JP2008521401A - ＢＣＲ−ＡＢＬ融合遺伝子のＲＮＡｉ調節およびその使用方法 - Google Patents

Abstract

本発明は、Ｂｃｒ−Ａｂｌの発現を調節する組成物および方法に関し、より詳細には、ＲＮＡ干渉を介した、オリゴヌクレオチド、例えば化学的に修飾されたオリゴヌクレオチドによる、Ｂｃｒ−Ａｂｌ ｍＲＮＡおよびＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質のレベルの下方制御に関する。

Description

本発明は、Ｂｃｒ−Ａｂｌの発現を調節する組成物および方法に関し、より詳細には、ＲＮＡ干渉を介した、オリゴヌクレオチド、例えば化学的に修飾されたオリゴヌクレオチドによる、Ｂｃｒ−Ａｂｌ ｍＲＮＡおよびＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質のレベルの下方制御に関する。

（関連出願の相互参照）
この出願は、２００４年１１月２４日出願の米国特許仮出願第６０／６３０８７８号および２００４年１２月１日出願の米国特許仮出願第６０／６３２４０３号に基づく優先権を主張する。これらの仮出願の全内容を本願明細書に援用する。

ＲＮＡ干渉、もしくは「ＲＮＡｉ」は、２本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）が線虫の体内に導入された際に、それが遺伝子発現をブロックすることがあるという観察を説明するのに、ファイヤー（Ｆｉｒｅ）および共同研究者らによって最初に造られた用語である（非特許文献１）。短いｄｓＲＮＡは、脊椎動物を含めた多くの生物において遺伝子特異的な転写の後にサイレンシングを引き起こすものであり、遺伝子機能を研究するための新規なツールを提供している。

フィラデルフィア染色体（Ｐｈ）の発見は、特定のヒト癌を引き起こす最初の一貫した染色体異常を表した（非特許文献２）。Ｐｈ染色体は、９番染色体および２２番染色体の長腕間の相互転座によって生成される（非特許文献３）。これは、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）のほとんどすべての患者、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）に罹患した成人の約１０〜２０％（非特許文献４）、そして急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）に罹患した約２％の患者で起こっている。ｔ（９；２２）転座は、２２番染色体からのＢｃｒ遺伝子と、９番染色体からのＡｂｌ遺伝子とを融合させ、その結果、発癌性のＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子を生じる（非特許文献５）。２２番染色体におけるＢｃｒ遺伝子中の切断点の相違によって、様々なタンパク質、すなわちｐ１９０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}（Ｍｒ１９００００）、ｐ２１０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}（Ｍｒ２１００００）、およびｐ２３０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}（Ｍｒ２３００００）をコードする様々なＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子変種の形成が誘導される。ＣＭＬ患者の約９５％でＢｃｒ−Ａｂｌ融合転写産物であるｅ１４ａ２（以前はｂ３ａ２）およびｅ１３ａ２（以前はｂ２ａ２）を検出することができる。（非特許文献６に概説されている）。いずれの場合も、翻訳産物はｐ２１０ｋＤのＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質である。Ｐｈ＋ＡＬＬを患っている患者では、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅｌａ２と称される、さらに短い形態の転写産物が優勢である（非特許文献７に概説されている）。この変種の翻訳によって、いくらか小さいｐ１９０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}タンパク質が生じる。両方のＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質、すなわちｐ１９０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}タンパク質およびｐ２１０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}タンパク質は、正常なＡｂｌタンパク質と比較して、チロシンキナーゼ活性が劇的に増大しており、それによって、下流標的分子の異常なリン酸化がもたらされることを特徴としている。

Ｂｃｒ−Ａｂｌのキナーゼ活性は、特異的なチロシンキナーゼ阻害剤であるメシル酸イマチニブ（ＳＴＩ５７１、グリベック（Ｇｌｉｖｅｃ））により阻害され、この阻害剤は、Ｐｈ＋白血病の治療に有効である（非特許文献８に概説されている）。それにもかかわらず、ＡＬＬ患者及び進行したＣＭＬ患者のいずれも、初期応答後に主としてＢｃｒ−Ａｂｌキナーゼドメイン中の点変異またはＢｃｒ−Ａｂｌの過剰発現などの遺伝子異常によって引き起こされる薬物耐性を高い頻度で発生させている（非特許文献９に概説されている）。したがって、Ｂｃｒ−Ａｂｌを阻害する代替的な戦略を開発する重要性が増大している。

Ｂｃｒ−Ａｂｌ ｍＲＮＡの切断点は、独特で、かつ白血病に特異的なヌクレオチド配列を示している。発癌性タンパク質をコードするそのような融合転写産物は、疾病に特異的なＲＮＡｉアプローチの理想的な標的を表している。Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２転写産物変種、および他の発癌性融合タンパク質を特異的に分解するためにＲＮＡｉを使用することの可能性が最近になって実証されている（非特許文献１０乃至１６）。Ｂｃｒ−Ａｂｌ特異的なｓｉＲＮＡ処置による、メシル酸イマチニブに対するＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞の感受性を増大させる作用を、ウィルダらは観測しなかったが、他の研究者はそのような効果を観測したので、提示されている結果は決定的なものではない。したがって、ＲＮＡｉアプローチによって、ｅ１４ａ２転写産物変種以外の２つの重要なＢｃｒ−Ａｂｌ転写産物（ｅ１３ａ２およびｅ１ａ２）の発現を下方制御できるかどうかはこれまでは明らかではなかった。
ファイヤーら、Ｎａｔｕｒｅ、第３９１巻、８０６〜８１１頁、１９９８年 ノウェル ピーシー（Ｎｏｗｅｌｌ ＰＣ）ら、１９６０年、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第１３２巻、１４６７頁 ローリー ジェイディー（Ｒｏｗｌｅｙ ＪＤ）、１９７３年、Ｎａｔｕｒｅ、第２４３巻、２９０〜２９３頁 ウェストブルック シーエー（Ｗｅｓｔｂｒｏｏｋ ＣＡ）ら、１９９２年、Ｂｌｏｏｄ、第８０巻、２９８３頁 ハイスターカンプ エヌ（Ｈｅｉｓｔｅｒｋａｍｐ Ｎ）ら、１９８３年、Ｎａｔｕｒｅ、第３０６巻、２３９頁 バーンズ（Ｂａｒｎｅｓ）ら、２００２年、Ａｃｔａ Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｉｃａ、第１０８巻、１８０〜２０２頁 ファダール（Ｆａｄｅｒｌ）ら、２００３年、Ｃａｎｃｅｒ、第９８巻、１３３７頁 カーズロック（Ｋｕｒｚｒｏｃｋ）ら、２００３年、Ａｎｎ．Ｉｎｔｅｒｎ．Ｍｅｄ．第１３８巻、８１９頁 ロスバーグ（Ｒｏｔｈｂｅｒｇ）、２００３年、Ｌｅｕｋｅｍｉａ Ｒｅｓ．第２７巻、９７７頁 ウィルダ（Ｗｉｌｄａ）ら、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ、２００２年、第２１巻、５７１６頁 シェル（Ｓｃｈｅｒｒ）ら、Ｂｌｏｏｄ、２００３年、第１０１巻、１５６６頁 ハイデンライヒ（Ｈｅｉｄｅｎｒｅｉｃｈ）ら、Ｂｌｏｏｄ、２００３年、第１０１巻、３１５７頁 ヴォールボルト（Ｗｏｈｌｂｏｌｄ）ら、Ｂｌｏｏｄ、２００３年、第１０２巻、２２３６頁 リッター ユー（Ｒｉｔｔｅｒ Ｕ）ら、Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ、２００３年、第１３巻、３６５頁 リ（Ｌｉ）ら、Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ、２００３年、第１３巻、４０１頁 チェン ジェー（Ｃｈｅｎ Ｊ）ら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．２００４年、第１１３巻、１７８４頁

本発明は、ｐ２１０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}およびｐ１９０^{Ｂｃｒ−Ａｂｌ}タンパク質レベルの下方制御を、各Ｂｃｒ−Ａｂｌ遺伝子変種を発現するマウス３２Ｄ細胞で、ヒト白血病ＭＥＧ−０１、Ｋ５６２、およびＳＵＰ−Ｂ１５細胞で、そして、白血病を患うヒト対象から新たに単離された細胞で誘導する短いｄｓＲＮＡを包含する方法および薬物を提供することによって、技術を前進させるものである。これらの方法および薬物は、特定の癌の研究および治療に使用することができる。

本発明は、ｉＲＮＡ薬剤を用いたＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子の研究と、Ｂｃｒ−Ａｂｌ切断点変種の融合部位を標的とするｉＲＮＡ薬剤のさらなる試験とに基づいている。これらの新知見に基づいて、本発明は、Ｂｃｒ−Ａｂｌ ｍＲＮＡレベルと、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質レベルと、対象、例えば、ヒトなどの哺乳動物における望ましくない細胞増殖とを低減するのに有用な組成物および方法を提供する。

本発明は、表１、薬剤番号１〜６に記載の薬剤のうちの１つにおける少なくとも１５の連続したヌクレオチドからなるか、あるいはそれを含むｉＲＮＡ薬剤を特に提供する。上記ｉＲＮＡ薬剤は、１鎖当たり３０未満のヌクレオチド、例えば２１〜２３ヌクレオチドからなることが好ましい。２本鎖ｉＲＮＡ薬剤は、平滑末端を有することができ、より好ましくは薬剤の一方または両方の３’末端からの１〜４ヌクレオチドの突出部分（ｏｖｅｒｈａｎｇ）を有する。

さらに、上記ｉＲＮＡ薬剤は、天然に存在するリボヌクレオチドサブユニットだけを含有するものでもよく、あるいは、上記薬剤に含有されているリボヌクレオチドサブユニットのうちの１つまたは複数の糖または塩基への１つまたは複数の修飾を含有するように合成されたものでもよい。上記ｉＲＮＡ薬剤は、さらに、上記薬剤の安定性、分配、または細胞性摂取を改善するように選択されたリガンド、例えばコレステロール、に結合するように修飾することができる。上記薬剤は、単離形態にあるものでもよく、あるいは本明細書に記載の方法に使用される医薬組成物の部分であってもよい。

本発明は、細胞内のＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡのレベルを低減する方法をさらに提供する。この方法は、細胞内のＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡを選択的に分解するために、ＲＮＡ干渉に用いられる細胞機構を利用し、細胞を、本発明のｉＲＮＡ薬剤の１つと接触させる工程からなる。そのような方法は、細胞に直接的に実施することができ、また、本発明のｉＲＮＡ薬剤の１つを対象に投与することによって、哺乳動物対象に実施することもできる。細胞内のＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡの減少は、産生されるＢｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質の量の減少をもたらし、生物体内では、望ましくない細胞増殖の減少をもたらす可能性があり、また、別の薬剤、例えば細胞増殖抑制性または細胞傷害性の薬剤、例えばメシル酸イマチニブまたはγ線照射の活性に対する、増殖中の細胞の感受性を増大させる可能性がある。

本発明の方法および組成物、例えば方法およびｉＲＮＡ組成物は、本明細書に記載のいかなる用量および／または処方でも、また、本明細書に記載のいかなる投与経路でも使用できる。

本発明の１つまたは複数の実施形態の詳細を、添付図面および以下の説明に記載する。本発明の他の特徴、目的、および利点は、この説明、図面、および特許請求の範囲から明らかになるであろう。引用されたすべての参考文献、特許、および特許出願を、あらゆる目的に、全体として本願明細書に援用する。

解説を容易にするために、本明細書では時として、「ヌクレオチド」または「リボヌクレオチド」という用語を、ＲＮＡ薬剤の１つまたは複数の単量体サブユニットに関して使用する。本明細書では、「リボヌクレオチド」または「ヌクレオチド」という用語の使用は、修飾ＲＮＡまたはヌクレオチド代替物に関する場合、以下でさらに記載するように、１つまたは複数の位置における、修飾ヌクレオチドまたは代替置換部分も指すことがあると理解されよう。

本明細書で使用される場合、「ＲＮＡ薬剤」は、無修飾ＲＮＡ、修飾ＲＮＡ、またはヌクレオシド代替物であり、これらはすべて本明細書に記載されているか、もしくはＲＮＡ合成技術分野でよく知られている。多数の修飾ＲＮＡおよびヌクレオチド代替物が記載されているが、好ましいものの例には、ヌクレアーゼ分解に対して、無修飾ＲＮＡが有するものより大きな抵抗性を有するものが含まれる。好ましいものの例には、２’糖修飾、単一鎖突出部分内、好ましくは３’単一鎖突出部分内の修飾、あるいは、特に一本鎖の場合、１つもしくは複数のリン酸基または１つもしくは複数のリン酸基類似体を含有する５’修飾を有するものが含まれる。

本明細書で使用される場合、「ｉＲＮＡ薬剤」（「干渉ＲＮＡ薬剤」の略）は、標的遺伝子、例えばＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子の発現を下方制御できるＲＮＡ薬剤である。理論に拘泥するものではないが、ｉＲＮＡ薬剤は、当技術分野では時にＲＮＡｉと呼ばれる標的ｍＲＮＡの転写後の切断、または転写前もしくは翻訳前の機構を含めた多数の機構のうちの１つまたは複数によって作用し得る。ｉＲＮＡ薬剤は、２本鎖ｉＲＮＡ薬剤であり得る。

「ｄｓ ｉＲＮＡ薬剤」（「２本鎖ｉＲＮＡ薬剤」の略）は、本明細書で使用される場合、複数、好ましくは２本の鎖を含み、その中で鎖間ハイブリダイゼーションが２本鎖構造領域を形成できるｉＲＮＡ薬剤である。本明細書では、「鎖」は、連続したヌクレオチド（天然には存在しないヌクレオチドおよび修飾ヌクレオチドも含まれる）の配列を指す。２本以上の鎖が別々の分子であっても、それらの各鎖が別々の分子の一部を形成してもよく、また、それらが、例えばリンカー、例えばポリエチレングリコールリンカーによって共有結合で相互連結され、１分子のみを形成していてもよい。少なくとも１本の鎖は、標的ＲＮＡに十分に相補的な領域を含むものであり得る。そのような鎖は「アンチセンス鎖」と称される。アンチセンス鎖に相補的な領域を含むｄｓＲＮＡ薬剤中に含まれている第２の鎖は「センス鎖」と称されている。しかしながら、ｄｓ ｉＲＮＡ薬剤は、少なくとも一部が自己相補的であり、２本鎖領域を含む、例えばヘアピンまたはフライパンハンドル構造を形成する単一のＲＮＡ分子から形成されていてもよい。そのような場合、「鎖」という用語は、同一ＲＮＡ分子の別の領域に相補的なＲＮＡ分子の領域の１つを指す。

哺乳動物細胞では、長いｄｓ ｉＲＮＡ薬剤によってインターフェロン応答が誘導されることがあり、それがしばしば有害であるが、短いｄｓ ｉＲＮＡ薬剤は、インターフェロン応答を、少なくとも細胞および／または宿主に有害となる程度までには誘導しない（マンシュ エル（Ｍａｎｃｈｅ，Ｌ．）ら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１９９２年、第１２巻、５２３８頁；リー エスビー（Ｌｅｅ，ＳＢ）、エステバン エム（Ｅｓｔｅｂａｎ，Ｍ）、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、１９９４年、第１９９巻、４９１頁；キャステリ ジェーシー（Ｃａｓｔｅｌｌｉ，ＪＣ）ら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１９９７年、第１８６巻、９６７頁；チェン エックス（Ｚｈｅｎｇ、Ｘ．）、ベビラクア ピーシー（Ｂｅｖｉｌａｃｑｕａ，ＰＣ）、ＲＮＡ、２００４年、第１０巻、１９３４頁；ハイデル（Ｈｅｉｄｅｌ）ら、「Ｌａｃｋ ｏｆ ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｉｎ ａｎｉｍａｌｓ ｔｏ ｎａｋｅｄ ｓｉＲＮＡｓ」、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎ．先行オンライン出版、２００４年１１月２１日、ｄｏｉ：１０．１０３８／ｎｂｔ１０３８）。本発明のｉＲＮＡ薬剤は、十分に短い分子を含有しており、それらは正常な哺乳動物細胞で有害な非特異的インターフェロン応答を誘発しない。したがって、対象へのｉＲＮＡ薬剤組成物（例えば本明細書に記載の通り製剤されたもの）の投与を用いて、インターフェロン応答、特にＢｃｒ−Ａｂｌを発現しない他の細胞による応答を回避しながら、上記対象に含まれているＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞におけるＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子の発現をサイレンシングすることができる。十分に短くて、有害なインターフェロン応答を誘発しない分子を、本明細書では、ｓｉＲＮＡ薬剤またはｓｉＲＮＡと称する。「ｓｉＲＮＡ薬剤」または「ｓｉＲＮＡ」は、本明細書で使用される場合、十分に短くて、ヒト細胞で有害なインターフェロン応答を誘導しないｉＲＮＡ薬剤、例えばｄｓ ｉＲＮＡ薬剤を指し、それは例えば６０ヌクレオチド対未満、好ましくは５０、４０、または３０ヌクレオチド対未満の２本鎖領域を有する。

ｄｓ ｉＲＮＡ薬剤およびｓｉＲＮＡ薬剤を含めた、本明細書に記載の単離されたｉＲＮＡ薬剤は、例えばＲＮＡ分解によるＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子のサイレンシングを媒介することができる。便宜のために、そのようなＲＮＡは、本明細書では、サイレンシングされるＲＮＡとも称される。そのような遺伝子は、標的遺伝子とも称される。サイレンシングされるＲＮＡは、内因性Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子の遺伝子産物であることが好ましい。

