JP2007509166A - 生得的免疫およびアレルギー性免疫を活性化させるための組成物および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、一般に免疫調節に関しており、さらに詳細には、適応的免疫応答が強化もしくは増強されるように非特異的免疫応答(例えば、生得の免疫応答)を誘導するための、または感染性疾患が処置もしくは予防されるように非特異的な免疫応答および特異的な適応的免疫応答の両方を誘導するための、またはアレルギー性喘息のような炎症性反応を処置または予防するための免疫応答を調節するための、免疫刺激性プロテオソーム(Proteosome)組成物の治療的な使用、に関している。
いくつかの微生物学的病原体は、強固な宿主免疫応答に直面した場合でさえ致死性の感染を生じ得る。それにもかかわらず、猛烈な感染性疾患の制御は一般に、厳格な公衆衛生の手段、薬物(例えば抗生物質)およびワクチンを用いることによって現代社会において成功している。ワクチンは代表的には、特異的な(適応的)免疫応答を活性化するために弱毒化した微生物または微生物抗原を含む。宿主において抗原が防御免疫応答を誘導する能力は、免疫刺激性因子またはアジュバントを用いて抗原を処方することによって強化され得る。ミョウバン(硫酸アルミニウム)ベースのアジュバントは、認可された注射可能なヒトワクチンのためにほとんど独占的に用いられる。しかし、適応的免疫応答は、抗原の起源に関する情報(すなわち、自己対非自己の抗原)および誘導される応答のタイプ(すなわち、T細胞および/またはB細胞の応答)を提供するシグナルを要する。最近集った証拠では、これらのシグナルは生得の免疫系によって提供され得ることが示される(例えば、非特許文献1;非特許文献2)。
FearonおよびLocksley,「Science」,1996年,272:50 MedzhitovおよびJaneway,「Curr.Opin.Immunol.」,1997年,9:4, Mosmannら、「J.Immunol.」,1986年,136:2348 StreetおよびMosmann,「FASEB J.」,1991年,5:171
本明細書に記載される発明は、プロテオソームベースの免疫活性組成物の治療処方物を作製および使用するための方法を提供する。プロテオソームおよびリポサッカリドを含む免疫刺激性組成物を用いて、感染性疾患を処置または予防するための非特異的な生得の免疫応答を誘発または増強し得る。さらに、生得の免疫系を活性化した後、抗原をさらに含む免疫原性組成物を用いて、特定の適応的免疫応答を誘発し得る。さらに、アレルギー反応のような過敏性の応答または炎症性の免疫応答を変更し得る組成物が提供される。
(a)プロテオソームおよびリポサッカリドを含む免疫刺激性組成物を被験体に対して、生得の免疫応答を誘発するのに十分な量および条件下で投与する工程と;(b)プロテオソーム、リポサッカリドおよび微生物抗原を含む免疫原性組成物を被験体に対して、適応的免疫応答を誘発するのに十分な量および条件下で投与する工程とを包含し、その結果、ウイルス、寄生生物、真菌または細菌の感染であるこの微生物感染が処置または予防される、方法を提供する。詳細な実施形態では、微生物感染はウイルス感染であり、ウイルス感染はインフルエンザ感染である。特定の実施形態では、上記の免疫刺激性組成物は、上記の免疫原性組成物の約1日前〜約10日前に投与される。1実施形態では、免疫刺激性組成物および免疫原性組成物の各々が粘膜、経腸、非経口、経皮、経粘膜、経鼻および吸入のうちの少なくとも1つから選択される経路によって投与される;そして特定の実施形態では、この組成物は経鼻的に投与される。1実施形態では、このリポサッカリドの最終含量は、プロテオソームタンパク質の重量パーセンテージとして上記免疫刺激性および免疫原性の組成物の各々において約1%〜500%におよぶ。特定の実施形態では、この免疫刺激性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドは、同じグラム陰性細菌種から得られるか、またはこの免疫原性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドは、異なるグラム陰性細菌種から得られる。別の特定の実施形態では、この免疫刺激性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドは、同じグラム陰性細菌種から得られるか、またはこの免疫原性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドは、異なるグラム陰性細菌種から得られる。他の特定の実施形態では、上記免疫刺激性および免疫原性の組成物のプロテオソームは、Neisseria種から得られ、そしてこの免疫刺激性および免疫原性の組成物のリポサッカリドの少なくとも1つが、Shigella種、Chlamydia種、Yersinia種、Pseudomonas種、Plesiomonas種、Escherichia種、Porphyromonas種およびSalmonella種のうちの少なくとも1つから得られる。別の特定の実施形態では、上記の免疫刺激性および免疫原性の組成物の各々のプロテオソームは、Neisseria meningitidisから得られ、そして上記免疫刺激性および免疫原性の組成物の各々のリポサッカリドはShigella flexneriから得られる。微生物抗原は、ウイルス抗原、細菌抗原、真菌抗原または寄生生物抗原である。特定の実施形態では、この免疫原性組成物の微生物抗体は組み換え体である。他の実施形態では、この微生物抗原は、Bacillus anthracis、Chlamydia trachomatis、Yersinia pestis、または腸病原性Escherichia coliから得られる細菌抗原である。特定の実施形態では、この細菌抗原は、Bacillus anthracis由来の防御抗原である。別の特定の実施形態では、この微生物抗原は、ウイルススプリット抗原であり、このウイルススプリット抗原はインフルエンザスプリット抗原である。特定の実施形態では、この免疫原性組成物は、ウイルス、細菌、真菌または原生動物である同じ微生物から得られてもよいし、または異なる微生物から得られてもよい、少なくとも2つの微生物抗原を含む。この免疫原性組成物は、特定の実施形態によって適応的免疫応答を誘発する。この免疫原性組成物は、特定の実施形態によって適応的免疫応答を誘発する。特定の実施形態によれば、上記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量とこの免疫原性組成物のうちの微生物抗原の重量との比は4:1〜1:4、1:1〜1:500、または1:1〜1:200の範囲内である。他の実施形態では、この免疫原性組成物は、上記免疫刺激性組成物の約1日〜7日後または約1日〜約10日後に投与され、そして他の特定の実施形態では、少なくとも1つの免疫刺激性組成物および免疫原性組成物はさらに、薬学的に受容可能なキャリアを含む。
Protollin(商標)は、Neisseria meningitidisのようなグラム陰性細菌から調製されたプロテオソーム(単数または複数)(Projuvantとも呼ばれる)と呼ばれる外膜タンパク質調製物、および1つ以上のリポサッカリドを含む、外膜(OM)−リポサッカリド(LPS)アジュバントである。本明細書において記載されるとおり、Protollinは病原性微生物に対する防御を提供する強力な生得の免疫応答を誘発するために用いられ得る。従って、本発明は概して、Protollinを含有する免疫刺激性組成物が、細菌、ウイルス、真菌および原生動物を含む広範な種々の感染性因子に対して防御し得る広範なスペクトルの抗原依存性の非特異的な免疫応答を刺激し得るという驚くべき発見に関する。さらに、Protollinは、有害な免疫応答を調節または変更して、極めて強固な炎症性応答からの障害を最小化するために用いられ得る。従って、本明細書の説明によってまた、Protollinを含む免疫調節性組成物が炎症性応答、例えば、気道過敏性(AHR)を抑制するために、または免疫応答を変更してこれによって障害となる炎症性応答を最小限にする(例えば、Th2応答のTh1表現型へのシフト)ために用いられ得るという予期せぬ知見が得られる。本明細書においてさらに詳細に記載されるのは、プロテオソーム:LPSまたはプロテオソームを含む免疫刺激性および免疫調節性の組成物、ならびにプロテオソーム:LPSまたは1つ以上の微生物抗原とともに処方されたプロテオソームを含む免疫原性の組成物である。特定の実施形態では、この組成物は、特異的な免疫応答、非特異的な免疫応答、または両方のタイプの応答を誘導することによって微生物感染を処置または予防するような治療用途に適切である。他の実施形態では、本明細書に記載される組成物は、アレルギー性喘息またはAHRなどの関連の合併症のような炎症性の免疫応答を処置または予防するために適切である。本明細書の説明はまた、本明細書に記載される任意の組成物を調製するための方法を提供する。
