JP2007532540A - 2−アルキリデン18,19−ジノル−ビタミンd化合物 - Google Patents
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Abstract
Description
2−メチレン−18,19−ジノル−1α−ヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−25−ヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジメチル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジメチル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジメチル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジエチル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジエチル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジエチル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジプロピル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジプロピル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3;及び
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジプロピル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシ−22−デヒドロビタミンD3である。
2−メチレン−18,19−ジノル−1α−ヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−25−ヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジメチル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジメチル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジメチル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジエチル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジエチル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジエチル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジプロピル−24−ホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジプロピル−24−ジホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3;及び
2−メチレン−18,19−ジノル−26,27−ジプロピル−24−トリホモ−1,25−ジヒドロキシビタミンD3である。
本発明を、以下の例示的な実施例で記載する。これらの実施例で、アラビア数字(例えば、1、2、3等)で同定した特定の生産物は、上記記載及びスキーム1で同定した特定の構造をいう。
デス−A,B−23,24−ジノルコラン−8β,22−ジオール(1)
メタノール(400mL)及びピリジン(5mL)中でビタミンD2(5g、12.7mmol)溶液をアルゴンガスでパージしながら−78℃まで冷却した。アルゴン流を止めて青色になるまでオゾン流を流した。溶液を青色が消えるまで酸素でパージし、NaBH4(1.2g,32mmol)で処理した。20分後、第2回目のNaBH4(1.2g,32mmol)を加えて反応物を室温まで暖めた。第3回目のNaBH4(1.2g,32mmol)を加えて、反応混合物を室温で一晩攪拌した。反応を70mLの水でクエンチし、真空下で濃縮した。残渣をメチレンクロライド(3x100mL)で抽出した。
ジオール1(1.85g,8.79mmol)をピリミジン(30mL)に溶解してDMAP(45mg,0.3mmol)を加えた。溶液を0℃まで冷却してベンゾイルクロライド(3mL,3.6g,25mmol)を滴下して加えた。反応混合物を5℃で24時間保持した。メチレンクロライド(100mL)を加えて、得られた混合物を5%HCl水溶液(100mL)で洗浄し、CuS04水溶液(2x80mL)で飽和して、NaHC03(80mL)及び水(100mL)で飽和した。抽出物を無水MgS04で乾燥させた。真空内で溶媒を除去して、未精製のジベンゾエートが得られた。