本明細書で使用される場合、「ＲＮＡｉを媒介する」という用語は、薬剤が標的遺伝子を配列特異的な様式でサイレンシングする能力を指す。「標的遺伝子をサイレンシングする」とは、それによって、上記薬剤に接触していないときに標的遺伝子の特定の産物を含有および／または分泌する細胞が、上記薬剤に接触しているときに、上記薬剤に接触していない同様な細胞と比較して、そのような遺伝子産物を少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、または９０％少なく含有および／または分泌するであろう過程を意味する。標的遺伝子のそのような産物は、例えば、メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）、タンパク質、または調節エレメントであり得る。

本明細書で使用される場合、「相補的」という用語は、本発明の化合物と標的ＲＮＡ分子、例えばＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡ分子との間で安定かつ特異的な結合が生じるのに十分な程度の相補性を示すのに使用される。特異的な結合は、特異的な結合が望ましい条件下で、すなわちインビボアッセイまたは治療処置の場合には生理条件下で、あるいはインビトロアッセイの場合ではアッセイが実施される条件下で、非標的配列へのオリゴマー化合物の非特異的結合を回避するのに十分な程度の相補性を必要とする。非標的配列は、通常、少なくとも４ヌクレオチドの相違を有する。

本明細書で使用される場合、ｉＲＮＡ薬剤が標的ＲＮＡ、例えば標的ｍＲＮＡ（例えば標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡ）に「十分に相補的である」のは、上記ｉＲＮＡ薬剤によって、細胞内での、上記標的ＲＮＡによってコードされたタンパク質の産生が減少する場合である。上記ｉＲＮＡ薬剤は、標的ＲＮＡに「正確に相補的」であってもよく、例えば上記標的ＲＮＡと上記ｉＲＮＡ薬剤とがアニールするものでもよい。正確に相補的な領域では、ワトソンクリック塩基対のみでハイブリット形成されていることが好ましい。「十分に相補的な」ｉＲＮＡ薬剤は、標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ＲＮＡに正確に相補的な内部領域（例えば少なくとも１０ヌクレオチド）を含み得る。さらに、一部の実施形態では、上記ｉＲＮＡ薬剤が単一ヌクレオチドの相違を特異的に識別する。この場合、上記ｉＲＮＡ薬剤は、単一ヌクレオチド相違の（例えば７ヌクレオチド以内の）領域で正確な相補性が存在する場合にのみＲＮＡｉを媒介する。好ましいｉＲＮＡ薬剤は、表１、薬剤番号１〜６に示すセンス配列およびアンチセンス配列に基づいているか、もしくはそれからなるか、もしくはそれを含むであろう。

本明細書での使用において、「本質的には同一」は、第２のヌクレオチド配列と比較して第１のヌクレオチド配列に関して使用される場合、最大１、２、または３ヌクレオチドまでの置換（例えばアデノシンがウラシルで置換されている）を除いて、第１のヌクレオチド配列が第２のヌクレオチド配列に同一であることを意味する。「培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞でＢｃｒ−Ａｂｌ融合体発現を阻害する能力を本質的に保持している」ということは、ヌクレオチドの欠失、添加または置換によって、表１、薬剤番号１〜６のｉＲＮＡ薬剤のうちの１つに同一ではないが、それに由来するｉＲＮＡ薬剤に関して本明細書で使用される場合、それが由来した表１、薬剤番号１〜６のｉＲＮＡ薬剤との比較における、得られたｉＲＮＡ薬剤の阻害活性の低下が２０％阻害以下であることを意味する。例えば、培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞中に存在するＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡの量を７０％低下させる、表１、薬剤番号１〜６のｉＲＮＡ薬剤に由来するｉＲＮＡ薬剤は、培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞中でＢｃｒ−Ａｂｌ融合体発現を阻害する能力を本質的に保持しているものとみなされるためには、それ自体が、培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞中に存在するＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡの量を少なくとも５０％低下させなければならない。選択的に、本発明のｉＲＮＡ薬剤は、培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞中に存在するＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡの量を少なくとも５０％低下させるものでもよい。

本明細書で使用される場合、「対象」は、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質発現によって媒介された障害の治療を受けている哺乳類生物を指す。対象は、ウシ、ウマ、マウス、ラット、イヌ、ブタ、ヤギ、または霊長類など、いかなる哺乳動物でもよい。好ましい実施形態では、対象はヒトである。

本明細書で使用される場合、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合発現に関連した障害は、１）Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質の存在によって一部媒介され、かつ２）存在しているＢｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質のレベルを低減することによって結果に影響を与えることができるいかなる生物学的または病理学的状態も指す。Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合発現に関連した特定の障害について以下に述べる。
（１ ｉＲＮＡ薬剤の設計および選択）

本発明は、ｉＲＮＡ薬剤でインキュベートした後の培養細胞における、インビトロでのＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子サイレンシング、およびその結果である細胞増殖の低減の実証に基づいている。

配列情報と望ましい特徴とに基づいて、ｉＲＮＡ薬剤を合理的に設計することができる。例えば、候補となる２本鎖の相対的融解温度に従ってｉＲＮＡ薬剤を設計することができる。通常、２本鎖は、アンチセンス鎖の３’末端より、アンチセンス鎖の５’末端で、より低い融解温度を有するはずである。

また、例えば、標的遺伝子として働くであろう遺伝子の遺伝子歩行分析を行うことによっても、候補となるｉＲＮＡ薬剤を設計することができる。転写領域のすべてまたは一部に相当する、オーバーラップ、隣接、または近接した候補薬剤を生成させ、試験することができる。各ｉＲＮＡ薬剤を、標的遺伝子発現を下方制御する能力に関して試験および評価することができる（下記、「候補となるｉＲＮＡ薬剤の評価」を参照）。

ここでは、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合体変種であるＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２、およびＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２を標的とした潜在的ｉＲＮＡ薬剤を、それぞれの融合部位の既知配列（非特許文献６及び７）を用いて設計した。得られた結果に基づいて、本発明は、これらのＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子切断点変種をサイレンシングするｉＲＮＡ薬剤を提供する。

表１は、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合体、詳細には薬剤番号１〜６を標的とする活性ｉＲＮＡ薬剤を提示する。下記の実施例に示す通り、表１、薬剤番号１〜６のｉＲＮＡ薬剤は、これらの薬剤と共にインキュベーションした後の培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞中に存在するＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡの量を、上記薬剤と共にインキュベートされていない細胞と比較して５０％超（そして一部の薬剤では８０％超）低減し、かつ／または培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞によって細胞培養上清中に分泌されるＢｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質の量を５０％超低減するという長所および驚くべき能力を有する。

これらの結果に基づいて、本発明は、表１、薬剤番号１〜６に示されている薬剤のセンス鎖配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドを有するセンス鎖と、表１、薬剤番号１〜６に示されている薬剤のアンチセンス鎖配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドを有するアンチセンス鎖とを含有するｉＲＮＡ薬剤を特にに提供する。

表１に示したｉＲＮＡ薬剤は、長さ２１ヌクレオチドのセンス鎖と、長さ２３ヌクレオチドのアンチセンス鎖とで構成されており、本発明は、これらの薬剤からの１５の連続したヌクレオチドを含む薬剤を提供する。しかしながら、これらの長さは潜在的に最適であり得るが、上記ｉＲＮＡ薬剤はこれらの長さに限定されない。長さが特定の範囲内である場合には、有効性は鎖の長さより、むしろヌクレオチド配列の関数であるので、当業者は、より短いｉＲＮＡ薬剤またはより長いｉＲＮＡ薬剤も同様に有効であり得ることを十分に認識している。例えば、ヤン ディ（Ｙａｎｇ，Ｄ．）ら（ＰＮＡＳ、２００２年、第９９巻、９９４２〜９９４７頁）は、長さが２１塩基対と３０塩基対との間にあるｉＲＮＡ薬剤が同様な効力を有することを実証した。他では、長さ約１５塩基対にまで短くしたｉＲＮＡ薬剤による効果的な遺伝子サイレンシングが示されている（バイロム ダブリュ．エム．（Ｂｙｒｏｍ，Ｗ．Ｍ．）ら、「Ｉｎｄｕｃｉｎｇ ＲＮＡｉ ｗｉｔｈ ｓｉＲＮＡ Ｃｏｃｋｔａｉｌｓ Ｇｅｎｅｒａｔｅｄ ｂｙ ＲＮａｓｅ ＩＩＩ」、Ｔｅｃｈ Ｎｏｔｅｓ、第１０（１）巻、アンビオン社（Ａｍｂｉｏｎ，Ｉｎｃ．）、米国テキサス州オースティン（Ａｕｓｔｉｎ）所在）。

したがって、表１、薬剤番号１〜６に提示した配列の１つに由来するｉＲＮＡ薬剤を産生するために、表１、薬剤番号１〜６に提示した配列から、１５〜２２ヌクレオチドの間の部分配列を選択することが可能であり、かつ本発明で企図されている。代替的に、表１、薬剤番号１〜６に提示した配列の１つ、またはこれらの薬剤の１つからの１５の連続したヌクレオチド、からなる薬剤に１個または数個のヌクレオチドを添加してもよい。この場合、必須ではないが、添加されたヌクレオチドが標的遺伝子、例えばＢｃｒ−Ａｂｌ融合体のそれぞれの配列に相補的となるような様式が好ましい。例えば、上記薬剤の１つにおける最初の１５ヌクレオチドを、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡでこれらの配列の５’側にある８ヌクレオチドと連結させて、センス鎖およびアンチセンス鎖に２３ヌクレオチドを有する薬剤を得ることができる。このようにして派生するすべてのｉＲＮＡ薬剤もそれらが培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞におけるＢｃｒ−Ａｂｌ融合発現を阻害する能力を本質的に保持するという場合には、本発明のｉＲＮＡ薬剤に含まれる。

ｉＲＮＡ薬剤のアンチセンス鎖は、長さが１４、１５、１６、１７、１８、１９、２５、２９、４０または５０ヌクレオチド以上であるべきである。上記アンチセンス鎖は、長さが６０、５０、４０、または３０ヌクレオチド以下であるべきである。好ましい長さの範囲は、１５〜３０、１７〜２５、１９〜２３、および１９〜２１ヌクレオチドである。

ｉＲＮＡ薬剤のセンス鎖は、長さが１４、１５、１６、１７、１８、１９、２５、２９、４０または５０ヌクレオチド以上であるべきである。上記センス鎖は、長さが６０、５０、４０または３０ヌクレオチド以下であるべきである。好ましい長さの範囲は、１５〜３０、１７〜２５、１９〜２３、および１９〜２１ヌクレオチドである。

ｉＲＮＡ薬剤の２本鎖部分は、長さが１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２９、４０または５０ヌクレオチド対以上であるべきである。上記２本鎖部分は、長さが６０、５０、４０または３０ヌクレオチド対以下であるべきである。好ましい長さの範囲は、１５〜３０、１７〜２５、１９〜２３、および１９〜２１ヌクレオチド対である。

通常、本発明のｉＲＮＡ薬剤は、それぞれのＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子と十分な相補性を有する領域を含み、上記ｉＲＮＡ薬剤またはその断片がＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子の下方制御を媒介できる十分なヌクレオチドの長さを有する。表１、薬剤番号１〜６のｉＲＮＡ薬剤のアンチセンス鎖は、それぞれのＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子のｍＲＮＡ配列に完全に相補的であり、それらのセンス鎖は、上記アンチセンス鎖上の２つの３’末端ヌクレオチドを除いて、上記アンチセンス鎖に完全に相補的である。しかしながら、上記ｉＲＮＡ薬剤と上記標的との間に完全な相補性が存在している必要はなく、但し、それらの対応性は、上記ｉＲＮＡ薬剤またはそれの切断産物が、例えばＢｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡのＲＮＡｉ切断による配列特異的なサイレンシングを誘導するのを可能にするのに十分でなければならない。

したがって、本発明のｉＲＮＡ薬剤には、培養ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞におけるＢｃｒ−Ａｂｌ発現を阻害する能力を本質的に保持しながら、それぞれ、鎖当たり１、２、または３つ以下のヌクレオチドが他のヌクレオチドで置換されている（例えばアデノシンがウラシルで置換されている）ことを除いて、下記に定義する通り、それぞれが、表１、薬剤番号１〜６の配列の１つに本質的に同一である少なくとも１６、１７または１８ヌクレオチドの配列からなるセンス鎖およびアンチセンス鎖からなる薬剤が含まれる。したがって、これらの薬剤は、表１、薬剤番号１〜６の配列の１つに同一であるが、標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡ配列に関して、もしくはセンス鎖とアンチセンス鎖との間に、１、２または３塩基のミスマッチが導入されている少なくとも１５ヌクレオチドを有しているであろう。標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡ配列とのミスマッチ、特にアンチセンス鎖におけるミスマッチは、末端領域で最もよく許容され、存在する場合には、１箇所または複数の端末領域内、例えば５’および／または３’末端の６、５、４、または３ヌクレオチド以内にあることが好ましく、センス鎖の５’末端またはアンチセンス鎖の３’末端の６、５、４、または３ヌクレオチド以内にあることが最も好ましい。上記センス鎖は、分子の全体的な２本鎖特性を維持するのに十分なだけアンチセンス鎖に相補的であればよい。

上記センス鎖およびアンチセンス鎖は、上記ｉＲＮＡ薬剤が、その分子の一端または両端に単一鎖または不対領域を含有するように選択されることが好ましい。したがって、ｉＲＮＡ薬剤は、好ましくは突出部分（ｏｖｅｒｈａｎｇ）、例えば１または２つの５’または３’突出部分、但し好ましくは２〜３ヌクレオチドの３’突出部分１つを含有するように対合したセンス鎖およびアンチセンス鎖を含有する。ほとんどの実施形態は３’突出部分を有するであろう。好ましいｓｉＲＮＡ薬剤は、上記ｉＲＮＡ薬剤の一端または両端に長さが１〜４ヌクレオチド、好ましくは２または３ヌクレオチドの１本鎖の突出部分、好ましくは３’突出部分を有するであろう。上記突出部分は、一方の鎖がもう一方より長い結果、または同じ長さの２本の鎖がずれている結果であり得る。５’末端はリン酸化されていることが好ましい。

２本鎖領域の好ましい長さは、１５から３０ヌクレオチドの間、最も好ましくは１８、１９、２０、２１、２２および２３ヌクレオチドの長さ、例えば上記に論じたｓｉＲＮＡ薬剤の範囲である。ｓｉＲＮＡ薬剤は、長いｄｓＲＮＡからの天然Ｄｉｃｅｒ調製物に長さおよび構造が類似したものでよい。ｓｉＲＮＡ薬剤の２本の鎖が、例えば共有結合によって、連結されている実施形態も含まれる。ヘアピン構造、または必要な２本鎖領域と、好ましくは３’突出部分とを提供する他の１本鎖構造も本発明に包含される。
（２ 候補となるｉＲＮＡ薬剤の評価）
候補となるｉＲＮＡ薬剤を、それが標的遺伝子発現を下方制御する能力に関して評価することができる。例えば、候補となるｉＲＮＡ薬剤を用意し、標的遺伝子、例えばＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子を内因的に発現するか、あるいはＢｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質をそれから発現することができるコンストラクトでトランスフェクションされていることによって発現する細胞に接触させることができる。上記候補となるｉＲＮＡ薬剤との接触の前および後の標的遺伝子発現のレベルを、例えばｍＲＮＡまたはタンパク質レベルで比較することができる。標的遺伝子から発現されたＲＮＡまたはタンパク質の量が、上記ｉＲＮＡ薬剤と接触した後に低下していると判定された場合、上記ｉＲＮＡ薬剤が標的遺伝子発現を下方制御すると結論付けることができる。細胞中の標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ＲＮＡまたはＢｃｒ−Ａｂｌ融合タンパク質のレベルは、いかなる望ましい方法でも測定できる。例えば、標的ＲＮＡのレベルは、ノーザンブロット解析、逆転写連結ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）、またはＲＮアーゼプロテクションアッセイで測定することができる。タンパク質のレベルは、例えば、ウェスタンブロット解析または免疫蛍光によって測定することができる。
（ｉＲＮＡ薬剤の安定性試験、修飾、および再試験）
候補となるｉＲＮＡ薬剤を、そのｉＲＮＡ薬剤が対象の体内に導入された際などの安定性、例えばエンドヌクレアーゼまたはエクソヌクレアーゼによる切断に対する感受性に関して評価することができる。同方法は、修飾、特に切断、例えば対象の体内に存在する成分による切断の影響を受けやすい部位を同定する方法を利用することができる。

切断の影響を受けやすい部位が同定された場合、例えば切断部位への２’修飾、例えば２’−Ｏ−メチル基の導入によって、上記潜在的切断部位が切断に抵抗性を有するように作製された、さらなるｉＲＮＡ薬剤を設計および／または合成することができる。このさらなるｉＲＮＡ薬剤を、安定性に関して再試験することができ、あるｉＲＮＡ薬剤が望ましい安定性を示すことが見出されるまで、この工程を繰り返すことができる。
（インビボ試験）
Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子発現を阻害できるものとして同定されたｉＲＮＡ薬剤を、動物モデル（例えばマウスまたはラットなどの哺乳動物）中でのインビボでの機能に関して試験することができる。例えば、上記ｉＲＮＡ薬剤を動物に投与して、その生体内分布、安定性、およびそれがＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子発現を阻害する能力または望ましくない細胞増殖を低減する能力に関して評価することができる。

