JP2007522437A - 生物系における作用、特に予期せぬ治療効果又は毒作用、を発見及び定量するための、化合物及び化合物の組合せのハイスループットスクリーニング方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は米国仮特許出願第60/525,261号(出願日2003年11月25日)の利益を主張するものであり、その開示は参照によりその全体を本明細書に組み入れる。
本発明は、生物系における作用について、化合物、化合物の組合せ又は化合物の混合物(すなわち、新規又は既知の化学物質及び新規又は既知の生物学的因子を含む薬剤及び薬剤候補)をスクリーニングする方法に関する。開示する方法は、薬剤作用の標的として、代謝経路(合成及び崩壊又は分子のプールへの投入若しくは分子のプールからの除去速度)を介して分子の流速をin vivoで測定かつ定量する。開示する方法は、ハイスループット、大規模の、自動化の適用が可能である。この方法は特に、創薬、薬剤開発及び薬剤承認(DDDA)の間に、薬剤又は薬剤候補の予期せぬ又は偶然の作用を検出及び確立することに適用可能である。本明細書に開示する方法は、第2治療クレーム(「新規用途」又は「新規指標(indications)」)を確立すること及び既知の化合物及び新規化合物の毒性を判定するのに特に適切である。
創薬、薬剤開発及び薬剤承認(DDDA)の現代のシステムは、非常に具体的でありかつ標的を対象とするものである。このシステムは目的とする生化学的作用及び分子作用のモデル上に構築される。新規化合物(すなわち、化学物質及び生物学的因子)は、目的とする治療標的へのその作用に基づいて同定され、最適化されかつ評価される。これらの目的とする治療標的は典型的には、目的の疾患プロセスに関与すると考えられるタンパク質又は遺伝子である(薬剤標的)。他の細胞高分子も薬剤標的としてますます重要になっている(例えばmRNA)。
本発明は、1以上の化合物、化合物の組合せ又は化合物の混合物に対する曝露に応答して、目的の1以上の代謝経路内の分子流速を測定かつ定量する方法に関し、この方法は1以上の化合物、化合物の組合せ又は化合物の混合物によって誘起される予期せぬ若しくは意外な作用(又はその両方)を研究者が発見することを可能にする。本発明の方法は、ハイスループットスクリーニングアッセイを含む。本発明の一実施形態では、予期せぬ又は意外な作用は治療作用である。本発明の別の実施形態では、予期せぬ又は意外な作用は毒作用である。本発明の方法は、1以上の代謝経路の代謝流速を改変する化合物の同定を可能にする。
本発明は、生物系における化合物、化合物の組合せ又は化合物の混合物(例えば、新規化学物質、既に承認された小分子化合物を含む既知の薬剤、新規生物学的因子、又は既に承認された生物学的因子を含む既知の生物学的因子)の作用(特に偶然の又は予期せぬ作用)を、目的の代謝経路内の分子流速(すなわち、合成及び崩壊又は投入及び除去速度)を測定することによって検出する方法に関する。標的の代謝経路内の分子流速は、化合物の作用を確立しかつ定量するためのバイオマーカーとして使用される。同位体標識した基質分子は生物系の1以上の細胞、組織又は生物に投与されるか又は接触される(すなわち、1以上の細胞、組織又は生物を同位体標識した基質分子に曝露することによって、該1以上の細胞、組織又は生物への暴露を構成する)。次いで、目的とする1以上の代謝経路内の分子流速を決定するために、目的とする1以上の代謝経路内の1以上の標的分子の、同位体含量及び/若しくはパターン又は同位体含量及び/若しくはパターンの変化の速度が、質量分析法の使用によって最適に測定される。
本発明の実行には、特に示唆がない限り、分子生物学(組み換え技術を含む)、微生物学、細胞生物学、生化学及び免疫学(これらは当業者の技術的範囲内である)の従来技術が採用されよう。そのような技術はMolecular Cloning: A Laboratory Manual, 第2版(Sambrookら, 1989) Cold Spring Harbor Press; Oligonucleotide Synthesis (M.J. Gait,編, 1984); Methods in Molecular Biology, Humana Press; Cell Biology: A Laboratory Notebook (J.E. Cellis,編, 1998) Academic Press; Animal Cell Culture (R.I. Freshney,編, 1987); Introduction to Cell and Tissue Culture ( J.P. Mather及びP.E. Roberts, 1998) Plenum Press; Cell and Tissue Culture: Laboratory Procedures (A. Doyle, J.B. Griffiths,及びD.G. Newell編., 1993-8) J. Wiley及びSons; Methods in Enzymology (Academic Press, Inc.); Handbook of Experimental Immunology (D.M. Weir及びC.C. Blackwell編); Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells (J.M. Miller及びM.P. Calos編, 1987); Current Protocols in Molecular Biology (F.M. Ausubelら編, 1987); PCR: The Polymerase Chain Reaction, (Mullisら編, 1994); Current Protocols in Immunology (J.E. Coliganら編, 1991); Short Protocols in Molecular Biology (Wiley及びSons, 1999);並びにHellerstein及びNeeseによるMass isotopomer distribution analysis at eight years: theoretical, analytic and experimental considerations(Am J Physiol 276 (Endocrinol Metab. 39) E1146-E1162, 1999)等の文献で十分に説明される。さらに、特に断りがない限り、市販のアッセイキット及び試薬を用いる手順は、典型的には、製造者に定義されるプロトコールに従って使用されよう。
特に定義がない限り、本明細書で使用される全ての専門用語、記号及び他の科学的専門用語は、本発明が属する分野の当業者によって共通して理解される意味を有するものとする。一部の場合では、共通して理解された意味を有する用語が明確に及び/又は容易に参照できるように本明細書で定義され、本明細書でそのような定義を含むことにより、必然的に当該技術分野で一般的に理解されているものを超えて実質的な差異を表すように解釈されるべきではない。本明細書で記載又は引用される技術及び手順は、当業者によって一般的に十分理解され、従来の方法論(例えばHellerstein及びNeeseによるMass isotopomer distribution analysis at eight years: theoretical, analytic and experimental considerations(Am J Physiol 276 (Endocrinol Metab. 39) E1146-E1162, 1999等)を用いて共通して使用される。必要に応じて、市販のキット及び試薬の使用を含む手順が、特に断りがない限り、製造者が定義するプロトコール及び/又はパラメーターに従って一般的に実施される。
