JP2007527408A - PDK−1/Aktシグナル伝達インヒビター - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、米国仮特許出願番号60/508,619(発明の名称:「PDK−1/Akt Signaling Inhibitors」;2003年10月3日出願)および米国仮特許出願番号60/509,814(発明の名称:「PDK−1/Akt Signaling Inhibitors」;2003年10月8日出願)に対する優先権を主張する;これらの出願の各々の全体は、本明細書において参考として援用される。
本発明は、少なくとも一部、National Institutes of Health Grant CA94829およびArmy Grant DAMD 17−02−1−0117のもとでの、連邦政府支援によってなされた。当該連邦政府は、本発明において一定の権利を有し得る。
ホスホイノシチド(PI)3−キナーゼ/PDK−1/Aktシグナル伝達カスケードは、細胞の増殖および生存を調節する、多血に対するレセプターチロシンキナーゼおよびサイトカイン媒介性経路の収束点を表し、そして細胞の生存を維持する多くの細胞外の栄養因子の能力を説明するフレームワークを提供する。構成的成長因子―レセプター活性および/またはPTEN模倣(imitation)に起因するこのシグナル伝達カスケードの調節異常によって、Aktがアップレグレーションを引き起こして、次いで腫瘍の浸潤性、血管形成、および進行を促進する。従って、PDK−1/Aktシグナル伝達インヒビターは、有用な化学療法剤または化学予防剤の開発に関係すると言い換えられる。潜在的PDK−1/Aktシグナル伝達インヒビターである、新しい化合物を開発する必要性が存在する。さらに、PDK−1/Aktシグナル伝達阻害に基づく化学療法剤および化学予防剤を開発する必要性が存在する。
式Iの化合物
(発明の詳細な説明)
新しいクラスのPDK−1/Aktシグナル伝達インヒビターが提供される。本明細書で記述する化合物は、癌細胞のような所望されない増殖細胞におけるアポトーシスを誘導するのに有用である。本明細書で記述する化合物はまた、創傷治癒の促進および瘢痕の予防に有用である。本明細書で記述する化合物はさらに、再狭窄を予防するのに適用される。本明細書で記述する化合物はさらに、臓器移植に適用される。
動物による予備試験により、これらの化合物は経口的に吸収され得、TGIより数倍高い平均血清濃度を生じ、そしてより重要なことに1ヶ月間の毎日の経口投与後、動物に対しほとんど毒性を生じないことが分かった(データは示されない)。
(材料)
4−[5−(4−メチルフェニル)−3−(トリフルオロメチル)−1H−ピラゾール−1−イル]ベンゼンスルホンアミドを、Amerisource Health(Malvern、PA)から得たカプセルから酢酸エチルで抽出し、次いで、酢酸エチルおよびヘキサンの混合物から再結晶を行った。Cell Death Detection ELISA法キットを、Roche Diagnostics(Mannheim、Germany)から購入した。Aktおよびホスホ−473 Ser Aktに対するウサギポリクローナル抗体をCell Signaling Technologies (Beverly、MA)から得た。マウスモノクローナル抗ポリ(ADPリボース)ポリメラーゼ(PARP)抗体を、Phamingen(Sari Diego、CA)から得た。PDK−1キナーゼアッセイキットをUpstate(Lake Placid、NY)から購入した。他の化学物質および生化学物質を、他に述べない限り、Sigma−Aldrich(St.Louis、MO)から得た。核磁気共鳴スペクトル(1H NMR)をBruker 250 MHzで測定した。化学シフト(δ)は、他に述べない限り、CDC13を溶媒として用いTMSピークに対する百万分率(ppm)で報告する。高分解能エレクトロスプレーイオン化質量分析を、3−Tesla Finnigan FTMS−2000フーリエ変換質量分析計で行った。
表1に列挙した化合物を、以下に示すように調製し、そして試験した。化学物質名、プロトン核磁気共鳴(1H NMR)および高分解能質量分析(HRMS)データを以下にまとめる。化合物1〜36を合成するのに使用した手順を以下の実施例に記述する。
