載される方法によって処理された赤血球において、ＡＴＰレベル、細胞外カリウム漏出、％溶血が未処理サンプルと比較して実質的に維持されるならば、インビボ活性は破壊されないかあるいは顕著に低下しない。例えば、処理された赤血球と未処理の赤血球との間のＡＴＰレベルの変化は約１０％未満であり得る。保存の後、処理された赤血球と未処理の赤血球との間の溶血の変化は約１％未満であり得、好ましくは約０．８％未満である。処理された赤血球と未処理の赤血球との間の細胞外カリウム漏出の変化は約１５％未満であり得る。血漿の場合、本明細書中で記載される方法によって処理された場合、血漿において、第Ｉ、第ＩＩ、第Ｖ、第ＶＩＩ、第Ｘ、第ＸＩ因子のような凝固因子のレベル、またはＰＴおよびＰＴＴ時間の変化が未処理サンプルと比較して実質的に維持されるならば、インビボ活性は破壊されないかあるいは顕著に低下しない。例えば、処理された血漿と未処理の血漿との間の第Ｉ、第ＩＩ、第Ｖ、第ＶＩＩ、第Ｘ、第ＸＩ因子のような凝固因子のレベルの変化は約２０％未満であり得；好ましくは約１０％未満である。処理された血漿の未処理の血漿と比較したＰＴおよびＰＴＴ時間の変化は、例えば、約３秒未満かつ１秒を越え；好ましくは１．５秒である。血小板が関連する場合、本明細書中で記載される方法によって処理された赤血球において、例えば、血小板収率、ｐＨ、凝集応答、形状変化、ＧＭＰ−１４０、形態学、または低浸透圧性ショック応答が未処理サンプルと比較して実質的に維持されるならば、インビボ活性は破壊されないかあるいは顕著に低下しない。さらに、記載の血液製剤に関連する特性の各々についての実質的に維持されるとの語句はまた、文献に記載の値のような当業者に許容可能な値を包含し得ることが意図される。文献としては例えば、Ｋｌｅｉｎ Ｈ．Ｇ．，編、Ｓｔａｎｄａｒｄｓ ｆｏｒ Ｂｌｏｏｄ Ｂａｎｋｓ ａｎｄ Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ 第１７版、Ｂｅｔｈｅｓｄａ， ＭＤ： Ａｍｅｒｉｃａｎ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｌｏｏｄ Ｂａｎｋｓ， １９９６が挙げられ、これは本明細書中に参考として援用される。
用語「チアジン色素」は、１つ以上の環中に硫黄原子を含む色素を包含する。最も一般的なチアジン色素はメチレンブルー［３，７−ビス（ジメチルアミノ）−フェノチアジン−５−イウムクロリド］である。他のチアジン色素としては、Ｓｃｈｉｎａｚｉの米国特許第５，５７１，６６６号に記載のように、アズールＡ、アズールＣおよびチオニンが挙げられるがこれらに限定されない。
用語「キサンテン色素」は化合物キサンテンの誘導体である色素をいう。キサンテン色素は３つの主要カテゴリーの１つに入り得る：ｉ）フルオレンまたはアミノキサンテン、ｉｉ）ロドール（ｒｈｏｄｏｌ）またはアミノヒドロキシキサンテン、およびｉｉｉ）フルオロンまたはヒドロキシキサンテン。本発明のための使用が意図されるキサンテン色素の例としては、ローズベンガルおよびエオシンＹが挙げられる。これらの色素は多くの供給源（例えば、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．， Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ． ＭＩ）から市販され得、そして例えばＳｃｈｉｎａｚｉの米国特許第５，５７１，６６６号に記載されている。これは本明細書中に参考として援用される。
（吸着剤粒子）
血液製剤中の小有機化合物の濃度を減少させながら血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持する装置において有用な吸着剤粒子が提供される。
吸着剤粒子は、それ自体を不活性マトリクス中に取り込むことに向いた任意の規則的または不規則な形状であり得るが、好ましくはおよそ球形である。ＩＡＤがフロー装置と共に使用される場合、粒子は直径が約１０μｍより大きい；好ましくは粒子は直径が約１０μｍと約２００μｍとの間である；より好ましくは粒子は直径が約１０μｍと約１００μｍとの間である；最も好ましくは、粒子は直径が約１０μｍと約５０μｍとの間である。ＩＡＤがバッチ装置と共に用いられる場合、粒子は直径約３００μｍより大きく、かつ直径約１２００μｍより小さい；好ましくは、粒子は直径約３００μｍと約１２００μｍとの間である。
高い表面積が粒子の特徴である。好ましくは、粒子は表面積が約７５０ｍ２／ｇと約３０００ｍ２／ｇとの間である。より好ましくは、粒子は表面積が約１０００ｍ２／ｇと約３０００ｍ２／ｇとの間である。最も好ましくは、粒子は表面積が約１７５０ｍ２／ｇと約３０００ｍ２／ｇとの間である。
本発明の装置での使用に適した吸着剤粒子は、接触したときにその物質が流体の生物学的活性に実質的に悪影響を与えない限りにおいて、その上に小有機分子が吸着する任意の物質であり得る。吸着剤粒子は、例えば、活性炭、疎水性樹脂、またはイオン交換樹脂のような材料から作製され得る。
１つの好ましい実施態様では、吸着剤粒子は天然または合成源由来の活性炭である。好ましくは、活性炭は合成源由来である。活性炭の非限定的な例としては；Ｐｉｃａｔｉｆｆ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ（これはＰＩＣＡ ＵＳＡ Ｉｎｃ．（Ｃｏｌｕｍｂｕｓ， ＯＨ）から入手可能）、Ｎｏｒｉｔ ＲＯＸ ０．８（これはＮｏｒｉｔ Ａｍｅｒｉｃａｓ， Ｉｎｃ．（Ａｔｌａｎｔａ， ＧＡ）から入手可能）、Ａｍｂｅｒｓｏｒｂ ５７２（これは、Ｒｏｈｍ ＆ Ｈａａｓ （Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ， ＰＡ）から入手可能）、およびＧ−２７７（これはＰＩＣＡ（Ｃｏｌｕｍｂｕｓ， ＯＨ）から入手可能）が挙げられる。
１つの好ましい実施態様において、粒子はＮｏｒｉｔ Ａ Ｓｕｐｒａ（Ｎｏｒｉｔ Ａｍｅｒｉｃａｓ， Ｉｎｃ．（Ａｔｌａｎｔａ， ＧＡ）から入手可能）である。Ｎｏｒｉｔ Ａ ＳｕｐｒａはＵＳＰグレードの活性炭であり、亜炭の蒸気活性化により形成される。この活性炭は総表面積が非常に高く（２０００ｍ２／ｇ）、そしてその性質は非常にミクロ多孔質である。
他の好ましい実施態様において、粒子は疎水性樹脂であり得る。疎水性樹脂の非限定的な例は以下のポリ芳香族吸着剤を包含する：Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）吸着剤（例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−２、ＸＡＤ−４、およびＸＡＤ−１６）（Ｒｏｈｍ ＆ Ｈａａｓ （Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ， ＰＡ）から入手可能）；Ａｍｂｅｒｃｈｒｏｍ（登録商標）吸着剤（Ｔｏｓｏ Ｈａａｓ（ＴｏｓｏＨａｓｓ， Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙｖｉｌｌｅ， ＰＡ）から入手可能）；Ｄｉａｉｏｎ（登録商標）／／Ｓｅｐａｂｅａｄｓ（登録商標）吸着剤（例えば、Ｄｉａｉｏｎ（登録商標）ＨＰ２０）（Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ａｍｅｒｉｃａ， Ｉｎｃ．（Ｗｈｉｔｅ Ｐｌａｉｎｓ， ＮＹ）から入手可能）；Ｈｙｐｅｒｓｏｌ−Ｍａｃｒｏｎｅｔ（登録商標）ソルベントレジン（Ｓｏｒｂｅｎｔ Ｒｅｓｉｎｓ） （例えば、Ｈｙｐｅｒｓｏｌ−Ｍａｃｒｏｎｅｔ（登録商標）ソルベントレジンＭＮ−２００、ＭＮ−１５０およびＭＮ−４００）（Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（Ｂａｌａ Ｃｙｎｗｙｄ， ＰＡ）から入手可能；およびＤｏｗｅｘ（登録商標）吸着剤（例えば、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４０３２３、ＸＵＳ−４３４９３、およびＸＵＳ−４０２８５）（Ｄｏｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ （Ｍｉｄｌａｎｄ， ＭＩ）から入手可能）。
好ましい粒子は、高次架橋したポリスチレンネットワークを含むポリ芳香族吸着剤である疎水性樹脂であり、例えばＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（Ｏｐｔｉｐｏｒｅ（登録商標）Ｌ４９３またはＶ４９３として商業的に知られる）およびＰｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００である。
高次架橋ポリスチレンネットワーク、例えばＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＰｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００は、非イオン性のマクロ多孔質およびマクロ網状樹脂である。非イオン性マクロ網状およびマクロ多孔質Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３は、ソラレン（例えば４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを包含する）に対しての高親和性を有し、そして優れた湿潤特性を有する。語句「優れた湿潤特性」は、吸着剤が血液製剤から小有機化合物の濃度を効果的に減少するために、乾燥（すなわち実質的に無水の）吸着剤を血液製剤と接触させる前に湿潤剤（例えばエタノール）で湿潤させる必要がないことを意味する。
高次架橋ポリスチレンネットワーク、例えばＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＰｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００は、好ましくは直径が約１００μｍから約１２００μｍの範囲の球形粒子の形状である。フロー装置のためには、粒子は約１０から約１００μｍの範囲の直径を有する。バッチ装置のためには、粒子は約１００から約１２００μｍの範囲の直径を有する。吸着剤粒子（例えばＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３を包含する）は、好ましくは非常に高い内部表面積および比較的小さい細孔（例えば４６Å）を有する。粒子の内部表面積は約３００から約１１００ｍ２／ｇであり得；好ましくは１１００ｍ２／ｇであり得る。粒子の細孔サイズは２５Åより大きく、かつ８００Å未満であり得る；好ましくは約２５Åから約１５０Åであり得；最も好ましくは約２５Åから約５０Åであり得る。本発明は小有機化合物の減少が起こる機構を限定することを意図しないが、疎水性相互作用が吸着の主たる機構であると考えられる。その多孔質の性質は、小分子をより大きい分子（すなわちタンパク質）および細胞と比べて、表面積のうちのより大きな割合に接近させることによって、吸着プロセスに選択性を与える。Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）はＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３と同様の多くの性質（例えば、ソラレンに対する高親和性および優れた湿潤特性）を有し、そしてこれもまた好ましい吸着剤粒子である。
ポリスチレン粒子は、その合成機構ならびに物理的および機能的特徴に基づいて、ｉ）従来のネットワークおよびｉｉ）高次架橋ネットワークとして分類され得る。好ましい吸着剤は、高い表面積を有し、崩壊しない細孔を有し、湿潤を必要とせず、そして赤血球または血小板を含む物質のために、非常に低いレベルの小粒子および外来粒子（例えば、塵、繊維、非吸着剤粒子、および未同定粒子）も有する。バッチ装置のためには、小粒子は好ましくは直径３０μｍ未満である。フロー装置のためには、小粒子は好ましくは直径５μｍ未満である。加えて、好ましい吸着剤は、抽出可能な残留モノマー、架橋剤および他の有機抽出可能物質のレベルが低い。
従来のネットワークは主としてスチレン−ジビニルベンゼンコポリマーであり、ここでジビニルベンゼン（ＤＶＢ）が架橋剤（すなわち、線状ポリスチレン鎖を互いに連結する試薬）として働く。これらのポリマーネットワークは「ゲルタイプ」のポリマーを含む。ゲルタイプポリマーは均一な非多孔質のスチレン−ＤＶＢコポリマーであり、モノマーの共重合により得られる。マクロ多孔質吸着剤は従来のネットワークの第２のクラスを表す。これらはモノマーを希釈剤の存在下共重合させることによって得られ、希釈剤が成長するポリスチレン鎖を沈殿させる。この手順で形成されるポリスチレンネットワークは比較的大きな内部表面積を有する（ポリマー１グラム当たり数百平方メートルまで）；Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−４はこのような手順によって生産される。
上記の従来のネットワークとは対照的に、本発明の好ましい吸着剤（例えば、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３）は高次架橋ネットワークである。これらのネットワークは線状ポリスチレン鎖を溶液中または膨潤状態のいずれかで二官能性試薬で架橋することによって生産される；好ましい二官能性試薬はコンホメーション的に制限された架橋を生じ、これは吸着剤が実質的に無水（すなわち「乾燥」）状態の場合に細孔が崩壊するのを防ぐと考えられる。
高次架橋ネットワークは従来のネットワークと区別される３つの主要な特徴を有すると考えられる。第１は、ポリスチレン鎖を保持する架橋が離れているのでポリマー鎖の密度が低い。その結果、この吸着剤は一般的に比較的大きい多孔質表面積および多孔質直径を有する。第２に、このネットワークは膨潤し得る；すなわちポリマー相が有機分子と接触したとき、ポリマー相の容積が増加する。最後に、高次架橋ポリマーは乾燥状態のとき「緊張している（ｓｔｒａｉｎｅｄ）」である；すなわち、乾燥状態でのネットワークの剛性が鎖−鎖引力を防ぐ。しかし、この吸着剤を湿潤させたとき、緊張は緩和し、それは液体媒体中で膨潤するネットワークの能力を高める。ＤａｖａｎｋｏｖおよびＴｓｙｕｒｕｐａ、Ｒｅａｃｔｉｖｅ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ １３：２７−４２（１９９０）；Ｔｓｙｕｒｕｐａら、Ｒｅａｃｔｉｖｅ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ ２５：６９−７８（１９９５）、これは本明細書中で参考として援用される。
いくつかの架橋剤がポリスチレン鎖間に架橋を生成するために首尾よく使用されており、これにはｐ−キシレンジクロリド（ＸＤＣ）、モノクロロジメチルエーテル（ＭＣＤＥ）、１，４−ビス−クロロメチルジフェニル（ＣＭＤＰ）、４，４’−ビス−（クロロメチル）ビフェニル（ＣＭＢ）、ジメチルホルマール（ＤＭＦ）、ｐ，ｐ’−ビス−クロロメチル−１，４−ジフェニルブタン（ＤＰＢ）、およびトリス−（クロロメチル）−メシチレン（ＣＭＭ）が包含される。架橋は、これらの架橋剤の１つをスチレンフェニル環とフリーデルクラフツ反応によって反応させることによってポリスチレン鎖間に形成される。そのため、得られる架橋は異なる２つのポリスチレン鎖上に存在するスチレンフェノール環を連結する。例えば米国特許第３，７２９，４５７号参照。これは本明細書中で参考として援用される。
架橋は、一般的に「湿潤」剤の必要性を排除するので特に重要である。すなわち、架橋は、吸着剤が本質的に無水（すなわち「乾燥」）状態にあるときに細孔が崩壊するのを防ぎ、そのため吸着剤を血液製剤と接触させる前に湿潤剤で「再開放」する必要がない。細孔が崩壊するのを防ぐためには、コンホメーション的に制限された架橋が形成されるべきである。ＤＰＢのようないくつかの二官能性試薬は通常、制限されたコンホメーションを与えない；例えば、ＤＰＢは４つの連続するメチレン単位を含み、それはコンホメーションの再配置を受けやすい。それゆえ、ＤＰＢは本発明での使用ためには好適な二官能性試薬ではない。
上記の吸着剤粒子の構造関連特性のいくつかを表Ａにまとめる。
Figure 2010031049
（吸着剤粒子の処理）
吸着剤粒子をさらに処理して、微細な粒子、塩、潜在的な抽出可能物質、および内毒素を除去し得る。これらの抽出可能成分の除去は典型的には有機溶媒、蒸気、または超臨界流体のいずれかでの処理によって行われる。好ましくは粒子は滅菌される。
いくつかの会社は現在、市販の吸着剤粒子の「清浄化」（すなわち、処理された）タイプを販売している。吸着剤粒子（例えば樹脂）の処理に加えて、これらの会社は吸着剤を試験しており、最終的な吸着剤は、滅菌（ＵＳＰ ＸＸＩ）、パイロジェンなし（ＬＡＬ）、および検出可能な抽出可能物質（ＤＶＢおよび全有機物）なしが証明されている。
熱処理（例えば蒸気）は吸着剤粒子の処理のための有効な方法である。Ｆ． Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ， Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ Ｏｆ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ， （Ｈｅｍｉｓｐｈｅｒｅ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｒｐ．）、４４９−５３頁（第３版、１９８９）。Ｓｕｐｅｌｃｏ， Ｉｎｃ． （Ｂｅｌｌｅｆｏｎｔｅ， ＰＡ）は非溶媒の熱所有（ｔｈｅｒｍａｌ ｐｒｏｐｒｉｅｔａｒｙ） プロセスを用いてＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＡｍｂｅｒｌｉｔｅ吸着剤を清浄化している。蒸気を用いる主たる利点は吸着剤に潜在的な抽出可能物質を全く添加しないことである。しかし１つの大きな短所は、このプロセスが樹脂ビーズの細孔から水を奪うことである；いくつかの吸着剤が有効に性能を発揮するためには、ビーズを照射血液製剤に接触する前に再度湿潤させることが必要とされる。
清浄化／処理された吸着剤の１つの利点は直径が３０μｍ未満の粒子が非常に低レベルであることである。Ｓｕｐｅｌｃｏによって処理された吸着剤（Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６）に対する予備試験を行って粒子カウントを決定した。これらの試験の結果は、外来粒子（例えば、塵、繊維、非吸着剤粒子、および未同定の粒子）が存在せず、そして微細粒子（＜３０μｍ）が本質的に存在しないことを示した。
（湿潤剤および安定化剤の吸着剤樹脂との使用）
特定の条件下（例えば乾燥）でその吸着能力をいくらか失うＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）のような粒子の乾燥および吸着能力の損失を防ぐための方法が使用され得る。
１つの方法において、粒子、物質または装置は密封された乾燥できない湿潤状態中で製造され得る。この方法はいくつかの重大な欠点を伴う。製品の有効期間は、物質からの抽出可能物のレベルが経時的に増加するので、低下し得る。滅菌は蒸気プロセスに限定され得る。なぜなら湿潤したポリマーのγ線照射は典型的には行われないからである。構成要素が湿潤状態に維持されることを必要とする装置の製造は、一般に乾燥装置の製造よりも困難である；例えば、装置の組立と終点の滅菌との間に長期のタイムラグがあると生物の負荷（ｂｉｏｂｕｒｄｅｎ）および内毒素の懸念がでてくる可能性がある。
吸着能力の損失を防ぐ第２の方法は、乾燥によって悪影響を受けない吸着剤の使用を伴う。先に述べたように、高度に架橋した多孔質構造を有するマクロ網状吸着剤（例えば、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＰｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−２００）は一般に湿潤剤を必要としない。なぜなら架橋が細孔の崩壊を防ぐからである。Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６とは異なり、これらのマクロ網状吸着剤は乾燥したときにその初期活性を非常に高い割合で保持する。
第３の方法において、乾燥時の吸着能力の損失はＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６および関連の吸着剤（例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−４）を不揮発性の湿潤剤の存在下で水和することによって防止され得る。例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を吸着剤として用いる場合、吸着剤ビーズは、使用前に、取り扱い、滅菌、および貯蔵の間、部分的に乾燥され得る。これらの吸着剤の水含量が臨界レベルを下回ると、吸着能力の急速な損失が生じる（おそらく細孔の「崩壊」のため）；そのため、最適な効率のためには、細孔は使用前に湿潤剤で「再開放」されなければならない。
安定化剤は、ある種の吸着剤樹脂が乾燥条件にさらされたときに吸着能力をその最大近くに維持するのに有効である。安定化剤の使用は吸着剤の細孔が崩壊するのを防ぐ作用をすると考えられる。
受容可能な安定化剤は、水およびエタノールに可溶であり、エタノールおよび水と比較して不揮発性であり、そして少量が輸液されても安全であるべきである。グリセロールおよび低分子量ポリエチレングリコール（例えばＰＥＧ−２００およびＰＥＧ−４００）がこれらの特性を有する安定化剤の例である。グリセロールは明白な血液適合性の歴史がある。これはしばしば赤血球製剤の凍結保存において凍結保存剤として血液に添加される。例えば、Ｃｈａｐｌｉｎら、Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ ２６：３４１−４５（１９８６）；Ｖａｌｅｒｉら、Ａｍ． Ｊ． Ｖｅｔ． Ｒｅｓ．４２（９）１５９０−９４（１９８１）参照。１％までのグリセロールを含む溶液が日常的に輸液されており、グリセロール溶液は市販されている（例えば、Ｇｌｙｅｒｏｌｉｔｅ ５７溶液、Ｆｅｎｗａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ， Ｄｅｅｒｆｉｅｌｄ， ＩＬ）。Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６のような吸着剤ビーズはエタノールおよびグリセロール中で安定化され得る。
低分子量ポリエチレングリコールは一般的に薬剤基剤として使用され、これもまた安定化剤として使用され得る。ＰＥＧは液体および固体のポリマーであり、一般化学式はＨ（ＯＣＨ２ＣＨ２）ｎＯＨであり、ここでｎは４以上である。ＰＥＧの処方物は通常その後に、その平均分子量に対応する数が付けられる；例えば、ＰＥＧ−２００は分子量２００であり、そして分子量の範囲は１９０−２１０である。ＰＥＧは多くの処方物で市販されている（例えば、Ｃａｒｂｏｗａｘ、Ｐｏｌｙ−Ｇ、およびＳｏｌｂａｓｅ）。
（粒子の固定化のための不活性マトリクス）
吸着剤粒子は不活性マトリクスで固定化される。不活性マトリクスは合成または天然ポリマーで作製され得る。例えば、不活性マトリクスは合成または天然のポリマー繊維、例えば、繊維ネットワークである。不活性マトリクスは焼結ポリマーであり得る。不活性マトリクスは装置の他の構成要素と同様に、好ましくは生体適合性であり、そして接触時に物質の生物学的活性に実質的に悪影響を与えない。
最も好ましくは、合成繊維はポリエチレン繊維（Ａｉｒ Ｑｕａｌｉｔｙ Ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ（ＡＱＦ）、Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅの一部門（Ｃｈａｒｌｏｔｔｅ， Ｎ．Ｃ．））である。合成繊維の他の好ましい例はポリオレフィン、ポリエステルまたはポリアミド繊維である。他の例示の合成繊維としては、ポリプロピレン、ポリビニルアルコールおよびポリスルホン繊維が挙げられる。