上記ｉＲＮＡ薬剤は、注射などによって標的組織に直接投与することができ、あるいは上記ｉＲＮＡ薬剤を、それがヒトに投与されるのと同じ様に動物モデルに投与することもできる。

上記ｉＲＮＡ薬剤を細胞内分布に関して評価することもできる。この評価には、上記ｉＲＮＡ薬剤が細胞内に摂取されたかどうかの判定も含めることができる。この評価には、上記ｉＲＮＡ薬剤の安定性（例えば半減期）の測定も含めることができる。ｉＲＮＡ薬剤のインビボ評価は、追跡可能なマーカー（例えば、フルオレセインなどの蛍光マーカー：^３５Ｓ、^３２Ｐ、^３３Ｐ、もしくは^３Ｈなどの放射性標識；金粒子；または免疫組織化学用抗原粒子）に結合したｉＲＮＡ薬剤の使用によって容易に行うことができる。

上記ｉＲＮＡ薬剤を、それがＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子発現を下方制御する能力に関して評価することができる。インビボでのＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子発現のレベルは、例えば、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、または上記ｉＲＮＡ薬剤への組織の曝露の前および後における同組織からのＲＮＡの単離によって測定することができる。組織を採取するために動物を屠殺する必要がある場合、未処置のコントロール動物が比較対象となろう。標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡは、限定されるものではないが、ＲＴ−ＰＣＲ、ノーザンブロット、分岐ＤＮＡアッセイ、またはＲＮアーゼプロテクションアッセイを含めたいかなる望ましい方法でも検出することができる。代替的又は付随的に、上記ｉＲＮＡ薬剤で処置された組織抽出物のウェスタンブロット解析を行うことによって、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子発現をモニタリングすることもできる。

特定の望ましい効果を実現するのに必要な濃度（例えばＥＣ５０）を確定するのに、動物モデルを用いることができる。そのような動物モデルには、ヒト遺伝子、例えば標的ヒトＢｃｒ−Ａｂｌ融合ＲＮＡを産生する遺伝子を発現するトランスジェニック動物が含まれ得る。別の実施形態では、試験用の組成物は、少なくとも内部領域において、動物モデルにおける標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ＲＮＡと、ヒトにおける標的Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ＲＮＡとの間で保存されている配列に相補的なｉＲＮＡ薬剤を含有できる。
（３ ｉＲＮＡ化学）
ここでは、ＲＮＡｉを媒介して、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子の発現を阻害する単離されたｉＲＮＡ薬剤、例えばｄｓＲＮＡ薬剤について述べる。

ここで論じるＲＮＡ薬剤には、他には無修飾のＲＮＡに加えて、例えば効力を向上させるために修飾されたＲＮＡ、およびヌクレオチド代替物のポリマーも含まれる。無修飾のＲＮＡは、その中で、核酸成分、すなわち、糖、塩基、およびリン酸部分が天然に存在しているもの、好ましくはヒト体内に生来的に存在しているものと同じであるか、もしくは本質的に同じである分子を指す。当技術分野は、まれであるか、もしくは一般的でないが、天然に存在するＲＮＡを修飾ＲＮＡと称することがある。例えば、リンバッハ（Ｌｉｍｂａｃｈ）ら（１９９４年）、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．第２２巻、２１８３〜２１９６頁を参照されたい。しばしば修飾ＲＮＡと称される（明らかに、それらが通常は転写後修飾の結果であるため）、そのようなまれであるか、もしくは一般的でないＲＮＡは、本明細書で使用される場合、無修飾ＲＮＡという用語の範囲内にある。本明細書で使用される場合、修飾ＲＮＡは、その中で、１つまたは複数の核酸成分、すなわち、糖、塩基、およびリン酸部分が、天然に存在しているもの、好ましくはヒト体内に生来的に存在しているものと異なる分子を指す。それらは修飾「ＲＮＡ」と称されるが、それらには修飾によりＲＮＡではない分子も当然ながら含まれる。ヌクレオチド代替物は、その中で、ハイブリダイゼーションが実質的にリボリン酸骨格で見られるものと類似するように、それらの塩基の正しい空間的関係での提示が可能となっている非リボリン酸骨格構造物、例えばリボリン酸骨格の非荷電模倣体で、リボリン酸骨格が置換されている分子である。上記のすべての例が本明細書に論じられている。

本明細書に記載の修飾は、本明細書に記載のいかなる２本鎖ＲＮＡおよびＲＮＡ様分子、例えばｉＲＮＡ薬剤にも組み入れら得る。上記修飾は、ｉＲＮＡ薬剤のアンチセンス鎖およびセンス鎖の一方または両方を修飾することが望ましい。核酸が重合体のサブユニットまたは単量体である場合には、下記の修飾の多くは核酸中で反復される位置で起こり、例えば、塩基もしくはリン酸部分、またはリン酸部分の非結合性Ｏの修飾である。一部の場合には、上記修飾が核酸中の対象となる位置のすべてで起こるであろうが、多くの場合、そして実際にはほとんどの場合には、そうならないであろう。一例として、修飾は、３’または５’末端位置でのみ起こることもあり、あるいは末端領域、例えば鎖の末端ヌクレオチドの位置または最終２、３、４、５、または１０ヌクレオチドでのみ起こることもある。修飾は、２本領域に起こっても、１本鎖領域に起こっても、あるいはそれら両方に起こってもよい。例えば、非結合性Ｏの位置でのホスホロチオエート修飾は、一方または両方の末端で起こることも、あるいは末端領域、例えば鎖の末端ヌクレオチドの位置または最終２、３、４、５、または１０ヌクレオチドでのみ起こることも、あるいは２本鎖および１本鎖領域、特に末端で起こることもある。同様に、修飾は、センス鎖で起こることも、アンチセンス鎖で起こることも、それら両方で起こることもある。一部の場合には、センス鎖およびアンチセンス鎖が同じ修飾または同じクラスの修飾を有するであろう。しかしながら、他の場合には、センス鎖およびアンチセンス鎖は異なった修飾を有するであろう。例えば、一部の場合には、一方の鎖、例えばセンス鎖のみを修飾することが望ましい場合がある。

ｉＲＮＡ薬剤に修飾を導入する２つの主要な目的は、生物学的環境における分解に対するそれらの安定化、および下記に詳細に論じる薬理学的特性、例えば薬動力学的特性の改良である。ｉＲＮＡ薬剤の糖、塩基、または骨格への他の適当な修飾は、共有されている２００４年１月１６日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／０１１９３号パンフレットに記載されている。ｉＲＮＡ薬剤は、共有されている２００４年４月１６日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／０１１８２２号パンフレットに記載の塩基のような天然に存在しない塩基を含有することもできる。ｉＲＮＡ薬剤は、非糖質環状担体分子のような天然に存在しない糖を含むこともできる。ｉＲＮＡ薬剤で使用する天然に存在しない糖の例示的特性は、共有されている２００３年４月１６日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／１１８２９号パンフレットに記載されている。

ｉＲＮＡ薬剤は、ヌクレアーゼ抵抗性の増強に有用なヌクレオチド間結合（例えばキラルホスホロチオエート結合）を含有できる。付随的に、又は代替的に、ヌクレアーゼ抵抗性を増強させるために、ｉＲＮＡ薬剤にリボース摸倣体を含有させることができる。ヌクレアーゼ抵抗性を増強させるための例示的ヌクレオチド間結合およびリボース模倣体は、共有されている２００４年３月８日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／０７０７０号パンフレットに記載されている。

ｉＲＮＡ薬剤は、リガンド結合単量体サブユニットおよびオリゴヌクレオチド合成用の単量体を含有できる。例示的な単量体は、共有されている２００４年８月１０日出願の米国特許出願第１０／９１６１８５号明細書に記載されている。

ｉＲＮＡ薬剤は、共有されている２００４年３月８日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／０７０７０号パンフレットに記載されているようなＺＸＹ構造を有することができる。

ｉＲＮＡ薬剤は、両親媒性部分と複合体形成され得る。ｉＲＮＡ薬剤と共に使用するための例示的な両親媒性部分は、共有されている２００４年３月８日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／０７０７０号パンフレットに記載されている。

別の実施形態では、ｉＲＮＡ薬剤は、モジュール複合体の特性を有する送達薬剤と複合体形成され得る。この複合体は、（ａ）濃縮剤（例えば、核酸を、例えばイオンまたは静電気相互作用を介して、誘引、例えば結合できる薬剤）；（ｂ）融合誘導剤（例えば、細胞膜に融合し、かつ／またはそれを通って輸送される性能を有する薬剤）：および、（ｃ）標的化化学基、例えば細胞または組織標的化剤、例えば特定の細胞型に結合するレクチン、糖タンパク、脂質、またはタンパク質（例えば抗体）、のうちの１つまたは複数（好ましくは２つ以上、より好ましくは３つすべて）に結合される担体物質を含み得る。送達物質と複合体形成されるｉＲＮＡ薬剤は、共有されている２００４年３月８日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／０７０７０号パンフレットに記載されている。

ｉＲＮＡ薬剤は、ｉＲＮＡ２本鎖のセンス配列とアンチセンス配列との間などに、非標準的な対合を備え得る。非標準的なｉＲＮＡ薬剤の例示的特徴は、共有されている２００４年３月８日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００４／０７０７０号パンフレットに記載されている。
（ヌクレアーゼ抵抗性の強化）
ｉＲＮＡ薬剤、例えばＢｃｒ−Ａｂｌ融合体を標的とするｉＲＮＡ薬剤は、同薬剤が有するヌクレアーゼ抵抗性を強化することができる。

抵抗性を強化する方法の１つは、共有されている同時係属中の出願である米国特許仮出願第６０／５７４７４４号明細書および国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００５／０１８９３１号パンフレットに記載の通り、切断部位を同定し、そのような部位を修飾して、切断を阻害することである。例えば、ジヌクレオチド５’−ｕａ−３’、５’−ｃａ−３’、５’−ｕｇ−３’、５’−ｕｕ−３’、又は５’−ｃｃ−３’を切断部位として利用できる。特定の実施形態では、ｉＲＮＡ薬剤のすべてのピリミジンが、センス鎖、アンチセンス鎖、または両方の鎖に２’修飾を有し、そのため、そのｉＲＮＡ薬剤は、エンドヌクレアーゼに対する抵抗性が強化される。ヌクレアーゼ抵抗性の強化は、例えば、共有されている２００５年５月２７日出願の国際出願第ＰＣＴ／ＵＳ２００５／０１８９３１号パンフレットに記載の通り、ウリジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−ウリジン−アデニン−３’（５’−ｕａ−３’）ジヌクレオチド；５’−シチジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−シチジン−アデニン−３’（５’−ｃａ−３’）ジヌクレオチド；５’−ウリジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−ウリジン−グアニン−３’（５’−ｕｇ−３’）ジヌクレオチド；５’−ウリジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−ウリジン−ウリジン−３’（５’−ｕｕ−３’）ジヌクレオチド；または５’−シチジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−シチジン−シチジン−３’（５’−ｃｃ−３’）ジヌクレオチドをもたらす５’ヌクレオチド修飾を行うことによって実現できる。上記ｉＲＮＡ薬剤は、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、または少なくとも５つのそのようなジヌクレオチドを含み得る。特に好ましい実施形態では、センス鎖、アンチセンス鎖、またはそれら両鎖のいずれかに存在する５’−ｕａ−３’および５’−ｃａ−３’という配列モチーフすべてにおける５’ヌクレオチドが修飾ヌクレオチドである。好ましくは、センス鎖、アンチセンス鎖、またはそれら両鎖のいずれかに存在する５’−ｕａ−３’、５’−ｃａ−３’、および５’−ｕｇ−３’という配列モチーフのすべてにおける５’ヌクレオチドが修飾ヌクレオチドである。より好ましくは、センス鎖におけるすべてのピリミジンヌクレオチドが修飾ヌクレオチドであり、かつアンチセンス鎖に存在する５’−ｕａ−３’および５’−ｃａ−３’という配列モチーフすべてにおける５’ヌクレオチド、または上記アンチセンス鎖が５’−ｕａ−３’も５’−ｃａ−３’モチーフも含まない場合には、存在する５’−ｕｇ−３’という配列モチーフのすべてにおける５’ヌクレオチドが修飾ヌクレオチドである。

ヌクレアーゼ抵抗性および／または標的への結合親和性を増大させるために、ｉＲＮＡ薬剤、例えば上記ｉＲＮＡ薬剤のセンス鎖および／またはアンチセンス鎖は、例えば２’修飾されたリボース単位および／またはホスホロチオエート結合を含有し得る。例えば２’ヒドロキシ基（ＯＨ）を、種々の異なった「オキシ」または「デオキシ」置換基で修飾または置換することができる。

「オキシ」−２’ヒドロキシ基修飾の例には、アルコキシもしくはアリールオキシ（ＯＲ、例えばＲ＝Ｈ、アルキル、シクロアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、または糖）；ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、すなわちＯ（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）_ｎＣＨ_２ＣＨ_２ＯＲ；例えばメチレン架橋によって２’ヒドロキシ基が同じリボース糖の４’炭素に連結されている「ロックト」核酸（ＬＮＡ）、Ｏ−ＡＭＩＮＥ、およびアミノアルコキシ、すなわちＯ（ＣＨ_２）_ｎＡＭＩＮＥ（例えば、ＡＭＩＮＥ＝ＮＨ_２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリルアミノ、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、またはジへテロアリールアミノ、エチレンジアミン、ポリアミノ）が含まれる。メトキシエチル基（ＭＯＥ）（ＯＣＨ_２ＣＨ_２ＯＣＨ_３、ＰＥＧ誘導体）のみを含有するオリゴヌクレオチドは、強固なホスホロチオエート修飾で修飾されたものに匹敵するヌクレアーゼ安定性を示すことは、注目に値する。

「デオキシ」修飾には、水素（すなわち、デオキシリボース糖、これらは部分的ｄｓＲＮＡの突出部分に特に重要である）；ハロ（例えばフルオロ）；アミノ（例えば、ＮＨ_２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、ジへテロアリールアミノ、またはアミノ酸）；ＮＨ（ＣＨ_２ＣＨ_２ＮＨ）_ｎＣＨ_２ＣＨ_２−ＡＭＩＮＥ（ＡＭＩＮＥ＝ＮＨ_２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリルアミノ、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、またはジへテロアリールアミノ）、−ＮＨＣ（Ｏ）Ｒ（Ｒ＝アルキル、シクロアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリールまたは糖）、シアノ；メルカプト；アルキル−チオ−アルキル：チオアルコキシ；及びアルキル、シクロアルキル、アリール、アルケニル、およびアルキニルが含まれ、これらは、選択的に、例えばアミノ官能基で置換することができる。

好ましい置換基は、２’−メトキシエチル、２’−ＯＣＨ_３、２’−Ｏ−アリル、２’−Ｃ−アリル、および２’−フルオロである。
ヌクレアーゼ抵抗性を最大にするために、２’修飾を、１つまたは複数のリン酸リンカー修飾（例えばホスホロチオエート）と併用することができる。いわゆる「キメラ」オリゴヌクレオチドは、２つ以上の異なった修飾を含有するものである。

オリゴヌクレオチド骨格におけるフラノース糖の包含も、エンドヌクレオチド鎖切断を低減できる。ｉＲＮＡ薬剤は、さらに３’陽イオン基を包含させることによって、あるいは３’−３’連結を伴う３’末端でのヌクレオシドの反転によって修飾され得る。別の代替法では、アミノアルキル基、例えば、３’Ｃ５−アミノアルキルｄＴで３’末端をブロックすることができる。他の３’結合体も、３’−５’エキソヌレチド分解性の切断を阻害できる。理論に拘泥するものではないが、ナプロキセンまたはイブプロフェンなどの３’結合体は、エクソヌクレアーゼがオリゴヌクレオチドの３’末端に結合するのを立体的にブロックすることによって、エキソヌレチド分解性の切断を阻害し得る。小さなアルキル鎖、アリール基、または複素環式結合もしくは修飾糖（Ｄ−リボース、デオキシリボース、グルコースなど）でさえも、３’−５’エクソヌクレアーゼをブロックすることができる。

同様に、５’結合体は、５’−３’エキソヌレチド分解性の切断を阻害できる。理論に拘泥するものではないが、ナプロキセンまたはイブプロフェンなどの５’結合体は、エクソヌクレアーゼがオリゴヌクレオチドの５’末端に結合するのを立体的にブロックすることによって、エキソヌレチド分解性の切断を阻害し得る。小さなアルキル鎖、アリール基、または複素環式結合もしくは修飾糖（Ｄ−リボース、デオキシリボース、グルコースなど）でさえも、３’−５’エクソヌクレアーゼをブロックすることができる。

ｉＲＮＡ薬剤は、２本鎖ｉＲＮＡ薬剤が少なくとも一方の末端に１本鎖ヌクレオチド突出部分を含有している場合に、ヌクレアーゼに対する抵抗性を増大させることができる。好ましい実施形態では、上記ヌクレオチド突出部分は、１乃至４個の、好ましくは２乃至３個の不対ヌクレオチドを含有する。好ましい実施形態では、末端ヌクレオチド対に直接隣接している上記１本鎖の突出部分の不対ヌクレオチドがプリン塩基を含有し、上記末端ヌクレオチド対がＧ−Ｃ対であるか、もしくは相補的な最終４ヌクレオチド対のうち少なくとも２対がＧ−Ｃ対である。さらに別の実施形態では、上記ヌクレオチド突出部分は、１または２つの不対ヌクレオチドを有することがあり、例示的実施形態では、上記ヌクレオチド突出部分が５’−ＧＣ−３’である。好ましい実施形態では、上記ヌクレオチド突出部分が、上記アンチセンス鎖の３’端にある。一実施形態では、上記ｉＲＮＡ薬剤は、２ｎｔの突出部分５’−ＧＣ−３’が形成されるように、上記アンチセンス鎖の３’末端に５’−ＣＧＣ−３’というモチーフを含有する。