PC−3(p53−/−)ヒトアンドロゲン非反応性前立腺癌細胞は、American Type Tissue Collection(Manassas、 VA)から譲渡された。細胞を、5% CO2を含む、加湿したインキュベーター中37℃で、10% ウシ胎児血清(FBS;Gibco)を補充したRPMI 1640培地(Gibco、Grand Island、NY)で培養した。
4−[5−(4−メチルフェニル)−3−(トリフルオロメチル)−1H−ピラゾール−1−イル]ベンゼンスルホンアミドおよびその誘導体のPC−3細胞生存度に対する効果を、MTT{[3−(4,5−ジメチルチアゾール−2−イル)−2,5−ジフェニル−2H−テトラゾリウムブロミド]}アッセイを使用することによって、6個の反復で評価した。細胞を、96−ウェル、平底プレート中の10% FBSを補充したRPMI 1640培地で24時間培養し、1% 血清含有RPMI 1640培地中、異なった時間間隔で、DMSO(最終濃度≦0.1%)中に溶解した種々の濃度の化合物1〜36に暴露した。コントロールは、薬物で処理した細胞中の濃度に等しい濃度でDMSOビヒクルを受容した。上記培地を除き、10% FBS含有RPMI 1640培地中で200μlの0.5mg/ml MTTで置き換え、そして細胞をCO2インキュベーターで37℃で2時間インキュベートした。上清を上記ウェルから除き、上記還元したMTT染料を200μL/ウェルのDMSOに溶解した。570nmでの吸光度をプレートリーダーで決定した。
PC−3細胞を、50,000細胞/ウェルで6−ウェルプレート中の10% FBS含有RPMI−1640培地中に播種した。24時間の付着期間後に、細胞を三連で、10% FBS含有RPMI−1640培地中の表示された濃度の化合物1〜36か、またはDMSOビヒクルで処理した。異なった時間間隔で、トリプシン処理によって細胞を収穫し、そしてCoulterカウンターモデルZ1 D/T(Beckman Coulter、Fullerton、CA)を使用してその数を数えた。
二方法を使用して薬剤誘導性アポトーシス細胞死を判定した。この二方法とは、Cell Death Detection ELISAキット(Roche Diagnostics.Mannheim、Germany)によるDNA断片の検出およびポリ−(ADP−リボース)ポリメラーゼ(PARP)開裂のウェスタンブロット分析である。ELISA法を、その製造業者の手引きに従って行った。これは、誘導されたアポトーシス死後に生成されたモノヌクレオソームまたはオリゴヌクレオソームの形態の細胞質のヒストン結合DNA断片の定量決定に基づいている。簡単に言うと、4×105 PC−3細胞を、処理する前に、T−25フラスコで24時間培養した。細胞を、上記表示した濃度で6〜24時間、DMSOビヒクルで処理するか、または上記試験薬剤で処理し、回収し、2×103 PC−3細胞に相当する細胞溶解物をELISA法で使用した。PARP開裂アッセイの場合、薬剤で処理した細胞は、処理後4〜8時間で回収し、氷冷したPBSで洗浄し、そして20mMトリス−HCl、pH8、137mM NaCl、1mM CaCl2、10% グリセロール、1% Nonidet P−40、0.5% デオキシコール酸塩、0.1% SDS,100μM 4−(2−アミノエチル)ベンゼンスルホニルフルオリド、10μg/mL ロイペプチン、および10μg/mL アプロチニン含有溶解緩衝液に再懸濁した。可溶性細胞溶解物を、5分間の10,000gでの遠心分離後に回収した。各々の溶解物からの等量タンパク質(60〜100μg)を8% SDS−ポリアクリルアミドゲルに再溶解した。バンドをニトロセルロース膜に移し、そして抗PARP抗体を用いる免疫ブロット法により分析した。