好ましい実施態様において、合成ポリマー繊維は高融点の第１のポリマーコアが低融点の鞘で囲まれたものを含む。ポリマーコアは（ポリエチレンポリエステルテレフタレート）コアである得る。シースはナイロンシース、または修飾ポリエステルシースであり得る。繊維はＵｎｉｔｉｋａ（Ｏｓａｋａ、Ｊａｐａｎ）およびＨｏｅｃｈｓｔ Ｔｒｅｖｉｒａ ＧｍｂＨ ＆ Ｃｏ．（Ａｕｇｓｂｅｒｇ， Ｇｅｒｍａｎｙ）から市販されている。
例示の天然ポリマー繊維としては、種々の原料由来のセルロース繊維、例えば、ジュート、コズ（ｋｏｚｕ）、クラフト、およびマニラ麻などが挙げられる。合成または天然のポリマー繊維の網目を用いて、米国特許第４，５５９，１４５号および同第５，６３９，３７６号に記載のようにしてフィルタが作製される。これらは本明細書中に参考として援用される。
焼結粒子の構築に適した合成ポリマーは高密度ポリエチレン、超高分子量ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリフッ化ビニル、ポリテトラフルオロエチレン、ナイロン６である。より好ましくは焼結粒子はポリオレフィン、例えばポリエチレンである。
吸着剤粒子を有さない繊維も本発明で意図される。このような繊維は好ましくは、大きな多孔質の吸着表面積を含むか、あるいは小有機化合物の濃度の減少を促進する他の吸着手段を含む。
（粒子の固定化）
１つの実施態様において、吸着剤粒子を不活性マトリックスにより固定して、材料中の小有機化合物の濃度を減少させるための吸着媒体を生成する。不活性マトリックスは、その中に固定された吸着剤粒子とともに合成または天然のポリマー繊維ネットワークを含む３次元ネットワークであり得る。
好ましくは、吸着媒体は、不活性マトリックスにより固定された、上記で記載されるような、高多孔性構造およびきわめて大きい内部表面積を有する小多孔性吸着剤粒子を含有する。好ましくは、生物材料が吸着媒体と接触させられる場合、吸着媒体は、材料の生物学的活性または他の性質に、実質的に悪影響を及ぼさない。
エアフィルタを構築するために吸着剤ビーズを繊維ネットワークに固定する技術は、米国特許第５，４８６，４１０号および米国特許第５，６０５，７４６号に記載されており、これらは本明細書中で参考として援用される。図１に示されるように、繊維ネットワークのポリマー繊維６００は、比較的低い溶融温度を有するポリマーシース６０４（例えばナイロン）により覆われた、高い溶融温度を有するポリマー核６０２（例えばポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ））からなる。Ｈｅａｇｌｅらの米国特許第５，１９０，６５７号を参照のこと。これは本明細書中で参考として援用される。繊維状樹脂は、始めに吸着剤ビーズを繊維ネットワーク中に均一に分配することにより調製する。次に繊維ネットワークを急速に加熱し（例えば１８０℃×１分）、繊維６００のポリマーシースを溶融させ、そして吸着剤ビーズ６０６および他の繊維と結合させ、図２に示される架橋した繊維ネットワークを形成する。図３および図４（縮尺していない）に示されるように、概して、繊維ネットワークは３つの層を含有する；繊維６００で稠密にパックされた２つの外側の層６０７、ならびに吸着剤ビーズ６０６およびより少ない繊維６００を含むより稠密でない内側の層６０９。好適な実施態様において、繊維状樹脂の縁はポリウレタンまたは他のポリマーでシールしてもよい。あるいは、図３および図４に示されるように、熱シール６０８が得られる繊維状樹脂において予め定められた間隔で作られてもよい；例えば、熱シールは四角形のパターンで繊維状樹脂に作られ得る。その後、繊維状樹脂は熱シールを通って切断されて、所望の質量の吸着剤ビーズ（例えば、好ましくは５．０ｇより少なく、そしてさらに好ましくは３．０ｇより少ない）を含み、そして血液製剤容器内に設置するのに適した大きさである樹脂のサンプルを形成し得る。熱シールは、切断された繊維状樹脂がほつれるのを防ぎ、そして吸着剤ビーズを固定するのを助ける役割を果たす。しかしながら、そのような熱シールの使用は本発明を実施するために必要ではない。図４に示される代替的な実施態様において、吸着剤ビーズ６０６は繊維そのものに固定されているのではなく、むしろ繊維のより稠密な外層６０７の間に熱シール６０８で固定されている：この実施態様はまた、熱シールを通って切断された後に決められた量の吸着剤を含有する繊維状媒体のサンプルを生成し得る。
本発明はまた、吸着剤樹脂を繊維に固定するために接着剤（例えば結合剤）の使用を意図する。さらに、吸着剤ビーズが繊維ネットワークに化学的に付着していることが好ましい一方で、ビーズはまた繊維ネットワーク内に物理的に補足されてもよい：これは、例えば、ビーズを適所に保持するのに十分な繊維でビーズを取り囲むことにより達成され得る。
吸着剤粒子が繊維ネットワークに固定され得る他の方法もまた、意図される。粒子は、米国特許第５，６０５，７４６号および第５，４８６，４１０号（ＡＱＦ特許）（これらは、本明細書中で参考として援用される）に記載されるような、乾燥塗布（ｄｒｙ−ｌａｉｄ）プロセスを使用して固定され得る。粒子は、米国特許第４，５５９，１４５号および第４，３０９，２４７号 （これらは、本明細書中で参考として援用される）に記載されるような、湿潤塗布（ｗｅｔ−ｌａｉｄ）プロセスを使用して固定され得る。粒子は、米国特許５，６１６，２５４号 （これは、本明細書中で参考として援用される）に記載されるような、溶融吹き付け（ｍｅｌｔ−ｂｌｏｗｎ）プロセスを使用して固定され得る。天然のポリマー繊維からマトリックスを構築するために湿潤塗布を使用する場合、不活性マトリックスは、好ましくは、吸着剤粒子を繊維に結合するための結合剤を含む。結合剤の非制限的な例は、メラミン、ポリアミン、およびポリアミドを含む。代表的には、マトリックスは１％以下のそのような結合剤を含有する。
不活性マトリックスが、吸着剤粒子で焼結された合成ポリマーの粒子から構築される場合、吸着剤粒子がマトリックスよりも高い溶融温度を有することが重要である。
好ましくは、生成する吸着媒体は１範囲あたり公知の量の吸着剤を含有する。バッチ装置のためには、１範囲あたりの吸着剤は約１００ｇ／ｍ２〜約５００ｇ／ｍ２であり、好ましくは約２５０ｇ／ｍ２〜約３５０ｇ／ｍ２である。フロー装置のためには、１範囲あたりの吸着剤は約３００ｇ／ｍ２〜約１１００ｇ／ｍ２であり、好ましくは約５００ｇ／ｍ２〜約７００ｇ／ｍ２である。従って、特定の目的に対することを意図した吸着剤の適切な量は、単に予め定められた範囲の繊維状樹脂を切断することによって測定され得る（すなわち、繊維状樹脂の重量を計らない）。
好ましくは、吸着媒体は生体適合性であり（すなわち、毒性、有害性、または免疫性応答を引き起こさない）；血液製剤（例えば、血小板および凝固因子）のような材料の性質に最小限の影響しか与えず；そして毒性の抽出可能物と会合しない。吸着媒体の固定された吸着剤粒子は、好ましくは、高い機械的安定性を有する（すなわち微粒子を発生しない）。バッチ装置のための吸着媒体は、約１００〜５００ｇ／ｍ２の荷重において、約２５〜８５重量％の吸着剤、好ましくは約５０〜８０重量％の吸着剤、より好ましくは約２５０〜３５０ｇ／ｍ２の荷重において約５０〜８０重量％の吸着剤を含有する。
フロー装置のための吸着媒体は、約２０〜７０重量％の吸着剤、好ましくは約３０〜５０重量％の吸着剤を含有する。繊維状マトリックスが使用される場合、好ましくは、吸着媒体は約３０重量％の吸着剤粒子を含有する。焼結した粒子マトリックスが、粉砕した重合性吸着剤粒子とともに使用される場合、好ましくは、吸着媒体は約５０重量％の吸着剤粒子を含有する。
（吸着剤粒子のコーティング）
粒子、マトリックス、または吸着媒体の表面血液適合性は、それらの表面を親水性ポリマーでコーティングすることにより改善され得る。親水性ポリマーの例は、ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）（ｐＨＥＭＡ）（これは、例えば、Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ、Ｉｎｃ． （Ｏｎｔａｒｉｏ、ＮＹ）から入手可能である）、およびセルロースベースのポリマー、例えばエチルセルロース（これはＤｏｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ（Ｍｉｄｌａｎｄ、ＭＩ）から入手可能である）を含む。例えば、Ａｎｄｒａｄｅら、Ｔｒａｎｓ． Ａｍｅｒ． Ｓｏｃ． Ａｒｔｉｆ． Ｉｎｔ． Ｏｒｇａｎｓ ＸＶＩＩ：２２２−２８（１９７１）を参照のこと。コーティングの他の例は、ポリエチレングリコールおよびポリエチレンオキシドを含み、これらもまたＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ、Ｉｎｃ．から入手可能である。ポリマーコーティングは血液適合性を増強し、そして機械的な破損による小粒子の生成の危険性を減少し得る。
吸着剤表面はまた、固定されたヘパリンで修飾され得る。さらに、強陰イオン交換ポリスチレンジビニルベンゼン吸着剤が、ヘパリン吸着を介して修飾され得る。ヘパリン、ポリアニオンは、強陰イオン交換特性を有する吸着剤の表面に対して非常に強力に吸着する。種々の第四級アミン修飾ポリスチレンジビニルベンゼン吸着剤が市販されている。
コーティングは、多数の異なる方法において適用され得、米国特許第５，４５５，０４０号（これは本明細書中で参考として援用される）に記載されるような高周波グロー放電重合、およびＷｕｒｓｔｅｒ コーティングプロセス（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ Ｃｏｒｐ．（Ｗｉｎｃｈｅｓｔｅｒ、ＫＹ）により行われる）を含む。
１つの実施態様において、Ｗｕｒｓｔｅｒコーティングプロセスは、親水性ポリマー（例えばｐＨＥＭＡ）が吸着剤粒子の全表面上に均一に噴霧され得るように吸着剤粒子をチャンバー中に（一般に空気圧を介して）浮遊させることにより適用され得る。実施例３において例示されるように、ｐＨＥＭＡで均一に噴霧されたＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３は、血小板収率の上昇ならびにコーティングの量の増加に伴う血小板の形状の変化における劇的な効果を実証した。Ｗｕｒｓｔｅｒコーティングプロセスは、吸着剤表面の外部表面を選択的にコーティングし、内部細孔表面をほとんど無変化にすることが見いだされた。
好適な実施態様において、コーティングは固定された吸着媒体を親水性ポリマーに含浸することにより適用され得る（実施例３を参照のこと）。このプロセスは、吸着剤粒子に親水性ポリマーを噴霧することよりも簡単でありそしてより費用がかからない。
プロセスは、どのような特定の場合においても、吸着媒体のコーティングを適用するプロセスに限定されない。例えば、１つの実施態様において、ｐＨＥＭＡコーティングは吸着媒体の生成後に、しかし吸着媒体の熱シール前に適用される。別の実施態様において、吸着媒体は始めに熱シールされ、次いでｐＨＥＭＡコーティングが適用される。吸着媒体のコーティングに加えて、ｐＨＥＭＡ塗布を伴うリンスプロセスが、固定されていない粒子および繊維の除去の役割を担う。
コーティングの量が増加するにつれて、いくつかの小有機化合物がコーティングを通過して粒子表面にたどり着くことはより困難になり、吸着速度の減少をもたらす。従って、コーティングの量が増加するにつれて、コーティングされた吸着剤と同じ除去速度を達成するために、吸着剤の量を増加して、一般に使用しなければならない。１つの実施態様において、ｐＨＥＭＡコーティングの最適なレベルは、血小板収率およびインビトロでの血小板機能における保護効果が観測される最小限のコーティングである（０．１〜０．５％）。
コーティングは滅菌処理に対して感受性であり得る。例えば、γ線滅菌処理はコーティングの架橋および／または切断を引き起こし得る。従って、滅菌処理の型（電子線対γ線照射）および線量がコーティングされた吸着剤の性質に影響を及ぼし得る。一般に、電子線滅菌処理が好ましい。
（装置）
装置は、血液製剤のような材料から小有機化合物の濃度を減少させるために提供される。装置は、例えば、フロー装置またはバッチ装置であり得る。フローおよびバッチ装置の例は図１６に示される。フローおよびバッチ装置は文献において公知であり、そして例えばＰＣＴ公開広報ＷＯ ９６／４０８５７号において記載される（これは本明細書中で参考として援用される）。
本発明のバッチ装置は、固定された粒子を含有する吸着剤媒体を含む、血液バッグのような容器を含む。１つの実施態様において、血液製剤は吸着剤媒体を含む血液バッグに加えられ、そしてバッグは特定の時間の間振盪される。
例えば、１つの実施態様において、吸着媒体（例えば、固定されたＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３）は、血液製剤容器（例えば、ＰＬ １４６プラスチック容器（ＢａｘｔｅｒＨｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｃｏｒｐ． （Ｄｅｅｒｆｉｅｌｄ、ＩＬ）））の内部に設置され、血小板振盪機（Ｈｅｌｍｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｎｏｖｅｓｖｉｌｌ、ＩＮ））または回転攪拌機（Ｈｅｌｍｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｎｏｖｅｓｖｉｌｌ、ＩＮ））のいずれかに約２４時間室温で保持され、そして種々の温度条件下保管される。血液製剤容器の大きさは約６００〜約１０００ｍＬであり得る。保管温度は約４℃〜約２２℃であり得る。
吸着剤媒体からばらけて来得る吸着剤粒子の存在を減少させるための方法が使用され得る。
本発明は、メッシュバッグ／ポーチのような容器に保持された固定された吸着剤媒体を含むバッチ装置を意図する。メッシュ／ポーチは、織り、不織、または膜状エンクロージャーから構成されるものであり得る。１つの実施態様において、織りメッシュポーチは医薬グレードのポリエステルまたはナイロンから構成されるものであり得る。好適な実施態様は、ポリエステルである。市販されている膜は、以下のものを含むがこれらに限定されない：Ｓｕｐｏｒ（登録商標）２００、８００、１２００親水性ポリエチレンスルホネート（ＰＥＳ）膜（Ｇｅｌｍａｎ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ、ＭＩ））； Ｄｕｒａｐｏｒｅ（登録商標）親水性修飾ポリビニリデンジフルオリド（ＰＶＤＦ）（Ｍａｎｔｅｅ Ａｍｅｒｉｃａ Ｃｏｒｐ．（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ））、および融和した疎水性孔を持つ親水性修飾ポリスルホン膜、例えばＧｅｍｉｎｉ膜（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ（Ｍａｒｌｂｏｒｏｕｇｈ、ＭＡ））；ならびにポリビニリデンでコーティングされたポリカーボネートを含有する膜（Ｐｏｒｅｔｉｃｓ（Ｌｉｖｅｒｍｏｒｅ、ＣＡ））。容器は吸着媒体を加えた後に滅菌され得る。
フロー装置は、血液製剤をフロー装置を通して灌流させることにより、血液製剤のような材料から小有機化合物の濃度を減少させ得る。
装置がフロー装置である場合、好ましくは吸着媒体は、実質的な圧力の降下がなく生物学的流体の一様な流れを促進するために、約３〜３０ｍｍの厚さである。好ましくは、媒体は約３〜１５ｍｍの厚さである。より好ましくは、媒体は約５〜８ｍｍの厚さである。装置がバッチ装置である場合、吸着媒体は約２〜３０ｍｍの厚さであり得る。好ましくは、媒体は約２〜１０ｍｍの厚さである。
（血小板について好適な実施態様）
好ましくは、血小板を含む材料において、血小板の生物学的活性を実質的に維持したままで、小有機化合物の濃度を減少させるための、バッチまたはフロー装置が提供される。バッチ装置が好ましい。吸着媒体は不活性マトリックスにより固定された吸着剤粒子を含む。好ましい粒子は高多孔質でありそして約７５０ｍ２／ｇよりも大きい表面積を有する。
特に好ましい粒子は、超架橋ポリスチレンネットワーク（例えば、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３またはＰｕｒｏｌｉｔｅＭＮ−２００）を含むポリ芳香族吸着剤である。好ましい不活性マトリックスは、合成または天然のポリマー繊維を含む。好適な実施態様において、不活性マトリックスは、より低い溶融温度を有するシースで覆われた高い溶融温度を有する第一のポリマー核を含む合成ポリマー繊維を含む。ポリマー核は、ポリエチレンテレフタレート核であり得る。シースは、ナイロンシースまたは修飾ポリエステルシースであり得る。ステープル繊維は、Ｕｎｉｔｉｋａ（Ｏｓａｋａ、Ｊａｐａｎ）およびＨｏｅｃｈｓｔ Ｔｒｅｖｉｒａから市販されている。
１つの実施態様において、バッチ装置は、吸着媒体、粒子保持装置（例えば、織りメッシュ、不織材料、または膜）、およびハウジング（例えば、血液保管容器）を含む。
本発明の装置、材料、および方法によって減少される小有機化合物の例は、ソラレン、ソラレン誘導体、イソソラレン、ソラレン光活性化生成物、アクリジン、およびアクリジン誘導体である。
典型的には、血小板は献血（ｄｏｎａｔｉｏｎ）の３日以内に使用されるが、室温で５日までは保管され得、従って血小板を全保管期間中吸着媒体と接触したままにさせておくことは有利である。好ましくは、手順は許容できる血小板収率（例えば、１０％未満の損失）をもたらす。本発明により意図される１つの方法は、吸着剤表面の血液適合性を改善することにより保管の延長を可能にする。
不活性マトリックスにより固定された吸着剤粒子を含む吸着媒体の使用は、小有機化合物の濃度を、血小板数の実質的な損失無しに減少させ得る。語句「実質的な損失無しに」は、１日という期間、より好ましくは５日という期間にわたり、約１０％未満、好ましくは約５％未満の血小板数の損失を意味する。さらに、血小板が血小板数の実質的な損失無しに吸着媒体と接触し得る時間は、血小板が吸着剤粒子単体と接触し得る時間の長さよりも長い。粒子の固定化は、予期せず、接触時間の延長および血小板数の損失の減少の両方を可能にする。代表的には、血小板は、血小板数のかなりの損失（例えば約８０％収率）無しに約２０時間よりも長く、固定されていない吸着剤粒子と接触し得ない。対照的に、血小板は、不活性マトリックスにより固定された吸着剤粒子を含む吸着媒体と、血小板数の実質的な損失無しに２０時間よりも長く（例えば、約１〜５日）接触し得る。
さらに、インビトロでの血小板機能（例えば、形状変化、ＧＮＰ−１４０、ｐＨ）は、吸着媒体無しの血小板の保管と比較して、吸着媒体の存在下で保管された血小板に対して経時的に改善されている。吸着媒体の存在下で保管された血小板は、約６よりも大きく約７．５よりも小さいｐＨを有し得る。
（血漿について好適な実施態様）
好ましくは、血漿を含む材料において、血漿の生物学的活性を実質的に維持したままで、小有機化合物の濃度を減少させるための、バッチまたはフロー装置が提供される。フロー装置が好ましい。吸着媒体は不活性マトリックスにより固定された吸着剤粒子を含む。好ましい粒子は高多孔質でありそして約７５０ｍ２／ｇよりも大きい表面積を有する。
特に好ましい粒子は、Ｎｏｒｉｔ Ａ Ｓｕｐｒａであり、これはＮｏｒｉｔ Ａｍｅｒｉｃａｓ、Ｉｎｃ．（Ａｔｌａｎｔａ、ＧＡ）から入手可能である。Ｎｏｒｉｔ Ａ Ｓｕｐｒａは、亜炭（ｌｉｇｎｉｔｅ）の蒸気活性化により形成されるＵＳＰグレードの活性炭である。この活性炭は、非常に高い総表面積（２０００ｍ２／ｇ）を有し、そして本質的に微細孔質である。
さらに、粒子は以下の粒子のいずれから選択されてもよく、ここで粒子は好ましくは、直径１０μｍ〜１００μｍの範囲の大きさを有し、粉砕直接合成または何らかの他の手段のいずれかによるもので、そして活性炭である：例えば、Ｐｉｃａｃｔｉｆ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ（Ｐｉｃａ ＵＳＡ、Ｃｏｌｕｍｂｕｓ、ＯＨ）、合成炭素質吸着剤；例えば、Ａｍｂｅｒｓｏｒｂ ５７２（Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ、Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ）、疎水性樹脂；例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ吸着剤（例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−２、ＸＡＤ−４、およびＸＡＤ−１６）、Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ （Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ）から入手可能；Ａｍｂｅｒｃｈｒｏｍ（登録商標）吸着剤、Ｔｏｓｏ Ｈａａｓ（ＴｏｓｏＨａｓｓ、Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙｖｉｌｌｅ、ＰＡ）から入手可能；Ｄｉａｉｏｎ（登録商標） ／／Ｓｅｐａｂｅａｄｓ（登録商標）Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ（例えば、Ｄｉａｉｏｎ（登録商標）ＨＰ２０）、Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ａｍｅｒｉｃａ、Ｉｎｃ．（Ｗｈｉｔｅ Ｐｌａｉｎｓ、ＮＹ） から入手可能；Ｈｙｐｅｒｓｏｌ−Ｍａｃｒｏｎｅｔ（登録商標） Ｓｏｒｂｅｎｔ Ｒｅｓｉｎ（例えば、Ｈｙｐｅｒｓｏｌ−Ｍａｃｒｏｎｅｔ（登録商標） Ｓｏｒｂｅｎｔ Ｒｅｓｉｎ ＭＮ−１５０、およびＭＮ−４００）、Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（Ｂａｌａ Ｃｙｎｗｙｄ、ＰＡ） から入手可能；およびＤｏｗｅｘ（登録商標） Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ（例えば、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４０３２３、ＸＵＳ−４３４９３、およびＸＵＳ−４０２８５）、Ｄｏｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ（Ｍｉｄｌａｎｄ、ＭＩ）から入手可能。
不活性マトリックスは、合成または天然のポリマー繊維であり得る。好適な実施態様において、不活性マトリックスは焼結した粒子またはセルロースである。
本発明の装置、材料、および方法によって減少する小有機化合物の例は、ソラレン、ソラレン誘導体、イソソラレン、ソラレン光活性化生成物、メチレンブルー、フェノチアジン、アクリジンである。
減少されるべき濃度の小分子を含む生物学的流体が血漿である場合、装置は、好ましくは十分なレベルの凝固活性を維持するフロー装置である。凝固活性の測定は、プロトロンビン時間、活性化部分トロンボプラスチン時間、ならびに凝固因子Ｉ、ＩＩ、Ｖ、ＶＩＩ、ＶＩＩＩ、ＩＸ、Ｘ、ＸＩ、およびＸＩＩの機能測定を含む。凝固因子活性の十分な機能測定は、装置を通過する前のレベルの８０％よりも大きいレベルであるか、または凝固時間の場合において、この種の試験を行う各研究室に対して確立された通常範囲内にあるものである。好ましい凝固活性の測定は、総合的な血漿の凝固能力の測定であるＰＴおよびＰＴＴならびに一般に組換えタンパク質で置換されない因子である因子Ｉ、ＩＩ、Ｖ、ＶＩＩ、Ｘ、ＸＩ、およびＸＩＩを含む。装置を通過する前のレベルと比較して、これらの因子の凝固活性の９０％よりも高いレベルが保持され、そしてＰＴおよびＰＴＴにおいて約１．５秒未満の変化しか有さないことが好ましい。
１つの実施態様において、フロー装置は吸着媒体およびハウジングを含み得る。ハウジングは、良好な媒体利用を促進するために血漿の均一な流れを促進し、そしてそれが充填（ｐｒｉｍｅ）することで、血漿が空気をその上部に押し上げることが可能となり、それにより血漿と吸着媒体の間の接触範囲を減少させることにより媒体の利用を減少させる気泡を除去する。ハウジングは平坦であるか、または平坦ではない吸着媒体もしくは粒子保持媒体（例えば、円筒形吸着媒体）を収容するための実質的な深さを有し得る。好適な実施態様において、ハウジングは平坦である。ハウジングは、種々の位置で、流入口および流出口を有する（例えば、頂部流入口／頂部流出口、または下部流入口／下部流出口）。好適な実施態様において、流出口は良好な排出を促進するために下部にあり、そして流入口は媒体の利用を促進するために頂部にある。
