JP2009542194A - 腸球菌に対する殺活性を有するヒトの結合分子及びその使用方法 - Google Patents
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Abstract
Description
ここに使用される「アミノ酸配列」という用語は、自然発生又は人工の分子であって、ペプチド、オリゴペプチド、ポリペプチド又はタンパク質配列を示すものである。
ここに使用される「結合分子」という用語は、キメラモノクローナル抗体、ヒト用のモノクローナル抗体、ヒトのモノクローナル抗体などのモノクローナル抗体を含むインタクトな免疫グロブリン、或いは、抗原結合、及び/又は、腸球菌などの免疫グロブリンの結合相手に特異的に結合するインタクトな免疫グロブリンと競合する、免疫グロブリンの断片を具える可変ドメインを示すものである。構造に関係無く、抗原結合断片は、インタクトな免疫グロブリンにより認識される抗原と同一の抗原に結合する。かかる抗原結合断片は、結合分子のアミノ酸配列のうち、少なくとも2つのコンティグアミノ酸残基、少なくとも5個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも10個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも15個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも20個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも25個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも30個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも35個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも40個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも50個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも60個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも70個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも80個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも90個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも100個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも125個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも150個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも175個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも200個のコンティグアミノ酸残基、少なくとも250個のコンティグアミノ酸残基のアミノ酸配列を含むペプチド又はポリペプチドを具えるものとすることもできる。
ここでいう「生物試料」という用語は、生物由来の血液又はその他の液体試料、生検標本或いは培養細胞、又は、それ由来の細胞及びその子孫細胞などの固形組織試料を含む多様な試料の種類を含むものを言うものである。かかる用語は、試薬処理、可溶化、タンパク質又はポリヌクレオチド等の物質を濃縮するといった操作を、その調達後に実施した試料を更に含むものである。また、かかる用語は、任意の種由来の多様な臨床試料並びに培養細胞、細胞の上澄み及び細胞溶解物を包含するものである。
ここでいう「相補性決定領域」という用語は、一般に、抗原上にて認識されるエピトープに対し、形状及び電荷分布に関し相補能を有する抗原結合部位に大きく関係する免疫グロブリンなどの、結合分子の可変領域の配列を言うものである。また、CDR領域は、未変性構造のタンパク質、又は、SDSへの可溶化などにより変性したタンパク質に存在する、線形エピトープ、不連続エピトープ又は立体構造エピトープ、或いは、タンパク質断片に対し特異的なタンパク質とすることもできる。
ここでいう「欠損」という用語は、1つ以上のアミノ酸又は核酸残基が、多くの場合、自然発生する分子である、それらの元となる配列から、夫々欠失するようなアミノ酸又は拡散配列の変化を言うものである。
ここでいう「発現調節核酸配列」の用語は、特に宿主生物の操作可能な連結コード配列に影響を与えるに必要なポリヌクレオチド配列を言うものである。また、特に適当な配列である、転写開始、終止、プロモーター、エンハンサー配列、リプレッサー又はアクチベーター配列、スプライシング及びポリアデニルカシグナルなどの効率的なRNAプロセッシングシグナル、細胞質のmRNAを安定化させる配列、(リボソーム結合部位などの)翻訳効率を向上させる配列、タンパク質の安定性を向上させる配列、所望するときにタンパク質の分泌を促進する配列などの発現調節核酸配列は、選択した宿主生物において活性のある任意の核酸配列であって、宿主生物に相同的又は非相同的なタンパク質をコードする遺伝子由来の核酸配列とすることができる。発現調節核酸配列の同定及び使用は当業者には一般的なことである。