Aktおよびホスホ−Aktのウェスタンブロット分析に関する一般的手順を以下に記述する。細胞をPBSで洗浄し、超音波ソニケーターで5秒間処理したSDSサンプル緩衝液に再懸濁し、そして5分間煮沸した。短期の遠心分離後、可溶性フラクションから等量タンパク質濃縮物を、Minigel器具上の10% SDS−ポリアクルルアミドゲルに再溶解し、そして半乾燥移送用セルを使用してニトロセルロース膜に移した。トランスブロットした膜を0.05% Tween 20含有TBS(TBST)を用いて3回洗浄した。5%の無脂肪乳含有TBSTを用いて60分間ブロックした後、上記膜を、TBST−5%低脂肪ミルク中に1:1,000の希釈率で上記一次抗体と共に4℃で12時間インキュベートし、そしてTBSTで3回洗浄した。上記膜を、室温で1時間、ヤギ抗ウサギIgG−HRP結合体(1:1,000)で探索(probe)し、そしてTBSTで3回洗浄した。免疫ブロットを、増強された化学発光により視覚化した。
このインビトロアッセイを、販売元の手引きに従ってPDK−1キナーゼアッセイキット(Upstate、Lake Placid、NY)を使用して行った。この無細胞アッセイは、DMSOビヒクルまたは上記試験薬剤の存在の下での、下流キナーゼ血清およびグルココルチコイド制御キナーゼ(これは、次に、[γ−32]−ATPを有するAkt/SGK特異ペプチド基質RPRAATFをリン酸エステル化する)を活性化する組換えPDK−1の能力に基づく。次に、[32P]でリン酸エステル化したペプチド基質を、P81ホスホセルロース紙を使用して残基[γ−32P]−ATPから分離し、0.75%リン酸を用いる3回の洗浄後シンチレーション計数計で定量した。報告される値は2つの独立した測定値の平均を表す。
Akt免疫沈降を、公開されている修正した手順に従って行った。PC−3細胞を、明示した濃度で2時間、DMSOビヒクルまたは上記試験薬剤を用いて処理し、次に50mM トリス−HCI、pH7.5、1% Triton X−100、1mM EDTA、1mM EGTA、50mM フッ化ナトリウム、10mM β−グリセロリン酸ナトリウム、0.1% 2−メルカプトエタノール、0.1mM フッ化フェニルメチルスルホニル、ならびに1μg/mLの各々のアプロチニン、ペプスタチン、およびロイペプチン含有緩衝液Aに4℃で、1時間で溶解した。細胞溶解物を、10,000gで5分間遠心分離した。上清を、4℃で60分間、抗Aktで処理し、次いでさらに60分間タンパク質Gアガロースビーズで処理した。上記免疫沈降物を使って、上述したAkt/SGK−特異的ペプチド基質RPRAATFを用いて、Aktキナーゼ活性を分析した。値は、2つの独立した決定値の平均を表す。
各々の実験を、別に述べない限り、三つ組みで行った。全ての実験を、少なくとも二回別の時期に行った。適切な場合、データを、平均±95%信頼区間として表した。
化合物70および71の両方は、DNA断片化およびPARP開裂で立証されたように、用量依存的様式で、1% FBS含有培地でPC−3細胞のアポトーシス死を誘導した。これらの薬剤は、2.5μMより高濃度でアポトーシス誘導において化合物59より高い能力を示した。さらに、これらの誘導体は、白血病、黒色腫、ならびに肺、結腸、脳、卵巣、乳房、前立腺、および腎臓の癌を表わす60種のヒト腫瘍細胞株についてのスクリーニングのために、National Cancer Institute (NCI)のDevelopmental Therapeutic Program (DTP)にかけた。5% FBS含有培地中における2日の暴露後の、腫瘍細胞の各クラスからの1種の代表的細胞株の用量−反応データを図1Cに示す。この図には、1、RPMI−8226 白血病細胞;2、NCI−H322M 非小細胞肺癌細胞;3、HT29結腸癌細胞;4、U251 CNS癌細胞;5、SK−MEL−28黒色腫癌細胞;6、SK−OV−3卵巣癌細胞;7、RXF 393腎臓癌細胞;8、PC−3前立腺癌細胞;9、MDA−MB−231乳癌細胞が含まれる。これらの細胞株の多くは、0.1μM程度の低い濃度で両薬剤の成長阻害効果に反応した。
全ての化学物質薬剤および有機溶媒を、別に記述がない限り、Aldrich(St.Louis,MO)から購入した。化合物1〜24は、図式1に記述されている2工程の一般的手順に従って合成し、式中Arはそれぞれの芳香環構造を表す。