したがって、ｉＲＮＡ薬剤は、例えば対象の体内に存在するヌクレアーゼ、例えば、エンドヌクレアーゼまたはエクソヌクレアーゼによる分解を阻害するように修飾された単量体を含有できる。これらの単量体は、本明細書ではＮＲＭすなわちヌクレアーゼ抵抗性促進単量体と称され、対応する修飾は、ＮＲＭ修飾と称される。多くの場合、これらの修飾は、ｉＲＮＡ薬剤の他の特性、例えばタンパク質、例えば運搬体タンパク質、例えば血清アルブミンまたはＲＩＳＣのメンバー、と相互作用する能力、または第１の配列および第２の配列の、お互いと２本鎖を形成する能力、もしくは別の配列、例えば標的分子と２本鎖を形成する能力、も調節するであろう。

上述した好ましいヌクレアーゼ抵抗性の規準を満たすｉＲＮＡ薬剤を産生するのに有用であり得る修飾は、以下に示す糖、塩基、および／またはリン酸骨格の１つまたは複数の化学修飾および／または立体化学修飾を含有し得る。

（ｉ）キラル（Ｓｐ）チオ酸塩。したがって、好ましいＮＲＭは、特定のキラル形態にある、架橋部以外の位置、例えば通常は酸素が占めている位置である位置ＸにＳｐまたはＲｐのようなヘテロ原子を含有する修飾リン酸基に関して豊富または純粋であるヌクレオチド２量体を含有する。位置Ｘの原子は、Ｓ、Ｓｅ、Ｎｒ_２、またはＢｒ_３でもよい。ＸがＳである場合、Ｓｐ連結に関して豊富であるか、純粋なキラルであることが好ましい。豊富であるとは、少なくとも７０、８０、９０、９５、または９９％が好ましい形態であることを意味する。

（ｉｉ）糖、塩基および／またはリン酸若しくは修飾リン酸骨格部分のリン原子への１つまたは複数の陽イオン基の結合。したがって、好ましいＮＲＭは、陽イオン基で誘導体化された単量体を末端位置に含有する。アンチセンス配列の５’末端は、末端ＯＨ基またはリン酸基を有するべきであるので、アンチセンス配列の５’末端では、このＮＲＭの使用が好ましくない。この陽イオン基は、Ｈ結合形成およびハイブリダイゼーションの干渉を最小にする塩基上の位置、例えばもう一方の鎖の相補的塩基と相互作用する面から離れている位置、例えばピリミジンの５’位またはプリンの７位に結合させるべきである。

（ｉｉｉ）末端における非リン酸結合。したがって、好ましいＮＲＭは、非リン酸結合、例えば、切断に対してリン酸結合よりも大きな抵抗性を与える４原子の結合を含有する。一例としては、３’ＣＨ_２−ＮＣＨ_３−Ｏ−ＣＨ_２−５’および３’ＣＨ_２−ＮＨ−（Ｏ＝）−ＣＨ_２−５’が含まれる。

（ｉｖ）３’架橋チオリン酸塩および５’架橋チオリン酸塩。したがって、好ましいＮＲＭはこれらの構造を含有し得る。
（ｖ）Ｌ−ＲＮＡ、２’−５’結合、逆方向結合、ａ−ヌクレオシド。したがって、他の好ましいＮＲＭには、Ｌ−ヌクレオシドおよびＬ−ヌクレオシドから派生した２量体ヌクレオチド；２’−５’リン酸結合、非リン酸結合、および修飾リン酸結合（例えば、チオリン酸、ホスホラミデート、およびボロノホスフェート）；逆方向結合、例えば３’−３’結合または５’−５’結合を有する２量体；糖の１’部位にα結合を有する単量体、例えばα結合を有する本明細書に記載の構造が含まれる。

（ｖｉ）結合基。したがって、好ましいＮＲＭには、例えば、単量体に、例えば糖、塩基、または骨格を介して結合される本明細書に記載の標的化部分または結合リガンドが含まれる。これらに関しては、以下に、より詳細に論じる。

（ｖｉ）無塩基結合。したがって、好ましいＮＲＭには、無塩基単量体、例えば無塩基単量体（例えば、ヌクレオチド塩基を含まない単量体）；芳香族または複素環式または芳香族多環複素環式単量体が含まれ得る。

（ｖｉｉ）５’−ホスホネートおよび５’−リン酸塩プロドラック。したがって、好ましいＮＲＭには、好ましくは末端位置、例えば５’位に、リン酸基の１つまたは複数の原子が保護基で誘導体化されている単量体を含有し、上記１つまたは複数の保護基は、対象の体内にある成分、例えばカルボキシエステラーゼまたは対象の体内に存在している酵素の作用の結果、除去される。例えば、その中で、カルボキシエステラーゼが、保護された分子を切断し、その結果、チオ酸陰イオンの産生がもたらされ、このチオ酸陰イオンがリン酸のＯに隣接する炭素を攻撃し、その結果保護のないリン酸塩の産生をもたらすリン酸塩プロドラック。

１つまたは複数の異なったＮＲＭ修飾を、ｉＲＮＡ薬剤の中、または、ｉＲＮＡ薬剤の配列の中に導入することができる。１つの配列中またはｉＲＮＡ薬剤中で１つのＮＲＭ修飾を複数回用いることができる。

ＮＲＭ修飾には、末端にのみ配置できる一部のものも、いかなる位置にも配置できる他のものも含めることができる。一部のＮＲＭ修飾は、ハイブリダイゼーションを抑制する可能性があり、したがって、それらは末端領域のみで使用するのが好ましく、それらを切断部位、または対象の配列もしくは遺伝子を標的とする配列、特にアンチセンス鎖上の切断領域にて用いないことが好ましい。それらは、上記ｄｓ ｉＲＮＡ薬剤の２つの鎖の間で十分なハイブリダイゼーションが維持される場合に、センス鎖の任意の場所にて使用できる。一部の実施形態では、ＮＲＭが標的外のサイレンシングを最小にし得るので、ＮＲＭを切断部位またはセンス鎖の切断領域に配置するのが望ましい。

ほとんどの場合、ＮＲＭ修飾は、それらがセンス鎖に含まれるか、もしくはアンチセンス鎖に含まれるかに応じて異なって分配されるであろう。アンチセンス鎖に含まれる場合には、エンドヌクレアーゼ切断を妨害または阻害する修飾は、ＲＩＳＣ媒介の切断を受ける領域、例えば切断部位または切断領域に挿入されるべきでない（本願明細書に援用する、エルバシル（Ｅｌｂａｓｈｉｒ）ら、２００１年、Ｇｅｎｅｓ ａｎｄ Ｄｅｖ．第１５巻、１８８頁に記載されている）。標的の切断は、２０または２１ｎｔのアンチセンス鎖のほぼ中央、すなわち上記アンチセンス鎖に相補的な標的ｍＲＮＡの最初のヌクレオチドの上流のほぼ１０または１１ヌクレオチドで起こる。本明細書で使用される場合、切断部位は、標的またはそれにハイブリダイズするｉＲＮＡ薬剤の鎖における、切断部位のいずれかの側のヌクレオチドを指す。切断領域は、いずれかの方向における、上記切断部位の１、２、または３ヌクレオチド以内にあるヌクレオチドを意味する。

そのような修飾は、末端領域、例えばセンス鎖またはアンチセンス鎖の末端位置、または上記末端の２、３、４、もしくは５番目の位置を含めた位置に導入することができる。
（テザーリガンド）
薬理学的特性を含めたｉＲＮＡ薬剤の特性は、リガンド、例えば、テザーリガンドを導入することによって、影響を受け、調整され得る。

多種多様な構成要素、例えば、リガンドを、ｉＲＮＡ薬剤、例えば、リガンド結合単量体サブユニットの担体に連結することができる。リガンド結合単量体サブユニットの場合について以下にその例を説明するが、これは単に好適な例に過ぎず、同構成要素はｉＲＮＡ薬剤のその他の点にも結合することができる。

好ましい部分は、干渉テザー（ｔｅｔｈｅｒ）を介して直接的または間接的に担体に、好ましくは共有結合するリガンドである。好ましい実施形態では、このリガンドは干渉テザーを介して担体に結合される。リガンド結合単量体が伸長する鎖に取り込まれるとき、リガンドまたはテザーリガンドは、リガンド結合単量体上に存在し得る。いくつかの実施形態では、このリガンドは、「前駆体」リガンド結合単量体サブユニットが伸長する鎖に取り込まれた後で、同「前駆体」リガンド結合単量体サブユニットに取り込まれる。例えば、ＴＡＰ−（ＣＨ_２）_ｎＮＨ_２などのアミノ末端テザーなどを有する単量体は、伸長するセンスまたはアンチセンス鎖に取り込まれてよい。その後の操作において、すなわち、前駆体単量体サブユニットが鎖に取り込まれた後で、求電子基、例えば、ペンタフルオロフェニルエステルまたはアルデヒド基を有するリガンドは、リガンドの求電子基と前駆体リガンド結合単量体サブユニットテザーの末端求核基との結合によって、その後前駆体リガンド結合単量体に結合され得る。

好ましい実施形態では、リガンドは、取り込まれたｉＲＮＡ薬剤の分布、標的化または寿命を改変する。好ましい実施形態では、リガンドは、例えば、このようなリガンドを備えていない種と比較して、選択した標的、例えば、分子、細胞または細胞種、細胞区画もしくは器官区画などの区画、組織、器官または身体の領域に対する親和性を増強する。

好ましいリガンドは、輸送、ハイブリダイゼーションおよび特異性の特性を改善することができ、得られた天然もしくは修飾オリゴリボヌクレオチド、または本明細書で説明した単量体および／または天然もしくは修飾リボヌクレオチドの任意の組合せを含むポリマー分子のヌクレアーゼ抵抗性も改善することができる。

一般的に、リガンドは、例えば、取り込みを高めるための治療調節剤、例えば、分布をモニタリングするための診断用化合物もしくはレポーター群、架橋剤、ヌクレアーゼ抵抗性を付与する部分および天然もしくは通常にはない核塩基を含むことができる。一般的な例には、脂溶性分子、脂質、ステロイド（例えば、ウバオール、ヘシゲニン（ｈｅｃｉｇｅｎｉｎ）、ジオスゲニン）、テルペン（例えば、トリテルペン、例えば、サルササポゲニン、フリーデリン、エピフリーデラノール誘導体化リトコール酸）、ビタミン、炭水化物（例えば、デキストラン、プルラン、キチン、キトサン、イヌリン、シクロデキストリンまたはヒアルロン酸）、タンパク質、タンパク質結合剤、インテグリン標的化分子、ポリカチオン、ペプチド、ポリアミンおよびペプチド模倣体が含まれる。

リガンドは、天然物質または組換えもしくは合成分子、例えば、合成ポリアミノ酸などの合成ポリマーであり得る。ポリアミノ酸の例には、ポリリジン（ＰＬＬ）、ポリＬ−アスパラギン酸、ポリＬ−グルタミン酸、スチレン−無水マレイン酸コポリマー、ポリ（Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）コポリマー、ジビニルエーテル−無水マレイン酸コポリマー、Ｎ−（２−ヒドロキシプロピル）メタクリルアミドコポリマー（ＨＭＰＡ）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、ポリウレタン、ポリ（２−エチルアクリル酸）、Ｎ−イソプロピルアクリルアミドポリマーまたはポリホスファジンが含まれる。ポリアミンの例には、ポリエチレンイミン、ポリリジン（ＰＬＬ）、スペルミン、スペルミジン、ポリアミン、シュードペプチドポリアミン、ペプチド様ポリアミン、デンドリマーポリアミン、アルギニン、アミジン、プロタミン、陽イオン部分、例えば、陽イオン性脂質、陽イオン性ポルフィリン、ポリアミンの４級塩またはアルファヘリックスペプチドが含まれる。

リガンドにはまた、標的化化学基、例えば、細胞または組織標的化剤、例えば、肝細胞もしくは空腸細胞などの特異的細胞型に結合する抗体、甲状腺刺激ホルモン、メラニン細胞刺激ホルモン、レクチン、糖タンパク質、サーファクタントタンパク質Ａ、ムチン炭水化物、グリコシル化ポリアミノ酸、トランスフェリン、ビスホスホン酸、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸、またはＲＧＤペプチドもしくはＲＧＤペプチド模倣体が含まれる。

リガンドのその他の例には、色素、挿入剤（例えば、アクリジン）、架橋剤（例えば、ソラレン、マイトマイシンＣ）、ポルフィリン（ＴＰＰＣ４、テキサフィリン、サフィリン）、多環式芳香族炭化水素（例えば、フェナジン、ジヒドロフェナジン）、人工エンドヌクレアーゼ（例えば、ＥＤＴＡ）、脂溶性分子、例えば、コレステロール、コール酸、アダマンタン酢酸、１−ピレン酪酸、ジヒドロテストステロン、グリセロール（例えば、それらのエステルおよびエーテル、例えば、Ｃ_１０、Ｃ_１１、Ｃ_１２、Ｃ_１３、Ｃ_１４、Ｃ_１５、Ｃ_１６、Ｃ_１７、Ｃ_１８、Ｃ_１９またはＣ_２０アルキル、例えば、１，３−ビス−Ｏ（ヘキサデシル）グリセロール、１，３−ビス−Ｏ−（オクタデシル）グリセロール）、ゲラニルオキシヘキシル基、ヘキサデシルグリセロール、ボルネオール、メントール、１，３−プロパンジオール、ヘプタデシル基、パルミチン酸、ミリスチン酸、Ｏ３−（オレオイル）リトコール酸、Ｏ３−（オレオイル）コレン酸（ｃｈｏｌｅｎｉｃ ａｃｉｄ）、ジメトキシトリチルまたはフェノキサジン）およびタンパク質またはペプチド結合体（例えば、抗体、リポタンパク質、例えば、低密度リポタンパク質、アルブミン、例えば、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ））、アルキル化剤、リン酸塩、アミノ、メルカプト、ＰＥＧ（例えば、ＰＥＧ−４０Ｋ）、ＭＰＥＧ、［ＭＰＥＧ］_２、ポリアミノ、アルキル、置換アルキル、放射標識マーカー、酵素、ハプテン（例えば、ビオチン）、輸送／吸収促進剤（例えば、アスピリン、葉酸）、合成リボヌクレアーゼ（例えば、イミダゾール、ビスイミダゾール、ヒスタミン、イミダゾールクラスター、アクリジン−イミダゾール結合体）、テトラアザ大環状分子のＥｕ３＋複合体、ジニトロフェニル、ＨＲＰまたはＡＰが含まれる。

リガンドは、例えば、細胞骨格を破壊することによって、例えば、細胞の微小管、微小繊維および／または中間径繊維を破壊することによって、細胞へのｉＲＮＡ薬剤の取り込みを増加させることができる物質、例えば、薬剤であり得る。この薬剤は、例えば、タキソン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、サイトカラシン、ノコダゾール、ジャプラキノリド（ｊａｐｌａｋｉｎｏｌｉｄｅ）、ラトランクリンＡ、ファロイジン、スウィンホライドＡ、インダノシンまたはミオセルビン（ｍｙｏｓｅｒｖｉｎ）であり得る。

リガンドは、例えば、炎症応答を活性化することによって細胞内へのｉＲＮＡ薬剤の取り込みを増加させることができる。このような効果を有するリガンドの例には、腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦアルファ）、インターロイキン−１ベータ、またはガンマインターフェロンが含まれる。

一態様では、リガンドは脂質または脂質をベースにした分子である。このような脂質または脂質をベースにした分子は、血清タンパク質、例えば、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）に結合することが好ましい。ＨＳＡ結合リガンドは、標的組織、例えば、肝臓の実質細胞を含めた肝組織との結合体の分布を可能にする。ＨＳＡに結合できるその他の分子もリガンドとして使用できる。例えば、ネプロキシン（ｎｅｐｒｏｘｉｎ）またはアスピリンを使用できる。脂質または脂質をベースにしたリガンドは、（ａ）結合体の分解に対する抵抗性を増強し、（ｂ）標的細胞または細胞膜への標的化または輸送を増強し、および／または（ｃ）血清タンパク質、例えば、ＨＳＡへの結合を調節するために使用することができる。

脂質をベースにしたリガンドは、標的組織に対する結合体の結合を調節するために、例えば、制御するために使用され得る。例えば、ＨＳＡに一層強力に結合する脂質または脂質をベースにしたリガンドは、腎臓を標的とする傾向が少なく、したがって、身体から排出される傾向が低い。ＨＳＡにあまり強く結合しない脂質または脂質をベースにしたリガンドは、結合体を腎臓に対する標的とするために使用することができる。

好ましい実施形態では、脂質をベースにしたリガンドはＨＳＡに結合する。これは、結合体が好ましくは腎臓以外の組織に分布するような十分な親和性で同ＨＳＡに結合することが好ましい。しかしながら、この親和性はＨＳＡリガンドの結合が離れることできないほど強力ではないことが好ましい。