ここでいう「機能的変異体」の用語は、元となる核酸及び/又はアミノ酸配列に対し、1つ以上の核酸及び/又はアミノ酸配列が変化した核酸及び/又はアミノ酸配列を具える結合分子であって、腸球菌などの結合相手への結合に対し、元となる結合分子と競合し得る結合分子に関するものである。換言すると、元となる結合分子のアミノ酸及び/又は核酸配列の改変は、核酸配列にコードされた又はアミノ酸配列を含む結合分子の結合特性に大きく影響しない又は変化せず、例えば、結合分子は、依然としてターゲットを認識し、結合するものである。また、機能的変異体は、核酸及びアミノ酸の置換、追加及び欠損を含む、保存的配列における改変を含むものである。これらの改変は、部位特異的突然変異導入及びランダムPCR媒介突然変異導入などの、従来技術の標準的な技術により導入することができ、それらは、自然の又は人工の核酸及びアミノ酸とすることができる。
ここでいう「宿主」という用語は、クローニングベクター又は発現ベクターなどのベクターが導入された生物又は細胞を言うものである。生物又は細胞は、原核生物とも真核生物ともし得るものである。かかる用語は、特定の対象生物又は細胞に限定されるものではなく、それら生物又は細胞の子孫をも含めるものであることには留意されたい。突然変異又は環境の影響により、後の世代(子孫)において特定の修飾が発生することから、かかる子孫は、実際に、元となる親生物又は細胞とは同一のものではなくなるが、ここでいう「宿主」という用語に含まれるものである。
ここでいう「ヒト」という用語を、ここに定義される結合分子に適用する場合には、ヒトから直接由来する又はヒトの配列に基づいた分子をいうものである。結合分子がヒトに由来する又はその配列に基づくものであって、次いで、それを改変したものである場合であっても、明細書中で使用されるヒトとして取り扱うこととする。言い換えると、ヒトという用語は、それを結合分子に適用して使用した場合は、ヒトの生殖細胞系の免疫グロブリン配列由来の可変領域及び定常領域を有する結合分子、或いは、ヒトにおける、又は、ヒトのリンパ細胞及びその改変された形態における可変領域及び定常領域に基づく結合分子を含むものをいうものである。したがって、ヒトの結合分子は、(例えば、in vitroでの突然変異又はin vivoでの体細胞突然変異として、ランダム突然変異や部位特異的な突然変異などにより導入された)置換及び/又は欠損を含む、ヒトの生殖細胞系免疫グロブリン配列にコードされていないアミノ酸残基を含むものである。ここでいう「基づく」とは、鋳型を完全にコピーした核酸配列、又は、変異性(error prone)PCR法などによる小規模な突然変異がある核酸配列、或いは、鋳型と一致するよう、又は小規模な変異のあるよう合成して作製された核酸配列となっている状態をいうものである。ヒトの配列に基づいた半合成分子は、ここでいうヒトのこというものである。
ここでいう、「追加(addition)」としても既知である、「挿入(insertion)」という用語は、元となる配列に比べ、1つ以上のアミノ酸又は核酸を夫々追加することによるアミノ酸又は核酸配列の変化をいうものである。
ここでいう「固有活性」という用語は、ここに定義される結合分子に使用する場合には、細菌等の病原菌の表面上にある特定のタンパク質又は炭水化物抗原に結合することにより、病原菌が普通に成育し、分裂することを阻害するような結合分子をいうものである。かかる結合分子は、例えば、生育に必要な特定の栄養素の進入や、細菌からの毒性残渣要素の移動を抑制することができる。後者の活性に付随して、抗生物質の働きに対する細菌の感受性を高めることもできる。
ここでいう「分離(単離)された」という用語は、ここに定義される結合分子に使用する場合には、タンパク質又はポリペプチド、特には、異なる抗原特異性を有するその他の結合分子、及び、その他の細胞質成分及び/又は化学物質は、実質的に遊離している結合分子をいうものである。例えば、結合分子が組換えにより生成される場合には、実質的に培地を必要としないことが好ましく、そして、結合分子が化学合成により生成される場合には、実質的に化学物質の前駆体又はその他の化学物質を必要としない、すなわち、タンパク質合成に関与する化学物質の前駆体又はその他の化学物質から隔離されていることが好ましい。「分離された」という用語を、ここに定義される結合分子をコードする核酸分子に使用すると、結合分子をコードする核酸分子がその他の核酸配列から遊離している核酸分子であって、特には、腸球菌以外の結合相手に結合する結合分子をコードしている核酸配列をいうものである。更に、「分離している」とは、自然物の宿主内における天然の核酸分子を自然物に伴うその他の細胞質成分、例えば、自然物に関連するリボソーム、ポリメラーゼ又はゲノム配列から分離している核酸分子をいうものである。更にまた、cDNA分子などの「分離された」結合分子は、組換え技術により生成される場合には、実質的にその他の細胞質成分又は培地から遊離しており、また、化学合成される場合には、化学物質の前駆体又はその他の化学物質から遊離している。
ここでいう「モノクローナル抗体」という用語は、単一の分子構成を有する抗体を準備することを言うものである。モノクローナル抗体は、特定のエピトープに対し、単一の結合特異性及び親和性を示す。したがって、「ヒトのモノクローナル抗体」という用語は、ヒトの生殖細胞免疫グロブリン配列由来する又はそれに基づく配列、或いは、完全なる合成配列由来の、可変領域又は定常領域を有し、単一の結合特異性を示す抗体を言うものである。モノクローナル抗体の製造方法は関連しない。
ここでいう「自然発生的な」という用語は、それをその対象に適用した場合に、その対象が自然物であるものを言う。例えば、自然資源から単離可能であり、人の手により研究室内で修飾されていない、生体内にあるポリペプチド又はポリ核酸配列は自然発生的である。