本発明は、生物系における化合物の作用、特に偶然の又は意外な作用を、生物系内の目的とする1以上の代謝経路の1以上の分子の分子流速を測定することによって検出する方法に関する。第1に、少なくとも1つの同位体標識した基質分子が、1以上の標的代謝経路内の目的とする1以上の標的分子にin vivoで組み込まれるのに十分な期間で、1以上の細胞、組織又は生物に投与される。一実施形態では、同位体標識した基質分子は1以上の安定同位体(すなわち非放射性同位体)で標識される。別の実施形態では、同位体標識した基質分子は1以上の放射性同位体で標識される。さらに別の実施形態では、安定同位体及び放射性同位体の両方が、1以上の同位体標識基質分子を標識するために使用される。
本発明の方法の第1ステップとして、同位体標識した前駆体が投与される。
1以上の同位体標識した基質の投与様式は、同位体標識した基質の吸収性及び各化合物が標的化する特定の生合成プールに応じて変化し得る。前駆体は生物、植物及び動物(ヒトを含む)へin vivo分析のために直接投与され得る。さらに、前駆体はin vitroで生細胞又はex vivoで組織若しくは器官に投与され得る。生細胞の具体的な型には肝細胞、脂肪細胞、筋細胞、繊維芽細胞、ニューロン、膵臓β細胞、腸上皮細胞、白血球、リンパ球、赤血球、微生物細胞、並びにin vitroで生存及び機能を維持し得る他の任意の細胞型が含まれる。
(1)同位体標識
分子流速を測定する際の第1ステップは、1以上の同位体標識した前駆体分子を1以上の細胞、組織又は生物に投与することを含む。同位体標識した前駆体分子は、安定同位体又は放射性同位体を含み得る。本発明の方法に従って使用することができる同位体標識には、これに限定されるものではないが2H、13C、15N、18O、3H、14C、35S、32P、125I、131I又は有機体システムに存在する元素の他の同位体が含まれる。これらの同位体及び他の同位体は、本発明の使用に想定される全てのクラスの化学物質(すなわち前駆体分子)に適切である。かかる前駆体分子には、これに限定されるものではないが、アミノ酸前駆体、タンパク質前駆体、脂質前駆体、炭水化物前駆体、核酸前駆体、ポルフィリン前駆体、グリコサミノグリカン前駆体及びプロテオグリカン前駆体(下記のそれぞれの例を参照)が含まれる。
前駆体分子は、生物系の代謝経路をin vivoで通過することによって目的の分子内に組み込まれる同位体標識を有する任意の分子であり得る。使用し得る前駆体分子は、非限定的にH2O;CO2;NH3;アセチルCoA(コレステロール、脂肪酸を生じる);リボ核酸(RNAを生じる);デオキシリボ核酸(DNAを生じる);グルコース(グリコーゲンを生じる);アミノ酸(ペプチド/タンパク質を生じる);ホスホエノールピルビン酸(グルコース/UDP-グルコースを生じる);及びグリシン/スクシナート(ポルフィリン誘導体を生じる)を含む。同位体標識は、本明細書に開示される全ての前駆体分子を修飾して同位体標識した前駆体分子を形成させるために使用し得る。
タンパク質前駆体分子は当該技術分野で公知の任意のタンパク質前駆体分子であり得る。これらの前駆体分子はアミノ酸、CO2、NH3、グルコース、ラクテート、H2O、アセテート及び脂肪酸であり得る。
有機代謝産物の前駆体は、有機代謝経路に入ることが可能な任意の前駆体分子であり得る。有機代謝産物及び有機代謝産物前駆体には、これに限定されるものではないが、H2O、CO2、NH3、HCO3、アミノ酸、単糖、炭水化物、脂質、脂肪酸、核酸、解糖系の中間体、酢酸及びトリカルボン酸回路の中間体が含まれる。
核酸の前駆体(すなわち、RNA、DNA)は、RNA及び/又はDNA合成経路への組込みに適当な任意の基質である。DNAのデオキシリボース環を標識する際に有用な基質の例には、これに限定されるものではないが[6,6-2H2]グルコース、[U-13C6]グルコース及び[2-13C1]グリセロール(参照により本明細書に組み入れる米国特許第6,461,806号参照)が含まれる。DNAにおいて、デオキシリボースの標識化は、これは可変的な希釈供給源を避けるため、窒素塩基を保有する情報の標識化よりも優れている。安定同位体標識は質量分析技術によって容易に検出可能である。
水はタンパク質及び多くの有機代謝産物の前駆体である。したがって、標識水は本明細書で教示される方法において前駆体として役立つ。
炭水化物を含む組成物は、単糖、多糖、又は単糖若しくは多糖と会合した別の化合物を含み得る。
標識した脂質の前駆体は脂質生合成における任意の前駆体を含み得る。脂質の前駆体分子はCO2、NH3、グルコース、ラクテート、H2O、アセテート及び脂肪酸であり得る。この前駆体は、標識水(例えば2H2O)(これは脂肪酸、アシル-グリセロールのグリセロール部分、コレステロール及びその誘導体についての前駆体である);13C又は2H標識した脂肪酸(これはトリグリセリド、リン脂質、コレステロールエステル、コアミド及び他の脂質についての前駆体である);13C又は2H-アセテート(これは脂肪酸及びコレステロールについての前駆体である);18O2(例えばH2 18O由来)(これは脂肪酸、コレステロール、アシル-グリセリド、及び酵素触媒反応又は(例えば脂肪酸に対する)非酵素的な酸化的損傷によって酸化的に修飾された特定の脂肪酸(過酸化水素等)についての前駆体である);13C又は2H-グリセロール(これはアシル-グリセリドの前駆体である);13C又は2H標識したアセテート、エタノール、ケトン体又は脂肪酸(これらは内生的に合成される脂肪酸、コレステロール及びアシルグリセリドについての前駆体である);並びに2H若しくは13C標識したコレステロール又はその誘導体(胆汁酸及びステロイドホルモンを含む)を含み得る。同位体標識した全ての前駆体は、例えばCambridge Isotope Labs (Andover, MA)から商業的に購入し得る。
グリコサミノグリカン及びプロテオグリカンは、細胞外空間(例えば軟骨、細胞間質及び滑膜関節液)で重要な役割を果たす生体分子の複雑なクラスである。これらのクラス中の分子には、例えば、グリコサミノグリカンの二糖から構築される巨大ポリマー(ヒアルロナン等)(これは最大50000反復ユニットのヒアルロン酸(HA)二糖からなるポリマーである)、グルクロン酸に結合したN-アセチル-グルコサミンを含むダイマー;コンドロイチン硫酸(CS)二糖(グルクロン酸と結合したN-アセチル-グルコサミン硫酸を含むダイマーである)の反復ユニットから構築されるCSポリマー、ヘパラン硫酸(これはグルクロン酸と結合したN-アセチル(又はN-スルホ)-グルコサミド硫酸のダイマーである)の反復ユニットから構築されるヘパラン硫酸ポリマー;並びにケラタン硫酸二糖(これはガラクトースと結合したN-アセチルグルコサミン硫酸を含むダイマーである)の反復ユニットから構築されるケラタン硫酸ポリマーが含まれる。プロテオグリカンは、中心のヒアルロナンポリマー及び中心のヒアルロナン鎖から分岐する他のグリコサミノグリカン(CS等)と結合される追加のタンパク質を含む。