三酸化硫黄ピリジン複合体(7.02g,44.1mmol)を0℃で、無水メチレンクロライド(30mL)及びDMSO(8mL)中でアルコール2(2.32g,7.34mmol)及びトリエチルアミン(5.15mL,3.71g,36.7mmol)の溶液に加えた。反応混合混合物を20分間0℃アルゴン下で攪拌した後、真空下で濃縮した。残渣をカラムクロマトグラフィー(5%エチルアセテート/ヘキサン)により精製して、2.05g(6.53mmol,収率90%)のアルデヒド3が得られた。[α]D+67.4(c 0.95,CHCl3);1H NMR(400MHz,CDCl3)δ1.10(3H,s),1.15(3H,d,J=6.8Hz),5.44(1H,br d,J=2.2Hz),7.45(2H,m),7.56(1H,m),8.05(2H,m),9.60(1H,d,J=3.2Hz);13C NMR(100MHz,CDCl3)δ13.6,14.1,18.1,23.1,26.2,30.7,39.8,42.6,49.2,51.2,51.5,128.6,129.7,130.9,133.0,205.0;MS(EI)m/z285(3),216(3),208(9),180(17),162(47),147(21),135(46),122(16),105(100),95(22),77(49)C19H2502([M−CHO]+)の精密質量(ESI)の計算値は285.1855であり、実測値は285.1848であった。
アルデヒド3(2.05g,6.53mmol)の溶液にメチレンジクロライド(25mL)中で、40%のn−Bu4NOH(8.4mL,12.9mmol)の水溶液を加えた。得られた反応混合物を一晩激しく攪拌した。その後、メチレンジクロライド(30mL)を加え、混合物を水(20mL)で洗浄し、無水MgS04で乾燥させて減圧下で濃縮した。残渣をカラムクロマトグラフィー(5%エチルアセテート/ヘキサン)で精製して、1.50g(4.78mmol)の2つのジアステレオ異性アルデヒドの混合物が得られた。
無水メチレンジクロライド(20mL)トシルクロライド(710mg,3.73mmol)中で、アルコール4(870mg,2.75mmol)、トリエチルアミン(1.5mL,10.8mmol)及びDMAP(20mg)の混合物を0℃で加えた。反応混合物を室温で16時間保持した。その後、メチレンジクロライド(100mL)を加えて、混合物を飽和NaHC03水溶液(2x50mL)で洗浄して、無水MgS04で乾燥させて減圧下で濃縮した。
マグネシウム削りくず(4.41g,184mmol)をマグネチックスターラーを用いてアルゴン下で一晩攪拌した。その後、無水THF(50mL)及び1−クロロ−3−メチルブタン(11mL,90.8mmol)を加えた。混合物を6時間還流した。得られたグリニャ−ル試薬6の溶液を、カニューレを通して、78℃で無水THF(15mL)中で、攪拌した5の水溶液に加えた後、テトラクロロ銅酸化物ジリチウム(620mg,2.73mmol)を無水THF(27mL)中で加えた。冷却槽を外して反応混合物を一晩攪拌した。反応混合物を攪拌した氷(15mL)及び飽和NH4Cl水溶液(40mL)の混合物に注いだ。その後、反応物をエチルアセテート(3x100mL)で抽出して、水で洗浄し、無水Na2S04で乾燥させた。残渣をカラムクロマトグラフィー(5%〜25%エチルアセテート/ヘキサン)で精製して、389mg(1.46mmol,収率58%)の7が得られた。[α]D+9.6(c1.15,CHCl3);1H NMR(500MHz,CDCl3)δ0.82(3H,d,J=6.6Hz),0.87(6H,d,J=6.6Hz),0.93(3H,s),4.07(1H,s);13C NMR(125MHz,CDCl3)δ13.8,17.5,18.5,22.4,22.5,22.6,22.7,24.0,27.1,28.0,29.7,33.6,34.8,35.5,39.4,40.3,41.9,52.7,56.3,69.5;MS(EI)m/z266(45,M+),251(19),233(8),177(9),163(11),152(20),135(30),125(37),111(100);C18H34Oの精密質量の計算値は266.26310であり、実測値は266.2623であった。
7の溶液(185mg,0.69mmol)をクロロホルム(5mL)中でt−ブチルニトライト(1mL)で1時間暗部で処理した。その後、光から混合物を保護しながら、ベンゼン(10mL)を加えて、溶媒を減圧下で除いた。1H NMR(500MHz,CDCl3)δ0.76(3H,s),0.81(3H,d,J=6.5Hz),0.87(6H,d,J=6.6Hz),5.78(lH,s);13C NMR(125MHz,CDCl3)δ13.1,17.9,18.5,22.2,22.6,22.7,23.9,27.1,28.0,31.5,34.9,35.3,39.3,39.7,41.9,51.9,56.0.
(18E)−(20S)−18−(ヒドロキシイミノ)−デス−A,B−コレスタン−8β−オール(9)