別の実施態様において、フロー装置は吸着媒体を含み、そしてハウジングもまた、粒子保持媒体を含み得る。好適な実施態様において、装置は、高い液体流速およびタンパク質の高回収率を維持しながら、吸着媒体から落ちてくる粒子を保持するために、吸着媒体の下流に粒子保持媒体を含む。粒子保持媒体は、膜、繊維の乾燥もしくは湿潤塗布マトリックス、焼結ポリマーマトリックス、織り材料、不織材料（不織ポリエステル）、またはそれらの組合せであり得る。
装置ハウジングは、吸着媒体の下流のほぼ平行な配向で粒子保持媒体を保持する。（米国特許第５，６６０，７３１号、これは本明細書中で参考として援用され、フィルタハウジングの実施例を開示する。）ハウジングは、液体の生物学的活性に実質的に悪影響を及ぼさない、任意の適切な剛直で不浸透性の材料から構築され得る。好ましくは、ハウジングは合成ポリマーから構築される。そのようなポリマーの非制限的な例は、ポリアクリル酸、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレン、およびポリカーボネートプラスチックを含む。
装置がフロー装置である場合、不活性マトリックスにより固定された粒子を含む吸着媒体は、実質的な圧力の降下がなく生物学的流体の均一な流れを促進するために、約３〜３０ｍｍの厚さであるべきである。好ましくは、媒体は約３〜１５ｍｍの厚さである。より好ましくは、媒体は約５〜８ｍｍの厚さである。
装置がフロー装置である場合、重力フローが好ましい。より好ましくは、装置は１２〜７２インチの水の差圧で１０〜８０ｍＬ／分の流速を可能にするように構築されている重力フロー装置である。より好ましくは、装置は２４〜４８インチの水の差圧で３０〜６０ｍＬ／分の流速を可能にする。
（赤血球について好適な実施態様）
好ましくは、赤血球を含む材料において、赤血球の生物学的活性を実質的に維持したままで、小有機化合物の濃度を減少させるための、バッチまたはフロー装置が提供される。吸着媒体は不活性マトリックスにより固定された吸着剤粒子を含む。好ましい粒子は高多孔質でありそして約７５０ｍ２／ｇよりも大きい表面積を有する。
好ましくは、装置は小有機化合物の濃度を減少させた後の赤血球の生物学的活性を実質的に維持するフローまたはバッチ装置である。フロー装置の実施態様は、２つの構成要素を含む：吸着媒体およびハウジングであり、そして必要に応じて粒子保持媒体である。粒子保持媒体およびハウジングの実施態様は、血漿装置の実施態様について上記で記載したとおりである。別の実施態様において、赤血球装置は、接触に際して液体の生物学的活性に実質的に悪影響を及ぼさないバッチ装置である。バッチ装置の実施態様は、不活性マトリックスにより固定された粒子を含む吸着媒体および必要に応じて粒子保持装置を含む。
１つの実施態様において、粒子は活性炭である。好ましくは、活性炭は合成供給源に由来する。活性炭の非制限的な例は以下を含む：Ｐｉｃａｃｔｉｆ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ、これはＰｉｃａ Ｕ． Ｓ． Ａ． （Ｃｏｌｕｍｂｕｓ、ＯＨ）から入手可能である；Ｎｏｒｉｔ ＲＯＸ ０．８、これはＮｏｒｉｔ Ａｍｅｒｉｃａｓ Ｉｎｃ． （Ａｔｌａｎｔａ、ＧＡ）から入手可能である；および、Ｇ−２７７、これはＰｉｃａ Ｕ． Ｓ． Ａ． （Ｃｏｌｕｍｂｕｓ、ＯＨ）から入手可能である。
赤血球装置がバッチ装置である場合、好ましくは、吸着剤はＡｍｂｅｒｓｏｒｂ ５７２のような合成供給源に由来する活性炭である。Ａｍｂｅｒｓｏｒｂは合成活性化炭素質（例えば炭素に富んだ）吸着剤であり、これはＲｏｈｍ ＆ Ｈａａｓ（Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ）により製造されている。一般にＡｍｂｅｒｓｏｒｂは大きな球面粒子（３００〜９００μｍ）であり、それらは代表的な活性炭よりも耐久性がある。Ａｍｂｅｒｓｏｒｂは、高スルホン化多孔性ポリスチレンビーズを特許の高温活性化プロセスで処理することにより合成的に製造される。これらの吸着剤は、最適の吸着活性を達成するための予備膨潤を必要としない。
別の好適な実施態様において、粒子は疎水性樹脂であり得る。疎水性樹脂の非制限的な例は、以下のポリ芳香族吸着剤を含む：Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）吸着剤（例えば、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−２、ＸＡＤ−４、およびＸＡＤ−１６）、Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ （Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ）から入手可能；Ａｍｂｅｒｃｈｒｏｍ（登録商標）吸着剤、Ｔｏｓｏ Ｈａａｓ （ＴｏｓｏＨａｓｓ、Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙｖｉｌｌｅ、ＰＡ）から入手可能；およびＤｉａｉｏｎ（登録商標）／／Ｓｅｐａｂｅａｄｓ（登録商標）Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ（例えば、Ｄｉａｉｏｎ（登録商標）ＨＰ２０）、Ｍｉｔｓｕｂｉｓｈｉ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ａｍｅｒｉｃａ、Ｉｎｃ． （Ｗｈｉｔｅ Ｐｌａｉｎｓ、ＮＹ） から入手可能。特に好適な実施態様において、粒子は、Ｈｙｐｅｒｓｏｌ−Ｍａｃｒｏｎｅｔ（登録商標） Ｓｏｒｂｅｎｔ Ｒｅｓｉｎ（例えば、Ｈｙｐｅｒｓｏｌ−Ｍａｃｒｏｎｅｔ（登録商標） Ｓｏｒｂｅｎｔ Ｒｅｓｉｎ ＭＮ−２００、ＭＮ−１５０、およびＭＮ−４００）（Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（Ｂａｌａ Ｃｙｎｗｙｄ、ＰＡ） から入手可能）、またはＤｏｗｅｘ（登録商標） Ａｄｓｏｒｂｅｎｔ（例えば、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３、およびＸＵＳ−４０２８５）（Ｄｏｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ（Ｍｉｄｌａｎｄ、ＭＩ）から入手可能）である。
好適な不活性マトリックスは、合成または天然のポリマー繊維を含む。好適な実施態様において、不活性マトリックスは、より低い溶融温度を有するシースによって覆われた高い溶融温度を有する第一のポリマー核を含む合成ポリマー繊維を含む。ポリマー核は、ポリエチレンテレフタレートまたはポリエステル核であり得る。シースは、ナイロンシースまたは修飾ポリエステルシースであり得る。繊維は、Ｕｎｉｔｉｋａ （Ｏｓａｋａ、Ｊａｐａｎ）およびＨｏｅｃｈｓｔ Ｔｒｅｖｉｒａ （Ａｕｇｓｂｅｒｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から市販されている。
いくつかの実施態様において、吸着媒体はエンクロージャーの中にある。１つの実施態様において、バッチ装置は吸着媒体およびハウジングを含む。別の実施態様において、バッチ装置は吸着媒体を含み、そしてハウジングはまた粒子保持媒体を含み得る。好適な実施態様において、ハウジングは６００ｍｌと１Ｌの間の容量の血液バッグを含む。粒子保持媒体は織りポリエステル、不織ポリエステル、または膜状エンクロージャーを含み得る。バッチ装置は、１〜３５日の期間にわたり、振盪しながら、赤血球と４℃または２２℃で接触することが好ましい。
不活性マトリックスにより固定された吸着剤粒子を含む吸着媒体の使用は、赤血球機能の実質的な損失無しに、小有機化合物の濃度を減少させ得る。語句「実質的な損失無しに」は、溶血において約１％未満の変化を示す；好ましくは、溶血において約０．８％未満の変化、約９０％よりも大きい赤血球の回収であり；好ましくは、約８０％よりも大きい赤血球の回収、ＡＴＰ濃度の変化における装置無しのコントロール赤血球からの約１０％未満の差異、および細胞外カリウム濃度の変化における装置無しのコントロール赤血球からの約１５％未満の差異である。３５日で、溶血における変化は固定されていない粒子と比較して、ＩＡＤについて少なくとも１０％、好ましくは２０％、そしてより好ましくは５０％高い。
赤血球機能は、標準キットを使用してアッセイされ得る。詳細には、Ｄｒａｂｋｉｎ試薬（（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ）、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）中で、赤血球の上清サンプルの５４０ｎｍでの吸光度（ａｄｓｏｒｂａｎｃｅ）を測定することにより、溶血が測定され得る。カリウム漏出量は、Ｎａ＋／Ｋ＋分析器（Ｃｉｂａ−Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｍｅｄｆｉｅｌｄ、ＭＡ）を使用して、アッセイされ得る。全赤血球サンプルにおけるＡＴＰの定量的酵素測定は、標準キット（Ｓｉｇｍａ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を使用し、そして水のバックグラウンドと比較した３４０ｎｍの吸光度を測定して、可能である。
精製されるべき生物学的流体が赤血球である場合、装置は赤血球サンプル中の環式および非環式小有機分子の両方の濃度を減少させ得る。好ましくは、装置は赤血球サンプル中のアクリジン誘導体およびチオールの両方の濃度を減少させ得る。より好ましくは、装置は赤血球サンプル中の、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンおよびグルタチオンの両方の濃度を減少させ得る。標準ＨＰＬＣアッセイは、装置と接触した赤血球中の５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンおよびグルタチオンの濃度を測定するために使用され得る。アッセイの移動相は、ＨＰＬＣ水中１０ｍＭのＨ３ＰＯ４およびアセトニトリル中１０ｍＭのＨ３ＰＯ４である。Ｚｏｒｂａｘ ＳＢ−ＣＮ およびＹＭＣ ＯＤＳＡＭ−３０３カラムがＭａｃＭｏｄ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ、Ｉｎｃ． （Ｃｈａｄｄｓ Ｆｏｒｄ、ＰＡ）およびＹＭＣ、Ｉｎｃ． （Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＮＣ）から入手可能である。
（応用）
本発明は小有機化合物の濃度を減少させることを意図する。小有機化合物は、光活性化生成物、アミノアクリジン、有機色素、およびフェノチアジンのような病原体不活化剤を含む。病原体不活化剤の例は、ソラレンおよびアクリジンのようなフロクマリンを含む。例えば、米国特許第５，４５９，０３０号および５，５５９，２５０号（本明細書中で参考として援用される）に記載されるような、病原体不活化化合物での血液製剤の処理に続き、血液製剤中の病原体不活化化合物の濃度は、処理される血液製剤を本発明の装置と接触させることにより減少され得る。
１つの実施態様において、本発明は溶液での病原体不活化の方法を意図し、ここで方法は以下を含む：ａ）任意の順番で、ｉ）環式化合物、ｉｉ）上述の病原体で汚染されている疑いのある溶液、およびｉｉｉ）繊維状樹脂を提供する工程；ｂ）上述の溶液を上述の環式化合物で処理して処理された溶液生成物を生成する工程、ここで上述の病原体は不活化される；およびｃ）上述の処理された溶液生成物を上述の繊維状樹脂で処理する工程、さらに血液製剤の所望の生物学的活性を実質的に維持しながら、血液製剤中の小有機化合物の濃度を減少させるための装置を含み、装置は高多孔性吸着剤粒子を含み、ここで吸着剤粒子は不活性マトリックスにより固定されている。
病原体不活化化合物に加えて、その反応性分解生成物が、例えば輸液の前に血液製剤のような物質から減少され得る。
本明細書中で開示される物質および装置は、アフェレーシス法に使用され得る。全血は２つ以上の特定の成分（例えば、赤血球、血漿、および血小板）に分離され得る。単語「アフェレーシス」は広義には、血液をドナーから取り出して種々の成分に分離し、目的の成分（単数または複数）を収集して保持し、そして他の成分をドナーに戻す手順を示す。ドナーは、再注入プロセスの間代替液を受け取り、成分の除去により生じる容量と圧の損失を埋め合わせる補助とする。アフェレーシス系は、ＰＣＴ公開広報ＷＯ９６／４０８５７号に記載されており、これは本明細書中参考として援用される。
（小有機化合物）
小有機化合物の多様なセットが、本発明の装置により吸着され得る。分子は、環式または非環式であり得る。１つの実施態様において、化合物は、好ましくは、ソラレン、アクリジン、または色素のような環式化合物である。別の実施態様において、化合物はチオールである。
環式化合物の非制限的な例は以下を含む：アクチノマイシン、アントラサイクリノン（ａｎｔｈｒａｃｙｃｌｉｎｏｎｅ）、マイトマイシン（ｍｉｔｏｍｙａｃｉｎ）、アントラマイシン、ならびに有機色素および光反応性化合物として、ベンゾジピロン、フルオレン、フルオレノン、フロクマリン、ポルフィリン、プロトポルフィリン、プルプリン、フタロシアニン、 Ｍｏｎｏｓｔｒａｌ Ｆａｓｔ Ｂｌｕｅ、Ｎｏｒｐｈｉｌｌｉｎ Ａ、フェナントリジン、フェナザチオニウム塩、フェナジン、フェノチアジン、フェニルアジド、キノリン、およびチアキサンテノン。好ましくは、化合物はフロクマリンまたは有機色素である。より好ましくは、化合物はフロクマリンである。
フロクマリンの非制限的な例は、ソラレンおよびソラレン誘導体を含む。特に意図されるものは、４’−アミノメチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、８−メトキシソラレン、ハロゲン化ソラレン、イソソラレン、および四級アミン、糖、または他の核酸結合基と連結したソラレンである。また、意図されるソラレンは以下のものである：５’−ブロモメチル−４，４’，８−トリメチルソラレン、４’−ブロモメチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（４−アミノ−２−アザ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（２−アミノエチル）−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（５−アミノ−２−オキサ）ペンチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（５−アミノ−２−アザ）ペンチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（ ６−アミノ−２−アザ）ヘキシル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（７−アミノ−２，５−オキサ）ヘプチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（１２−アミノ−８−アザ−２，５−ジオキサ）ドデシル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（１３−アミノ−２−アザ−６，１１−ジオキサ）トリデシル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（７−アミノ−２−アザ）ヘプチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（７−アミノ−２−アザ−５−オキサ）ヘプチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（９−アミノ−２，６−ジアザ）ノニル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（８−アミノ−５−アザ−２−オキサ）オクチル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（９−アミノ−５−アザ−２−オキサ）ノニル−４，５’，８−トリメチルソラレン、４’−（１４−アミノ−２，６，１１−トリアザ）テトラデシル−４，５’，８−トリメチルソラレン、５’−（４−アミノ−２−アザ）ブチル−４，４’，８−トリメチルソラレン、５’−（６−アミノ−２−アザ）ヘキシル−４，４’，８−トリメチルソラレン、および５’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，４’，８−トリメチルソラレンである。好ましくは、ソラレンは４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンである。
（アクリジン）
アクリジンの非制限的な例は、アクリジンオレンジ、アクリフラビン、キナクリン、Ｎ１，Ｎ１−ビス（２−ヒドロキシエチル）−Ｎ４−（６−クロロ−２−メトキシ−９−アクリジニル）−１，４−ペンタンジアミン、９−（３−ヒドロキシプロピル）アミノアクリジン、Ｎ−（９−アクリジニル）グリシン、Ｓ−（９−アクリジニル）−グルタチオンである。好適な実施態様において、アクリジンはＮ−（９−アクリジニル）−β−アラニン、またはいわゆる５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンを含む。
（色素）
色素の非制限的な例は、メチレンブルー、ニュートラルレッド、トルイジンブルー、クリスタルバイオレット、およびａｚｕｒｅ Ａのようなフェノチアジン、ならびにメチレンバイオレットＢｅｒｎｔｈｓｅｎのようなフェノチアゾンを含む。好ましくは、色素はメチレンブルーまたはトルイジンブルーである。より好ましくは、色素はメチレンブルーである。
（他の有機化合物）
種々の有機化合物の濃度は減少され得る。他の化合物の例は、クエンチング化合物を含む。求電子基であるかまたは求電子基を形成し得る官能基を含む病原体不活化化合物の、望まない副反応をクエンチするための方法は、同時提出された米国特許出願、「生物系における病原体不活化剤をクエンチするための方法」（事件整理番号（Ｄｏｃｋｅｔ Ｎｕｍｂｅｒ）２８２１７３０００６００、１９９８年１月６日提出）に記載されており、この開示は本明細書で援用される。この方法において、血液製剤のような物質は、病原体不活化化合物およびクエンチャーで処理され、ここでクエンチャーは、求電子基と共有結合的に反応し得る求核官能基を含む。１つの実施態様において、病原体不活化化合物は、核酸結合リガンドおよび官能基（マスタード基など）を含み、これらはインサイチュで求電子基を形成し得る。クエンチャーの例は、求核基を含む化合物を含むが、これらに限定されない。求核基の例は、チオール、チオ酸、ジチオ酸、チオカルバメート、ジチオカルバメート、アミン、ホスフェート、およびチオホスフェート基を含む。クエンチャーは、ピリジンのような窒素ヘテロ環であるか、または含んでいてもよい。クエンチャーは、グルコース−６−ホスフェートのようなホスフェート含有化合物であり得る。クエンチャーはまた、チオール含有化合物であり得、以下を含むがこれらに限定されない；グルタチオン、システイン、Ｎ−アセチルシステイン、メルカプトエタノール、ジメルカプロール、メルカプタン、メルカプトエタンスルホン酸、およびその塩（例えば、ＭＥＳＮＡ）、ホモシステイン、アミノエタンチオール、ジメチルアミノエタンチオール、ジチオスレイトール、および他のチオール含有化合物。芳香族チオール化合物の例は、２−メルカプトベンズイミダゾールスルホン酸、２−メルカプトニコチン酸、ナフタレンチオール、キノリンチオール、４−ニトロ−チオフェノール、およびチオフェノールを含む。他のクエンチャーは、ニトロベンジルピリジン、および無機求核分子（例えば、セレン化合物塩または有機セレン化合物、チオ硫酸塩、亜硫酸塩、硫化物、チオリン酸塩、ピロリン酸塩、水硫化物、およびジチオ亜硝酸塩）を含む。クエンチャーは、求核基を含むペプチド化合物であり得る。例えば、クエンチャーはシステイン含有化合物、例えばＧｌｙＣｙｓのようなジペプチド、またはグルタチオンのようなトリペプチドであってもよい。
他の有機化合物は、メチルチオグリコレート、チオ乳酸、チオフェノール、２−メルカプトピリジン、３−メルカプト−２−ブタノール、２−メルカプトベンゾチアゾール、チオサリチル酸、およびチオクト酸のようなチオールを含み得る。
以下の実施例は、本発明の特定の好適な実施態様および局面を例示するために提供され、そしてそれらの範囲を制限するものとして解釈されるべきではない。