本発明の方法を実施する際に、一態様において、目的の標的分子が当該技術分野で公知の方法に従って1以上の細胞、組織又は生物から取得される。この方法は特定の目的分子に特異的であり得る。目的の分子は1以上の生物学的サンプルから単離し得る。
化合物の生物学的作用を同定するために使用される従来技術(静的方法)は、細胞中の分子の組成、構造又は濃度のみを測定し、かつこれを一の時点で測定する。これに対し、本発明の方法は、以下に記載されるように、無傷の代謝経路中の目的とする1以上の分子の分子流速の測定を可能にする。
目的とする1以上の分子中の同位体富化は、質量分析法等の様々な方法(これに限定されるものではないが、ガスクロマトグラフィー-質量分析法(GC-MS)、同位体比質量分析法、GC同位体比-燃焼MS、GC同位体比-ガス化(pyrrolysis)MS、液体クロマトグラフィーMS、エレクトロスプレーイオン化MS、マトリクス支援レーザー脱離飛行時間型MS、フーリエ変換イオンサイクロトロン共鳴MS、及びサイクロイドMSを含む)によって測定することができる。
測定した質量スペクトルのピーク高あるいはピーク下面積は、親(0質量同位体)アイソトポマーに対する比率として表してもよい。サンプル中のアイソトポマーの存在量に関する相対値及び絶対値を与える任意の算出法を、本発明の目的のために上記データを記載する際に使用し得ることが理解される。
次いで、目的の標識分子及び未標識分子の割合が算出される。実行者はまず分子の単離したアイソトポマー種に関する測定した過剰モル比を決定する。次いで、実行者は測定した過剰比の内部パターンを理論上のパターンと比較する。かかる理論上のパターンは、参照によりその全体を本明細書に組み入れる米国特許第5,338,686号、5,910,403号及び6,010,846号に記載されるように、二項分布又は多項分布の関係を用いて算出することができる。この算出には質量アイソトポマー分布分析(MIDA)が含まれ得る。質量アイソトポマー分布分析(MIDA)組合せアルゴリズムの変形は当業者に公知の多くの異なる情報源で議論されている。この方法は、全て参照によりその全体を本明細書に組み入れるHellersteinとNeese (1999)、及びChinkesら(1996)、KelleherとMasterson(1992)並びに米国特許出願第10/279,399号でさらに議論されている。
合成速度を測定する方法は、分子前駆体プールに存在する質量同位体で標識したサブユニットの割合を算出すること、及び少なくとも1つの同位体標識したサブユニットを含む目的の分子の期待度数を算出するためにこの割合を用いることを含む。次いで、この期待度数は実際に実験的に測定した目的の分子の同位体度数と比較される。これらの値から、選択した組込み期間の間に、添加した同位体標識した前駆体から合成される目的の分子の割合を決定することができる。こうして、かかる期間の間の合成速度も測定される。
Ks=[-In(1-f)]/t、
を適用することによって計算し得る。ここで、f=画分合成=生成物富化/漸進的前駆体/富化であり、t=調査される生物系で接触する標識投与の時間である。
kd=[-In f]/t
放射性同位体は液体シンチレーションカウンターを用いて観察し得る。放射性同位体(3H等)は液体シンチレーション検出器によって検出される放射線を放出する。この検出器は放射線を増幅される電気信号に変換する。このように、生物学的分子中の放射性同位体の数が測定され得る。
開示する発明は、薬剤の意外な、偶然の治療作用及び意外な薬剤毒性に関する、化合物、化合物の組合せ又は化合物の混合物の系統的なハイスループットスクリーニングを可能にする。図1は、治療及び薬剤毒性における偶然の又は予期せぬ事象の全範囲の真の重要性と対比した、対象とする作用に関する薬剤スクリーニング及び薬剤開発の現在の及び従来の方法を記載する。図2は、公知の薬剤によって誘起された新たな治療指標を検出するためのハイスループットスクリーニング法を図示する。
別の変形において、この方法は単離した同位体摂動型分子(例えば標識した脂肪酸、脂質、炭水化物、タンパク質、核酸等)の製造を提供する。これらの単離した同位体摂動型分子には、目的の代謝経路内の分子の流れを測定する際に有用な情報が含まれる。生物の細胞及び/又は組織から一旦単離されれば、上記されるように、情報を抽出するために1以上の単離した同位体摂動型分子が分析される。
本発明はまた、in vivoで分子流速を測定しかつ比較するためのキットを提供する。このキットは同位体標識した前駆体分子を含んでもよく、そして組織サンプルを取得するために必要なタンパク質及び/又は化学物質を分離する、精製する又は単離するための当該技術分野で知られる化学化合物、組合せ分析のための自動算出ソフトウェア、及び該キットを使用するための指示書をさらに含んでもよい。
本発明はまた、本発明の方法によって収集したデータを含む、紙レポート又はデータ記憶装置等の情報記憶装置を提供する。情報記憶装置には、これに限定されるものではないが、紙面若しくは同様の有形的表現媒体に書かれたレポート、プラスチック製の透明シート若しくはマイクロフィッシュに書かれたレポート、及び光学式媒体又は磁気媒体(例えば、コンパクトディスク、デジタルビデオディスク、磁気ディスク等)に記憶されたデータ、又は情報を一時的に又は永久的に記憶するコンピューターが含まれる。データはコンピューター内に少なくとも部分的に含まれてもよく、そして電子メールのメッセージの形態であってもよく、別個の電子ファイルとして電子メールのメッセージに添付されてもよい。情報記憶装置内のデータは「未加工」(すなわち分析されずに収集される)であっても、部分的に分析されても又は完全に分析されてもよい。データ分析はコンピューター又は他の幾つかの自動化装置を経由してもよいし又は手動で行ってもよい。情報記憶装置は、更なる分析若しくは表示又はその両者のために、別個のデータ記録システム(例えば、コンピューター、ハンドヘルド・コンピューター等)にデータをダウンロードするために使用され得る。あるいは、情報記憶装置内のデータは、更なる分析若しくは表示又はその両者のために、紙、プラスチック製の透明シート又は他の同様の有形的表現媒体に複製し得る。
以下の非限定的な実施例は本明細書に開示の発明をさらに説明する。当業者は実施例に記載される、上述される、及び本明細書の開示に照らして解釈される手順における変形が、クレームされる発明に完全に包含されることを理解するだろう。
化合物が脂肪生成を阻害するか否か(及びその結果、肥満又は他の代謝性疾患を治療するための候補薬剤)を評価するために、Sprague-Dawleyラット(200〜300g Simonsen Labs, Gilroy, CA)を化合物に曝露するか又は曝露しないままにする(すなわち対照)。ラットには強制飼養を介して化合物又はビヒクルが投与される。1種又は数種の化合物を投与し得る。例えば、何千もの化合物を最初にスクリーニング、プール、再スクリーニング、サブプール等して1以上の活性化合物をスクリーニングし得る。99.8% 2H2Oの初回プライミング用量を腹腔内注射を介して与え、約2.5%の体内水富化(体重の60%を水と仮定する)を達成し、その後、飲料水中4%の2H2Oを最大で12週間投与する。
f=1-e-ks*t