この発明において使用される「核酸分子」という用語は、核酸のポリマー形態を言うものであり、センス鎖又はアンチセンス鎖の、RNA、cDNA、ゲノムDNA、及び、上記した合成形態及び複合ポリマーを含むものである。また、核酸は、リボ核酸、デオキシ核酸又はそれら核酸の修正された形態のものを含むものである。加えて、ポリヌクレオチドは、自然発生的及び/又は非自然発生的な核酸結合と結合した自然発生的な又は修飾された核酸を含み得るものである。核酸分子は、化学的又は生化学的に修飾することができ、非自然物又は派生物である核酸塩基を含めることは、当業者には容易であることには留意されたい。かかる修飾は、例えば、ラベル、メチル化、1つ以上の自然発生的な核酸及びそのアナログの置換、(例えば、メチルスルホネート、リン酸トリエステル、アミド亜リン酸エステル、カルバミン酸エステルなどの)非荷電結合、(例えば、ホスホロチオネート、ホスホロジチオネートなどの)荷電結合、(例えば、ポリペプチドなどの)懸垂部分、(例えば、アクリジン、ソラレンなどの)インターカレータ、キレート剤、アルキル化剤、及び、(例えば、α−アノマー核酸などの)修飾した結合などの核間修飾を含み得るものである。上述の用語は、一本鎖構造、二本鎖構造、部分的な二倍体構造、三倍体構造、ヘアピン化構造、環状構造又は南京錠構造を含む位相構造を含むものを言う。さらに含まれるものとしては、水素結合又はその他の化学的な相互作用を介して設計された配列に結合するポリ核酸を模倣した合成分子が挙げられる。かかる分子は、従来から知られており、例えば、分子の骨格としてリン酸連結に代替えしてペプチド連結を有する分子を含むものである。核酸配列は、特定されている限りは、その相補配列を包含するものである。このように、特定の配列を有する核酸配列は、その相補配列を有する相補鎖を包含するものであることには留意されたい。かかる相補鎖は、例えば、アンチセンス治療、ハイブリダイゼーション用のプローブ、PCRプライマーとして有用である。
ここでいう「操作可能に連結した」とは、一般に物理的に結合し、互いに機能的な相互関係を有する2つ以上の核酸配列要素をいうものである。例えば、かかるプロモーターにより、コード配列の転写又は発現を開始又は調節することができ、コード配列がプロモーターの「制御下にある」と理解されているならば、プロモーターは、コード配列に操作可能に連結されているという。
「食作用」は、(一般に、抗体などの結合分子、又は、血清相補因子といった)オプソニンの、(抗原を使用する場合の)特異的な抗原認識又は(例えば、表面結合抗体によるC3bの沈殿量の増大などの)表面結合分子の触媒効果により、病原菌の表面に結合する活性に関するものである。オプソニン化した病原菌のファゴサイトーシス(食作用)は、食細胞のレセプターへのオプソニンに対する特異的な認識により促進される(抗体の場合には、Fcレセプターそのものがオプソニンであり、相補する場合には、オプソニンが相補物となる)。特定の細菌、特には、被嚢により食作用に対する耐性を有する被嚢性の細菌は、食作用抗体により被覆されている場合に、好中球やマクロファージなどの食細胞にとって大変に魅力的な対象となってきており、その血液及び感染器官におけるクリアランス率は顕著に大きくなった。食作用は、(食作用による食細胞殺アッセイなどの)従来技術の任意の方法により測定することができる。
「薬学的に許容し得る賦形剤」によるとは、適当かつ容易に服薬できる形態となった、薬、薬剤、又は、結合分子などの活性型分子と複合体となった任意の内部物質を意味するものである。かかる「薬学的に許容し得る賦形剤」は、服薬しても使用者にとって毒性がなく、適当な濃度にある賦形剤であり、薬、薬剤又は結合分子を具える製剤のその他の含有物と競合しない。
ここでいう「特異的な結合」という用語は、抗体などの結合分子及び抗原などの結合相手への相互作用に関するものを言うものであり、かかる相互作用は、結合相手における抗原決定基やエピトープなどの特定の構造に依存する。換言すると、抗体は、その他の分子又は組織の結合相手が混合物内に存在するとしても、結合相手に結合又は認識することが好ましい。かかる結合は、共有又は非共有相互作用或いはその双方の組み合わせにより媒介することができる。また、そのことを言い換えると、「特異的な結合」という用語は、抗原又はその断片への免疫特異的な結合をいうものであり、他の抗原への免疫特異的な結合をいうものではない。抗原に免疫特異的に結合する結合分子は、例えば、従来から知られている、放射線免疫検定法、(RIA)、酵素免疫測定法(ELISA)、BIACORE法又はその他のアッセイ法により測定された低い親和性にて、その他のペプチド又はポリペプチドに結合することができる。抗原に対し免疫特異的に結合する結合分子又はその断片は、関連する抗原に対し交差反応する。また、抗原に対し免疫特異的に結合する結合分子又はその断片は、他の抗原に対し交差反応しないことが好ましい。
ここでいう「置換」とは、1つ以上のアミノ酸又は核酸を、夫々に異なるアミノ酸又は核酸に置き換えることをいうものである。
ここでいう「治療効果のある分量」とは、腸球菌に起因した状態の予防、改善及び/又は処置に効果のある、上記に定義した結合分子の分量をいうものである。
ここでいう「処置」という用語は、治療上の処置、及び、疾患の治療、停止、又は少なくともその進行を遅延させるための、予防的又は防止的な手段のことをいうものである。「処置」が必要な者には、Enterococcusの感染により既に苦しめられている者及びEnterococcusによる感染を防止する者を含む。腸球菌の感染から、部分的に又は完全に回復した対象者も、かかる処置を必要とする場合がある。防止とは、Enterococcusの分散を阻害又は減衰すること、或いは、Enterococcusへの感染による1つ以上の症状を、発症、成長又は進展することを包含するものである。