以下の実験の開示において、以下の略語を用いる：ｅｑ（当量）；Ｍ（モル濃度）；μＭ（マイクロモル濃度）；Ｎ（規定）；ｍｏｌ（モル）；ｍｍｏｌ（ミリモル）；μｍｏｌ（マイクロモル）；ｎｍｏｌ（ナノモル）；ｇ（グラム）；ｍｇ（ミリグラム）；μｇ（マイクログラム）；Ｋｇ（キログラム）；Ｌ（リットル）；ｍＬ（ミリリットル）；μＬ（マイクロリットル）；ｃｍ（センチメートル）；ｍｍ（ミリメートル）；μｍ（マイクロメートル）；ｎｍ（ナノメートル）；ｍｉｎ．（分）；ｓおよびｓｅｃ．（秒）；Ｊ（ジュール、あるいはワット秒）；℃（摂氏度）；ＴＬＣ（薄層クロマトグラフィー）；ＨＰＬＣ（高速液体クロマトグラフィー）；ｐＨＥＭＡおよびｐ（ＨＥＭＡ）（ポリ［２−ヒドロキシエチルメタクリレート］）；ＰＣ （血小板濃度）；ＰＴ（プロトロンビン時間）；ａＰＴＴ（活性化部分トロンボプラスチン時間）；ＴＴ（トロンビン時間）；ＨＳＲ（低浸透圧性ショック応答）；ＦＤＡ（合衆国食品医薬品局）；ＧＭＰ（優良製造規則）；ＤＭＦ（薬物元帳（ｍａｓｔｅｒｆｉｌｅ））；ＳＰＥ（固層抽出）；Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）；Ａｓａｈｉ（Ａｓａｈｉ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃｏ．， Ｌｔｄ．、Ｔｏｋｙｏ、Ｊａｐａｎ）；Ｂａｋｅｒ （Ｊ． Ｔ． Ｂａｋｅｒ， Ｉｎｃ．、Ｐｈｉｌｌｉｐｓｂｕｒｇ、ＮＪ）；Ｂａｒｎｓｔｅａｄ （Ｂａｒｎｓｔｅａｄ／ Ｔｈｅｒｍｏｌｙｎｅ Ｃｏｒｐ．、Ｄｕｂｕｑｕｅ、ＩＡ）；Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ （Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ；Ｃｏｃｋｅｙｓｖｉｌｌｅ、ＭＤ）；Ｂｉｏ−Ｒａｄ （Ｂｉｏ−Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）；Ｃｅｒｕｓ （Ｃｅｒｕｓ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ；Ｃｏｎｃｏｒｄ、ＣＡ）；Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ （Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ Ｃｏｒｐ．；Ｈａｖｅｒｔｏｗｎ、ＰＡ）；Ｃｉｂａ−Ｃｏｒｎｉｎｇ （Ｃｉｂａ−Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ Ｃｏｒｐ．；Ｏｂｅｒｌｉｎ、ＯＨ）；Ｃｏｎｓｏｌｉｄａｔｅｄ Ｐｌａｓｔｉｃｓ （Ｃｏｎｓｏｌｉｄａｔｅｄ Ｐｌａｓｔｉｃｓ Ｃｏ．、Ｔｗｉｎｓｂｕｒｇ、ＯＨ）；Ｄｏｗ （Ｄｏｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．；Ｍｉｄｌａｎｄ、ＭＩ）；Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ （Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉｃａ Ｉｎｃ．、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）；Ｇｅｌｍａｎ（Ｇｅｌｍａｎ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ、ＭＩ）；Ｇｒａｃｅ Ｄａｖｉｓｏｎ（Ｗ． Ｒ． Ｇｒａｃｅ ＆Ｃｏ．、Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ、ＭＤ）；Ｈｅｌｍｅｒ（Ｈｅｌｍｅｒ Ｌａｂｓ、Ｎｏｂｌｅｓｖｉｌｌｅ、ＩＮ）；Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅ（Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅ Ｃｏｒｐ．、Ｃｈａｒｌｏｔｔｅ、ＮＣ）；Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ Ｃｏｒｐ． （Ｗｉｎｃｈｅｓｔｅｒ、ＫＹ）；Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ（Ｍｉｌｆｏｒｄ、ＭＡ）；ＮＩＳ（Ｎｉｃｏｌｅｔ、ａ Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｐｅｃｔｒａ Ｃｏ．、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）；Ｐｏｒｅｔｉｃｓ（Ｌｉｖｅｒｍｏｒｅ、ＣＡ）；Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（Ｂａｌａ Ｃｙｎｗｙｄ、ＰＡ） Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ（Ｃｈａｕｎｙ、Ｆｒａｎｃｅ）；Ｓａａｔｉ（Ｓｔａｍｆｏｒｄ、ＣＴ）；Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ（Ｏｎｔａｒｉｏ、ＮＹ）；Ｓｉｇｍａ（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）；Ｓｐｅｃｔｒｕｍ（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｍｆｇ． Ｃｏｒｐ．、Ｇａｒｄｅｎｉａ、ＣＡ）；Ｓｔｅｒｉｇｅｎｉｃｓ（Ｃｏｒｏｎａ、ＣＡ）；Ｔｅｔｋｏ， Ｉｎｃ．（Ｄｅｐｅｗ、ＮＹ）；ＴｏｓｏＨａａｓ（ＴｏｓｏＨａｓｓ、Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙｖｉｌｌｅ、ＰＡ）；Ｗａｌｌａｃ（Ｗａｌｌａｃ Ｉｎｃ．、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）；Ｗｅｓｔ Ｖａｃｃｏ（Ｃｏｖｉｎｇｔｏｎ、ＶＡ）；ＹＭＣ（ＹＭＣ Ｉｎｃ．、Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＮＣ）；ＤＶＢ（ジビニルベンゼン）；ＬＡＬ（リムルス変形細胞溶解産物（ｌｙｓｔａｔｅ））；ＵＳＰ（合衆国薬局方）；ＥＡＡ（アセト酢酸エチル）；ＥｔＯＨ（エタノール）；ＨＯＡｃ（酢酸）；Ｗ（ワット）；ｍＷ（ミリワット）；ＮＭＲ（核磁気共鳴；Ｖａｒｉａｎ Ｇｅｍｉｎｉ ２００ＭＨｚ フーリエ変換分光器で室温で得られるスペクトル）；ｆｔ３／分（１分あたりの立方フィート）；ｍ． ｐ．（融点）；ｇ／分およびｇｐｍ（１分あたりのガロン）；ＵＶ（紫外光）；ＴＨＦ（テトラヒドロフラン）；ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ改変Ｅａｇｌｅ培地）；ＦＢＳ（ウシ胎仔血清）；ＬＢ（Ｌｕｒｉａブロス）；ＥＤＴＡ（エチレンジアミン四酢酸（ｔｅｔｒａｃｉｄｉｃ ａｃｉｄ））；ホルボールミリステートアセテート（ＰＭＡ）；リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）；ＡＡＭＩ（医療器具開発協会）；ＩＳＯ（国際標準化機構）；ＥＵ（エンドトキシン単位）；ＬＶＩ（大容量注入可能物）；ＧＣ（ガスクロマトグラフィー）；Ｍ（メガ−）；ｋＧｙ（１０００グレイ＝０．１ＭＲａｄ）；ＭΩ（Ｍオーム）；ＰＡＳ ＩＩＩ（血小板添加溶液ＩＩＩ）；ｄＨ２Ｏ（蒸留水）；ＩＡＤ（固定化吸着装置）；ＳＣＤ（滅菌連結装置）。
以下の実施例の１つは、ＨＥＰＥＳ緩衝液を示す。この緩衝液は、以下を含む：８．０ｇの１３７ｍＭ ＮａＣｌ、０．２ｇの２．７ｍＭ ＫＣｌ、０．２０３ｇの１ｍＭ ＭｇＣｌ２（６Ｈ２Ｏ）、１．０ｇの５．６ｍＭ グルコース、１．０ｇの１ｍｇ／ｍｌ ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯから入手可能）、および４．８ｇの２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ、ＭＯから入手可能）。
（実施例１）
（Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を有する繊維状樹脂）
この実施例は、繊維状樹脂および固定されていない吸着ビーズを含む装置を利用して、血小板からのアミノソラレンの除去速度ならびに血小板機能および形態の両方を比較する。より詳細には、固定されたＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含む繊維状樹脂を、遊離（すなわち、固定されていない） Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰおよびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３を含む装置と比較した。
（繊維状樹脂および吸着ビーズの調製）
Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅ は、クリーンでかつ水和した状態でＲｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓから得られるＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含む繊維状樹脂を調製した。Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅの繊維ネットワークの繊維は、ポリエチレンテレフタレートコアおよびナイロンシースから成り、シースはコアよりも低い融点を有した。繊維状樹脂を、最初に吸着ビーズを繊維ネットワークに均一に分散させることにより調製した。次に繊維ネットワークを急速に熱して、繊維のポリマーシースを溶融させ、そして吸着ビーズおよび他の繊維と結合させ、架橋繊維ネットワークを形成した。繊維状樹脂を、１３０ｇ／ｍ２の負荷でＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含むように形成した（すなわち、繊維の各平方メートルが１３０ｇの吸着ビーズを含んだ）。
繊維状樹脂を正方形（１４ｃｍ×１４ｃｍ）に切断し、そして得られる部分はほぼ２．５ｇの乾燥Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含んだ。次いで、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ビーズを、繊維状樹脂を３０％エタノールにほぼ１０分間含浸させることにより、前湿潤（ｐｒｅ−ｗｅｔ）した。次いで、残留したエタノールを２回生理食塩水で１０分間リンスすることにより除去した。Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６および他の吸着剤を湿潤する代替的な方法もまた有効であり、そして本発明により意図される。他のタイプのビーズ（例えば、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３のような連結または超架橋樹脂）を含む繊維状樹脂は、有効なソラレン除去のために湿潤工程を必要としないことに注目すべきである。
Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰ（高純度）ビーズもまた、クリーンでかつ水和した状態でＲｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓから直接得られた。ルーズな（ｌｏｏｓｅ）（すなわち、固定されていない） Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰビーズについては、メッシュポーチ内へ組み込む前の前湿潤は必要ではなかった；しかしながら、ビーズの水含有量を説明するために、吸着剤の質量を補正した（２．５ｇの乾燥＝６２．８％の水分と合わせて６．８ｇ）。Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３ビーズを、Ｄｏｗから得、そして乾燥ビーズは湿潤する必要もなければ水についてビーズの質量を補正する必要もなかった。次いで、ポリエステルメッシュポーチ（７ｃｍ×７ｃｍの正方形；３０μｍの開口部）を、ルーズなＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰまたはＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３ビーズのいずれか２．５ｇ（乾燥重量）で満たした。
繊維状樹脂および吸着剤含有ポーチを、４５分間１２１℃、「湿潤」サイクルでオートクレーブ処理することにより滅菌した。その後、繊維状樹脂および吸着剤含有ポーチを、別個の滅菌の１リットルＰＬ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）内に挿入した。挿入に続いて、ＰＬ２４１０プラスチック容器を、滅菌はさみ、止血鉗子、およびインパルスシーラー（ｉｍｐｕｌｓｅ ｓｅａｌｅｒ）を使用して、薄板フローフード（ｆｌｏｗ ｈｏｏｄ）で熱密封した。
（繊維状樹脂および吸着ビーズのソラレン含有血小板濃縮物（ＰＣ）との接触）
血小板濃縮物のプールを、３５％の自家血漿／６５％血小板添加溶液（すなわち合成媒体）で、２〜３単位の単一のドナーのアフェレーシス血小板を合わせることにより調製した。この溶液に、アミノソラレン４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを、最終濃度１５０μＭの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを達成する量で加えた。得られるＰＣ溶液を、３００ｍＬ単位に分割し、次いで単位をＰＬ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）に設置して３Ｊ／ｃｍ２のＵＶＡで照射した。照射に続いて、処理したＰＣを、固定されたＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を有する繊維状樹脂、ルーズなＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰ、またはルーズなＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３のいずれかを含むＰＬ２４１０プラスチック容器内へか、あるいはコントロールとして空のＰＬ２４１０プラスチック容器内へ移した。次いで、ＰＬ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）を２２℃でＨｅｌｍｅｒ 血小板インキュベーターに設置し、そしてほぼ７０サイクル／分で振盪した。
各ＰＣのサンプルを、保管の最初の８時間の間１時間間隔で取り出し、残留する４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンをＨＰＬＣにより分析した。ＰＣの各サンプルを、内部標準としてトリメチルソラレン（ＴＭＰ）を含むサンプル希釈液（最終濃度＝３５％メタノール、２５ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）で５倍に希釈した。タンパク質および他の巨大分子を、サンプルを４℃で３０分間インキュベートすることにより沈殿させた。次いで、サンプルを遠心分離し、そして上清を濾過（０．２μｍｅｔｅｒ）して、Ｃ−１８逆相カラム（ＹＭＣ ＯＤＳ−ＡＭ ４．６ｍｍ×２５０ｍｍ）で、６５％の溶媒Ａ（２５ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）、３５％のＢ（メタノール）から８０％のＢまで２０分の直線状グラジエントを実行することにより分析した。
繊維状樹脂またはルーズなビーズの１種とともに５日間保管されている間に得られる血小板を、Ｂａｋｅｒ Ｓｙｓｔｅｍ ９１１８ ＣＰ（Ｂａｋｅｒ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ Ｃｏ．；Ａｌｌｅｎｔｏｗｎ、ＰＡ）で血小板を計数することにより日毎にモニターした。血液ガスおよびｐＨを、Ｃｉｂａ−Ｃｏｒｎｉｎｇ ２３８ ｐＨ／Ｂｌｏｏｄ Ｇａｓ Ａｎａｌｙｚｅｒを使用して評価した。繊維状樹脂または遊離吸着剤を含む装置との５日間の接触後のインビトロでの血小板機能を、形態、形状変化、低浸透圧性ショック応答、凝集、およびＧＭＰ−１４０（ｐ−セレクチン）発現についてのアッセイを使用して評価した。形状変化、凝集、および低浸透圧性ショック応答を、Ｌｕｍｉ−Ａｇｇｒｅｇｏｍｅｔｅｒ（Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ）を使用して評価し、一方ＧＭＰ−１４０を、Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ＦＡＣＳｃａｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を使用してフローサイトメトリにより測定した。
（ソラレン除去ならびに血小板収率および機能）
図５は、３５％血漿／６５％合成媒体（ＰＡＳ ＩＩＩ）中の血小板からの、ＸＵＳ−４３４９３、ＸＡＤ−１６ＨＰ、およびＸＡＤ−１６を含む繊維状樹脂での４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去についての吸着速度を比較している。詳細には、実線で結ばれた円により示されるデータは固定されていない吸着剤ＸＵＳ−４３４９３（２．５ｇのビーズ；＜５％の水分）を含む装置を表す；点線で結ばれた三角により示されるデータは固定されていない吸着剤ＸＡＤ−１６ＨＰ（６．８ｇのビーズ；６２．８％の水分）を含む装置を表す；そして点線で結ばれた四角により示されるデータは繊維状樹脂（３０％エタノールで湿潤したＸＡＤ−１６ビーズを有するＨｏｅｃｈｓｔ繊維；１４ｃｍ×１４ｃｍ）を表す。図５のデータが示すように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの吸着速度は、固定されていない吸着剤を含む装置と繊維状樹脂を含む装置との両方に対してほとんど同等である。従って、繊維化プロセスは除去速度に有意な影響を有するとは思われない。
さらに、ルーズなビーズと比較した繊維状樹脂の血小板収率および機能を研究した。詳細には、この研究の実験は、ｉ）６．８ｇのＸＡＤ−１６ＨＰ（６２．８％の水分）；ｉｉ） ３０％エタノールで湿潤した１４ｃｍ×１４ｃｍの繊維状ＸＡＤ−１６（１３０ｇの樹脂／ｃｍ２）；およびｉｉｉ）２．５ｇのＸＵＳ−４３４９３（＜５％の水分）を使用した。２つの同じ（ｄｕｐｌｉｃａｔｅ）血小板単位を、ＸＡＤ−１６ＨＰおよび繊維状樹脂サンプルに対して調製したが、単一の血小板単位のみをＸＵＳ−４３４９３サンプルに対して調製した。結果を表１に記載する。
表１に示されるように、固定されていないビーズ（ＸＡＤ−１６ＨＰおよびＸＵＳ−４３４９３）を含むサンプルについて、５日目のｐＨおよびｐＯ２の値は５日目のコントロールと比較してわずかに上昇していた。繊維状樹脂を用いる実験は、コントロールにより近いｐＨおよびｐＯ２の値を有した。血小板計数は、繊維状媒体および固定されていない吸着剤を含む装置との５日間の接触後、９〜２２％の血小板が損失することを示した。表１に記載されるように、固定されていないＸＡＤ−１６またはＸＵＳ−４３４９３吸着剤粒子を含む装置と比較した場合に、繊維状樹脂はより良好な収率（５日目で９％の損失）を与え、そして全てのインビトロでのアッセイにおいてより良好な結果を与えた。
Figure 2010031049
固定されていないＸＵＳ−４３４９３およびＸＡＤ−１６ＨＰを含む装置に対して観測されたより高いｐＨおよびｐＯ２の値の基礎となる機構を理解することは、本発明を実施するために必要ではないが、より高い値は、固定されていない吸着剤を含む装置の存在下で血小板の代謝がわずかに減少したことによると考えられる。対照的に、繊維状媒体はＸＵＳ−４３４９３またはＸＡＤ−１６ビーズよりもコントロールとより近いｐＨおよびｐＯ２の値を一貫して５日目で与えた。
５日目の血小板収率はまた、ＸＵＳ−４３４９３およびＸＡＤ−１６ＨＰ吸着ビーズと比較して繊維状媒体がより良好であった。ＸＵＳ−４３４９３媒体に対して観測された２２〜２８％の損失は複数の場合において観測された。しかしながら、ＸＵＳ−４３４９３とともに固定されていない吸着剤を含む装置に対する現行の好適な実施態様は、８時間の曝露後にこの装置から血小板を移送する工程を含むことを注記しなければならない：この手順は血小板の＜５％の損失をもたらす。
表１に示されるデータは、繊維状媒体が固定されていない吸着剤を含む装置と比較してより高い血小板収率を与えることを示している。驚くべきことに、繊維状媒体はまた、ｐＨ／ｐＯ２、形状変化、凝集、形態、およびＧＭＰ−１４０により示されるように、より良好な５日目の血小板機能をもたらす。繊維状媒体の増強された能力に対する合理的な理解は本発明を実施するために必要ではないが、いくつかの仮説が提案され得る。第一に、吸着ビーズの表面に接着した繊維が血小板とビーズ表面との間の相互作用を阻害し得る。第二に、ビーズの固定が、ビースの相互作用を妨げ、血小板に有害な物理学的影響を除去し得る。第三に、ビーズの固定がビーズ表面における液体の剪断（ｓｈｅａｒ）を増大し、これにより血小板とビーズ表面との間の相互作用が減少し得る；対照的に、固定されていないビーズは液体で自由に流動し、ビーズ表面に対して液体の低流動をもたらす。
（血小板損失）
上記のデータを総括する場合、血小板損失において１つの研究とその次との間に、ある変動性が存在すると思われる。しかしながら、コントロールの５日目の計数の割合として表された血小板損失は、最初の血小板計数がより大きい場合の研究に対してより小さい。血小板接着に対して入手可能な材料の所定の範囲に対して損失される血小板の数値が一定であるかどうかを確かめるために、研究を行った。この研究において、２つの血小板単位をプールし、そしてこのプールを２つのサンプルに分割した。１つのサンプルを、血小板の計数が他方の単位の半分になるように、３５％の自家血漿／６５％の合成媒体（ＰＡＳ）で半分に希釈した。血小板混合物を、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン＋ＵＶＡで処理し、そして先に記載した標準的な血小板保管条件下で５日間、固定されていない吸着剤（２．５ｇのＸＵＳ−４３４９３）を含む装置と接触させた。
損失した血小板の総数は、２つの単位に対して実質的には同一であったが、割合で計算された損失は大きく異なった。従って、この結果は一定期間後の血小板の損失は本質的に一定であると思われる；すなわち、血小板損失の割合は最初の血小板計数で変化するが、血小板損失の総数は平衡に達した時点でほぼ一定になる。この実施例において示される結果を根拠として、繊維状樹脂はインビトロでの血小板機能にネガティブな影響を有さない。
（実施例２）
（活性炭を有する繊維状樹脂）
本実施例は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂および固定化活性炭を含有する繊維状樹脂について、血小板および血小板機能および形態からの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去速度を比較する。
（繊維状樹脂の調製）
Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅは、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰ（Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ）を含有する繊維状樹脂を調製した。Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂は、３０％エタノール湿潤工程を含めて、前述の実施例で記述のようにして調製した。Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅはまた、固定化活性炭（ＷｅｓｔＶａｃｏ［（Ｌｕｋｅ， Ｗ． Ｖａ．）］、３７５ ｇ／ｍ２（ＡＱＦ−３７５−Ｂ）および５００ ｇ／ｍ２（ＡＱＦ−５００−Ｂ）の負荷）を含有する繊維状樹脂を調製した。好ましい実施態様では、この吸着剤粒子は、合成活性炭（例えば、ＡｍｂｅｒｓｏｒｂおよびＡ−Ｓｕｐｒａを含めて）である。合成活性炭は、この固定化吸着媒体から流れる微粒子物質の量をなくす能力のために、好ましい。この繊維状樹脂は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂に関する方法と類似の方法で調製した。各繊維状樹脂についての繊維の組成は、同じであった。
この繊維状樹脂を正方形（１４ ｃｍ×１４ ｃｍ）に切り出した；得られた部分は、およそ２．５ｇの乾燥Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有していた。次に、この繊維状樹脂を、１２１℃で４５分間にわたって「湿潤」サイクルでオートクレーブにかけることにより、滅菌した。その後、この繊維状樹脂を、別の滅菌１リットルＰＬ ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）に挿入し、これらの容器を、滅菌ハサミ、止血剤およびインパルスシーラーを用いて、層流フードにて、加熱密封した。
（繊維状樹脂とソラレン含有ＰＣとの接触）
自家血漿３５％／合成媒体６５％（ＰＡＳ ＩＩＩ）において、２〜３ユニットの単一ドナーアフェレシス血小板を組み合わせることにより、血小板濃縮物のプールを調製した。１５０μＭ ４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの最終濃度を得る量で、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを添加した。得られたＰＣ溶液を３００ ｍＬユニットに分割し、これらのユニットを、ＰＬ ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）に置き、そして３Ｊ／ｃｍ２のＵＶＡを照射した。照射に続いて、処理したＰＣを、ＸＡＤ−１６、ＡＱＦ−３７５−Ｂ、ＡＱＦ−５００−Ｂのいずれかの繊維状樹脂を含むＰＬ ２４１０プラスチック容器、またはコントロールとして、空のＰＬ ２４１０プラスチック容器に移した。次いで、これらのＰＬ ２４１０プラスチック容器を、２２℃で、Ｈｅｌｍｅｒ血小板インキュベーターに置き、およそ７０サイクル／分でかき混ぜた。
前述の実施例で行なったように、各ＰＣのサンプルを、ＨＰＬＣによる残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの分析のために、初めの８時間の保存中に、１時間間隔で取り除いた。各ＰＣのサンプルを、内部標準としてトリメチルソラレン（ＴＭＰ）を含有するサンプル希釈剤で５倍希釈した（最終濃度＝３５％メタノール、２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）。これらのサンプルを４℃で３０分間インキュベートすることにより、タンパク質および他の高分子を沈殿させた。次いで、これらのサンプルを遠心分離し、その上澄み液を濾過し（０．２μｍｅｔｅｒ）、そして６５％溶媒Ａ（２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）、３５％Ｂ（メタノール）から８０％までの線形勾配を２０分間実行することにより、Ｃ−１８逆相カラム（ＹＭＣ ＯＤＳ−ＡＭ ４．６ ｍｍ×２５０ ｍｍ）上にて分析した。