他の態様では、リガンドは、標的細胞によって、例えば増殖細胞によって取り込まれる部分、例えば、ビタミンまたは栄養素である。これらは、例えば、悪性型または非悪性型の、例えば、癌細胞の、望ましくない細胞増殖を特徴とする障害を治療するために特に有用である。ビタミンの例には、ビタミンＡ、ＥおよびＫが含まれる。その他のビタミンの例は、ビタミンＢ群、例えば、葉酸、Ｂ１２、リボフラビン、ビオチン、ピリドキサールまたは癌細胞によって取り込まれるその他のビタミンもしくは栄養素である。

他の態様では、リガンドは、細胞透過性薬剤、好ましくはヘリックス細胞透過性薬剤である。この薬剤は両親媒性であることが好ましい。薬剤の例は、ｔａｔまたはアンテナペディアなどのペプチドである。この薬剤がペプチドの場合、修飾可能であり、ペプチジル模倣体、反転異性体（ｉｎｖｅｒｔｏｍｅｒ）、非ペプチドまたは偽ペプチド結合が含まれ、Ｄアミノ酸も使用できる。ヘリックス剤は、親油性相および疎油性相を有するアルファヘリックス剤であることが好ましい。

糖、例えば、ガラクトースおよび／またはそれらの類似体を取り込む標的化剤は特に有用である。これらの薬剤は、特に、肝臓の実質細胞を標的とする。例えば、標的化部分は、互いに約１５オングストロームの間隔がある複数の、好ましくは２個または３個のガラクトース部分を含み得る。あるいは、標的化部分は、ガラクトースに結合したグルコースであるラクトース（例えば、３個のラクトース部分）であり得る。標的化部分はまた、Ｎ−アセチル−ガラクトサミン、Ｎ−Ａｃ−グルコサミン、多価ラクトース、多価ガラクトース、多価マンノースまたは多価フコースであり得る。マンノースまたはマンノース−６−リン酸標的化部分は、マクロファージ標的化に使用することができる。
（５’−リン酸修飾）
好ましい実施形態では、ｉＲＮＡ薬剤は、５’がリン酸化されているか、または５’プライム末端にホスホリル類似体を含む。アンチセンス鎖の５’−リン酸修飾には、ＲＩＳＣ媒介遺伝子サイレンシングに適合したものが含まれる。適切な修飾には、５’−モノホスファート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ−Ｏ−５’）；５’−ジホスファート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ−Ｏ−Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）−Ｏ−５’）；５’−トリホスファート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ−Ｏ−（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ−Ｏ−Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）−Ｏ−５’）；５’−グアノシンキャップ（７−メチル化または非メチル化）（７ｍ−Ｇ−Ｏ−５’−（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ−Ｏ−（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ−Ｏ−Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）−Ｏ−５’）；５’−アデノシンキャップ（Ａｐｐｐ）、および任意の修飾または非修飾ヌクレオチドキャップ構造（Ｎ−Ｏ−５’−（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ−Ｏ−（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ−Ｏ−Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）−Ｏ−５’）；５’−モノチオホスファート（ホスホロチオエート；（ＨＯ）２（Ｓ）Ｐ−Ｏ−５’）；５’−モノジチオホスファート（ホスホロジチオエート；（ＨＯ）（ＨＳ）（Ｓ）Ｐ−Ｏ−５’）、５’−ホスホロチオラート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ−Ｓ−５’）；酸素／硫黄で置換されたモノホスファート、ジホスファートおよびトリホスファートの任意の更なる組み合わせ（例えば、５’−アルファ−チオトリホスファート、５’−ガンマ−チオトリホスファートなど）、５’−ホスホロアミデート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ−ＮＨ−５’、（ＨＯ）（ＮＨ２）（Ｏ）Ｐ−Ｏ−５’）、５’−アルキルホスホネート（Ｒ＝アルキル＝メチル、エチル、イソプロピル、プロピルなど、例えば、ＲＰ（ＯＨ）（Ｏ）−Ｏ−５’−、（ＯＨ）２（Ｏ）Ｐ−５’−ＣＨ２−）、５’−アルキルエーテルホスホネート（Ｒ＝アルキルエーテル＝メトキシメチル（ＭｅＯＣＨ２−）、エトキシメチル、など、例えば、ＲＰ（ＯＨ）（Ｏ）−Ｏ−５’−）が含まれる。

センス鎖は、同センス鎖を不活性化し、活性型ＲＩＳＣの形成を阻止し、それによって標的外効果を潜在的に減少させるために修飾され得る。これは、センス鎖の５’−リン酸化を阻止する修飾によって、例えば、５’−Ｏ−メチルリボヌクレオチドで修飾することによって実現することができる（ニカネン（Ｎｙｋａｅｎｅｎ）ら、２００１年、「ＡＴＰ ｒｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔｓ ａｎｄ ｓｍａｌｌ ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ ＲＮＡ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｉｎ ｔｈｅ ＲＮＡ ｉｎｔｅｒｆｅｒｅｎｃｅ ｐａｔｈｗａｙ．」Ｃｅｌｌ、第１０７巻、３０９〜３２１頁を参照のこと）。リン酸化を阻止するその他の修飾、例えば、Ｏ−ＭｅよりもＨによる５’−ＯＨの簡単な置換も使用され得る。代替的に、大きな嵩高い基を５’−リン酸塩に添加して、ホスホジエステル結合に変更してもよい。
（ｉＲＮＡ薬剤の細胞への輸送）
理論に結びつけることは望まないが、コレステロール結合ｉＲＮＡ薬剤とリポタンパク質のある種の成分（例えば、コレステロール、コレステリルエステル、リン脂質）との間の化学的類似性は、ｉＲＮＡ薬剤と血液中のリポタンパク質（例えば、ＬＤＬ、ＨＤＬ）との結合および／またはｉＲＮＡ薬剤とコレステロールに親和性を有する細胞成分、例えば、コレステロール輸送経路の成分との相互作用を引き起こす可能性がある。リポタンパク質ならびにその成分は、細胞によって、様々な能動的および受動的輸送機構によって、例えば、限定はしないが、ＬＤＬ受容体結合ＬＤＬのエンドサイトーシス、酸化された、もしくはその他の修飾をされたＬＤＬのスカベンジャー受容体Ａとの相互作用によるエンドサイトーシス、肝臓におけるＨＤＬコレステロールのスカベンジャー受容体Ｂ１の媒介による取り込み、ピノサイトーシスまたはＡＢＣ（ＡＴＰ結合カセット）輸送タンパク質、例えば、ＡＢＣ−Ａ１、ＡＢＣ−Ｇ１もしくはＡＢＣ−Ｇ４によるコレステロールの膜通過輸送によって取り込まれ、処理される。したがって、コレステロール結合ｉＲＮＡ薬剤は、このような輸送機構を有する細胞、例えば、肝臓の細胞による取り込みの促進を受けることができた。このように、本発明は、このような成分（例えば、コレステロール）の天然リガンドをｉＲＮＡ薬剤に結合させるか、またはこの成分（例えば、ＬＤＬ、ＨＤＬ）の天然リガンドと関連する、もしくは結合するｉＲＮＡ薬剤に化学的部分（例えば、コレステロール）を結合させることによって、ある種の細胞表面成分、例えば、受容体を発現する細胞にｉＲＮＡ薬剤を標的化させる証拠および一般的方法を提供する。
（４ その他の実施形態）
ＲＮＡ、例えば、ｉＲＮＡ薬剤は、インビボにおいて、例えば、細胞に送達された外来ＤＮＡ鋳型から細胞内で産生され得る。例えば、このＤＮＡ鋳型は、ベクターに挿入され、遺伝子治療ベクターとして使用され得る。遺伝子治療ベクターは、例えば、静脈注射、局所投与によって（米国特許第５３２８４７０号）、または定位注射によって（例えば、チェン（Ｃｈｅｎ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ、ＵＳＡ、第９１巻、３０５４〜３０５７頁、１９９４年）対象に送達され得る。遺伝子治療ベクターの医薬調製物は、許容できる希釈剤中に遺伝子治療ベクターを含むことができ、または遺伝子送達担体が包埋された徐放性マトリックスを含み得る。ＤＮＡ鋳型は、例えば、２個の転写単位を含むことができ、一方はｉＲＮＡ薬剤の上鎖を含む転写物を生成し、他方はｉＲＮＡ薬剤の下鎖を含む転写物を生成する。この鋳型が転写されたとき、ｉＲＮＡ薬剤が生成され、遺伝子サイレンシングを媒介するｓｉＲＮＡ薬剤断片に処理される。
（５ 製剤）
本明細書で説明したｉＲＮＡは、対象に投与するために製剤化することができる。

説明を容易にするために、この項における製剤、組成物および方法は、ほとんどは無修飾ｉＲＮＡ薬剤に関して論じる。しかしながら、これらの製剤、組成物および方法は、その他のｉＲＮＡ薬剤、例えば、修飾ｉＲＮＡ薬剤で実施することができ、このような実施は本発明の範囲内であることを理解されたい。

製剤化されたｉＲＮＡ薬剤組成物は、様々な状態をとることができる。いくつかの例では、この組成物は少なくとも部分的な結晶、均一な結晶、および／または無水物（例えば、水分が８０、５０、３０、２０または１０％未満）である。他の例では、ｉＲＮＡ薬剤は水相、例えば、水を含む溶液に含まれている。

水相または結晶組成物を、例えば、送達媒体、例えば、リポソーム（特に水相用）または粒子（例えば、結晶組成物に適し得る微粒子）に取り込むことができる。一般的に、ｉＲＮＡ薬剤組成物は、企図した投与方法に適合する方法で製剤化される。

ｉＲＮＡ薬剤調製物は、他の薬剤、例えば、他の治療剤またはｉＲＮＡ薬剤を安定化する薬剤、例えば、ｉＲＮＰを形成するためにｉＲＮＡ薬剤と複合体化するタンパク質と、組み合わせて、製剤化することができる。さらに他の薬剤には、キレート剤、例えば、ＥＤＴＡ（例えば、Ｍｇ^２＋などの２価陽イオンを除去するため）、塩、ＲＮアーゼ阻害剤（例えば、ＲＮＡｓｉｎなどの特異性の広いＲＮアーゼ阻害剤）などが含まれる。

一実施形態では、ｉＲＮＡ薬剤調製物には、２個以上のｉＲＮＡ薬剤（類）、例えば、同一遺伝子もしくは遺伝子の異なる対立遺伝子に関して、または異なる遺伝子に関してＲＮＡｉを媒介することができる２個以上のｉＲＮＡが含まれる。このような調製物には、少なくとも３個、５個、１０個、２０個、５０個または１００個以上の異なるｉＲＮＡ薬剤種を含めることができる。このようなｉＲＮＡ薬剤は、同数の異なる遺伝子に関してＲＮＡｉを媒介することができる。

このような調製物中の２個以上のｉＲＮＡが同一遺伝子を標的とする場合、この標的配列は重複も隣接もしていない標的配列を有すること可能で、あるいはこの標的配列は重複していても隣接していてもよい。
（６ Ｂｒｃ−Ａｂｌ融合発現に関連した障害）
Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合物を標的とするｉＲＮＡ薬剤、例えば、本明細書で説明したｉＲＮＡ薬剤は、対象、例えば、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子発現に関連した疾患または障害、例えば、望ましくない細胞増殖もしくは癌、またはより具体的には白血病を発症しているヒト又はその危険性のあるヒトを治療するために使用することができる。

例えば、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合ｍＲＮＡを標的とするｉＲＮＡ薬剤は、望ましくない細胞増殖に関連した障害、例えば、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、または急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）などの白血病を治療するために使用され得る。この対象は、細胞増殖抑制性または細胞障害性の薬剤で現在治療されている対象、過去に細胞増殖抑制性または細胞障害性の薬剤で治療されたことのある対象、または細胞増殖抑制性または細胞障害性の薬剤での治療に適さない対象であることが可能である。
（７ 治療方法および送達経路）
ｉＲＮＡ薬剤、例えば、Ｂｃｒ−Ａｂｌ融合物を標的とするｉＲＮＡ薬剤を含む組成物は、様々な経路によって対象に送達することができる。例示的な経路には、クモ膜下、実質、静脈内、経鼻、経口および眼内送達が含まれる。本発明のｉＲＮＡ薬剤を投与する好ましい手段は、非経口投与によるものである。

ｉＲＮＡ薬剤は、投与に適した医薬組成物に取り込むことができる。例えば、組成物は、１種または複数種のｉＲＮＡ薬剤および薬学的に許容される担体を含むことができる。本明細書では、「薬学的に許容される担体」という用語は、医薬品投与に適合した任意の、およびすべての溶媒、分散媒、コーティング剤、抗菌剤および抗真菌剤、等張化剤及び吸収遅延剤などを含むものとする。薬学的に活性のある物質のためにこのような媒体および作用物質を使用することは、当該技術分野では周知である。従来の媒体または作用物質が活性化合物に不適合である場合を除いて、それらは組成物に使用されるものとする。補充的な活性化合物もこの組成物に組み入れることができる。

本発明の医薬品組成物は、局所治療または全身治療が望ましいかどうかに応じて、および治療する部位に応じていくつかの方法で投与することが可能である。投与は、局所投与（眼内、経鼻、経皮を含む）、経口投与又は非経口投与であり得る。非経口投与には、静脈点滴、皮下、腹腔内もしくは筋肉内注射、またはクモ膜下腔内もしくは心室内投与が含まれる。

送達の経路は、患者の障害に応じて変更され得る。一般的に、本発明のｉＲＮＡの送達は、対象への全身送達を実現するために実施される。これを実現する好ましい手段は、非経口投与による。

非経口投与用製剤には、緩衝剤、希釈剤およびその他の適切な添加物も含有できる滅菌水性溶液が含まれる。静脈内での使用では、溶質の総濃度は、調製物を等張にするために制御されるべきである。

投与は、対象によって提供され得るか、または例えば治療奉仕者のような別の人によって提供され得る。治療奉仕者は、人に治療を提供することに関与する任意の存在、例えば、病院、ホスピス、診療所、外来患者向け診療所で医療に従事する人、例えば、医者、看護師もしくはその他の専門家などの医療従事者、または配偶者または親などの保護者であり得る。投薬は、測定された用量で、または計測された用量を送達する分配器で提供され得る。

「治療有効量」という用語は、望ましい生理学的応答をもたらすために、治療する対象において所望するレベルの薬剤を提供するのに必要な、組成物中に存在する量のことである。

「生理学的有効量」という用語は、所望とする緩和または治療的効果を与えるために対象に送達される量である。
「薬学的に許容される担体」という用語は、その担体が肺に著しく有害な毒性効果を与えず肺に取り込まれることが可能であることを意味する。

「共投与」という用語は、２種以上の薬剤、特に２種以上のｉＲＮＡ薬剤を対象に投与することである。薬剤は、単一の医薬組成物に含有され、同時に投与され得るか、または薬剤は別々の製剤に含有され、順番に対象に投与され得る。２種の薬剤が同時に対象にて検出されることができる限り、２種の薬剤は共投与されたと言える。

担体として有用な医薬賦形剤の種類には、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）などの安定化剤、炭水化物、アミノ酸およびポリペプチドなどの賦形剤、ｐＨ調整剤または緩衝剤；塩化ナトリウムなどの塩などがある。これらの担体は、結晶形であっても、アモルファス形であってもよく、２つの混合物であってもよい。

特に有用である賦形剤には、適合性のある炭水化物、ポリペプチド、アミノ酸またはそれらの組合せが含まれる。適切な炭水化物には、ガラクトース、Ｄ−マンノース、ソルボースなどの単糖類、ラクトース、トレハロースなどの二糖類、２−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリンなどのシクロデキストリン、およびラフィノース、マルトデキストリン、デキストランなどの多糖類、マンニトール、キシリトールなどのアルジトール類が含まれる。好ましい炭水化物群には、ラクトース、トレハロース、ラフィノース、マルトデキストリンおよびマンニトールが含まれる。適切なポリペプチドには、アスパルテームが含まれる。アミノ酸には、アラニンおよびグリシンが含まれ、グリシンが好ましい。

適切なＰＨ調整剤または緩衝剤には、クエン酸ナトリウム、アスコルビン酸ナトリウムなどの有機酸および塩基から調製された有機塩が含まれ、クエン酸ナトリウムが好ましい。

投与量。ｉＲＮＡ薬剤は、体重１ｋｇ当たり約７５ｍｇ未満、または体重１ｋｇ当たり約７０、６０、５０、４０、３０、２０、１０、５、２、１、０．５、０．１、０．０５、０．０１、０．００５、０．００１または０．０００５ｍｇ未満の単位用量で、および体重１ｋｇ当たりｉＲＮＡ薬剤２００ｎｍｏｌ未満（例えば、約４．４×１０^１６コピー）の単位用量で、または体重１ｋｇ当たりｉＲＮＡ薬剤１５００、７５０、３００、１５０、７５、１５、７．５、１．５、０．７５、０．１５、０．０７５、０．０１５、０．００７５、０．００１５、０．０００７５、０．０００１５ｎｍｏｌ未満の単位用量で投与され得る。例えば、この単位用量は、注射（例えば、静脈内もしくは筋肉内注射、クモ膜下注射、または臓器への直接注射）によって、吸入投与、または局所塗布によって投与され得る。

臓器へ直接（例えば、肝臓に直接）ｉＲＮＡ薬剤を送達することは、臓器当たり約０．００００１ｍｇ〜約３ｍｇ、または好ましくは臓器当たり約０．０００１〜約０．００１ｍｇ、臓器当たり約０．０３〜３．０ｍｇ、眼当たり約０．１〜３．０ｍｇまたは臓器当たり約０．３〜３．０ｍｇの程度の投与量であり得る。