ここでいう「ベクター」という用語は、第2の核酸分子を宿主に導入し、それを自己複製させ、場合によっては発現させることができる核酸分子を表すものである。言い換えると、ベクターとは、連結された核酸分子を運搬するものである。ここでは、クローニングベクター及び発現ベクターは、「ベクター」という用語で呼ぶこととする。限定するわけではないが、ベクターとは、プラスミド、コスミド、細菌人工染色体(BAC)及び酵母人工染色体(YAC)並びにバクテリオファージ、植物ウィルス、(ヒトを含む)動物ウィルス由来のベクターを含むものである。ベクターは、提案された宿主が認識する複製開始点を含むものであり、それが発現ベクターの場合には、宿主による認識されるプロモーターやその他の調節領域を含むものである。第二の核酸分子を含むベクターは、形質転換、トランスフェクション又はウィルスを利用した導入機構により細胞に導入される。(細菌内にて複製することができる、細菌由来の複製開始点を有するベクターなどの)特定のベクターは、それが導入される宿主内で自己複製することができる。その他のベクターは、宿主内への導入時に、宿主のゲノム内に組み込むことができ、宿主のゲノムとともに複製される。
boydii、Shigella flexneri、Shigella sonnei、Pseudomonas aeruginosa、Pseudomonas mallei、Vibrio cholerae、Vibrio parahaemolyticus、Vibrio vulnificus、Vibrio alginolyticus、Campylobacter pylori、Helicobacter pylori、Campylobacter jejuni、Bacteroides fragilis、Neisseria gonorrhoeae、Neisseria meningitidis、Branhamella catarrhalis、Haemophilus influenzae、Haemophilus ducreyi、Bordetella pertussis、Brucella abortus、Brucella abortus、Brucella melitensis、Legionella pneumophila、Treponema pallidum、Treponema carateum、Leptospira interrogans、Leptospira biflexa、Borrelia recurrentis、Borrelia burgdorferi、Mycoplasma pneumoniae、Coxiella burnetii、Clamydia trachomatis、Clamydia psittaci、Clamydia pneumoniaeの少なくとも1つのその他のグラム陽性細菌及び/又はグラム陰性細菌に、特異的に結合する及び/又は殺活性を有し得る。この発明の結合分子は、腸球菌、並びに、任意選択的に、生育可能な、生きている及び/又は感染可能な、或いは、不活性化/減衰した形態の、その他のグラム陽性細菌及び/又はグラム陰性細菌と、特異的に結合し得る。細菌を非活性化/減衰する方法は、従来から周知であり、かかる方法は、以下に限定されるものではないが、UV処理、ホルムアルデヒド処理などを含む。
(食作用活性によりスクリーニングされた提供者から抽出したRNAを使用した、scFvファージディスプレイライブラリーの構築)
25〜55歳の間の、グラム陽性細菌による感染が報告された提供者及び健康な成人から血液サンプルを採取した。末梢血白血球は遠心分離によって分離され、血清は80℃にて保存及び凍結した。提供者の血清を、FACSに基づくファゴサイトーシスアッセイ法(非特許文献7)を用いて、食作用活性によりスクリーニングし、それを通常の健康な提供者の血清の一団と比較した。ファージディスプレイライブラリーの作製に使用するため、通常の結成と比較して、高い食作用活性を示す提供者からの血清を選択した。全RNAは、有機相分離及び次いでのエタノール沈殿により提供者の末梢血白血球から準備された。得られたRNAを、RNaseフリーの水に溶解し、その濃度をOD260nm測定により判定した。その後、RNAは100ng/μlの濃度となるよう希釈された。次いで、1μlのRNAが、以下の方法によりcDNAに変換された。10μlの全RNA、13μlのDEPC処理された超純水及び1μlのランダムヘキサマー(500ng/μl)を混合し、得られた混合液を65℃にて5分加熱し、氷上にて急冷した。それから、8μlの5Xファーストストランドバッファ、2μlのdNTP(それぞれ10mM)、2μlのDTT(0.1M)、2μlのRNase阻害剤(40U/μl)及び2μlのSuperscript(登録商標)III MMLV逆転写酵素(200U/μl)を混合液に添加し、室温にて5分間インキュベートし、50℃にて1時間インキュベートした。反応は、熱失活させる、すなわち、混合液を75℃にて15分インキュベートすることにより止められた。得られたcDNA産物は、DEPC処理された超純水に最終量が200μlとなるよう希釈された。得られたcDNA産物を50回希釈した(10mMのTrisバッファー)水溶液は、cDNAの濃度を判定するために使用された。各提供者に対し、5〜10μlの希釈されたcDNA産物が、特異的なオリゴヌクレオチドプライマーを使用した免疫グロブリンのガンマ重鎖ファミリー及びカッパ又はラムダ軽鎖配列のPCR増幅のテンプレートして使用された(表1〜7参照)。また、一人の提供者の免疫グロブリンのミュー重鎖ファミリー及びカッパ又はラムダ軽鎖配列のPCR増幅を実施した。PCR反応混合液は、希釈されたcDNA産物以外に、20mMのトリス塩酸(pH8.4)、50mMのKCl、1.5mMのMgCl2、250mMのdNTPs及び1.25ユニットのTaqポリメラーゼの終量50μlの液中に、25pmolのセンスプライマー及び25pmolのアンチセンスプライマーを有する。蓋が96℃に加熱されたサーマルサイクラーにおいて、得られた混合液を2分間急速に溶解し、次いで、96℃で30秒、55℃又は60℃で30秒及び72℃で60秒、を30サイクル繰り返す。最後に、試料を72℃にて10分間インキュベートし、使用するまで4℃に冷蔵する。