5mLの無水テトラヒドロフラン(THF)中の水素化ナトリウム(NaH;0.13g、5.4mmol)の懸濁液に、アルゴン下でエチルトリフルオロアセテート(CF3COOEt;0.64g、4.5mmol)を加えた。25℃で10分攪拌後、5mLのTHF中の2−アセチルフェナントレン(1g、4.5mmol)を、上記溶液に滴下した。混合物は透明になり、そして30分以内にオレンジ色になった。さらに2時間攪拌後、混合物を減圧下で濃縮した。残留物を水に懸濁し、そしてエチルアセテート(15mL)で2回抽出した。この有機相を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥し、そして減圧下で濃縮し乾固して上記生成物(黄色の固体;1.29g、90%収率)を得た。この生成物をさらに精製することなく、直接使用した。
4−ヒドラジノベンゼン−1−スルホンアミドハイドロクロライド(1.1g;4.9mmol)を、40mLのエタノール中の1,1,1,−トリフルオロ−4−ヒドロキシ−4−フェナントレン−2−イル−ブト−3−エン−2−オン(1.29g、4.1mmol)の攪拌溶液に加えた。この混合物を、12時間還流し、室温まで冷却し、そして減圧下濃縮して乾固した。この残留物を、エチルアセテートに溶解し、そして水で洗浄した。有機層を、硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして減圧下で濃縮した。この粗生成物を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィーで精製し、59を得た(1.52g、80%収率)。
化合物61〜72を、前述の工程1の生成物である1,1,1−トリフルオロ−4−ヒドロキシ−4−フェナントレン−2−イル−ブト−3−エン−2−オンを共通の前駆体(図式3、エラー!参照源が見つからない)として合成した。
(4−カルバモイルフェニル)−ヒドラジンハイドロクロライド(0.92g、4.9mmol)を、25℃の40mLのエタノール中の1,1,1−トリフルオロ−4−ヒドロキシ−4−フェナントレン−2−イル−ブト−3−エン−2−オン(1.29g、4.1mmol)の攪拌溶液に加えた。この混合物を12時間還流して、室温まで冷却し、そして減圧下濃縮して乾固した。この残留物を、エチルアセテートに溶解し、そして水で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして減圧下で濃縮した。この粗生成物を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィー(エチルアセテート−ヘキサン、1:1)で精製し、61を得た(1g、60%収率)。
60mLのエタノール中の1,1,l−トリフルオロ−4−ヒドロキシ−4−フェナントレン−2−イル−ブト−3−エン−2−オン(2.45g、7.7mmol)の攪拌溶液に、25℃の4−シアノフェニルヒドラジンハイドロクロライド(2.53g、15mmol)を加えた。この混合物を12時間還流下で攪拌して、室温まで冷却し、そして減圧下濃縮して乾固した。この残留物をエチレンクロライドに溶解し、そして水で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、そして減圧下で濃縮した。この粗生成物を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィー(エチルアセテート−ヘキサン、1:4)で精製し、62を得た(2.7g、85%収率)。
ヒドロキシルアミンハイドロクロライド(25mg、0.36mmol)を、メタノール(3mL)中のNa金属(8.3mg、0.36mmol)の懸濁液に加えた。この混合物を、10分間室温で攪拌し、そして化合物62(1224mg、0.3mmol)を加えた。この混合物を2時間還流して、その後、さらに16時間25℃で攪拌し、減圧下で濃縮した。残留物を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィー(エチルアセテート−ヘキサン、1:4から1:1)で精製し、63を得た(120mg、76%収率)。
5mLの10% HC1中の化合物62(125mg、0.3mmol)、NH4Cl(123.7mg)、およびNaN3(58.5mg、0.9mmol)を含む混合物を加え、20mLのメチレンクロライドで2回抽出した。有機層を硫酸ナトリウム上で乾燥し、そして減圧下で濃縮し、乾固した。この粗生成物を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィー(エチルアセテート−ヘキサン、1:4)で精製し、64を得た(96mg、70%収率)。