(プロテオソームの調製)
免疫原(例えば、微生物抗原またはアレルゲン)を、プロテオソームとともに処方して、ヒトまたは動物の被験体において防御免疫応答または寛容を誘発し得る本発明の免疫原性組成物を形成し得る。プロテオソームはアジュバントとして有用であり、そしてグラム陰性細菌から精製された外膜タンパク質から構成される。プロテオソームを調製するための方法は、例えば、Mallettら、Infect.Immun.63:2382,1995;米国特許第6,476,201 B1号;米国特許出願公開第2001/0053368号;および米国特許出願公開第2003/0044425号に記載される。要するに、フェノールで殺傷したB群タイプ2のNeisseria meningitidisのペーストを6%Empigen(登録商標)BB(EBB)(AlbrightおよびWilson,Whithaven,Cumbria,UK)を含有する1M塩化カルシウムの溶液で抽出した。この抽出物をエタノールで沈殿させて、1% EBB−Tris/EDTA−生理食塩水に溶解し、次いで硫酸アンモニウムで沈殿させた。沈殿したプロテオソームを1% EBB緩衝液に再度溶解して、ダイアフィルトレートして、0.1% EBB緩衝液中において−70℃で保管した。
(リポサッカリドの調製)
フローチャート2(図2)の実施例は、S.flexneriまたはP.shigelloidesからのLPS(例えば、無毒化されてない)の単離および精製のためのプロセスを示す。このプロセスは同様に、Shigella、Plesiomonas、Porphyromonas、EscherichiaおよびSalmonella種を含む1つ以上の他のグラム陰性細菌からLPSを調製するために用いられ得る。300L中での発酵による細菌の増殖後、この細菌を沈降させて、細胞ペーストを、細菌ペースト1グラムあたり3mlの0.9M NaCl、0.005M EDTAおよび10mg リゾチームで再水和させた。リゾチーム消化は室温で1時間進行させた。次いで、50U/ml Benzonase(登録商標)(DNase(Merck Chemicals)を含有する0.025M MgCl2を添加して、DNase消化を室温で30分間進行させた。次いで、この懸濁液を、マイクロフルイダイザー(microfluidizer)を14,000〜19,000psiで通過させることによってクラッキングさせた。新鮮なDNase(50U/ml)を添加して、この懸濁液の消化を室温でさらに30分間進行させた。消化された細胞懸濁液を水浴中で68℃まで加熱した。次いで、等容積の90%フェノール(これも68℃に加熱した)を添加して、この混合物を68℃で30分間、振盪しながらインキュベートさせた。この混合物を4℃で遠心分離して、水相および有機相を分けた。水相を回収して有機相をWFI(注射用水)を用いて68℃で30分間、再抽出した。この混合物を4℃で遠心分離して、第二の水相を回収し、2つの回収された水相を合わせた。核酸を沈殿させるために、20%エタノールと10mM CaCl2をプールされた水相に添加した。この混合物を4℃で一晩撹拌した。次いで、沈殿した核酸を10,000×gで30分間の遠心分離によって沈殿させた。上清を回収し、濃縮し、30,000MWの中空ファイバーカートリッジを用いて、0.15M NaCl、0.05M Tris、0.01M EDTAおよび0.1% Empigen(登録商標)BB、pH8.0(TEEN緩衝液)中にダイアフィルトレートした。次いで、0.22μm Millipak(登録商標)60フィルターユニットを用いて滅菌濾過して、滅菌の保管容器に等分して、−80℃で凍結させた。安定性研究によってバルクのLPSは少なくとも2年間の貯蔵期間を有することが示された。
(プロテオソーム:リポサッカリドのアジュバントの調製および特徴づけ)
プロテオソームとLPSとを混合することによってプロテオソームアジュバント処方物を調製した(Protollin)。LPSは、Shigella、Plesiomonas、EscherichiaまたはSalmonella種のような多数の1つ以上のグラム陰性細菌のいずれかに由来してもよく(実施例2を参照のこと)、これをフローチャート3(図3)に記載されるように、実施例1のプロテオソームと混合する。要するに、プロテオソームおよびLPSを4℃で一晩解凍して、界面活性剤濃度を1% Empigen(登録商標)BB含有TEEN緩衝液に調節した。プロテオソームおよびLPSを室温で15分間混合して、その量は約10:1〜約1:3のプロテオソーム:LPSという最終の重量/重量比を得た。このプロテオソーム:LPS混合物を、ほぼ10,000サイズ(例えば、Size 9)のMWCO(分子量カットオフ)の中空ファイバーカートリッジでTNS緩衝液(0.05M Tris,150mM NaCl pH8.0)中にダイアフィルトレートした。このダイアフィルトレーションは、透過物中のEmpigen(登録商標)含量が<50ppmであるときに停止したが、この含量はEmpigen(登録商標)濁度アッセイ(Turbidity Assay)によって、またはBradford Reagent Assay製造業者のプロトコールおよび標準のプロトコールによって決定した。バルクのアジュバント(本明細書においてはOMP−LPSとも呼ばれる)を濃縮して5mg/mlのタンパク質まで調節した。標準のローリー(Lowry)アッセイによってタンパク質含量を決定した。0.22μm Millipak 20フィルターユニットを用いてこのアジュバントを滅菌濾過した。バルクのアジュバントを無菌の貯蔵容器に等分して凍結させた。
(ペストの抗原F1−Vを用いて処方したProtollinでの免疫)
本実施例は、ペスト抗原(F1−V)と処方されたプロテオソーム:LPS(Protollin)組成物が、Yersinia pestisでの致死性負荷に対して防御し得る免疫応答を誘発する能力について記載する。0日および21日に、20匹の群の6〜8週齢雌性Swiss−Websterマウス(Charles River,St−Constant,Quebec)を免疫することによってF1−V免疫応答を評価した。ProtollinおよびF1−V融合タンパク質(U.S.Army Medical Research Institute of Infectious Disease)の新鮮解凍アリコートの溶液を免疫の前16時間未満に混合した。経鼻投与のためには、イソフルラン吸入によってマウスを最初に浅く免疫した。25μlのワクチンまたは適切なコントロールサンプル(Protollin単独またはF1−V単独)を各々のマウスの鼻孔に加えた(鼻孔あたり12.5μl)。並行して一群のマウスを、500mgのAlhydrogel(登録商標)に吸着された25μlのF1−Vを用いる後肢への注射によって筋肉内(i.m.)免疫した。コントロールのi.m.注射も行った。その35日後および55日後に、各々の群由来の10匹のマウスを、CO2を用いる窒息および失血によって安楽死させた。血清、鼻腔洗浄液および肺洗浄液のサンプルを得て、−80℃で保管した。脾臓をインビトロの再刺激および放出されたサイトカインの評価のために処理した。各々の群由来の残りの10匹のマウスを、170〜250 LD50のエアロゾル化Y.pestis(Colorado 92株)の吸入によって35日目または55日目に負荷して防御を評価した。罹患率および死亡率の決定のために負荷後28日間、マウスをモニターした。
(Protollin:ペスト抗原での免疫後のサイトカインプロフィールの決定)
経鼻的に投与されたProtollinまたは注射されたAlhydrogel(登録商標)アジュバントのF1−Vワクチンによって誘発された適応的免疫応答の表現型(1型または2型)を比較するために、免疫されたマウスの選択された群由来の脾臓細胞(実施例4を参照のこと)を、F1−Vを用いてインビトロで再刺激した。各々の群のマウス由来の脾臓をプールして、標準的な方法によって単一の細胞懸濁物に処理した。次いで、この脾細胞懸濁物を種々の濃度のF1−Vとともにインキュベートした。培養上清に放出されたサイトカインを、OptEIAキット(BD Biosciences,San Jose,CA)を用いて定量的ELISAによって決定した。培養上清に放出されたIFN−γ、TNF−αおよびIL−5のサイトカインの量を決定した。Protollin(1μg)と混合されたF1−V(50μg)で経鼻的に免疫したマウス由来の脾細胞は、高レベルのIFN−γおよびTNF−αの両方を分泌することによって、インビトロ再刺激に対して応答した;極めて低量のIL−5も検出された。対照的に、Alhydrogelに吸着されたF1−V(20μg)の注射によって免疫したマウス由来の脾細胞は、比較的低い量のIFN−γおよびTNF−αを分泌することによって、応答したが、有意な量のIL−5が検出された。従って、F1−V抗原とともに処方された(アジュバント化された)Protollinの経鼻投与によって誘発されたサイトカインプロフィールは、1型免疫応答の誘発と一致していたが、Alhydrogel(登録商標)で処方されたF1−V抗原のi.m.注射によって誘導されたサイトカインプロフィールはそれよりも、2型の表現型に偏った応答と一致している。