(記憶B細胞から抽出したRNAを使用した、scFvファージディスプレイライブラリーの構築)
末梢血は、一般の健康な提供者、回復期にある提供者、又は、EDTA抗凝血試料管を使用して静脈パンクション(venapunction)によりワクチンを摂取した提供者から集められた。血液試料(45ml)は、PBSにて2倍に希釈され、その30ml分量が10mlのFicoll-Hypaque(ファルマシア社)に入れられ、室温にて、20分、900xgで遠心分離される。上澄みは、リンパ球及び血小板フラクションを含む白層のちょうど上部まで慎重に取り除かれる。次いで、この層(〜10ml)は慎重に取り除かれ、新しい50mlのチューブに移され、40mlのPBSにより3回洗浄され、室温で400xgにて10分遠心して、血小板を取り除く。得られたリンパ球を含むペレットは、2%のFBSを含んでいるRPM1培地に再度懸濁され、細胞数は細胞を数えることにより測定された。凡そ1×108のリンパ球が、切り替えられた及びIgGの記憶B細胞を分離するマーカーとして、CD24、CD27及び表層IgMを使用して蛍光細胞ソーティングにより染色された。Yield ModeでセットされたBecton Dickinson社のDigital Vantage機器は、物理記憶B細胞のソーティング及び分離に使用された。リンパ球は、FSC/SSCウインドウからの小さな小型集団でゲート制御されている。次いで、記憶B細胞(CD24+/CD27+)は、単純なB細胞(CD24+/CD27-)及び記憶T細胞(CD24-/CD27+)から分離された。次のステップでは、IgG記憶B細胞(IgG+)は、IgM発現を使用してスイッチ記憶B細胞(IgM-)から分離される。このステップでは、IgM記憶B細胞及びスイッチ記憶B細胞は、分離試料管にて選別される。夫々の集団の1×105〜1×106個の細胞は、DMEM/50%FBSに集められ、選別が完了した後には、夫々を400xgにて10分間遠心する。ソートされたIgG記憶B細胞は、実施例1にて採用した方法に従い、重鎖免疫グロブリン配列の第1回の増幅にHuClgMプライマーを使用して、ライブラリー構築のための開始材料として使用される。得られた多様なライブラリーは、MEM-05-M01、MEM-05-M02、MEM-05-M03、MEM-05-M04、MEM-05-M05、MEM-05-M06、MEM-05-M07、MEM-05-M08、MEM-05-M09及びMEM-05-M10と命名した。
(腸球菌に特異的に結合する単鎖Fv断片を有するファージの選抜)
抗体断片は、特許文献5及び9に本質的に記載されている(ともにこの発明に援用する)、抗原ファージディスプレイライブラリー、一般的なファージディスプレイ技術及びMabstract(登録商標)技術を使用して選抜される。使用される抗体ファージライブラリーは、実施例1で説明した方法で作製されたスクリーニングされた提供者のライブラリー、実施例2で説明した方法で作製されたIgG記憶ライブラリーである。(この発明に援用する)特許文献10に記載の方法及びヘルパーファージが、この発明で使用された。懸濁液中の生きた細菌又は免疫チューブ内に固定された細菌を使用して、ファージ選抜実験を行なうことにより、腸球菌を認識するファージ抗体を同定した。使用された全ての菌株は、表8に記載されている。全てのファージ抗体は、少なくとも1つのステップにおいて、懸濁液中にあるE.faecalis12030株を使用して選抜されたものから分離される。SC05-159及びSC05-166と呼ばれるファージ抗体は、固定されたE.faecalis12030株を使用して選抜されたものから新たに分離されたが、後者の抗体は、懸濁液中にあるE.faecalis12030株からも分離された。
OD600nmが0.3となるまで37℃で培養される。培地を、アンピシリン、テトラサイクリン及びカナマイシンを含む2TY培地に移した後に、CTヘルパーファージが添加され、細菌に感染させられる。その後、30℃にて一晩培養した。そして、次の日に、ポリエチレングリコール(PEG)6000/NaClを用いて培地中のファージを沈殿させた後に、細菌を2TY培地から遠心分離により取り除いた。最後に、ファージを、1%のウシ血清アルブミン(BSA)を有する2mlのPBSに溶解し、そして、ろ過滅菌し、次回の選抜に使用する。
(腸球菌特異的な単鎖ファージ抗体の検証)
上述したスクリーニングにより選抜された単鎖ファージ抗体は、特異的な腸球菌結合活性、すなわち、1つ以上の腸球菌株への結合をELISAにより検証した。2.5×108の細菌は、50μlの50mM炭酸バッファーpH9.6中で、Maxisorp(登録商標)ELISAプレートにて、4℃で一晩被覆される。ネガティブコントロールとして、複合抗体のPBS(pH7.4)中にある2%ELK及び1%BSAが被覆された。ウェルは0.1%(v/v)Tween20にて3回洗浄され、300μlの2%ELKを含むPBSにより室温にて少なくとも1時間ブロッキングされる。選抜された短鎖ファージ抗体は、等量の2%ELKを含むPBSとともに、15分間インキュベートされ、ブロッキングされたファージ抗体が得られる。プレートは空にされ、ブロッキングされた単鎖ファージ抗体がウェルに添加される。そして、室温にて1時間インキュベーションし、プレートは、0.01%(v/v)Tweenを含むPBSにより回洗浄され、抗M13抗体のペルオキシダーゼとの複合化を利用して結合したファージ抗体が検出される。分光光度計を用いて、492nmでの吸光度が測定された。