ヒドロキシルアミンハイドロクロライドの代わりにヒドラジン一水和物(153mg、3.1mmol)を使用した以外は、65の場合と同じ様式で化合物66(124mg、85%収率)を合成した。
(a)(4−ヒドラジノフェニル)アセトニトリルハイドロクロライドの調製。水(20mL)中の亜硝酸ナトリウム(3.15g、45.7mmol)の溶液を、濃塩酸溶液(55mL)中の4−アミノベンゾニトリル(5g、42.3mmol)の冷却(−15℃)した、攪拌懸濁液に温度が−10℃未満に保たれるような速度で滴下した。添加終了後、この反応混合物を迅速にろ過し固体を取り除き、そしてこのろ液を濃塩酸溶液(37mL)中のSnCl2・2H2O(47.7g、0.21mol)の冷却(−20℃)した、攪拌溶液に、温度が−10℃未満に保たれるような速度で複数回にわたって加えた。この溶液をさらに15分間攪拌した後、溶液中の固体を回収し、ジエチルエーテル(4×25mL)で洗浄し、そして乾燥し(4−ヒドラジノフェニル)アセトニトリルハイドロクロライド(5.6g、78%)を得た。(b)化合物67。エタノール(20mL)中の(4−ヒドラジノフェニル)アセトニトリルハイドロクロライド(0.32g、1mmol)および1,1,1−トリフルオロ−4−ヒドロキシ−4−フェナントレン−2−イル−ブト−3−エン−2−オン(0.18g、1.1mmol)の混合物を、還流下で24時間攪拌し、室温に冷却し、減圧下濃縮して乾固し、そしてエチルアセテートに溶解した。有機層を硫酸マグネシウム上で乾燥し、そして減圧下で濃縮し、乾固した。この粗生成物を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィー(ヘキサン−エチルアセテート、2:1)で精製し、67を得た(0.35g、81%収率)。
エタノール(10mL)中の化合物67(0.43g、1mmol)およびヒドロキシアミンハイドロクロライド(0.075g、1.1mmol)の溶液を、還流下8時間攪拌し、そして減圧下濃縮して乾固した。残留物を水に溶解し、飽和NaHCO3溶液を加えてpH8〜9にし、そしてエチルアセテートで抽出した。有機層を硫酸マグネシウムで乾燥し、そして減圧下で濃縮し、乾固した。この粗生成物を、ジエチルエーテル−ヘキサン中で再結晶し、化合物68を得た(0.32g、71%収率)。
トルエン(5mL)中に、化合物67(0.43g、1mmol)、アジ化ナトリウム(0.08g、1.2mmol)およびトリエチルアミンハイドロクロライド(0.12g、1.2mmol)を含む混合物を、100℃で5時間攪拌し、室温に冷却し、そして水(10mL)で抽出した。その水相に、36% 塩化水素溶液を滴下し、生じたテトラゾール69を塩析した。ろ過後、その固体を減圧下で乾燥し、化合物33を得た(0.39g、84%収率)。
40mLのエタノール中の1,1,1−トリフルオロ−4−ヒドロキシ−4−フェナントレン−2−イル−ブト−3−エン−2−オン(1.29g、4.1mmol)の溶液に、4−ニトロフェニルヒドラジンハイドロクロライド(0.93g、4.9mmol)を攪拌しながら加え、1時間還流し、室温まで冷却し、そして減圧下で濃縮し乾固した。残留物をエチルアセテートに溶解し、そして水で洗浄した。この有機相を硫酸マグネシウム上で乾燥し、減圧下で濃縮し乾固した。この粗生成物を、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、化合物IIIを得た(0.88g、50%収率)。
20mL エタノール中の化合物III(0.88g、2mmol)の溶液に、酸化白金(27mg、0.12mmol)を加え、H2下、55psiで12時間攪拌し、ろ過して触媒を除去し、そして減圧下で濃縮して乾固した。粗生成物をシリカゲルクロマトグラフィーで精製し、化合物IV(0.57g、70%収率)を得た。