(エアロゾル化された生きたY.pestisを用いる免疫したマウスの負荷)
本実施例は、Protollinとともに処方したF1−Vでの鼻腔内免疫によって提供された免疫防御を記載する。Protollinと組み合わせたF1−Vを投与されたマウスは、生きたエアロゾル化されたY.pestisに対する全身曝露によって負荷した(実施例4を参照のこと)。動物の生存によって示される負荷からの防御のレベルを、Alhydrogel上に吸着されたF1−Vを注射したマウスおよびF1−V単独またはProtollin単独の鼻腔内投与を受けたマウスの保護と比較した。35日目でかつ169LD50 Y.pestisの負荷用量で、5、20または50μgのF1−Vに加えて1または2.5μgのProtollinを用いて鼻腔内免疫したマウスは、Alhydrogel上に吸着されたF1−Vを用いて注射されたマウスと同様に、全て生存した。5、20または50μgのF1−Vおよび0.25μgのProtollinを用いて経鼻免疫したマウスの生存は、それぞれ、90%、100%および90%であったが、同じ用量のF1−Vを用いてProtollinなしで経鼻免疫したマウスの生存は、それぞれわずか30%、40%および40%であった。Protollin単独を投与されたコントロールマウスは負荷後4日間より長く生存したものはなかった。Protollinとともに処方したF1−Vで免疫した全てのマウスの群についての生存は、コントロールのマウスまたはF1−V単独で免疫したマウスでの生存に比較して極めて有意であった(フィッシャーの直接確率法を用いて、P≦0.05かそれよりよい)。20μgの用量のF1−Vで免疫したマウスの結果は、図5Aに示し、5μgの用量のF1−Vで免疫した動物の結果は、図5Dに示す。
(Protollin炭素菌免疫原性組成物によるマウスの防御)
本実施例では、Bacillus anthracisの防御抗原(PA)とともに処方したProtollin(実施例8を参照のこと)を、それがPA媒介性マクロファージ殺傷における統計学的に有意な減少によって例証される免疫応答を誘導する能力について評価した。1μgのProtollinと混合した5μgまたは25μgのrPA(List Biological Laboratories)を用いて0日目および14日目にマウスを経鼻的に免疫した。
(炭素菌ワクチン処方物の調製)
鼻腔Protollin炭素菌ワクチンは、炭素菌PA抗原と可溶性の事前形成されたプロテオソームに加えてLPS(すなわち、Protollin)とを免疫の前に混合することによって作製した。rPA抗原およびrPA−anch(疎水性のアンカー配列を有するrPa)抗原の両方を、Protollinのいくつかの異なる処方物を用いて評価して、好ましい免疫原性抗原およびProtollin成分を有する処方物(単数または複数)を決定する。コントロールの処方物は、例えば、Protollin単独から構成されるか、または疎水性アンカー配列(anch)を有するかもしくは疎水性アンカー配列を有さない組み換えの連鎖球菌タンパク質を含む少なくとも1つそして好ましくは2つのコントロール抗原と混合される。従って、評価されるProtollinの処方物は、異なる供給源のLPS、変化したプロテオソーム:LPS比および変化したProtollin:rPA抗原比を有する。rPA−anchはまた、プロテオソームアジュバントがその中に貯蔵されている界面活性剤の濃度を除去または減少させるように設計されている、本明細書に記載される透析またはダイアフィルトレーション方法を用いて、極めて低レベルのLPS(<2重量%)を有するプロテオソームタンパク質で処方される。これらのプロテオソームアジュバント調製物は、添加された外因性のLPSを有さない。本実施例に記載されるようなProtollinを処方するのに用いられるプロテオソーム調製物は、プロテオソームの鼻腔インフルエンザワクチンの安全性、免疫原性および有効性を評価するために、大規模な前臨床毒性試験、ならびに第1相および第2相のヒトでの臨床試験で用いられている。
(血清および粘膜の免疫応答の評価)
本明細書に記載のような試験免疫刺激性または免疫原性の処方物で免疫した動物(マウス、ウサギ)から得た生物学的サンプルにおける総免疫グロブリンならびにB.anthracis防御抗原(PA)特異的IgG、IgAおよびIgMの力価をELISAを行なって決定した。サンプルとしては、血清、鼻腔および肺の粘膜洗浄液が挙げられる。標準的なELISAプロトコールを用いて、直線性、特異性、感度および再現性を決定する。要するに、試験サンプル(血清および洗浄液)の連続希釈を、精製したrPAまたはその誘導体でコーティングしたELISAプレートのウェルに加える。固定された抗原に固着された抗原特異的抗体を、動物(例えば、抗ウサギまたは抗マウス定常領域抗体)および抗体サブタイプに特異的な西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)に結合体化した抗体を用いて検出する。HRP抗体結合体のインキュベーション後、ウェルを洗浄して、TMB基質を添加して、結合したHRP抗体の量を490nmでの吸光度を測定することによって検出する。試験サンプル中の抗体濃度は、IgA、IgMおよび/またはIgG(マウスアイソタイプ、IgG1およびIgG2aを含む)についての精製された標準抗体を用いて、並行して行なった標準曲線から算出する。必要に応じて、粘膜洗浄液サンプルにおける特異的な抗体レベルを標準化して、サンプル中のIgAまたはIgGの総量に比較して、検出された特異的な抗体を表すことによって正規化する。ELISAのデータは、対数変換したデータを用いて統計学的分析によって95%信頼水準で幾何平均として表す。
(炭素菌中和抗体について評価するためのマクロファージ防御アッセイ)
本実施例は、プロテオソームワクチンで免疫した動物由来の中和抗体を測定するために用いられるアッセイを記載する。インビトロにおいてアッセイを設計して、免疫された動物から得られた血清サンプルにより炭素菌毒素の細胞傷害性の阻害を測定する。血清サンプルの連続希釈を致死量の炭素菌PAおよび致死因子(LF)(List Biological Laboratories,Cambell,CA)と組み合わせて、J774A.1マクロファージ細胞または他のマクロファージ細胞株に対して、96ウェルプレートにおいて3時間、37℃で添加する。細胞の生存度は、1/10容積の5mg/ml MTT溶液を添加することによってクロマトグラフィーで測定する。37℃で4時間のインキュベーション後、アッセイプレートをELISAプレートリーダー(Molecular Devices,Menlo Park,CA)を用いて570nmで分光光度的に分析する。このアッセイは、104〜105細胞/ウェルの範囲では細胞濃度について線形である。
(炭素菌に対する免疫を評価するための細胞媒介性免疫アッセイ)
プロテオソームベースのPAワクチンでの免疫後に誘導される細胞性免疫応答は、種々の方法を用いて研究される。例えば、T細胞由来のサイトカインは、マウス脾臓および/または縦隔リンパ節から単離されたPA再刺激された精製または富化されたT細胞で評価される。1型(例えば、IFN−γ)およびII型(例えば、IL−4およびIL−5)サイトカインの存在およびレベルは、ELISA、ELISPOTを含む1つ以上の方法によって決定される。細胞内サイトカインの存在およびレベルは、標準的なフローサイトメトリー法によって決定される。ウサギのサイトカインに特異的な試薬の入手困難性に起因して、PA再刺激されたPBMC T細胞の増殖を測定する技術を用いて、ウサギにおける細胞媒介性免疫応答を評価する。
(鼻腔洗浄および肺洗浄液を収集するための方法)