コントロールとして、単鎖ファージ抗体無しに、ネガティブコントロールとして、西ナイルウィルスの封入体タンパク質に対する単鎖ファージ抗体(SC04-374)を用いて、かかる手順は同時に実施された。表9に示すように、SC05-140、SC05-157、SC05-159、SC05-166、SC05-179、SC05-187、SC06-016、SC06-043、SC06-049、SC06-050、SC06-071、SC06-077、SC06-078、SC06-079、SC06-086、SC06-087、SC06-089、SC06-092、SC06-191、SC06-195、SC06-198、SC06-241、SC06-242、SC06-246、SC06-252、SC06-388、SC06-389、SC06-396、SC06-402、SC06-409、SC06-415、SC06-421、SC06-429及びSC06-432と呼ばれる選抜されたファージ抗体は、Enterococcus faecalisの12030株に特異的に結合した。SC05-140及びSC06-421以外の選抜されたファージ抗体は、ネガティブコントロール抗原のFBS、ELK及びBSAに対し検出可能な結合を示さなかった。
(腸球菌特異的なscFvsの特性評価)
選抜された特異的な単鎖ファージ抗体(scFv)クローンから、プラスミドDNAが得られ、標準的な技術により核酸配列が特定された。(クローニングのための制限酵素部位を含む)ScFvの核酸配列であるSC05-140、SC05-157、SC05-159、SC05-166、SC05-179、SC05-187、SC06-016、SC06-043、SC06-049、SC05-050、SC06-071、SC06-077、SC06-078、SC06-079、SC06-086、SC06-087、SC06-089、SC06-092、SC06-191、SC06-195、SC06-198、SC06-241、SC06-242、SC06-246、SC06-252、SC06-388、SC06-389、SC06-396、SC06-402、SC06-409、SC06-415、SC06-421、SC06-429及びSC06-432は、配列ID番号:350、配列ID番号:352、配列ID番号:61、配列ID番号:63、配列ID番号:354、配列ID番号:65、配列ID番号:67、配列ID番号:69、配列ID番号:71、配列ID番号:356、配列ID番号:73、配列ID番号:358、配列ID番号:75、配列ID番号:360、配列ID番号:362、配列ID番号:206、配列ID番号:208、配列ID番号:364、配列ID番号:366、配列ID番号:368、配列ID番号:370、配列ID番号:77、配列ID番号:372、配列ID番号:374、配列ID番号:79、配列ID番号:376、配列ID番号:378、配列ID番号:380、配列ID番号:382、配列ID番号:384、配列ID番号:386、配列ID番号:388、配列ID番号:390及び配列ID番号:392に夫々示されている。ScFvのアミノ酸配列であるSC05-140、SC05-157、SC05-159、SC05-166、SC05-179、SC05-187、SC06-016、SC06-043、SC06-049、SC05-050、SC06-071、SC06-077、SC06-078、SC06-079、SC06-086、SC06-087、SC06-089、SC06-092、SC06-191、SC06-195、SC06-198、SC06-241、SC06-242、SC06-246、SC06-252、SC06-388、SC06-389、SC06-396、SC06-402、SC06-409、SC06-415、SC06-421、SC06-429及びSC06-432は、配列ID番号:351、配列ID番号:353、配列ID番号:62、配列ID番号:64、配列ID番号:355、配列ID番号:66、配列ID番号:68、配列ID番号:70、配列ID番号:72、配列ID番号:357、配列ID番号:74、配列ID番号:359、配列ID番号:76、配列ID番号:361、配列ID番号:363、配列ID番号:207、配列ID番号:209、配列ID番号:365、配列ID番号:367、配列ID番号:369、配列ID番号:371、配列ID番号:78、配列ID番号:373、配列ID番号:375、配列ID番号:80、配列ID番号:377、配列ID番号:379、配列ID番号:381、配列ID番号:383、配列ID番号:385、配列ID番号:387、配列ID番号:389、配列ID番号:391及び配列ID番号:393に夫々示されている。VH及びVL遺伝子の同一性(非特許文献16を参照せよ)、及び、腸球菌に特異的に結合するscFvのCDR配列を夫々表11及び12に示す。
(選抜された抗腸球菌単鎖Fvsを用いた完全なヒト免疫グロブリン分子(ヒトモノクローナル抗腸球菌抗体)のコンストラクト)
