JP2006501856A - 組換え触媒ポリペプチドおよびその使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチド、該組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸、該組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸の宿主である細胞、およびタンパク質分解活性を持つ異種抗体を産生することができる非ヒト・トランスジェニック哺乳動物を提供する。本発明は、生体外および生体内で組換え触媒ポリペプチドを用いて、標的タンパク質を切断する方法も提供する。さらに、本発明は、酵素活性が変化した組換え触媒ポリペプチドのライブラリと、組換え触媒ポリペプチドの活性を変える方法とを提供する。

Description

（関連出願の相互参照）
この出願は、仮米国特許出願第６０／４１７，９７９号（２００２年１０月１０日出願）の優先権を主張する。

（発明の背景）
本発明は、一般に分子生物学および免疫学の分野に関し、また具体的には標的タンパク質を特異的に切断するために実行可能に結合した２本の異種ヒト抗体鎖を含む組換え触媒ポリペプチドのほかに、該組換え型ポリペプチドを調製するための方法ならびにその用途に関する。

本発明は、触媒抗体に関する。抗体が触媒活性を呈する可能性があるという推測が最も早くなされたのは、かなり長い時間にわたって抗原にさらされると免疫系が触媒抗体を発生する可能性があることが示唆された半世紀前にさかのぼる（Ｗｏｏｌｌｅｙ， Ａ Ｓｔｕｄｙ ｏｆ Ａｎｔｉｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ， ｐ８２． Ｗｉｌｅｙ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， １９５２）。特定の抗体軽鎖とセリンプロテアーゼとのあいだの配列相同性がその後に明らかになり、いくつかの免疫グロブリンがタンパク質分解活性を有する可能性についての調査が迅速になされた（Ｅｒｈａｎ ａｎｄ Ｇｒｅｌｌｅｒ，Ｎａｔｕｒｅ，２５１：３５３−３５５ （１９７４））。数年後、エステラーゼ活性を有する抗体が報告された（Ｋｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒ，１１１：４２７−４３１ （１９８０））。さらなる研究によって、ペプチドまたはタンパク質を加水分解することが可能な抗体（例えば、Ｐａｕｌ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４４：１１５８−１１６２ （１９８９）； Ｌｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．， １５４：３３２８−３３３２ （１９９５）を参照せよ）、ＤＮＡを加水分解することが可能な抗体（Ｓｈｕｓｔｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５６：６６５−６６７ （１９９２）； Ｇｏｌｏｌｏｂｏｖ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｄ． ＵＳＡ，９２：２５４−２５７ （１９９５））、さらにペルオキシダーゼ活性を有する抗体（Ｐａｕｌ，Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，５：１９７−２０７ （１９９６））が発見された。

触媒抗体は、天然の免疫レパートリーから単離することができる。しかし、それは種々の自己免疫疾患状態の度合いを高めるように思われる（Ｐａｕｌ、上掲）。触媒抗体成分の分析によって、酵素活性がしばしば軽鎖にあること、また多発性骨髄腫患者から単離された抗体軽鎖がタンパク質分解活性を示すことが明らかにされている（Ｐａｕｌ、上掲）。

研究によって、タンパク質分解抗体とセリンプロテアーゼとを連結する証拠が得られた。セリンプロテアーゼは、消化酵素であるトリプシンおよびキモトリプシン、補体カスケードおよび血液凝固カスケードの構成要素、ならびに細胞外マトリックスの巨大分子の分解および代謝回転を制御する酵素を含むタンパク質分解酵素の大きなファミリーである。それらは、タンパク質切断のための活性触媒部位にセリン残基が存在することから、そのように名付けられた。セリンプロテアーゼは、広範囲にわたる基質特異性と多様な生体機能とを有する。そのような多様性としばしば無関係なアミノ酸配列とにもかかわらず、セリン、ヒスチジン、およびアスパラギン酸が三つ組み（トライアド）となった高度に保存的な触媒によって支えられる非常に類似した三次構造を介して、共通の触媒機構がセリンプロテアーゼのいくつかのサブファミリー間で共有されている。１つのセリンプロテアーゼ（スブチリシン）の活性部位構造は、最も研究され、最もよく理解されたものの１つである。

タンパク質分解抗体とセリンプロテーゼとのあいだの触媒部位で、高い構造類似性が見られる。例えば、ジイソプロピルフルオロリン酸（セリンプロテアーゼ阻害剤）が、いくつかのタンパク質分解抗体の触媒活性を強く阻害するのに対し、メタロプロテーゼ、酸性プロテアーゼ、およびシステインプロテアーゼの阻害剤の効果は最低であることが示された。そのことは、そのようなタンパク質分解酵素がセリンプロテアーゼの触媒機構に類似の触媒機構を有することを示唆している （Ｐａｕｌ ｅｔ ａｌ．， Ｊ．Ｂｉｏ．Ｃｈｅｍ．，２５６：１６１２８−１６１３４，（１９９１））。さらに血管作用性腸ポリペプチド（ＶＩＰ、２８−アミノ酸神経ペプチド）を加水分解することができる抗体の軽鎖の分子モデリングによって、セリンプロテアーゼのサブファミリーの触媒三つ組配置に類似したＳｅｒ２７ａ、Ｈｉｓ９３、およびＡｓｐ１の配置がさらに明らかになった（Ｇａｏ ｅｔ ａｌ．， Ｊ．Ｂｉｏ．Ｃｈｅｍ．， ２６９：３２３８９−３２３９３ （１９９４））。さらに、３つのアミノ酸残基のいずれか１つに対するアラニンによる置換によって、ＶＩＰを加水分解する抗体の能力が急激に減少した（Ｇａｏ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏ． Ｃｈｅｍ．， ２５３：６５８−６６４ （１９９５））。まとめると、いくつかのタンパク質分解抗体が該抗体の触媒活性に関するセリンプロテアーゼ様機構を利用するように見える。

最近の研究によって触媒抗体の機構および調節についての理解が改善されてはいるが（例えば、米国特許第５，６５８，７５３号および第６，２３５，７１４号を参照せよ）、本発明は、天然には存在しない基質特異性を持つプロテアーゼを作り出すために新規のアプローチを採用する。体細胞再配列を介して、哺乳動物免疫系は、１０^１０を上回る数の異なる抗原特異性を生ずることが可能である（Ｋｕｂｙ、上掲）。その一方で、既知のプロテアーゼまたはペプチダーゼのほとんどが特定のペプチド結合を標的にするが、個々の基質に対して高度の特異性を持つことなく、比較的広範囲のポリペプチドを切断することができる。タンパク質分解活性を持つヒト抗体軽鎖とポリペプチド結合特性を与える異種ヒト抗体重鎖とを結合させることで、本発明は、非標的ポリペプチドに対して不必要な影響を及ぼすことなく、事前に選択した標的タンパク質の特異的加水分解を可能にするプロテアーゼを設計する新規戦略を提供する。生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）ＤＮＡ技術が生成することができる実質的に無限の抗原特異性と同様に、免疫系が産生しうる膨大な数の抗原特異性があれば、カスタマイズされたプロテアーゼによって、潜在的に、あらゆるタンパク質を加水分解することができる。この戦略は、不適当に増大したタンパク質発現または外来性タンパク質の存在がそのような疾患または状態の原因にかかわることが知られている多くの疾患の処置および予防とに深い関連性がある。

（発明の要約）
一態様では、本発明は標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチドを提供する。組換え触媒ポリペプチドの各々は、実行可能に異種抗体重鎖に結合したヒト抗体軽鎖を含む。このヒト抗体軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性を有し、また上記抗体重鎖は標的タンパク質に対して所定の特異性を有する。

いくつかの実施形態では、標的タンパク質が成長因子、細胞表面マーカー、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群から選択される。好ましい実施形態では、標的タンパク質が血管内皮成長因子である。別の好ましい実施形態では、標的タンパク質がインターフェロンγである。別の好ましい実施形態では、標的タンパク質がＴＮＦαである。別の好ましい実施形態では、標的タンパク質が免疫グロブリンＥファミリーのメンバーである。別の好ましい実施形態では、標的タンパク質がＥＧＦレセプター・ファミリーのメンバーである。さらに別の好ましい実施形態では、標的タンパク質がＣＤ２０である。他の実施形態では、ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する。他の実施形態では、組換え触媒ポリペプチドが、ヒト抗体軽鎖と抗体重鎖とを含む単一のポリペプチド鎖である。好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。最も好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。

別の態様では、本発明は標的タンパク質を切断するための方法を規定する。該方法は、一般に、標的タンパク質を切断するのに好適な条件下で、その標的タンパク質を組換え触媒ポリペプチドと接触させる工程を含む。上記組換え触媒ポリペプチドは、実行可能に異種重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含む。抗体軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組とエンドペプチダーゼ活性とを有し、また重鎖は標的タンパク質に対する所定の活性を有する。

いくつかの実施形態では、標的タンパク質が成長因子、細胞表面レセプター、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群から選択される。別の実施形態では、ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する。別の実施形態では、組換え触媒ポリペプチドがヒト抗体軽鎖および抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である。好ましい実施形態では、上記ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。最も好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。

別の態様では、本発明は、標的タンパク質を切断する組換え触媒ポリペプチドの酵素活性を変える方法を規定する。この方法は、概して、抗体重鎖の少なくとも１つのＣＤＲを突然変異させる工程と、ポリペプチドの酵素活性が変化した突然変異体を決定する工程とを含む。組換え触媒ポリペプチドは、実行可能に異種重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含む。抗体軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組とエンドペプチダーゼ活性とを有し、また重鎖は標的タンパク質に対する所定の活性を有する。

いくつかの実施形態では、エクソヌクレアーゼが抗体重鎖のＣＤＲを突然変異させる工程で用いられる。他の実施形態では、標的タンパク質が成長因子、細胞表面レセプター、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群から選択される。他の実施形態では、ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する。他の実施形態では、上記組換え触媒ポリペプチドが、ヒト抗体軽鎖と抗体重鎖とを含む単一のポリペプチド鎖である。好ましい実施形態では、上記ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。最も好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。

別の態様では、本発明は標的タンパク質を切断するための複数の組換え触媒ポリペプチド・メンバーからなる複数のライブラリーを規定する。ライブラリーを構成するメンバーは、概ね組換え触媒ポリペプチドから構成され、異なるＣＤＲを各々の重鎖に有する。各組換え触媒ポリペプチドは、実行可能に異種重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含む。抗体の軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性を有し、さらにその重鎖は標的タンパク質に対する所定の活性を有する。

いくつかの実施形態では、標的タンパク質が成長因子、細胞表面レセプター、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群から選択される。他の実施形態では、ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する． 他の実施形態では、上記組換え触媒ポリペプチドが、ヒト抗体軽鎖と抗体重鎖とを含む単一のポリペプチド鎖である。好ましい実施形態では、上記ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。最も好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。いくつかの実施形態では、上記ライブラリーはファージ提示ライブラリーである。．他の実施形態では、上記ライブラリーはリボソーム提示ライブラリーである。

別の態様では、本発明は哺乳動物で標的タンパク質を切断するための方法を規定する。この方法は、概ね、哺乳動物の標的タンパク質濃度を低下させるのに十分な量で組換え触媒ポリペプチドを投与する工程を含む。この組換え触媒ポリペプチドは、実行可能に異種重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含む。この抗体軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性を有し、さらにその重鎖は標的タンパク質に対する所定の活性を有する。

いくつかの実施形態では、標的タンパク質が成長因子、細胞表面レセプター、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群から選択される。他の実施形態では、ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する． 他の実施形態では、上記組換え触媒ポリペプチドが、ヒト抗体軽鎖と抗体重鎖とを含む単一のポリペプチド鎖である。好ましい実施形態では、上記ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。最も好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。

別の態様では、本発明は標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を規定する。上記組換え触媒ポリペプチドの各々は、実行可能に異種重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含む。抗体軽鎖はセリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性を有し、その重鎖は標的タンパク質に対する所定の活性を有する。

いくつかの実施形態では、上記標的タンパク質が成長因子、細胞表面レセプター、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群から選択される。他の実施形態では、ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する。他の実施形態では、上記組換え触媒ポリペプチドが、ヒト抗体軽鎖と抗体重鎖とを含む単一のポリペプチド鎖である。好ましい実施形態では、上記ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。最も好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。

別の態様では、本発明は標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸の宿主である細胞を規定する。この組換え触媒ポリペプチドは、実行可能に異種重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含む。この抗体軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性、さらにその重鎖は標的タンパク質に対する所定の活性を有する。

いくつかの実施形態では、標的タンパク質が成長因子、細胞表面レセプター、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群から選択される。． 他の実施形態では、ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する． 他の実施形態では、上記組換え触媒ポリペプチドが、ヒト抗体軽鎖と抗体重鎖とを含む単一のポリペプチド鎖である。好ましい実施形態では、上記ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。より好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。最も好ましい実施形態では、ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。

別の態様では、本発明はセリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性とを有する単離ポリペプチドを規定する。ポリペプチドの各々は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。

いくつかの好ましい実施形態では、上記ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸と９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。他の好ましい実施形態では、ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。さらに別の好ましい実施形態では、ポリペプチドはセリンプロテアーゼ三つ組を有する。

別の態様では、本発明はセリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性を有するポリペプチドをコードする核酸を規定する。このポリペプチドの各々は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。

いくつかの好ましい実施形態では、上記ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８と９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む． 他の好ましい実施形態では、上記ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。他の好ましい実施形態では、核酸が配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７の核酸配列を含む。他の好ましい実施形態では、ポリペプチドはセリンプロテアーゼ三つ組を有する。

別の態様では、本発明はセリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性を有するポリペプチドをコードする核酸の宿主である細胞を規定する。該ポリペプチドの各々は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。

いくつかの好ましい実施形態では、上記ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８と９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。他の好ましい実施形態では、上記ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。他の好ましい実施形態では、他の好ましい実施形態では、核酸が配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７の核酸酸配列を含む。さらに別の好ましい実施形態では、ポリペプチドはセリンプロテアーゼ三つ組を有する。

別の態様では、本発明はトランスジェニック非ヒト哺乳動物を規定する。トランス遺伝子は、セリンプロテアーゼ二つ組およびエンドペプチダーゼ活性を有するポリペプチドをコードする核酸を含む。該ポリペプチドの各々は、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を有する。

好ましい実施形態では、上記ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８と９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む。他の好ましい実施形態では、上記ポリペプチドは配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む。他の好ましい実施形態では、核酸が配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７の核酸酸配列を含む。さらに別の好ましい実施形態では、ポリペプチドはセリンプロテアーゼ三つ組を有する。

（定義）
本発明の「組換え触媒ポリペプチド（ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｃａｔａｌｙｔｉｃ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ）」は、ペプチド結合の加水分解を触媒することができる抗体軽鎖と異種抗体重鎖とを含む。実行可能に結合したこれら２本の鎖によって、組換え触媒ポリペプチドが標的タンパク質を特異的に切断する（データは不図示）。

「単離した（ｉｓｏｌａｔｅｄ）」という用語は、核酸またはタンパク質に適用した場合、該核酸またはタンパク質が他の細胞構成要素（天然の状態では結合している）を本質的に含んでいないことを意味する。乾燥または水性溶液のいずれかの状態となりうるにもかかわらず、好ましくは均質な状態にある。純度および均質性は、典型的には、ポリアクリルアミドゲル電気泳動または高性能液体クロマトグラフィー等の分析化学技術を用いて、決定される。試料に存在する主な化学種であるタンパク質を実施的に生成する。特に、単離遺伝子を、その遺伝子をフランキングして目的とする遺伝子以外のタンパク質をコードするオープン・リーディング・フレームから分離する。「精製された（ｐｕｒｉｆｉｅｄ）」という用語は、核酸またはタンパク質が電気泳動ゲルで本質的に１本のバンドを生ずることを意味する。特に、核酸またはタンパク質が少なくとも８５％純粋、より好ましくは少なくとも９６％純粋、さらに最も好ましくは少なくとも９９％純粋であることを意味している。

「核酸（ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ）」または「ポリヌクレオチド（ｐｏｌｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）」という用語は、一本鎖または日本鎖の形態をしたデオキシリボ核酸（ＤＮＡ）またはリボ核酸（ＲＮＡ）ならびにそれらのポリマーを意味する。特に限定しない限り、その用語は、参照核酸と類似の結合特性を有し、かつ天然に生ずるヌクレオチドと同様にして代謝される既知の天然ヌクレオチド類似体を包含する。特に明記しない限り、特定の核酸配列もまた、それらの保存的修飾変異体（例えば、縮重コドン置換）、対立遺伝子、相同分子種、ＳＮＰ、および明確に示した配列と同様に相補配列も暗に包含する。具体的には、縮合コドン置換は、１つ以上の選択された（または全ての）コドンの３位が混合塩基および／またはデオキシイノシン残基で置換されている配列を生成することによって達成される（Ｂａｔｚｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ｒｅｓ． １９：５０８１ （１９９１）； Ｏｈｔｓｕｋａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６０：２６０５−２６０８ （１９８５）； およびＲｏｓｓｏｌｉｎｉ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌ． Ｃｅｌｌ． Ｐｒｏｂｅｓ ８：９１−９８ （１９９４））。核酸という用語は、遺伝子、ｃＤＮＡ、および遺伝子によってコードされたｍＲＮＡと同義で用いられる。

「遺伝子（ｇｅｎｅ）」という用語は、ポリペプチド鎖の産生に関与するＤＮＡ部分を意味するもので、コード領域（リーダーおよびトレーラー）に先行する領域およびそれに続く領域ならびに個々のコード部分（エクソン）間の介在配列（イントロン）が含まれる。

「ポリペプチド（ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ）」および「ペプチド（ｐｅｐｔｉｄｅ）」という用語は、本明細書では同義であり、複数のアミノ酸残基からなるポリマーを意味する。一方、「タンパク質（ｐｒｏｔｅｉｎ）」は１本または複数のポリペプチド鎖を含むことができる。これら３つの用語すべてが、一種類以上のアミノ酸残基が対応天然アミノ酸の人工的な化学的模倣体であるアミノ酸ポリマー、同様に天然アミノ酸ポリマー、ならびに非天然アミノ酸ポリマーに適用される。本明細書で用いられるように、上記用語は任意の長さのアミノ酸鎖を包含するもので、完全長タンパク質を含み、アミノ酸残基がペプチド共有結合によって連結されている。

「アミノ酸（ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ）」という用語は、天然および合成アミノ酸、同様に天然アミノ酸と同様の方法で機能するアミノ酸類似体およびアミノ酸模倣体のことを意味する。天然アミノ酸は、遺伝暗号によってコードされたものであり、同様に後で修飾されたアミノ酸である（例えば、ヒドロキシプロリン、γ−カルボキシグルタメート、およびＯ−ホスホセリン）。アミノ酸類似体は、天然アミノ酸と同一の基本的化学構造、すなわち水素、カルボキシル基、アミノ基、およびＲ基（例えば、ホモセリン、ノルロイシン、メチオニン・スルホキシド、メチオニン・メチル・スルホニウム）に結合するα炭素を持つ化合物のことを意味する。そのような類似体は、修飾Ｒ基（例えば、ノルロイシン）または修飾ペプチド主鎖を有する一方で、天然アミノ酸と同一の基本的化学構造を保持する。「アミノ酸模倣体（ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ ｍｉｍｅｔｉｃｓ）」とは、アミノ酸の一般的化学構造とは異なる構造を持つが、天然アミノ酸と同様の方法で機能する化合物のことを意味する。

アミノ酸は、一般に知られている３文字またはＩＵＰＡＣ−ＩＵＢ生化学命名委員会（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｎｏｍｅｎｃｌａｔｕｒｅ Ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎ）が推奨する１文字のいずれかによって、本明細書中で表される場合もある。同様に、ヌクレオチドを一般に許容された１文字コードで表してもよい。

「保存的修飾変異体（ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｖｅｌｙ ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｖａｒｉａｎｔｓ）」は、アミノ酸配列と核酸配列との両方に適用される。特定の核酸配列に対して、「保存的修飾変異体（ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｖｅｌｙ ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｖａｒｉａｎｔｓ）」は、同一または本質的に同一のアミノ酸配列をコードする核酸配列のことを意味し、あるいは核酸がアミノ酸配列をコードしない場合、本質的に同一の配列のことを意味する。遺伝暗号が縮退することから、数多くの機能的に同一の核酸が何らかのタンパク質をコードする。例えば、コドンＧＣＡ、ＧＣＣ、ＧＣＧ，およびＧＣＵすべては、アミノ酸のアラニンをコードする。したがって、アラニンがコドンによって特定される位置毎に、コードされたポリペプチドを変えることなく記述された対応コドンのいずれかに変えることができる。そのような核酸の変異は、「サイレント変異（ｓｉｌｅｎｔ ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ）」であり、保存的に修飾された変異の一種である。ポリペプチドをコードする本明細書中のあらゆる核酸配列もまた、あらゆる予測される核酸のサイレント変異体を記述する。当業者は、核酸の各々のコドン（通常はメチオニンの唯一のコドンであるＡＵＧと、通常はトリプトファンの唯一のコドンであるＴＧＧを除く）を修飾して機能的に同一の分子を産生することができる。したがって、ポリペプチドをコードする各サイレント変異体は、各々の記述された配列に内在する。

アミノ酸配列に関しては、核酸、ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質配列に対する個々の置換、欠失、または付加（単一のアミノ酸またはコードされた配列内の僅かな割合のアミノ酸を変更、追加、または欠失させる）は、変更によって化学的に類似のアミノ酸によるアミノ酸の置換がもたらされる「保存的に修飾された変異体（ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｖｅｌｙ ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｖａｒｉａｎｔ）」である。機能的に類似したアミノ酸を提供する保存的置換テーブルは、当技術分野において周知である。保存的改良変異体は、本発明の多形性変異体、種間相同体、および対立遺伝子のほかに存在し、かつそれらを除外していない。

以下の８つの群は、互いに保存的に置換されているアミノ酸を各々が含む。

（１）アラニン（Ａ），グリシン（Ｇ），
（２）アスパラギン酸（Ｄ）、グルタミン酸（Ｅ）、
（３）アスパラギン（Ｎ）、グルタミン（Ｄ）
（４）アルギニン（Ｒ）、リジン（Ｋ）、
（５）イソロイシン（Ｉ）、ロイシン（Ｌ）、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）、
（６）フェニルアラニン（Ｆ）、チロシン（Ｙ）、トリプトファン（Ｗ）、
（７）セリン（Ｓ）、スレオニン（Ｔ）、および
（８）システイン（Ｃ）、メチオニン（Ｍ）
（例えば、Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ， Ｐｒｏｔｅｉｎｓ （１９８４）を参照せよ）。

「配列同一性の割合（ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ ｏｆ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｉｄｅｎｔｉｔｙ）」は、比較ウィンドウ上で最適にアラインメントされた２本の配列を比較することによって、決定されるもので、その比較ウィンドウ内のポリヌクレオチド配列の一部は、２本の配列の最適アラインメントに対する参照配列（付加または欠失を含まない）と比較すると、付加または欠失（すなわちギャップ）を含むものであってもよい。割合は、同一の核酸塩基またはアミノ酸残基が両方の配列に生ずる位置の数を測定することによって、一致した位置の数を生成し、一致した位置の数を比較ウィンドウ内の全位置数によって割り、その結果を１００で掛けて配列同一性を割合を生成することによって、計算される。