未精製のニトライトを無水ベンゼン(150mL)で溶解して、水冷式浸水穴を有するパイレックス(登録商標)管及びパイレックス(登録商標)フィルターを備えたハノビア(Hanovia)高圧水銀アーク灯からなる装置で照射した。アルゴンを溶液に緩慢に流して温度を約10℃に保持した。反応過程をTLCでモニターした。30分後に、反応を完了させた。ベンゼンを減圧下で除去して、残渣を2−プロパノール(5mL)に溶解して2時間還流し、冷却して、一晩保持して、ニトロソ化合物のオキシムへの異性化を完了した。溶媒を蒸発させて、残渣をWatersシリカゲルSep−Packカートリッジ(25%エチルアセテート/ヘキサン)で精製して、102mg(0.35mmol,7からの収率51%)のオキシム9を得た。[α]D+8.2(c0.80,CHCl3);1H NMR(400MHz,CDCl3)δ0.84(3H,d,J=6.3Hz),0.87(6H,d,J=6.6Hz),2.20(1H,br d,J=13.1Hz),4.04(1H,br d,J=2.6Hz),7.33(1H,s),10.8(1H,br s);13C NMR(100MHz,CDCl3)δ17.5,18.6,21.8,22.6,22.7,24.1,27.2,28.0,34.3,35.0,35.6,39.3,49.5,52.6,56.7,67.6,152.2;MS(EI)m/z295(2,M+),278(28),260(20),245(8),206(19),183(38),165(13),148(15),121(100);C18H33NO2Na([M+Na]+)の精密質量の計算値は318.2409であり、実測値は318.2412であった。
9の水溶液(100mg,0.34mmol)を無水酢酸(5mL)中で1.5時間還流した。反応混合物を冷却して慎重に氷中に注ぎベンゼン(3x40mL)で抽出した。有機層を合わせてNaHC03水溶液(2x40mL)、水(30mL)で飽和し、無水Na2S04で乾燥させて蒸発させた。残渣をWatersシリカゲルSep−Packカートリッジ(5%エチルアセテート/ヘキサン)で精製して、91mg(0.28mmol,収率84%)の9を得た。[α]D−26.4(c0.75,CHCl3);IR(CHCl3)2228,1741,1241;1H NMR(500MHz,CDCl3)δ0.87(6H,d,J=6.6Hz),0.91(3H,d,J=6.6Hz),2.15(3H,s),2.46(1H,br d,J=3.2Hz),5.20(1H,s);13C NMR(125MHz,CDCl3)δ17.9,18.8,22.6,22.7,23.3,23.8,27.1,28.0,29.9,35.6,36.2,36.3,39.1,45.6,51.9,54.1,68.7,121.2,171.0;MS(EI)m/z319(18,M+),304(10),290(3),277(84),259(100),244(54),234(27),216(40),202(33),188(60),174(47),147(39),134(34),121(95);C20H33NO2Na([M+Na]+)の精密質量(ESI)の計算値は342.2409であり、実測値は342.2413であった。
10(90mg,0.28mmol)をメタノール(3mL)に溶解して、2時間メタノール(3mL)中で5%のMeONa溶液で処理した。反応混合物を飽和NH4Cl(5mL)水溶液及び水(10mL)で飽和し、メチレンジクロライド(5x40mL)で抽出し、無水Na2S04で乾燥させて蒸発させた。残渣をWatersシリカゲルSep−Packカートリッジ(20%エチルアセテート/ヘキサン)で精製して、73mg(0.26mmol,収率94%)の10を得た。[α]D−6.1(c 0.75,CHCl3);IR(CHCl3)3486,2228;1H NMR(500MHz,CDCl3)δ0.87(6H,d,J=6.6Hz),0.92(3H,d,J=6.7Hz),2.43(1H,brd,J=3.1Hz),4.10(1H,s);13C NMR(125MHz,CDCl3)δ17.9,22.6,22.7,22.9,23.9,27.1,28.0,32.8,35.7,36.2,36.3,44.7,53.4,54.2,122.5;MS(EI)m/z277(28,M+),262(34),259(18),248(16),244(24),220(30),216(18),206(100);C18H31NOの精密質量の計算値は277.2496であり、実測値は277.2395であった。
