JP2008507986A - CpG含量を変化させることにより遺伝子発現を調整する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
Gardiner-Garden M.&Frommer M(1997)J.Mol. Bio.、196、261〜282頁 Takai D.&Jones P.A.(2002)PNAS 99、3740〜3745頁
i.発現させる標的核酸配列を準備するステップ、
ii.標的核酸配列に存在するCpGジヌクレオチドの数を、遺伝子発現を増加させるために遺伝コードの縮重を用いて増加させるか、または遺伝子発現を減少させるために減少させる、標的核酸配列を修飾するステップ、
iii.変更された数のCpGジヌクレオチドを含む、それにより修飾された標的核酸配列を適切な転写制御配列と機能するように連結された適切な発現ベクターにクローニングするステップ、
iv.適切な発現システムにおいて修飾標的核酸配列を発現させるステップ
を含む、遺伝子発現の標的調整の方法によって達成される。
a)野生型配列に由来し、野生型配列と比較して増加または減少した数のCpGジヌクレオチドを有し、転写制御配列に機能するように連結された、転写できる領域を含む修飾核酸配列、および
b)発現システムが、増加した数のCpGジヌクレオチドを含む修飾核酸配列の発現の場合には発現の増加を示し、減少した数のCpGジヌクレオチドを含む修飾核酸配列の発現の場合には発現の減少を示す、a)を発現させることができる細胞および無細胞発現環境から選択される発現環境
を含む発現システムを提供する。
(実施例1)
(種々のCpG含量を有するGFPリポーター遺伝子の生成)
CpGジヌクレオチドの数が異なる緑色蛍光タンパク質(GFP)遺伝子の2つの変異体を生成させた。huGFP遺伝子は60個のCpGを有し、ΔCpG-GFP遺伝子はCpGを有していなかった。CpG欠失遺伝子ΔCpG-GFPは、人工的に構築した。ΔCpG-GFPの設計に際して、レアコドンや、スプライシング部位またはポリ(A)シグナル部位のような負に作用するシス作用要素が導入されないように注意を払った。コドンの選択の質の尺度であるコドン適応指数(CAI)は、CpGの欠失によりわずかに変化させた(CaI(huGFP)=0.95、CAI(ΔCpG-GFP)=0.94)。これに関連して、GFPのコードアミノ酸配列は変化させなかった。サブクローニングのためにさらなるインターフェースを挿入した。ヌクレチオドおよびアミノ酸配列は、配列番号1/2に示す。
安定な組換え細胞の速やかな確立と選択のために、InvitrogenのFlp-Inシステムを用いた。このシステムのさらなる重要な利点は、標的細胞の定められた遺伝子座へのトランス遺伝子のコピーの特異的(directed)組込みである。したがって、この技術は、任意のトランス遺伝子の発現の定量的比較のための最善の条件を提供する。その理由は、標的細胞の生理的および遺伝的因子はおおむね同じであるからである。さらなる確実性を達成するために、これらの比較分析に2種類の異なる哺乳類細胞を選択した。細胞系Fip-In CHOおよびFip-In 293Tは、Invitrogenから入手し、37℃、5%CO2で培養した。細胞系は、L-グルタミン、10%不活性化ウシ胎児血清、ペニシリン(100U/ml)およびストレプトマイシン(100μg/ml)を含むダルベッコの修正イーグル培地高グルコース(DMEM)(293T)およびHAMs F12(CHO)中で培養した。集密状態が達成された後に細胞を1:10の比で継代培養した。
リポーター構築物の発現は、フローサイトメーター(Becton-Dickinson)でのGFP媒介緑色自己蛍光の定期的測定により16ヶ月間にわたり測定した。平均蛍光強度のデータを図2A(293T細胞)および2B(CHO細胞)に要約する。huGFP発現は両細胞系において全測定期間にわたって比較的一定であることが認められ、平均蛍光強度は800(293T)および700(CHO)であった。CpGの数が少ないΔCpG-GFPリポーター構築物は、同様に全測定期間にわたって一定の蛍光強度を示した。しかし、平均蛍光強度は、huGFPと比較して10〜20倍(293T)および6〜9倍(CHO)低かった。GFP媒介蛍光の減少は、蛍光顕微鏡によっても検出された(図2C)。
(異なるCpG含量を有するマウスMiP1α遺伝子の生成)