「同一（ｉｄｅｎｔｉｃａｌ）」または％「同一性（ｉｄｅｎｔｉｔｙ）」という用語は、２つ以上の核酸またはポリペプチド配列の文脈の中では、比較ウィンドウまたは設計された領域上で最大一致させるために、以下の配列比較アルゴリズムの１つを用いて、またはお手製のアラインメントおよび目視検査によって、比較およびアラインメントさせた場合、同一である２種類以上の配列もしくは準配列または同一であるアミノ酸残基またはヌクレオチドの特定の割合を有する２種類以上の配列もしくは準配列を意味する（すなわち、特定の領域に対して６０％同一性、任意に６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、またはそれ以上の同一性）。したがって、そのような配列は、「実質的に同一（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌｌｙ ｉｄｅｎｔｉｃａｌ）」と言われる。この定義は試験配列を補うものも意味する。任意に、同一性は長さが少なくとも約５０ヌクレオチドにわたって、より好ましくは長さが１００ないし５００または１，０００以上のヌクレオチドにわたって存在する。

配列を比較するために、概ね１つの配列が参照配列として振る舞い、それに対して試験配列が比較される。配列比較アルゴリズムを用いる場合、試験配列および参照配列をコンピュータに入力し、準配列座標を設計し、必要に応じて、さらに配列アルゴリズム・プログラムのパラメーターを設計する。デフォルト・プログラム・パラメーターを用いることができ、あるいはそれに取って代わるパラメーターを設計することができる。つぎに、配列比較アルゴリズムは、プログラム・パラメーターにもとづいて、参照配列に関係する試験配列のためのパーセント配列同一性を計算する。

「比較ウィンドウ（ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｗｉｎｄｏｗ）」は、本明細書で用いられるように、２０ないし６００、通常は約５０ないし約２００、より一般的には約１００ないし約１５０からなる群から選択される連続する位置の数のいずれか１つのセグメントに対する参照が含まれ、２本の配列を最適にアラインメントした後に連続する位置と同一数の参照配列と配列を比較してもよい。比較のために配列をアラインメントする方法は、当技術分野において周知である。比較のための配列の最適アラインメントを、例えばＳｍｉｔｈ ａｎｄ Ｗａｔｅｒｍａｎ， Ａｄｖ． Ａｐｐｌ． Ｍａｔｈ． ２：４８２ （１９７０）の局所相同性アルゴリズムによって、Ｎｅｅｄｌｅｍａｎ ａｎｄ Ｗｕｎｓｃｈ， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． ４８： ４４３−４５３ （１９７０）の相同性アラインメント・アルゴリズムによって、Ｐｅａｒｓｏｎ ａｎｄ Ｌｉｐｍａｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔ’ｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８５： ２４４４ （１９８８）の類似性検索法によって、それらのアルゴリズムのコンピュータ化インプリメンテーション（Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｓｏｆｔｗａｒｅ Ｐａｃｋｇｅ， Ｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｍｐｕｔｅｒ Ｇｒｏｕｐ． ５７５ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｄｒ．， Ｍａｄｉｓｏｎ， ＷＩのＧＡＰ、ＢＥＳＴＦＩＴ、ＦＡＳＴＡ、およびＴＦＡＳＴＡ、）によって、または手動アラインメントおよび目視検査（例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ （１９９５ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ）を参照せよ）によって、実施することができる。

パーセント配列同一性および配列類似性を決定するのに最適なアルゴリズムの一例は、ＢＬＡＳＴおよびＢＬＡＳＴ２．０アルゴリズムであり、これらはＡｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ． Ｎｕｃ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２５：３３８９−３４０２ （１９７７）および Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ． Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． ２１５：４０３−４１０ （１９９０）にそれぞれ記載されている。ＢＬＡＳＴ分析を実施するためのソフトウェアは、国立生物工学情報センター（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）を通して公的に入手する。このアルゴリズムは、第一に、照会配列で長さＷの短いワードを同定することによって、データベース配列内で同一の長さのワードとアラインメントした時、いくつかの正値閾値スコアＴと一致または満足させる高スコアリング配列対（ＨＳＰ）を同定することを伴う。Ｔは、隣接ワードスコア閾値として言及されている（Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．， 上掲）。これらの最初の近接ワードのヒットがシードとして作用するもので、該シードはそれを含有するより長いＨＳＰを見つけるための検索を開始させる。累積的な配列スコアが増加する限り、ワードのヒットは各々の配列に沿って両方の方向に延びていく。累積スコアは、ヌクレオチド配列に関して、パラメーターＭ（一対の一致残基のスコア；常時＞０）およびＮ（ミスマッチ残基のペナルティ・スコア；常時＜０）。アミノ酸配列に関して、スコアリング・マトリックスを用いて累積スコアの計算をおこなう。各方向のワードのヒットの拡大中止は、累積アラインメント・スコアがその最大達成値からの量Ｘで、落ちる場合、累積スコアがゼロ以下となること。１つ以上のネガティブ・スコアリング残基アラインメント、またはいずれかの配列の終わりに到達する場合に、起こる。ＢＬＡＳＴアルゴリズム・パラメーターＷ、Ｔ、およびＸは、アライメントの感度および速度を決定する。ＢＬＡＳＴＮプログラム（ヌクレオチド配列用）は、デフォルトとして、ワード長（Ｗ）１１、期待値（Ｅ）または１０、Ｍ＝５、Ｎ＝４、および両鎖の比較を用いる。アミノ酸配列について、ＢＬＡＳＴＰプログラムを用い、デフォルトとしてワード長３、および期待値（Ｅ）１０、さらにＢＬＯＳＵＭ６２ではスコアリング・マトリックス（Ｈｅｎｉｋｏｆｆ ａｎｄ Ｈｅｎｉｋｏｆｆ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８９：１０９１５ （１９８９）を参照せよ）アラインメント（Ｂ）５０、期待値（Ｅ）１０、Ｍ＝５、Ｎ＝４、および両方の鎖の比較を用いる。

ＢＬＡＳＴアルゴリズムは、２つの配列間の類似性を統計学的に分析することもおこなう（例えば、Ｋａｒｌｉｎ ａｎｄ Ａｌｔｓｃｈｕｌ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９０：５８７３−５７８７ （１９９３）を参照せよ）。ＢＬＡＳＴアルゴリズムによって提供される類似性の１つの基準は、最小総確率（Ｐ（Ｎ））であり、これは２つのヌクレオチドまたはアミノ酸配列間の一致が偶然に起こる確率の指標である。例えば、核酸は、参照核酸に対して試験核酸を比較した場合の最小総確率が約０．２未満、より好ましくは約０．０１未満、最も好ましくは約０．００１未満であるならば、参照配列に対して核酸が類似している考えられる。

２つの核酸配列またはポリペプチドが実質的に同一であることの１つの指標は、第１の核酸によってコードされるポリペプチドが、以下に説明するように、第２の核酸によってコードされるポリペプチドに対して生じた抗体と免疫学的交叉反応することである。したがって、ポリペプチドは典型的には第２のポリペプチドと実施的に同一であり、例えば２つのペプチドの違いは保存的置換のみである。２つの核酸配列が実質的に同一であることを示す別の指標は、以下に説明するように、２つの分子またはそれらの相補体がストリンジェントな条件下でハイブリダイズすることである。２つの核酸配列が実質的に同一であることのさらに別の指標は、配列の増幅に同一のプライマーを用いることができるということである。

本明細書で用いられる「切断（ｃｌｅａｖｉｎｇ）」という用語は、ポリペプチドまたはタンパク質のアミノ酸鎖内の少なくとも１つのペプチド結合を加水分解することを意味する。

「標的タンパク質（ｔａｒｇｅｔ ｐｒｏｔｅｉｎ）」という用語は、組換え触媒ポリペプチドによって特異的に結合および加水分解されるポリペプチドまたはタンパク質をいう。また、以下の「特異性（ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ）」の定義も参照せよ。

「抗体（ａｎｔｉｂｏｄｙ）」は、非共有的に、可逆的に、かつ特異的なかたちで対応の抗体に結合することができる免疫グロブリン・ファミリーのタンパク質または免疫グロブリンのフラグメントから構成されるポリペプチドを意味する。典型的な抗体の構造単位は、テトラマーから構成される。各テトラマーは、同一のポリペプチド鎖対２つから構成され、各々の対は１つの「軽（ｌｉｇｈｔ）」鎖（約２５ｋＤ）および１つの「重（ｈｅａｖｙ）」鎖（約５０〜７０ｋＤ）を有し、これらの鎖はジスルフィド結合を介して結合している。認知された免疫グロブリン遺伝子として、κ、λ、α、γ、σ、ε、およびμ定常領域遺伝子が挙げられ、同様に無数の免疫グロブリン可変領域遺伝子も挙げられる。軽鎖は、κまたはλのいずれかとして分類される。重鎖は、γ、μ、α、σ、またはεのいずれかとして分類され、言い換えればそれぞれが免疫グロブリン・クラスＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥを定める。各鎖のＮ末端は、主に抗体認識に関与する約１００ないし１１０以上のアミノ酸からなる可変領域を定める。可変軽鎖（Ｖ_Ｌ）および可変重鎖（Ｖ_Ｈ）という用語は、それぞれ軽鎖および重鎖のそれらの領域を意味する。

「相補性決定ドメイン（Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ−ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｄｏｍａｉｎ）」または「ＣＤＲ）」は、Ｖ_ＬおよびＶ_Ｈにある超可変領域を意味する。ＣＤＲは、抗体鎖の標的タンパク質結合部位であり、該標的タンパク質結合部位は標的タンパク質に対する特異性を持っている。可変部の約１５〜２０％を構成する各々のヒトＶ_ＬまたはＶ_Ｈに、３つのＣＤＲ（Ｎ末端側から順番に番号付けされたＣＤＲ１〜３）が存在する。ＣＤＲは、標的タンパク質のエピトープに対して構造的相補性を持つことから、結合特異性に直接関与する。Ｖ_ＬまたはＶ_Ｈの残りの延びた部分は、いわゆるフレームワーク領域は、アミノ酸配列内の変異が少ない（Ｋｕｂｙ， Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ， ４ｔｈ ｅｄ．， Ｃｈａｐｔｅｒ ４． Ｗ．Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ ＆ Ｃｏ．， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， ２０００）。さらに、本発明の文脈では、Ｖ_ＨまたはＶ_Ｌの第１のアミノ酸は、構造的に抗原結合部位のなかにあることから、ＣＤＲであると考えられる。このＣＤＲの定義には、Ｖ_ＨまたはＶ_ＬのＮ末端に対するいっさいのアミノ酸付加が含まれる。

ＣＤＲおよびフレームワーク領域の位置は、当技術分野で周知の種々の定義（Ｋａｂａｔ， Ｃｈｏｔｈｉａ， ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ ＩｍＭｕｎｏＧｅｎｅＴｉｃｓ ｄａｔａｂａｓｅ （ＩＭＧＴ）、およびＡｂＭを用いて、決定することができる（例えば、Ｊｏｈｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， ２９：２０５−２０６ （２００１）； Ｃｈｏｔｈｉａ ａｎｄ Ｌｅｓｋ， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， １９６：９０１−９１７ （１９８７）； Ｃｈｏｔｈｉａ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ， ３４２：８７７−８８３ （１９８９）； Ｃｈｏｔｈｉａ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， ２２７：７９９−８１７ （１９９２）； Ａｌ−Ｌａｚｉｋａｎｉ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， ２７３：９２７−７４８ （１９９７））。抗体結合部位は以下のものにも記載されている。すなわち、Ｒｕｉｚ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ Ｒｅｓ．， ２８：２１９−２２１ （２０００）； およびＬｅｆｒａｎｃ， Ｍ．Ｐ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ Ｒｅｓ．， ２９：２０７−２０９ （２００１）； ＭａｃＣａｌｌｕｍ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ．， ２６２：７３２−７４５（１９９６）、および Ｍａｒｔｉｎ ｅｔ ａｌ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８６：９２６８−９２７２ （１９８９）； Ｍａｒｔｉｎ ｅｔ ａｌ．， Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．， ２０３：１２１−１５３ （１９９１）； およびＲｅｅｓ ｅｔ ａｌ．， Ｉｎ Ｓｔｅｒｎｂｅｒｇ Ｍ．Ｊ．Ｅ． （ｅｄ．）， Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ Ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎ， Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｏｘｆｏｒｄ， １４１−１７２ （１９９６）。

本明細書で用いられるように、「抗体軽鎖（ａｎｔｉｂｏｄｙ ｌｉｇｈｔ ｃｈａｉｎ）」または「抗体重鎖（ａｎｔｉｂｏｄｙ ｈｅａｖｙ ｃｈａｉｎ）」は、それぞれＶ_ＬまたはＶ_Ｈを含むポリペプチドを意味する。 Ｖ_Ｌは、遺伝子セグメントＶ（可変的）およびＪ（機能的）によってコードされ、Ｖ_ＨはＶ、Ｄ（多様性）、およびＪによってコードされる。Ｖ_ＬまたはＶ_Ｈの各々は、ＣＤＲとフレームワーク領域とを含む。この出願では、抗体軽鎖および／または抗体重鎖は、時々、集合的に「抗体鎖」を意味する場合がある。これらの用語は、当業者が容易に認識するように、Ｖ_ＬまたはＶ_Ｈの基本構造を妨げることのない突然変異体を含む抗体鎖を包含する。

抗体は、完全な免疫グロブリンとして、または種々のペプチダーゼによる消化によって作られ、かつ十分に特徴づけられた多数のフラグメントとして、存在する。したがって、例えば、ペプシンはヒンジ領域にあるジスルフィド結合の下で抗体を消化し、Ｆ（_ａｂ）′_２（それ自身がジスフィルド結合によってＶ_Ｈ−Ｃ_Ｈ１に結合している軽鎖であるＦ_ａｂ′の二量体）を生ずる。Ｆ（_ａｂ）′_２を穏やかな条件下で還元することで、ヒンジ領域にあるジスフィルド結合が切断され、Ｆ（_ａｂ）′_２二量体がＦ_ａｂ′単量体に変換される。Ｆ_ａｂ′単量体は、本質的にヒンジ領域の一部を持つＦ_ａｂである。Ｐａｕｌ， Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ３ｄ ｅｄ． （１９９３）。種々の抗体フラグメントは、完全抗体を消化するという観点から定義されており、当業者はそのようなフラグメントが化学的または組換えＤＮＡ方法論を用いることで、新たに（ｄｅ ｎｏｖｏ）合成される。したがって、本明細書で用いられるように、抗体という用語は、抗体全体の修飾によって作られた抗体フラグメント、または組換えＤＮＡ方法論（例えば、単一鎖Ｆｖ）を用いて新たに（ｄｅ ｎｏｖｏ）合成された抗体フラグメント、またはファージ提示ライブラリーを用いて同定された骨愛フラグメントも含む（例えば、ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ， ３４８：５５２−５５４ （１９９０）を参照せよ）。

モノクローナルまたはポリクローナル抗体を調製するために、当技術分野で公知の任意の技術を用いることができる（例えば、Ｋｏｈｌｅｒ ＆ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ， Ｎａｔｕｒｅ， ２５６：４９５−４９７ （１９７５）； Ｋｏｚｂｏｒ ｅｔ ａｌ．， Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｔｏｄａｙ， ４：７２ （１９８３）； Ｃｏｌｅ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ ７７ｔｅｒａｐｙ， ｐｐ． ７７−９６． Ａｌａｎ Ｒ． Ｌｉｓｓ， Ｉｎｃ． （１９８５）を参照せよ）。単一鎖抗体を製造するための技術（米国特許第４，９４６，７７８号）を、この発明のポリペプチドに対する抗体の生産に適用することができる。また、トランスジェニック・マウスまたは他の生物（例えば、他の哺乳動物）を用いて、ヒト化抗体を発現させることも可能である。あるいは、ファージ提示技術を用いて抗体およびヘテロメリックＦ_ａｂフラグメント、または選択された抗原に対して特異的に結合するｓｃＦｖフラグメントを同定することも可能である（例えば、ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙ ｅｔ ａｌ． 上掲； Ｍａｒｋｓ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， １０：７７９−７８３， （１９９２）を参照せよ）。

「異種（ｈｅｔｅｒｏｌｏｇｏｕｓ）」という用語は、組換え触媒ポリペプチドの２つの抗体鎖を記述する文脈の中で用いられるように、「抗体軽鎖」と「抗体重鎖」とのあいだの相互関係（それらの発生源に関して）を意味する。互いに「異種」である「抗体軽鎖」と「抗体重鎖」とでは、抗体軽鎖および重鎖の厳密な組み合わせが、ゲノムが遺伝的修飾を含まない哺乳動物によって産生される抗体では見いだすことができないものであるにちがいない。

「エンドペプチダーゼ活性（ｅｎｄｏｐｅｐｔｉｄｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ）」という用語は、本明細書で用いられるように、任意の長さのポリペプチドに含まれる２つのアミノ酸残基間の非末端ペプチド結合の少なくとも１つの加水分解を触媒する酵素の能力を意味する。

標的タンパク質に対する「特異性（ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ）」は、指定された条件下での標的タンパク質と抗体重鎖とのあいだの結合が固有の相当な程度にあるように、構造的な違いに基づいて、その標的タンパク質と任意の他のポリペプチドとを区別する組換え触媒ポリペプチドの抗体重鎖の能力を意味する。例えば、抗体と標的タンパク質との結合は、結合アッセイにおいてバックグラウンドよりも少なくとも２倍高いシグナルが検出される場合、特異的であるとみなされる。標的タンパク質に対する「所定の特異性（ｐｒｅｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ）」は、事前に選択された標的タンパク質に対する既知の抗体の重鎖を単離することによって、またはその特定の標的タンパク質に対して特異的に結合するための生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）発生抗体産物のレパートリーをスクリーニングすることによって、達成される。これらの重鎖をさらに修飾して、特異性を高めることも可能である。

ファミリーの個々のメンバー間の一次アミノ酸配列における多様性にかかわらず、セリンプロテアーゼ活性、高度に保存されあた三次構造によって支持され、該三次構造はセリン−ヒスチジン−アスパラギン酸トリアドから構成される。研究によって、アスパラギン酸残基は必ずしも触媒活性に必須であるわけではないことが示されている。本明細書で用いられるように、「セリンプロテアーゼ二つ組（ｓｅｒｉｎｅ ｐｒｏｔｅａｓｅ ｄｙａｄ）」は、組換え触媒ポリペプチドのタンパク質分解活性の少なくとも一部を保つ該組換え触媒ポリペプチドの触媒部位の最小構造である。この構造は、抗体軽鎖の任意のＣＤＲに位置したヒスチジン残基とセリン残基とを含む。これらの残基はセリンプロテアーゼ三つ組でのそれらの空間的アラインメントに類似して、互いに空間的な関係にある。そのため、ヒスチジンがセリン・ヒドロキシル基からプロトンを取り出すことができるようになっており、それによってセリンが求核試薬として作用し、かつタンパク質基質内のアミド結合のカルボニル基を攻撃することが可能となる。

本明細書で用いられるように、組換え触媒ポリペプチドの「酵素活性（ｅｎｚｙａｍａｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｙ）」は、ポリペプチドの特徴の２つの別々の態様を意味するもので、該態様の第一は、指定された条件下で特異性を持って標的タンパク質に結合するポリペプチドの能力であり、第二は、標的タンパク質内で少なくとも１つの非末端ペプチド結合を加水分解するポリペプチドの能力である。

２つの異種ヒト抗体鎖が互いに機能的な相互関係に置かれている場合、２つの異種ヒト抗体鎖は「実行可能に結合（ｏｐｅｒａｂｌｙ ｊｏｉｎｅｄ）」しており、これらの結合様式が、各々の鎖が特異性を持って標的タンパク質に適当に結合し、かつ標的タンパク質の加水分解を触媒する際に適当に機能するようになっている。実行可能に２つの抗体鎖を結合させる方法として、限定されるものではないが、リンカー・ペプチドによる組換え融合、共有結合、ジスフィルド結合、イオン結合、水素結合、および静電結合が挙げられる。

組換え触媒ポリペプチドの酵素活性を変える文脈で用いられるように、「突然変異する（ｍｕｔａｔｉｎｇ）」または「突然変異（ｍｕｔａｔｉｏｎ）」は、組換え型触媒ポリオペプチドをコードする核酸内で、結果として生ずるポリペプチドのアミノ酸配列が一種類以上のアミノ酸残基で変えられるようにした化学的、酵素的、または任意の他の手段による任意のヌクレオチドの欠失、挿入、または置換を意味する。

組換え触媒ポリペプチド・メンバーの「ライブラリー（ｌｉｂｒａｒｙ）」は、ポリペプチド内の非末端ペプチド結合の加水分解を触媒することができる組換え型ポリペプチドのレパートリーを意味する。組換え型ポリペプチド・ライブラリーは、異なる基質特異性を有するメンバーから構成され、該メンバーの抗体重鎖のＣＤＲによって決定される。

「組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸配列（ａ ｎｕｌｃｅｉｃ ａｃｉｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｅｎｃｏｄｉｎｇ ａ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ｃａｔａｌｙｔｉｃ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ）」というフレーズは、組換え型触媒ポリオペプチドのアミノ酸配列に関する配列情報を含む核酸を意味する。このフレーズは、特異的な宿主細胞でのコドン選択（ｃｏｄｏｎ ｐｒｅｆｅｒａｎｃｅ）に一致させるために導入可能である天然の一配列または複数の配列の縮重コドン（すなわち、単一のアミノ酸をコードする複数の異なるコドン）を包含する。このフレーズで用いられるように、「核酸（ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ）は、デオキシリボヌクレオチドまたはリボヌクレオチドと、単鎖または二重鎖の形態をそれらのポリマーとを意味する。この用語は、既知のヌクレオチド類似体または修飾主鎖残基またはリンケージを含み、参照核酸と類似の結合特性を有し、また参照ヌクレオチドと類似の方法で代謝される。そのような類似体の例として、限定されるものではないが、ホスホロチオネート、ホスホルアミダイト、メチルホスホネート、キラル・メチルホスホネート、２−Ｏ−メチル・リボヌクレオチド、ペプチド−核酸（ＰＮＡ）が挙げられる。

本明細書で用いられるように、「成長因子（ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）」という用語は、指定された条件下で、任意の特定の細胞種の増殖を誘導することができる任意のペプチドを意味する。この用語は、野生型遺伝子および突然変異を持つ遺伝子によってコードされる全てのポリペプチドを包含する。

「サイトカイン（ｃｙｔｏｋｉｎｅ）」は、種々の細胞によって産生される小さな生物活性ポリペプチドを意味する。これらのポリペプチドは、複数の潜在的標的と複数の潜在的機能（例えば、シグナル細胞増殖、分化、またはアポトーシスに対して）とを有する細胞内媒介物質として徐々に作用する。サイトカインの例として、リンホカイン、インターロイキン、およびインターフェロンが挙げられる。本明細書で用いられるように、「サイトカイン（ｃｙｔｏｋｉｎｅ）」は、野生型遺伝子および突然変異を持つ遺伝子によってコードされる全てのポリペプチドを包含する。