ks=-In(1-f)/t
[式中、ksは画分置換又は合成速度定数を表し、tは標識化の時点である]
を適用する。
絶対合成(mg/d)=ks(d-1)×TG含量(mg)
純脂肪分解(mg/d)=絶対TG合成−純TG蓄積
=([ks(d-1)×TG含量(mg)]−[(TG含量の変化)/時間(d)]
DNA合成は細胞増殖の生物指標である。一部の背景(setting)では、細胞増殖を刺激する(例えば創傷治癒を刺激する)ことが望まれてもよく、他の背景では、細胞増殖(例えば癌)を阻害することが望まれてもよい。
化合物(又は化合物の組合せ若しくは化合物の混合物)は、1以上が神経形成に対する効果を有し得るか否かを判定するためにラットで試験する。神経形成の潜在性を有する化合物は、脊髄損傷、パーキンソン病、ハンチントン病及び他の神経変性障害を治療する際の使用を見出し得る。ラットを曝露群と対照群とに分割し、実施例1(前掲)のように標識水を投与する。強制飼養、鞘内投与又は頭蓋内投与(当該技術分野で周知であるように、投与経路は化合物、化合物の組合せ又は化合物の混合物の化学的性質に左右される)による化合物又は化合物の組合せ若しくは化合物の混合物(又は、対照ラットの場合、ビヒクル)への曝露後に、ラットをケタミン、キシラジン及びアセプロマジンによって深麻酔する。次いでラットの首を切断し、全脳を取り出す。
マウスをラットに関する実施例1(前掲)に記載の手順を用いて2H2Oで標識する。強制飼養、鞘内投与又は頭蓋内投与を介してマウスに化合物を与える。アミロイドベータ(Aβ)タンパク質を単離するために尿を集める。総尿タンパク質を濃縮し、免疫親和性精製に適切なバッファーに移す。免疫親和性精製後、Aβはサイズ排除及び/又は逆相クロマトグラフィーを用いてさらに精製することができる。精製したペプチドの同一性は、ELISA、ウエスタンブロット、及びLC-MS(ESI)によって確認される。
解糖除去はインスリン耐性及び2型糖尿病の生物指標である(Reaven GM. Banting Lecture 1988. Role of insulin resistance in human disease. Diabetes 37(12): 1595-607, 1988参照)。実施例1(前掲)のように、ラットは化合物(又は化合物の組合せ若しくは化合物の混合物)に対するin vivoでの解糖除去を測定するために使用する。
ラットに実施例1(前掲)のように重水素化水を与える。ラットに、強制飼養、鞘内投与又は頭蓋内投与を介して化合物(すなわち、脱ミエリン化の阻害及び/又は再ミエリン化の刺激について承認されていない化合物)を投与する。脱ミエリン化は多発性硬化症(MS)の重要な生物指標である。脱ミエリン化はMSを治療するための潜在的な薬剤候補を示し得る。
る。サンプルにGC/MSを実行し、ガラクトセレブロシド富化を測定する。ガラクトセレブロシドの分子流速を、化合物(又は化合物の組合せ若しくは化合物の混合物)に暴露したラット及び曝露していない(ビヒクル対照)ラットから、上述されるように決定する。対照ラットのガラクトセレブロシド富化以上のガラクトセレブロシドの富化は、ガラクトセレブロシドの合成及び可能な再ミエリン化の増加を示す。対照未満の富化は脱ミエリン化を示す。
マウス群(n=5/群)に2H2Oのボーラス(Spectra Isotopes, Columbia, MD)を体内水中5% 2H2Oまで与え、飲料水として8% 2H2Oを与えた。マウスを2H2Oで45日間維持し、その期間間、マウスは生理食塩水中のリポ多糖(LPS)(Sigma, St. Louis, MO)も一日おきに体重1kg当たり1若しくは4mgで注射されたか、又は注射されなかった。
4週齢のメスC57/bl6jマウス(Jackson Labs Bar Harbor, MT)を調査した:C57/bl6j+/?対照(con)、不断給餌C57/bl6jlep-/lep-(ob/ob)、レプチン処理したob/ob(ob-lep)及び食餌制限したob/ob(ob-r)。マウスをワイヤーで吊るした檻で個別に収容し、AIN 93精製飼料(Bio Serv, Frenchtown, NJ)を与えた。マウスに3日与えて環境に順応させ、その後マウスは正常に生育した。全ての処理及び調査は、2H2Oによる標識化の開始の5日前から開始した。
脂肪体を単離し、鼠径及び後腹膜体(retroperitoneal pad)を切断し、右側と左側を分析のためにプールした。
脂肪細胞の凍結スラリーを凍結乾燥し、サンプルの乾燥重量を測定し、その後サンプルを消化し、DNAを他に記載されるように(Neese, R.Aら. Advances in the Stable Isotope-Mass Spectrometric Measurement of DNA Synthesis and Cell Proliferation. Anal Biochem 298, 189-195. (2001))Quiagen DNeasy tissue kitを用いて単離した。各サンプルからのDNAの収量をPharmacia Biotec Genequant II分光測光器で測定した。
体内水中の2H2O富化は、他で詳細に記載されるように(Neese, R.Aら. Advances in the Stable Isotope-Mass Spectrometric Measurement of DNA Synthesis and Cell Proliferation. Anal Biochem 298, 189-195. (2001))、血漿サンプルから誘導体化したテトラブロモエチレンで測定した。
モデル5970及び5971 GC/MS又は5973機器(Agilent, Palo Alto, CA)を、グリセロールトリアセテート脂肪酸メチルエステル及びテトラブロモエチレンの同位体富化を測定するために使用した。
(図5参照)。
マウスに2H2O(マウスを重水素化水で5日間(実験期間)維持したことを除いて、実施例7(前掲)に記載されるように)を与え、対照群(グリセオフルビンへの曝露なし)、低用量群(1%グリセオフルビン、観察可能な効果を有しないレベル及び血漿中で上昇レベルの肝臓酵素を誘導しない用量)、中位用量群(2%グリセオフルビン、血漿中で上昇レベルの肝臓酵素が検出され始める用量)、及び高用量群(5%グリセオフルビン、血漿中の上昇レベルの肝臓酵素によって測定される、肝臓に対する毒作用をはっきりと誘起する用量)に分けた。細胞増殖は上述されるように測定した。グリセオフルビンは、肝細胞増殖及びポルフィリン症を生じさせる肝臓毒素として認識されている。グリセオフルビンは固形飼料(1%w/w)で5日間マウスに投与した。処置の5日後に、曝露したマウスにおける細胞増殖は、観察可能な効果レベルのないもの(NOEL)として報告された用量(1%)での肝細胞増殖の増加を示した(図6参照)。1%用量は、上昇レベルの血漿肝臓酵素を誘導しなかった(これはNOELと一致する(データは示されない))。期待した結果がNOEL及び論文中の報告に基づく観察可能な毒性の欠如であったため、NOEL用量(すなわち低用量)での肝細胞増殖の増加はグリセオフルビンに対する予期せぬ毒性反応であった。