マウスおよびウサギから肺および鼻腔の洗浄液を収集して、免疫刺激性処方物または免疫原性処方物に対する免疫応答を分析した。マウスでは、鼻腔洗浄液および肺洗浄液は、気管にカニューレ挿入すること、そして気管をとおって上側に0.1%のウシ胎仔血清アルブミンおよびプロテアーゼインヒビターを補充した1ml PBS(General Use Protease Inhibitor Cocktail;Sigma−Aldrich Chemicals containing 0.2mM AEBSR、1μg/mlアプロチニン、3.25μMベスタチン、10μMロイペプチン)をポンピングすることによって行なった。鼻孔から流れ出す液体を収集して、ボルテックスして、次いで遠心分離によって組織および細胞砕片を除去した。上清を−70℃で保管した。カニューレを気管に再挿入して、肺液の収集のために肺に向かわせた。肺を1.0mlのプロテアーゼ補充PBSで2回洗浄した;この液を収集してボルテックスした;そして遠心分離によって細胞砕片を除いた。肺および鼻腔の洗浄液を−70℃で保管した。ウサギ粘膜液を同様に収集して、必要に応じて容積を調節した。特定の実験では、粘膜サンプルを収集した後、頸部リンパ節および縦隔リンパ節を外科的に取り出して、単核球を単離して、本明細書に記載のようにELISPOT抗体、サイトカインおよびCMIアッセイのために培養した。
(Protollinを用いるウサギでの生得免疫の誘発)
Protollinは、プロテオソームおよびLPSの両方に関してアジュバント活性を有する。Chlamydia trachomatisまたはBacillus anthracisのような種々の病原体でのエアロゾル負荷に対して、Protollin単独(抗原なし)が生得免疫を刺激する能力を決定する。Protollin投与後2〜3日内、またはそれ以上で炭素菌の芽胞の100または200 LD50を有するエアロゾルによってウサギを負荷する。炭素菌負荷に生残するウサギを、防御が延長され得るか生得免疫が再刺激され得るかを決定するためにProtollinを用いて再度免疫する。
(Chlamydia trachomatisでの負荷に対するプロテオソーム:LPS処方物による免疫応答の誘導)
Chlamydia LPSは種々のChlamydia株の間で高度に保存されており、Chlamydia属特異的なLPSについて特異的な抗体はChlamydia感染に対して防御し得ることがデータによって示唆される(Petersonら、Infect.Immun.66:3848,1998)。Chlamydia LPSは、E.coli LPSおよび粗「chlamydia様(chlamydia−like)」変異体(rLPS)の両方を等しい割合で合成する組み換えEscherichia coli(C.t./E.coli rLPS)(GlycoTech,Kukels,Germanyから購入)中で産生された。Chlamydia感染についてのマウス肺モデルを用いて、Protollinで処方されたC.t./E.coli rLPSによって発揮される免疫応答を評価した。
(2)初回の免疫の5週間後(30日目)(プロテオソーム−LPSワクチンでの第2の免疫の2週間後)に得られた血清(6匹のマウスからのプール)中の抗LPS抗体力価は、バッククラウンドよりもほぼ2倍大きい450nmのO.D.を与える希釈として表される。
(3)免疫に用いた抗原と独立した血清抗Chlamydia IgAは検出されなかった。
(4)第1群および2群については、ホモジナイズした肺のプールを分析した。第3〜6群については、肺洗浄液のプールを分析した。肺および肺洗浄液は30日目に得た。
「−」:抗体が検出されなかった。
(Chlamydiaに対する生得の免疫応答防御の期間)
プロテオソーム:LPS(Protollin)またはプロテオソーム(projuvant)のような免疫刺激性組成物によって誘導された非特異的なタンパク質の寿命を検査した。10匹のマウスの群を、(a)プロテオソーム単独(Prot10)、(b)E.coli由来のLPS(Ec10:14)で処方されたプロテオソーム;(c)C.tr./E.coli LPS(Ct10:18)で処方されたプロテオソーム;(d)P.shigelloides由来のLPS(Ps10:12)で処方されたプロテオソーム;(e)生きたChlamydia(800IFU)(CT800);または(f)HeLa細胞のニセ感染(HeLa)を用いて0日目および22日目に処置した。各々の処置について、種々の群のマウスを、生きたChlamydia細菌を用いて、2回目の処置の2、5、8または11週後に負荷した。各々のマウス(群におけるマウス番号によって指定)について、最大の体重低下(減少%)を決定すること、および肺におけるChlamydia IFUを決定することによって防御を評価した。そのデータを表5〜12に示す。
(Protollinは、インフルエンザウイルス感染に対して防御的な生得の免疫を刺激する)
(実験1)
25 LD50のマウス適応A/H3インフルエンザウイルス(Hong Kong)を鼻腔内負荷する前1、2または3日目に単回鼻腔内用量のProtollin(ほぼ5μgの各々のNeisseria OMPsおよびS.flexneri LPSを含有する)をマウスに与えた。このウイルスは、標準的な方法に従って増殖した(もとの種子ストックは、Phil Wyde博士(Baylor University,Waco,TX)の贈与であった)。マウスを、負荷の前に、そして全部で14日間の間、2日後ごとに秤量した。個々の生残者を秤量すること、および負荷の日に体重の変化を体重のパーセントとして表すことによって罹患率を評価した(図8Bを参照のこと)。死亡の日をまた記録した(図8Aを参照のこと)。負荷の3日前にProtollinを投与された全てのマウスが生存しており、また急性の罹患はなかった(最大の体重減少が7%であった)。負荷の1または2日前にProtollinを投与された動物の群では70%の生存が観察された;しかし、両方の群の動物とも15〜18%の体重減少を被った。各々の群についての死亡の時間の遅延の統計学的な有意差は全体としてウイルコクソンの符号付き検定によって評価した。負荷の72時間前にProtollinを投与された全てのマウスが生存した。陰性のコントロール群(Protollinなし)についての生存データと比較して、負荷の3日前にProtollinを与えたマウスの生存は有意に高かった(P≦0.001;フィッシャーの直接確率検定)。負荷の1日または2日前のいずれかにProtollinを投与されたマウスの70%が生存した(陰性コントロール群と比較してP≦0.07)。これらの2つの群における生存者の絶対数は、コントロール群における生存者の数と有意に異なることはなかったが、死亡までの時間は、コントロールのマウスに比較して両方の群とも有意に長かった(負荷の1日前または2日前にProtollinを与えた群ではそれぞれ、P≦0.05または≦0.01)。
さらに、限られた用量範囲内で防御の期間を分析した。単回用量の3、1または0.3μgのProtollinを、マウス適合性のA/H3インフルエンザウイルスの25 LD50を用いる負荷の15日、12日、9日、6日または3日前にマウスの群(1群あたり10匹の動物)に投与した。この実験のためのヒトによるエンドポイントの指標は、体重、外観および行動に基づいた。動物を以下のとおり各々のカテゴリーにおいて0〜3にスコア付けした。体重に関しては、0というスコアは、試験開始の体重から減少がないことを示し;1は、試験開始時の体重の10%以下の減少を示し;2は、試験開始時の体重の11〜19%の減少を示し;そして3は、試験開始時の体重の20%以下の減少を示した。外観に関しては、0というスコアは、正常な外観を示し;1というスコアは毛の逆立ちを示し;2というスコアは逆立った毛が脂ぎって、鼻汁/眼漏であることを示し;3というスコアは、丸めた背中、重篤な脱水を示した。行動に関しては、0というスコアは、正常な行動を示し;1というスコアは異常な歩行および衰弱を示し;2というスコアは、活力の低下、重篤な振戦を示し;そして3というスコアは不活発を示した。単独または組み合わせた症状で3以上のスコアのマウスは安楽死させた。
マウスの群に、Protollinを、負荷の8、6、4および2日前に、そして負荷の日(負荷の30分前)に与えた。他の群のマウスには、負荷のために用いたマウス適合性A/H3インフルエンザ株のホモタイプ改変体ウイルス由来のインフルエンザ抗原と組み合わせてProtollinを同時に投与した。マウスには、約40 LD50のマウス適合性A/H3の生きたウイルスを負荷して、上記のように負荷後14日間モニターした。
(アレルギー性喘息のアレルゲン誘導性マウスモデル)