この実施例では、異なる数のCpGジヌクレオチドを含む一連の構築物を生成させるが、コードアミノ酸配列を変化させないように、マウスMiP1α遺伝子の核酸配列を改変させた。この目的のために、マウスMiP1α遺伝子産物のアミノ酸配列をヒト細胞のコドン選択を用いて合成MiP1αコードリーディングフレーム内に翻訳しなおした。最初の一連の構築物において、発現に有害な影響を及ぼすと予想されるレアコドンを導入することなく、偶発的に形成されたCpGジヌクレオチドを配列から段階的に除去した。さらに、コドン最適化構築物より2倍多いCpGジヌクレオチドを含む、CpGジヌクレオチド最適化MiP1α遺伝子構築物を生成させた。この場合、できる限り多くのCpGジヌクレオチドを導入するために、コドン選択の質の低下を作為的に考慮に入れた。従来技術によれば、この遺伝子構築物は、そのコドン選択がより不十分なため、コドン最適化遺伝子構築物より低い発現を有すると予想されよう。
ケモカインの発現を定量化するために、ヒトH1299細胞に各発現構築物をトランスフェクトし、細胞中および細胞培養上清中のタンパク質の量を市販のELISAテストキットにより測定した。
(異なるCpG含量を有するヒトおよびマウスサイトカイン遺伝子の生成)
これまでに得られた結果と解釈をさらに確認することができようにするために、野生型遺伝子とCpGジヌクレオチドの数が異なる、ヒトMIP1α遺伝子、ヒトGM-CSF遺伝子、ヒトIL-15遺伝子およびマウスGM-CSF遺伝子の変異体を実施例2と同様に人工的に構築し、インターフェースHindIIIおよびNotIを用いて発現ベクターpcDNA3.1にサブクローニングした。構築物の同定、CpGの数ならびにCAI値を表2に示す。野生型配列(wt)およびCpGジヌクレオチドの数を変化させた配列のヌクレオチドおよびアミノ酸配列を配列番号17/18〜配列番号23/24および配列番号48/49〜配列番号54/55に示す。発現構築物を、対応するcDNAクローン(RZPDから得られた)からのオリゴヌクレオチドhumip-1およびhumip-2、hugm-1およびhugm-2、huil-1およびhuil-2、magm-1およびmagm-2を用いてポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により増幅し、同様にインターフェースHindIIIおよびNotIを用いて発現ベクターpcDNA3.1にクローニングした(「pc-huMiP-wt」、GenBankアクセッション番号NM_021006、「pc-huGM-wt」、GenBankアクセッション番号M11220、「pc-huLL-wt」、GenBankアクセッション番号BC018149、「pc-muGM-wt」、GenBankアクセッション番号NM_049969、偏りを含む)。
サイトカインの発現を定量化するために、ヒト細胞に各発現構築物をトランスフェクトし、細胞培養上清中のタンパク質の量を市販のELISAテストキットにより測定した。
(発現を増加させるための少ない数のCpGジヌクレオチドを含むプラスミドの生成)
プラスミドpcDNA5(Invitrogen)の核酸配列を、CpGジヌクレオチドの数をできる限り減少させたモジュール方式で構築したプラスミドの生成のための基礎として用いた。アンピシリン耐性遺伝子(bla)をコードするDNA配列を実施例1で述べたように合成により生成させ、制限インターフェースClaIおよびBglIIを用いてサブクローニングした。これに関連してCpGの数を72から2に減少させた。同様に、複数のクローニング部位を再設計し、合成により構築し、制限インターフェースSacIおよびPmeIを用いてサブクローニングし、それにより、CpGの数を11から1に減少させた。CMVプロモーター(31CpG)、BGHポリアデニル化部位(3CPG)およびpUC複製起点(45CpG)を変化させずにプラスミドに組み込んだ。ハイグロマイシン耐性カセットは削除した。CMVプロモーターは、さらにClaIおよびSacI制限インターフェース3'および5'を加えたオリゴヌクレオチドCMV-1およびCMV-2を用いてPCR増幅によりクローニングした。同様にして、pUC ori-1をオリゴヌクレオチドori-1(XmaIインターフェースを含む)およびori-2(BglIIインターフェースを含む)を用いて増幅し、BGHポリアデニル化部位をオリゴヌクレオチドpa-1(PmeI)およびpa-2(XmaI)を用いてPCRにより増幅し、対応する制限酵素を用いてサブクローニングした。プラスミドpcDNA5をすべてのPCR反応における鋳型として用いた。このプラスミドの構造を図7A(「P-smallsyn」)に図示し、完全な配列を配列番号25に示す。
転写物の発現に対するベクター中のCpG数の影響をチェックするために、構築物R/p24およびs/p24をヒト細胞に一時的にトランスフェクトし、p24の発現を分析した。