ラットをカリフォルニア大学バークレー校の動物施設又はKineMed生態動物園で、温度と湿度を調節した環境(12時間明所/12時間暗所のサイクル)で維持した。動物の世話及び実験手順は、研究の場所に応じて、カリフォルニア大学(バークレー)のAnimal Care及びUse Committee又はKineMedのInternal Animal Care及びUse Committeeによって承認された。ラットを標準的な齧歯動物飼料及び無制限に与えた水で維持した。ラットを心臓穿刺による最後の出血前に、CO2窒息によって犠牲にするか又はイソフルランによって麻酔した。
ラットを、0.9%NaClを含む滅菌の99.8%2H2Oのボーラス腹腔内注射を与えて、すばやくラットを所望の体内水富化まで到達させ、その後直ちに、飲料水を2H2Oで研究に応じて4又は8%まで富化したもので置き換えることによって、重水素化水(重水、2H2O)で標識した。8%を使用した場合、注射は1/2注射量で二回行うことによって、一度に大量に注射することを回避した。各研究に使用した2H2O%は研究設計を記載する際に示されよう(下記)。
2つの異なるSERMの抗増殖効果を、無傷のメスSprague-Dawleyラット及び17β-エストラジオール置換と共に又は伴わずに卵巣切除されているSprague-Dawleyラットで試験した。徐放性ペレットをInnovative Researchから購入した。選択した薬剤のレベルは、乳腺の生物学及び発癌性を引き起こすことが以前に報告された非常に低級のものであった(5mg、(Weckbecker G, Tolcsvai L, Stolz B, Pollak M,及びBruns C. Somatostatin analogue octreotide enhances the antineoplastic effects of tamoxifen and ovariectomy on 7,12-dimethylbenz(alpha)anthracene-induced rat mammary carcinomas. Cancer Res 54: 6334-6337, 1994))。最初に、2.5、5及び10mgのタモキシフェンペレット(21日にわたって持続的に放出する薬剤として設計された)を、用量反応曲線を作成する目的で選択した。次いで、非常に低用量のタモキシフェン(0.1、0.5及び1.0mg)を調査した。タモキシフェン研究の結果に基づき、ラロキシフェンを論文で報告される(約5.9mgの21日ペレットと同量の皮下注射用量)(Kubatka P, Bojkova B, Kalicka K, Chamilova M, Adamekova E, Ahlers I, Ahlersova E及びCermakova M. Preventive effects of raloxifene and melatonin in N-methyl-N-nitrosourea-induced mammary carcinogenesis in female rats. Neoplasma 48: 313-319, 2001)よりも低用量で(0.1〜2.5mgの21日ペレット)試験した。
大腿部の骨髄をMedium 199で一掃し、収集した。細胞を100×gで遠心分離してペレットを収集した。
MECを既に記載されるように(Yang J, Guzman R, Richards J, Jentoft V, DeVault MR, Wellings SR及びNandi S. Primary culture of human mammary epithelial cells embedded in collagen gels. Journal of the National Cancer Institute 65: 337-343, 1980)酵素的細胞解離によってラット組織から単離した。簡潔に言うと、乳房組織を、0.5%IV型コラゲナーゼ(Worthington Biochemical, Lakewood, NJ)及び1:100希釈の抗生物質/抗真菌カクテル(Invitrogen, Carlsbad, CA)を含むMedium 199(Invitrogen, Carlsbad, CA)中で37℃で一晩消化することによって、単一の細胞懸濁液まで酵素的に解離させた。1個体の動物由来の乳腺を、総量約50mlで消化する前にきれいに切断した。次いで、消化物(digestate)を300×gで10分間遠心分離し、上清を除去し、細胞ペレットを2.5mlの(37℃まで暖めた)Medium 199中で再懸濁した。細胞外DNAを除去しかつ細胞凝集を低減するために、100μl/mlのDNアーゼI(2000 Kunitzユニット/ml)(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO)を暖めた培地中の細胞へ添加した。細胞を最も高い設定で1分より長くボルテックス混合し、細胞懸濁液をMEC単離前に40ミクロンのナイロンメッシュを介して濾過した。この工程により細胞外DNAを除去し、その結果、その後のPercoll勾配分離又は免疫磁性ビーズ単離の間の細胞の汚染及び凝集を防いだ。
細胞を2.5mlのMedium 199中で再懸濁し、予め調製したPercoll勾配(16 mlのMedium 199+1.2 mlの10X Hanks Balanced Salt Solution (GibcoBRL, Grand Island, NY)+20000×gで1時間遠心分離した10.8 mlのPercoll)の最高位に層化した。細胞分離を達成するために800×gで15分間遠心分離した。中間層(単離したMEC)を取り出し、Medium 199で1回洗浄した。
細胞を免疫磁性ビーズ法(MACSTM)を用いて製造業者の推奨(Miltenyi Biotech Inc., Auburn, CA)によって単離した。簡潔に言うと、細胞をペレット化し、1mlの標識バッファー(0.5%ウシ血清アルブミン及び2mM EDTA)で2回洗浄した。細胞を標識バッファー中4℃で30分間、100μlの1:50希釈のマウス抗ラット上皮膜抗原(EMA)の一次抗体(University of Iowa, Developmental Studies Hybridoma Bank, clone Ha4C19, custom biotinylated by Vector Labs, Burlingame, CA)中でインキュベートした。細胞を1mlの標識バッファーを添加し、300×gでペレット化することによって洗浄した。ストレプトアビジン又は抗ビオチン磁性ビーズ(Miltenyi Biotech Inc., Auburn, CA、80μlの標識バッファー中、107個の細胞当たり20μlのビーズ)による二次標識化のために、細胞を標識バッファー中4℃で30分間、推奨される濃度の免疫磁性試薬中でインキュベートした。細胞を、磁性カラム(Miltenyi Biotech Inc., Auburn, CA)に充填するために、1mlの標識バッファーを用いて洗浄し、300×gでペレット化し、500μlの標識バッファー中で再懸濁した。カラムを磁性保持器に設置し、標識バッファーで前調整し、サンプルをロードし、標識バッファーで3回洗浄して非標識細胞を溶出した。次いで、カラムを磁石から取り出し、陽性細胞画分を1mlの標識バッファーを含むカラムに沈めて、収集した。細胞を1 X PBS中で洗浄し、過剰なEDTA(EDTAはDNA加水分解酵素を妨害できる)を除去した。