この繊維状樹脂または非固定化吸着剤含有装置を用いた５日間の貯蔵期間中の血小板収率を、Ｂａｋｅｒ Ｓｙｓｔｅｍ ９１１８ ＣＰで血小板をカウントすることにより、毎日モニターした。血液の気体およびｐＨを、Ｃｉｂａ−Ｃｏｒｎｉｎｇ ２３８ ｐＨ／Ｂｌｏｏｄ Ｇａｓ Ａｎａｌｙｚｅｒを用いて評価した。この繊維状樹脂または非固定化吸着剤含有装置との５日間の接触に続いたインビトロ血小板機能を、形態、形状変化、低浸透圧性ショック応答、凝集およびＧＭＰ−１４０（ｐ−セレクチン）発現についての分析を用いて、評価した。形状変化、凝集および低浸透圧性ショック応答は、Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ Ｌｕｍｉ−Ａｇｇｒｅｇｏｍｅｔｅｒを用いて評価したのに対して、ＧＭＰ−１４０は、Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ＦＡＣＳｃａｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｚｅｒを用いたフローサイトメトリにより測定した。
（ソラレンの除去および血小板の収率および機能）
図６は、ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂、および２個の異なる負荷の活性炭を有する繊維状樹脂を用いた、３５％血漿／６５％合成媒体（ＰＡＳ ＩＩＩ）における血小板からの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去のための吸着速度を比較している。具体的には、丸で示すデータは、繊維化ＸＡＤ−１６ビーズを用いた４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去を表わす；四角で示すデータは、繊維化ＡＱＦ−５００−Ｂを用いた除去を表わす；そして三角で示したデータは、繊維化ＡＱＦ−３７５−Ｂを用いた除去を表わす。図６のデータが示すように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの吸着速度は、異なる繊維状樹脂について、非常に類似しており、この繊維状樹脂は、全て、非常に良好な除去速度を示した（４時間後、≦０．５μＭの残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン）。
各繊維状樹脂に対する血小板収率およびインビトロ血小板機能もまた評価し、そのデータは、表２に要約する。
Figure 2010031049
表２を参照すると、この活性炭ベース繊維状樹脂からは、１０％未満の損失で、良好な血小板収率が得られた；前述の実施例の研究と同様に、ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂は、僅かに高い血小板損失（約１７％）を有していた。ｐＯ２に関して、この活性炭繊維状樹脂に対する５日目の値は、コントロールと同程度であった。この活性炭繊維状樹脂が、何故、僅かに高いｐＨ値を有していたかを理解することは、本発明の実施には必要ではないものの、この活性化過程からの残留抽出可能物（例えば、ホスフェート）により引き起こされた人為的結果であるかも知れない；この活性炭ベース繊維状樹脂を用いたＰＣの貯蔵の８時間後に認められる急速なｐＨの上昇（ｐＨ＝７．３〜７．４）は、この考えを裏付けている。ＵＳＰ活性炭を用いた実験（これには、抽出可能物が殆ど伴わない）により、観察されたｐＨの初期上昇がなくなる場合がある。
この活性炭ベース繊維状樹脂により、形状変化および凝集アッセイの両方において、良好な結果が得られた。ＡＱＦ−５００−Ｂについての形状変化結果は、コントロールよりも良好であったものの、ＡＱＦ−５００−Ｂに結合した血小板は、凝集アッセイにおいて、僅かに劣っていた。
（実施例３）
（吸着剤の血液適合性に対するｐＨＥＭＡコーティングの効果）
本実施例は、ｐＨＥＭＡでコーティングしたＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３に対し、血小板および血小板機能および形態からの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去速度を比較する。
（ｐＨＥＭＡコーティング吸着剤ビーズおよび繊維状樹脂の調製）
およそ５０重量％の水を含有するＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（Ｏｐｔｉｐｏｒｅ（登録商標）Ｌ４９３として一般に知られている）は、Ｄｏｗから得、そして３００ ｋＤの粘度平均分子量を有する重合ＨＥＭＡは、Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｐｒｏｄｕｃｔｓから得た。コーティング前に、この吸着剤ビーズを、＜５％の水含量まで乾燥した。このポリマーを９５％変性エタノール／５％水に溶解して５０ ｍｇ／ｍｌのｐＨＥＭＡ濃度を得ることにより、ｐＨＥＭＡのストックを調製した。
このコーティングプロセスは、Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ Ｃｏｒｐ．により、およそ４ｋｇ（乾燥）の吸着剤の充填物を用いて、９インチのＷｕｒｓｔｅｒ流動床塗装機で行なった。このコーティングプロセスには、６０〜７０ｇ／分のｐＨＥＭＡ流速、５０℃の入口温度および約２００ ｆｔ３／分の空気流速が関与していた。３〜１８重量％の範囲のｐＨＥＭＡのコーティングレベルが得られるように、このコーティングプロセス中に、コーティングした吸着剤のサンプル（５０ｇ）を除去した；３．７重量％、７．３重量％および１０．９重量％のｐＨＥＭＡでコーティングした吸着剤ビーズを、以下で記述する研究において使用した。
所望質量の吸着剤を３０μｍ平方のポリエステルメッシュポーチ（７ｃｍ×７ ｃｍ）に入れることにより、非固定化乾燥（コーティングしていない）Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（２．５ｇ）およびｐＨＥＭＡコーティングＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（３．０ｇまたは５．０ｇ）を含む装置を調製した。この吸着剤充填ポーチを、別の滅菌１リットルＰＬ ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）に挿入し、そしてインパルスシーラーを用いて加熱密封した。その後、ＰＬ−２４１０プラスチック容器を含有する吸着剤充填ポーチを、２．５ ＭＲａｄまでの電子線（ＮＩＳ）またはガンマ線照射（ＳｔｅｒｉＧｅｎｉｃｓ）のいずれかにより、滅菌した；先に暗示したように、電子線滅菌が、一般に、好ましい。
Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅは、実施例１で記述の方法に従って、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂を調製した。この繊維状樹脂を正方形（１４ ｃｍ×１４ ｃｍ）に切り出した；得られた部分は、およそ２．５ｇの乾燥Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有していた。この繊維状樹脂のＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を、９５％エタノール／５％蒸留水中の５０ ｍｇ／ｍＬ ｐＨＥＭＡを含有する溶液に浸けることにより、ｐＨＥＭＡで同時に湿潤およびコーティングした。１０分間にわたって生理食塩水で２回リンスすることにより、残留エタノールを除去した。この手順により、およそ６重量％のｐＨＥＭＡのコーティングが得られた。次いで、この繊維状樹脂を、１２１℃で４５分間にわたって「湿潤」サイクルでオートクレーブにかけることにより、滅菌した。その後、この繊維状樹脂を、別の滅菌１リットルＰＬ ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）に挿入し、これらの容器を、滅菌ハサミ、止血剤およびインパルスシーラーを用いて、層流フードにて、加熱密封した。
（ｐＨＥＭＡコーティング吸着剤ビーズおよび繊維状樹脂とソラレン含有ＰＣとの接触）
自家血漿３５％／合成媒体６５％（ＰＡＳ ＩＩＩ）において、単一ドナーアフェレシス血小板のユニットを組み合わせることにより、血小板濃縮物のプールを調製した。１５０μＭ ４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの最終濃度を得る量で、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを添加した。次いで、得られたＰＣ溶液を３００ ｍＬユニットに分割し、これらのユニットを、ＰＬ ２４１０プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ）に置き、そして３Ｊ／ｃｍ２のＵＶＡを照射した。照射に続いて、処理したＰＣを、非固定化ｐＨＥＭＡコーティングＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３を含む装置、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を有する繊維化ｐＨＥＭＡコーティング繊維状樹脂のいずれかを含むＰＬ ２４１０プラスチック容器に、またはコントロールとして、空のＰＬ ２４１０プラスチック容器に移した。次いで、これらのＰＬ ２４１０プラスチック容器を、２２℃で、Ｈｅｌｍｅｒ血小板インキュベーターに置き、およそ７０サイクル／分でかき混ぜた。
各ＰＣのサンプルを、ＨＰＬＣによる残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの分析のために、初めの８時間の保存中に、１時間間隔で取り出した。各ＰＣのサンプルを、内部標準としてトリメチルソラレン（ＴＭＰ）を含有するサンプル希釈剤で５倍希釈した（最終濃度＝３５％メタノール、２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）。これらのサンプルを４℃で３０分間インキュベートすることにより、タンパク質および他の高分子を沈殿させた。次いで、これらのサンプルを遠心分離し、その上澄み液を濾過し（０．２μｍｅｔｅｒ）、そして６５％溶媒Ａ（２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）、３５％Ｂ（メタノール）から８０％までの線形勾配を２０分間実行することにより、Ｃ−１８逆相カラム（ＹＭＣ ＯＤＳ−ＡＭ ４．６ ｍｍ×２５０ ｍｍ）上にて分析した。
この繊維状樹脂または非固定化吸着剤含有装置を用いた５日間の貯蔵期間中の血小板収率は、Ｂａｋｅｒ Ｓｙｓｔｅｍ ９１１８ ＣＰで血小板をカウントすることにより、決定した。血液の気体およびｐＨを、Ｃｉｂａ−Ｃｏｒｎｉｎｇ ２３８ ｐＨ／Ｂｌｏｏｄ Ｇａｓ Ａｎａｌｙｚｅｒを用いて評価した。この繊維状樹脂または非固定化吸着剤含有装置との５日間の接触に続いたインビトロ血小板機能を、形態、形状変化、低浸透圧性ショック応答、凝集およびＧＭＰ−１４０（ｐ−セレクチン）発現についてのアッセイを用いて、評価した。形状変化、凝集および低浸透圧性ショック応答は、Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ Ｌｕｍｉ−Ａｇｇｒｅｇｏｍｅｔｅｒを用いて評価したのに対して、ＧＭＰ−１４０は、Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ ＦＡＣＳｃａｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ａｎａｌｙｚｅｒを用いたフローサイトメトリにより測定した。
（ソラレン除去に対するｐＨＥＭＡコーティングの効果）
図７は、ｐＨＥＭＡコーティングおよび非コーティングＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３ビーズを用いた、３５％血漿／６５％合成媒体（ＰＡＳ ＩＩＩ）における血小板からの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去に関する吸着速度を比較している。具体的には、３．７重量％のｐＨＥＭＡでコーティングしたＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（３．０ｇ）を用いた４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去は、丸で表わし、７．３重量％のｐＨＥＭＡでコーティングしたものを用いた除去は、三角で表わし、そして１０．９重量％のｐＨＥＭＡでコーティングしたものを用いた除去は、菱形で表わす；四角は、２．５ｇ（乾燥）非コーティングＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３を用いた４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去を表わす。図７のデータが示すように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの吸着速度は、ｐＨＥＭＡのコーティングレベルが増すにつれて、低下した。この機構は、本発明を実施するためには、理解する必要はないものの、この低下は、この吸着剤の粒子の内部への４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの拡散に対する抵抗の増大によると考えられている。
３．７重量％、７．３重量％および１０．９重量％のｐＨＥＭＡでコーティングしたＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（５．０ｇ）を用いて、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去の吸着速度もまた、測定した。この結果（図示せず）から、１０．９％のｐＨＥＭＡでコーティングしたビーズの除去速度が、コーティングしていないビーズ（コントロール）のものと同程度であることが明らかとなった。
（血小板収率に対するｐＨＥＭＡコーティングの効果）
異なる量の吸着剤（３．０ｇおよび５．０ｇ）であるがそれぞれ同じレベルのｐＨＥＭＡコーティング（３．７重量％、７．３重量％および１０．９重量％）を用いた２つの研究において、血小板収率に対するｐＨＥＭＡの効果を測定した。血小板収率は、非固定化吸着剤を含む装置と接触していない処理ＰＣに対して、５日目での血小板数と比較して、計算した。表３の結果が示すように、３．０ｇのＸＵＳ−４３４９３を試験したとき、ｐＨＥＭＡコーティングのレベルが上がるにつれて、５日目の血小板収率に対する名目用量応答があった；これらの結果は、低レベルのｐＨＥＭＡコーティングが、この吸着剤表面への血小板の付着を依然として防止しつつ、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去速度に対する効果が少ないので、最も有効であり得ることを示唆している。３．０ｇのＸＵＳ−４３４９３を用いて認められる名目効果と対照的に、５．０ｇを試験したとき、用量応答が認められ、ｐＨＥＭＡのコーティングレベルを上げると、５日目の血小板収率が高くなった。しかしながら、収率は、３．０ｇの吸着剤ビーズを用いたときに認められるものよりも、依然として、低かった。
Figure 2010031049
表３で示した結果は、低レベルのｐＨＥＭＡコーティング（例えば、≦３．０重量％）と共に低質量の吸着剤（例えば、２．５〜３．０ｇ）を使用することにより、最良の血小板収率が得られることを示唆している。先に示したように、最適レベルのｐＨＥＭＡコーティングは、血小板収率およびインビトロ血小板機能に対する保護効果が認められる最小コーティングである。
（血小板機能に対するｐＨＥＭＡコーティングおよび滅菌の効果）
ｐＨＥＭＡコーティングは放射線により架橋または切断できるので、滅菌法が、吸着剤の機能に相当な効果を有し得ることは、先に述べた。この効果を評価するために、非固定化ｐＨＥＭＡコーティング（３．７重量％）および非コーティングＸＵＳ−４３４９３（これらは、２．５ ＭＲａｄの電子線または２．５ ＭＲａｄのガンマ放射線のいずれかで滅菌した）を含む装置で、研究を行なった。各装置は、３０μｍ平方のポリエステルメッシュポーチ（７ｃｍ×７ ｃｍ）に収容した２．５ｇの非固定化コーティングまたは非コーティングＸＵＳ−４３４９３（乾燥）を含んでいた；コントロールは、ＰＬ ２４１０プラスチック容器のみに保存した処理ＰＣを含有していた。結果を、表４に要約する。
Figure 2010031049
表４を参照すると、５日目のｐＨ値は、コントロールと比較すると、非常に安定しているように見える。非コーティングの非固定化吸着剤を含む装置を用いて測定したｐＯ２値は、僅かに上昇しており、このことは、代謝の穏やかな低下を示唆している；ｐＨＥＭＡでのコーティングは、この効果を低減させるように見え、非固定化吸着剤を含む電子線滅菌装置の結果は、ガンマ線滅菌装置の結果よりも、コントロールに近い。
血小板収率は、両方のｐＨＥＭＡコーティングサンプルについて、非常に良好であり、電子線滅菌サンプルは、僅かに良好であった。形状変化および凝集は、収率についてのパターンと類似のパターンを示したが、非コーティングの非固定化吸着剤を含む装置は、最も低い値を示し、そしてｐＨＥＭＡコーティング／電子線滅菌サンプルは、コントロールと類似の高い値を与えた。非固定化吸着剤を含む装置で処理したサンプルは、低浸透圧性ショック応答（ＨＳＲ）アッセイについて、コントロールと同程度またはそれより良好であった。非固定化吸着剤を含む装置で処理したサンプルは、コントロールよりも低い形態評点を示したが、ＧＭＰ−１４０アッセイにより明らかなように、より低いレベルの活性化を示した。
非コーティングの非固定化ＸＵＳ−４３４９３（２．５ｇビーズ；３０μｍポリエステルメッシュポーチ；７ｃｍ×７ ｃｍ）を含む装置、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有する非コーティングの繊維状樹脂（１４ ｃｍ×１４ ｃｍ）を含む装置、およびｐＨＥＭＡコーティングＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂を含む装置を比較して、他の血液適合性研究を行なった。この繊維状樹脂に対するｐＨＥＭＡの好ましい効果は、表５で示した結果により、明らかとなった。
Figure 2010031049
表５でのインビトロ血小板機能および血小板収率に関するデータにより示されるように、ｐＨＥＭＡでの被覆により、この繊維状樹脂に対するｐＯ２値が、コントロールについて観察された値に近くなった。このｐＨＥＭＡ被覆繊維状樹脂はまた、未被覆繊維状樹脂よりも高い血小板収率を示した。これらの結果は、ｐＨＥＭＡ被覆繊維状樹脂が、全てのインビトロ血小板機能アッセイにおいて、未被覆ＸＵＳ−４３４９３ビーズよりも良好に機能したことを示す。さらに、この未被覆繊維状樹脂は、殆どのインビトロ血小板機能アッセイにおいて、未被覆ＸＵＳ−４３４９３ビーズよりも良好に機能した。
（実施例４）
（吸着剤能力に対するグリセロールおよびポリエチレングリコールの効果）
本実施例は、血漿からのアミノソラレンの吸着剤能力および除去速度に対する、安定化剤としてのグリセロールおよびポリエチレングリコールの効果を調べる。本実施例の実験では、遊離（すなわち、繊維化されていない）Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３吸着剤ビーズを使用した。
（方法論）
Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ＨＰ（Ｒｏｈｍ ＆ Ｈａａｓ（Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ））およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（Ｓｕｐｅｌｃｏ、Ｂｅｌｌｅｆｏｎｔｅ、ＰＡ）を、８０℃の乾燥器で、＜５％の含水量まで乾燥した。既知の質量の吸着剤を、０〜５０％のグリセロール、５０％のＰＥＧ−２００または５０％のＰＥＧ−４００（グリセロール、ＰＥＧ−２００、およびＰＥＧ−４００は、Ｓｉｇｍａから得た）を含有するエタノール溶液に浸漬した。室温での１５分間のインキュベーション期間に続いて、過剰の溶媒を除去し、このサンプルを８０℃の乾燥器で一晩乾燥した；高温にて、吸着剤特性の変化（例えば、細孔の融解）が先に認められたので、吸着剤を＞１２０℃の温度で乾燥することを避けた。乾燥後、吸着剤サンプルを秤量して、吸着剤１質量あたりの安定化剤の質量を決定した。
いくつかの個別の研究を行なった。「非湿潤」吸着剤および「最適湿潤」吸着剤のコントロールサンプルを、下記の研究に含めた。吸着剤の非湿潤サンプルは、いずれの前処理にも供していない乾燥吸着剤であるのに対して、吸着剤の最適湿潤サンプルは、吸着剤を３０％エタノール／７０％ ｄＨ２Ｏで湿潤することにより、調製した。この最適湿潤吸着剤をｄＨ２Ｏでリンスして、残留エタノールを除去した。乾燥が起こらないことを保証するために、吸着剤を吸着研究の直前に調製した。
各吸着研究を、３Ｈ−４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンでスパイクした１５０μＭの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを含有する、１００％ヒト血漿を用いて行なった。異なる安定化剤で処理した吸着剤を含むバイアルに、血漿（６．０ ｍＬ）を添加した。吸着剤の質量を、グリセロールまたはＰＥＧ含量に対して補正し、０．２ｇの吸着剤を得た。バイアルを回転装置に置き、そして室温で攪拌した。種々の時点で血漿サンプルを除去し、そして残留３Ｈ−４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンのレベルを測定した。サンプル（２００μＬ）を、５．０ ｍＬのＯｐｔｉｐｈａｓｅ ＨｉＳａｆｅ Ｌｉｑｕｉｄ Ｓｃｉｎｔｉｌｌａｔｉｏｎ Ｃｏｃｋｔａｉｌ（Ｗａｌｌａｃ）で希釈し、そしてＷａｌｌａｃ １４０９ Ｌｉｑｕｉｄ Ｓｃｉｎｔｉｌｌａｔｉｏｎ Ｃｏｕｎｔｅｒ （Ｗａｌｌａｃ）で数えた。
（グリセロールで処理したＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３の吸着能力）
図８は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３に対する１００％血漿中の相対的な４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン吸着能力に対する、種々のレベルのグリセロールを含有するエタノール溶液での前処理の効果を比較している。吸着剤サンプルを、８０℃で４８時間乾燥する前に、１５分間にわたって、エタノール／グリセロール溶液で濡らした。接触の４時間後、吸着能力の単回測定を行なった。図８を参照すると、ｘ軸で示したグリセロール含量は、エタノール中のグリセロールの重量／容量パーセントである。ｙ軸で示した吸着能力は、最適湿潤吸着剤サンプルの吸着能力と比較したパーセントである。ＸＵＳ−４３４９３の吸着能力を、四角で表わすのに対して、ＸＡＤ−１６の吸着能力を、丸で表わす。