投与量は、疾患または障害を治療または予防するのに有効な量であり得る。
一実施形態では、単位用量を１日１回より少ない頻度で、例えば、２日、４日、８日または３０日毎に１回より少ない頻度で投与する。他の実施形態では、単位用量は一定頻度（例えば、規則正しい頻度）では投与されない。例えば、単位用量を１回で投与することが可能である。ｉＲＮＡ薬剤が媒介するサイレンシングは、ｉＲＮＡ薬剤組成物を投与した後、数日間維持され得るので、多くの場合、１日１回より少ない頻度で、場合によっては全治量期間中１回のみ組成物を投与することが可能である。

一実施形態では、例えば、２本鎖ｉＲＮＡ薬剤、またはｓｉＲＮＡ薬剤（例えば、前駆体、例えば、ｓｉＲＮＡ薬剤中に処理されることができるより大きなｉＲＮＡ薬剤、またはｉＲＮＡ薬剤、例えば、２本鎖ｉＲＮＡ薬剤、もしくはｓｉＲＮＡ薬剤、もしくはそれらの前駆体をコードするＤＮＡ）の初回量および１回または複数の維持用量が対象に投与される。一回又は複数回の維持用量は、一般的に初回量よりも少なく、例えば、初回量の２分の１少ない。維持治療計画は、１日当たり体重１ｋｇに対して０．０１〜７５ｍｇの範囲、例えば、１日当たり体重１ｋｇに対して７０、６０、５０、４０、３０、２０、１０、５、２、１、０．５、０．１、０．０５、０．０１、０．００５、０．００１または０．０００５ｍｇの一回又は複数回の用量で対象を治療することを含み得る。維持用量は、５、１０または３０日毎に１回以下投与することが好ましい。さらに、治療計画は、特定の疾患の性質、重症度および患者の全体的状態に応じて変化し得る期間の間、維持され得る。好ましい実施形態では、投与量は１日１回以下、例えば、２４、３６、４８時間以上に１回以下、例えば、５日または８日毎に１回以下にて送達され得る。処置後、患者の状態の変化および疾患状態の徴候の軽減をモニタリングすることができる。化合物の投与量は、患者が現在の用量レベルに有意に応答しない場合増加させることができ、あるいは疾患状態の徴候の軽減が認められた場合、疾患状態が消失した場合、または望ましくない副作用が認められた場合、用量を減少させることができる。

効果的な用量は、特定の環境下で所望するように、または適切だと考えられるように、単回投与で、または２回以上の投与で投与することができる。反復注入又は頻繁な注入を促進することが望ましい場合、送達装置、例えば、ポンプ、半永久的ステント（例えば、静脈内、腹腔内、嚢内または関節包内）またはリザーバを埋め込むことが適切であり得る。

処理が成功した後、疾患状態の再発を防ぐために、本発明の化合物を体重１ｋｇ当たり０．００１ｇ〜１００ｇの範囲の維持用量で投与する維持治療を患者に受けさせることが望ましい（米国特許第６１０７０９４号）。

ｉＲＮＡ薬剤組成物の濃度は、障害を治療もしくは予防するのに有効であるか、またはヒトの生理学的状態を調節するために十分な量である。投与するｉＲＮＡの薬剤の濃度または量は、薬剤について測定されたパラメータ、および経鼻、頬側または肺投与などの投与方法に依存される。例えば、経鼻用製剤は、鼻孔の刺激または灼熱感を回避するために、いくつかの成分をはるかに低い濃度にしなければならない傾向がある。適切な経鼻用製剤を提供するために、経口用製剤を１０〜１００倍希釈することが時として望ましい。

非限定的ではあるが、疾患もしくは障害の重症度、以前の治療法、対象の一般的健康状態および／または年齢、その他の既存の疾患を含めたある種の因子が、対象を効果的に治療するために必要な投与量に影響を及ぼし得る。治療に使用するｓｉＲＮＡなどのｉＲＮＡ薬剤の効果的投与量は、特定の治療の期間中、増加または減少し得ることも理解されたい。投与量の変化は、診断試験法の結果から得られ、明らかとなり得る。例えば、ｉＲＮＡ薬剤組成物投与後に対象をモニタリングすることができる。モニタリングからの情報に基づいて、ｉＲＮＡ薬剤組成物の追加量を投与することができる。

投薬は、数日から数ヶ月続く治療期間中、または全治するまで、もしくは疾患状態の消失が実現するまで、治療する疾患状態の重症度および応答性に左右される。最適な投薬計画は、患者の身体における薬剤蓄積の測定によって作製することができる。当業者であれば、最適な投与量、投薬方法および反復率を容易に決定することができるだろう。最適な投与量は、個々の化合物の相対的能力に応じて変更可能であり、前述したようにインビトロおよびインビボ動物モデルにおいて効果的であることが発見されたＥＣ５０に基づいて一般的に判断することができる。

本発明は、以下の実施例によってさらに例示されるが、それらはさらに限定するものではない。

試薬の入手先
試薬の入手先が本明細書に具体的に挙げられていない場合、このような試薬は、分子生物学用試薬の任意の供給元から、分子生物学での適用に標準的な量／純度で入手することができる。

実施例１：ｓｉＲＮＡ合成
ｓｉＲＮＡ合成
１本鎖ＲＮＡは、Ｅｘｐｅｄｉｔｅ ８９０９合成機（アプライドバイオシステムズ、アプレラドイチュランド社（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、Ａｐｐｌｅｒａ Ｄｅｕｔｓｃｈｌａｎｄ ＧｍｂＨ）、［ドイツ国、ダルムシュタット（Ｄａｒｍｓｔａｄｔ）所在］および固相担体として微細孔性ガラス（ＣＰＧ、５００Å、グレンリサーチ社（Ｇｌｅｎ Ｒｅｓｅｒａｃｈ）、［米国バージニア州スターリング（Ｓｔａｒｌｉｎｇ）所在］）を使用して、１μｍｏｌｅのスケールで固相合成によって作製された。ＲＮＡおよび２’−Ｏ−メチルヌクレオチドを含有するＲＮＡは、それぞれ対応するホスホラミダイトおよび２’−Ｏ−メチルホスホラミダイトを使用して固相合成によって作製された（プロリゴバイオケミ社（Ｐｒｏｌｉｇｏ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｅ ＧｍｂＨ）、［ドイツ国、ハンブルク（Ｈａｍｂｕｒｇ）所在］）。これらの構成単位を、「Ｃｕｒｒｅｎｔ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ」、ボカージュ エス．エル．（Ｂｅａｕｃａｇｅ、Ｓ．Ｌ．）ら（編）、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ、Ｉｎｃ．［アメリカ合衆国ニューヨーク］に記載されたような標準的ヌクレオシドホスホラミダイト化学物質を使用してオリゴリボヌクレオチド鎖の配列内の選択部位に取り込ませた。ホスホロチオエート結合は、ヨウ素酸化剤溶液をアセトニトリル（１％）に溶解したボカージュ試薬（クルアケム社（Ｃｈｒｕａｃｈｅｍ Ｌｔｄ）［英国グラスゴー（Ｇｌａｓｇｏｗ）所在］）の溶液と置換することによって導入された。他の付随する試薬は、マリンクロットベーカー社（Ｍａｌｌｉｎｃｋｒｏｄｔ Ｂａｋｅｒ）［ドイツ国、グリサイム（Ｇｒｉｅｓｈｅｉｍ）所在］から入手した。

粗オリゴリボヌクレオチドの陰イオン交換ＨＰＬＣによる脱保護および精製は、確立された方法に従って実施された。収率および濃度は、分光光度計（ＤＵ ６４０Ｂ、ベックマンコールター社（Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ ＧｍｂＨ）、［ドイツ国、アンターシュリースハイム（Ｕｎｔｅｒｓｃｈｌｉｅβｈｅｉｍ）所在］）を使用して、波長２６０ｎｍでそれぞれのＲＮＡの溶液のＵＶ吸収によって測定した。２本鎖ＲＮＡは、アニーリング緩衝液（２０ｍＭのリン酸ナトリウム、ｐＨ６．８、１００ｍＭの塩化ナトリウム）中において相補鎖の等モル溶液を混合し、８５〜９０℃の水浴中で３分間加熱し、３〜４時間かけて室温まで冷却することによって作製した。精製したＲＮＡ溶液を使用するまで−２０℃で保存した。

実施例２：Ｂｃｒ−Ａｂｌ切断点変種を発現する細胞におけるＢｃｒ−Ａｂｌ発現の阻害
核酸配列は、標準的名称、具体的には表２の略語を使用して以下に表した。

表３に、合成されたＢｃｒ−Ａｂｌ融合体変種Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２およびＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２に特異的なｓｉＲＮＡの核酸配列を挙げる。

Ｂｃｒ−ＡｂｌｍＲＮＡのＢｃｒおよびＡｂｌ配列の正確な融合部位は、白血病特異的ヌクレオチド配列を示す。疾患特異的タンパク質をコードするこのような融合転写物は、腫瘍特異的ＲＮＡｉ法の理想的な標的である。本研究の目的は、最適なインビトロＢｃｒ−Ａｂｌ ＲＮＡｉ法を開発することであった。したがって、いくつかの化学合成非対称ｓｉＲＮＡ、ならびに臨床的に関係のあるＢｃｒ−Ａｂｌ転写物変種（ｅ１４ａ２、ｅ１３ａ２またはｅ１ａ２）の融合部位を標的とする安定発現ｓｈＲＮＡを評価した。ＲＮＡｉ効率は、主にＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルのウェスタンブロット分析および処理細胞の白血病増殖に対する影響の評価によって測定した。

この研究の結果は、化学合成された２１ｎｔ（センス鎖）−２３ｎｔ（アンチセンス鎖）ｓｉＲＮＡで２４時間間隔で繰り返しトランスフェクションすると、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質の下方制御および細胞死の誘導の両方においてより効果的であった。３２Ｄｐ２１０／ｅ１４ａ２をＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２特異的ｓｉＲＮＡであるＢＡＦ７で１回処理すると、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい減少が生じ、その後３２Ｄｐ２１０／ｅ１４ａ２細胞の生存率がエレクトロポレーション対照細胞（ＥＰＣ、１００％）と比較して約５９％に減少した。対照的に、ＢＡＦ７で細胞を４回連続的に処理すると、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質の量が検出限界まで減少し、生存能力の実質的な損失が引き起こされた。最後の処理の４８時間後の総細胞数の測定によって同様の結論に達した。ミスマッチ対照ｓｉＲＮＡ（ＢＡＦ８）でトランスフェクションした細胞の数は、４８時間以内に２．５Ｍｉｏの細胞から２５Ｍｉｏの細胞を上回るまで増加した一方で、ＢＡＦ７の１回トランスフェクションは増殖を約４０％減少させるのに十分で、Ｂｃｒ−Ａｂｌ特異的ＢＡＦ７ｓｉＲＮＡで４回処理を繰り返すと、細胞数増加の９０％以上の阻害が生じた。

曝露を延長するとｓｉＲＮＡの効率が著しく増加するという所見は、Ｂｃｒ−Ａｂｌの長い半減期によって少なくとも部分的に説明され得る。例えば、スピラー（Ｓｐｉｌｌｅｒ）およびその共同研究者（スピラー ディージー（Ｓｐｉｌｌｅｒ ＤＧ）ら、Ａｎｔｉｓｅｓｅ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖ．、１９９８年、第８巻２８１頁）は、ヒトＫＹＯ−１細胞におけるｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１３ａ２）の半減期が４８時間を上回ることを測定した。標的タンパク質の半減期は、従来のアンチセンス、（ａｓ）−オリゴデスオキシヌクレオチド（ＯＤＮ）の効果に重要であることが示された。ｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（Ｅ１３ａ２）タンパク質レベルは、ｍＲＮＡレベルが早期の時点で実質的に減少していても、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２ｍＲＮＡを標的とするａｓ−ＯＤＮでの処理によって影響を受けなかった。第２に、哺乳類細胞で実現されたｓｉＲＮＡの標的遺伝子下方制御効果は、一般的に一時的である（概説についてはミタール ブイ（Ｍｉｔｔａｌ Ｖ）、Ｎａｔ Ｒｅｖ Ｇｅｎｅｔ．、２００４年、第５巻、３５５頁）。したがって、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルは、この研究で使用した細胞株をｓｉＲＮＡで最後に処理してから４８時間以内に回復した。しかしながら、本研究の結果は、化学合成ｓｉＲＮＡによって２４時間間隔で繰り返し処理することによって、または安定なｓｈＲＮＡ発現によって、この限界を克服できることを示している。この最適な方法によって、実現したＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの減少は８６％までであり、９６％までの生存率の低下を伴っていた。

Ｂｃｒ−ＡｂｌのＲＮＡｉ依存性不活性化がＢｃｒ−Ａｂｌ発現細胞の臨床治療薬への感作を導くかどうかを評価するために、３２Ｄｐ２１０／ｅ１４ａ２細胞をａｎｔｉ−Ｂｃｒ−ＡｂｌｓｉＲＮＡで繰り返し処理した後、イマチニブおよびγ線照射に対する感受性を測定した。Ｂｃｒ−Ａｂｌ発現への影響によって、γ線照射およびイマチニブメシレートの両方に対する細胞の感受性を高めることが可能であることを示すことができた。

５０％細胞死滅を引き起こすγ線照射線量は、Ｂｃｒ−Ａｂｌ相同体ｓｉＲＮＡで処理された３２Ｄｐ２１０／ｅ１４ａ２細胞では２．５Ｇｙであったが、一方、ミスマッチ対照で処理された細胞は約２．５倍高い用量（６Ｇｙ）に耐性であった。Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質の量によっても、イマチニブメシレートに対するこれらの細胞の感受性は測定された。ｓｉＲＮＡでＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルを減少させた後では、３２Ｄｐ２１０／ｅ１４ａ２細胞において、対照と比較して、イマチニブメシレートのＩＣ５０の３．４倍の減少が認められた。この現象はまた、ヒトＭ０７ｐ２１０／ｅ１４ａ２細胞で認められた。イマチニブメシレート０．０５μＭはＢＡＦ７処理細胞においてアポトーシスの著しい誘導をもたらし、一方同濃度ではエレクトロポレーション対照細胞にはそれほど影響を及ぼさなかった。

これらの結果は、Ｋ５６２細胞においてイマチニブメシレートとＢｃｒ−Ａｂｌ特異的ｓｉＲＮＡ薬剤とで一緒に処理しても、アポトーシスの誘導にそれ以上の効果は認められなかったという以前に公表されたデータ（非特許文献１０）のいくつかと矛盾している。前述の非特許文献１０によって使用されたＫ５６２細胞は、イマチニブメシレート単独で４８時間処理した後８％しかアポトーシスを受けなかったという事実から明らかなように、イマチニブメシレートに対して非常に高いレベルの耐性を示した。このような高耐性細胞系は、その他の潜在的阻害剤による他の可能性のある効果を評価するために不十分である。対照的に、我々の発見を支持する結果が、チェン（Ｃｈｅｎ）およびその共同研究者によって最近発行され（非特許文献１６）、ＲＮＡ干渉による融合タンパク質ＴＥＬ−ＰＤＧＦβＲの下方制御は、イマチニブメシレートおよびラパマイシンについてＴＥＬ−ＰＤＧＦβＲ発現細胞を感作し、したがって薬剤耐性に拮抗することが示された。切断点特異的ｓｉＲＮＡはいずれかの側の切断点と重複しなければならないので、約１０個の異なる潜在的ｓｉＲＮＡ配列のうち限られた数のみを融合配列のＲＮＡｉ特異的サイレンシング用に選択することができる。

さらに、ｓｉＲＮＡ処理は、イマチニブ耐性を与えられたＢｃｒ−Ａｂｌ変種Ｈ３９６Ｐを発現する細胞においてイマチニブ感受性を回復した。イマチニブに初応答後、再発した白血病患者で見いだされたイマチニブ耐性を引き起こすＢｃｒ−Ａｂｌ変種の２種は、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−Ｔ３１５ＩおよびＢｃｒ−Ａｂｌ−Ｈ３９６Ｐである。これらのタンパク質は、Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｗｔ）と比較して、キナーゼドメインにおける１個のアミノ酸変化を示し、イマチニブに接近しにくくなっている。したがって、３２Ｄ細胞におけるＢｃｒ−Ａｂｌ−Ｔ３１５Ｉの発現は、イマチニブメシレートに対する完全な耐性をもたらし、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−Ｈ３９６Ｐの発現は、３２Ｄｐ２１０−ｗｔと比較したとき、イマチニブメシレートに対してそれぞれの細胞の感受性を約４．７倍低下させた。ｓｉＲＮＡ処理によって、３種の細胞株すべてにおいてＢｃｒ−Ａｂｌの著しい下方制御が引き起こされた。ｓｉＲＮＡ薬剤を使用するこのＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの下方制御は、イマチニブメシレートに対する３２Ｄｐ２１０ｗｔでは３．４倍の感作および３２Ｄｐ２１０−Ｈ３９６Ｐでは４倍の感作を引き起こした。対照的に、イマチニブメシレートに対する耐性が高い３２Ｄｐ２１０−Ｔ３１５Ｉ細胞のイマチニブメシレート感受性は、おそらく、非特許文献１０によって観察されたような著しい効果の欠如について前記と同様の理由のため、ｓｉＲＮＡ処置によってあまり影響を受けなかった。さらに、コービン（Ｃｏｒｂｉｎ）らは、Ｔ３１５Ｉ変異Ａｂｌキナーゼドメインは、ＷＴキナーゼのＩＣ５０値よりも２００倍高いイマチニブ濃度でもあまり阻害を示さなかったことを示し、野生型タンパク質に対してＡＴＰ親和性が２倍増加していることも示した（コービン エイ エス（Ｃｏｒｂｉｎ ＡＳ）、ブフダンガー イー（Ｂｕｃｈｄｕｎｇｅｒ Ｅ）、ヒューレ ピー（Ｆｕｒｅｔ Ｐ）、ドラカー ビー ジェー（Ｄｒｕｋｅｒ ＢＪ）、「Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ Ａｂｌ ｋｉｎａｓｅ ｂｙ ＳＴＩ５７１」、Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ、２００１年、第２７７巻、３２２１４〜９頁）。前述：３２Ｄｐ２１０Ｔ３１５Ｉにおけるイマチニブ処理の効果自体は、ｓｉＲＮＡ処理によって媒介されるイマチニブ感受性の増加を観察するには小さすぎる。