DNAの沈殿及びヌクレオシドへの加水分解手順は既に詳細に記載されている(McCune JM, Hanley MB, Cesar D, Halvorsen R, Hoh R, Schmidt D, Wieder E, Deeks S, Siler S, Neese R及びHellerstein M. Factors influencing T-cell turnover in HIV-1-seropositive patients [コメント参照]. Journal of Clinical Investigation 105: R1-8, 2000)。簡潔に言うと、細胞(MEC及び骨髄細胞)を溶解し、DNAをQiagen QiAmpカラムを用いて単離した。DNAを塩基性条件下で、ヌクレアーゼP1(Roche, Indianapolis, IN)、ヘビ毒ホスホジエステラーゼI(Sigma, St Louis, MO)、DNアーゼ(Sigma, St. Louis)及びアルカリホスファターゼ(Sigma, St Louis, MO)を用いて酵素加水分解に供した。近年、費用をかなり低減しかつスループットを増加させる2つの酵素法が開発されている。この方法は、いずれも様々な供給源から商業的に購入可能な酸性ホスファターゼ及びヌクレアーゼS1による酸加水分解を含む。
マウス及びホルモン処置したラットにおける最初の研究では、dAを既に記載されるようにアルドニトリルエトリアセテート(aldonitriletriacetate)(dRATA)誘導体に変換した。この誘導体化方法は既に記載されている(Neese RA, Misell LM, Turner S, Chu A, Kim J, Cesar D, Hoh R, Antelo F, Strawford A, McCune JM, Christiansen M及びHellerstein MK. Measurement in vivo of proliferation rates of slow turnover cells by 2H2O labeling of the deoxyribose moiety of DNA. Proc Natl Acad Sci U S A 99: 15345-15350, 2002.)。さらに、より感度の高い最新のDNA誘導体化方法を、後のSERM薬剤処理(ラロキシフェン及びタモキシフェン)の研究のために開発し、使用した。このペンタフルオロベンジル誘導体(PFBHA)を、酸性条件下での過剰なペンタフルオロベンジルヒドロキシアミンによる酵素的DNA消化反応、これに続く無水酢酸によるアセチル化によって調製した。
5890 GC及びオートサンプラーを備えたHPモデル5971又は5973MS(Hewlett-Packard, Palo Alto, CA)を用いた。誘導体化デオキシリボースのために選択したイオン記録様式下で、質量対電荷比(m/z)198、199でのイオンの存在量をdRATA誘導体について定量し、(m/z)245、246をPTA誘導体について定量し、そして(m/z)435、436をPFBHA誘導体について定量した(Neese RA, Siler SQ, Cesar D, Antelo F, Lee D, Misell L, Patel K, Tehrani S, Shah P及びHellerstein MK. Advances in the stable isotope-mass spectrophotometric measurement of DNA synthesis and cell proliferation. Analytical Biochemistry 298: 189, 2001)。DNA標準のバックグラウンド同位体富化をサンプルと同時に実行し、サンプル富化から差し引いた。MECのEM+1(バックグラウンド富化を超える過剰なM+1)(m/z 199、246又は436)富化を同一の動物由来の骨髄(完全に代謝回転した組織)EM+1富化で割算して、MECの画分代謝回転を決定した(Neese RA, Siler SQ, Cesar D, Antelo F, Lee D, Misell L, Patel K, Tehrani S, Shah P及びHellerstein MK. Advances in the stable isotope-mass spectrophotometric measurement of DNA synthesis and cell proliferation. Analytical Biochemistry 298: 189, 2001)。
体内水富化は既に記載されるようにGC/MSによって測定した(Neese RA, Siler SQ, Cesar D, Antelo F, Lee D, Misell L, Patel K, Tehrani S, Shah P及びHellerstein MK. Advances in the stable isotope-mass spectrophotometric measurement of DNA synthesis and cell proliferation. Analytical Biochemistry 298: 189, 2001)。
骨髄の富化は、既に発明者の研究室で齧歯動物において標識化の7〜10日以内に漸近値に達することが示されており(Neese RA, Misell LM, Turner S, Chu A, Kim J, Cesar D, Hoh R, Antelo F, Strawford A, McCune JM, Christiansen M及びHellerstein MK. Measurement in vivo of proliferation rates of slow turnover cells by 2H2O labeling of the deoxyribose moiety of DNA. Proc Natl Acad Sci U S A 99: 15345-15350, 2002)、これは、ラット及びマウスMECの置換%を決定するために、ラットにおける本質的に完全な代謝回転比較組織として使用することができる(Neese RA, Siler SQ, Cesar D, Antelo F, Lee D, Misell L, Patel K, Tehrani S, Shah P及びHellerstein MK. Advances in the stable isotope-mass spectrophotometric measurement of DNA synthesis and cell proliferation. Analytical Biochemistry 298: 189, 2001)。
誘導体化したdRのM+1質量アイソトポマーにおいて、BMは骨髄細胞を表す。
MEC増殖速度に対するSERMの効果のGC/MS分析についての結果は、タモキシフェンとラロキシフェンの両者がたとえ最低用量でも有効な抗増殖剤であることを示唆し、これはSERMがこのような低用量で活性であろうことを示唆する何らかのデータを欠いていたことを考えると、完全に予期できなかった発見である。実際に、論文は非常に高用量のSERMがMEC増殖の低減への効果を認めるために必要であることを教示するが、本発明者らのデータは、反対に、かなり低い用量であっても強力な効果を有することを示す(図7参照)。MEC増殖の有意な低減は、エストロゲンの存在下であろうと不在下であろうと、ラットを薬剤処理しかつ7日間で標識した際に、タモキシフェン及びラロキシフェンの全ての用量で観察された(図7参照)。