本明細書で用いられるように、「ＥＧＦＲファミリー（ＥＧＦＲ ｆａｍｉｌｙ）」は、上皮成長因子受容体ファミリーの４メンバー、すなわちＥＧＦＲ、ＨＥＲ２／ｎｅｕ、ＥｒｂＢ−３、およびＥｒｂＢ−４を意味する。この用語は、野生型遺伝子および突然変異を持つ遺伝子によってコードされる全てのポリペプチドを包含する。

（発明の詳細な説明）
（Ｉ．序論）
多くのタンパク質は、種々のヒト疾患および状態の原因および進行において重要な役割を果たすものと同定されている。例えば血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）が固形腫瘍増殖の必要条件である血管形成を促進させることが臨床および実験的な研究で示されている（例えば、Ｐｌａｔｅ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ， ３５９：８４５−８４８ （１９９２）； Ｓｍｉｔｈ， Ｈｕｍ Ｒｅｐｒｏｄ． Ｕｐｄａｔｅ； ４：５０９−５１９ （１９９８）を参照せよ）。別の例は、上皮成長因子受容体ファミリーの４メンバー、すなわちＥＧＦＲ、ＨＥＲ２／ｎｅｕ、ＥｒｂＢ−３、およびｒｂＢ−４であり、それらが細胞の増殖、分化、および生存に関係している。特に、ＥＧＦＲおよびＨＥＲ２／ｎｅｕの過剰発現は、それぞれ、例えば肺癌および乳癌で、しばしば見つけられる（例えば、Ｆｒａｎｋｌｉｎ ｅｔ ａｌ．， Ｓｅｍｉｎ． Ｏｎｃｏｔ， ２９：３−１４ （２００２）を参照せよ）。第３の例はＩｇＥであり、その過剰生産は喘息等、多数の免疫疾患に長い間、結びつけて考えられていた（例えば、Ｒｏｍａｇｎａｎｉ， Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｔｏｄａｙ， １１：３１６−３２１ （１９９０））。これらのタンパク質のレベルの減少がこれらの疾患および状態を処置するために決定的であると思われるにもかかわらず、これらのタンパク質を特異的に加水分解することができる既知のプロテアーゼが存在しないことから、天然のプロテアーゼを処置の手段として使うことができない。これらのタンパク質を標的としている数多くの治療的アプローチが、例えばそれらの発現を抑制する阻害剤またはアンチセンス・ヌクレオチド配列を用いて、あるいはそれらの機能を打ち消す抗体を用いて、開発されてきた（例えば、米国特許第５，７６０，０４１号、第 ６，１５０，０９２号、および第６，４１６，７５８号、Ｂａｂｕ ａｎｄ Ｈｏｌｇａｔｅ， Ｉｎｄｉａｎ Ｊ． Ｃｈｅｓｔ Ｄｉｓ． Ａｌｌｉｅｄ Ｓｃｉ．， ４４：１０７−１１５ （２００２））。しかし、これらの一般的方法が治療に用いられる場合に変化する効果の度合い（標的タンパク質に対するこれらの治療薬の特異性のレベルが不十分であることに、ある程度基づいている現象）を観察することは珍しくない。

本発明は、この問題に対する革新的な解決を提供するもので、以前はヒト免疫系だけに関連したメカニズムを利用し、それは実質的にいかなる抗原に対しても高レベルの特異性を生成することができる。２つの異種ヒト抗体鎖（そのうちの一方が、ポリペプチドを加水分解するために触媒活性を提供し、他方が標的タンパク質に対する結合特異性を提供する）を実行可能に結合することで、本発明は、潜在的に無制限の数のカスタマイズされたタンパク質基質特異性を持つプロテアーゼのレパートリーの構造を教示することで、同定されたタンパク質の存在または過剰発現に起因するいっさいの症状の有効な処置および／または予防が可能となる。

（ＩＩ．組換え触媒ポリペプチドの抗体鎖の構造）
（Ａ．得られる核酸配列）
（（１）概要）
この発明は、組換え体遺伝学の分野でのルーチン手技に依存する。この発明で使用される一般的方法を開示している基本教科書として、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ， Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ３ｄ ｅｄ． （２００１）； Ｋｒｉｅｇｌｅｒ， Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ ａｎｄ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （１９９０）； およびＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ （１９９４）が挙げられる。

核酸に関しては、大きさはキロ塩基（Ｋｂ）または塩基対（ｂｐ）のいずれかであたえられる。これらは、アガロースまたはポリアクリルアミドゲル電気泳動法から、配列された核酸から、または公表されたＤＮＡ配列から由来する推定値である。タンパク質に関して、サイズはキロ・ダルトン（ｋＤ）またはアミノ酸残基番号で与えられる。タンパク質サイズは、ゲル電気泳動から、配列決定されたタンパク質から、派生アミノ酸配列から、または公表されたタンパク質配列から推定される。

市販されていないオリゴヌクレオチドを、Ｂｅａｕｃａｇｅ ａｎｄ Ｃａｒｕｔｈｅｒｓ， Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ， ２２：１８５９−１８６２ （１９８１）が最初に記載した固相ホスホラミダイト・トリエステル法にもとづいて、Ｖａｎ Ｄｅｖａｎｔｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ Ｒｅｓ．， １２：６１５９−６１６８ （１９８４）に記載されるように自動合成装置を用いて、化学合成することができる。オリゴヌクレオチドの精製を、Ｐｅａｒｓｏｎ ＆ Ｒｅａｎｉｅｒ， Ｊ． Ｃｈｒｏｍ．， ２５５：１３７−１４９ （１９８３）に記載されるように、天然ポリアクリルアミドゲル電気泳動またはアニオン交換クロマトグラフィのいずれかによって、おこなう。クローン化遺伝子および合成オリゴヌクレオチドの配列は、例えばＷａｌｌａｃｅ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ， １６：２１−２６ （１９８１）の二重鎖テンプレートを用いてクローニングした後に、確認することができる。

（（２）タンパク質分解活性を持つ抗体軽鎖をコードするヌクレオチド配列）
一般に、ヒト起源のタンパク質分解活性を持つ抗体軽鎖のＶ領域をコードする核酸配列（配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または ２７）は、別の種から既にクローニングされているタンパク質分解抗体軽鎖Ｖをコードする核酸に対する予想配列相同性に基づいて、得られる。ヒトκおよびλ軽鎖の定常領域をコードする遺伝子が知られており、引き続いて所望のタンパク質分解活性を有するＶＬをコードする遺伝子（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または ２７）に融合して、完全長の抗体軽鎖のコード配列を生成する。

ヒトゲノムの研究における急速な進歩は、既知のヌクレオチド配列（例えばネズミのタンパク分解抗体軽鎖をコードしているもの）に対して特定の割合の配列相同性を持つ任意の遺伝子セグメントについてヒトＤＮＡ配列データベースを検索することができるクローニング・アプローチを可能とした。そのように同定される任意のＤＮＡ配列は、その後、実質的に化学合成および／またはポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）（例えばオーバーラップ・エクステンション法）によって、得られる。短い配列については、完全に新しく（ｄｅ ｎｏｖｏ）合成することで十分であると思われるが、合成プローブを用いてヒトｃＤＮＡまたはゲノム・ライブラリーから完全長コード配列をさらに単離することは、より大きな遺伝子を得るために必要であると思われる。そのような目的に最も一般的に用いられる技術が、例えばＳａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ（上掲）およびＷｈｉｔｅ ｅｔ ａｌ．（上掲）に記載されている。

あるいは、タンパク質分解活性を持つ抗体軽鎖Ｖ領域をコードする核酸配列（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）を標準的クローニング技術（例えばＰＣＲ）を用いてヒトｃＤＮＡまたはゲノムｃＤＮＡライブラリーから単離することができる。プライマーを、別の種のタンパク質分解活性を持つ抗体軽鎖Ｖ領域（例えば、ネズミのタンパク質分解軽鎖Ｖ領域配列）をコードする既知の核酸配列由来のものとすることができる。

タンパク質分解抗体軽鎖Ｖ領域のコード配列を得るために適当なヒトｃＤＮＡライブラリーを、商業的に入手可能であり、あるいは構築することができる。タンパク質分解抗体が、しばしば種々の自己免疫疾患で苦しんでいる患者で見つかることから （例えば、Ｐａｕｌ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２４４：１１５８−１１６２ （１９８９）； Ｔｈｉａｇａｒａｊａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ３９：６４５９−６４６５ （２０００）、そのようなＤＮＡライブラリーは、そのようなｃＤＮＡライブラリーを、タンパク分解自己抗体（例えば自己免疫疾患患者からのＢ細胞）をコードしている高レベルのｍＲＮＡを含む可能性がある供給源を用いて、構築することができる。ｍＲＮＡを単離し、逆転写によってｃＤＮＡを作り、ｃＤＮＡを組換えベクターに連結し、さらに増殖、スクリーニング、およびクローニングのための組換え体宿主に形質移入する一般的方法が周知である（例えば、Ｇｕｂｌｅｒ ａｎｄ Ｈｏｆｆｍａｎ， Ｇｅｎｅ， ２５：２６３−２６９ （１９８３）； Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，上掲）。ＰＣＲによってヌクレオチド配列の増幅セグメントを得ると、即座に、該セグメントがプローブとして用いられ、ｃＤＮＡライブラリーからタンパク質分解活性で抗体鎖をコードしている完全長核酸を単離することができる。 手順の一般的説明は、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ （上掲）に見いだすことができる。

類似の手順を、ヒト・ゲノム・ライブラリー由来のタンパク分解抗体軽鎖Ｖ領域（例えば配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）をコードしている完全長配列を得るために適用することができる。ヒト・ゲノム・ライブラリーは、市販されているものであってもよく、または科学文献に記載された方法に基づいて構成することもできる。一般に、ゲノム・ライブラリーを構築するために、タンパク質分解抗体が見つかる可能性のある生物体から最初にＤＮＡを抽出し、機械的剪断または酵素的消化のいずれかによって長さが約１２〜２０ｋｂのフラグメントを生成する。該フラグメントを次に不要なサイズから勾配遠心によって分離し、バクテリオファージλベクターに組み込む。これらのベクターおよびファージを生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）でパッケージングする。組換え型ファージの分析を、Ｂｅｎｔｏｎ ａｎｄ Ｄａｖｉｓ， Ｓｃｉｅｎｃｅ， １９６：１８０−１８２ （１９７７）に記載されたようなプラーク・ハイブリダイゼーションによっておこなう。コロニー・ハイブリダイゼーションをＧｒｕｎｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ７２：３９６１−３９６５ （１９７５）によって述べられているように実施する。

配列相同性に基づいて、縮重オリゴヌクレオチドをプライマー・セットとして設計し、ヒトｃＤＮＡまたはゲノム・ライブラリー由来のヌクレオチド配列のセグメントを増幅するためにＰＣＲを適当な条件下で実施することができる（例えば、Ｗｈｉｔｅ ｅｔ ａｌ．， ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ： Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ， １９９３； Ｇｒｉｆｆｉｎ ａｎｄ Ｇｒｉｆｆｉｎ， ＰＣＲ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ Ｉｎｃ． １９９４を参照せよ）。上記セグメントをプローブとして用いて、完全なタンパク質分解抗体軽鎖をコードする完全長核酸を続いて得ることができる。

タンパク質分解抗体軽鎖Ｖ領域をコードする核酸配列（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）を得ると即座に、該配列に対するさらなる修飾をおこなうことで、，種々の特性、特に組換え型ポリペプチドの酵素活性が得られる。当業者は、種々の変異体を生成する多くのそのような方法（以下のセクションで詳細に説明される）を知ることだろう。

コード化核酸配列から、タンパク質分解抗体軽鎖Ｖ領域のアミノ酸配列（例えば、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８）を導きだし、セリンプロテーゼ・二つ組の存在を確認することができる。完全長タンパク質分解抗体軽鎖に対するアミノ酸配列を同様に決定することができる。セリンプロテーゼ・二つ組は、触媒活性に必要であるセリンおよびヒスチジン残基を含む。そのような触媒活性の検出は、後のセクションで述べられるアッセイでおこなうことができる。機能的に、セリンプロテアーゼ二つ組を部位特異的突然変異によって同定することが可能である。換言すれば、２つの残基のどちらでも別のアミノ酸によって置換される場合、軽鎖の触媒活性はほとんど完全に捨てられなければならない。構造的に、例えば、セリンプロテアーゼ二つ組を、Ｘ線結晶学とコンピュータ・ベースのプログラムとによって、同定することができる。二つ組のセリンおよびヒスチジン残基は、抗体軽鎖の結晶構造における三次元並置に関して容易に同定可能である。さらに、抗体軽鎖／遷移状態基質複合体の結晶構造によって、基質の切れやすい結合への近接に基づいて残基の同定を可能とする。触媒酵素軽鎖のアミノ酸残基の空間的配列もまた、当業者に公知のコンピュータ・ベースの方法（例えば、分子モデリング）を用いて、生成することができ、また既知のセリンプロテアーゼ（例えば、サブチリシン）の触媒部位の高度に保存された三次構造上に重ね合わせることができ、セリンプロテアーゼをその後同定することができる（例えば、Ｇａｏ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏ． Ｃｈｅｍ．， ２６９：３２３８９−３２３９３ （１９９４）にある方法および装置に関する記述を参照せよ）。

（（３） 標的タンパク質に対する特異性を有する抗体重鎖をコードするヌクレオチド配列）
（ｉ． ヌクレオチド配列のクローニング）
本発明の組換え触媒ポリペプチドの構造では、特定の標的タンパク質を結合するために特異性を付与する抗体重鎖を、標的タンパク質に対する既知の特異性を持つ複数の天然抗体から選択することができる。特に、最も好ましい抗体重鎖は、抗原特性が主に軽鎖よりも重鎖に依存する抗体から得られる。種々のアッセイが当業者に知られており、それによって抗体軽鎖から抗体重鎖を分けたり、該重鎖が抗原に対してよりいっそう高い親和性を持つかどうか、それが抗原特異性に主に関与しているかどうかを判断する（例えば、Ｅｄｅｌｍａｎ ｅｔ ａｌ， Ｐｒｏ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ５０：７５３−７６１ （１９６３）； Ｕｔｓｕｍｉ ｅｔ ａｌ， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ９：１３２９−１３４２ （１９６４）； Ｓｕｎ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２６９：７３４−７３８ （１９９４）を参照せよ）。

場合によっては、適当な抗体重鎖をコードしているヌクレオチド配列は以前の研究ですでに決定されている可能性があり、該配列を本発明の組換え触媒ポリペプチドの産生に直接用いることができる。コードしている配列が前もってクローニングされていない抗体重鎖のために、上記したものと同様のクローニング方法も、抗体重鎖をコードする遺伝子の単離にとって適当である。特定の抗原に対する抗体の重鎖を、親和性クロマトグラフィーおよび電気泳動を用いて単離することができる。次にその部分的なアミノ酸配列を決定し、完全長のヌクレオチド配列を、標準的なクローニング技術に依存して、ｃＤＮＡライブラリーまたはゲノムＤＮＡライブラリーから単離することができる。ヌクレオチド配列もまた、別の種にある目的とする抗体の配列相同性に基づいて得ることもできる。

（ｉｉ． 抗体重鎖遺伝子の生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）生成）
本発明の組換え触媒ポリペプチドのための抗体重鎖をコードする核酸を得る別の手段は、遺伝子セグメントの生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）組換えを介するものである。この方法は、より高い標的タンパク質特異性を生成し、天然の抗体が特定の標的タンパク質に対する所望の特性を持たない適当な重鎖を提供することができない場合に、特に有用である。

重鎖の定常領域は、定常領域遺伝子（Ｃ）によってコードされ、重鎖の可変領域のゲノム構造は、３つの遺伝子セグメント・ファミリーから構成される。これらのセグメントは、可変性（Ｖ）、多様性（Ｄ）、および結合性（Ｊ）と呼ばれる。抗体重鎖遺伝子は、多様性のアレイを生成して可変領域レパートリーが実質的に任意の三次元抗原構造と結合するのを可能にする。３つの異なる遺伝子メカニズムは、そのような多様性、すなわち（１）遺伝子セグメント間のＶ（Ｄ）Ｊ組換え、（２）Ｖ−Ｄ、Ｄ−Ｊ、またはＶ−Ｊ結合配列で生成された結合多様性、および（３）体細胞超変異を生成する際に用いられる。

重鎖可変領域の多様性は、結合抗体遺伝子セグメントによって、生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で発生することができ、それらの種類はＶ、Ｄ、Ｊ、またはＣであってもよい。遺伝子セグメントは、生殖系の配列であると考えられ、または生殖系の配列に関連した配列であると考えてもよい。遺伝子セグメントは、任意の生物体由来のものであってもよく、異なる生物体由来の遺伝子セグメントは任意の順番で互いに結合する可能性がある。カップリング反応は、化学、酵素、または任意の他の手段に結合した少なくとも１つのホスホジエステル結合を生成する。遺伝子セグメントの組換えの際に用いることができる十分に確立された多数の技術として、例えば、ＤＮアーゼ消化および合成組換え方法に続く核酸のリゲーションおよび／またはＰＣＲアセンブリーを含む。

遺伝子セグメントのカップリングは、カップリングした結合部でのヌクレオチドの損失または増加によって生ずる。そのような残残基の損失または増加は、抗原と接触し、改善された抗体機能を得ることができる。結合部でのヌクレオチドの喪失は、酵素手段（例えば遺伝しセグメントの末端からヌクレオチドを削除するエクソヌクレアーゼを用いる）によって達成される。エクソヌクレアーゼＩＩＩを用いた核酸の末端での欠失を生成する方法は、特許出願ＰＣＴ／ＵＳ ０１／２５７８８に述べられている。ヌクレオチドもまた、酵素的手段によって付け加えられ、例えば末端デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼ用いてヌクレオチドを遺伝子セグメントの３’末端に酵素を加えることもできる。あるいは、ヌクレオチドを化学的手段によって付加または除去してもよい。例えば、ヌクレオチドを、オリゴヌクレオチド合成の間、遺伝子セグメントの末端に対して、または特定の遺伝子セグメントを増幅させるために用いられるＰＣＲプライマーの末端に対して、カップリングする２つのセグメントに対して同時にハイブリダイズすることができるＰＣＲプライマーの内部に、付加することができる。同様に、ヌクレオチドもまた、遺伝子合成の間、または遺伝子セグメントのためのＰＣＲ増幅用の合成短縮プライマーによって、欠失させることができる。増強された特異性を持つ抗体重鎖遺伝子を生成する方法は、特許出願第６０／３３７，７１８号に述べられており、これをそっくりそのまま本明細書で援用する。

新たに形成された抗体遺伝子セグメントを、種々の手順によってさらに多様化することができ、該手段は体細胞性過剰変異の生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）メカニズムに類似している。これらの手順についての説明は、以下のセクションでおこなわれる。

（Ｂ．多様性のためのヌクレオチド配列の修飾）
増強酵素活性とより高い多様性標的タンパク質活性とを達成するために、本発明の組換え触媒ポリペプチドの抗体をコードするヌクレオチド配列に対して、そのような配列が天然に生じたものまたは生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で生成されたものかどうか、修飾をさらにおこなうことができる。

種々の多様性生成プロトコルは、当技術分野で確立され、かつ記載されている（例えば、Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ９４：４５０４−４５０９ （１９９７）； およびＳｔｅｍｍｅｒ， Ｎａｔｕｒｅ， ３７０：３８９−３９１ （１９９４））。手順は、一組の核酸の変異体を生成するために単独で、または組み合わせて用いられ、それによってコードされたポリペプチドの変異体が生成される。突然変異誘発のためのキット、ライブラリー構造、および他の多様性生成方法が商業的に入手可能である。

多様性生成の突然変異方法として、例えば部位特異的突然変異（Ｂｏｔｓｔｅｉｎ ａｎｄ Ｓｈｏｒｔｌｅ， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２２９：１１９３−１２０１ （１９８５））、ウラシル含有テンプレートを用いた突然変異有誘起（Ｋｕｎｋｅｌ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８２：４８８−４９２ （１９８５））、オリゴヌクレオチド定方向突然変異誘発（Ｚｏｌｌｅｒ ａｎｄ Ｓｍｉｔｈ， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １０：６４８７−６５００ （１９８２））、ホスホロチオネート修飾ＤＮＡ突然変異誘起（Ｔａｙｌｏｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １３：８７４９−８７６４ ａｎｄ ８７６５−８７８７ （１９８５））、およびギャップ形成二重鎖ＤＮＡを用いた突然変異誘起（Ｋｒａｍｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １２：９４４１−９４５６ （１９８４））が挙げられる。

他の適当な方法として、ポイント・ミスマッチ修復（Ｋｒａｍｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ， ３８：８７９−８８７ （１９８４））、修復欠損宿主株（Ｃａｒｔｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １３：４４３１−４４４３ （１９８５））、欠失突然変異（Ｅｇｈｔｅｄａｒｚａｄｅｈ ａｎｄ Ｈｅｎｉｋｏｆｆ， Ｎｕｃｌ． Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．， １４：５１１５ （１９８６））、制限−選択および制限−精製（Ｗｅｌｌｓ ｅｔ ａｌ．， Ｐｈｉｌ． Ｔｒａｎｓ． Ｒ． Ｓｏｃ． Ｌｏｎｄ． Ａ， ３１７：４１５−４２３ （１９８６）））総遺伝子合成による突然変異誘起（Ｎａｍｂｉａｒ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２２３：１２９９−１３０１ （１９８４））、二重鎖切断修復（Ｍａｎｄｅｃｋｉ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８３：７１７７−７１８１ （１９８６））、ポリヌクレオチド鎖停止方法による突然変異誘起（米国特許第５，９６５，４０８号）、およびエラーを生じやすいＰＣＲ（Ｌｅｕｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ， １：１１−１５ （１９８９））が挙げられる。

多様性もまた、Ｏｓｔｅｒｍｅｉｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．， １７：１２０５ （１９９９）に記載された「ハイブリッド酵素の生成のためのインクリメンタル・トランケーション」（“ＩＴＣＨＹ”）と呼ばれる組換え手順を用いて、核酸または核酸の集団で発生させることができる。このアプローチを、１種類以上の生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）または生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）組換え方法のための基質として任意に用いられる変異体の初期ライブラリーを生成するために、用いることができる。例えば、Ｏｓｔｅｒｍｅｉｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ９６：３５６２−６７ （１９９９）； Ｏｓｔｅｒｍｅｉｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏ． Ｍｅ． Ｃｈｅｍ．， ７：２１３９−４４ （１９９９）も参照せよ。

上述の方法を用いて、多数の核酸変異体は、組換え触媒ポリペプチドの抗体鎖をコードする野生型配列または生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）発生配列ｓに由来することができる。全ての多様性が機能的であるというわけではないので、組換え型ポリペプチド異型は後のセクションで記載されるアッセイで標的タンパク質に結合して加水分解する能力についてスクリーニングされなければならない。