生理学的なｃ−ＡｂｌおよびＢｃｒ遺伝子発現の同時下方制御を導く任意の標的外へのｓｉＲＮＡ効果は、本研究では除外された。ＲＮＡｉ効果の高い特異性は、ｓｉＲＮＡ配列に１カ所変異があってもｓｉＲＮＡ効果の著しい損失が引き起こされたという事実によって確認された。また、切断点変種ｅ１３ａ２およびｅ１４ａ２を標的とするｓｉＲＮＡは、それぞれの標的ＲＮＡだけでなく、同じａ２部分を有するその他の切断点変種にも影響を及ぼした。このことは、転座から生じる融合遺伝子がＲＮＡｉの特異的な標的となるという見解を強く支持する。それでも、ｓｉＲＮＡ分子の効果を予測することは困難と思われる。本研究で使用した様々なｓｉＲＮＡの標的領域は、かなりの重複を示した。さらに、ｓｉＲＮＡ効果は大きく変化した。例えば、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２特異的ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ３の標的配列は、ＢＡＦ１５と比較して融合部位のＡｂｌ部分のわずか２ｎｔ下流に移動しただけである。それにもかかわらず、ＢＡＦ１５と対照的に、ＢＡＦ３には完全に効果がなかった。同様のことがＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２特異的ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ２２およびＢＡＦ２４についても言えた。ＢＡＦ２４の配列は、ＢＡＦ２２と非常に類似しており、融合転写物のＡｂｌ領域にわずか３ｎｔ移動していただけである。ＢＡＦ２２は、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２遺伝子発現を積極的にサイレンシングしたが、ＢＡＦ２４はしなかった。結局、これらの結果は、癌遺伝子融合タンパク質の切断点部位を標的とするｓｉＲＮＡの効果は予測できないことを示している。

細胞は、グルタミンおよびペニシリン／ストレプトマイシンを補充したＲＰＭＩ／１０％ＦＣＳで培養した。初代ＣＤ３４陽性細胞は、グルタミン、ペニシリン／ストレプトマイシン、２０％ＦＣＳ、組換えヒトＩＬ−３（１０ｎｇ／ｍｌ）、ヒトＧ−ＣＳＦ（２０ｎｇ／ｍｌ）およびヒトＦＬＴ３（１００ｎｇ／ｍｌ）を補充したＲＰＭＩ培地で増殖させた。

タンパク質試験：最後のｓｉＲＮＡ処理の約２４時間後、または前述のようなｐＳＵＰＥＲ ｓｉＲＮＡ発現ベクターでトランスフェクションした約９６時間後、ウェスタンブロット分析を実施した（ゲッツ エイダブリュ（Ｇｏｅｔｚ ＡＷ）ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．、２００１年、第６１巻、７６３５頁）。

生存試験：最後のｓｉＲＮＡ処理後、細胞を９６ウェルプレートに接種し、さらに約４８時間培養した。次に、細胞生存率を前述のようにＭＴＴ試験によって測定した（ファンデルキップ エイチ（Ｖａｎ ｄｅｒ Ｋｕｉｐ Ｈ）ら、Ｂｌｏｏｄ、２００１年、第９８巻、１５３２頁）。

ｓｉＲＮＡトランスフェクション：エレクトロポレーションを使用して、ｓｉＲＮＡをマウス細胞株３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２、−ｅ１３ａ２、３２Ｄｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２およびヒト白血病細胞株ＭＥＧ−０１にトランスフェクションした。細胞密度は、ＲＰＭＩ／１０％ＦＣＳで２．５〜５×１０^６／ｍｌに調整した。この細胞懸濁液８００μｌを４ｍｍエレクトロポレーションキュベット内でｓｉＲＮＡと混合した。細胞は、イージージェクト（ＥａｓｙＪｅｃｔ）エレクトロポレータ（ペクラボ社（ｐｅｑｌａｂ）［ドイツ国、エアランゲン（ｅｒｌａｎｇｅｎ）所在］によって、シングルパルス法（２５０Ｖ、１８００μＦ、８）を使用してエレクトロポレーションした。この処理を、指示したように２４時間間隔で繰り返した。

使用した細胞株すべてが、Ｂｃｒ−Ａｂｌの活性に厳密な依存性を示す。３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２、−ｅ１３ａ２および３２Ｄｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２では、Ｂｃｒ−Ａｂｌの阻害は培地に外来性増殖因子を添加することによって補うことができる。したがって、組換えマウスＩＬ−３（１ｎｇ／ｍｌ）をこれらの細胞株のｓｉＲＮＡ処理中に増殖培地に添加した。最後のｓｉＲＮＡ処理の後、細胞を洗浄し、様々な試験操作（ウェスタンブロット／ＭＴＴ）を開始する前に因子を除去した。

ｓｉＲＮＡ分子をヒトＫ５６２細胞にトランスフェクションするために、リポフェクタミンＴＭ２０００（インビトロゲン社（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）［カールスルーエ（Ｋａｒｌｓｒｕｈｅ）所在］）を使用した。１．５Ｍｉｏの細胞を６ウェルプレートのＲＰＭＩ／１０％ＦＣＳ ｗ／ｏ抗生物質１．５ｍｌに接種した。各ウェルに、ＯＰＴＩ−ＭＥＭ Ｉ還元血清培地（ギブコ社（Ｇｉｂｃｏ）［カールスルーエ（Ｋａｒｌｓｒｕｈｅ）所在］）に溶かしたｓｉＲＮＡ８．４μｇおよびリポフェクタミン２１μｌを含有するトランスフェクション溶液５００μｌを調製した。細胞をトランスフェクション溶液と共に５時間インキュベートし、次いでこの培地をペニシリン／ストレプトマイシンを補充したＲＰＭＩ／１０％ＦＣＳと交換した。数回処理する際、細胞数は処理して約２４時間後に計数し、１Ｍｉｏ／ｍｌまで希釈し、６ウェルプレートに再度接種した（ウェル当たり細胞懸濁液１．５ｍｌ）。次いで、トランスフェクションは前日のように正確に繰り返した。

これらのヒトＢｃｒ−Ａｂｌ融合切断点変種のそれぞれをサイレンシングするｓｉＲＮＡの効果を研究するために、ｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１４ａ２）、ｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１３ａ２）またはｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１ａ２）のいずれかを発現する３種の３２Ｄマウス造血細胞株を使用した。さらに、実験はヒトＰｈ＋白血病細胞（Ｋ５６２、ＭＥＧ−０１）でも実施した。使用したｓｉＲＮＡはすべて、それぞれのＢｃｒ−Ａｂｌ ｍＲＮＡのＢｃｒおよびＡｂｌ配列の切断点に特異的である。ＲＮＡｉ−効果は、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの分析によって、およびＭＴＴ生存率試験を使用して生物学的効果をモニタリングすることによって試験した。

ＲＮＡ干渉に最適な条件を決定するために、２４時間間隔で１回から４回ｓｉＲＮＡ処理を繰り返した。Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２特異的ｓｉＲＮＡであるＢＡＦ７で３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１４ａ２）を１回処理すると、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい減少が生じた。しかしながら、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルは、処理前のレベルに迅速に回復した。

短時間にもかかわらず、対照細胞（ＥＰＣ、１００％）に対して約５９％まで細胞の生存率を減少させるのに活性はまだ十分であった。Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質の下方制御および細胞死の誘導の両方のために、繰り返し処理するとより効果的であった。細胞を４回ＢＡＦ−７で処理すると、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質のほとんど完全な消失が生じ、生存能力の実質的に完全な損失が引き起こされた。ＢＡＦ７で４回処理した細胞に残存する生存率レベルは、ＭＴＴ試験法で測定すると、対照細胞のレベルの約２．５％以下であった。最後の処理の４８時間後の細胞数を生物学的効果の評価のために使用したとき、同じ結果が得られた。モック（ｍｏｃｋ）で処理した細胞およびミスマッチｓｉＲＮＡで処理した細胞の両方とも、４８時間以内に依然として細胞数が２．５Ｍｉｏ細胞から２５Ｍｉｏ細胞に増加した。Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２（ＢＡＦ７）に相同なｓｉＲＮＡを１回トランスフェクションした細胞では、増殖が約４０％減少した。Ｂｃｒ−Ａｂｌ特異的ＢＡＦ７ｓｉＲＮＡで２回または４回繰り返し処理すると、Ｂｃｒ−Ａｂｌ依存性細胞増殖がより効果的に減少し、増殖阻害は９０％を上回った。さらに、これらの３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１４ａ２）細胞では、ｓｉＲＮＡ配列の１点の変異によりサイレンシング効果を損なうことが可能であることを示すことができた。ＢＡＦ７と比較して１個のミスマッチがあるｓｉＲＮＡ分子（ＢＡＦ１）を使用した。ＢＡＦ１で処理すると、３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１４ａ２）細胞における切断点特異的ｓｉＲＮＡ（ＢＡＦ７）による処理と比較してＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの下方制御効果が低かった（図２Ａ）。ＢＡＦ１の効果の低さは、ＢＡＦ１の生物学的効果を評価したとき、さらに明らかになった。ＢＡＦ１で４回処理した細胞でも、生存率はＥＰＣに関して５２％と中程度の減少しか示されなかった。この大きさは、最適ｓｉＲＮＡによる処理１回の効果に匹敵した。

ｓｉＲＮＡ処理を延長すると、ヒトＫ５６２細胞におけるＢＡＦ７の生物学的効果の研究によってＲＮＡ干渉に対して一層効果的である、という所見が確認された。Ｋ５６２細胞は、本発明の発明者らのエレクトロポレーション法に対してより感受性が高いことが証明されたので、リポフェクタミン２０００を使用して細胞をトランスフェクションした。ｓｉＲＮＡで１回処理して４８時間後、細胞は最小限の増殖の低減しか示さなかった。対照的に、２４時間間隔でｓｉＲＮＡでリポフェクションを３回実施した後の４８時間後、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２ ｍＲＮＡ（ＢＡＦ７）に相同なｓｉＲＮＡで処理した細胞において、生存率は４５％まで著しく減少した。

３種の主要なＢｃｒ−Ａｂｌ癌遺伝子変種、−ｅ１４ａ２、−ｅ１３ａ２および−ｅ１ａ２のすべてがＲＮＡ干渉により標的化され得る。ＣＭＬに関係する第２の主要なＢｃｒ−Ａｂｌ融合遺伝子Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２を阻害するのに効果的なｓｉＲＮＡを同定するために、Ｂｃｒ−Ａｂ１３ａ２ ｍＲＮＡ切断点の様々な配列を標的とする４種のｓｉＲＮＡ（ＢＡＦ３、ＢＡＦ１５、ＢＡＦ１７、ＢＡＦ１９）で３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１３ａ２）細胞を処理した。対照として、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２融合配列（ＢＡＦ９）に指向するｓｉＲＮＡを使用した。ＢＡＦ３、ＢＡＦ１５、ＢＡＦ１７およびＢＡＦ１９は、Ｂｃｒ−Ａｂｌの下方制御に非常に異なる効果を示した。ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ１５およびＢＡＦ１９を繰り返しエレクトロポレーションすると、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの効果的な下方制御が引き起こされた。標的配列がかなり重複しているにもかかわらず、ＢＡＦ１７およびＢＡＦ３はＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルに影響を全く与えなかった。ＭＴＴ−生存率試験によってこれらのｓｉＲＮＡの生物学的効果を研究すると、同等の結果が得られた。効果的なｓｉＲＮＡ ＢＡＦ１５およびＢＡＦ１９で３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１３ａ２）細胞を３回処理すると、生存能力がほとんど完全に損失した。３回目の処理の４８時間後、生存率は対照（ＥＰＣ）の約１０％（ＢＡＦ１５）および約１４％（ＢＡＦ１９）しかなかった。したがって、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの下方制御に効果がないｓｉＲＮＡであるＢＡＦ３およびＢＡＦ１７はまた、細胞の生存率にも影響を及ぼさなかった。同じ方法を使用して、ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ１９はＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２ ＲＮＡを発現するヒト巨核球性ＣＭＬ細胞株、ＭＥＧ−０１細胞株におけるＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２発現を効果的にサイレンシングした。Ｂｃｒ−Ａｂｌ ｅ１３ａ２特異的ｓｉＲＮＡであるＢＡＦ１９で３回処理したとき、それぞれのミスマッチ対照（ＢＡＦ２８）でエレクトロポレーションした細胞と比較して、細胞はＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい損失を示した。ＲＮＡｉによるＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの下方制御はまた、ＭＥＧ−０１細胞の生存能力の実質的な損失を引き起こした。効果的なＢＡＦ１９ ｓｉＲＮＡで３回処理したＭＥＧ−０１細胞では、生存率は対照細胞（ＥＰＣ、１００％）のレベルと比較して約２８％のレベルに減少した。

第３の主要なＢｃｒ−Ａｂｌ変種であるｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１ａ２）は、成人型ＡＬＬのＰｈ＋患者の２０〜５０％で、Ｐｈ＋小児型ＡＬＬ患者の約９０％で検出することができる。このＢｃｒ−Ａｂｌ融合部位もＲＮＡｉの標的として使用できるかどうかを評価するために、２種の異なる配列に特異的なｓｉＲＮＡ（ＢＡＦ２２、ＢＡＦ２４）を用いて３２Ｄｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１ａ２）細胞を２回処理した。対照として、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１４ａ２（ＢＡＦ９）およびＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１３ａ２（ＢＡＦ１９）に指向する活性型ｓｉＲＮＡを使用した。２４時間間隔で繰り返し処理すると、ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ２２で処理した細胞においてのみ、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい下方制御が引き起こされた。ＢＡＦ２４ ｓｉＲＮＡのトランスフェクションは、全く影響を及ぼさなかった。３２Ｄｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１ａ２）では、ＢＡＦ２２ ｓｉＲＮＡで２回目に処理した後のＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの効果的な減少は、ＥＰＣ（１００％）と比較して１５％のレベルに達する生存率の減少を引き起こした。

ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ２２もＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２ ＲＮＡを発現するヒトＢ細胞前駆体白血病細胞株であるＳＵＰ−Ｂ１５細胞株におけるＢｃｒ−Ａｂｌ−ｅ１ａ２の発現を効果的にサイレンシングした。ヒトＢ細胞前駆体白血病細胞株ＳＵＰ−Ｂ１５は、急性リンパ芽球性白血病（Ｂ細胞前駆体ＡＬＬ）の９歳の男子の骨髄から元々確立されており、Ｂｃｒ−Ａｂｌ−融合遺伝子（ｅ１ａ２）のＡＬＬ変種（ｍ−ｂｃｒ）を保持している。この細胞株は、ＤＳＭＺ細胞培養保存施設から入手した（ＡＣＣ３８９、ＤＳＭＺ［ブラウンシュワイク（Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ）所在］）。

ＳＵＰ−Ｂ１５細胞を、前述のようにｅ１ａ２特異的ｓｉＲＮＡ（ＢＡＦ２２）または対照として他の切断点変種に指向するｓｉＲＮＡ（ＢＡＦ１９）を用いてエレクトロポレーションによって処理した。２４時間間隔でＢＡＦ２２によって３回処理すると、エレクトロポレーション対照（ＥＰＣ）またはＢＡＦ１９対照と比較してｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい減少が生じた（図３参照）。

長時間ｓｉＲＮＡ処理するとＲＮＡｉに関してはより効果的であるという傾向はまた、３２Ｄｐ２１０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１３ａ２）および３２Ｄｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌ（ｅ１ａ２）細胞株においても認められた。２４時間間隔で繰り返しｓｉＲＮＡのエレクトロポレーションを実施することは、Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの明確な下方制御を実現するのに必要であり、１回の処理と比較してさらなる生存能力の損失を引き起こした。

したがって、主要なＢｃｒ−Ａｂｌ切断点変種すべての発現は、インビトロにおいて、細胞のｓｉＲＮＡ処理によって影響を受け得ることが明らかとなった。一群のｓｉＲＮＡ分子を試験して、ｅ１４ａ２、ｅ１３ａ２およびｅ１ａ２切断点変種について効果的なｓｉＲＮＡを同定することができた。これらのデータは、ｅ１４ａ２融合物を有するＢｃｒ−Ａｂｌ転写物の下方制御に関して他者および我々のグループによって公表された以前の実験に適用される。