ロシグリタゾンは脂肪細胞におけるホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)の発現及び活性を増加することが報告されており(Glorian, M., Duplus, E., Beale, E. G., Scott, D. K., Granner, D. K.及びForest, C. (2001) Biochimie 83, 933-943; Duplus, E., Benelli, C., Reis, A. F., Fouque, F., Velho, G.及びForest, C. (2003) Biochimie 85, 1257-1264; Tordjman, J., Khazen, W., Antoine, B., Chauvet, G., Quette, J., Fouque, F., Beale, E. G., Benelli, C.及びForest, C. (2003) Biochimie 85, 1213-1218)、脂肪組織で見られる低レベルのグリセロールキナーゼ活性を増加することも示されている(Guan, H.P., Li, Y., Jensen, M. V., Newgard, C. B., Steppan, C. M.及びLazar, M. A. (2002) Nat Med 8, 1122-1128)(これはチアゾリジンジオンへの曝露後の脂肪TG合成の主要な機構であると考えられた)。反対に、公開されたin vitroデータに基づき、グリセロール新生はこのプロセスにおいて非常に重要でない役割を果たすと考えられた。しかし、本願出願人はチアゾリジンジオンロジグリタゾンに曝露された齧歯動物が実際にグリセロール新生の増加を記録したこと、及びグリセロール新生におけるこの増加が脂肪トリグリセリド合成における主要な寄与因子であることを見出しており、これはグリセロールキナーゼ活性が脂肪TG合成の根底にある支配的な機構であることを示すin vitroデータの重要な主部に基づく当該技術分野における共通の知識に反する。
マウス.4週齢のオスC57Bl/6Jマウス(16〜18g:Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME)を用いた。マウスに適宜、高炭水化物、低脂肪(HC、70%炭水化物、10%脂肪)食餌若しくは低炭水化物、高脂肪食餌(LC、35%炭水化物、45%脂肪)(Research Diets Inc., New Brunswick, NJ)を与えた。追加群のマウスにロジグリタゾンを含むHC食餌を与えた(6.34mg/kcalの食餌)(これはマウスの体重1kg当たり約3mg/日の用量をもたらした)(Research Diets Inc., New Brunswick, NJ)。食餌の11日後、全ての動物に99.8%の2H2O生理食塩水のプライミング用量を腹腔内注射を介して与え、体内水中約4.8%の2H2O富化を達成し(30μl/gマウス)、その後、飲料水中8%2H2Oの投与を与えた。マウス(1群につきn=6)を重水処理の15日又は64日後に犠牲にした。腸間膜、精巣上体、後腹膜及び鼠径部の脂肪組織貯留物を取り出し、血液及び尿サンプルを得た。
脂肪由来の脂質を改良したFolch抽出(Folch, J., Lees, M.及びSloane Stanley, G. H. (1957) J Biol Chem 226, 497-509)によって抽出した。脂質画分を3NメタノールHCl(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO)と共に60分間55℃でインキュベートすることによってトランスエステル化した。脂肪酸メチルエステルをFolch技術によってグリセロールから分離させた。グリセロールを含む水相を凍結乾燥し、グリセロールを他に記載されるように(Siler, S. Q., Neese, R. A., Parks, E. J.及びHellerstein, M. K. (1998) J Lipid Res 39, 2319-2328)無水酢酸-ピリジン(2:1)と共にインキュベートすることによってグリセロールトリアセテートに変換した。
新鮮な全血から得られる血漿をFolch技術によって抽出した。TGを既に記載されるように(Jung, H. R., Turner, S. M., Neese, R. A., Young, S. G.及びHellerstein, M. K. (1999) Biochem J 343 Pt 2, 473-478)TLCによって単離した。次いで、グリセロールの単離及び誘導体化を上述されるように実施した。
体内水(血漿又は尿由来)中の2H2O富化を2つの方法の内の1つによって測定した。簡潔に言うと、15〜20μLの血漿又は尿を炭化カルシウムを含む真空GCバイアル中で反応させてアセチレンを生じさせた。次いで、アセチレンガスを注射器で除去し、四塩化炭素中に10%臭素を含むGCバイアル中に注入し、室温で2時間インキュベートしてテトラブロモエタンを生じさせた。過剰な臭素を25μLの10%シクロヘキサンで中和し、サンプルを酢酸エチル中で懸濁した(Collins, M. L., Eng, S., Hoh, R.及びHellerstein, M. K. (2003) J Appl Physiol 94, 2203-2211)。あるいは、アセチレンガスを新規質量分析法(Previs, S. F., Hazey, J. W., Diraison, F., Beylot, M., David, F.及びBrunengraber, H. (1996) J Mass Spectrom 31, 639-642)によって直接測定した。簡潔に言うと、25μlのサンプルを乾燥したヘリウム環境中に炭化カルシウムを含む密閉したExitainerバイアル中に注入した。この反応から生じた少量(0.5ml)のアセチレンガスを取り除き、直接的な分析のためにヘリウム環境である別の密閉バイアルに注入した。標準曲線に使用されるこの2つの方法は同一の結果を生じる。しかし、直接アセチレン法はより時間を浪費しないものであり、したがってこの研究を進行する間に好適な方法となった。
グリセロールトリアセテートを既に記載されるように(Siler, S. Q., Neese, R. A., Parks, E. J.及びHellerstein, M. K. (1998) J Lipid Res 39, 2319-2328)GC-MSによって同位体富化について分析した。質量アイソトポマー存在量を質量対電荷率(m/z)(159〜161(M0〜M2))の選択イオンをモニタリングすることによって分析した。テトラブロモエタンを既に記載されるように(Neese, R. A., Siler, S. Q., Cesar, D., Antelo, F., Lee, D., Misell, L., Patel, K., Tehrani, S., Shah, P.及びHellerstein, M. K. (2001) Anal Biochem 298, 189-195)GC-MS法によって同位体富化について分析した。DB-225溶融石英カラム(J&W, Folsom, CA)と適合する5973質量分析計(Agilent Technologies, Palo Alto, CA)を備えたモデル6890 GCを化学的イオン化様式で用いた。アセチレンの同位体富化(m/z 26及び27)をサイクロイド質量分析計(Monitor Instruments, Pittsburgh, PA)によって測定し、体内水富化の割合を水及び2H2Oから重量測定法で作成した標準曲線との比較によって算出した。