HMPA(280μl,1.62mmol)及びジエチルエーテル(700μl)中でカリウム(110mg,2.82mmol)の攪拌混合物に対して、11の溶液(70mg,0.25mmol)を、t−ブチルアルコール(65μl)及びジエチルエーテル(250μl)中に、0℃アルゴン下で滴下して加えた。混合物を室温まで加熱して5時間攪拌した。残ったカリウムを除去して、2−プロパノール数滴とベンゼン(20mL)を加えた。有機層を水(10mL)で洗浄して、無水Na2S04で乾燥させて減圧下で濃縮した。残渣をWatersシリカゲルSep−Packカートリッジ(10%エチルアセテート/ヘキサン)で精製して、54mg(0.21mmol,収率85%)の12を得た。[α]D+32.6(c 0.90,CHCl3);1H NMR(500MHz,CDCl3)δ0.78(3H,d,J=6.8Hz),0.87(6H,d,J=6.6Hz),4.06(1H,s);13C NMR(125MHz,CDCl3)δ14.7,20.2,22.7,22.9,24.7,25.3,28.0,30.8,33.1,33.5,36.3,39.3,39.7,48.6,50.3,67.9;MS(EI)m/z252(6,M+),234(21),219(23),209(26),191(8),179(4),167(13),149(89),139(47),122(90),107(35),95(80),79(87),67(88),58(100);C17H320の精密質量の計算値は252.2453であり実測値は、252.2448であった。
水(1mL)中でRuCl3xH20(10mg,0.05mmol)及びNaI04(227mg,1.06mmol)の攪拌溶液に対して、テトラクロロメタン(0.75mL)及びアセトニトリル(0.75mL)中で12の溶液(74mg,0.29mmol)を加えた。反応混合物を3日間激しく攪拌した。その後、2−プロパノール数滴と水(10mL)を加えた。反応生成物を、メチレンジクロライド(3x20mL)で抽出した。有機層を無水Na2S04で乾燥させて減圧下で濃縮した。残渣をWatersシリカゲルSep−Packカートリッジ(10〜30%エチルアセテート/ヘキサン)で精製して、13mg(0.05mmol,収率17%)の13を得た。1H NMR(400MHz,CDCl3)δ0.78(3H,d,J=6.7Hz),1.22(6H,s),2.01(1H,brd,J=12.3Hz);13C NMR(100MHz,CDCl3)δ14.3,21.3,22.2,22.6,27.8,29.3,29.7,33.0,36.5,41.6,44.1,49.6,51.0,58.0,71.0,212.0;MS(EI)m/z264(3),248(57),233(19),215(4),208(15),163(29),137(100);C17H3002Na([M+Na]+)の精密質量(ESI)の計算値は289.2144であり、実測値は289.2136であった。
無水メチレンジクロライド(250μl)中の13(12mg,45μmol)及び2,6−ルチジン(13μl,100μmol)に対して、-50℃アルゴン下でトリエチルシリルトリフルオロメタンスルフォネートを滴下して加えた。20分後、湿メチレンジクロライド数滴と水(7mL)を加えた。反応混合物をメチレンジクロライド(3x7mL)で抽出した。有機層を無水Na2S04で乾燥させて減圧下で濃縮した。残渣をWatersシリカゲルSep−Packカートリッジ(3%エチルアセテート/ヘキサン)及びHPLC(5%エチルアセテート/ヘキサン、4mL/分、Zorbax−silica10x250mm)で精製して、13mg(34μmol,収率76%)の14を得た。1H NMR(500MHz,CDCl3)δ0.56(6H,q,J=7.9Hz),0.77(3H,d,J=6.8Hz),0.94(9H,t,J=7.9Hz),1.19(6H,s);13C NMR(125MHz,CDCl3)δ6.8,7.1,14.3,21.4,22.2,22.7,27.8,29.7,29.8,29.9,32.9,36.4,41.6,45.2,49.6,51.1,58.0,73.4,212.1;MS(EI)m/z365(8),351(100),322(6),239(2),231(25),220(4),205(15),189(4),173(92);C23H4402SiNa([M+Na]+)の精密質量(ESI)の計算値は403.3008であり、実測値は403.2995であった。
無水THF(600μl)中のフォスフィンオキシド15(46mg,79μmol)の攪拌溶液に対して、THF(63μl,95μmol)中で1.5Mフェニルリチウム溶液を−20℃アルゴン下で加えた。混合物を20分間攪拌し、−78℃まで冷却した。
予備冷却した14の溶液(13mg,34μmol)を無水THF(300μl)中で、カニューレを通して加え、反応混合物を3時間−78℃で攪拌した。その後、反応混合物を4℃で一晩攪拌した。その後、エチルアセテートを加えて、有機層をブラインで洗浄し、無水Na2S04で乾燥させて減圧下で濃縮した。残渣をWatersシリカゲルSep−Packカートリッジ(ヘキサン〜2%エチルアセテート/ヘキサン、Zorbax−silica10x250mm)で精製して、その後HPLC(0.05%2−プロパノール/ヘキサン、4mL/分.,Zorbax−silica10x250mm)を行い、13.5mg(18μmol,収率53%)の保護されたビタミンD3である16を得た。