CpGジヌクレオチドの数が異なるHIV-1由来のキャプシドタンパク質遺伝子p24の2つの変異体を生成させた。Syn p24遺伝子は38個のCpGを有しており、一方、p24ΔCpG遺伝子はCpGを有していなかった。CpG欠失遺伝子p24ΔCpGは、実施例1で述べたように人工的に構築し、インターフェースHindIIIおよびBam HIを用いて発現ベクターP-smallsyn(実施例4で述べた)(「s/p24ΔCpG」)および参照ベクターPc-ref(「R/p24ΔCpG」)にクローニングした。p24ΔCpGのヌクレオチドおよびアミノ酸配列を配列番号26/27に示す。実施例4で述べたプラスミドR/p24およびs/p24を参照構築物として用いた。
ベクターおよび挿入配列(転写物)におけるCpG数の影響をチェックするために、構築物R/p24、R/p24ΔCpG、s/p24およびs/p24ΔCpGをヒト細胞に一時的にトランスフェクトし、p24の発現を分析した。
1.オリゴヌクレオチド
Claims (42)
- (i)発現させる標的核酸配列を準備するステップ、
(ii)標的核酸配列に存在するCpGジヌクレオチドの数を、遺伝子発現を増加させるために遺伝コードの縮重を用いて増加させるか、または遺伝子発現を減少させるために減少させる、標的核酸配列を修飾するステップ、
(iii)変更された数のCpGジヌクレオチドを含む、それにより修飾された標的核酸配列を適切な転写制御配列と機能するように連結された適切な発現ベクターにクローニングするステップ、
(iv)適切な発現システムにおいて修飾標的核酸配列を発現させるステップ
を含むことを特徴とする、遺伝子発現の標的調整の方法。 - ステップ(ii)において、標的核酸配列の修飾を、CpGジヌクレオチドの数の増加または減少に加えて、1つまたは複数のさらなる修飾が核酸レベルで行われるように行うことを特徴とする、請求項1に記載の方法。
- 核酸レベルでのさらなる修飾が、コドン選択の変化、RNA二次構造を安定化する配列の挿入または除去、自己相同性の増加を有する領域、天然遺伝子との相同性の増加を有する領域、RNA不安定性モチーフ、スプライス活性化モチーフ、ポリアデニル化モチーフ、アデニンに富むモチーフ、エンドヌクレオース認識部位からなる群から選択されることを特徴とする請求項2に記載の方法。
- CpGジヌクレオチドの数を増加または減少させることによる標的核酸配列の修飾を、発現システムに対して最適化されたコドンの選択を考慮して行うことを特徴とする請求項1から3の一項に記載の方法。
- CpGジヌクレオチドの数の変更を哺乳類に対して最適化されたコドンの選択を考慮して行うことを特徴とする請求項1から4の一項に記載の方法。
- 遺伝子発現を増加させることを特徴とする請求項1から5の一項に記載の方法。
- 遺伝子発現を減少させることを特徴とする請求項1から5の一項に記載の方法。
- 発現させる標的核酸配列が発現システムに対して異種であることを特徴とする請求項1から7の一項に記載の方法。
- 真核生物または原核生物の発現システムを発現システムとして用いることを特徴とする請求項1から8の一項に記載の方法。
- 発現システムとして、細菌、酵母、単細胞、寄生虫細胞、植物細胞、昆虫細胞、哺乳類細胞、ヒト細胞および体細胞からなる群から選択される原核細胞および真核細胞からなる群から選択される細胞、または無細胞発現環境を用いることを特徴とする請求項1から9の一項に記載の方法。
- 真核生物、原核生物、ウイルスまたは合成源の標的核酸を発現させることを特徴とする請求項1から10の一項に記載の方法。
- 低メチル化システムを発現システムとして用いることを特徴とする請求項1から11の一項に記載の方法。
- 修飾標的核酸配列および転写制御配列がCpGアイランドに関連しないことを特徴とする請求項1から12の一項に記載の方法。
- CpGジヌクレオチドの数を少なくとも2個増加または減少させることを特徴とする請求項1から13の一項に記載の方法。
- CpGジヌクレオチドの数を少なくとも10%、好ましくは少なくとも50%、より好ましくは少なくとも100%増加または減少させることを特徴とする請求項1から14の一項に記載の方法。
- すべてのCpGジヌクレオチドを遺伝コードの縮重を用いて除去することを特徴とする請求項1から15の一項に記載の方法。
- 標的核酸配列がRNA、その誘導体もしくは擬似体、ペプチドもしくはポリペプチド、修飾ペプチドもしくはポリペプチド、タンパク質または修飾タンパク質をコードすることを特徴とする請求項1から16の一項に記載の方法。
- 標的核酸配列が治療用および/または診断用タンパク質をコードすることを特徴とする請求項17に記載の方法。
- 標的核酸配列がヒト、寄生虫、ウイルスまたは細菌タンパク質、酵素、ホルモン、ワクチン、メッセンジャー物質および調節タンパク質をコードすることを特徴とする請求項18に記載の方法。