あるいは、多様化の前に機能的産物をコードする核酸に対して基質をあらかじめ選択するか、またはバイアスをかけることが望ましいと思われる。抗体重鎖を操作する場合、例えば、上記した方法のいずれかによって操作する前に生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）組み替え型イベントを利用することで、機能的抗原結合部位を持った重鎖に対する多様性生成プロセスをバイアスすることが可能である。そのような実施例の１つは、Ｂ細胞ｃＤＮＡライブラリーから誘導された組換え型ｃＤＮＲを増幅させた後、それらをフレームワーク領域に集合させる（例えば、Ｊｉｒｈｏｌｔ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ， ２１５：４７１−４７６ （１９９８））。核酸ライブラリーもまた、所望の酵素活性を持つポリペプチドをコードする核酸に対して、バイアスすることができる（例えば、米国特許第５，９３９，２５０号を参照せよ）。

（Ｃ．生物体での好ましいコドンの選択性に対する核酸の修飾）
特定の組換え型の触媒ポリペプチドをコードしているポリヌクレオチド配列を変更して、特定の宿主の好ましいコドンの選択性と一致させることができる。例えば、１つの細菌株の好ましいコドン選択性を用いて、本発明の組換え触媒ポリペプチドをコードし、かつこの株にとって好ましいコドンを含むポリヌクレオチドを誘導するのに用いることできる。宿主細胞によって示される好ましいコドンの選択性の頻度は、該宿主細胞が発現する多数の遺伝子の頻度を平均化することによって計算することができる（例えば、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｋａｚｕｓａ．ｏｒ．ｊｐ／ｃｏｄｏｎ／を算用せよ）。この分析は、宿主細胞によって非常に発現される遺伝子に、好ましくは限定される。米国特許番号第５，８２４，８６４は、例えば、双子葉植物および単子葉植物によって示される高発現された遺伝子によって、コドンの選択性の頻度を提供する。

（ＩＩＩ． 原核生物および真核生物での発現）
（Ａ．組換え型ポリペプチド発現のための細胞）
種々の細胞型（原核生物および真核生物の両方）は、組換え触媒ポリペプチドの発現または本発明のタンパク質分解抗体軽鎖（例えば配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含んでいるポリペプチド）にとって好適である。これらの細胞型として、限定されるものではないが、例えば大腸菌（Ｅ． ｃｏｌｉ）、バシラス種（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）、およびサルモネラ菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）， 同様に酵母、昆虫細胞、および哺乳動物細胞等の真核細胞型が挙げられる。遺伝子発現のための適当な細胞は、当業者に周知であり、ＳａｍｂｒｏｏｋおよびＲｕｓｓｅｌ（上掲）等の数多くの刊行物に記載されている。

（Ｂ． 発現ベクター）
本発明の核酸コード化組換え型ポリペプチドは、複製および／または発現のために原核生物または真核細胞への形質転換に先だって、中間のベクターに典型的にクローン化される。この中間のベクターは、概して原核生物ベクター（例えばプラスミドまたはシャトルベクター）である。

クローン化遺伝子（例えば配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７を含むタンパク分解抗体鎖をコードしているｃＤＮＡ）の高レベル発現を得るために、ｃＤＮＡのサブクローニング化は、転写、転写／翻訳ターミネーター、および翻訳開始のためのリボソーム結合部位に向けられた強力なプロモーターを含む発現ベクターに対して、おこなわれる。適当な細菌プロモーターは、当技術分野では周知であり、科学文献（例えばＳａｍｂｒｏｏｋおよびＲｕｓｓｅｌｌ、上掲、およびＡｕｓｕｂｅｌ、公知）に完全記載されている。組換え触媒ポリペプチドの抗体鎖を発現するための細菌発現系が得られる。組換え触媒ポリペプチドの抗体鎖を発現するための細菌発現系は、例えば大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、バシラス菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）、およびサルモネラ菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）が利用可能である（Ｐａｌｖａ ｅｔ ａｌ．， Ｇｅｎｅ， ２２：２２９−２３５ （１９８３）； Ｍｏｓｂａｃｈ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ， ３０２：５４３−５４５ （１９８３））。そのような発現系のためのキットは、商業的に入手可能である。哺乳動物細胞、酵母、および昆虫細胞に対する真核生物発現系もまた、商業的に入手可能である。

プロモータの選択は、特定用途上で異種核酸を直接発現させることに用いられる。プロモータは、異種転写開始部位からおおよそ同一距離に好ましくは位置しており、実際にはその自然のままのセッティングにある転写開始部位からおおよそ同一距離である。当技術分野で公知なように、この距離での若干の変化は、プロモーター機能の喪失なく受け入れられる。

プロモータに加えて、発現ベクターが概して転写単位または発現カセットを含み、それらは宿主細胞でタンパク分解抗体鎖の発現のために必要な全ての追加の構成要素を含む。したがって、典型的な発現カセットは、タンパク質分解抗体鎖をコードする核酸配列に実行可能に結合するプロモーター、転写の効率的なポリアデニル化に必要なシグナル、リボソーム結合部位、および翻訳停止を含む。上記カセットの追加の追加の構成要素として、エンハンサー、さらにゲノムＤＮＡが構造遺伝子として用いられる場合は、機能的スプライス・ドナーおよびアクセプター部位を持つイントロンが挙げられる。

プロモータ配列に加えて、発現カセットは、効率的な終止を提供するために、構造遺伝子の下流に転写終止部位を含むものでなければならない。終止領域は、プロモーター配列が異なる遺伝子から得ることが可能であることから、同一遺伝子から得られるものであってもよい。

細胞に遺伝情報を送るために用いられる特定の発現ベクターは、特にクリティカルなものではない。真核細胞または原核細胞での発現に用いられる従来のベクターのいずれも用いることが可能である。標準的な細菌発現ベクターとして、プラスミド、例えばｐＢＲ３２２系プラスミド、ｐＳＫＦ、ｐＥＴ２３Ｄ、ならびに融合発現系、例えばＭＢＰ、ＧＳＴ、およびＬａｃＺが挙げられる。エピトープ・タグ、例えばｃ−ｍｙｃまたはヒスチジン・タグも組換え型タンパク質に加えることができ、それによって単離の簡便な方法が提供される。

真核生物ウイルス由来の調節因子を含む発現ベクターは、概ね真核生物発現ベクター、例えばＳＶ４０ベクター、パピローマ・ウイルス・ベクター、およびエプスタイン−バー（ＥＢ）ウイルスで用いられる。他の典型的な真核生物ベクターとして、ｐＭＳＧ、ｐＡＶ００９／Ａ^＋、ｐＭＴＯ１０／Ａ^＋、ｐＭＡＭｎｅｏ−５、バキュロウイルスｐＤＳＶＥ、およびＣＭＶプロモーター、ＳＶ４０初期プロモーター、ＳＶ４０後期プロモーター、メタロチオネイン・プロモーター、ネズミ乳癌ウイルス・プロモーター、ニワトリ肉腫ウイルス・プロモーター、ポリヘドリン・プロモーター、または真核細胞での発現に有効性を示す他のプロモーターの指示のもとでタンパク質の発現を可能にするその他のベクターが挙げられる。

いくつかの発現系は、チミジン・キナーゼおよびジヒドロ葉酸還元酵素当の遺伝子増幅をもたらすマーカーを持っている。あるいは、遺伝子増幅を伴わない高収率発現系も適当であり、例えば、ポリヘドリン・プロモーターまたは他の強力なバキュロウイルス・プロモーターの指示下で、タンパク質分解抗体鎖をコードする核酸配列を持つ昆虫細胞内のバキュロウイルス・ベクターが用いられる。

発現ベクターにも典型的に含まれる要素として、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）で機能するレプリコン、組換えプラスミドの宿主となる細菌の選択を可能にする抗生物質耐性をコードする遺伝子、ならびに真核生物配列の挿入を可能にするプラスミドの非必須領域にあるユニーク制限部位が挙げられる。選択される特定の抗生物質抵抗性遺伝子は決定的（クリティカル）ではなく、当技術分野で公知の多くの耐性遺伝子のいずれかが適当である。必要に応じて、原核生物の配列が、真核細胞でのＤＮＡの複製を妨害しないようにして、好ましくは選択される。

（Ｃ． 形質移入（トランスフェクション）方法）
標準のトランスフェクション方法は、標準的技術を持ちいて精製される組換え触媒ポリペプチドの過剰量の抗体鎖を発現する細菌（哺乳動物の）酵母、または昆虫細胞系統を発生させ、つづいて標準的な技術を用いて、精製される（例えば、Ｃｏｌｌｅｙ ｅｔ ａｌ． Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２６４：１７６１９−１７６２２ （１９８９）； Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ， ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ， ｖｏｌ． １８２ （Ｄｅｕｔｓｃｈｅｒ， ｅｄ．， １９９０を参照せよ）。真核および原核生物細胞の形質転換は、標準的な技術にもとづいて実行される（例えば、Ｍｏｒｒｉｓｏｎ， Ｊ Ｂａｃｔ．， １３２：３４９−３５１ （１９７７）； Ｃｌａｒｋ−Ｃｕｒｔｉｓｓ ａｎｄ Ｃｕｒｔｉｓｓ， Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｎｎｏｌｏｇｙ， １０１：３４７−３６２ （Ｗｕ ｅｔ ａｌ．， ｅｄｓを見よ）。

外来ヌクレオチド配列を宿主細胞に導入する周知の手順のいずれかが用いられる。これら例として、リン酸カルシウム・トランスフェクション、ポリブレン、原形質体融合、電気穿孔法、微粒子銃、リポソーム、顕微注射、血漿ベクター、ウィルス・ベクター、ならびにクローニングしたゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、合成ＤＮＡ、または他の外来遺伝物質を宿主細胞に導入するための他の周知の方法のいずれか（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ、上掲）が挙げられる。少なくとも両方の遺伝子を組換え触媒ポリペプチドを発現することが可能な宿主細胞に、少なくとも両方の遺伝子を首尾よく導入する特定の遺伝子工学的手法のみが必要なだけである。

発現ベクターが細胞に導入された後、トランスフェクション細胞はタンパク分解抗体鎖の発現に好ましい条件下で培養され、以下に特定される標準的技術を用いて、培地から回収される。

（Ｄ．組換え型ポリペプチドの細胞発現組換え体）
トランスフェクション手法の後、組換え触媒ポリペプチドの抗体鎖の発現について、細胞をスクリーニングする。

遺伝子発現をスクリーニングするためのいくつかの一般的方法が当業者の間では周知である。第１に、遺伝子発現は核酸レベルで検出される。核酸ハイブリダイゼーション技術を用いた特異的ＤＮＡおよびＲＮＡ測定の多様な方法が一般に用いられる（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ、上掲）。いくつかの方法は、電気泳動による分離（例えば、ＤＮＡを検出するためのサザン・ブロットおよびＲＮＡを検出するためのノーザン・ブロット）を含む。しかし、ＤＮＡまたはＲＮＡの検出は、電気泳動なしでも実行することができる（例えば、ドット・ブロット）。トランスフェクション細胞での組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸の存在は、配列特異的プライマーを用いたＰＣＲまたはＲＴ−ＰＣＲで検出することもできる。

第２に、遺伝子発現を、上記ポリペプチド・レベルで検出することができる。種々の免疫学的アッセイが当業者によって日常的に用いられ、特に本発明の組換え型ポリペプチドと特異的に反応するポリクローナルまたはモノクローナル抗体を用いて、遺伝子産物のレベルの測定がなされる（例えば抗体軽鎖は配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸から構成される抗体軽鎖）（例えば、Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ， Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ， Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， Ｃｈａｐｔｅｒ １４， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， １９８８； Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ， Ｎａｔｕｒｅ， ２５６：４９５−４９７ （１９７５））。そのような技術は、組換え型ポリペプチドまたはその抗原部分に対して特異性が高い抗体を選択することで、抗体試料を必要とする。ポリクローナルおよびモノクローナル抗体を生ずる方法を、文献に見いだすことができる（例えば、Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ、上掲、Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ， Ｅｕｒ．， Ｊ． ｂｎｍｕｎｏｌ．， ６：５１１−５１９ （１９７６））。

また、例えば 配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を有する組換え型触媒ポリオペプチドまたはタンパク質分解軽鎖の検出をおこなう機能的アッセイを、トランスフェクション細胞でおこなうことも可能である。所定の標的タンパク質に対する結合特異性を検出するアッセイと組換え触媒ポリペプチドのタンパク質分解活性のアッセイを一般に後のセクションで説明する。

（ＩＶ． 組換え型ポリペプチドの精製）
本発明の組換え触媒ポリペプチドの天然組換え型の抗体鎖を、機能的なアッセイでの使用を目的として精製することができる。天然タンパク質分解抗体軽鎖の精製は、例えば、タンパク分解自己抗体を発生するために同定されたヒト患者のＢ細胞または血清からおこなうことができる。組換え型抗体鎖（例えば、抗体軽鎖）は、アミノ酸配列の配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８ からなり、既に説明した任意の適当な発現系から精製することができる。

本発明の組換え触媒ポリペプチドは、標準的な技術によって相当な純度に精製され、硫酸アンモニウムのような物質による選択的沈殿、カラム・クロマトグラフィー、ゲル濾過、免疫精製法、およびその他が挙げられる（米国特許第４，６７３，６４１号、Ｓｃｏｐｅｓ， Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｃａｔｉｏｎ： Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ， １９８２； Ｓａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ， 上掲； およびＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，上掲）。

組換え触媒ポリペプチドが精製される場合、多数の手法を用いることができる。例えば、確立された分子粘着性を持つタンパク質を、本発明のポリオペプチドに可逆的に融合することができる。適当なリガンドを用いて、上記ポリペプチドを選択的に精製用カラムに吸着させ、つぎに相対的に純粋なかたちでカラムから放出させる。融合タンパク質を次に酵素による切断で取り除く。最後に、ポリオペプチドを親和性カラムで精製することができる。

（Ａ． 細菌由来組換え型ポリオペプチドの精製）
組換え型ポリペプチドが大量に形質転換細菌で発現される場合、概してプロモーター誘導の後、発現が恒常的であるにもかかわらず、ポリペプチドが不溶性の凝集体を形成する可能性がある。ポリペプチド含有体の精製に好適なプロトコルがいくつか存在する。例えば、凝集体ポリペプチド（以下、封入体と呼ぶ）の精製は、一般に、限定されるものではないが、約１００〜１５０μｇ／ｍｌリゾチームおよび０．１％ノニデット（Ｎｏｎｉｄｅｎｔ）Ｐ４０、非イオン性界面活性剤の緩衝液でインキュベーションすることによって、細菌細胞を破壊することで、封入体の抽出、分離、および／または精製をともなう。細胞懸濁液を、ポリトロン（Ｐｏｌｙｔｒｏｎ）グラインダー（Ｂｒｉｎｋｍａｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ， Ｗｅｓｔｂｕｒｙ， ＮＹ）を用いて粉砕することができる。あるいは、細胞を氷上で超音波処理してもよい。細胞を溶解する別の方法は、多数の科学的刊行物（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｌｃ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ， 上掲， およびＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．， 上掲）に詳細に記載されており、当業者にとって明らかである。

細胞懸濁液を通常は遠心し、封入体を含有するペレットを該封入体を溶解はしないが洗浄する緩衝液（例えば、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．２）、１ｍＭＥＤＴＡ、１５０ｍＭＮａＣｌ、および２％Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００、非イオン系界面活性剤）中に再懸濁した。できるだけ多くの壊死細胞片を除くために、洗浄工程を繰り返すことが必要であると思われる。封入体の残留するペレットを、適当な緩衝液（例えば２０ｍＭの燐酸ナトリウム、ｐＨ ６．８、１５０ｍＭ ＮａＣｌ）中に再懸濁してもよい。他の適当な緩衝液は、当業者にとって明らかである。

洗浄工程後、強水素受容体と強水素供与体（との両方である溶媒または各々これらの性質のうちの１つを持っている溶媒の組合せ）を添加することで、封入体を可溶化する。封入体を形成した組換え型ポリペプチドを次に互換性を持つ緩衝液で希釈または透析をおこなうことで再生することが可能である。適当な溶媒として、限定されるものではないが、尿素（約４Ｍないし約８Ｍ）、ホルムアミド（少なくとも約８０％、体積／体積基準）、および塩酸グアニジン（約４Ｍないし約８Ｍ）が挙げられる。凝集体形成ポリペプチドを可溶化することができるいくつかの溶媒（例えばドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）および７０％ギ酸）は、結合特性および／または触媒活性が欠けることで、ポリペプチドの不可逆的な変性が生ずる可能性があることから、この手法で用いることは不適当である。塩酸グアニジンと類似の薬剤が変性剤であるにもかかわらず、この変性は不可逆的ではないので、除去こと（例えば、透析によって）または変性剤による希釈によって再生が生ずる可能性があり、生物活性のある組換え触媒ポリペプチドの再形成が可能となる。可溶化後、ポリペプチドを標準的な分離技術を用いて、細菌タンパク質から分離することができる。

あるいは、細菌ペリプラズムから組換え触媒ポリペプチドまたはタンパク質分解抗体軽鎖（例えば配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含んでいるもの）を精製することは、可能である。ポリペプチドが細菌ペリプラズムに送られる場合、当業者（例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，上掲）に知られている他の方法に加え、冷浸透圧衝撃によって、細菌のペリプラズム分画を単離することができる。ペリプラズムから組換え型ポリペプチドを単離するために、細菌細胞を遠心にかけてペレットを形成する。このペレットを、２０％スクロース含有緩衝液に再懸濁する。細胞を溶解するために、細菌を遠心にかけ、ペレットを氷冷５ｍＭ ＭｇＳＯ_４に再懸濁し、約１０分間氷浴に放置する。細胞懸濁液を遠心し、上清を捨てて保存する。上清に存在する組換え型ポリペプチドを、当業者に周知の標準的分離技術によって宿主タンパク質から分離することができる。

（Ｂ． タンパク質を精製するための標準的タンパク質分離技術）
（（１）可溶性分画）
しばしば最初の工程として、またタンパク質混合物が複雑な場合、最初の塩分別によって、多くの不必要な宿主細胞タンパク質（または細胞培養基由来のタンパク質）を本発明の組換え型ポリペプチドから分離することができる。好ましい塩は、硫酸アンモニウムである。好ましい塩は、硫酸アンモニウムである。硫酸アンモニウムは、タンパク質混合物中の水分量を効果的に減らすことでタンパク質を沈殿させる。そのため、タンパク質が該タンパク質の溶解性に基づいて沈殿する。典型的なプロトコルは、飽和硫酸アンモニウム塩をタンパク質溶液に加えることで、その際、結果として生ずる硫酸アンモニウム濃度を２０〜３０％とする。このことによって、最も疎水性の高いタンパク質が沈殿する。沈殿物を捨て（組換え触媒ポリペプチドが疎水性でない限り）、硫酸アンモニウムを上清に添加して組換え型ポリペプチドを沈降させることが知られている濃度にする。これによって、ｃいんでんぶつが緩衝液に可溶化し、必要に応じて過剰な塩を透析またはダイアフィルトレーションのいずれかで取り除く。タンパク質の可溶性に依存した他の方法（例えば冷エタノール沈殿）は、当業者に周知であり、複合タンパク質混合物の分画化に用いることができる。

（（２）サイズ差濾過）
算出分量に基づいて、サイズがより大きいまたはより小さいポリペプチドを、異なる細孔径の膜（例えば、ＡｍｉｃｏｎまたはＭｉｌｌｉｐｏｒｅ膜）を介した限外濾過を用いて、単離することができる。最初の工程として、タンパク質混合物を、組換え触媒ポリペプチドまたはタンパク質分解抗体軽鎖の分子量より低い分子量分離をする細孔径を持つ膜を通して、限外濾過する。次に、限外濾過の残留物を、組換え触媒ポリペプチドまたはタンパク質分解抗体軽鎖の分子量より大きな分子カットオフで、膜で限外濾過する。ポリペプチドは、膜を貫通して濾過液に入る。さらに、濾過液を次にカラム・クロマトグラフィーにより処理する。

（（３）カラム・クロマトグラフィー）
本発明の組換え触媒ポリペプチドまたはタンパク質分解抗体軽鎖は、それらのサイズ、正味表面電荷量、疎水性、およびリガンドに対する親和性に基づいて、他のタンパク質から分離することもできる。加えて、組換え型ポリペプチドまたはタンパク分解軽鎖（例えば、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含んでいるもの）に対して生じた抗体をカラム・マトリックスに共役させることで、ポリペプチドを固定化することができる。これらの方法全ては、当技術分野で周知である。

いかなる規模であっても、また多くの異なる製造業者（例えばＰｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ）の器材を使用していても、クロマトグラフィーの技術を実施することができることは、当業者に明らかである。

（Ｖ．抗体軽鎖および抗体重鎖を作用可能な形で結合）
組換え触媒ポリペプチドの抗体軽鎖と重鎖とを結合させる方法がいくつかある。例えば、当業者は、２つの抗体鎖をコードしている遺伝子が同時にトランスフェクション細胞で発現される場合、そのプロセスの間、それらが結合することを理解する。２つの抗体鎖は、該抗体鎖の発現前後に核酸レベルまたはポリペプチド・レベルで結合している可能性もある。

（Ａ．組換え方法）
抗体軽鎖および抗体重鎖を、それらが発現する前に、組換えＤＮＡ技術によって結合することができる（例えば、Ｃｈａｕｄｈａｒｙ ｅｔ ａｌ， Ｎａｔｕｒｅ， ３３９：３９４−３９７ （１９８９）； Ｐａｎｔｏｌｉａｎｏ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ３０：１０１１７−１０１２５ （１９９１）； Ｋｉｍ ｅｔ ａｌ．， ＭｏＬ Ｉｍｍｕｎｏｌ， ３４：８９１−９０６ （１９９７）を参照せよ）。当業者に既知であるように、酵素消化／ライゲーションおよび／またはＰＣＲ等の種々のツールおよび技術を用いることによって、ポリヌクレオチド配列を導入して抗体軽鎖および重鎖に対するコーディング配列を連結することができる。挿入物より下流にあるコーディング配列のオープン・リーディング・フレームを破壊すべきでないという点で、挿入物の正確な長さが重要となる。トランスフェクションおよび発現に際して、抗体軽鎖および重鎖両方とそれらを結合するのに適当な長さのペプチド・リンカーとを含有する１つの単一ポリペプチドを生成する。

抗体軽鎖および重鎖を結合する第２のアプローチでは、組換えＤＮＡ技術も利用するが、２つの抗体鎖は、発現する際２つの別個のポリペプチドのままである。このアプローチでは、適当なタグをコードするヌクレオチド配列を、抗体鎖をコードする遺伝子の３′末端に融合する。タグ付き抗体のトランスフェクションおよび発現の際に、該タグ付き抗体を、適当なタグ結合剤がすでに固定されている通常の固体支持体に連結することができる。したがって、抗体鎖は、物理的に近接しているおかげで、固体支持体を介して結合される。融合タンパク質を作製する一般的な方法論は、当業者に周知であり、手順については、ＳａｍｂｒｏｏｋおよびＲｕｓｓｅｌｌ（上掲）等の多数の科学出版物で見出されうる。多数のタグおよび固相支持体に連結することができるタグ結合剤は、文献に十分に記載されている分子相互作用にもとづいて当業者に既知である。この目的に適当な対としては、ビオチンおよびアビジンまたはストレプトアビジン、抗体のＦｃ領域およびプロテインＡまたはプロテインＧ等が挙げられる。さらに、非常に多数の既知の細胞表面受容体−リガンド対も有用であり、例えば、サイトカイン、細胞接着分子、ウイルス・タンパク質、ステロイド、および種々の毒素／毒液がそれらそれぞれの受容体とともに有用である。これらのタグまたはそれらのコーディング配列の多くが市販されている。