IgG発現ベクターpIg-C911-HCgamma1(配列ID番号:127)、pIg-C909-Ckappa(配列ID番号:128)及びpIg-C910-Clambda(配列ID番号:129)にて発現させるために、SC05-140、SC05-157、SC05-159、SC05-166、SC05-179、SC05-187、SC06-016、SC06-043、SC06-049、SC05-050、SC06-071、SC06-077、SC06-078、SC06-079、SC06-086、SC06-087、SC06-089、SC06-092、SC06-191、SC06-195、SC06-198、SC06-241、SC06-242、SC06-246、SC06-252、SC06-388、SC06-389、SC06-396、SC06-402、SC06-409、SC06-415、SC06-421、SC06-429及びSC06-432と呼ばれるscFvの重鎖及び軽鎖可変領域は、制限酵素処理され、直接クローニングされた。SC05-140、SC05-157、SC05-159、SC05-166、SC05-179、SC05-187、SC06-016、SC06-043、SC06-049、SC05-050、SC06-071、SC06-077、SC06-078、SC06-079、SC06-086、SC06-087、SC06-089、SC06-092、SC06-191、SC06-195、SC06-198、SC06-241、SC06-242、SC06-246、SC06-252、SC06-388、SC06-389、SC06-396、SC06-402、SC06-409、SC06-415、SC06-421、SC06-429及びSC06-432と呼ばれるscFvの重鎖可変領域は、酵素SfiI及びXhoIを用いた制限酵素処理により、ベクターpIg-C911-HCgamma1にクローニングされる。SC06-016、SC06-050、SC06-077、SC06-086、SC06-191、SC06-241、SC06-396及びSC06-429と呼ばれるscFvの軽鎖可変領域は、酵素SalI、XhoI及びNotIを用いた制限酵素処理により、ベクターpIg-C909-Ckappaにクローニングされる。SC05-140、SC05-157、SC05-159、SC05-166、SC05-179、SC05-187、SC06-043、SC06-049、SC06-071、SC06-078、SC06-079、SC06-087、SC06-089、SC06-092、SC06-195、SC06-198、SC06-242、SC06-246、SC06-252、SC06-388、SC06-389、SC06-402、SC06-409、SC06-415、SC06-421及びSC06-432と呼ばれるscFvの軽鎖可変領域は、酵素SalI、XhoI及びNotIを用いた制限酵素処理により、ベクターpIg-C910-Clambdaにクローニングされる。その後、ヌクレオチド配列は従来から当業者にとって公知の標準的な技術に従って検証された。
(食作用食細胞殺活性アッセイにより測定されたin vitroでの腸球菌特異的な食作用食細胞活性)
一連の抗体の機能的な活性をより好適に判定するために、食作用食細胞アッセイが実施され、腸球菌の12030株に対する抗腸球菌ヒトIgG1の殺活性を定量した。採血したてのヒトの血液(10〜30ml)がそれと等量のデキストランヘパリンバッファー(4.5gのデキストラン、Sigma Chemical、セントルイス; 500mlの蒸留水に溶解した28.4mgのヘパリンナトリウム)に混合され、かかる混合液が37℃にて1時間インキュベートされる。白血球を含む上層は遠心分離によって集められ、残留する赤血球の低張溶解は、細胞ペレットの1%(w/v)NH4CIによる懸濁により達成された。その後、白血球の集団は、15%(v/v)胎児牛血清を有するRPMIにより洗浄された。トリパンブルー染色及び血球計により計測により、生きている白血球の濃度を決定し、白血球濃度を最終的に2x107細胞/mlに調整した。ファゴサイトーシスアッセイは、(分光測定法により濃度を2x107/mlに調整し、生菌計測により確かめられた)100μlの細菌、RPM1に希釈した100μlの抗腸球菌ヒトIgG1及び100μlの乳児ウサギ補体に、白血球懸濁液を添加したもの及び添加していないものについて、2回実施された。反応混合液は、37℃のローターラックにて90分間インキュベートされ、試料は0分及び90分後に採られ、1%のプロテオースペプトン(Difco Laboratories, Detroit, Mich.)に希釈され、トリプシン性大豆アガープレート上にプレーティングされる。抗体の殺活性(%)は、白血球を含む試料内のCFU生存数の平均値から白血球を含まない試料内のCFU生存数の平均値を差し引き、それを後者で除算し、100を乗算することにより測定される。抗ブドウ球菌ヒトIgG1の殺活性は、(2500、250、25及び2.5ng/mlにて)2回の独立した実験により試験された。アッセイにおいて、細菌の50%について殺活性を示すために必要な濃度を算出するために、プロビットモデルを適用した序数回帰分析が使用された(表14参照)。
(マウスの敗血症モデルにおける腸球菌特異的なIgGのin vivoにおける活性)
腸球菌のマウスの敗血症モデル(非特許文献8参照)は、血流から腸球菌臨床分離株12030を一掃するための抗腸球菌ヒトIgG1活性を定量するために使用された。精製されたIgG分子のCR5159、CR5187、CR6016、CR6043、CR6049、CR6071、CR6089及びCR6241は、Enterococcusに対しするin vitroでの殺活性を有することを示し、上述したように、Enterococcusに対する殺活性を有するネガティブコントロールのIgG1が準備され、7.5 mg/kgの投与量で注射されたCR6016及びCR6241以外は、投与量15mg/kgにて(PBSに含まれている液を0.5〜1.0ml)を、8匹のBALB/cマウスのグループに腹腔内注射した。また、1つのグループのマウスにはPBSを注射した。24時間後、動物はEnterococcusの12030株を初速6x108CFUにて接種された。4時間後に、細菌にチャレンジしたマウスは、CR5159、CR5187、CR6016、CR6043、CR6049、CR6071、CR6089及びCR6241について同一の投与量にて、2回目の腹腔内注射を実施される。3日後に全身感染動物は安楽死させられ、〜0.5mlの血液が心臓穿刺により集められる。血液試料は、100lの血液を900lのTHBに希釈してから2回プレート上にまき、腸球菌選抜アガー培地上にて定量的に培養された。一晩培養した後、プレートのCFU数が読み込まれ、それに10を乗算することで血液のCFU/mlが得られる。かかる値は、屠殺時に循環している細菌量に直接関係している。