図８のデータが示すように、ＸＡＤ−１６の能力は、乾燥サンプルにおける約３０％から、２０％グリセロール溶液中に湿潤したサンプルにおける９０％を越えるまで上昇した。これらの結果は、非常に低いレベルのグリセロールを乾燥後に高い吸着剤能力を維持するために必要とすることを示す。乾燥前に５０％エタノール／５０％ ｄＨ２Ｏ（グリセロールなし）中で湿潤したコントロールサンプルは、乾燥した未処理サンプルと同様の吸着能力を示した。対照的に、ＸＵＳ−４３４９３サンプルは、吸着能力に対するグリセロールのいずれの効果も示さなかった；吸着能力は、全てのレベルのグリセロールで、１００％に近くなった。本発明の実施には重要ではないものの、この観察は、グリセロールが、吸着剤細孔が乾燥中に崩壊するのを防止するように作用するという仮説を支持している；ＸＵＳ−４３４９３は、高度に架橋された構造を有するので、乾燥時に細孔崩壊を受けない。
グリセロールで処理したサンプルは、乾燥に対して、非常に安定に思われた。層流フードにて７日間保存したサンプルについての、吸着能力の変化は認められなかった（データは示さず）。
本発明の好ましい実施態様では、各ユニットの血小板からのソラレンおよびソラレン光生成物の除去には、２．５ｇの乾燥吸着剤を使用した。この吸着剤を３０％グリセロール／７０％エタノールに浸漬し、続いて、乾燥し、およそ５０％のグリセロールを含有する吸着剤を得る。従って、吸着剤の５．０ｇサンプルは、２．５ｇの乾燥吸着剤および２．５ｇのグリセロールを含有する。それゆえ、典型的な３００ ｍＬユニットの血小板は、０．８％グリセロール（輸血に適切と考えられるレベル）を含有する。
（グリセロールまたはＰＥＧで処理したＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３の吸着能力）
低分子量ポリエチレングリコールＰＥＧ−２００およびＰＥＧ−４００（不揮発性でエタノールおよび水に溶解性の低毒性試薬）を用いて、さらなる研究を行なった。吸着剤のサンプルを、ＰＥＧ−４００、ＰＥＧ−２００またはグリセロールの５０％エタノール溶液中で、１５分間処理した。図９は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６（底部）およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（頂部）についての、１００％血漿中の乾燥吸着剤を用いた４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの吸着能力に対する安定化剤の効果を比較する；湿潤しなかったサンプルは、「Ｎｏ Ｔｘ」と表示している。吸着能力を、最適湿潤吸着剤の能力に対するパーセントとして、報告する。
図９のデータで示されるように、また、その「マクロ網」構造に基づいて予測され得るように、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３の能力は、乾燥（「Ｎｏ Ｔｘ」サンプル）により影響されなかった。逆に、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６は、乾燥した場合、最大能力のおよそ３５％を有していた。ＸＡＤ−１６をグリセロール、ＰＥＧ−２００、およびＰＥＧ−４００全てで処理することは、乾燥吸着剤の能力を改善した；それぞれを用いた吸着能力は、全て、９０％より高く、グリセロール＞ＰＥＧ−２００＞ＰＥＧ−４００の順であった。本発明を実施するためには、作用の正確な機構を理解する必要はないが、グリセロールと２種のＰＥＧ溶液との間の能力の相違は、分子量の増加に伴う安定化剤の透過性の低下により引き起こされ得る。すなわち、１５分の適用手順中、グリセロール（分子量＝９２．１）は、ＰＥＧ−２００（分子量＝１９０〜２１０）またはＰＥＧ−４００（分子量＝３８０〜４２０）（これらは、その大きなサイズのために、よりゆっくりと拡散する）のいずれかよりも完全に、吸着剤の細孔を透過し得る。
（グリセロールまたはＰＥＧで処理したＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６の吸着速度論）
吸着剤の細孔をグリセロールまたはＰＥＧで満たすことが、吸着速度の低下を生じるかどうかを決定するために、また研究を行なった。図１０は、数個の異なる溶液で湿潤したＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６を用いた、１００％血漿からの３時間にわたる４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの吸着を比較している。具体的には、図１０のデータは、ｉ）乾燥前にグリセロールの５０％溶液で湿潤したＸＡＤ−１６（実線で接続した白四角）、ｉｉ）乾燥前にＰＥＧ−４００の５０％溶液で湿潤したＸＡＤ−１６（点線で接続した黒丸）、ｉｉｉ）５０％エタノール／５０％ ｄＨ２Ｏであらかじめ湿潤した（すなわち、この研究を開始する直前）ＸＡＤ−１６（点線で接続した黒三角）、およびｉｖ）いずれの処理も受けていないＸＡＤ−１６（実線で接続した黒四角；「Ｎｏ Ｔｘ」）を表わす。図１０のデータは、５０％グリセロール／５０％エタノールまたは５０％ ＰＥＧ−４００／５０％エタノール溶液で湿潤したＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６サンプルが、エタノールで最適湿潤されたサンプル（すなわち、エタノールであらかじめ湿潤したサンプル）に非常に近い吸着速度を有したことを立証している。乾燥されたが処理されていないＸＡＤ−１６サンプル（Ｎｏ Ｔｘ）は、３時間で、約３０％の除去のみを達成した。
本実施例で示したデータは、５０％エタノールおよび５０％グリセロール、ＰＥＧ−２００またはＰＥＧ−４００を含有する溶液の形態での安定化剤によるＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６の処理が、乾燥に付随した吸着能力の損失を防止し得ることを示す。これらの安定化剤を用いて得られた結果は、低分子量湿潤剤が、吸着機能を高める実行可能な方法を代表することを示唆している。
（実施例５）
（ＦＦＰからのメチレンブルーの除去）
本実施例は、種々の異なるポリマー性吸着剤材料が、新鮮凍結血漿からメチレンブルーを除去する能力に関する。
本実施例の実験は、「遊離の」吸着剤樹脂（すなわち、非固定化吸着剤を含む装置に含入されていない）および繊維状樹脂を評価した。試験した遊離吸着剤樹脂は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰ（Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ）、ＭＮ−２００（Ｐｕｒｏｌｉｔｅ）およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（Ｄｏｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．）であった。ＸＡＤ−１６ ＨＰは、前処理（すなわち、湿潤）が必要ないように、水和状態で入手し、また、ＭＮ−２００も、完全に水和した状態で供給された；ＸＵＳ−４３４９３は、乾燥していた。
ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂を、実施例１で一般的に記述したように、調製した。要約すると、１３０ ｇ／ｍ２のＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂の２ｃｍ×７ｃｍ（すなわち、１４ ｃｍ２）ストリップを、まず、７０％エタノールで湿潤し、次いで、蒸留水で充分にリンスした。
米国薬局方メチレンブルー（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ）を蒸留水に溶解することにより、メチレンブルーのストック溶液（１０ ｍＭ）を調製した。メチレンブルーのストック溶液を、１００％血漿サンプルに添加して、１０μＭの最終濃度を得た。「遊離」吸着剤樹脂（すなわち、ＸＡＤ−１６ ＨＰ、ＭＮ−２００およびＸＵＳ−４３４９３）のサンプルを、吸着研究のために、５０ ｍＬポリプロピレンチューブに秤量した。各吸着剤の含水量は、乾燥時の質量損失を測定することにより、決定した。各吸着剤の質量は、それぞれに対して、０．２５ｇの乾燥吸着剤の等価物を使用するように、含水量について補正した。
各バイアルに、１０μＭのメチレンブルーを含有する１００％血漿の３０ ｍＬサンプルを添加した。これらのバイアルを、室温で、回転装置に置いた。各バイアルから、１５分間隔で、サンプル（２００μＬ）を取り出し、そしてＨＰＬＣにより、残留メチレンブルーについてアッセイした。血漿の各サンプルを、サンプル希釈剤で５倍希釈した（最終濃度＝３５％メタノール、２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）。これらのサンプルを４℃で３０分間インキュベートすることにより、タンパク質および他の高分子を沈殿した。サンプルを遠心分離し、その上清を濾過し（０．２μｍ）、そして６５％溶媒Ａ（２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）、３５％Ｂ（メタノール）から８０％Ｂまでの直線グラジエントを２０分間行うことにより、Ｃ−１８逆相カラム（ＹＭＣ ＯＤＳ−ＡＭ ４．６ ｍｍ×２５０ ｍｍ）で分析した。ＨＰＬＣアッセイの検出限界は、およそ０．５μＭメチレンブルーであった。
図１１は、１００％血漿からの２時間にわたるメチレンブルーの吸着速度を比較している。図１１を参照すると、ＸＡＤ−１６ ＨＰデータを、点線で接続した白菱形により表し、ＭＮ−２００データを、実線で接続した黒三角により表し、ＸＵＳ−４３４９３データを、点線で接続した白丸により表し、そしてＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂を、実線で接続した黒四角により表す。データが示すように、ＸＡＤ−１６ ＨＰおよびＭＮ−２００は、最も速い吸着速度を示し、続いて、ＸＵＳ−４３４９３であった。ＸＵＳ−４３４９３の僅かにより遅い速度は、それを乾燥状態で使用したので、より遅い湿潤の結果であり得る。最後に、ＸＡＤ−１６を含有する繊維状樹脂は、最も遅い吸着速度を有した。これは、繊維状樹脂の１４ ｃｍ２ストリップ部分が、この吸着研究全体にわたって、血漿に完全に浸されず、それにより、吸着剤と血漿との間の有効接触領域が低下するので、バッチインキュベーション中の繊維状樹脂と血漿との間の乏しい接触により起こり得る。
このデータは、フェノチアジン色素のような非ソラレン病原体−不活化化合物を、本発明の使用を意図される樹脂および繊維状樹脂を用いて、血液製剤から除去し得ることを示す。
（実施例６）
（濃縮赤血球からのアクリジン化合物の除去）
本実施例は、種々の異なる樹脂材料が濃縮赤血球（ＰＲＢＣ）からアクリジン化合物を除去する能力に関する。より具体的には、本実施例の実験は、ＰＲＢＣからのアクリジン化合物、すなわち、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンの除去を評価する。
数個のアクリジンの化学構造を、図１２に描写する。図１２に示したように、９−アミノアクリジンおよび５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンは、アミノアクリジン類である。
（樹脂選択性）
化合物５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンの平衡吸着を、数タイプの樹脂を用いて研究した。評価したポリマー性吸着剤樹脂は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−２、ＸＡＤ−４、ＸＡＤ−７、およびＸＡＤ−１６ ＨＰ（Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ）；Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−１５０、ＭＮ−１７０、ＭＮ−２００、ＭＮ−３００、ＭＮ−４００、ＭＮ−５００、およびＭＮ−６００；ならびにＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＸＵＳ−４０２８５（Ｄｏｗ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．）であった。さらに、数個のＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）陰イオン交換樹脂（ＩＲＡ−９５８、ＩＲＡ−９００、ＩＲＡ−３５、ＩＲＡ−４１０およびＩＲＡ−１２０；Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ）ならびにＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）弱陽イオン交換樹脂（ＤＰ−１；Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ）を試験した。さらに、数個の木炭を評価し、これは、Ｈｅｍｏｓｏｒｂａ（登録商標）ＡＣ（Ａｓａｈｉ）、ＰＩＣＡ Ｇ２７７およびＮｏｒｉｔ Ａ Ｓｕｐｒａ（共に、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｎｏｒｉｔから市販されている）を含む。最後に、Ｐｏｒａｐａｋ（登録商標）ＲＤｘ（Ｗａｔｅｒｓ）、ニトロ芳香族化合物に親和性を有するスチレン−ビニルピロリドンコポリマーもまた、試験した。
まず、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンおよびアデニン（６−アミノプリン）に対する能力を評価するために、各樹脂のサンプルを用いて、平衡吸着研究を行なった。およそ０．１ｇの樹脂を秤量し、そして６ｍＬのポリプロピレンチューブに移した。次いで、各チューブに、蒸留水中５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン１００μＭを含有する２５％血漿／７５％ Ａｄｓｏｌ（登録商標）（Ｂａｘｔｅｒ）の５．０ ｍＬアリコートを添加した。赤血球のような細胞産物は、典型的には、平衡の合成媒体と共に、低割合の血漿（１０〜３５％）を含有する媒体に保存される；Ａｄｓｏｌ（登録商標）は、生理食塩水溶液中のアデニン、デキストロース、およびマンニトールからなる合成媒体の一例である。もちろん、本発明は、血漿および他の合成媒体の混合物中１００μＭ以外のアクリジン濃度の使用を意図している。次に、これらのチューブを回転攪拌機に置き、そして室温で３時間インキュベートした。インキュベーションに続いて、各サンプルのアリコートを、ＨＰＬＣによる残留５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンおよびアデニンの分析用に、除去した。
ＨＰＬＣ手順のために、各サンプルをサンプル希釈剤（５０％メタノール、２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）で２倍希釈し、そしてこれらのサンプルを４℃で３０分間インキュベートすることにより、タンパク質および他の高分子を沈殿した。次いで、サンプルを遠心分離し、その上清を濾過し（０．２μｍ）、そして７５％溶媒Ａ（２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）、２５％Ｂ（メタノール）から８０％Ｂまでの直線グラジエントを２０分間行うことにより、Ｃ−１８逆相カラム（ＹＭＣ ＯＤＳ−ＡＭ ４．６ ｍｍ×２５０ ｍｍ）で分析した。５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン除去について、Ｃ０＝１００μＭでの単一吸着測定から、Ｃｆ＝１μＭでの推定容量（μｍｏｌｅ／ｇ）を評価した；これらの結果を、表６の第２欄に示す（ＮＤ＝検出されず）。アデニンの除去について、Ｃ０＝１．５ ｍＭでの単一吸着測定から、Ｃｆ＝１ ｍＭでの推定容量（ｍｍｏｌｅ／ｇ）を評価した；これらの結果を、表６の第３欄に示す（ＮＤ＝検出されず）。
Figure 2010031049
アクリジン化合物を吸着し得る任意の樹脂の使用を意図するものの、好ましい樹脂は、アデニンを越える５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンを選択的に吸着し、そして低い溶血を示す。図１３は、種々の樹脂に対するアデニン容量（ｙ軸）および５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン容量（ｘ軸）についてのデータをプロットする。表６および図１３のデータにより示したように、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３およびＰｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−２００樹脂は、最も高い５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン容量を有した；さらに、高い５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン容量および低いアデニン容量の両方を考慮すると、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ＨＰは良好であった。
本実施例で記述のインビトロ実験の結果は、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３および関連樹脂Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−２００が、ＰＲＢＣからのアクリジン化合物の除去に、好ましい樹脂であることを示唆している。
（実施例７）
（スチレン−ジビニルベンゼン吸着剤を用いた濃縮赤血球からのアクリジン化合物の除去）
本実施例は、種々の異なるスチレン−ジビニルベンゼン（スチレン−ＤＶＢ）吸着剤が血液製剤からアミノアクリジン化合物を除去する能力に関する。さらに具体的には、本実施例の実験は、血漿／Ａｄｓｏｌ（登録商標）溶液からのアクリジンオレンジおよび９−アミノアクリジン（図１２で描写した）の除去を評価する。
（Ａ．実験手順）
本実施例の実験のために、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン（Ｃｅｒｕｓ）およびアクリジンオレンジ（Ａｌｄｒｉｃｈ）のストック溶液（１０ ｍＭ）を蒸留水中で調製し、そして９−アミノアクリジン（Ａｌｄｒｉｃｈ）のストック溶液（１０ ｍＭ）をエタノール中で調製した。この５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンを、１００μＭの最終濃度を達成するように、２５％血漿／７５％生理食塩水を含有する溶液に添加したのに対して、このアクリジンオレンジおよび９−アミノアクリジン化合物を、１００μＭの最終アクリジン濃度を達成するように、２５％血漿／７５％ Ａｄｓｏｌ（登録商標）（Ｂａｘｔｅｒ） Ｒｅｄ Ｃｅｌｌ Ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ Ｓｏｌｕｔｉｏｎを含有する溶液に添加した。
使用した吸着剤は、Ａｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ ＨＰ（Ｒｏｈｍ ａｎｄ Ｈａａｓ）、Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−２００、およびＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３（Ｓｕｐｅｌｃｏ）であった。各吸着剤の含水量は、乾燥時の質量損失を測定することにより、決定した；この含水量は、０．２５ｇの各乾燥吸着剤の等価物を使用するように、補正した。吸着剤を、５０ ｍＬ Ｆａｌｃｏｎ管に正確に秤量した。吸着剤を含有する各管に、１００μＭアクリジンを含有する２５％血漿／７５％ Ａｄｓｏｌ（登録商標）溶液３０ ｍＬを添加した。次いで、これらの管を、室温で回転装置に置き、そして種々の時点で溶液の５００μＬサンプルを取り出し、後の分析用に保存した。
残留アクリジンのレベルについて、ＨＰＬＣにより、サンプルを分析した。各サンプルをサンプル希釈剤（５０％メタノール、２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）で２倍希釈し、そしてこれらのサンプルを４℃で３０分間インキュベートすることにより、タンパク質および他の高分子を沈殿した。次いで、これらのサンプルを遠心分離し、その上清を濾過し（０．２μｍ）、そして７５％溶媒Ａ（２５ ｍＭ ＫＨ２ＰＯ４、ｐＨ＝３．５）、２５％Ｂ（メタノール）から８０％Ｂまでの直線グラジエントを２０分間行うことにより、Ｃ−１８逆相カラム（ＹＭＣ ＯＤＳ−ＡＭ ４．６ ｍｍ×２５０ ｍｍ）で分析した。検出を、９−アミノアクリジンについて４００ ｎｍ、アクリジンオレンジについて４９０ ｎｍ、そして５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンについて４１０ ｎｍに設定したダイオードアレイ検出器を用いて、可視吸光度により行なった。
（Ｂ．吸着速度論）
２５％血漿／７５％生理食塩水からの５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンの３時間にわたる吸着速度を、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３、Ｐｕｒｏｌｉｔｅ（登録商標）ＭＮ−２００、およびＡｍｂｅｒｌｉｔｅ（登録商標）ＸＡＤ−１６ＨＰについて、比較した。図１４Ａおよび図１４Ｂは、共に、時間の関数としての残留５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンを表わし、図１４Ｂは、対数目盛でのデータを示す。図１４Ａおよび図１４Ｂでは、ＸＡＤ−１６ ＨＰのデータを、点線で接続した黒丸により表し、ＭＮ−２００のデータを、点線で接続した黒四角により表し、そしてＸＵＳ−４３４９３のデータを、実線で接続した黒三角により表す。このデータが示すように、ＸＵＳ−４３４９３およびＭＮ−２００は、最も速い吸着速度を生じ、ほぼ同じであった。ＸＡＤ−１６ ＨＰは、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンについて低い能力を有すると思われる。
図１５は、Ｄｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３を用いた２５％血漿／７５％ Ａｄｓｏｌ（登録商標）からの９−アミノアクリジンおよびアクリジンオレンジの除去の吸着速度を比較する。図１５を参照すると、点線での黒四角は、９−アミノアクリジンを表わし、そして実線での黒丸は、アクリジンオレンジを表わす。このデータが示すように、９−アミノアクリジンのレベルは、３時間を越えると、検出不可能であった。比較すると、アクリジンオレンジに対するＤｏｗｅｘ（登録商標）ＸＵＳ−４３４９３の能力は、より低く、これは、アクリジンオレンジ上の２個の第三級アミノ基の存在と関連し得る。
この研究の結果は、ポリスチレン−ＤＶＢ吸着剤が血液製剤からアクリジン類を除去する一般的能力を示す。化学試薬（例えば、アクリジン）と細胞含有血液製剤との間の相互作用が、バッチ吸着またはフロー吸着除去装置のどちらが最も効果的であるかを決定することに注目すべきである。同様に、個々の吸着剤の血液適合性は、どの吸着剤が最も効果的であるかの決定に影響する。
改変および等価は当業者に明らかなので、本発明が、提示し記述した正確な操作の詳細または正確な化合物、組成物、方法、もしくは手順に限定されないことを理解すべきである。上記のことから、これらの方法および装置を、輸血のための血液製剤を加工するのに現在使用されているアフェレーシスシステムおよび他の装置および手順と組み合わせ得ることは、明らかなはずである。
（実施例８）