第２のアプローチから派生して、第３のアプローチは、タグ（またはリガンド）をコードするヌクレオチド配列を第１の抗体鎖に融合し、タグ結合剤（または受容体）を第２の抗体鎖に融合することを含む。したがって、２つの抗体鎖は、固体支持体の助けを借りずに、タグとタグ結合剤と（またはリガンドと受容体と）の相互作用を介して結合されうる。

（Ｂ．化学的方法）
２つの抗体鎖を、それらの発現および精製に続いて、化学的手段によって結合することも可能である。化学的修飾としては、例えば、タンパク質化学の技術分野で周知の方法によって直接的または結合化合物を介して抗体鎖を互いに結合する目的のための誘導体化が挙げられる。共有結合手段および非共有結合手段両方を、本発明の組換え触媒ポリペプチドとともに用いることが可能である。

２つの抗体鎖を結合するための手順は、該鎖を結合させる部分の化学構造に応じて変わる。ポリペプチドとしては、一方の抗体鎖は、通常、カルボン酸（−ＣＯＯＨ）、遊離アミン（−ＮＨ_２）、またはスルフヒドリル基等の種々の官能基を含有し、該官能基は、他方の抗体鎖上の適当な官能基との反応に用いることが可能であり、リンケージを生じる。

または、一方の抗体鎖を誘導体化して、追加の反応性官能基を暴露または結合することができる。誘導体化は、Ｐｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ， Ｒｏｃｋｆｏｒｄ Ｉｌｌｉｎｏｉｓから入手可能なもの等の多数のリンカー分子のいずれかの結合を含む。リンカーは、両抗体鎖への共有結合を形成することができる。適当なリンカーは当業者に周知であり、限定はされないが、直鎖状または分岐鎖状炭素リンカー、複素環式炭素リンカー、またはペプチド・リンカーが挙げられる。抗体鎖はポリペプチドであるので、リンカーは、構成アミノ酸にそれらの側鎖を介して結合することが可能である（例えば、ジスルフィド・リンケージを介してシステインに結合）。リンカーを、末端アミノ酸のアルファ炭素アミノ基およびカルボキシル基に結合することも可能である。

直前のセクションに記載されるように、抗体鎖を、タグおよびタグ結合剤の相互作用を介して結合することができる。タグおよびタグ結合剤を、化学的手段によって抗体鎖に結合することができる。例えば、ポリウレタン、ポリエステル、ポリカーボネート、ポリ尿素、ポリアミド、ポリエチレンイミン、ポリアリーレン硫化物、ポリシロキサン、ポリイミド、およびポリアセテート等の合成ポリマーは、適当なタグまたはタグ結合剤を形成することができる。ペプチド、ポリエーテル等の他の通常のリンカーもタグとして働くことができ、約５ないし２００個のアミノ酸のポリＧｌｙ配列等のポリペプチド配列を含む。そのようなフレキシブルなリンカーは当業者に既知である。例えば、ポリ（エチレングリコール）リンカーは、Ｓｈｅａｒｗａｔｅｒ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ， Ｉｎｃ． Ｈｕｎｔｓｖｉｌｌｅ， Ａｌａｂａｍａから入手可能である。これらのリンカーは、任意で、アミド・リンケージ、スルフヒドリル・リンケージ、またはヘテロ機能（ｈｅｅｔｒｏｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ）リンケージを持つ。多くの付加的なタグ／タグ結合剤対がこの目的のために使用可能であり、当業者にはこの開示を再考すれば自明であるだろう。

または、結合相手の一方が最初に固体支持体に固定される場合、タグ／タグ結合剤の相互作用を介して抗体鎖を結合することができる。現在利用可能な種々の方法のいずれかを用いて、タグ結合剤を固体基板に固定する。固体基板を、通常、該基板の全てまたは一部分を化学試薬にさらすことによって誘導体化または官能化する。該化学試薬は、タグ結合剤の一部分に反応しやすい表面に化学基を固定する。例えば、長めの鎖部分への結合に適する基としては、アミン、ヒドロキシル、チオール、およびカルボキシル基が挙げられる。アミノアルキルシランおよびヒドロキシアルキルシランを用いて、ガラス表面等の種々の表面の官能化することができる。そのような固相バイオポリマー・アレイの構築については、文献に十分に記載されている。例えば、Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ， Ｊ． Ａｍ． Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． ８５：２１４９−２１５４ （１９６３）（例えばペプチドの固相合成について記載）； Ｇｅｙｓｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎ． Ｍｅｔｈ． １０２：２５９−２７４ （１９８７）（ピン上の固相構成要素の合成について記載）； Ｆｒａｎｋ ＆ Ｄｏｒｉｎｇ， Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ ４４：６０３１−６０４０ （１９８８）（セルロース・ディスク上の種々のペプチド配列の合成について記載）； Ｆｏｄｏｒ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ， ２５１：７６７−７７７ （１９９１）； Ｓｈｅｌｄｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３９（４）：７１８−７１９ （１９９３）；およびＫｏｚａｌ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ ２（７）：７５３７５９ （１９９６） （全て、固体基板へ固定されるバイオポリマーのアレイについて記載）を参照せよ。基板へタグ結合剤を固定するための非化学的アプロ−チとしては、熱、ＵＶ照射による架橋等の他の共通的な方法が挙げられる。

（Ｃ．細胞方法）
得られる融合細胞が特定の抗体を分泌する不死化細胞株となるように所望の抗体を産生するＢ細胞を不死化細胞株、通常、骨髄腫細胞株と融合することによって、ハイブリドーマ細胞を生成することができる。同様の原理によって、骨髄腫細胞を、初めに、タンパク質分解軽鎖をコードする核酸（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７のヌクレオチド配列を含む核酸）でトランスフェクションすることができ、軽鎖の発現に対してスクリーニングすることができる。続いて、最も高いレベルのタンパク質分解軽鎖発現を有する骨髄腫細胞を、所望の標的タンパク質特異性を持つ抗体を産生するＢ細胞と融合することができる。融合細胞は、２種類の抗体を産生する。すなわち、一方は、触媒軽鎖（例えば、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含むもの）に実行可能に結合する異種重鎖を含有する異種抗体であり、他方は、親Ｂ細胞が分泌するのと同じ抗体である。実行可能に結合した異種重鎖と軽鎖とを、クロマトグラフィー等の従来の方法によって単離することができ、この開示の他のセクションに記載される標的タンパク質結合アッセイおよびエンドペプチダーゼ活性アッセイによって、酵素活性を確認することができる。または、重鎖に対する遺伝子を、標準的な技術によって融合細胞からクローン化して、触媒軽鎖と実行可能に結合した他の哺乳動物細胞株で発現させるために用いることが可能である。いくつかの場合では、異種抗体が２種類の抗体間で最も多量を占める種類である場合、そのような単離は必要ではないだろう。

（ＶＩ． 組換え触媒ポリペプチドの生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）酵素活性）
（Ａ．標的タンパク質結合アッセイ）
本発明の組換え触媒ポリペプチドまたはその抗体重鎖による標的タンパク質に特異的に結合する能力を、当業者が熟知している技術を用いる種々の生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）アッセイで実証することができる。これらのアッセイの一般原理および方法論は、患者試料中の標的タンパク質レベルを検出するために設計されたイムノアッセイ（詳細は後のセクションで記載）のそれと同様である。

例えば、抗体軽鎖および重鎖両方を含有する単一ポリペプチド鎖の形態である組換え触媒ポリペプチドのライブラリーで標的タンパク質特異性をスクリーニングするためには、標的タンパク質を固体基板に直接結合させて、アッセイ系に固定することができる。ファージ提示ライブラリー中のもの等の発現系から得られた組換え型ポリペプチドを、例えば^１２５Ｉで標識することができ、標的タンパク質に捕捉されると容易に検出することができる。例えば^１２５Ｉで標識された関係のない抗体（すなわち、標的タンパク質に結合しないことが知られているもの）とのシグナル比較から、特定の組換え型ポリペプチドが標的タンパク質に特異的であるかどうかが明らかになる。ファージ提示をこの目的のために直接利用することができる。すなわち、標的タンパク質に特異性を持つ組換え型ポリペプチドを含有するファージを、初めに、すでに固相に固定されている標的タンパク質に結合させる。続いて、それらをストリンジェントな条件下で洗浄（例えば、洗剤、高塩濃度溶液、または低ｐＨで洗浄）し、回収する。回収された画分を、同様の方法で処理された負の対照群ファージとの比較で、多重感染度（ＭＯＩ）について試験して特異性を決定する。または、スクリーニング・アッセイのために、組換え型ポリペプチドを固定して、標的タンパク質を標識してもよい。特異的な抗体は、上記のアッセイで、バックグラウンドを上回る統計学的に有意なシグナルを示すはずであり、そのようなシグナルは、好ましくは、バックグラウンドを少なくとも２倍上回る。標的タンパク質に対して特異性を持つ組換え触媒ポリペプチドを同定するために用いられる種々の他の方法も利用可能であり、当業者には自明である。

同様の一般的方法が、抗体重鎖とタンパク質分解軽鎖とを結合する前に標的タンパク質特異性に対して個々の抗体重鎖をスクリーニングおよび選択するため、かつタンパク質分解軽鎖と選択された重鎖とを実行可能に結合した後に組み換え型触媒ポリペプチドの結合特異性を確認するために適用可能である。

（Ｂ．エンドペプチダーゼ活性アッセイ）
（（１）抗体軽鎖によるペプチドの加水分解）
抗体軽鎖がエンドペプチダーゼ活性を含むかどうかを決定するために複数のアッセイが利用可能である。概して、２次的なアミド結合の加水分解を検出することができる任意のアッセイを用いて、エンドペプチダーゼ活性を決定することができる。通常用いられるアッセイは、ペプチドから放出される際検出可能であるレポーター分子に結合させたペプチド類似体を利用する。通常用いられるアッセイは、ペプチド−メチルクマリンアミド（ＭＣＡ）誘導体を含み、該ペプチド−ＭＣＡ結合の加水分解が脱離基アミノメチルクマリンを産生してその蛍光が３７０ｎｍの励起および４６０ｎｍの発光で測定されるように含む。そのようなアッセイが実行されて、マウス軽鎖のタンパク質分解活性が検出された（Ｇａｏ， ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６９：３２３８９−３２３９３ （１９９４）； Ｓｕｎ ｅｔ ａｌ， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． ２７１：３７４−３８５ （１９９７））。結合が開裂される際にスペクトル特性が変化する分子（例えば、ニトロアニリン複合体）にペプチドを結合させるための他の類似の方法が当該技術分野で公知である。

（（２）組換え触媒ポリペプチドによる標的タンパク質の加水分解）
標的タンパク質中の開裂されたペプチド結合を検出することが可能な任意の方法は、本発明で使用するのに適している。ペプチド結合の加水分解は、必然的に、１つより多いポリペプチド産物を産生するので、当該技術分野で公知の複数の標準的なサイズまたは質量分析技術を用いて、ペプチド結合加水分解を同定することができる。これらの技術としては、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動等の電気泳動技術、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、およびＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ等の質量分析法が挙げられる。または、ラジオアイソトープで標識されたタンパク質をＴＣＡ中で沈殿させることができ、この際、ペプチド結合の加水分解は、ＴＣＡ可溶性放射能の量によって示される（Ｇａｏ， ｅｔ ａｌ， Ｊ Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６９： ３２３８９−３２３９３ （１９９４））。標的タンパク質加水分解を検出するための他の方法は、標識された標的タンパク質を固体支持体に連結し、触媒ポリペプチドへの暴露後の該標的されたタンパク質の放出を測定することを含む。さらに、ＳｍｉｔｈおよびＫｏｈｏｒｎ（ＰＮＡＳ ８８： ５１５９−５１６２ （１９９１））、ＬａｗｌｅｒおよびＳｎｙｄｅｒ（Ａｎａｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２６９： １３３−１３８ （１９９９））、Ｄａｓｍａｈａｐｔｒａ他（ＰＮＡＳ ８９： ４１５９−４１６２（１９９２））、Ｍｕｒｒａｙ他（Ｇｅｎｅ １３４： １２３−１２８ （１９９３））、ならびにＫｉｍ他（Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ． ２９６： ４１９ （２００２））は、酵母ツー・ハイブリッド・システムの変形物を用いてタンパク質分解活性を検出するために遺伝的機構について記載している。このシステムを改変して、本発明の組換え型ポリペプチドに対応することが可能である。

（（３）プロテアーゼ阻害剤プローブへの組換え型ポリペプチドの結合）
機能性組換え触媒ポリペプチドを、プロテアーゼ阻害剤プローブへ結合するその能力に対してアッセイすることができる。本発明の文脈における「プロテアーゼ阻害剤プローブ（ｐｒｏｔｅａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｐｒｏｂｅ）」とは、プロテアーゼ阻害剤構成要素および検出可能なリガンド構成要素を含むニ機能性分子を指す。プロテアーゼ阻害剤成分は、セリンプロテアーゼを機能的に阻害することができる任意の阻害剤でよい。そのような阻害剤としては、小分子およびその誘導体（ジイソプロピルフルオロリン酸（ＤＦＰ）またはフェニルメチルスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）に類似のホスホン酸塩を含む）と、タンパク質またはペプチド阻害剤（例えば、アプロチニン等）とが挙げられる。好ましくは、阻害剤は、セリンプロテアーゼ三つ組の構成要素のうちの１つに共有結合することができる。最近の研究で、フルオロホスホン酸プローブを用いて、複合プロテオミクス混合物中で加水分解酵素活性を持つタンパク質をプロファイリングすることが可能であることが示された（Ｌｉｕ， ｅｔ ａｌ． Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ９６： １４６９４−１４６９９ （１９９９））。共有結合的に反応性である類似体（ホスホン酸エステル）を用いて、組換え触媒ポリペプチドを同定することも可能である（Ｐａｕｌ， ｅｔ ａｌ． Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２７６： ２８３１４−２８３２０ （２００１））。

プロテアーゼ阻害剤プローブに有用な検出可能なリガンド（標識を含む）の例としては、限定はされないが、ビオチン、デイミノビオチン、デチオビオチン、ビシナル・ジオール（例えば、１，２−ジヒドロキシエタン、１，２−ジヒドロキシシクロヘキサン等）、ジゴキシゲニン、マルトース、オリゴヒスチジン、グルタチオン、２，４−ジニトロベンゼン、フェニルアルセナート、ｓｓＤＮＡ、ｄｓＤＮＡ、ポリペプチドのペプチド、金属キレート、糖類、ローダミンまたはフルオロセイン、あるいは抗体を生成させることができる任意のハプテンが挙げられる。検出可能な標識は、分子量、酸化還元電位、電磁特性、結合特性等のために他の類似分子から容易に区別されうる低濃度、通常マイクロモル未満、好ましくはナノモル未満で検出可能な基である。検出可能な標識は、活性タンパク質以外の相補的受容体に非共有結合可能なビオチンまたは蛍光剤またはオリゴヌクレオチド等のハプテン；適当なアイソトープを含む質量タグ；ラジオアイソトープ；金属キレートまたは生物学的試料中で通常見いだされないヘテロ原子を持つ他の基；好ましくは０．１より大きい量子収率を持つ蛍光基または化学発光基；タンパク質に通常存在する基より低い酸化または還元電位をもつ電気活性基；補酵素、有機金属触媒、光増感剤、または電子伝達剤等の触媒；酵素活性剤または阻害剤あるいは補酵素等の触媒活性に作用する基でもよい。

（ＶＩＩ．組換え触媒ポリペプチドによる生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）標的タンパク質切断）
（Ａ．組換え触媒ポリペプチドの投与）
生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）での標的タンパク質の特異的な加水分解のために、本発明の組換え触媒ポリペプチドを哺乳動物被験体に直接投与することができる。このストラテジーを用いて処置または予防することができる疾患および状態としては、正常タンパク質の過剰発現または異常タンパク質の発現を含むもの、あるいは外来タンパク質が疾患または状態の原因に役割を果たすものであり、かつ遺伝するかまたは天然に獲得されうるものが挙げられる。種々の種類の癌、アレルギー反応、ウイルス感染、および細菌感染がいくつかの例である。いくつかの実施形態では、本発明の組換え触媒ポリペプチドを、疾患の特定の症状を軽減するのに有用な他の薬剤と組み合わせることができる。

（（１）医薬配合物）
本発明の組換え触媒ポリペプチドを含有する医薬組成物は、医薬的に許容される担体を含むことが可能である。医薬的に許容される担体は、投与される特定の組成物と、組成物を投与するために用いられる特定の方法とによって部分的に決定される。したがって、本発明の医薬組成物の適当な配合物は多種多様である（例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ， Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ， Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ， ＰＡ， １９ｔｈ ｅｄ． １９９５を参照せよ）。

本発明の組換え触媒ポリペプチドを、単独または他の適当な構成要素との組合せで、エアロゾル配合物中に作製（すなわち、それらは「噴射され（ｎｅｂｕｌｉｚｅｄ）」）て、吸入を介してまたは注入に有用な組成物中で投与することができる。エアロゾル配合物を、加圧された許容される噴射剤（例えば、ジクロロジフルオロメタン、プロパン、窒素等）中に入れることができる。

投与に適する配合物は、水溶液、非水溶液、および等張性無菌溶液（酸化防止剤、バッファー、殺菌剤、および配合物を等張にする溶質を含有することができる）、ならびに水性および非水性無菌懸濁物（懸濁剤、可溶化剤、濃縮剤、安定剤、および防腐剤を含むことができる）を含むことができる。この方法を実施する際、例えば経口、経鼻、局所的、静脈内、腹腔内、またはくも膜下腔内に組成物を投与することができる。化合物の配合物を、アンプルおよびバイアル等の単回投与または複数回投与密閉容器で提供することができる。溶液および懸濁物を、前述の種類の無菌粉末、顆粒剤、および錠剤から調製することができる。モジュレーターを、調製された食物または薬剤の一部として投与することもできる。

（（２）投与および投与量）
本発明の組換え触媒ポリペプチドを含有する組成物の投与は、治療すべき組織に治療化合物を最終的に接触させるために通常用いられる経路のいずれかによってなされるものでありえ、当業者には周知である。上述のように、哺乳動物に組成物を投与するために、種々の方法が利用可能である。投与形態としては、限定はされないが、静脈内、腹腔内、鼻腔内、経皮、局所的、皮下、親を介して、筋肉内、経口、または全身的、および任意の他の手段による注入、摂取、吸入、移植、または吸着を介して組成物を投与することを含む方法を挙げることができる。１つよい多い経路を用いて特定の組成物を投与することができるが、特定の経路は、しばしば、別の経路より即時かつ効果的な反応を与えることができる。

本発明の文脈において、哺乳動物患者に投与される組換え触媒ポリペプチドの投与量は有益な応答を生む、すなわち一定期間にわたって患者中で標的タンパク質のレベルを低減するのに十分な投与量であるべきである。任意の患者に対する最適投与量のレベルは、用いられる特異的な組換え触媒ポリペプチドの効果、ならびに患者の年齢、体重、身体活動、および食事を含む種々の要因と、他の薬剤との考えられる組み合わせと、処置すべき疾患の重度とに依存する。特定の被験体中での特定の化合物またはベクターの投与に伴う任意の有害な副作用の存在、性質、および程度によって、投与量の規模を決定することもできる。

投与される組換え触媒ポリペプチドの有効量を決定する際、医師は、組換え型ポリペプチドの循環血漿量、ポリペプチド毒性、および抗ポリペプチド抗体の産生を評価することが可能である。一般的に、組換え触媒ポリペプチドの線量当量は、通常の被験体に対して約１ｐｇ／ｋｇないし１０ｍｇ／ｋｇである。組み換え型触媒ペプチドの投与は、処置の過程にわたって１回または複数回でありうる。

投与に関しては、本発明の組換え触媒ポリペプチドを、被験体の体重および総合的な健康に適用されるように種々の濃度での該ポリペプチドのＬＤ−５０と該ポリペプチドの副作用とによって決定された割合で投与することができる。

（Ｂ．組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸の投与）
種々のヒト疾患および状態の処置または予防のための組換え触媒ポリペプチドの投与と同様に、該組換え型ポリペプチドをコードする核酸を哺乳動物被験体に直接投与することができる。

（（１）遺伝子送達用のベクター）
細胞または生体への送達のために、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸をベクター中に組み込むことができる。そのような目的のために用いられるベクターの例としては、標的細胞中で核酸の発現を導くことが可能な発現プラスミドが挙げられる。他の例としては、ベクターはウイルス・ベクター系であり、この際、標的細胞をトランスフェクトすることが可能なウイルス・ゲノム中に核酸を組み込む。好ましい実施形態では、所望の標的細胞中で遺伝子の発現を導くことができる発現および制御配列に、核酸を実行可能に結合することができる。このようにして、標的細胞中で、適当な条件下で核酸の発現を達成することができる。

（（２）遺伝子送達系）
組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸の発現に有用なウイルス・ベクター系としては、例えば、天然発生または組換え型ウイルス・ベクター系が挙げられる。特定の用途によって、適当なウイルス・ベクターとしては、複製能をもつウイルス・ベクター、複製欠損型ウイルス・ベクター、および条件付で複製するウイルス・ベクターが挙げられる。例えば、ウイルス・ベクターは、ヒトまたはウシ・アデノウイルス、ワクシニア・ウイルス、ヘルペス・ウイルス、アデノ関連ウイルス、マウス微小ウイルス（ＭＶＭ）、ＨＩＶ，シンドビス・ウイルス、およびレトロウイルス（限定はされないが、ラウス肉腫ウイルスを含む）、およびＭｏＭＬＶのゲノムに由来することができる。通常、所望の組換え触媒ポリペプチドの遺伝子をそのようなベクターに挿入して、通常には、付随するウイルスＤＮＡとともに遺伝子コンストラクトのパッケージングを可能にした後、感受性宿主の感染およびポリペプチドの発現をおこなう。

本明細書で使用するように、「遺伝子送達系（ｇｅｎｅ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｓｙｓｔｅｍ）」とは、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を標的細胞に送達するための任意の手段を指す。本発明のいくつかの実施形態では、取り込み（例えば、被覆小窩の陥入およびエンドソームの内部移行）を促進するために、ＤＮＡ結合部分等の適当な結合部分を介して該核酸を細胞受容体リガンドに結合する（Ｗｕ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２６３：１４６２１−１４６２４ （１９８８））； ＷＯ ９２／０６１８０）。例えば、核酸を、ポリリジン部分を介して肝細胞のアシアロ糖タンパク質受容体のリガンドであるアシアロオロソムコイドに結合することができる。