10mLのテトラヒドロフラン中のt−ブチルオキシカルボニル(tBOC)−グリシン(0.25g、1.4mmol)および化合物IV(0.57g、1.4mmol)の溶液に、1−[3−(ジメチルアミノ)プロピル]−3−エチルカルボジイミドハイドロクロライド(0.41g、2.1mmol)を加え、25℃で12時間攪拌し、そしてロータリーエバポレーター中において減圧下で濃縮乾固した。この残留物を水に懸濁し、そして生成物をエチルアセテートで抽出した。有機相を、硫酸マグネシウム上で乾燥し、そして減圧下で濃縮乾固し、化合物V(0.67g、85%収率)を得た。化合物V(0.67g、1.2mmol)を、0.7mLの濃HCl溶液を含有する8mLのエチルアセテートに溶解し、室温で2時間攪拌し、そして減圧下で濃縮乾固した。粗生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、化合物70を白色粉末(0.49g、90%)として得た。
7mLのエタノール中の化合物IV(0.57g、1.4mmol)の溶液に、シアナミド(89mg、2.1mmol)および1.5mLの1N HClを加えた。この混合物を24時間還流して、そして減圧下で濃縮乾固した。この生成物をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、化合物71を白色固体(0.25g、40%収率)として得た。
酢酸(50mL)、水(12mL)、およびエタノール(20mL)を含む250mL 丸底フラスコに、化合物IV(2.25g、5.6mmol)を加え、次いでイソシアン酸ナトリウム(0.74g、11.2mmol)を加えた。この反応を1.5時間攪拌し、そして1Nの水酸化ナトリウム、次いで水酸化ナトリウムペレットを添加して中和し、この溶液のpHを7.0まで変化させた。この生成物を分離し、そして100mLの水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、そして溶媒を除去して粗生成物を得た。精製をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで(ヘキサン−エチルアセテート、3:2からヘキサン−アセトン、1:3)によって行い、化合物72を得た。
表4の化合物を上記実施例の方法を使用して調製した。
上記癌スクリーニングパネルのヒト腫瘍細胞株を、5% ウシ胎児血清および2mM L−グルタミンを含むRPMI 1640培地で培養する。典型的なスクリーニング実験については、個々の細胞株の倍加期間に依存して、細胞を、5,000〜40,000細胞/ウェルの範囲のプレーティング密度で96ウェルマイクロタイタープレート中に接種する。細胞接種後、実験薬物を添加する前に、上記マイクロタイタープレートを、37℃、5% CO2、95% 空気および100% 相対湿度で24時間インキュベートした。
Ti≧Tzの場合の濃度に対して[(Ti−Tz)/(C−Tz)]×100
Ti<Tzの場合の濃度に対して[(Ti−Tz)/Tz]×100
3個の用量反応パラメーターを、各々の実験用薬物に対して計算する。50%(GI50)の成長阻害を、[(Ti−Tz)/(C−Tz)]×100=50から計算する。これは薬物インキュベーション中におけるコントロール細胞の正味タンパク質増加(SRB染色により測定される)における50%減少の結果をもたらす薬物濃度である。全成長阻害(TGI)を生じる薬物濃度は、Ti=Tzから計算される。処理後の正味損失を表すLC50(最初における薬物濃度と比較して、薬物処理の終わりでの測定されたタンパク質において50%減少の結果となる薬物の濃度)は、[(Ti−Tz)/Tz]×100=−50から計算される。活性のレベルに達する場合、値はこれらの3個のパラメーターの各々に対し計算される。しかし、この効果が達しないか、またはこの効果を超える場合、上記パラメーターに対する値は、試験された最大濃度または最小濃度より大きいか、または小さい濃度として表される。
Claims (26)
- 請求項1に記載の化合物であって、ここでXはC1〜C4ハロアルキルである、化合物。
- 請求項2に記載の化合物であって、ここでXはCF3である、化合物。
- 請求項1に記載の化合物であって、ここでArはハロ、C1〜C4アルキル、C1〜C4ハロアルキル、アジド、C1〜C4アジドアルキル、アリール、アキルアリール、ハロアリール、ハロアルキルアリール、およびそれらの組み合わせからなる群より選択される1個以上のラジカルで、任意の置換され得る位置において置換されている、化合物。