- 標的核酸配列が、アスパラギナーゼ、アデノシンデアミナーゼ、インスリン、tPA、凝固因子、ビタミンLエポキシドレダクターゼ、エリトロポイエチン、卵胞刺激ホルモン、エストロゲン、骨形成タンパク質、抗トロンビン、HIV由来タンパク質、HBV由来タンパク質、HCV由来タンパク質、インフルエンザ由来タンパク質、ボレリア由来タンパク質、ヘモフィルス由来タンパク質、髄膜炎菌由来タンパク質、炭疸由来タンパク質、ボツリヌス毒素、ジフテリア毒素、破傷風毒素、マラリア原虫タンパク質、血液型抗原、HLAタンパク質、サイトカイン、ケモカイン、G-CSF、GM-CSF、インターロイキン、インターフェロン、PDGF、TNF、RANTES、MiPlαおよび転写因子から選択されるタンパク質をコードすることを特徴とする請求項18または19に記載の方法。
- 標的核酸配列が機能性RNAをコードすることを特徴とする請求項17に記載の方法。
- 標的核酸配列がsiRNA、リボザイム、アンチセンスRNAまたはデコイであることを特徴とする請求項21に記載の方法。
- 発現システムにおいて発現させることができ、野生型配列由来であり、用いる発現システムに関してコドンが最適化されるように、また、遺伝コードの縮重を用いてCpGジヌクレオチドの数が野生型配列由来のコドン最適化配列と比較して増加するように修飾されている転写できる領域を含むことを特徴とする修飾核酸。
- CpGジヌクレオチドの数が野生型配列と比較して少なくとも10%、好ましくは少なくとも25%、より好ましくは少なくとも50%、特に好ましくは少なくとも100%、より特に好ましくは少なくとも200%、特に5倍、最も特に10倍以上増加していることを特徴とする請求項23に記載の核酸。
- 核酸がCpGアイランドに関連しないことを特徴とする請求項23または24の一項に記載の核酸。
- 配列番号1、5、7、9、11、13、17、19、26、52および54から選択される配列を含むことを特徴とする請求項23から25の一項に記載の核酸。
- 適切な転写制御配列と機能するように連結されたことを特徴とする請求項23から26の一項に記載の核酸を含むベクター。
- 転写制御配列がプロモーターを含むことを特徴とする請求項27に記載のベクター。
- プロモーターが構成的に活性なプロモーターであることを特徴とする請求項28に記載のベクター。
- 構成的に活性なプロモーターが(サイトメガロウイルス)CMVプロモーターおよびシミアンウイルス40(SV40)プロモーターから選択されることを特徴とする請求項29に記載のベクター。
- プロモーターが誘導プロモーターであることを特徴とする請求項28に記載のベクター。
- 誘導プロモーターがテトラサイクリン依存性プロモーターであることを特徴とする請求項31に記載のベクター。
- プロモーターがCpGアイランドに関連しないことを特徴とする請求項27から32の一項に記載のベクター。
- ベクターに存在し、請求項23から26の一項に記載の核酸と異なる配列またはその一部が少ない数のCpGジヌクレオチドを有することを特徴とする請求項27から33の一項に記載のベクター。
- 請求項23から26の一項に記載の核酸と異なる配列またはその一部が約25%、好ましくは50%、より好ましくは75%、最も特に好ましくは100%減少した数のCpGジヌクレオチドを有することを特徴とする請求項27から34の一項に記載のベクター。
- 配列番号25に示されている核酸配列を含むことを特徴とする請求項27から35の一項に記載のベクター。
- 請求項23から36の一項に記載の核酸またはベクターを含むことを特徴とする細胞。
- a)転写できる領域を含み、野生型配列由来であり、野生型配列に比較して多いまたは少ない数のCpGジヌクレオチドを有し、転写制御配列と機能するように連結された修飾核酸配列、および
b)細胞および無細胞発現環境から選択され、a)を発現させることができ、発現システムが、多い数のCpGジヌクレオチドを有する修飾核酸配列の発現の場合に発現の増加を示し、少ない数のCpGジヌクレオチドを有する修飾核酸配列の発現の場合に発現の減少を示す、発現環境
を含むことを特徴とする発現システム。 - 請求項23から38の一項に記載の核酸および/またはベクターおよび/または細胞および/または発現システムを有効成分として含むことを特徴とする薬剤。
- 診断および/または治療処置用の薬剤の製造のためであることを特徴とする請求項23から38の一項に記載の核酸および/またはベクターおよび/または細胞および/または発現システムの使用。
- 遺伝子治療処置のためであることを特徴とする請求項40に記載の使用。
- ワクチンの製造のためであることを特徴とする請求項23から38の一項に記載の核酸、ベクターおよび/または細胞および/または発現システムの使用。
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