(IgG1競合アッセイ)
一連の抗体が、同一のターゲットへの結合に競合しているか否かを確認するために、競合ELISAを実施した。腸球菌の12030株は血液アガープレート上にストリークされ、37℃にて一晩インキュベートした。5mlの50mM炭酸塩バッファー(8容量の0.2M Na2CO3、17容量の0.2M NaHCO3及び75容量の蒸留水)を使用して、プレートからコロニーがかきとられ、4000rpmにて3分間遠心分離された。得られたペレットは、500μlの炭酸塩バッファーに再懸濁され、再度遠心分離され、ペレットは500μlの炭酸塩バッファーに再懸濁された。細胞濃度はOD600にて細菌の希釈系列シリーズを測定することにより判定された。
(食作用食細胞殺活性アッセイにより測定された、腸球菌特異的IgGsの、異なる培養条件にて生育されたE. faecalis、E. faecium及びS. aureusに対するin vitroでの食作用食細胞活性)
一連の抗腸球菌モノクローナル抗体の殺活性の程度を判定するために、上述したように精製されるIgG1のバッチは、上述の食作用食細胞殺活性に関する殺活性がアッセイされる。Type2のE. faecalis株、740220及び838970の2つの異なるE. faecium臨床分離株、並びに、S. aureusの臨床分離株502が追加で試験された。元の34の一連の抗体から、食作用食細胞殺アッセイにおける非競合的な結合能及び効力に基づき、8種の抗体が選択される。表15に示すように、選択された一連の抗体は、2.5及び0.025μl/mlの2種の濃度でE. faeciumに対する殺活性を示したが、CR5140、CR6016及びCR6078は、最も高い濃度であっても838970株に対し20%以下の殺活性を示した。1つ以外の全ての抗体は、E. faecalis株Type2に対し測定可能な活性を有するが、18種の抗体のうち、11種の抗体は、試験された最も高い濃度においても25%未満の殺活性を有していた。驚くべきことに、一連の全ての抗体は、S.aureusの502株に対し殺活性を有していることから、それら抗体が広範な交差反応ターゲットを認識することを示している。我々は、いずれかの抗体が、S.aureusのリポタイコ酸(LTA)に結合するかどうかを試験したが、いずれの抗体も結合しなかった。3つの抗体(CR6252、CR6415およびCR6421)は、その他のStaphylococcus aureus(Newman)株及びStaphylococcus epidermidis(RP62A)株に対する食作用食細胞殺活性について試験され、これら試験された3つの抗体は、これら異なるStaphylococcus種及び菌株に対して殺活性を示した。
Claims (11)
- ヒトのモノクローナル抗体であって、少なくとも2つの異なるEnterocooccus種及び少なくとも1つのStaphylococcus aureus株に対し食作用食細胞殺活性を有することをヒトのモノクローナル抗体。
- 請求項1に記載の抗体であって、該抗体は、ここに開示されている、可変領域を含む、CR5140、CR5157、CR6016、CR6043、CR6050、CR6078、CR6087、CR6089、CR6241、CR6252、CR6388、CR6389、CR6396、CR6402、CR6409、CR6415、CR6421又はCR6429抗体、及びそれらに対し80%の相同性を有する抗体の群より選択してなる、ヒトのモノクローナル抗体。
- 請求項1又は2に記載の抗体であって、前記Enterococcus種は、E.faecalis及びE.faeciumからなることを特徴とするヒトのモノクローナル抗体。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のヒトのモノクローナル抗体を具える免疫複合体であって、該免疫複合体は少なくとも1つのタグを更に具えることを特徴とする免疫複合体。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のヒトのモノクローナル抗体をコードすることを特徴とする核酸分子。
- 請求項5に記載の少なくとも1つの核酸分子を具えることを特徴とするベクター。
- 請求項6に記載の少なくとも1つのベクターを具えることを特徴とする宿主細胞
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のヒトのモノクローナル抗体を生成する方法であって、該方法は、
a)請求項7に記載の宿主細胞を、ヒトのモノクローナル抗体の発現し得る条件下にて培養するステップと、任意選択的に、
b)発現されたヒトのモノクローナル抗体又はその機能的変異体を回収するステップとを含むことを特徴とする方法。 - 請求項1〜3のいずれか一項に記載のヒトのモノクローナル抗体、又は、請求項4に記載の免疫複合体を具える医薬品組成物であって、該医薬品組成物は、少なくとも1つの薬学的に許容し得る賦形剤を更に具えることを特徴とする医薬品組成物。
- 請求項9に記載の医薬品組成物であって、少なくとも1種のその他の治療剤を更に具える医薬品組成物。
- 請求項1〜3のいずれか一項に記載のヒトのモノクローナル抗体、請求項4に記載の免疫複合体、或いは、請求項9又は10に記載の医薬品組成物を、腸球菌の感染に対する、診断、予防、処置又はそれらの組み合わせに使用することを特徴とする方法。
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