実施例３：ヒト白血病患者から単離された細胞におけるＢｃｒ−Ａｂｌの下方制御
切断点変種ｅ１４ａ２に対して陽性の初代患者細胞におけるＢＣＲ−ＡＢＬの下方制御
新たに診断された、未治療のフィラデルフィア染色体陽性ＣＭＬ慢性患者３人から、ＣＤ３４陽性細胞を単離した。細胞を採取する前に患者からインフォームドコンセントを得た。単核細胞をフィコールハイパック密度勾配遠心（セロメッド社（Ｓｅｒｏｍｅｄ）［ドイツ国、ベルリン所在］）によって収集した。ＣＤ３４陽性細胞は、幹細胞単離キットおよびＭＡＣＳカラム（ミルテニーバイオテック社（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃｈ）［ドイツ国、ベルギッシュグラートバハ（Ｂｅｒｇｉｓｃｈ Ｇｌａｄｂａｃｈ）所在］）を使用して、製造者の指示に従って単離した。細胞純度は、ＦＩＴＣ結合抗ＣＤ３４抗体（ビーディ バイオサイエンスィーズ イムノサイトメトリーシステムズ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｉｍｍｕｎｏｃｙｔｏｍｅｔｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ）［アメリカ合衆国カリフォルニア州サンホゼ所在］）を使用してＦＡＣＳ分析によって調べた。ＣＤ３４陽性細胞の画分は、９６〜９９％の範囲であった。

ＣＤ３４陽性細胞は、ＦＣＳ２０％、組換えヒトＩＬ−３（１０ｎｇ／ｍｌ、ストラトマンバイオテック（Ｓｔｒａｔｍａｎｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ）社［ドイツ国、ハンブルク所在］）、ヒトＧ−ＣＳＦ（２０ｎｇ／ｍｌ、アムゲン（Ａｍｇｅｎ）社［ドイツ国、ミュンヘン所在］）、およびヒト組換えＦＬＴ３リガンド（１００ｎｇ／ｍｌ、リサーチダイアグノスティックス（Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ Ｉｎｃ．）社［米国マサチューセッツ州コンコード所在］）を補充したＲＰＭＩ培地で５０００００細胞／ｍｌの密度まで増殖させた。ｓｉＲＮＡ処理前に、Ｂｃｒ−Ａｂｌ切断点変種を決定するために、少量の細胞を使用した。全ＲＮＡは、ＲＮイージーミニキット（ＲＮｅａｓｙ−ＭｉｎｉＫｉｔ）（キアゲン（Ｑｉａｇｅｎ）社［ドイツ国、ヒルデン（Ｈｉｌｄｅｎ）所在］）を使用して、製造者の指示に従って単離し、スーパースクリプト（ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ）逆転写酵素（ギブコ ビーアールエル（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ）社［米国カリフォルニア州カールスバッド（Ｃａｒｌｓｂａｄ）所在］）を使用して、製造者の方法に従ってｃＤＮＡを作製するためにＲＮＡ１μｇを使用した。次に、切断点特異的Ｂｃｒ−Ａｂｌプライマー５’−Ｂｃｒ−Ａｂｌ（５’−ＣＴＧＡＣＡＴＣＣＧＴＧＧＡＧＣＴＧ−３’）および３’−Ｂｃｒ−Ａｂｌ（５’−ＣＡＴＴＧＴＧＡＴＴＡＴＡＧＣＣＴＡＡＧＡ−３’）によるＰＣＲのために１マイクロリットルのｃＤＮＡを使用し、３９０ｂｐ断片（ｅ１４ａ２）または２９０ｂｐ断片（ｅ１３ａ２）を作製した。

細胞培養２日目に、細胞をｓｉＲＮＡで処理した。細胞を増殖培地８００μｌ中で２．５×１０^６個の密度まで希釈し、４ｍｍエレクトロポレーションキュベット内でアニーリング緩衝液（２０ｍＭのＮａＰＯ_４、１００ｍＭのＮａＣｌ、ｐＨ６．９）に溶解したそれぞれの５０μＭのｓｉＲＮＡ溶液１２．８μｌと混合した。次に、イージージェクトエレクトロポレーション、シングルパルス法（２５０Ｖ、１８００μＦ）を使用して、細胞をエレクトロポレーションした。この処理を２４時間後に繰り返した。２回目の処理後、細胞を洗浄し、因子を除去した。２４時間さらに培養した後、ウェスタンブロット分析のために細胞を収集した。

ＢＡＦ７またはＢＡＦ１２（いずれもｅ１４ａ２特異的）処理によって、ミスマッチ対照（ＢＡＦ８）またはｅ１３ａ２（ＢＡＦ１６）に相同なｓｉＲＮＡで処理した細胞と比較してＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい減少が生じた。さらに、ＢＡＦ１２処理はＢｃｒ−Ａｂｌの活性を弱めた。Ｂｃｒ−Ａｂｌのすぐ下流の基質であるＣＲＫＬのリン酸化は、ＢＡＦ１２で処理した細胞で著しく減少した（図４参照）。

約２．５Ｍｉｏの３２Ｄｐ２１０／ｅ１３ａ２細胞を、指示したｓｉＲＮＡにて２４時間間隔で１〜３回エレクトロポレーションした結果を示す図。ＢＡＦ３／ＢＡＦ１５／ＢＡＦ１７／ＢＡＦ１９：ｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１３ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＢＡＦ９：対照として使用するｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１４ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＥＰＣ：エレクトロポレーション対照。３２Ｄｐ２１０／ｅ１３ａ２中のｐ２１０^{Ｂｃｒ−ａｂｌ}（ｅ１３ａ２）の、ｓｉＲＮＡ処理から約２４時間後のウェスタンブロット分析。ＧＡＰＤＨのレベルをローディングコントロールとして使用。レーン１：ＥＰＣ、レーン２：ＢＡＦ９、レーン３：ＢＡＦ３、レーン４：ＢＡＦ１５、レーン５：ＢＡＦ１７、レーン６：ＢＡＦ１９。 約２．５Ｍｉｏの３２Ｄｐ２１０／ｅ１３ａ２細胞を、指示したｓｉＲＮＡにて２４時間間隔で１〜３回エレクトロポレーションした結果を示す図。ＢＡＦ３／ＢＡＦ１５／ＢＡＦ１７／ＢＡＦ１９：ｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１３ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＢＡＦ９：対照として使用するｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１４ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＥＰＣ：エレクトロポレーション対照。ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ１５ならびにＢＡＦ１９で長時間処理すると、３２Ｄｐ２１０／ｅ１３ａ２細胞で生存率の低下が生じた。指示した回数でｓｉＲＮＡ処理して約４０時間後、細胞の生存率をＭＴＴによって測定した。値は、３連の平均値±ＳＤである。 約５Ｍｉｏの３２Ｄｐ１９０／ｅ１３ａ２細胞を、指示したｓｉＲＮＡにて２４時間間隔で２回エレクトロポレーションした結果を示す図。ＢＡＦ２２／ＢＡＦ２４：ｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＢＡＦ９：対照として使用するｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１４ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＢＡＦ１９：対照として使用するｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１３ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＥＰＣ：エレクトロポレーション対照。３２Ｄｐ１９０／ｅ１ａ２細胞中のｐ１９０^{Ｂｃｒ−ａｂｌ}（ｅ１ａ２）の、２回目のｓｉＲＮＡ処理から約２４時間後のウェスタンブロット分析。ローディングコントロールとして使用したＧＡＰＤＨのレベル。レーン１：ＥＰＣ、レーン２：ＢＡＦ９、レーン３：ＢＡＦ１９、レーン４：ＢＡＦ２２、レーン５：ＢＡＦ２４。 約５Ｍｉｏの３２Ｄｐ２１０／ｅ１３ａ２細胞を、指示したｓｉＲＮＡにて２４時間間隔で２回エレクトロポレーションした結果を示す図。ＢＡＦ２２／ＢＡＦ２４：ｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＢＡＦ９：対照として使用するｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１４ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＢＡＦ１９：対照として使用するｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１３ａ２−特異的ｓｉＲＮＡ；ＥＰＣ：エレクトロポレーション対照。ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ２２で繰り返し処理すると、３２Ｄｐ１９０／ｅ１ａ２細胞で生存率の低下が生じた。２回目のｓｉＲＮＡ処理から約４０時間後、細胞の生存率をＭＴＴによって測定した。値は、３連の平均値±ＳＤである。 ヒトＢ細胞前駆体白血病細胞株ＳＵＰ−Ｂ１５細胞（ＡＣＣ３８９、ＤＳＭＺ［ブラウンシュワイク所在］、切断点変種ｅ１ａ２）を、ｅ１ａ２特異的ｓｉＲＮＡ（ＢＡＦ２２）または対照として他の切断点変種（ＢＡＦ１９、ｅ１３ａ２に特異的）に対して指向するｓｉＲＮＡで処理した結果を示す図。２４時間間隔で３回ＢＡＦ２２処理すると、エレクトロポレーション対照（ＥＰＣ）またはＢＡＦ１９対照と比較してｐ１９０Ｂｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい減少が生じた。 新たに診断された、未治療のフィラデルフィア染色体陽性ｂｃｒ−ａｂｌ−ｅ１４ａ２陽性慢性型ＣＭＬ患者３人から、フィコールハイパック密度勾配遠心およびアフィニティーカラム精製によって単離されたＣＤ３４陽性細胞を、ｓｉＲＮＡ ＢＡＦ７（ｅ１４ａ２特異的、患者１）、ＢＡＦ８（ミスマッチ対照、患者１）、ＢＡＦ１２（ｅ１４ａ２特異的、患者２＋３）およびＢＡＦ１６（ｅ１３ａ２特異的、患者２＋３）で処理した結果を示す図。細胞を増殖培地８００μｌで密度２．５×１０^６個に希釈し、４ｍｍエレクトロポレーションキュベット内でそれぞれのｓｉＲＮＡの５０μＭ溶液１２．８μｌと混合し、シングルパルス法（２５０Ｖ、１８００μＦ）を使用してエレクトロポレーションした。この処理を２４時間後に繰り返し、細胞を洗浄して、さらに２４時間インキュベートして、ウェスタンブロット分析のために収集した。ＢＡＦ７またはＢＡＦ１２処理したものは、ミスマッチ対照（ＢＡＦ８）またはｅ１３ａ２（ＢＡＦ１６）に相同なｓｉＲＮＡで処理した細胞と比較してＢｃｒ−Ａｂｌタンパク質レベルの著しい減少が生じた。さらに、ＢＡＦ１２処理はＢｃｒ−Ａｂｌ活性を損なわせた。Ｂｃｒ−Ａｂｌのすぐ下流の基質であるＣＲＫＬのリン酸化は、ＢＡＦ１２で処理した細胞では著しく減少した。

Claims (25)

1. 配列番号２、６、１２、１４、１６または２０のうちの１つにおける１５以上の連続したヌクレオチドの配列との相違が１、２、または３ヌクレオチド以下であるアンチセンス鎖からなるｉＲＮＡ薬剤。
2. 前記アンチセンス鎖が、配列番号２、６、１２、１４、１６または２０のうちの１つにおける少なくとも１５の連続したヌクレオチドを有する、請求項１に記載のｉＲＮＡ薬剤。
3. 配列番号１、５、１１、１３、１５または１９のうちの１つにおける１５以上の連続したヌクレオチドの配列との相違が１、２、または３ヌクレオチド以下であるセンス鎖をさらに含む、請求項１または２に記載のｉＲＮＡ薬剤。
4. 配列番号１、５、１１、１３、１５または１９のうちの１つにおける１５の連続したヌクレオチドの配列を有するセンス鎖をさらに含む、請求項１または２に記載のｉＲＮＡ薬剤。
5. 前記薬剤が薬剤番号３、４、または５のうちの１つである、請求項１乃至４のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤。
6. 前記センス鎖が、薬剤番号３、４、または５のセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドを有し、かつ前記アンチセンス鎖が、薬剤番号３、４、または５のアンチセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドを有する、請求項１に記載のｉＲＮＡ薬剤。
7. 前記ｉＲＮＡ薬剤が、前記薬剤と共にインキュベーションした後の培養ヒト細胞中に存在するＢＣＲ−ＡＢＬ融合タンパク質レベルの量を、前記薬剤と共にインキュベートされていない細胞と比較して有意に低減し、同細胞が、好ましくは３２Ｄｐ２１０／ｅ１４ａ２、３２Ｄｐ２１０−Ｔ３１５Ｉ、３２Ｄｐ２１０−Ｈ３９６Ｐ、３２Ｄｐ２１０／ｅ１３ａ２、３２Ｄｐ１９０／ｅ１ａ２、Ｍ０７ｐ２１０／ｅ１４ａ２、Ｋ５６２、ＭＥＧ−０１、またはＳＵＰ−Ｂ１５であるか、あるいは白血病患者から単離されたものである、請求項１乃至６のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤。
8. 前記アンチセンスＲＮＡ鎖の長さが３０ヌクレオチド以下であり、かつｉＲＮＡ薬剤の２本鎖領域の長さが１５から３０ヌクレオチド対である、請求項１乃至７のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤。
9. 前記ｉＲＮＡ剤に生物試料中での高い安定性を付与する修飾を含んでなる、請求項１乃至８のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤。
10. ホスホロチオエートまたは２’修飾ヌクレオチドを含む、請求項９に記載のｉＲＮＡ薬剤。
11. ウリジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−ウリジン−アデニン−３’（５’−ｕａ−３’）ジヌクレオチド；５’−ウリジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−ウリジン−グアニン−３’（５’−ｕｇ−３’）ジヌクレオチド；５’−シチジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−シチジン−アデニン−３’（５’−ｃａ−３’）ジヌクレオチド；または５’−ウリジンが２’修飾ヌクレオチドである、少なくとも１つの５’−ウリジン−ウリジン−３’（５’−ｕｕ−３’）ジヌクレオチドを含む、請求項１０に記載のｉＲＮＡ薬剤。
12. 前記２’修飾ヌクレオチドが、２’−デオキシ、２’−デオキシ−２’−フルオロ、２’−Ｏ−メチル、２’−Ｏ−メトキシエチル（２’−Ｏ−ＭＯＥ）、２’−Ｏ−アミノプロピル（２’−Ｏ−ＡＰ）、２’−Ｏ−ジメチルアミノエチル（２’−Ｏ−ＤＭＡＯＥ）、２’−Ｏ−ジメチルアミノプロピル（２’−Ｏ−ＤＭＡＰ）、２’−Ｏ−ジメチルアミノエチルオキシエチル（２’−Ｏ−ＤＭＡＥＯＥ）、および２’−Ｏ−Ｎ−メチルアセトアミド（２’−Ｏ−ＮＭＡ）からなる群から選択された修飾を含む、請求項１０または１１に記載のｉＲＮＡ薬剤。
13. １から４個の不対ヌクレオチドを有するヌクレオチド突出部分を含む、請求項１乃至１２のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤。
14. 前記ヌクレオチド突出部分が、２または３個の不対ヌクレオチドを有する、請求項１３に記載のｉＲＮＡ薬剤。
15. 前記ヌクレオチド突出部分が、前記ｉＲＮＡ薬剤のアンチセンス鎖の３’末端にある、請求項１３または１４に記載のｉＲＮＡ薬剤。
16. リガンドを含む、請求項１乃至１５のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤。
17. 前記リガンドが、ｉＲＮＡ薬剤のセンス鎖の３’末端に結合している、請求項１６に記載のｉＲＮＡ薬剤。
18. 請求項１乃至１７のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤と、
    薬学的に許容される担体と
    からなる医薬組成物。
19. 対象の細胞内にあるＢＣＲ−ＡＢＬ ＲＮＡの量を低減する方法であって、同細胞を、請求項１乃至１８のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤と接触させることからなる方法。
20. 請求項１乃至１７のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤を作製する方法であって、前記方法は前記ｉＲＮＡ薬剤を合成することからなり、前記センス鎖およびアンチセンス鎖が、ヌクレオチド鎖分解に対してｉＲＮＡ薬剤を安定化させる少なくとも１つの修飾を含む方法。
21. 増殖性障害を有するか、同増殖性障害を発症する危険性のあるヒトを治療する方法であって、前記方法は請求項１乃至１７のいずれか１項に記載のｉＲＮＡ薬剤を投与することからなり、好ましくは、前記ｉＲＮＡ薬剤が、薬剤番号１、２、３、４、５または６のｉＲＮＡ薬剤のセンス鎖配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドを有するセンス鎖と、薬剤番号１、２、３、４、５または６のｉＲＮＡ薬剤のアンチセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドを有するアンチセンス鎖とからなる方法。
22. 前記ｉＲＮＡ薬剤の前記センス鎖が、薬剤番号３、４または５のセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドからなり、前記ｉＲＮＡ薬剤の前記アンチセンス鎖が、薬剤番号３、４または５のアンチセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドからなる、請求項２１に記載の方法。
23. 前記ｉＲＮＡ薬剤の前記センス鎖が、薬剤番号３または４のセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドからなり、前記ｉＲＮＡ薬剤の前記アンチセンス鎖が、薬剤番号３または４のアンチセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドからなり、前記増殖性障害が慢性骨髄性白血病である、請求項２２に記載の方法。
24. 前記ｉＲＮＡ薬剤の前記センス鎖が、薬剤番号５のセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドからなり、前記ｉＲＮＡ薬剤の前記アンチセンス鎖が、薬剤番号５のアンチセンス配列における少なくとも１５の連続したヌクレオチドからなり、前記増殖性障害がＰｈ＋急性リンパ芽球性白血病である、請求項２２に記載の方法。
25. 前記ヒトの細胞または組織内のＢＣＲ−ＡＢＬ ＲＮＡレベルを低下させるのに十分な量で、前記ｉＲＮＡ薬剤が投与される、請求項２１乃至２４のいずれか１項に記載の方法。

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