本実施例は、媒体中の活性成分としての異なるタイプの粉末炭素の使用を比較し、そして小有機化合物の濃度を低下させ液体の生物学的機能を維持するためにどの程度注意深い活性成分の選択が必要かを示す。実施例８で例示した５個の活性炭は、血漿中にて、ほぼ同じ量で、ソラレン、すなわち、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの濃度を低下させる。しかしながら、「Ａ Ｓｕｐｒａ」を吸着剤粒子として使用する場合、他の吸着剤と比較して、凝固因子の実質的により良好な保持がある。
４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを、１５０μＭの濃度となるように、血漿に添加し、この血漿を、３２５ ｍＬバッチにて、３．０ Ｊ／ｃｍ２のＵＶＡで照射して、病原体を不活化した。残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン濃度は、得られた血漿プールにて、およそ９０μＭであった。照射した血漿３２５ ｍＬを、５個の異なるタイプの９０ ｍｍ Ｃｕｎｏ ＺｅｔａＰｌｕｓカーボンパッドを介して、２０ ｍＬ／分でポンピングした。血漿凝固因子レベル、凝固時間、および４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン濃度を、このカーボンパッドを介して流す前および後に、アッセイした。
Figure 2010031049
活性炭仕様
Figure 2010031049
Ｒ１０Ｓ媒体に対する水流速は、１．５ ｐ．ｓ．ｉ．の差圧で、２ガロンの水／分／平方フィートである。
注：Ａ Ｓｕｐｒａ等級を、Ｒ１ｘＳシリーズとして、同じ仕様に調製した；炭素のみを変えた。ＰＴＴは、部分トロンボプラスチン時間を意味し、上昇は、凝固因子の除去を示す。Ｉ、ＶＩＩＩおよびＩＸは、特定の凝固因子を意味する。全ての値を、光化学処理後と比較している。４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを、ＨＰＬＣによりアッセイし、そして凝固因子および時間を、自動凝固分析機によりアッセイした。
（実施例９）
本実施例は、２種の粒子サイズの使用を比較し、小有機化合物の濃度を低下する点でのより小さな粒子の優位性および液体生物学的機能での交換を示す。５０μｍ未満の粒子サイズは、１００μｍと５０μｍとの間の粒子サイズの使用と比較して、血漿から除去されるソラレンの割合の有意な増加を生じる：９６．１％に対して、９９．２％。
光化学的に処理した血漿を、実施例８と同様に調製した。Ｃｕｎｏ Ｒ１ｘＳ仕様書に従って、粉末活性炭に代えて、２個の異なる粒子サイズの粉砕Ｄｏｗｅｘ Ｏｐｔｉｐｏｒｅ Ｌ４９３を含有する、ＺｅｔａＰｌｕｓ様フィルタを作製した。３２５ ｍＬの光化学処理した血漿を、各パッドを介して、２０ ｍＬ／分でポンピングした。実施例８のように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび凝固因子を分析した。
Figure 2010031049
（実施例１０）
本実施例は、小有機化合物の濃度を低下させることに対する、活性成分の質量画分を変化する効果および液体生物学的機能での交換を比較する。
光化学的に処理した血漿を、実施例８と同様に調製した。Ａ Ｓｕｐｒａパッドを、およそ６０％の炭素の標準的なＲ１ｘＳ装填および３０％のより低い装填レベルで、調製した。およそ２３０ ｍＬの血漿を、各９０ ｍｍディスクを介して、ポンピングした。実施例８のように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび凝固因子を分析した。
Figure 2010031049
（実施例１１）
本実施例は、いくつかの場合において、媒体を親水性ポリマーで処理することが、生物学的機能に対して有益であり得ることを示す。
光化学的に処理した血漿を、実施例８と同様に調製した。１個の９０ ｍｍ Ｒ１４Ｓパッドを、９５％エタノール中のポリヒドロキシエチルメタクリレート（ｐｏｌｙｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ）（ｐＨＥＭＡ）の５０ ｍｇ／ｍＬ溶液で一晩フラッシュし、さらなる重量変化がなくなるまで、７０℃の乾燥器中で乾燥した。第２パッドを同様にｐＨＥＭＡなしの９５％エタノールでフラッシュし、乾燥した。およそ３２５ ｍＬの血漿を、ディスクを介して、５ｍＬ／分でポンピングした。実施例８のように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび凝固因子を分析した。
Figure 2010031049
（実施例１２）
本実施例は、流速が、小有機化合物の濃度低下に影響し得ることを示す。
光化学的に処理した血漿を、実施例８と同様に調製した。Ａ Ｓｕｐｒａパッドは、およそ６０％の炭素の標準的なＲ１ｘＳ装填で調製し、３２５ｍＬの処理した血漿を、各４７ ｍｍ直径のディスクを介して、３個の異なる流速でポンピングした。実施例８のように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび凝固因子を分析した。
Figure 2010031049
（実施例１３）
本実施例は、液体容量が、いかにして、小有機化合物の濃度低下および液体の生物学的活性に影響し得るかを示す。生物学的流体と有機分子低下装置との間の接触モードの重要な性質を例示する。液体容量が小有機化合物の濃度低下および液体の生物学的活性の両方に有する効果を示す。装置を介してポンピングした血漿容量が上昇する（例えば、２倍になった）場合、ほぼ同じ濃度の小有機化合物（例えば、ソラレン）を溶液から低下し、そして、凝固因子の保持に有意な上昇がある。
光化学的に処理した血漿を、実施例８と同様に調製した。Ｃｕｎｏ Ｒ１ｘＳ仕様書に従って、粉末活性炭に代えて、５０μｍ未満の粒子の粉砕Ｄｏｗｅｘ Ｏｐｔｉｐｏｒｅ Ｌ４９３でＺｅｔａＰｌｕｓ様フィルタを調製した。血漿を、このフィルタを介して、２０ ｍＬ／分でポンピングし、１８０ ｍＬおよび３２５ ｍＬでサンプルを取り出した。実施例８のように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび凝固因子を分析した。
Figure 2010031049
（実施例１４）
本実施例は、焼結媒体の使用を記述する。
直径９０ミリメートルで１／４インチ厚のディスクを、Ｐｏｒｅｘにより作製した。ディスクは、種々の重量画分の細かく粉砕したＤｏｗｅｘ Ｏｐｔｉｐｏｒｅ Ｌ４９３（２０μｍと１００μｍとの間の粒子サイズを有する）および超高分子量ポリエチレン（等級ＵＦ２２０）の小粒子を含有しており、これらを、次いで、共に焼結した。光化学的に処理した血漿を、実施例８と同様に調製し、そして２００ ｍＬの血漿を、各ディスクを介して、１６〜１８ ｍＬ／分でポンピングした。実施例８のように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび凝固因子を分析した。
Figure 2010031049
（実施例１５）
本実施例は、一定厚さにてフィルタの直径を増加することにより、吸着剤の質量を増加する効果を記述する。
光化学的に処理した血漿を、実施例８と同様に調製した。およそ３２５ ｍＬの処理血漿を、直径９０ ｍｍおよび４７ ｍｍのＲ０３Ｓ等級ディスクを介して、５ ｍＬ／分でポンピングした。実施例８のように、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび凝固因子を分析した。
Figure 2010031049
（実施例１６）
５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン誘導体およびグルタチオンで処理したＰＲＢＣの調製。ＰＲＢＣのプールを、新鮮ＡＢＯ調和全血から調製した。全血のユニットを、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｓｏｒｖａｌｌ ＲＣ３Ｂ遠心分離機を用いて、３８００ ｒｐｍで５分間遠心分離した。この血漿を、発現機（ｅｘｐｒｅｓｓｅｒ）を用いて、他のクリーンバッグに発現した。ＰＲＢＣのユニットを、１個より多いユニットが必要の場合、３．０ ＬのサイズのＣｌｉｎｔｅｃ Ｖｉａｆｌｅｘバッグにプールした。各ユニットのＰＲＢＣに対して、９４ ｍＬのＥｒｙｔｈｒｏｓｏｌを添加した。ヘマトクリット（ＨＣＴ）の割合を、毛細管を血液サンプルで満たして５分間回転することにより、測定した。このヘマトクリットを、５５％より低く減少しないことを保証するために、測定した。ＰＲＢＣの各１００ ｍＬに対して、３．３ ｍＬの１２％グルコースを添加した。最終ヘマトクリット割合を決定した。ＰＲＢＣ（３００ ｍＬ）をプラスチック容器ＰＬ１４６（Ｂａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）に再充填した。血液バッグには、３．０ ｍＭの最終濃度に達するように、６．０ ｍＬの１５０ ｍＭグルタチオンを添加し、また、３００μＭの最終濃度になるように、３．０ ｍＬの３０ ｍＭ ５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン誘導体を添加した。このＰＲＢＣ混合物を、手首で動かす振盪器（製造者）を用いて、１分間攪拌した。５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン誘導体およびグルタチオン処理ＰＲＢＣを室温で一晩インキュベートして、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン誘導体を５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンに分解した。
（実施例１７）
ＰＲＢＣおよびＰＲＢＣ上清中の５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンに関するＨＰＬＣアッセイ。サンプル（１００μＬ）を１００μＬの生理食塩水で希釈し、得られた混合物をボルテックスした。この溶液に、ＣＨ３ＣＮ中の２０ ｍＭ Ｈ３ＰＯ４（３００μＬ）を添加し、混合物を１５秒間ボルテックスした。このサンプルを、１３，２００ ｒｐｍで５分間遠心分離した。上清（２００μＬ）を冷０．１ Ｍ ＨＣｌ（８００μＬ）に希釈し、そしてボルテックスした。このサンプルを、０．２μｍ Ｇｅｌｍａｎ Ａｃｒｏｄｉｓｃフィルタを用いて、オートサンプラーバイアルに濾過した。ＨＰＬＣ条件は、以下であった：（カラムおよび一般カラムの製造業者および部品番号） カラム＝Ｚｏｒｂａｘ ＳＢ−ＣＮ、４．６ ｍｍ×１５０ ｍｍ、３．５μｍ粒子；ガードカラム＝（４．６ ｍｍ×１２．５ ｍｍ、５μｍ粒子（Ｍａｃ Ｍｏｄ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ， Ｉｎｃ．（Ｃｈａｄｄｓ Ｆｏｒｄ、ＰＡ）））；Ａに対する移動相は、ＨＰＬＣ水中の１０ ｍＭ Ｈ３ＰＯ４であった；Ｃに対する移動相は、アセトニトリル中の１０ ｍＭ Ｈ３ＰＯ４であった；温度は、２０℃であった；サンプル容量は、１００μＬであった；グラジエント条件は、以下であった：
Figure 2010031049
ＤＡＤ設定は、以下であった：
Figure 2010031049
（実施例１８）
ＰＲＢＣおよびＰＲＢＣ上清中のグルタチオンに関するＨＰＬＣアッセイ。サンプルを、上記のＨＰＬＣアッセイと同様にして、調製した。ＨＰＬＣ条件は、以下であった：分析カラム＝ＹＭＣ ＯＤＳ−ＡＭ−３０３、２５０ ｍｍ×４．６ ｍｍ、５μｍ粒子；ガードカラム＝Ｂｒｏｗｎｌｅｅ、１５×３．２ ｍｍ、７μｍ粒子；Ａに対する移動相は、ＨＰＬＣ水中の１０ ｍＭ Ｈ３ＰＯ４であった；Ｃに対する移動相は、アセトニトリル中の１０ ｍＭ Ｈ３ＰＯ４であった；温度は、１５℃であった；サンプル容量は、７５μＬであった；グラジエント条件は、以下であった：
Figure 2010031049
ＤＡＤ設定は、以下であった：
Figure 2010031049
（実施例１９）
吸着剤をスクリーニングする方法。ＰＲＢＣからの上清を代表するように、２５％血漿および７５％ Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌを含有する試験溶液を使用した。Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌを、別々に滅菌した２個の別個のストック溶液部分（溶液Ｃおよび溶液Ｄ）として、調製した。最終溶液を、等容量の溶液Ｃおよび溶液Ｄを混合することにより、調製した。
Figure 2010031049
この血漿−Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌ溶液を、３００μＭの最終濃度まで、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンでスパイクした。この混合物に、グルタチオン（還元形態、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．）を添加して、３ｍＭの最終濃度を得た。吸着剤のサンプル（０．２〜０．８ｇ）を、風袋を量ったネジ頂部付き７ｍＬポリプロピレンバイアルへと、正確に秤量した（±０．００１ｇ）。前湿潤を必要とする吸着剤のサンプルを、７０％エタノールに懸濁した。この吸着剤を沈降し、その上清を除去した。この吸着剤を蒸留水に再懸濁し、この吸着剤を沈降し、その上清をデカントすることにより、残留エタノールを除去した。吸収容量を計算したとき、吸着剤の質量を、含水量に対して補正した。各チューブに、血漿／Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌの５．０ ｍＬアリコートを添加した。これらのチューブを回転装置に置き、そして室温で２４時間回転した。バイアルを、回転装置から取り外し、吸着剤を沈降した。各チューブから、上清のサンプルを除去した。サンプルを遠心分離して、残留吸着剤を除去した。サンプルをＨＰＬＣにより分析して、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンの残留レベルを決定した。上記逆相アッセイを用いて、グルタチオンの残留レベルを測定した。この吸着剤のスクリーニングから得た結果を、表７および８に示す。
Figure 2010031049
Figure 2010031049
Figure 2010031049
Figure 2010031049
Figure 2010031049
Figure 2010031049
Figure 2010031049
Figure 2010031049
Figure 2010031049
（実施例２０）
吸着剤の吸着能力。吸着等温線実験を行い、吸着能（５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンのμモル／吸着剤のｇ）を様々な型の吸着剤について決定した。図１７は、いくつかのＡｍｂｅｒｓｏｒｂについて得られた吸着等温線を、Ｐｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００の吸着等温線と比較して示す。吸着研究を、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン（０．２〜３ｍＭ）およびＧＳＨ（０．６〜１０ｍＭ）含有、２５％血漿／７５％Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌ溶液で行った。サンプルを２４時間、室温で攪拌した。表７（２２μモル／ｇ）の吸着能力を用いた計算により、ＰＲＢＣ ３００ｍＬ単位中の５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンレベルを、３００μＭから最終レベルの１μＭまで減少するのに、約４ｇのＰｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００を必要とすることを決定した。１ｇ未満のＡｍｂｅｒｓｏｒｂ ５７２（１３０μモル／ｇ）を同等の除去を達成するのに必要とする。同様の計算により、１５０ｍＬの上清（５０％ＨＣＴ）中、ＰＲＢＣ ３００ｍＬ単位中のＧＳＨレベルを、６ｍＭから最終レベルの５００μＭに減少するのに、１ｇ未満のＡｍｂｅｒｓｏｒｂ ５７２が必要であることを推定した。
（実施例２１）
いくつかの形態の活性炭媒体を用いたフロー研究。フロー装置を用いて、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンおよびＧＳＨのＰＲＢＣからの除去を研究するための実験を行った。ＰＲＢＣ（Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌ、グルコース、６３％ＨＣＴ）を、分解性５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン誘導体（３００μＭ）およびＧＳＨ（３ｍＭ）で投薬し、装置を介してフローする前に、２０時間、攪拌せずに室温に保った。フロー化合物吸着装置媒体は、様々な形態の活性炭で、複合炭素／セルロースディスク、または炭素繊維フェルトのいずれかとして、構成した。媒体を９０ｍｍ直径ポリカーボネートハウジング（Ｃｕｎｏ， Ｍｅｒｉｄｉｅｎ， ＣＴ）に密封した。投薬したＰＲＢＣを、５ｍＬ／分の流速の媒体を介して、ポンプし（Ｇｉｌｓｏｎ Ｍｉｎｉｐｕｌｓ， Ｍｉｄｄｌｅｔｏｎ， ＷＩ）、そしてＰＬ１４６プラスチック容器（Ｂａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）に回収した。この研究の結果を表９に示す。
表９．様々な活性炭媒体を用いたフロー研究結果。
Figure 2010031049
Figure 2010031049
（実施例２２）
フロー化合物吸着装置（ＣＵＮＯ媒体）対バッチ化合物吸着装置（ＡＱＦ媒体）。フローでの５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンおよびＧＳＨ除去とバッチ化合物吸着装置を比較した研究を行った。フロー装置は、９０ｍｍハウジングに囲まれた、セルロース／Ｎｏｒｉｔ Ａ Ｓｕｐｒａ （Ｎｏｒｉｔ Ａｍｅｒｉｃａｓ， Ｉｎｃ． （Ａｔｌａｎｔａ， ＧＡ））炭素ディスクで構成した。２つの別々のバッチ装置が存在した：一方は繊維状Ｐｉｃａ Ｇ２７７活性炭（ＡＱＦ ５００ｇ／ｍ２）で構成し；他方は繊維状Ｐｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００（ＡＱＦ ３１２ｇ／ｍ２）で構成した。分解性５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン誘導体（３００μＭ）およびＧＳＨ（３ｍＭ）を投薬した後、流速２ｍＬ／分のセルロース／炭素媒体ＰＲＢＣを介してポンプし、その後、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンおよびＧＳＨレベルは、それぞれ、ＰＲＢＣ上清中、２４μＭおよび０．７１ｍＭ（７５％および８８％）に低下した。次いで、ＰＲＢＣに曝されたフロー装置をＭＮ−２００バッチ装置（６ｇ）に移した。これは、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンおよびＧＳＨレベルをさらに５％および１％減少させ、２４時間にわたって、２０μｍおよび０．６７ｍＭに達した。ＰＲＢＣのＰｉｃａ Ｇ２７７バッチ装置（７ｇ）単独への曝露は、５−［（βカルボキシエチル）−アミノ］アクリジンおよびＧＳＨレベルの、９２％および５４％の低下（８μＭおよび３ｍＭの濃度まで）を生じた。それゆえ、フロー装置を通過したものは、２４時間の炭素バッチ装置への曝露よりも、ＧＳＨ除去において、効果的であった。しかしながら、バッチ装置単独は、組み合わせたフロー装置およびＭＮ−２００装置より、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン除去に効果的であった。装置を介したフローは、ＰＲＢＣ ＡＴＰ濃度に悪影響しないように思われた。ＰＲＢＣのＫ＋レベルは、２４時間炭素バッチ装置曝露に比較して、フロー装置曝露後、より低かった。
（実施例２３）
（分解生成物の長期除去）
この実験により、２４時間曝露後に繊維化ＰＩＣＡ Ｇ−２７７活性炭装置（ＡＱＦ、７．３ｇ、５００ｍ２／ｇ）を除去したＰＲＢＣ中の、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンおよびＧＳＨレベルを試験した。この研究を、ＰＲＢＣが装置曝露を継続した研究と平行して行った。図１８は、上清サンプル中の５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンおよびＧＳＨの濃度が、１〜４週間の保存時間にわたる装置非存在下、かなりより高かったことを示す。
５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン濃度を、除去装置（ＭＮ−２００）存在下、３５日保存後、初期に振盪したＰＲＢＣ中、５μＭまで減少した。これは、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン除去が、４℃での静的保存条件下において起こることを示す。
（実施例２４）
（封入物質（膜、織（ｗｏｖｅｎ）、不織（ｎｏｎ−ｗｏｖｅｎ））のＩＡＤに対する効果）
吸着媒体を取り囲む封入物質の使用を、主要な目的の粒子保持について研究した。主要な目的は粒子保持である。しかしながら、膜は装置の血液適合性を、ＲＢＣと膜との間の接触を防ぐことによって増強し得る。膜は親水性ポリマー（ＰＥＯ、ＰＥＧ、ＨＰＬ）で容易に修飾され、機能を変化させることなく血液適合性を増強し得る。約１０ｇの繊維化Ｐｉｃａ Ｇ２７７活性炭媒体（ＡＱＦ ５００ｇ／ｍ２）を、熱融着された膜、織ポリエステル、または不織ポリエステル材料で取り囲んだ。ＰＲＢＣ単位（３００ｍＬ）を、分解性５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン誘導体（３００μＭ）およびＧＳＨ（３ｍＭ）で投薬し、室温で２０時間、血小板振盪機上で維持し、次いでＩＡＤに移した。５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン濃度を２４時間にわたってモニターした。図１９は、繊維状Ｐｉｃａ Ｇ２７７活性炭（５００ｇ／ｍ２）からなるＩＡＤに曝露され、かつ、膜、織材料、または、不織材料に包囲された３００ｍＬ ＰＲＢＣ単位の上清における、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンレベルを示す。ＰＲＢＣ（Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌ、グルコース、６２％ＨＣＴ）に、分解性５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン誘導体（３００μＭ）およびＧＳＨ（３ｍＭ）を投薬し、ＩＡＤへ移す前に、室温で、血小板振盪機上で攪拌した。ＰＲＢＣ含有ＩＡＤを室温で２４時間攪拌した。
これらの研究は、Ｔｅｔｋｏ織封入物が、２４時間にわたる５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンの最も速い除去動態を示すことを示している。２週間後に全ての封入物質について達成された最終レベルは同様であり、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン濃度は、１日後に約２μＭまで減少したが、８日目付近で１０μＭまで上昇して戻った。
（実施例２５）