同様に、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を含む遺伝子コンストラクトをパッキングするために用いられるウイルス・エンベロープを、特異的受容体に特異的な受容体リガンドまたは抗体を添加して特定の細胞中への受容体媒介エンドサイトーシスを可能することによって修飾することができる（例えば、ＷＯ ９３／２０２２１、ＷＯ ９３／１４１８８、およびＷＯ ９４／０６９２３を参照せよ）。本発明のいくつかの実施形態では、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を含有するＤＮＡコンストラクトを、アデノウイルス粒子等のウイルス・タンパク質に結合してエンドサイトーシスを促進することができる（Ｃｕｒｉｅｌ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．， ８８：８８５０−８８５４ （１９９１））。他の実施形態では、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を含有する分子複合体は、微小管阻害剤（ＷＯ ９４／０６９２２）、インフルエンザ・ウイルス赤血球凝集素を模倣する合成ペプチド（Ｐｌａｎｋ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．， ２６９：１２９１８−１２９２４ （１９９４））、およびＳＶ４０ Ｔ抗原等の核移行シグナル（ＷＯ ９３／１９７６８）を含むことができる。

組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を標的細胞または生体に導入するために、レトロウイルス・ベクターも有用である。レトロウイルスを遺伝子操作することによって、レトロウイルス・ベクターを生成することができる。レトロウイルスのウイルス・ゲノムはＲＮＡである。感染すると、このゲノムＲＮＡは、ＤＮＡコピーに逆転写され、該ＤＮＡコピーが、高度な安定性および効率性を持つ形質導入細胞の染色体ＤＮＡに組み込まれる。組み込まれたＤＮＡコピーはプロウイルスと呼ばれ、任意の他の遺伝子のように娘細胞に遺伝する。野生型レトロウイルス・ゲノムおよびプロウイルスＤＮＡは、３つの遺伝子、すなわちｇａｇ、ｐｏｌ、およびｅｎｖ遺伝子を有し、それら３つの遺伝子は、２つの長い末端配列（ＬＴＲ）によってフランクキングしている。ｇａｇ遺伝子は、内部構造（ヌクレオキャプシド）タンパク質をコードする。ｐｏｌ遺伝子は、ＲＮＡ依存ＤＮＡポリメラーゼ（逆転写酵素）をコードする。ｅｎｖ遺伝子は、ウイルス・エンベロープ糖タンパク質をコードする。５′および３′ＬＴＲが働いて、ウイルス粒子ＲＮＡの転写およびポリアデニル化を促進する。ゲノムの逆転写に必要な配列（ｔＲＮＡプライマー結合部位）と、粒子へのウイルスＲＮＡの効率的な封入に必要な配列（Ｐｓｉ部位）とは、５′ＬＴＲに隣接している（Ｍｕｌｌｉｇａｎ， Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ， Ｉｎｏｕｙｅ （ｅｄ）， ｐｐ １５５−１７３ （１９８３））； Ｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ， ３３：１５３−１５９ （１９８３））； Ｃｏｎｅ ａｎｄ Ｍｕｌｌｉｇａｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８１：６３４９−６３５３ （１９８４）を参照せよ）。

レトロウイルス・ベクターの設計は、当業者に周知である。要約すると、キャプシド形成（または感染性ウイルス粒子へのレトロウイルスＲＮＡのパッケージング）に必要な配列がウイルス・ゲノムから外れている場合、ゲノムＲＮＡのキャプシド形成を予防するｃｉｓ作用性欠損が生じる。しかし、得られる突然変異体は、依然として、全てのウイルス粒子タンパク質の合成を導くことが可能である。これらの配列が欠失したレトロウイルス・ゲノムと、染色体に安定的に組み込まれる突然変異ゲノムを含有する細胞株とは当業者に周知であり、該レトロウイルス・ゲノムおよび細胞株を用いて、レトロウイルス・ベクターを構築する。レトロウイルス・ベクターの調製およびその用途については、多数の文献に記載されており、例えば、欧州特許出願ＥＰＡ ０ １７８ ２２０；米国特許第４，４０５，７１２号； Ｇｉｌｂｏａ， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ， ４：５０４−５１２ （１９８６）； Ｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．上掲； Ｃｏｎｅ ａｎｄ Ｍｕｌｌｉｇａｎ、上掲； Ｅｇｌｉｔｉｓ ｅｔ ａｌ， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ， ６：６０８−６１４ （１９８８）； Ｍｉｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ， ７：９８１−９９０ （１９８９）； Ｍｉｌｌｅｒ （１９９２）、上掲； Ｍｕｌｌｉｇａｎ （１９９３）、上掲；およびＷＯ ９２／０７９４が挙げられる。

所望のヌクレオチド配列をレトロウイルス・ベクターに組換え的に挿入し、レトロウイルス・キャプシド・タンパク質とともに該ベクターをパッケージング細胞株を用いてパッケージングすることによって、レトロウイルス・ベクター粒子を調製する。得られるレトロウイルス・ベクター粒子は、宿主細胞中では複製ができないが、所望のヌクレオチド配列を含有するプロウイルス配列として宿主細胞ゲノムに組み込まれることができる。結果として、患者は、例えば、ＤＮＡ配列を、続いて、本発明の組換え触媒ポリペプチドを産生することができるので、標的タンパク質の切断を触媒する。

レトロウイルス・ベクター粒子を調製するために用いられるパッケージング細胞株は、通常、パッケージングに求められる必要なウイルス構造タンパク質を産生するが感染性ウイルス粒子を産生できない組換え型哺乳動物組織培養細胞株である。一方で、用いられる欠損型レトロウイルス・ベクターは、これらの構造遺伝子を持たないが、パッケージングに必要な残りのタンパク質をコードする。パッケージング細胞株を調製するために、パッケージング部位が欠失された所望のレトロウイルスの感染性クローンを構築することができる。このコンストラクトを含む細胞は、全ての構造ウイルス・タンパク質を発現するが、導入されたＤＮＡは、パッケージングされることができない。または、適当なコアおよびエンベロープ・タンパク質をコードする１つ以上の発現プラスミドで細胞株を形質転換することによって、パッケージング細胞株を生成することができる。これらの細胞では、ｇａｇ、ｐｏｌ、およびｅｎｖ遺伝子は、同じレトロウイルスまたは異なるレトロウイルスに由来することができる。

本発明に適する多数のパッケージング細胞株は、先行技術でも利用可能である。これらの細胞株の例としては、Ｃｒｉｐ、ＧＰＥ８６、ＰＡ３１７、およびＰＧ１３が挙げられる（Ｍｉｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｖｉｒｏｌ， ６５：２２２０−２２２４ （１９９１）を参照せよ）。他のパッケージング細胞株の例については、Ｃｏｎｅ ａｎｄ Ｍｕｌｌｉｇａｎ、上掲； Ｄａｎｏｓ ａｎｄ Ｍｕｌｌｉｇａｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８５：６４６０−６４６４ （１９８８）； Ｅｇｌｉｔｉｓ ｅｔ ａｌ． （１９８８）、上掲； ａｎｄ Ｍｉｌｌｅｒ （１９９０）、上掲に記載されている。

キメラ・エンベロープ・タンパク質を持つレトロウイルス・ベクターを産生することが可能なパッケージング細胞株を用いてもよい。または、ＰＡ３１７およびＧＰＸパッケージング細胞株によって産生されるもの等のアンホトロピックまたはゼノトロピック・エンベロープ・タンパク質を用いて、レトロウイルス・ベクターをパッケージングすることが可能である。

（（３）医薬配合物）
医薬目的で用いる際は、核酸導入を含む療法のために用いられるベクターを適当なバッファー中に配合する。該バッファーは、任意の医薬的に許容されるバッファーでありえ、例えば、リン酸緩衝食塩水またはリン酸ナトリウム／硫酸ナトリウム、Ｔｒｉｓバッファー、グリシン・バッファー、無菌水、およびＧｏｏｄ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔａｙ， ５：４６７ （１９６６）に記載されるもの等の当業者に既知の他のバッファーがある。

組成物は、付加的に、安定剤、賦活剤、あるいは他の医薬的に許容される担体または媒体を含むことができる。医薬的に許容される担体は、例えば組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸と任意の関連するベクターとを安定させるために作用する生理学的に許容される化合物を含有することができる。生理学的に許容される化合物としては、例えば、グルコース、スクロース、またはデキストラン等の糖質；アスコルビン酸またはグルタチオン等の酸化防止剤；キレート化剤；低分子量タンパク質あるいは他の安定剤または賦形剤を挙げることができる。他の生理学的に許容される化合物としては、湿潤剤、乳化剤、分散剤、または微生物の増殖または作用を予防するために特に有用な防腐剤が挙げられる。種々の防腐剤が周知であり、例えば、フェノールおよびアスコルビン酸が挙げられる。担体、安定剤、またはアジュバントの例については、Ｒｅｉｎｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（上掲）に見出されうる。

（（４）投与および投与量）
当業者に既知の任意の送達方法を用いて、本発明の核酸を含有する配合物を任意の組織または器官に送達することができる。本発明のいくつかの実施形態では、本発明の核酸を、粘膜、局所的、および／または頬側配合物、特に粘膜付着性ゲルおよび局所的ゲル配合物中に配合する。経皮送達のための好例の浸透強化組成物、ポリマー・マトリックス、および粘膜付着性ゲル調製物については、米国特許第５，３４６，７０１号に開示されている。

配合物の有効投与量は、投与手段、標的部位、患者の生理学的状態、および他の投与される医薬品を含む多くの異なる要因によって変わる。したがって、処置投与量を滴定して、安全性および効果を最適化する必要がある。投与されるベクターの有効量を決定する際、医師は、用いられる特定の核酸、診断される疾患状態；患者の年齢、体重、および全体的な状態、循環血漿量、ベクター毒性、疾患の進行、および抗ベクター抗体の産生を評価すべきである。特定のベクターの投与に伴う任意の有害な副作用の存在、性質、および程度によって、投与量の規模を決定することもできる。本発明を実施するためには、一患者当たり約１０ｎｇないし１ｇ、１００ｎｇないし１００ｍｇ、１μｇないし１０ｍｇ、または３０ないし３００μｇＤＮＡ範囲の投与量が標準的である。投与量は、概ね、体重１キログラム当たり約０．０１ないし約５０ｍｇ、好ましくは体重１キログラム当たり約０．１ないし約５ｍｇあるいは一注入当たり約１０^８ないし１０^１０または１０^１２個の粒子の範囲である。一般的に、ベクター由来の裸核酸の線量当量は、標準的な７０ｋｇの患者に対して約１μｇないし１００μｇであり、レトロウイルス粒子を含むベクターの投与量を算出して、組換え触媒ポリペプチドをコードする当量の核酸を生成する。

（（５）処置方法）
本発明の遺伝子療法配合物は、通常、細胞に投与される。該細胞を、上皮膜等の組織の一部として、または組織培養物中のもの等の単離細胞として提供することができる。細胞を、生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）、生体外（ｅｘ ｖｉｖｏ）、または生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で提供することができる。

配合物を、種々の方法によって目的の組織に生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）または生体外（ｅｘ ｖｉｖｏ）で導入することができる。いくつかの実施形態では、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を、マイクロインジェクション、リン酸カルシウム沈降、リポソーム融合、または微粒子銃等の方法によって細胞に導入する。さらに別の実施形態では、核酸は、目的の組織によって直接取り込まれる。

いくつかの実施形態では、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸を、患者から外植された細胞または組織に生体外（ｅｘ ｖｉｖｏ）で投与して、その後、該患者に戻す。治療遺伝子コンストラクトの生体外（ｅｘ ｖｉｖｏ）投与の例としては、Ｎｏｌｔａ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ９３：２４１４−２４１９ （１９９６）； Ｋｏｃ ｅｔ ａｌ．， Ｓｅｍｉｎａｒｓ ｉｎ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ， ２３：４６−６５ （１９９６）； Ｒａｐｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ａｎｎａｌｓ ｏｆ Ｓｕｒｇｅｒｙ， ２２３：１１６−１２６ （１９９６）； Ｄａｌｅｓａｎｄｒｏ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｔｈｏｒａｃ． Ｃａｒｄｉ． Ｓｕｒｇ．， １１：４１６−４２２ （１９９６）；およびＭａｋａｒｏｖ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ９３：４０２−４０６ （１９９６）が挙げられる。

（Ｃ．生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）標的タンパク質低下の検出）
組換え触媒ポリペプチドまたは組換え型ポリペプチドをコードする核酸を含有する治療化合物の投与に続いて、生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）標的タンパク質レベルを投与前と投与後とで比較することによって、治療化合物の効果を評価することができる。

組織試料中のタンパク質レベルを測定する一般的な方法は当業者に周知である。上述のように、種々のイムノアッセイを通常どおりに用いて、対象のタンパク質を検出する。適用可能な技術の一般的概説については、Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ， Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ， Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， １９８８で見出されうる。

（（１）標的タンパク質に対する抗体）
標的タンパク質と特異的に反応するポリクローナルおよびモノクローナル抗体を生成するための方法は当業者に既知である（例えば、Ｃｏｌｉｇａｎ、上掲；およびＨａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ、上掲； Ｓｔｉｔｅｓ ｅｔ ａｌ．上掲およびそこに引用される参考文献； Ｇｏｄｉｎｇ、上掲；ならびにＫｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ， Ｎａｔｕｒｅ， ２５６：４９５−４９７ （１９７５）を参照せよ）。例えば、ポリクローナル抗体を生成するためには、精製標的タンパク質をアジュバントと混合して、それを用いて動物を免疫する。標的タンパク質に対する高力価の抗体を得る際は、血液を動物から採取して、イムノアッセイのために抗血清を調製する。モノクローナル抗体を生成するためには、標的タンパク質で免疫した動物から得た脾臓細胞を、通常は骨髄腫細胞との融合によって不死化させる（Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．， ６：５１１−５１９ （１９７６）を参照せよ）。単一の不死化細胞から生じたコロニーを、標的タンパク質に対する所望の特異性および親和性を持つ抗体の生成についてスクリーニングする。

（（２）イムノアッセイ）
標的タンパク質に特異的な抗体が入手できたら、臨床家が利用可能な定質および定量結果を用いる種々のイムノアッセイ方法によって、患者中の標的タンパク質レベルを測定することができる。処置すべき特定の疾患に応じて、血液、尿、または組織等の患者から得た種々の試料をイムノアッセイで用いて生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）標的タンパク質レベルを検出することができる。一般的な免疫学的手順およびイムノアッセイ手順の概説については、例えば、Ｓｔｉｔｅｓ、上掲；米国特許第４，３６６，２４１号；第４，３７６，１１０号；第４，５１７，２８８号；および第４，８３７，１６８号を参照せよ。

（ｉ．イムノアッセイでの標識）
イムノアッセイは、しばしば、抗体および標的タンパク質によって形成される結合複合体に特異的に結合および標識する標識剤を用いる。標識剤は、それ自体が抗体／標的タンパク質複合体を含む部分のうちの１つでもよく、または抗体／標的タンパク質複合体に特異的に結合する別の抗体等の第３の部分でもよい。標識は、分光学的、光化学的、生化学的、免疫化学的、電気的、光学的、または化学的手段によって検出可能である。いくつかの例としては、限定はされないが、磁気ビーズ（例えば、Ｄｙｎａｂｅａｄｓ（商標））、蛍光色素（例えば、イソチオシアン酸フルオレセイン、テキサス・レッド、ローダミン等）、放射性標識（例えば、^３Ｈ、^１２５Ｉ、^３５Ｓ、^１４Ｃ、または^３２Ｐ）、酵素（例えば、ホースラディッシュペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、およびＥＬＩＳＡで通常用いられる他のもの）、および金コロイドあるいは色ガラスまたはプラスチック（例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ラテックス等）ビーズ等の比色標識がある。

いくつかの場合では、標識剤は、標識を保持する第２の抗体である。または、第２の抗体は、標識を持たない代わりに、該第２の抗体が由来する種の抗体に特異的である標識された第３の抗体によって結合されうる。第２の抗体を、酵素標識ストレプトアビジン等の第３の標識された分子が特異的結合することができるビオチン等の検出可能な部分で修飾することができる。

免疫グロブリンの定常領域に特異的に結合することが可能な他のタンパク質（例えば、プロテインＡまたはプロテインＧ）も標識剤として用いることができる。これらのタンパク質は、連鎖球菌属細菌の細胞壁の正常構成要素である。該タンパク質は、種々の種由来の免疫グロブリン定常領域に強い非免疫原性反応性を示す（一般的には、Ｋｒｏｎｖａｌ， ｅｔ ａｌ． Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１１１：１４０１−１４０６ （１９７３）；およびＡｋｅｒｓｔｒｏｍ， ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ．， １３５：２５８９−２５４２ （１９８５）を参照せよ）。

（ｉｉ．イムノアッセイ・フォーマット）
組織試料から標的タンパク質を検出するためのイムノアッセイは、競合的または非競合的である。非競合イムノアッセイは、捕捉された標的タンパク質の量を直接測定するアッセイである。一例の好ましい「サンドイッチ（ｓａｎｄｗｉｃｈ）」アッセイでは、標的タンパク質に特異的な抗体を、該抗体が固定される固体基板に直接結合させることができる。その後、該抗体は、試験試料中の標的タンパク質を捕捉する。このように固定された抗体／標的タンパク質複合体に、標識を保持する第２の抗体等の標識剤を結合させる。または、第２の抗体は標識を持たない代わりに、該第２の抗体が由来する種の抗体に特異的である標識された第３の抗体によって結合されうる。第２の抗体を、酵素標識ストレプトアビジン等の第３の標識された分子が特異的結合することができるビオチン等の検出可能な部分で修飾することができる。

競合アッセイでは、試料中に存在する標的タンパク質によって該標的タンパク質に特異的な抗体から退けられた（競合で追い払われた）添加（外来性）標的タンパク質の量を測定することによって、間接的に試料中の標的タンパク質の量を測定する。そのようなアッセイの典型的な例では、抗体を固定して、外来性標的タンパク質を標識する。抗体に結合する外来性標的タンパク質の量は、試料中に存在する標的タンパク質の濃度に反比例するので、試料中の標的タンパク質レベルを、抗体に結合し、かつこのように固定させた外来性標的タンパク質の量にもとづいて決定することができる。

いくつかの場合では、ウエスタン・ブロット（イムノブロット）分析を用いて、患者由来の試料中の標的タンパク質の存在を検出および定量する。該技術は、一般に、分子量にもとづいてゲル電気泳動によって試料タンパク質を分離して、分離されたタンパク質を適当な固体支持体（例えば、ニトロセルロース・フィルタ、ナイロン・フィルタ、または誘導体化ナイロン・フィルタ）に移し、標的タンパク質に特異的に結合する抗体とともに試料をインキュベートすることを含む。これらの抗体を直接標識することが可能であるか、または代わりに、標的タンパク質に対する抗体に特異的に結合する標識された抗体（例えば、標識されたヒツジ抗マウス抗体）を用いて引き続き検出することが可能である。

他のアッセイ・フォーマットとしては、リポソーム・イムノアッセイ（ＬＩＡ）が挙げられ、該ＬＩＡでは、特異的な分子（例えば、抗体）に結合して封入試薬またはマーカーを放出するように設計されたリポソームが用いられる。その後、放出された化学物質を標準的技術にしたがって検出する（Ｍｏｎｒｏｅ ｅｔ ａｌ．， Ａｍｅｒ． Ｃｌｉｎ． Ｐｒｏｄ． Ｒｅｖ．， ５：３４−４１ （１９８６）を参照せよ）。

（ＶＩＩＩ．組換え触媒ポリペプチドのライブラリー）
（Ａ．提示ライブラリー）
多数の異なる提示系を用いて、本発明の組換え触媒ポリペプチドのライブラリーを構築することができる。細胞またはウイルス・ベースの系では、組換え型ポリペプチドを、例えば粒子（例えば、ウイルスまたは細胞）表面上で提示して、標的タンパク質に特異的に結合および切断する能力についてスクリーニングすることができる。生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）提示系を用いることもでき、その際、組換え型ポリペプチドを、組換え型ポリペプチドをコードする核酸配列に組換え型ポリペプチドを連結するための機構を提供する因子に結合させる。これらの技術としては、リボソーム提示およびｍＲＮＡ提示が挙げられる。

いくつかの例、例えばリボソーム提示では、組換え触媒ポリペプチドを、例えばリボソームとの物理的相互作用を介して、コードする核酸に結合させる。他の実施形態では、例えばｒＲＮＡ提示では、組換え触媒ポリペプチドを、結合基を介して別の分子に結合させることが可能である。結合基は、化学的架橋剤でありえ、例えば、スクシンイミジル−（Ｎ−マレイミドメチル）−シクロヘキサン−１−カルボキシレート（ＳＭＣＣ）が挙げられる。架橋剤は、付加的なアミノ酸配列（群）でもありえ、例えば、ポリアラニン、ポリグリシン、または類似の結合基が挙げられる。Ｓｅｒ等の他のほぼ中性のアミノ酸をリンカー配列で用いることもできる。リンカーとして有用に用いることが可能なアミノ酸配列としては、Ｍａｒａｔｅａ ｅｔ ａｌ． Ｇｅｎｅ ４０：３９−４６ （１９８５）； Ｍｕｒｐｈｙ ｅｔ ａｌ． Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８３：８２５８−８２６２ （１９８６）；米国特許第４，９３５，２３３号および第４，７５１，１８０号に開示されるものが挙げられる。リンカー配列は、一般的に、１ないし約５０アミノ酸長、例えば、２、３、４、６、または１０アミノ酸長でありえるが、１００または２００アミノ酸長も可能である。

他の化学的リンカーとしては、糖質リンカー、脂質リンカー、脂肪酸リンカー、ポリエーテル・リンカー（例えば、ＰＥＧ）等が挙げられる。例えば、ポリ（エチレングリコール）リンカーは、Ｓｈｅａｒｗａｔｅｒ Ｐｏｌｙｍｅｒｓ， Ｉｎｃ． Ｈｕｎｔｓｖｉｌｌｅ， Ａｌａｂａｍａから入手可能である。これらのリンカーは、任意で、アミド・リンケージ、スルフヒドリル・リンケージ、またはヘテロ機能リンケージを有する。

（（１）ファージ提示ライブラリー）
ファージ提示ライブラリーの構築には、バクテリオファージの、それらの細胞表面上（すなわち、それらのキャプシド上）にペプチドおよびタンパク質を提示する能力を利用する。しばしば、Ｍ１３、ｆｄ、またはｆｌ等の線状ファージを用いる。線状ファージは、大外殻タンパク質および小外殻タンパク質、例えばｐＩＩＩをコードする遺伝子の多重コピーによって囲まれる一本鎖ＤＮＡを含有する。外殻タンパク質は、キャプシドの外側表面上に提示される。キャプシド・タンパク質遺伝子とイン・フレームで挿入されたＤＮＡ配列を共転写して、ファージ表面上に提示される融合タンパク質またはタンパク質フラグメントを生成する。したがって、ファージ・ライブラリーは、挿入配列の多様性を表すポリペプチドを提示することができる。有意には、これらのポリペプチドを、「天然（ｎａｔｕｒａｌ）」折り畳みコンフォメーション中で提示することができる。その後、ファージ提示ライブラリー上で発現した組換え触媒ポリペプチドは、標的タンパク質に特異的に結合および切断することができる。