UV(ヘキサン)λmax=242,251,261nm;1H NMR(500MHz,CDCl3)δ0.06(3H,s),0.11(3H,s),0.17(3H,s),0.19(3H,s),0.56(6H,q,J=8.0Hz),0.76(3H,d,J=6.7Hz),0.94(9H,t,J=8.0Hz),2.18(1H,dd,J=12.5Hz,J=8.1Hz),2.86(1H,brd,J=13.8Hz),4.42(2H,m),4.93(lH,s),4.96(1H,s),5.92(1H,d,J=11.1Hz),6.19(1H,d,J=11.1Hz);13C NMR(125MHz,CDCl3)δ−5.1,−4.9,−4.9,−4.8,6.8,7.1,18.2,18.2,22.3,23.1,25.8,25.8,27.8,29.0,29.7,29.8,29.9,31.3,33.6,36.5,38.7,45.3,47.5,49.0,50.2,52.3,71.9,72.3,73.4,106.3,113.7,122.4,132.9,143.8,152.9;MS(EI)m/z687(6),628(2),612(100),583(6),555(4),480(29),366(44);C40H7503Si3([M−t−Bu]+)の精密質量の計算値は687.5024であり、実測値は687.5028であった。
生体内で所望かつ高度に有利な生物学的活性パターンを呈する修飾したビタミンD化合物、すなわち、より緩慢に開始し、より活性の持続期間が長い化合物もまた本明細書で用いることができる。
2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25(OH)2−D3−1,3,25−トリアセテートであり、ここで、Yl=Y2=Y3でCH3COであり;
2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25(OH)2−D3−1,3,25−トリヘキサノエートであり、ここで、Yl=Y2=Y3でCH3(CH2)4COであり;
2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25(OH)2−D3−1,3,25−トリノナノエートであり、ここで、Yl=Y2=Y3でCH3(CH2)7COであり;
2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25(OH)2−D3−25−アセテートであり、ここで、Yl=Y2でHであり、Y3はCH3COである。
スキーム1
図1−競合的VDR結合
ブタ腸管受容体に対する類似体の競合的結合を、Dameら(Biochemistry 25,4523−4534,1986)の方法で行った。
タンパク質源
全長組換えラット受容体をE.coli BL21(DE3)CodonPlusRIL細胞で発現させて、2つの異なるカラムクロマトグラフィー系を用いて精製した。最初の系は本タンパク質のC末端ヒスチジンタグを用いるニッケル親和性樹脂である。本樹脂から溶出した本タンパク質をさらに、イオン交換クロマトグラフィー(S−Sepharose Fast Flow)で精製した。精製タンパク質のアリコートを液体窒素中で迅速に冷凍して、使用時まで−80℃で保存した。使用には、本タンパク質を0.1%Chaps界面活性剤を添加したTEDK50(50mMTris,1.5mM EDTA,pH7.4,5mM DTT,150mM KCI)で希釈して、添加した放射性標識リガンドのうち20%以上が前記受容体と結合しないようにした。
非標識リガンドをエタノールに溶解して、紫外分光光度計を用いてその濃度を測定した。一連の希釈物を調製して、様々な非標識リガンドを、アッセイ混合物に存在する最終エタノール濃度(<10%)を変えずに前記タンパク質に加えた。放射性標識リガンド(3H−1,25(OH)2D3)を最終濃度1nMとなるようにエタノールに加えた。
放射性標識の及び非標識のリガンドを希釈した100mclのタンパク質溶液に加えて混合し、結合平衡が起こるまで一晩インキュベートした。
HL−60の前骨髄球の単球への分化をOstremら(J.Biol.Chem.262,14164−14171,1987)が報告したように測定した。
試験薬剤
試験薬剤をエタノールに溶解して、紫外分光光度計(2MD:モル吸光係数=42,000及びImax=252nm;1,25(OH)2D3:モル吸光=18,200及びImax=265nm)を用いてその濃度を測定した。一連の希釈物を調製して、様々な薬剤濃度を細胞培養液中に存在するエタノールの最終濃度(<0.2%)を変えずに試験した。
ヒト前骨髄球性白血病(HL60)細胞を10%ウシ胎仔血清含有RPMI−1640で増殖させた。細胞を5%CO2存在下37℃でインキュベートした。
HL60細胞を1.2x105細胞/mlで播種した。播種18時間後細胞にエタノール中で薬剤を投与した。投与後4日目に、細胞を収集して、ニトロブルーテトラゾリウム還元アッセイ(Collins et al.,1979;J.Exp.Med.149:969−974,AppendixA)を行った。合計200個の細胞をカウントし、細胞内に黒青フォルマザン(formazan)堆積物を含有する数を記録することにより分化細胞の比率を測定した。単球細胞への分化の確認は、食作用活性を測定することにより決定した(データは示さず)。全ての薬剤濃度は、2重に試験した。