体内 2 H 2 O富化:
体内2H2Oの同位体富化を、未標識水と既知の割合で混合した2H2Oを用いた標準曲線との比較及びテトラブロモエタン、又はより最近ではアセチレンへの変換によって測定した。質量分光分析は既に記載されていた(Neese, R. A., Siler, S. Q., Cesar, D., Antelo, F., Lee, D., Misell, L., Patel, K., Tehrani, S., Shah, P.及びHellerstein, M. K. (2001) Anal Biochem 298, 189-195)。
アシルグリセリドから誘導された[2H]グリセロールの同位体富化を、非標識のグリセロール標準中の質量アイソトポマーの存在量の減算によって算出した(Hellerstein, M. K.及びNeese, R. A. (1999) Am J Physiol 276, E1146-1170)。EM1及びEM2をMIDA計算について既に記載されるように(Turner, S. M., Murphy, E. J., Neese, R. A., Antelo, F., Thomas, T., Agarwal, A., Go, C.及びHellerstein, M. K. (2003) Am J Physiol Endocrinol Metab 285, E790-803)、質量アイソトポマーM0〜M2の和の画分として算出した。
MIDAは、上記及び米国特許第5,338,686号に記載されるように、ポリマー中に存在する標識パターンの組合せ分析に基づく技術である。簡潔に言うと、EM2-EM1比(R)はこの標識パターンの一実施形態である。Rは2つの因子に依存する:組織水中に存在する標識水素原子の割合(p)(すなわち組織水中の2H2O富化)及びこの組織水に由来するグリセロール中のC-H結合の可能な数(n)。α-GPのそれぞれ活発に組み込まれたC-H中の水素の2H同位体富化(p)が体内水中の2H富化と等しく、かつ2H2O富化が標識期間中に一定であると仮定する場合、nは測定した体内水中のp及び測定したRから算出することができる。
f=EM1/A∞ 1
[式中、EM1はグリセロールの質量+1-標識種の同位体富化(すなわち、過剰の天然存在量における測定した存在量)を表し、A∞ 1は、p及びnの非整数値から算出される、グリセロールの質量+1種の同位体富化を可能にする漸近値又は水平状態値を表す]
計画したペアワイズ比較を含む一元ANOVAを有意性の基準としてP<0.05を用いて使用した。有意性の基準としてP<0.05を用いた独立の群のt検定及びノンパラメトリックなMannWhitney検定をフルクトースの導入比較に使用した。
この実験はPPAR-γアゴニスト処理後の、脂肪TG合成におけるグリセロール新生の役割を調査した。PPAR-γアゴニスト(ロシグリタゾン等)は多くの作用(脂肪生成及び脂肪蓄積の増加の刺激を含む)を誘導するインスリン感作物質である。PPAR-γは脂肪細胞におけるPEPCK遺伝子の転写に必要であり、ロシグリタゾンは脂肪組織におけるPEPCKの発現を誘導することが示されてきた(Duplus, E., Benelli, C., Reis, A. F., Fouque, F., Velho, G.及びForest, C. (2003) Biochimie 85, 1257-1264)。PEPCKを介したオキサロ酢酸からホスホエノールピルビン酸への変換は、グリセロール新生における律速段階である。ロシグリタゾンは単離した脂肪細胞においてグリセロールキナーゼ活性をかなり増加することが示されてきた(Guan, H. P., Li, Y., Jensen, M. V., Newgard, C. B., Steppan, C. M.及びLazar, M. A. (2002) Nat Med 8, 1122-1128)。増加したグリセロールキナーゼ活性からの脂肪生成に対する生理学的に有意な寄与はnの減少をもたらすが、グリセロール新生からの寄与の増加はnを増加するべきである。後者がはっきりと観察された(図8)。ロシグリタゾン処理によって観察されたnの増加は、おそらくは増加したPEPCK発現を介した、グリセロールキナーゼのアップレギュレーションに対するグリセロール新生のアップレギュレーションの有意性のin vivoでの証拠を提供する。この知見は上述されるように予期されなかった。
Claims (61)
a) 前記1以上の化合物を生物系に曝露すること;
b) 同位体標識した基質が目的の代謝経路に入りかつ通過することによって前記生物系の前記1以上の代謝経路内の目的の標的分子に入りかつ標識するのに十分な期間で、該同位体標識した基質を該生物系に投与すること;
c) 生物系から1以上のサンプルを取得すること、その際、該1以上のサンプルは同位体標識した目的とする標的分子の1以上を含む;
d) 前記目的の標的分子の同位体標識の、含量、組込み速度及び/若しくはパターン、又は含量及び/若しくはパターンの変化の速度を測定すること;
e) 目的とする前記1以上の代謝経路における分子流速を算出すること;
f) 前記1以上の化合物が投与されていない生物系において、工程b)〜e)に従って目的とする前記1以上の代謝経路における分子流速を測定すること;並びに
g) 前記1以上の化合物が投与された前記生物系における目的とする前記1以上の代謝経路の前記分子流速を、該1以上の化合物が投与されていない該生物系における該1以上の代謝経路の分子流速と比較して、該分子流速への1以上の作用について該化合物をスクリーニングすることを含む、前記方法。
a) 1以上の同位体標識した前駆体、及び
b) このキットを使用するための指示書、
を含む前記キット。
a) 生物系を化合物で処理すること;
b) 同位体標識した基質が目的の代謝経路に入りかつ通過することによって前記生物系の前記1以上の代謝経路内の目的の標的分子に入りかつ標識するのに十分な期間で、該同位体標識した基質を該生物系に投与すること;
c) 前記生物系から1以上のサンプルを取得すること、その際、該1以上のサンプルは同位体標識された目的とする標的分子の1以上を含む;
d) 前記目的の標的分子の同位体標識の、含量、組込み速度及び/若しくはパターン、又は含量及び/若しくはパターンの変化の速度を測定すること;
e) 目的とする前記1以上の代謝経路における分子流速を算出すること;
f) 前記化合物が投与されていない生物系において、工程b)〜e)に従って目的とする前記1以上の代謝経路における分子流速を測定すること;並びに
g) 前記化合物が投与された前記生物系における目的とする前記1以上の代謝経路の前記分子流速を、該化合物が投与されていない該生物系における該1以上の代謝経路の分子流速と比較して、該化合物が該代謝流速を改変するか否かを判定することを含む、前記方法。
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