ファージ・キャプシド表面上にポリペプチドを提示するためにＭ１３またはｆｄ等の線状ファージを用いる概念は、初めに、Ｓｍｉｔｈ， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２８：１３１５−１３１７ （１９８５）によって導入された。ポリペプチドがファージ表面上に提示されて、多数の潜在的リガンドが同定された（例えば、Ｃｗｉｒｌａ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８７：６３７８−６３８２ （１９９０）を参照せよ）。科学文献および特許文献に記載されているファージ提示ライブラリーを生成するためには多数の系および方法があり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ， Ｍｏｌｅｃｕｌｅ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， ３ｒｄ ｅｄｉｔｉｏｎ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｈａｐｔｅｒ １８， （２００１）； Ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ， １９９６； Ｃｒａｍｅｒｉ， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２２６：５３−５８ （１９９４）； ｄｅ Ｋｒｕｉｆ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９２：３９３８−３９４２ （１９９５）； ＭｃＧｒｅｇｏｒ， Ｍｏｌ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ６：１５５−１６２ （１９９６）； Ｊａｃｏｂｓｓｏｎ， Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ２０：１０７０−１０７６ （１９９６）； Ｊｅｓｐｅｒｓ， Ｇｅｎｅ １７３：１７９−１８１ （１９９６）； Ｊａｃｏｂｓｓｏｎ， Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｒｅｓ． １５２：１２１−１２８ （１９９７）； Ｆａｃｋ， Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｍｅｔｈｏｄｓ ２０６：４３−５２ （１９９７）； Ｒｏｓｓｅｎｕ， Ｊ． Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｈｅｍ． １６：４９９−５０３ （１９９７）； Ｋａｔｚ， Ａｎｎｕ． Ｒｅｖ． Ｂｉｏｐｈｙｓ． Ｂｉｏｍｏｌ． Ｓｔｒｕｃｔ． ２６：２７−４５ （１９９７）； Ｒａｄｅｒ， Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ８：５０３−５０８ （１９９７）； Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓ， Ｃｕｒｒ． Ｏｐｉｎ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ９：１０２−１０８ （１９９８）を参照せよ。

通常、提示すべきタンパク質配列をコードする外来性核酸を、外殻タンパク質遺伝子、例えば、ファージの遺伝子ＩＩＩまたは遺伝子ＶＩＩＩに挿入する。得られる融合タンパク質は、キャプシドの表面に提示される。タンパク質ＶＩＩＩは、タンパク質ＩＩＩでは３ないし５個のコピーであるのに対して、一ファージ当たり約２７００個のコピーで存在する（Ｊａｃｏｂｓｓｏｎ、上掲（１９９６））。ファージミド等の多価発現ベクターを、組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸配列の操作と細菌中のファージ粒子の生成とのために用いることができる（例えば、Ｆｅｌｉｃｉ， Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． ２２２：３０１−３１０ （１９９１）を参照せよ）。

しばしば、ファージ・ライブラリーを構築するためにファージミド・ベクターが用いられる。これらのベクターは、一本鎖線状バクテリオファージ（例えば、Ｍ１３またはｆｌ）のゲノム由来のＤＮＡ複製起点を含み、ファージを生成するために他のファージ・タンパク質の供給を必要とする。これは、通常、ヘルパー・ファージによって供給されるが、ファージ粒子中にパッケージングされる時点ではあまり効率的ではない。伝統的なプラスミド・ベクターと同様の方法でファージミドを用いることができるが、該ファージミドを用いて、ＤＮＡのクローン化セグメントの一本鎖コピーを含有する線状バクテリオファージ粒子を生成することもできる。

提示されたポリペプチドは、融合タンパク質である必要はない。例えば、組換え触媒ポリペプチドは、非共有結合的相互作用（例えば、Ｊｕｎ／Ｆｏｓ結合等のコイルドコイル結合相互作用）あるいはシステインによって媒介される共有結合的相互作用（付加的な非共有結合的相互作用有りまたは無しで）によって外殻タンパク質に結合することが可能である（例えば、Ｃｒａｍｅｒｉ ｅｔ ａｌ．， Ｅｕｒ． Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２２６：５３−５８ （１９９４）を参照せよ）。提示系については、例えば、Ｍｏｒｐｈｏｓｙｓによって記載されており、この際、１つのシステインを一本鎖Ｆ_ｖまたはＦ_ａｂのＣ末端に置き、もう１つをｇ３ｐのＮ末端に置く。その２つがペリプラズム中でアセンブルし、融合遺伝子またはタンパク質なしで提示が起こる。

外殻タンパク質は、外来性である必要はない。例えば、ＤＮＡ結合タンパク質をファージ／ファージミド・ゲノムに組み込むことができる（例えば、ＭｃＧｒｅｇｏｒ ＆ Ｒｏｂｉｎｓ， Ａｎａｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． ２９４：１０８−１１７ （２００１）を参照せよ）。そのようなタンパク質に認識される配列もゲノムに存在する際は、ＤＮＡ結合タンパク質は、ファージ／ファージミド中に組み込まれるようになる。これは、提示ベクター・タンパク質として働くことができる。いくつかの場合では、ファージ外殻へのＤＮＡ結合タンパク質の組み込みが、認識されるＤＮＡシグナルの存在とは無関係に生じうることが明らかになっている。

他のファージを用いることもできる。例えば、Ｔ７ベクター、Ｔ４ベクター、Ｔ２ベクター、またはラムダ・ベクターを用いることができ、この際、成熟ファージ粒子上の提示される産物は、細胞溶解によって放出される。

（（２）他の提示ライブラリー）
ファージ提示ライブラリーに加えて、類似のエピトープ提示ライブラリーも用いることができる。例えば、本発明の方法は、酵母表面提示ライブラリー（ｙｅａｓｔ ｓｕｒｆａｃｅ ｄｉｓｐｌａｙｅｄ ｌｉｂｒａｒｙ）を用い（例えばＢｏｄｅｒ， Ｎａｔ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． １５：５５３−５５７ （１９９７）を参照せよ）、これは、ｐＹＤ１酵母発現ベクター等のベクターを用いて構築することができる。他の潜在的な提示系としては、哺乳動物提示ベクターおよび大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ライブラリーが挙げられる。例えば、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）フラジェリン・タンパク質を用いて、蛍光結合リガンド配列を提示することができる。

当業者に既知の生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）提示ライブラリー・フォーマットを用いることもでき、例えば、リボソーム提示ライブラリーおよびｍＲＮＡ提示ライブラリーがある。これらの生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）選択技術では、無細胞翻訳を用いてタンパク質を生成して、生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）翻訳後にそれらをコードするｍＲＮＡと物理的に結合させる。これらのライブラリーを生成するための典型的な方法論では、選択される配列をコードするＤＮＡを生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で転写して、無細胞系で翻訳する。

リボソーム提示ライブラリー（例えば、Ｍａｔｔｈｅａｋｉｓ ｅｔ ａｌ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ ＵＳＡ ９１：９０２２−９０２６ （１９９４）； Ｈａｎｅｓ ＆ Ｐｌｕｃｋｔｈｒｕｎ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ ＵＳＡ ９４：４９３７−４９４２， （１９９７）を参照せよ）では、本発明の蛍光結合リガンドをコードするｍＲＮＡと該リガンドとを結合するものは、リボソーム自体である。ＤＮＡコンストラクトを、停止コドンが転写されるｍＲＮＡに含まれないように設計する。したがって、翻訳をおこなうリボソームは、ｍＲＮＡの末端にとどまり、コードされるタンパク質は放出されない。コードされるタンパク質は、その正確な構造に折り畳まれることができるとともに、リボソームに結合することができる。その後、固定された標的に対する選択のために、ｍＲＮＡ、リボソーム、およびタンパク質の複合体を直接用いる。結合リボソーム複合体からｍＲＮＡを、ＥＤＴＡを用いた複合体の解離によって回収して、ＲＴ−ＰＣＲによって増幅する。

本明細書でピューロマイシン提示とも呼ばれるｍＲＮＡ提示技術にもとづく方法およびライブラリーについては、例えば、米国特許第６，２６１，８０４号、第６，２８１，２２３号、第６，２０７，４４６号、および第６，２１４，５５３号に記載されている。この技術では、初めに、ピューロマイシンに結合したＤＮＡリンカーをｍＲＮＡの３′末端に融合する。その後、本発明の組み換え型触媒ポリペプチド等のポリペプチドは、生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で翻訳され、リボソームはＲＮＡ−ＤＮＡジャンクションにとどまる。アミノアシルｔＲＮＡを模倣するピューロマイシンは、リボソームＡ部位に入り、新生ポリペプチドを受容する。したがって、翻訳されたポリペプチドは、それをコードするｍＲＮＡに共有結合する。その後、融合分子を精製して、特異的結合およびタンパク質分解活性に対してスクリーニングする。その後、例えばＲＴ−ＰＣＲを用いて、所望の酵素活性を持つ組換え型ポリペプチドをコードする核酸配列を得ることができる。

組換え触媒ポリペプチドおよびピューロマイシンへの結合のための配列、例えばＤＮＡリンカーは、当業者に周知の方法によって結合することができ、例えば、米国特許第６，２６１，８０４号、第６，２８１，２２３号、第６，２０７，４４６号、および第６，２１４５５３号に記載されている。

他の技術は、ポリペプチドをそれらをコードする遺伝子に共有結合させるウイルス・タンパク質（例えば、プロテインＡ）を用いることを含む。組み換え型触媒ポリペプチドをプロテインＡ配列に結合させる融合タンパク質を生成することによって、これらの組換え触媒ポリペプチドをそれらをコードする遺伝子に結合させる機構を提供する。

プラスミド提示系は、ｌａｃリプレッサー等のＤＮＡ結合タンパク質への提示されるポリペプチドの融合にも依存しうる（例えば、Ｇａｔｅｓ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． ＭｏＬ Ｂｉｏｌ． ２５５：３７３−３８６ （１９９６）を参照せよ）。ｌａｃオペレーターもプラスミドに存在する場合、ＤＮＡ結合タンパク質は該ｌａｃオペレーターに結合して、プラスミドとともに共精製されうる。ライブラリーを生成して、ＤＮＡ結合タンパク質に結合させ、細菌を溶解してスクリーニングすることができる。トランスフェクションまたは増幅によって、所望のプラスミド／ポリペプチドを回収することができる。

（Ｂ．ライブラリーのスクリーニング）
本発明のライブラリーをスクリーニングする方法は、組換え触媒ポリペプチドの所望の特性、すなわち、標的タンパク質に特異的に結合および切断するそれらの能力にもとづく。したがって、ライブラリーを、標的タンパク質のタンパク質分解を触媒する能力についてスクリーニングすることが可能であり、先のセクションに記載される酵素活性を検出する種々の生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）アッセイを用いることができる。ファージ提示ベクター等の提示ベクターを用いて構築されたライブラリーでは、その後、選択されたクローン、例えば、ファージを用いて、細菌に感染させる。

組換え触媒ポリペプチドを選択したら、該ポリペプチドをコードする核酸は容易に得られる。その後、この核酸配列を、先のセクションに記載されるような多数の系を用いて発現させて、所望の量の組換え触媒ポリペプチドを得ることが可能である。

（ＩＸ．非ヒト・トランスジェニック哺乳動物）
本発明のヒト軽鎖可変領域（Ｖ_Ｌ）を含むポリペプチドをコードする核酸配列（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）を非ヒト哺乳動物に導入して、ヒトＶ_Ｌを発現するトランスジェニック動物を生成することができる。より一般的に見られるトランスジェニック動物モデルとは異なり、本発明のトランスジェニック哺乳動物によって発現されるトランス遺伝子は、体細胞組換え後に、抗体軽鎖可変領域を担う外来性コーディング配列の少なくとも１つの対立遺伝子を置換する必要がない。対立遺伝子排除が原因で、Ｖ_ＬＤＮＡの外来性体細胞再配列後形態の存在は、Ｖ_Ｌ遺伝子座の外来性生殖細胞系遺伝子が体細胞再配列を受けてこの哺乳動物が生成しうる抗体軽鎖の構成に寄与することを阻害する。したがって、特定の抗原にさらされると、該哺乳動物は、ヒトＶ_Ｌを持つ（かつ、それ故にタンパク質分解活性を持つ）軽鎖（例えば、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８）と、抗原に対する特異性を持つ外来起源の重鎖とを含む異種抗体を生成する。そのような異種抗体は、研究で、かつ生存被験体の特定の状態を処置する上で非常に価値がある。一方で、外来性対立遺伝子の遺伝子座へのトランス遺伝子の組み込みを導く方法は、本発明を実施する目的にも十分に役立つ。

トランスジェニック動物を生成する一般的方法は十分に確立されており、頻繁に実施されている。以下のセクションでは、トランスジェニック非ヒト哺乳動物を生成する周知の技術のいくつかを、限定する目的ではなく説明目的で簡潔に記載する。

（Ａ．破壊：相同組換えのターゲティング）
相同組換えのプロセスを用いて、トランス遺伝子、すなわち、ヒト触媒軽鎖可変領域のコーディング配列を含む核酸（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）を、動物細胞の外来性Ｖ_Ｌコーディング配列の位置に組み込む部位を制御することによって、遺伝子を破壊して、その正常発現を予防することができる。相同組換えについては、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｇｅｎｅ， ３ｒｄ Ｅｄ．， Ｗ．Ａ． Ｂｅｎｊａｍｉｎ， Ｉｎｃ．， Ｍｅｎｌｏ Ｐａｒｋ， ＣＡ （１９７７）中でＷａｔｓｏｎによって詳細に記載されている。要約すると、相同組換えは、天然の細胞過程であり、同一または実質的に類似（すなわち、「相同（ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ）」）の配列を有する２つの核酸分子の分離と、初期に存在する分子のそれぞれの一方の領域が他方の初期に存在する分子の領域にライゲートするような該２つの核酸分子のライゲーションとを生じる（Ｓｅｄｉｖｙ， Ｂｉｏ−Ｔｅｃｈｎｏｌ．， ６：１１９２−１１９６ （１９８８））。

当業者に周知の多数の種々の「遺伝子ターゲティング（ｇｅｎｅ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ）」方法によって、相同組換えを利用する（例えば、Ｍａｎｓｏｕｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３３６：３４８−３５２ （１９８８）； Ｃａｐｅｃｃｈｉ ｅｔ ａｌ．， Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ． ５：７０−７６ （１９８９）； Ｃａｐｅｃｃｈｉ， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４４：１２８８−１２９２ （１９８９）； Ｃａｐｅｃｃｈｉ ｅｔ ａｌ．， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ｐｐ４５−５２， Ｃａｐｅｃｃｈｉ， Ｍ．Ｒ． （ｅｄ．）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， Ｎ．Ｙ． （１９８９）； Ｆｒｏｈｍａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ ５６： １４５−１４７ （１９８９）を参照せよ）。いくつかのアプローチでは、導入されたＤＮＡを組換えを促進する因子（たとえば、トリメチルソラレン、ＵＶ光等）で処理することによって２つのＤＮＡ分子間の組換え頻度を増加させることをさらに含むが、多くのアプローチは、選択可能なマーカーの種々の組み合わせを用いて形質転換細胞の単離を促進する。そのような選択可能な方法の１つは、ポジティブ／ネガティブ選択（ＰＮＳ）と称され、Ｔｈｏｍａｓ ａｎｄ Ｃａｐｐｅｃｈｉ， Ｃｅｌｌ ５１：５０３−５ １２ （１９８７）によって記載されている。相同組換え事象に対して選択するがＰＮＳを用いない他のストラテジーを使用することも可能である。例えば、細菌薬剤耐性遺伝子等のポジティブ選択遺伝子を用いることが可能である。トランスジェニック動物にとって薬剤耐性が望ましくないいくつかの場合では、薬剤耐性遺伝子を相同組換え後に削除することが可能なトランス遺伝子／ノックアウト・コンストラクト中に、１つ以上の遺伝因子を含むことが可能である。Ｏ’Ｇｏｒｍａｎ他（Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５１：１３５１−１３５５ （１９９１））は、酵母由来のＦＬＰ／ＦＲＴ組換え酵素系がそのような遺伝因子のセットであると記載している。

同様の一般的方法を用いて、Ｖ_Ｌをコードする配列の両方の対立遺伝子を置換することができる。しかし、そのような両（ｄｕａｌ）組換え事象の頻度は、有意に低めである。単一の対立遺伝子が置換された動物を異種交配して、両方の対立遺伝子が破壊されたホモ接合子を生成することができる。さらに、上述のように、対立遺伝子排除によって、トランスジェニック動物により産生された全ての抗体軽鎖中のヒトＶ_Ｌの優性を確認する。したがって、二重の置換は、相同組換えのレベルでは必要ではない。

（Ｂ．細胞の形質転換）
本発明のトランスジェニック動物を生成するためには、ヒトＶ_Ｌコーディング配列を含むトランス遺伝子（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）を含有するコンストラクトで細胞を形質転換する。この文脈において、用語「形質転換された（ｔｒａｎｓｆｏｒｍｅｄ）」とは、当業者に周知の任意の方法による標的細胞への外来性ＤＮＡの導入として定義される。これらの導入方法としては、限定はされないが、トランスフェクション、マイクロインジェクション、感染（例えば、レトロウイルス・ベースのベクターでの感染）、電気穿孔法、および微粒子銃が挙げられる。用語「形質転換された（ｔｒａｎｓｆｏｒｍｅｄ）」とは、本明細書では、特に指示のない限り、培養における不死化、密度非依存増殖、有害な形質転換、または類似の獲得状態に付随する細胞挙動および増殖パターンでの変更を示すことを意図しない。

全ての細胞中で特定の遺伝子が置換された動物を生成するためには、所望の種の生殖細胞（精子または卵、すなわち「生殖細胞系（ｇｅｒｍ ｌｉｎｅ）」）中にトランス遺伝子コンストラクトを導入することが好ましい。下記のように、マイクロインジェクションまたは他の方法によって、遺伝子または他のＤＮＡ配列を受精卵の前核に導入することができる。接合子は胚中の全ての細胞の有糸分裂前駆体であるので、前核融合後に、発生中の胚は、導入された遺伝子をその体細胞および生殖細胞の全てで保持することが可能である。トランス遺伝子コンストラクトの標的化挿入は比較的まれな事象であるので、そのようなアプローチを用いる際は大多数の動物を生成およびスクリーニングすることが望ましい。この理由のために、大きな細胞集団および培養細胞系に特有の選択基準と連携することが有利である。しかし、培養細胞の初期集団からトランスジェニック動物を生成するためには、所望のトランス遺伝子コンストラクトを含有する培養細胞が動物全体を生成することができることが好ましい。このことは、一般的に、ある種の発生中の胚環境中に細胞を入れることによって達成される。

少なくとも複数の分化細胞型を生じることが可能な細胞は、「多能性（ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ）」細胞と呼ばれる。胚の全ての細胞型を生じることが可能な多能性細胞を、本明細書では、「全能（ｔｏｔｉｐｏｔｅｎｔ）」細胞と称する。例えば、全能マウス細胞株（胚幹または「ＥＳ」細胞）は、非常に若い胚（胚盤胞）に由来する細胞の培養によって単離された。そのような細胞は、胚への組み込みの際に、生殖細胞を含む全ての細胞型に分化することが可能であり、該細胞を用いて、外来性の相手を置換するトランス遺伝子を含有する動物を生成することができる。したがって、培養ＥＳ細胞を上述のようにトランス遺伝子コンストラクトで形質転換することができ、トランス遺伝子コンストラクトの挿入を介してマウスＶ_Ｌ遺伝子がヒトＶ_Ｌ遺伝子に置換された細胞を選択することができる。

細胞形質転換の複数の一般的方法について次に記載する。

（（１）マイクロインジェクション法）
マイクロインジェクションは、接合子の形質転換のための１つの好ましい方法である。マウスでは、オス前核は、直径約２０マイクロメートルの大きさに及び、ＤＮＡ溶液１ないし２ｐｌの再現性注入を可能にする。遺伝子導入のための標的として接合子を用いることは、大部分の場合、注入されたＤＮＡが第一卵割前に宿主遺伝子に組み込まれるという点で大きな利点がある（Ｂｒｉｎｓｔｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８２：４４３８−４４４２ （１９８５））。結果として、トランスジェニック非ヒト動物の全ての細胞は、組み込まれたトランス遺伝子を保持する。このことは、一般的に、生殖細胞の５０％がトランス遺伝子を保有するので、創始者の子孫へのトランス遺伝子の効率的な伝達にも反映される。

この方法によって導入されるヒトＶ_Ｌ遺伝子（例えば、配列番号の核酸配列１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７を含むもの）は、いずれの種類の自己複製プラスミドまたはウイルスにも組み込む必要がない（Ｊａｅｎｉｓｃｈ， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４０：１４６８−１４７４（１９８８））。ＤＮＡ分子が受精卵に注入されたら、卵を、レシピエント・メスの子宮に移植し、動物中で発生させる。動物の細胞の全てが移植受精卵に由来するので、得られる動物の細胞の全て（生殖細胞系細胞を含む）は、導入されたヒトＶ_Ｌ遺伝子を含有するだろう。事象の約３０％で起こるように、ヒトＶ_Ｌ遺伝子が細胞のゲノムに組み込まれないうちに第１の細胞分裂が起こる場合、得られる動物はキメラ動物となる。

そのような動物を繁殖および同系交配することによって、ヘテロ接合性およびホモ接合性トランスジェニック動物を通常どおりに生成することが可能である。そのようなトランスジェニック動物の形成における不確実性にもかかわらず、動物は、概して、安定であることが判明しており、導入されたヒトＶ_Ｌ遺伝子を保有および発現する子孫を生成可能であることが判明している。

トランスジェニック動物の生成の成功率は、マウスで最も高い。ＤＮＡが注入されメスに移植されたマウス受精卵の約２５％がトランスジェニック・マウスとなる。多数の他のトランスジェニック動物もこの方法によって生成されている。これらのトランスジェニック動物としては、ウサギ、ヒツジ、ウシ、およびブタが挙げられる（Ｊａｅｎｉｓｃｈ Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４０：１４６８−１４７４ （１９８８）； Ｈａｍｍｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ａｎｉｍａｌ． Ｓｃｉ． ６３：２６９ （１９８６）； Ｈａｍｍｅｒ ｅｔ ａｌ． Ｎａｔｕｒｅ ３１５：６８０ （１９８５）； Ｗａｇｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｔｈｅｒｉｏｇｅｎｏｌｏｇｙ ２１：２９ （１９８４））。