輸送活性を、ルシフェラーゼレポーター遺伝子の上流にある24−水酸化酵素(240Hase)遺伝子プロモーターを用いて安定して形質転換できるROS17/2.8(骨)細胞で測定した(Arbour et al.,1998)。細胞に様々な用量を与えた。投与16時間後に細胞を収集して、ルシフェラーゼ活性を照度計で測定した。
離乳雄Sprague−DawleyラットをHarlanから購入した。受領後、動物を個々の尾にマーキングして識別し、カルシウムを減らした(0.02%)食餌に切り替える前1週間はカルシウム含有(0.47%)食餌を与えた(Suda et al.,Purified Rodent Diet−Diet11;AppendixA)。水並びに0.47%又は0.02%のカルシウム及び0.3%リンを含有する精製げっ歯類食(Diet11;AppendixA)を適宜与えた。試験中、動物に最初の1週間は0.47%カルシウム含有精製食餌を与え、その後の3週間は0.02%カルシウム含有食餌を与えた。ラットに0.47%カルシウム含有精製食餌を与えた後、残りの試験期間は0.02%カルシウム含有食餌に切り替えた。0.02%カルシウム含有食餌に戻した後の2週間目に、薬剤投与を開始した。全ての薬剤を100マイクロリットルのプロピレングリコールで腹腔内投与した。続けて4つの薬剤を約24時間の間隔をあけて投与した。最終投与から24時間後に、各実験動物の尾動脈から血液を採取した。血液を室温で凝集した後、15分間3000xgで遠心分離した。血清をポリプロピレン管に移して、−20℃で保存した。0.1%塩化ランサム(lanthum)に血清を希釈し、原子吸光度計(Perkin Elmer Model3110,Shelton,CT)で吸光度を測定してカルシウムレベルを決定した。最終投与から24時間後に反転腸管法を用いて生体外で腸管カルシウム輸送を評価した。
離乳雄Sprague−DawleyラットをHarlanから購入した。受領後、動物を個々の尾にマーキングして識別し、カルシウムを減らした(0.02%)食餌に切り替える前1週間はカルシウム含有(0.47%)食餌を与えた(Suda et al.,Purified Rodent Diet−Diet11;AppendixA)。水並びに0.47%又は0.02%のカルシウム及び0.3%リンを含有する精製げっ歯類食(Diet11;AppendixA)を適宜与えた。試験中、動物に最初の1週間は0.47%カルシウム含有精製食餌を与え、その後の3週間は0.02%カルシウム含有食餌を与えた。ラットに0.47%カルシウム含有精製食餌を与えた後、残りの試験期間は0.02%カルシウム含有食餌に切り替えた。0.02%カルシウム含有食餌に戻してから2週間、動物が尾出血(tail−bled)(基準血清カルシウム)した後、薬剤投与を開始した。全ての薬剤は100マイクロリットルのプロピレングリコールで腹腔内投与した。薬剤を連続して4回、概ね24時間ごとに投与した。最終投与24時間後、血液を各々の実験動物の尾動脈から採取した。血液は、室温で凝集させた後、3000xgで15分間遠心した。血清をポリプロピレンチューブに移して−20℃で保存した。0.1%塩化ランサム(lanthum)に血清を希釈し、原子吸光度計(Perkin Elmer Model 3110,Shelton,CT)で吸光度を測定してカルシウムレベルを決定した。
図1は、(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3(「DP035」という場合もある)、(20S)−2−メチレン−19−ノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3(「2MD」という場合もある)と1α,25−ジヒドロキシビタミンD3(「C001」という場合もある)の1α,25−ジヒドロキシビタミンDのブタ腸内核受容体への結合における相対活性を示す。図1では、(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3がブタ腸内細胞核由来の1α,25−ヒドロキシビタミンD3受容体との結合において極めて活性であることが示される。
分化活性は標準アッセイで評価し、NBT還元(ニトロブルーテトラゾリウム還元)と略す。アッセイは、例えば、DeLucaら米国特許番号第4,717,721号及び Ostrem et al,J.Biol.Chem.262,14164,1987による公知の手段で行った。アッセイでは、試験化合物の分化活性は、試験化合物の所定の濃度に応じて正常細胞に分化したHL−60細胞の比率で表した。
Claims (71)
- 以下の式
を有する化合物。 - (20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3。
- 請求項1記載の少なくとも1の化合物の有効量を医薬的に許容される賦形剤と共に含有する医薬組成物。
- 有効量が組成物1グラムあたり約0.01μg〜約100μgである、請求項13記載の医薬組成物。