本実施例は、マウスのアレルギー性喘息動物モデルを記載する。マウスをカバノキ花粉抽出物(BPEx)に対して複数回曝露させて、炎症および気道の応答性亢進(すなわち、アレルギー性反応を刺激すること)を刺激させた。要するに、6〜8週齢のBALB/cマウスを、8μgのBPEx(Greer Laboratories,Inc.)および1mgの水酸化アルミニウム(ミョウバン)(Alhydrogel(登録商標)、Superfos Biosector,Kvistgard,Denmark)を含有する150μlのリン酸緩衝化生理食塩水(PBS)を用いて単回腹腔内(i.p.)注射によって0日目に感作させた。感作後、マウスを次に、10μg BPExを含有する36μl PBSを用いて(鼻孔あたり18μl)15日、16日および17日目に毎日1回、浅いハロタン麻酔下で鼻腔内(i.n.)に負荷した。コントロールには、(1)0日目に150μlのPBSをi.p.投与して、次に10μg BPExを含有する36μl PBSを用いて(鼻孔あたり18μl)15日、16日および17日目に毎日1回、浅いハロタン麻酔下でi.n.に負荷したニセの感作されたマウス、ならびに(2)0日目に8μg BPExおよび1mgのミョウバンを用いてi.p.で感作して、次に36μl PBSを用いて(鼻孔あたり18μl)15日、16日および17日目に毎日1回、浅いハロタン麻酔下でi.n.投与したニセの負荷されたマウスを含んだ。8匹のマウスが各々のタイプの処置を受けた。感作および負荷後、気管支収縮剤メタコリン(MCh)の静脈内(i.v.)ボーラスをマウスに与えて、気道過敏症(AHR)を誘発させた。最終負荷の2日後(すなわち、19日目)に、MCh処置に対する気道応答(呼吸抵抗およびエラスタンス)を測定した。さらなる分析を行なって炎症を評価した。
(アレルギー性喘息のアレルゲン誘発性マウスモデルの分析)
(気道過敏症(AHR))
AHRの決定は、以下のとおり行なった。実施例17に記載のように処置したBALB/cマウスを、塩酸キシラジン(10mg/kg)のi.p.注射によって鎮静し、引き続いてペントバルビタールナトリウム(30mg/kg)を用いて麻酔した。頸に小切開を作製して、頸静脈を切り分けてここにカテーテルを挿入した。気管切開を行って、動物を機械的に換気できるように気管にチューブを挿入した。以下の設定を用いて小動物ベンチレーター(FlexiVent;SCIREQ,Montreal,Canada)を用いて動物を準正弦的に(吸気対呼気比が1:1)換気した:150呼吸/分の呼吸数、0.15mlの1回換気量、および1.5cm H2Oの呼気終端陽圧(PEEP)レベル。マウスには麻痺を誘発するために臭化パンクロニウム(0.5mg/kg)の静脈内注射を与えて、この動物を機械的に換気可能にした。EKGを介して心拍数をモニターして、動物が深く麻酔されたことを確認した。標準的なボリュームヒストリーを得るために30cm H2Oの気道圧への膨張後、20〜640μg/mlの2倍化用量で頸静脈カニューレを介してMChを与えた。McHの投与前の機械的換気の間に用いたオシレーション(oscillation)と等しいオシレーションの間に呼吸器系の抵抗およびエラスタンスを測定して、Mchの送達後15秒ごとに繰り返して、ピークの値を報告した。気道抵抗(RL)測定によって、肺の収縮のレベルの定量的評価を得た − すなわち、気道抵抗の増大は、炎症性応答によって生じ得る気道閉塞の増大を示す。気道エラスタンス(EL)は、肺の弾性剛直性の指標であり;従って、エラスタンス値の増大は、肺の堅さの増大を示す。RLおよびELは多重線形回帰を用いてFlexiVentの製造業者によって提供されるソフトウェアで算出して以下の式についてのベストフィットを得た:
P=Pres+Pel+Pin=FRL+VEL+K
ここでPは、機械的呼吸器によって加えられるガス圧であり;Presは、抵抗圧であり;Pelは弾性圧であり;Pinはイナーティブ(inertive)圧であり;Fはガスの流量であり;Vは機能的残気量に対する肺容積であり;そしてKは定数である(Irvinら、Respir.Res.4:4(2003))。気道抵抗および気道エラスタンスは、平均値±SEMとして表される。スチューデントのt検定を用いて、動物の群の間の相違のレベルを決定した。
気道抵抗の測定直後に、心臓穿刺による放血によってマウスを屠殺して、収集した血液を遠心分離して、得られた血液を清浄なチューブに移して凍結させた。ELISAを用いて血清を分析して、BPEx特異的な抗体が存在するか否かを決定した。
放血後、下行大動脈を切断して5mlの生理食塩水緩衝液を用いて心臓を灌流させてBALを行なう前に肺から血液を除去した。全部で4.6mlの生理食塩水緩衝液を、気管切開カニューレを通じて、最初0.6mlの溶液、続いて4回連続して1mlの容積で注入した。初回の0.6mlの洗浄液からのリターンを遠心分離して、その上清をELISAによって分析して抗体およびサイトカインを検出した。
BAL後、各々のマウスの肺を露出させて、左葉をクランプする。右肺の最大の葉を直接10%のパラフィンに入れる。第二の最大の葉をRNA抽出溶液(Rneasy(登録商標)RLT緩衝液;Qiagen Inc,Mississauga,Ontario)に入れて、これを一晩4℃で保持し、次いでリアルタイム定量的ポリメラーゼ連鎖反応(QPCR)のための引き続く使用のために−70℃で凍結保存する。右肺の2つの他の葉をエッペンドルフチューブに移して、液体窒素に浸し、次いで−70℃で保管する。肺モホジネートを調製して、上清をELISAによって、BPEx特異的抗体および総抗体について、そしてサイトカインレベルについて分析する。左の肺を、5%最適切断温度(OCT)包埋化合物(Miles Labs,Elkhart,IN)で膨張させて(約25cm圧)、イソペンタノールに浸しながら100%OCTに入れ(液体窒素中のビーカー;すなわち、急速凍結)、そして−70℃で保管する。
ELISAを用いて、特異的抗体(IgA、IgE、IgG1およびIgG2a)および特異的なサイトカイン(IL−4、IL−5、IL−10、IL−13、TNF−αおよびIFN−γ)を同定する。血清、BALおよび肺ホモジネートを、OptEIAマウスIgEセット(BD Pharmingen,Mississauga,Ontario)を用いてBPEx特異的なIgEおよび総IgEについて分析する。血清、BALおよび肺ホモジネートを、Southern Biotech Associates,Inc(Birmingham,AL)由来の試薬を用いてBPEx特異的なそして総IgG1およびIgG2aについて分析する。血清、BALおよび肺ホモジネートを、Bethyl Laboratories,Inc.(Montgomery,TX)の試薬を用いてBPEx特異的なそして総IgAについて分析する。BALおよび肺ホモジネートを、BD Pharmingen(Mississauga,Ontario)の試薬を用いてIL−4、IL−5、IL−10、TNF−αおよびIFN−γのレベルについて分析する。BALおよび肺ホモジネートを、R&D Systems(Minneapolis,MN)の試薬を用いてIL−13のレベルについて分析する。抗体およびサイトカインの力価は、対応する組み換え抗体またはサイトカインを用いて並行して行なった標準から推定して、それぞれng/mlおよびpg/mlとして表す。
第1群対第2群 320μg/ml MCh:p=0.014
第1群対第3群 320μg/ml MCh:p=0.042
第1群対第2群 640μg/ml MCh:p=0.014
第1群対第3群 640μg/ml MCh:p=0.031
(表14.マウスアレルギー性喘息モデルでの平均呼吸器エラスタンス((cmH2O)/ml))
第1群対第2群 320μg/ml MCh:p=0.038
第1群対第3群 320μg/ml MCh:p=0.084
第1群対第2群 640μg/ml MCh:p=0.028
第1群対第3群 640μg/ml MCh:p=0.062
さらに、BALB/cマウスにおけるBPExを用いた感作および負荷の組み合わせによって好酸球増加症が生じた。マクロファージ、好中球、好酸球、リンパ球および上皮細胞を気管支肺胞洗浄液サンプルにおいて数え上げた(BALs)。細胞の総数あたりの各々の細胞タイプの割合は、表15に示す。これらのマウスでは、好酸球(8.26%)およびリンパ球(10.16%)の割合は、BPExのみで感作されたコントロールのマウスにおける、それぞれ12倍および4倍であった(それぞれ、p=0.036およびp=0.024);これらの値は、BPExのみを負荷されたマウスにおいてよりもそれぞれ、3倍および2倍高かった(それぞれ、p=0.204およびp=0.320)。
(実施例19)
(気道過敏症および気道炎症のProtollin誘導性の抑制)
アレルギー性喘息のマウスモデル(実施例18に記載される)を用いて、炎症性免疫応答および気道過敏症を抑制する(すなわち、アレルギー性反応を抑制する)ための組成物を分析した。要するに、6〜8週齢のBALB/cマウスを、8μgのBPExおよび1mgミョウバン含有150μl PBSを用いて0日目にi.p.で感作した。感作の7、10および13日後、8匹のマウスの群を各々(1)PBS;(2)10μg BPEx;(3)10μg Protollinと混合された10μg BPEx;または10μg Protollin単独の10μl(鼻孔あたり5μl)の溶液を用いてi.n.で免疫した。免疫後、次にマウスを、10μg BPExを含有する36μl PBS(鼻孔あたり18μl)を用いて15日、16日および17日に1日1回、浅いハロタン麻酔下で負荷した。最終の負荷の2日後(すなわち、19日目)、マウスにMChのi.v.ボーラス(20〜640μg/ml)を与えた。MCh処置に対する気道応答(気道抵抗およびエラスタンス)、炎症および好酸球増加症を実施例18に記載のように決定した。