化合物吸着装置の赤血球機能に対する影響。赤血球機能の指標を、様々な装置配置について、５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンおよびＧＳＨ除去実験の過程にわたってモニターした。測定したパラメーターは、パーセント溶解、ＡＴＰおよびＫ＋濃度を含んだ。表１０は、ＡＴＰ濃度が一般に、化合物除去装置の存在により影響されなかったことを示す：ＡＴＰ濃度の減少は、コントロール（ＩＡＤなし）とＭＮ−２００またはＰｉｃａ Ｇ２７７装置とでほぼ同様であった。ＰＲＢＣのＫ＋レベルは経時的に増加することが見出された。除去が起こった温度は、２０日にわたって化合物除去装置に曝露されたＰＲＢＣ単位のＫ＋レベルに影響しなかった。しかしながら、曝露時間を３５日まで拡大した場合、ＰＲＢＣのＫ＋増加率は、吸着剤型により変化し、３９ｍｍｏｌ／Ｌの装置なしコントロールと比較して、ＭＮ−２００およびＰＩＣＡ Ｇ−２７７装置について、それぞれ４０および４５ｍｍｏｌ／Ｌの最終レベルを達成した。装置曝露および装置なしコントロールＰＲＢＣ単位で溶解された赤血球の割合は一般的に２４時間後、０．１と１％との間であることが見出された。表１１および表１２に示し、図２０および２１に図示したように、％溶解は用いた吸着剤型により、顕著に変化した。表１１は、３５日にわたって２種の型の固定化吸着装置に曝された、ＰＲＢＣについて得られた溶解値を示す。表１２は、４２日にわたって織ポリマーメッシュに封入されたルーズな吸着粒子に曝された、ＰＲＢＣについて得られた溶解値を示す。手動振動機を、１分間全てのＰＲＢＣ単位に投薬するのに用いた。その後、ＰＲＢＣを、室温で４時間、静的状態においた。装置を、血小板振盪機上で２４時間、室温に維持した。その後、これらを研究の間、４℃の静的状態においた。固定化ＭＮ−２００は、固定化ＰＩＣＡ Ｇ−２７７よりも低い溶血性レベルを示したが、Ａｍｂｅｒｓｏｒｂ合成炭素吸着剤は、ルーズな吸着剤（ａｄｓｏｒｄｅｎｔ）と比較した場合、最低溶血レベルの１つを示した。ＭＮ−２００ ＩＡＤは、同様の非固定化吸着剤よりも、低い溶血性を示した。同様の観察を、他のＩＡＤについて、同様の非固定化吸着剤との比較として観察した。
表１０．経時のＰＲＢＣにおけるＡＴＰ濃度（μｍｏｌ／ｄＬ）
Figure 2010031049
表１１．異なるＩＡＤに曝されたＰＲＢＣ（５６％ＨＣＴ）における経時のパーセント溶解
Figure 2010031049
表１２ 織メッシュに封入された異なるルーズな粒子吸着剤に曝されたＰＲＢＣ（５５％ＨＣＴ）におけるパーセント溶解。
Figure 2010031049
吸着粒子の赤血球機能の維持に関する重大な性質を例証する。５つの異なる吸着剤の赤血球溶血に対する効果の比較研究を示す。Ａｍｂｅｒｓｏｒｂ ５７２は、２４時間曝露後のＰＲＢＣ（５５％）において０．１６％溶血のみを生じ、一方Ｄａｒｃｏ ＡＣ（Ｎｏｒｉｔ Ａｍｅｒｉｃａｓ， Ｉｎｃ． （Ａｔｌａｎｔａ， ＧＡ））は、０．１３％溶解を生じた。これらの吸着剤は、Ｐｕｒｏｌｉｔｅ ＭＮ−２００、Ｈｅｍｏｓｏｒｂａ ＣＨ−３５０およびＰｉｃａ Ｇ２７７吸着剤よりも、赤血球溶血の最小化において、顕著に良好であった。
表１３は、グルタチオンおよび５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジン含有赤血球サンプルからの上清を、複数の異なる吸着剤と接触させた、比較研究を示す。活性炭吸着剤は、５−［（β−カルボキシエチル）アミノ］アクリジンおよびグルタチオンの両方の濃度を実質的に減少し得る吸着剤のただ１つの型である。天然活性炭（ＮｏｒｉｔおよびＰＩＣＡ）ならびに合成活性炭（Ａｍｂｅｒｓｏｒｂ）の両方は、化合物減少に効果的であることが判明した。
表１３．数種の異なる吸着剤の特性
Figure 2010031049
＠ＰＳ−ＤＶＢ＝ポリスチレン−ジビニルベンゼン、ＡＣ＝活性炭
∧「＞」として列挙した値は、アッセイＬＯＤ未満残留レベルを有する単測法であった
＊ ２５％血漿、７５％Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌにおける単一点吸着研究から評価した。
＋ ２５％血漿、７５％Ｅｒｙｔｈｒｏｓｏｌにおける複数点吸着等温線から評価した。
（実施例２６）
この実施例は、３０％Ｎｏｒｉｔ Ａ Ｓｕｐｒａ炭素（Ｎｏｒｉｔ Ａｍｅｒｉｃａｓ， Ａｔｌａｎｔａ， ＧＡ）で構成され、先の実施例において先述したＣｕｎｏ （Ｍｅｒｉｄｅｎ， ＣＴ）により製造された吸着剤を用いた、血漿におけるフローモードでの固定化吸着剤装置の典型的性能を記述する。
ＩＡＤを、５μｍ孔を有する９０ｍｍ直径のＭｅｍｔｅｃヒドロキシプロピルセルロースコーティングポリスルホン膜と連結した、Ｒ１０ＳＰ媒体を浸み込ませた９０ｍｍ Ｃｕｎｏ ３０％Ｎｏｒｉｔ Ａ Ｓｕｐｒａを用いて組み立てた。
使い捨てできる製造を完全にするため、１ ＬＰＬ２４１０バッグを外径１／８インチの管にドッキングし、次いで、この管をＩＡＤの出口に、ＩＡＤの中線からバッグまでの距離が４０ｃｍになるように取り付けた。同じサイズの管を、それにイルミネーションバッグをドッキングした場合に、その中線からバッグまでの距離が３０ｃｍになるように、ＳＲＤの入口に取り付けた。
５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンを５００ｍＬの血漿に、最終濃度約１５０μＭまで添加し、血漿を６．３Ｊ／ｃｍ２のＵＶＡに照射して病原体を不活化した。照射後の５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジン濃度は、約８２μＭであった。
表１４は、凝固因子活性および５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンレベルの、ＩＡＤで処理した後の、ＩＡＤを通過させる前の値に対する、測定値を示す。この実験を３回繰り返した。平均および標準偏差を報告する。処理時間は平均１４分であった。第Ｉ、ＩＩ、Ｖ、ＶＩＩ、Ｘ因子または凝固因子、プロトロンビン時間（ＰＴ）および活性化部分トロンボプラスチン時間（ａＰＴＴ）活性の測定には実質的に何の変化もなく、そして第ＸＩおよびＸＩＩ因子には非常に小さい変化があった。第ＶＩＩＩおよび第ＩＸ因子は、いくらかより大きい変化を示したが、特に、これらの欠損の組換えタンパク質の処方を考慮すると、これらは受容可能であった。装置の非常に選択的な性質を、０．９％の５−［（β−カルボキシエチル）−アミノ］アクリジンに通過させる間、実質的に全ての凝固活性を保持するという点で、注意すべきである。
Figure 2010031049
（実施例２７）
不織ポリエステル繊維マトリックス（Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３）に付着したＤｏｗｅｘ Ｏｐｔｉｐｏｒｅ Ｌ−４９３からなる繊維状媒体がＨｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅ（Ｃｈａｒｌｏｔｔｅ，ＮＣ）のＡＱＦ分割によって製造される。血小板用のバッチ式除去装置におけるこの吸着剤媒体の性能を評価した。
（血小板の調製）
３５％の自家血漿３００ｍＬ中に３．５〜４．５×１０１１個の血小板を含む単一のドナーアフェレーシス血小板ユニット（６５％ ＰＡＳ ＩＩＩ）がＳａｃｒａｍｅｎｔｏ Ｂｌｏｏｄ Ｂａｎｋ Ｃｅｎｔｅｒより得られた。４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレン（Ｂａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）をそれぞれの血小板ユニットに添加し、最終濃度である１５０μＭに達した。血小板ユニット（４〜５）を単一のＰＬ−２４１０プラスチック容器に保存し、そして十分に混合した。血小板のプールを約３００ｍＬの血小板混合物をそれぞれ含むように４−５ １ Ｌ ＰＬ２４１０プラスチック容器に均等に分割した。ユニットを３．０Ｊ／ｃｍ２のＵＶ−Ａで光化学的に処理し、そしてこの研究用に適切な除去装置に移した。全ての実験は、光化学的に処理（１５０μＭソラレン、３．０Ｊ／ｃｍ２ＵＶＡ）をされたが除去装置に接触しなかったコントロールの血小板を含んだ。
（装置の準備）
２．５ｇのＤｏｗｅｘ ＸＵＳ ４３４９３を含む標準除去装置をＢａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ（Ｌｏｔ ＦＸ１０３２ Ｄ９６Ｆ２００４２Ｒ）により準備した。実験用のＩＡＤｓをロールストック（ｒｏｌｌ ｓｔｏｃｋ）として供給されたＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体（Ｈｏｅｃｈｓｔ Ｃｅｌａｎｅｓｅ Ｃｏｒｐ．）で調製した。媒体を測定し、そしてそれぞれのＩＡＤ（５．０ｇおよび７．５ｇ）用の適切な吸着剤量を得るように切断した。切断した媒体を３０μｍのポリエステルメッシュ（Ｔｅｔｋｏ）をインパルス溶接によって構成されたポーチの中に置いた。媒体を含むメッシュポーチをオートクレーブ処理し（１２１℃，２０分）、そして滅菌したＰＬ ２４１０プラスチック容器中に置いた。あるいは、メッシュポーチをＰＬ ２４１０容器中に置き、その容器を密封し、そして全ての組立部品を２．５ＭＲａｄのガンマ線照射（ＳｔｅｒｉＧｅｎｉｃｓ，Ｃｏｒｏｎａ，ＣＡ）で滅菌した。光化学的に処理した血小板の移動の前に、過剰の空気をシリンジを用いて手動で装置から排除した。
（吸着速度論）
４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンとＵＶＡでの光化学的処理に続いて、血小板混合物を除去装置を備えたＰＬ ２４１０プラスチック容器に移した。装置を標準血小板インキュベーター（Ｈｅｌｍｅｒ）に置き、そして２２℃、７０サイクル／分で攪拌した。血小板混合物のサンプルを保存の最初の８時間の間、１時間間隔で取り出した。これらのサンプルを４℃で保存し、そして後でＨＰＬＣ分析によって残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンを分析した。アッセイは血小板を溶解し、そして４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンおよび遊離光生成物を可溶化する初めのサンプル調製を含む。サンプル調製物由来の上清を、ＫＨ２ＰＯ４緩衝液中でメタノールが増加する勾配を有するＣ−１８逆相カラムで分析した。
（インビトロ血小板の機能）
血小板混合物を７日間、除去装置と接触させて攪拌した。１つの研究では、血小板混合物を２４時間、ＩＡＤと接触させ、そして滅菌した管ウェルダー（ｔｕｂｉｎｇ ｗｅｌｄｅｒ）（Ｔｅｒｕｍｏ ＳＣＤ ３１２）を使用して滅菌した１ Ｌ ＰＬ２４１０プラスチック容器に移した。血小板を血小板インキュベーター中の後方に置き、７日余りの保存期間保存した。
５日または７日の保存に続いて、血小板の数およびｐＨをそれぞれの血小板ユニットについて決定した。ｐＨおよびｐＯ２／ｐＣＯ２をＣＩＢＡ−Ｃｏｒｎｉｎｇ ｍｏｄｅｌ ２３８ Ｂｌｏｏｄ Ｇａｓ Ａｎａｌｙｚｅｒを使用して測定した。それぞれのサンプルの血小板の数をＢａｋｅｒ ９１１８とＨｅｍａｔｏｌｏｇｙ分析装置を使用して決定した。
いくつかのアッセイをインビトロ血小板の機能を評価するために実行した。血小板サンプルの形状の変化をＣｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ ｍｏｄｅｌ ５００ ＶＳ全血血小板凝集計を使用してモニターした。形状の変化は、ＥＤＴＡの添加後の光透過の変化に対するＡＤＰの添加後の光透過の最大変化の比として定量化した。
血小板の低浸透圧力に対する応答をＨｙｐｏｔｏｎｉｃ Ｓｈｏｃｋ Ｒｅｓｐｏｎｓｅ（ＨＳＲ）アッセイで評価した。低浸透液の添加後の光透過の変化をＣｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ ｍｏｄｅｌ ５００ ＶＳ全血血小板凝集計を使用して測定した。データを、その最小値に達した吸収の２分後の低浸透圧からの回復率として報告した。
血小板がＡＤＰ／コラーゲンアゴニストに応答して凝集する能力は、Ｃｈｒｏｎｏ−Ｌｏｇ ｍｏｄｅｌ ５００ ＶＳ全血液血小板凝集計で測定されたように光学的透過における変化によって示された。
血小板の状態は、血小板のスコアリング（ｓｃｏｒｉｎｇ）によって評価した。サンプルを盲検に供し（ｂｌｉｎｄｅｄ）、そして１００個の血小板のモルフォロジースコア（ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｓｃｏｒｅｓ）をそれぞれのサンプルについて合計した。可能である最高スコアは４００である（円板体＝４、中間体＝３、球体＝２、樹状物体＝１、バルーン（ｂａｌｌｏｎ）体＝０）。
ｐ−セレクチン（Ｇｒａｎｕｌａｒ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ，ＧＭＰ−１４０）の発現によって示されるように血小板の活性化を測定した。ＣＤ６２抗体をテストサンプルとして使用し、マウスコントロールＩｇＧ１をネガティブコントロールとして使用し、そして酢酸ミリスチン酸ホルボール（ＰＭＡ）（ｐｈｏｒｂａｌ ｍｙｒｉｓｔａｔｅ ａｃｅｔａｔｅ）を有するＣＤ６２抗体をポジティブコントロールとして使用した。サンプルを、ＦＡＣＳｃａｎ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）で分析した。報告された活性化率はポジティブコントロールに関係し、これはテスト値とネガティブコントロール値との間の差異である。
（吸着速度論）
吸着剤ビーズを繊維マトリックスに組み込んでいる影響を調査した。３５％の血漿３００ｍＬ中に４．０×１０１１個の血小板を含む血小板ユニット（６５％ ＰＡＳ ＩＩＩ）を１５０μＭの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンと３．０Ｊ／ｃｍ２のＵＶＡで処理した。ＩＡＤをＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３から４５０ｇ／ｍ２の吸着剤ローディングで調製した。ＩＡＤをガンマ線照射によって滅菌した。ソラレンとＵＶＡでの処理に続いて、血小板を除去装置に移した。サンプルを１時間間隔で取り出し、そしてＨＰＬＣで残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンについて分析した。図２２は、５．０ｇおよび７．５ｇのＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体を含むＩＡＤに関する４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの除去に関する速度論を、２．５ｇのルーズなビーズを含む標準除去装置の速度論と比較している。ＩＡＤは、５．０ｇのＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３（三角印）、７．５ｇのＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体（四角印）、または２．５ｇのルーズなＤｏｗｅｘ Ｌ４９３吸着剤ビーズ（円印）のいずれかを含んだ。Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体は、４５０ｇ／ｍ２のローディングで吸着剤ビーズを含んだ。
等量のルーズな吸着剤ビーズと比較したとき、４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの吸着速度論は、Ｈｏｅｃｈｓｔ媒体に対してより遅かった。２．５ｇのルーズなビーズを含む除去装置は、短時間（１時間）で残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの最低レベルを達成した。しかし、より長い時間では、７．５ｇおよび５．０ｇのＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体を含むＩＡＤのほうが、より良く機能した。本研究において吸着速度論は、４時間の接触のもとで０．５μＭ未満の残留４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンの目標を達成する３つの除去装置の全てに対して比較的速かった。
長時間（６〜８時間）では、より大量の吸着剤を含むＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤは、残留した４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンのより低いレベルを達成することに注目されたい。この観察は、 Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤのより遅い吸着速度論は大量の輸送の制限の結果であり（液体流動に対する拡散）、そして繊維付着に起因する機能的な吸着領域の損失の結果ではないということを示唆している。さらなる研究は、より低いレベルの吸着剤ローディング（２００〜３００ｇ／ｍ２）を有するＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体が流体をより容易に媒体に浸透させ、その結果より速い吸着速度論をもたらすことを示している。１６０ｇ／ｍ２のローディングでＡｍｂｅｒｌｉｔｅ ＸＡＤ−１６吸着剤を含むＨｏｅｃｈｓｔ媒体についての先行の研究（データ示さず）は、吸着速度論は低いレベルのローディングでの繊維基質への組み込みによって影響されないことを示している。
（血小板収率およびインビトロでの血小板の機能）
２つの別々の研究に由来するデータをこの節に示す。それぞれの研究範囲内の血小板ユニットは単一のプールに由来し、そのためにＩＡＤ媒体形態、吸着剤量、および接触時間の影響が明らかに評価され得た。
第一の研究は、延長した接触（５日および７日）後の血小板の収率および機能における繊維状化（ｆｉｂｅｒｉｚａｔｉｏｎ）（Ｈｏｅｃｈｓｔ媒体）の影響を評価した。単一のプールに由来した４つの血小板ユニットの合計を本研究で使用した。ＩＡＤの無いコントロールユニットをソラレンとＵＶＡとで処理した。２つの血小板ユニットを５．０ｇのＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３に接触させた。一方のユニットを２４時間ＩＡＤと接触させ、次に空のＰＬ ２４１０保存容器に移した。他方のユニットは研究期間の間ＩＡＤと接触させておいた。 Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤをスチームで滅菌した（１２０℃、２０分）。Ｂａｘｔｅｒより入手した標準除去装置（２．５ｇのルーズなＤｏｗｅｘ ＸＵＳ−４３４９３）をガンマ線照射によって滅菌した。ルーズな吸着剤粒子を利用する装置で代表的に実行されるように、８〜１６時間の接触の後、血小板は標準除去装置から離れて移動しない。５日および７日の保存の後の血小板の数、ならびにインビトロでの機能に由来する結果を表１５Ａおよび表１５Ｂにそれぞれ要約する。
表１５Ａ．（５日目）
Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３繊維化媒体の標準除去装置との比較
５日間の保存後の血小板収率とインビトロ機能
Figure 2010031049
表１５Ｂ．（７日目）
Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３繊維化媒体の標準除去装置との比較
７日間の保存後の血小板収率とインビトロ機能
Figure 2010031049
Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤ（５．０ｇ）に関する血小板収率は、標準除去装置（２．５ｇ）に関する収率より実質的に良好であった。１０％未満の損失を、Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤ（５．０ｇ）と連続的に接触させて７日間保存して達成した。Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤで処理した両方の血小板ユニットは、形状変化、凝集、およびＧＭＰ−１４０アッセイの点でＩＡＤなしのコントロールよりもより良い性能を示した。完全に５日間Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤ（５．０ｇ）と接触させたままであった血小板は、２４時間の接触後に移動した血小板に相当するインビトロ機能を示した。興味深いことには、Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤと接触させたままであった血小板は、ＧＭＰ−１４０アッセイの点でより良く機能した。２つの間の性能における差異は、７日後にいっそう大きくなった。この観察は、ＩＡＤとの接触は保存の間の血小板によるｐ−セレクチン発現の速度を減少させることを示唆する。
第二の研究では、より高い媒体量についての血小板収率またはインビトロ機能における顕著な減少が存在するかどうかを決定するために５．０ｇおよび７．５ｇのＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体を含むＩＡＤを調べた。本研究では、Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤをガンマ線照射で滅菌した。標準除去装置（２．５ｇ Ｄｏｗｅｘ ＸＵＳ−４３４９３）が本研究に関与した。血小板は本研究の全期間中除去装置と接触させたままであった。５日および７日の保存の後の血小板の数、ならびにインビトロ機能に由来する結果を、表１６Ａおよび表１６Ｂにそれぞれ要約する。
表１６Ａ．（５日目）
ガンマ線滅菌したＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３繊維化媒体の評価
５日間の保存後の血小板収率とインビトロ機能（移動なし）
Figure 2010031049
表１６Ｂ．（７日目）
ガンマ線滅菌したＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３繊維化媒体の評価
７日間の保存後の血小板収率とインビトロ機能（移動なし）
Figure 2010031049
表１６Ａおよび１６Ｂに要約される結果は、第一の研究で観察された結果と類似している。Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤと接触した血小板は、標準除去装置と接触した血小板より、顕著に高い収率を有した。血小板収率は、５．０ｇＩＡＤに対する７．５ｇのＨｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤとしてわずかに低かった。 Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤｓで処理した血小板は、全てのインビトロアッセイにおけるコントロール血小板に対して相当に機能した。Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤと接触した血小板は、７日目のＩＡＤのないコントロールに関して凝集アッセイにおける改善された性能を示した。ＧＭＰ−１４０アッセイは７日目に実行しなかった。
５日間血小板に接触させて保存した標準除去装置（２．５ｇのルーズなＸＵＳ−４３４９３）と比較した場合、Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３媒体（５．０ｇ，７．０ｇ）で調製したＩＡＤは、優れたインビトロ機能をもたらした。さらに、１５０μＭの４’−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５’，８−トリメチルソラレンと３．０Ｊ／ｃｍ２のＵＶＡとで処理した血小板は、Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３ ＩＡＤｓ（５．０ｇ）と５日および７日間接触させたとき、形状変化、凝集、およびＧＭＰ−１４０アッセイによって示されたように、改善されたインビトロ機能を示した。血小板（ソラレンなし／ＵＶＡ）についての５〜７日の保存をＩＡＤ（５０ｇ Ｈｏｅｃｈｓｔ−Ｌ４９３）存在下およびＩＡＤ非存在下で比較したさらなる研究は、インビトロ機能アッセイで示したように、ＩＡＤを伴う保存は血小板の性能を改良し得ることを示した。

Claims (1)

  1. 本明細書中に記載される発明。
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