- 請求項1に記載の化合物であって、ここでArは2−ナフチル、4−ビフェニル、9−アントリル、2−フルオレニル、4−アジドフェニル、4−アジドメチルフェニル、4−(2−アジドエチル)フェニル、4−(3−アジドプロピル)フェニル、4−(4−アジドブチル)フェニル、4−(4−アジドフェニル)フェニル、4−(4−アジドメチルフェニル)フェニル、4−メチルフェニル、4−エチルフェニル、4−プロピルフェニル、4−ブチルフェニル、4−(2−ブロモエチル)フェニル、4−(3−ブロモプロピル)フェニル、4−(4−ブロモブチル)フェニル、4−(トリフルオロメチル)フェニル、4−(4−メチルフェニル)フェニル、4−(4−ブロモメチルフェニル)フェニル、4−(4−ブチルフェニル)フェニル、4−(4−tert−ブチルフェニル)フェニル、2−クロロフェニル、4−クロロフェニル、2,4−ジクロロフェニル、3,4−ジクロロフェニル、2,5−ジクロロフェニル、2,4−ジメチルフェニル、2,5−ジメチルフェニル、3,4−ジメチルフェニル、3,5−ジメチルフェニル、4−(4−クロロフェニル)フェニル、4−(3,5−ジクロロフェニル)フェニル、4−(2,3−ジクロロフェニル)フェニル、4−(3,5−ジメチルフェニル)フェニル、4−(2,4,5−トリクロロフェニル)フェニル、4−(4−トリフルオロメチルフェニル)フェニル、2−フェナントレニル、3−インドリル、2−ピロリル、および4−(ベンジル)フェニルからなる群より選択される、化合物。
- 請求項5に記載の化合物であって、ここでArは4−(2−ブロモエチル)フェニル、4−(3−ブロモプロピル)フェニル、4−(2−アジドエチル)フェニル、4−(3−アジドプロピル)フェニル、4−ブチルフェニル、4−t−ブチルフェニル、2−ナフタレニル、3−インドリル、4−ビフェニルイル、4’−クロロ[1,1’−ビフェニル]−4−イル、3’,5’−ジクロロ[1,1’−ビフェニル]−4−イル、2’,3’−ジクロロ[1,1’−ビフェニル]−4−イル、4’―メチル[1,1’−ビフェニル]−4−イル、4’―トリフルオロメチル[1,1’−ビフェニル]−4−イル、4’―ブロモメチル[1,1’−ビフェニル]−4−イル、3’,5’−ジメチル[1,1’−ビフェニル]−4−イル、4’―ブチル[1,1’−ビフェニル]−4−イル、4’―tert−ブチル[1,1’−ビフェニル]−4−イル、4−(フェニルメチル)フェニル、9H−フルオレン−2−イル、9−アントラセニル、2−フェナントレニル、9−フェナントレニルからなる群より選択される、化合物。
- 請求項6に記載の化合物であって、ここでArは、2−フェナントレニルである、化合物。
- 請求項1に記載の化合物であって、ここでRはアミノアセタミドおよびグアニジンから選択される、化合物。
- 請求項1に記載の化合物であって、ここでXはCF3であり、Arは2−フェナントレニルであり、そしてRはアミノアセタミドおよびグアニジンから選択される、化合物。
- 請求項10に記載の化合物であって、ここでXはC1〜C4ハロアルキルである、化合物。
- 請求項11に記載の化合物であって、ここでXはCF3である、化合物。
- 請求項10に記載の化合物またはそれらの薬学的に受容可能な塩であって、ここでRはアミノアセタミドおよびグアニジンから選択される、化合物またはそれらの薬学的に受容可能な塩。
- 請求項14に記載の化合物であって、ここでXはC1〜C4ハロアルキルである、化合物。
- 請求項15に記載の化合物であって、ここでXはCF3である、化合物。
- 請求項14に記載の化合物またはそれらの薬学的に受容可能な塩であって、ここでRはアミノアセタミドおよびグアニジンから選択される、化合物またはそれらの薬学的に受容可能な塩。
- 請求項20に記載の方法であって、ここで、前記急速に増殖する細胞は癌細胞であり、ここで、該癌細胞は、白血病、非小細胞肺癌、結腸癌、中枢神経系の癌、黒色腫、卵巣癌、腎臓癌、前立腺癌、および乳癌からなる群より選択される、方法。
- 請求項23に記載の方法であって、ここで前記被験体はヒトである、方法。
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