第3群対第1群 640μg/ml MCh:p=0.028
第3群対第2群 640μg/ml MCh:p=0.132
第4群対第1群 640μg/ml MCh:p=0.005
第4群対第2群 640μg/ml MCh:p=0.029
(表17.マウスアレルギー性喘息モデルでのProtollin:カバノキ花粉抽出物(BPEx)の投与後の平均呼吸器系エラスタンス((cm H2O//ml))
第3群対第1群 640μg/ml MCh:p=0.050
第3群対第2群 640μg/ml MCh:p=0.220
第4群対第1群 640μg/ml MCh:p=0.009
第4群対第2群 640μg/ml MCh:p=0.074
動物における気道炎症の程度は、PBS、BPEX、BPEX+ProtollinおよびProtollin単独で処置したマウス由来の気管支肺胞洗浄液(BAL)サンプルに存在する免疫細胞を数え上げることによって決定した。そのデータを表18に示す。Protollinと混合されたアレルゲンBPExを用いて処置した動物は、それぞれ、PBSのみ(p=0.36)またはBPExのみ(p=0.29)で処置されたマウスと比較して、ほぼ56%および43%、BALの好酸球のレベルを低下させた。BPExに加えてProtollinでの処置はまた、それぞれPBSのみ(p=0.04)またはBPExのみ(p=0.26)で処置された動物と比較して、ほぼ51%および40%までBALにおけるリンパ球の数を減少させた。Protollin単独で処置された動物は、それぞれPBSのみ(p=0.28)またはBPExのみ(p=0.14)で処置されたマウス由来の好酸球の数と比較して、ほぼ71%および63%までBALの好酸球のレベルを減少させた。Protollin単独でのマウスの処置はまた、それぞれPBSのみ(p=0.10)またはBPExのみ(p=0.40)で処置されたマウスと比較して、ほぼ45%および32%までリンパ球の数を減少させた。肺サンプルを杯状細胞の存在について分析した。気道炎症の軽減はまた、PBSのみ(75%;7匹のマウスのうち5匹)またはBPExのみ(50%;6匹のマウスのうち3匹)で処置されたマウスと比較して、BPExに加えてProtollinまたはProtolin単独で処置された群において、気管支梢における粘液産生杯状細胞を有するマウスの割合が低いこと(29%;すなわち、各々の群における7匹のマウスのうち2匹のマウスが気管支上皮細胞の総数の少なくとも1%の杯状細胞を有した)によって示された。
Claims (125)
- 非特異的な免疫応答を誘発するための方法であって、
非特異的な免疫応答を誘発するのに十分な量で免疫刺激性組成物を被験体に投与する工程を包含し、該免疫刺激性組成物はプロテオソームおよびリポサッカリドを含む、方法。 - 前記免疫刺激性組成物が、粘膜、経腸、非経口、経皮、経粘膜、経鼻および吸入のうちの少なくとも1つから選択される経路によって投与される、請求項1に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物が経鼻的に投与される、請求項2に記載の方法。
- 前記リポサッカリドの最終含有重量が、プロテオソームタンパク質のパーセンテージとして、約1%〜500%の範囲におよぶ、請求項1に記載の方法。
- 前記プロテオソームおよびリポサッカリドが、同じグラム陰性細菌種から得られる、請求項1に記載の方法。
- 前記プロテオソームが第一のグラム陰性細菌種から得られ、かつ前記リポサッカリドが、第二のグラム陰性細菌種から得られる、請求項1に記載の方法。
- 前記リポサッカリドがShigella種、Chlamydia種、Yersinia種、Pseudomonas種、Plesiomonas種、Escherichia種、Porphyromonas種およびSalmonella種のうちの少なくとも1つから選択されるグラム陰性細菌から得られる、請求項1に記載の方法。
- 前記プロテオソームがNeisseria種から得られる、請求項1に記載の方法。
- 前記プロテオソームがNeisseria meningitidisから得られ、そして前記リポサッカリドがShigella flexneriから得られる、請求項1に記載の方法。
- 請求項1に記載の方法であって、前記免疫刺激性組成物の投与後に免疫原性組成物を前記被験体に投与する工程をさらに包含し、該免疫原性組成物は、プロテオソーム、リポサッカリドおよび微生物抗原を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が少なくとも2つの微生物抗原を含む、請求項10に記載の方法。
- 前記微生物抗原がウイルス抗原、細菌抗原、真菌抗原または寄生生物抗原である、請求項10に記載の方法。
- 前記少なくとも2つの微生物抗原が同じ微生物から得られ、該微生物が、細菌、ウイルス、真菌または寄生生物である、請求項11に記載の方法。
- 前記少なくとも2つの微生物抗原が、異なる微生物から得られる、請求項11に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの微生物抗原の重量との比が、4:1〜1:4の範囲内である、請求項10に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの微生物抗原の重量との比が、1:1〜1:500の範囲内である、請求項10に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの微生物抗原の重量との比が、1:1〜1:200の範囲内である、請求項10に記載の方法。
- 前記微生物抗原が組み換え体である、請求項10に記載の方法。
- 前記微生物抗原が細菌抗原である、請求項10に記載の方法。
- 前記細菌抗原が、Bacillus anthracis、Chlamydia trachomatis、Yersinia pestis、または腸病原性Escherichia coliから得られる、請求項19に記載の方法。
- 前記細菌抗原がBacillus anthracis由来の防御抗原である、請求項20に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の前記微生物抗原がウイルススプリット抗原である、請求項10に記載の方法。
- 前記ウイルススプリット抗原がインフルエンザスプリット抗原である、請求項22に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が、前記免疫刺激性組成物の約1日〜約10日後に投与される、請求項10に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が適応的免疫応答を誘発する、請求項10に記載の方法。
- 前記非特異的免疫応答が微生物感染を予防または処置する生得的免疫応答である、請求項1に記載の方法。
- 前記微生物感染がウイルス感染、寄生生物感染、真菌感染または細菌感染である、請求項26に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物および前記免疫原性組成物のうちの少なくとも1つが、薬学的に受容可能なキャリアをさらに含む、請求項1または請求項10のいずれかに記載の方法。
- 微生物感染を処置または予防するための方法であって:
該微生物感染が処置または予防されるように、
(a)免疫刺激性組成物を、生得的免疫応答を誘発するのに十分な量および条件下で被験体に投与する工程であって、該免疫刺激性組成物は、プロテオソームおよびリポサッカリドを含む、工程;ならびに
(b)免疫原性組成物を、適応的免疫応答を誘発するのに十分な量および条件下で該被験体に投与する工程であって、該免疫原性組成物は、プロテオソーム、リポサッカリドおよび微生物抗原を含む、工程
を包含する、方法。 - 前記工程(a)の免疫刺激性組成物が前記工程(b)の免疫原性組成物の約1日前〜約10日前に投与される、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物および免疫原性組成物の各々が、粘膜、経腸、非経口、経皮、経粘膜、経鼻および吸入のうちの少なくとも1つから選択される経路によって投与される、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物および免疫原性組成物が経鼻的に投与される、請求項29に記載の方法。