- 有効量が組成物1グラムあたり約0.1μg〜約50μgである、請求項13記載の医薬組成物。
- (20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3を約0.01μg〜約100μg含有する、請求項13記載の医薬組成物。
- (20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3を約0.1μg〜約50μg含有する、請求項13記載の医薬組成物
- 骨量を維持又は高めることが必要である代謝性骨疾患を治療する方法であって、以下の式
を有する化合物を前記疾患に罹患した患者に有効量投与することを含む、前記方法。 - 疾患が老人性骨粗しょう症である、請求項22記載の方法。
- 疾患が閉経後骨粗しょう症である、請求項22記載の方法。
- 疾患がステロイド誘導性骨粗しょう症である、請求項22記載の方法。
- 疾患が低骨代謝回転性骨粗しょう症である、請求項22記載の方法。
- 疾患が骨軟化症である、請求項22記載の方法。
- 疾患が腎性骨ジストロフィーである、請求項22記載の方法。
- 化合物を経口投与する、請求項22記載の方法。
- 化合物を非経口的に投与する、請求項22記載の方法。
- 化合物を経皮投与する、請求項22記載の方法。
- 化合物を1日あたり0.01μg〜100μgの用量で投与する、請求項22記載の方法。
- 化合物が(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3である、請求項22記載の方法。
- 乾癬を治療する方法であって、以下の式
を有する化合物を乾癬の患者に有効量投与することを含む、前記方法。 - 化合物を経口投与する、請求項34記載の方法。
- 化合物を非経口投与する、請求項34記載の方法。
- 化合物を経皮投与する、請求項34記載の方法。
- 化合物を局所投与する、請求項34記載の方法。
- 化合物が(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3である、請求項34記載の方法。
- 有効量が前記化合物の約0.01μg/日〜約100μg/日である、請求項34記載の方法。
- 白血病、大腸癌、乳癌、皮膚癌又は前立腺癌を治療する方法であって、以下の式
を有する化合物を患者に有効量投与することを含む、前記方法。 - 化合物を経口投与する、請求項41記載の方法。
- 化合物を非経口投与する、請求項41記載の方法。
- 化合物を経皮投与する、請求項41記載の方法。
- 化合物を約0.01μg/日〜約100μg/日の用量で投与する、請求項41記載の方法。
- 化合物が(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3である、請求項41記載の方法。
- 骨強度を高める方法であって、以下の式
を有する化合物をそのような治療が必要な患者に有効量投与することを含む、前記方法。 - 骨強度が皮質強度である、請求項47記載の方法。
- 骨強度が骨梁強度である、請求項47記載の方法。
- 化合物を経口投与する、請求項47記載の方法。
- 化合物を非経口投与する、請求項47記載の方法。
- 化合物を経皮投与する、請求項47記載の方法。
- 化合物を1日あたり約0.01μg〜約100μgの用量で投与する、請求項47記載の方法。
- 化合物が(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3である、請求項47記載の方法。
- 自己免疫疾患を治療する方法であって、以下の式
を有する化合物を前記疾患の患者に有効量投与することを含む、前記方法。 - 疾患が多発性硬化症である、請求項55記載の方法。
- 疾患が真性糖尿病である、請求項55記載の方法。
- 疾患が狼瘡である、請求項55記載の方法。
- 化合物を経口投与する、請求項55記載の方法。
- 化合物を非経口投与する、請求項55記載の方法。
- 化合物を経皮投与する、請求項55記載の方法。
- 化合物を約0.01μg/日〜約100μg/日の用量で投与する、請求項55記載の方法。
- 化合物が(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3である、請求項55記載の方法。
- 炎症性大腸炎を治療する方法であって、以下の式
を有する化合物を前記疾患の患者に有効量投与することを含む、前記方法。 - 疾患がクローン病である、請求項64記載の方法。
- 疾患が潰瘍性大腸炎である、請求項64記載の方法。
- 化合物を経口投与する、請求項64記載の方法。
- 化合物を非経口投与する、請求項64記載の方法。
- 化合物を経皮投与する、請求項64記載の方法。
- 化合物を約0.01μg/日〜約100μg/日の用量で投与する、請求項64記載の方法。
- 化合物が(20S)−2−メチレン−18,19−ジノル−1α,25−ジヒドロキシビタミンD3である、請求項64記載の方法。
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