- 前記リポサッカリドの最終含有重量が、プロテオソームタンパク質のパーセンテージとして、前記免疫刺激性組成物および免疫原性組成物の各々において約1%〜500%の範囲におよぶ、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドが、同じグラム陰性細菌種から得られる、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドが、同じグラム陰性細菌種から得られる、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドが、異なるグラム陰性細菌種から得られる、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドが、異なるグラム陰性細菌種から得られる、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物のプロテオソームおよび前記免疫原性組成物のプロテオソームが、Neisseria種から得られる、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物のリポサッカリドおよび前記免疫原性の組成物のリポサッカリドのうちの少なくとも1つが、Shigella種、Chlamydia種、Yersinia種、Pseudomonas種、Plesiomonas種、Escherichia種、Porphyromonas種およびSalmonella種のうちの少なくとも1つから得られる、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物および前記免疫原性組成物の各々のプロテオソームが、Neisseria meningitidisから得られ、そして前記免疫刺激性組成物および前記免疫原性組成物の各々のリポサッカリドが、Shigella flexneriから得られる、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が少なくとも2つの微生物抗原をさらに含む、請求項29に記載の方法。
- 前記少なくとも2つの微生物抗原が同じ微生物から得られ、該微生物が、細菌、ウイルス、真菌または寄生生物である、請求項41に記載の方法。
- 前記少なくとも2つの微生物抗原が、異なる微生物から得られる、請求項41に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの微生物抗原の重量との比が、4:1〜1:4の範囲内である、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの微生物抗原の重量との比が、1:1〜1:500の範囲内である、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの微生物抗原の重量との比が、1:1〜1:200の範囲内である、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の前記微生物抗原が組み換え体である、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の前記微生物抗原が細菌抗原である、請求項29に記載の方法。
- 前記微生物抗原が、Bacillus anthracis、Chlamydia trachomatis、Yersinia pestis、または腸病原性Escherichia coliから得られる、請求項48に記載の方法。
- 前記細菌抗原がBacillus anthracis由来の防御抗原である、請求項49に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の前記微生物抗原がウイルススプリット抗原である、請求項29に記載の方法。
- 前記ウイルススプリット抗原がインフルエンザスプリット抗原である、請求項51に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が、前記免疫刺激性組成物の約1日〜約7日後に投与される、請求項29に記載の方法。
- 前記微生物感染がウイルス感染、寄生生物感染、真菌感染または細菌感染である、請求項29に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物および前記免疫原性組成物の少なくとも1つが、薬学的に受容可能なキャリアをさらに含む、請求項29に記載の方法。
- 炎症性免疫応答を変化させるための方法であって、免疫調節性組成物を、炎症性免疫応答を変化させるのに十分な量で被験体に投与する工程を包含し、該免疫調節性組成物は、プロテオソームおよびリポサッカリドを含む、方法。
- 前記免疫調節性組成物が粘膜、経腸、非経口、経皮、経粘膜、経鼻および吸入のうちの少なくとも1つから選択される経路によって投与される、請求項56に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物が経鼻的に投与される、請求項57に記載の方法。
- 前記リポサッカリドの最終含有重量が、プロテオソームタンパク質のパーセンテージとして、約1%〜500%の範囲におよぶ、請求項56に記載の方法。
- 前記プロテオソームおよびリポサッカリドが、同じグラム陰性細菌種から得られる、請求項56に記載の方法。
- 前記プロテオソームおよびリポサッカリドが、異なるグラム陰性細菌種から得られる、請求項56に記載の方法。
- 前記リポサッカリドが、Shigella種、Chlamydia種、Yersinia種、Pseudomonas種、Plesiomonas種、Escherichia種、Porphyromonas種およびSalmonella種のうちの少なくとも1つから選択されるグラム陰性細菌である、請求項56に記載の方法。
- 前記プロテオソームが、Neisseria種から得られる、請求項56に記載の方法。
- 前記プロテオソームがNeisseria meningitidisから得られ、そして前記リポサッカリドがShigella flexneriから得られる、請求項56に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物の投与後に免疫原性組成物を前記被験体に投与する工程をさらに包含し、該免疫原性組成物がプロテオソーム、リポサッカリドおよび抗原を含む、請求項56に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が少なくとも1つの微生物抗原を含む、請求項65に記載の方法。
- 前記少なくとも1つの微生物抗原が、ウイルス、細菌、真菌または寄生生物である、請求項66に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの抗原の重量との比が、4:1〜1:4の範囲内である、請求項65に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの抗原の重量との比が、1:1〜1:500の範囲内である、請求項65に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちの抗原の重量との比が、1:1〜1:200の範囲内である、請求項65に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の抗原が組み換え体である、請求項65に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の抗原が細菌である、請求項65に記載の方法。
- 前記細菌抗原が、Bacillus anthracis、Chlamydia trachomatis、Yersinia pestis、または腸病原性Escherichia coliから得られる、請求項72に記載の方法。
- 前記細菌抗原がBacillus anthracis由来の防御抗原である、請求項72に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の前記抗原がウイルススプリット抗原である、請求項65に記載の方法。
- 前記ウイルススプリット抗原がインフルエンザスプリット抗原である、請求項75に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が、前記免疫調節性組成物の約1日〜約10日後に投与される、請求項65に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が適応的免疫応答を誘発する、請求項65に記載の方法。
- 前記炎症性免疫応答が喘息である、請求項56に記載の方法。
- 前記炎症性免疫応答がアレルギー反応である、請求項56に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物および前記免疫原性組成物のうちの少なくとも1つが薬学的に受容可能なキャリアをさらに含む、請求項56に記載の方法。
- アレルギー反応を処置または予防するための方法であって:
該アレルギー反応が処置または予防されるように、
(a)免疫調節性組成物を、炎症性免疫応答を変化させるのに十分な量および条件下で該方法が必要な被験体に投与する工程であって、該免疫調節性組成物がプロテオソームおよびリポサッカリドを含む、工程;ならびに
(b)免疫原性組成物を該被験体に投与する工程であって、該免疫原性組成物は、プロテオソーム、リポサッカリドおよびアレルゲンを含み、該免疫原性組成物は、該アレルゲンに対する耐性を誘発するのに十分な量および条件下で投与される、工程;
を包含する、方法。 - 前記工程(a)の免疫調節性組成物が前記工程(b)の免疫原性組成物の約1日前〜約10日前に投与される、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物および前記免疫原性組成物の各々が、粘膜、経腸、舌下、非経口、経皮、経粘膜、経鼻および吸入のうちの少なくとも1つから選択される経路によって投与される、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物および免疫原性組成物の各々が経鼻的に投与される、請求項84に記載の方法。
- 前記リポサッカリドの最終含有重量が、プロテオソームタンパク質のパーセンテージとして、前記免疫調節性および免疫原性の組成物の各々において、約1%〜500%の範囲におよぶ、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドが、同じグラム陰性細菌種から得られる、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の前記プロテオソームおよびリポサッカリドが、同じグラム陰性細菌種から得られる、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物のプロテオソームおよびリポサッカリドが、異なるグラム陰性細菌種から得られる、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物の前記プロテオソームおよびリポサッカリドが、異なるグラム陰性細菌種から得られる、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物および免疫原性組成物の各々のプロテオソームがNeisseria種から得られる、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物および前記免疫原性組成物のうちの少なくとも1つのリポサッカリドが、Shigella種、Chlamydia種、Yersinia種、Pseudomonas種、Plesiomonas種、Escherichia種、Porphyromonas種およびSalmonella種のうちの少なくとも1つから得られる、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物および免疫原性組成物の各々のプロテオソームが、Neisseria meningitidisから得られ、そして前記免疫調節性および免疫原性の組成物の各々のリポサッカリドが、Shigella flexneriから得られる、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が少なくとも2つのアレルゲンをさらに含む、請求項82に記載の方法。
- 前記アレルゲンが微生物抗原である、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちのアレルゲンの重量との比が、4:1〜1:4の範囲内である、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちのアレルゲンの重量との比が、1:1〜1:500の範囲内である、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のうちのプロテオソームおよびリポサッカリドの重量と該免疫原性組成物のうちのアレルゲンの重量との比が、1:1〜1:200の範囲内である、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のアレルゲンが組み換え体である、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のアレルゲンが細菌抗原である、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物のアレルゲンが、吸入された粒子、花粉、蒸気、ガス、食物、飲料、薬物、毒素、微生物抗原、鱗屑、動物由来の化合物、チリダニ糞便、ポリペプチド、炭水化物および核酸のうち少なくとも1つから選択される、請求項82に記載の方法。
- 前記アレルゲンが花粉である、請求項82に記載の方法。
- 前記花粉がカバノキ花粉である、請求項102に記載の方法。
- 前記免疫原性組成物が、前記免疫調節性組成物の約1日〜約7日後に投与される、請求項82に記載の方法。
- 前記アレルギー反応が喘息である、請求項82に記載の方法。
- 前記アレルギー反応が、アレルギー性肺胞炎、アレルギー性気管支肺アスペルギルス症、アレルギー性結膜炎、アレルギー性鼻感冒、アレルギー性皮膚炎、アレルギー性脈管炎およびアレルギー性鼻炎のうち少なくとも1つである、請求項82に記載の方法。
- 前記免疫調節性組成物および免疫原性組成物のうちの少なくとも1つが、薬学的に受容可能なキャリアをさらに含む、請求項82に記載の方法。
- 前記微生物感染がウイルス感染である、請求項26または請求項29のいずれかに記載の方法。
- 前記ウイルス感染がインフルエンザウイルス感染である、請求項108に記載の方法。
- 微生物感染を処置または予防するための方法であって、免疫刺激性組成物を、生得的免疫応答を誘発するのに十分な量で被験体に投与する工程を包含し、該免疫刺激性組成物は、プロテオソームおよびリポサッカリドを含む、方法。
- 前記微生物感染が、ウイルス感染、細菌感染、寄生生物感染または真菌感染である、請求項110に記載の方法。
- 前記微生物感染が細菌感染である、請求項111に記載の方法。
- 前記細菌感染がChlamydia trachomatis感染である、請求項112に記載の方法。
- 前記微生物感染がウイルス感染である、請求項110に記載の方法。
- 前記ウイルス感染がインフルエンザ感染である、請求項114に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物が粘膜、経腸、非経口、経皮、経粘膜、経鼻および吸入のうちの少なくとも1つから選択される経路によって投与される、請求項110に記載の方法。
- 前記免疫刺激性組成物が経鼻的に投与される、請求項116に記載の方法。
- 前記リポサッカリドの最終含有重量が、プロテオソームタンパク質のパーセンテージとして、約1%〜500%の範囲におよぶ、請求項110に記載の方法。
- 前記プロテオソームおよびリポサッカリドが、同じグラム陰性細菌種から得られる、請求項110に記載の方法。
- 前記プロテオソームが、第一のグラム陰性細菌種から得られ、かつ前記リポサッカリドが、第二のグラム陰性細菌種から得られる、請求項110に記載の方法。
- 前記リポサッカリドがShigella種、Chlamydia種、Yersinia種、Pseudomonas種、Plesiomonas種、Escherichia種、Porphyromonas種およびSalmonella種のうちの少なくとも1つから選択されるグラム陰性細菌から得られる、請求項110に記載の方法。
- 前記プロテオソームがNeisseria種から得られる、請求項110に記載の方法。
- 前記プロテオソームがNeisseria meningitidisから得られ、そして前記リポサッカリドがShigella flexneriから得られる、請求項110に記載の方法。
- インフルエンザウイルス感染を処置または予防するための方法であって、免疫刺激性組成物を、生得的免疫応答を誘発するのに十分な量で被験体に投与する工程を包含し、該免疫刺激性組成物は、プロテオソームおよびリポサッカリドを含む方法。
- 前記プロテオソームがNeisseria meningitidisから得られ、そして前記リポサッカリドがShigella flexneriから得られる、請求項124に記載の方法。
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