（（２）レトロウイルス法）
レトロウイルス感染は、非ヒト哺乳動物にトランス遺伝子を導入するための別の方法である。発生中の非ヒト胚を生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で未分化胚芽細胞期まで培養することができる。この期間のあいだは、割球がレトロウイルス感染のための標的でありうる（Ｊａｅｎｉｃｈ， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ７３：１２６０−１２６４ （１９７６））。割卵の効率的な感染は、酵素処理をして透明帯を除去することによって得られる（Ｈｏｇａｎ ｅｔ ａｌ．， Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｎｇ ｔｈｅ Ｍｏｕｓｅ Ｅｍｂｒｙｏ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， Ｎ．Ｙ． （１９８６））。トランス遺伝子、すなわちヒトＶ_Ｌ遺伝子を導入するために用いられるウイルス・ベクター系は、通常、トランス遺伝子を保持する複製欠損型レトロウイルスである（Ｊａｈｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８２：６９２７−６９３１ （１９８５）； Ｖａｎ ｄｅｒ Ｐｕｔｔｅｎ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ， ８２：６１４８−６１５２ （１９８５））。トランスフェクションは、ウイルス産生細胞の単層上で割卵を培養することによって容易かつ効率的に得られる（Ｖａｎ ｄｅｒ Ｐｕｔｔｅｎ ｅｔ ａｌ．上掲； Ｓｔｅｗａｒｔ ｅｔ ａｌ．， ＥＭＢＯ Ｊ．， ６：３８３−３８８ （１９８７））。または、より後期に感染をおこなうことができる。ウイルスまたはウイルス産生細胞を割腔に注入することができる（Ｊａｈｎｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ２９８：６２３−６２８ （１９８２））。トランスジェニック非ヒト動物を形成した細胞のサブセットでのみ組み込みが起こるので、創始者の大分部はトランス遺伝子に対するモザイクである。さらに、創始者は、概ね子孫中で分離するゲノム中の異なる位置で、トランス遺伝子の種々のレトロウイルス挿入を含有することが可能である。さらに、妊娠中期胚の子宮内レトロウイルス感染によって、低効率ではあるけれども生殖細胞系中にトランス遺伝子を導入することも可能である（Ｊａｈｎｅｒ ｅｔ ａｌ．上掲）。

（（３）ＥＳ細胞移植）
トランス遺伝子導入のための第３の好適な標的細胞は、胚幹細胞（ＥＳ）である。ＥＳ細胞は、生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で培養した着床前胚から得て、胚と融合させる（Ｅｖａｎｓ ｅｔ． ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ２９２：１５４−１５６ （１９８１）； Ｂｒａｄｌｅｙ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３０９：２５５−２５８ （１９８４）； Ｇｏｓｓｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８３：９０６５−９０６９ （１９８６）；およびＲｏｂｅｒｔｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３２２：４４５−４４８ （１９８６））。当業者に周知の多数の手段によって、トランス遺伝子をＥＳ細胞に効率的に導入することができる。その後、形質転換されたＥＳ細胞を、マウス等の非ヒト動物由来の胚盤胞と組み合わせることができる。ＥＳ細胞は、その後、胚をコロニー化し、得られるキメラ動物の生殖細胞系に寄与する（概説については、Ｊａｅｎｉｓｃｈ Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４０：１４６８−１４７４ （１９８８）を参照せよ）。

ヒトＶ_Ｌ遺伝子（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）を含有するヌクレオチド配列を、導入された分子がその相同領域で組換えを受けることを可能にする任意の方法によって多能性細胞に導入することが可能である。ＤＮＡトランスフェクションまたはレトロウイルス媒介形質導入によって、トランス遺伝子をＥＳ細胞に効率的に導入することができる。

例えば電気穿孔法によって、核酸を導入することができる（Ｔｏｎｅｇｕｚｚｏ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ Ｒｅｓ． １６：５５ １５−５５３２ （１９８８）； Ｑｕｉｌｌｅｔ ｅｔ ａｌ．， Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．， １４１：１７−２０ （１９８８）； Ｍａｃｈｙ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ８５：８０２７−−８０３１ （１９８８））。トランス遺伝子を含有する核酸の導入を可能にした後、当該技術分野で公知であるように、従来の条件下で細胞を培養する。

トランス遺伝子を含有する核酸を受け取った細胞の回収を促進するためには、トランス遺伝子を含有する核酸（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７を含む核酸）を、検出可能なマーカーをコードする第２の遺伝子と組み合わせて導入することが好ましい。好ましくは、検出可能なマーカー遺伝子をレシピエント細胞中で発現させ、検出可能な表現型を生じる。多数の選択可能なマーカーが当業者に周知である。いくつかの例としては、ｈｐｒｔ遺伝子（Ｌｉｔｔｌｅｆｉｅｌｄ， Ｓｃｉｅｎｃｅ １４５：７０９−７１０ （１９６４））、単純ヘルペス・ウイルスのチミジンキナーゼ遺伝子（Ｇｉｐｈａｒｔ−Ｇａｓｓｉｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｍｕｔａｔ， Ｒｅｓ．， ２１４：２２３−２３２ （１９８９））、ｎＤｔＩＩ遺伝子（Ｔｈｏｍａｓ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ ５１：５０３−５１２ （１９８７）； Ｍａｎｓｏｕｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ−３３６：３４８−３５２ （１９８８））が挙げられる。検出可能なマーカー遺伝子は、認識可能な細胞欠損を埋め合わせることができる任意の遺伝子でもありうる。

前駆体多能性細胞、最も好ましくはＥＳ細胞または等価物中に１つ以上の核酸を導入することによって、本発明のトランスジェニック動物細胞を調製する（Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ， Ｃｕｒｒｅｎｔ ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ｐｐ３９−４４， Ｃａｐｅｃｃｈｉ， Ｍ．Ｒ． （ｅｄ．）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， Ｎ．Ｙ． （１９８９））。用語「前駆体（ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ）」では、多能性細胞が、本発明の教示にしたがって調製される所望の（「トランスフェクトされた（ｔｒａｎｓｆｅｃｔｅｄ）」）多能性細胞への前駆体であることのみを表すことが意図される。キメラまたはトランスジェニック動物を形成することが当該技術分野で公知の方法（Ｅｖａｎｓ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ２９２：１５４−１５６ （１９８１））で、多能性（前駆体またはトランスフェくトされた）細胞を生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）で培養することが可能である。トランスフェクトされた細胞およびメスの子宮への導入の際に形成された胚の細胞は、本明細書で、それぞれ本発明の細胞および動物の「胚期（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔａｇｅ）」祖先と呼ばれる。

任意のＥＳ細胞を本発明にしたがって用いることが可能である。しかし、ＥＳ細胞の初代単離物を用いることが好ましい。そのような単離物を、Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ， Ｅ．Ｊ．， Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ｐｐ． ３９−４４， Ｃａｐｅｃｃｈｉ， Ｍ．Ｒ． （ｅｄ．）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， ＮＹ （１９８９）に開示されるＣＣＥ細胞株等の胚から直接、またはＣＣＥ細胞株由来のＥＳ細胞のクローン単離から得ることが可能である（Ｓｃｈｗａｒｔｚｂｅｒｇ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２１２：７９９−８０３ （１９８９））。Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ， Ｔｅｒａｔｏｃａｒｃｉｎｏｍａｓ ａｎｄ Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ： Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ， Ｅ．Ｊ． Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ， Ｅｄ．， ＩＲＬ Ｐｒｅｓｓ， Ｏｘｆｏｒｄ （１９８７）の方法にしたがって、そのようなクローン単離を達成することが可能である。そのようなクローン増殖の目的は、動物に分化するより高い効率性を持つＥＳ細胞を得ることである。クローン的に選択されたＥＳ細胞は、トランスジェニック・マウスを生成する上で、前駆体細胞株ＣＣＥより約１０倍効果的である。胚にクローン的に由来するＥＳ細胞株の例には、ＥＳ細胞株ＡＢ１（ｈｐｒｔ＋）またはＡＢ２．１（ｈｐｒｔ−）がある。

ＥＳ細胞株は、げっ歯類動物、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、魚類、ブタ、ウシ、および霊長目動物等の任意の哺乳動物から派生または単離されうる。げっ歯類動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター等）に由来する細胞が好ましい。ＥＳ細胞株は、マウスおよびブタに加えて、他の動物に対して派生した（例えば、ＰＣＴ公開第ＷＯ／９０／０３４３２号、ＰＣＴ公開第９４／２６８８４号を参照せよ）。一般的には、これらの細胞株は、分化抑制因子（ＤＩＦ）を含有する培地中で増殖され、自発的分化および有糸分裂能の喪失を予防されなければならない。白血病抑制因子（ＬＩＦ）は、ＤＩＦとして特に有用である。ＥＳ細胞分化の予防に有用な他のＤＩＦとしては、限定はされないが、オンコスタチンＭ（Ｇｅａｒｉｎｇ ａｎｄ Ｂｒｕｃｅ， Ｔｈｅ Ｎｅｗ Ｂｉｏｌｏｇｉｓｔ ４：６１−６５ （１９９２））、可溶性ＩＬ−６受容体（ｓＩＬ−６Ｒ）とともにインターロイキン６（ＩＬ−６）（Ｔａｇａ ｅｔ ａｌ．， Ｃｅｌｌ ５８：５７３−５８１ （１９８９））、および毛様体神経栄養因子（ＣＮＴＦ）（Ｃｏｎｏｖｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ １９：５５９−５６５ （１９９３））が挙げられる。他の既知のサイトカインも、単独または他のＤＩＦとの組み合わせで適当なＤＩＦとして機能することが可能である。

（Ｃ．体細胞核移植を介したトランスジェニック動物の生成）
この発明のトランスジェニック動物の生成は、これらの動物が体細胞核移植方法を用いて産生されうるためにＥＳ細胞の利用可能性に依存しない。例えば、ネイティブなＶ_Ｌ遺伝子がタンパク質分解軽鎖のヒトＶ_Ｌ遺伝子（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）によって置換される種から、体細胞を得ることができる。初めに、該細胞を、外来性Ｖ_Ｌ遺伝子の位置にヒトＶ_Ｌ遺伝子を導入する（例えば、異種組換えを介して）コンストラクトでトランスフェクトする。触媒軽鎖に対して新たに導入されたヒトＶ_Ｌ遺伝子を保有する細胞を上述のように選択する。その後、そのような形質転換された細胞の核を未受精除核卵に入れる（例えば、顕微手術によって天然の核が除去された卵）。移植が完成すると、レシピエント卵は、精子によって受精された場合、該レシピエント卵がちょうど含有するであろうとおりの完全なセットの遺伝子を含有する。その後、産み月まで卵を育てる宿主細胞（卵を提供したの同じ主の宿主細胞）へ着床される前の期間の間、該卵を培養し、最終的には、１つ以上の置換Ｖ_Ｌ遺伝子を含有する核酸コンストラクトを含むトランスジェニック動物の誕生となる。

培養体細胞の核移植後の発生可能なクローン化哺乳動物の生成については、多種多様な種で報告されており、そのような種としては、限定はされないが、仔ウシ（Ｋａｔｏ ｅｔ ａｌ．， Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６２：２０９５−２０９８ （１９９８））、ヒツジ（Ｃａｍｐｂｅｌｌ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ ３８０：６４−６６ （１９９６））、マウス（Ｗａｋａｙａｍａ ａｎｄ Ｙａｎａｇｉｍａｃｈｉ， Ｎａｔ． Ｇｅｎｅｔ． ２２：１２７−１２８ （１９９９））、ヤギ（Ｂａｇｕｉｓｉ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． １７：４５６−４６１ （１９９９））、サル（Ｍｅｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｌ． Ｒｅｐｒｏｄ． ５７：４５４−４５９ （１９９７））、およびブタ（Ｂｉｓｈｏｐ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． １８：１０５５−１０５９ （２０００））が挙げられる。核移植方法は、トランスジェニック動物のクローンを生成するためにも用いられている。したがって、例えば、体細胞核移植による、ヒト・アンチトロンビンＩＩＩ遺伝子を保持するトランスジェニック・ヤギの生成が報告されている（Ｂａｇｕｉｓｉ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｉｅｃｈｎｏｌ． １７：４５６−４６１ （１９９９））。

これらの参考文献および他の参考文献に記載されるような核移植方法を用いて、分化胎児または成体の哺乳動物細胞由来の細胞核を、ドナー核と同じ種の除核哺乳動物卵母細胞に移植する。核を再設定して、クローン化胚の発生を導き、該クローン化胚を、その後、レシピエント・メスに移植して胎児および子孫を生成することができるか、または該クローン胚を用いて、培養内部細胞塊（ＣＩＣＭ）細胞を生成することができる。クローン化胚を、受精胚と組み合わせて、キメラ胚、胎児、および／または子孫を生成することもできる。

体細胞核移植は、クローン的増殖させることができる分化細胞源と連携することによってトランスジェニック手順を簡略化することも可能である。これによって、未分化状態で細胞を維持する必要がなくなるので、遺伝子修飾、すなわち、ランダムな組み込みおよび遺伝子ターゲティング両方がより容易に達成される。生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）でこれらの細胞を修飾および選択する能力と核移植を組み合わせることによっても、この手順は、先行トランスジェニック胚技術より効率的である。

核移植技術（ｎｕｃｌｅａｒ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅまたはｎｕｃｌｅａｒ ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ）は文献で既知である。特に、Ｃａｍｐｂｅｌｌ ｅｔ ａｌ．， Ｔｈｅｒｉｏｇｅｎｏｌｏｇｙ ４３：１８１ （１９９５）； Ｃｏｌｌａｓ ｅｔ ａｌ．， Ｍｏｌ Ｒｅｐｏｒｔ Ｄｅｖ． ３８：２６４−２６７ （１９９４）； Ｋｅｅｆｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｌ． Ｒｅｐｒｏｄ． ５０：９３５−９３９ （１９９４）； Ｓｉｍｓ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． ＵＳＡ ９０：６１４３−６１４７ （１９９３）； ＷＯ ９４／２６８８４； ＷＯ ９４／２４２７４， ＷＯ ９０／０３４３２、米国特許第５，９４５，５７７号、第４，９４４，３８４号、および第５，０５７，４２０号を参照せよ。

分化哺乳動物細胞は、初期胚期を過ぎた細胞である。より詳しくは、分化細胞は、少なくとも胚盤期を過ぎたものである。分化細胞は、外胚葉、中胚葉、または内胚葉に由来してもよい。

本発明で有用な哺乳動物細胞を、周知の方法によって得ることが可能である。該哺乳動物細胞の例としては、上皮細胞、神経細胞、表皮細胞、角化細胞、造血細胞、メラニン形成細胞、軟骨細胞、リンパ球（Ｂリンパ球およびＴリンパ球）、赤血球、マクロファージ、単球、単核球、線維芽細胞、心筋細胞、および他の筋細胞等が挙げられる。さらに、核移植のために用いられる哺乳動物細胞を、異なる器官、例えば、皮膚、肺、脾臓、肝臓、胃、腸、心臓、生殖器、膀胱、腎臓、尿道、および他の泌尿器から得ることが可能である。適当なドナー細胞、すなわち、本発明の被験体に有用な細胞を、全ての体細胞および生殖細胞を含む全身の任意の細胞または器官から得ることが可能である。

線維芽細胞は、発生中の胎児および成体動物から大量に得ることができるので、理想的な細胞型である。線維芽細胞はいくぶん分化されるので、以前はクローニング手順で用いるには不十分な細胞型であるとみなされていた。特に、これらの細胞は、急速な倍加時間で、生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で容易に増殖されえ、遺伝子ターゲティング手順で用いるためにクローン的に増殖されうる。

体細胞中の触媒軽鎖由来のヒトＶ_Ｌ遺伝子（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）での外来性Ｖ_Ｌ遺伝子の置換後に、該細胞の核を哺乳動物卵母細胞（例えば、ヒツジ、ウシ、ブタ、ウマ、ウサギ、モルモット、マウス、ハムスター、ラット、または任意の非ヒト霊長目動物由来の卵母細胞）に移植する。卵母細胞単離方法は当該技術分野で公知である。

一般的に、卵母細胞を、核移植用のレシピエント細胞として用いる前に生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）で成熟させる。このプロセスは、一般的に、哺乳動物卵巣、例えばマウス卵巣から未成熟（前期Ｉ）卵母細胞を回収して、卵母細胞が中期ＩＩ期に達するまで成熟培地中で卵母細胞を成熟させることを含む。この器官は、「成熟期（ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ ｐｅｒｉｏｄ）」として知られる。様々な種類の成熟培地が当業者に既知である。さらに、生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）で成熟させた中期ＩＩの卵母細胞も、核移植手順での使用が成功している。

成熟期の後に、卵母細胞を除核する。除核は、米国特許第４，９９４，３８４号に記載されるもの等の既知の方法によっておこなうことが可能である。顕微手術を介して、例えば、マイクロピペットを用いて極体および隣接する細胞質を除去することによって除核を達成することもできる。その後、卵母細胞をスクリーニングして、除核が成功しているものを同定することができる。核酸を染色する種々の色素で卵母細胞を染色することによって、スクリーニングを実行することができ、そのような色素の一例には、３３３４２ヘキスト色素がある。

その後、除核された卵母細胞と同じ種の単一哺乳動物細胞を用いて、当該技術分野で公知の方法にしたがって核移植（ＮＴ）ユニットを生成する。例えば、米国特許第４，９９７，３８４号に開示されるように、電気融合によって細胞を融合することができる。センダイ・ウイルスを融合誘導因子として用いて、融合を達成することもできる（Ｇｒａｈａｍ， Ｉｎｏｔ． Ｓｙｍｐ． Ｍｏｎｏｇｒ． ９：１９ （１９６９））。いくつかの場合では、特にドナー核が小さい場合、卵母細胞に核を直接注入することが好ましい。例えば、Ｃｏｌｌａｓ ａｎｄ Ｂａｒｎｅｓ， Ｍｏｌ Ｒｅｐｒｏｄ． Ｄｅｖ． ３８：２６４−２６７ （１９９４）を参照せよ。

融合後すぐに、得られる融合ＮＴユニットを種々の既知の方法によって活性化する。そのような方法は、例えば、基本的に低温度を適用することによって生理温度未満で、または実際にはＮＴユニットにショックを起こす低温度で、ＮＴユニットを培養することを含む。電気ショックおよび化学的ショック等の既知の活性化方法によって、活性を達成することも可能である。適当な卵母細胞活性化方法は、米国特許第５，４９６，７２０号の主題である。

その後、活性化されたＮＴユニットを、適当な生体外（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）培地中で、ＣＩＣＭ細胞および細胞コロニーの生成まで培養することができる。胚の培養および成熟に適する培地は、当該技術分野で公知である。例えば、米国特許第５，０９６，８２２号は、そのような維持培地について記載している。

その後、培養したＮＴユニットまたはユニット群を好適に洗浄した後、適当なコンフルエントなフィーダー層上の適当な倍地中に入れる。適当なフィーダー層の例としては、線維芽細胞および上皮細胞、例えば、ネズミ科動物（例えば、マウスまたはラット）線維芽細胞由来の線維芽細胞および子宮上皮細胞が挙げられる。ＮＴユニットが、レシピエント・メスへの移植に適した大きさに達するまでか、またはＣＩＣＭ細胞または細胞コロニーを生成するために用いることが可能な細胞を得るのに適した大きさに達するまで、ＮＴユニットをフィーダー層上で培養する。

胚移植と、体細胞核移植のためのレシピエント動物管理とのための方法は、当業者に用いられる標準的な手順である。概説については、Ｓｉｅｄｅｌ， Ｇ． Ｅ．， Ｊｒ．， ”Ｃｒｉｔｉｃａｌ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｅｍｂｒｙｏ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ ｗｉｔｈ ｃａｔｔｌｅ”， Ｆｅｒｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ Ｖｉｔｒｏ， ｐａｇｅ ３２３， Ｌ． Ｍａｓｔｒｏｉａｎｎｉ， Ｊｒ． ａｎｄ Ｊ． Ｄ． Ｂｉｇｇｅｒｓ， ｅｄ．， Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ， Ｎ．Ｙ． （１９８１）を参照せよ。

ヒト自己免疫疾患が、加水分解抗体の生成に素因を与えることが知られている。さらに、血友病Ａ患者は、第ＶＩＩＩ因子に対する阻害剤を産生し、該阻害剤のうちのいくつかは、代償療法中に第ＶＩＩＩ因子を切断するタンパク質分解酵素であることが判明している（Ｌａｃｒｏｉｘ−Ｄｅｓｍａｚｅｓ ｅｔ ａｌ， Ｎ． Ｅｎｇｌ． Ｊ． Ｍｅｄ．， ３４６： ６６２−６６７ （２００２））。これらの患者中での血友病の経過に対するこれらのタンパク質分解抗体の劇的な臨床効果は、標的タンパク質に特異的な外来性に提供されるタンパク質分解抗体が、原因に決定的な標的タンパク質を触媒的に除去することによって複数の他の疾患の経過にポジティブに影響することができることを示唆する。そのような触媒活性の遺伝的基礎を理解し利用することができれば、治療的使用のための該タンパク質分解抗体の生成が強化されるだろう。しかし、これらのヒト・タンパク質分解抗体の遺伝的基礎は、未だ明らかになってはいない。マウス中のタンパク質分解抗体に関する最近の研究では、血管作用性腸ポリペプチド（ＶＩＰ）に対して産生される抗体中のタンパク質分解軽鎖が定められた。マウス・タンパク質分解酵素に対する遺伝的基礎は、ヒト・タンパク質分解抗体を機能させることが可能な考えられる機構への洞察を与える。

（Ｖ_Ｌ配列の同定）
マウス抗ＶＩＰタンパク質分解軽鎖をコードするＶ領域の配列は、Ｖ領域のカッパＩＩファミリーに属する。さらに、他のエステル分解抗体は、カッパＩＩファミリーを利用するための偏向を共有しており、このファミリーが触媒に重要なドメインを含有することが示唆される。タンパク質分解抗体に対するヒト遺伝的基礎を決定するため、かつ発生中のヒト治療タンパク質分解抗体の使用を活用するために、ヒト・カッパ・レパートリーを、推定セリンプロテアーゼ三つ組を含有する遺伝子に関して分析した。複数の遺伝子が同定されており、図３に示した。これらの遺伝子は、Ａ３０、Ｌ１４、Ａ１７、Ａ１、Ａ１８ｂ、Ａ２、Ａ１９、Ａ３、Ａ２３、Ｌ２０、Ｂ２、Ａ２６、Ａ１０、およびＡ１４を含む。

（Ｖ_Ｌ遺伝子のクローニング）
これらの潜在的な触媒可変領域をコードする遺伝子をクローン化するために、ＰＣＲプライマーを設計して、リーダー領域およびイントロンの５′末端および３′組換えシグナル配列にハイブリダイズさせた。以降のクローニング・工程のために、簡便な制限部位を各プライマーの５′末端に付加した。ヒト・ゲノムＤＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ， Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ， ＣＡ）１００ｎｇを用いて、ＰＣＲを実行した。試料を５分間９４℃まで加熱してｐｆｕポリメラーゼ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ， Ｌａ Ｊｏｌｌａ， ＣＡ）１μｌを添加した後に、さらに５分間９４℃おこなうことによって、５０μｌの反応を開始した。３０秒間５６℃でのアニーリング、３０秒間７０℃での伸張、および２０秒間９４℃での変性の４０サイクルのＰＣＲを実行した。最終的な伸張を５分間７０℃でおこなった。１．５％アガロース・ゲルは、ＰＣＲ反応１０μｌを分解し、形成された産物は、予測サイズ３００ｂｐ近くに泳動すると見られた。オーバーラップ伸張方法を用いて、Ｖ領域を、Ｖ領域用の５′プライマーと、Ｊカッパ１の全てを包括する３′プライマーと、ＶおよびＪ領域にオーバーラップする「架橋（ｂｒｉｄｇｉｎｇ）」プライマーとを用いてイン・フレームでヒトＪカッパ１に融合した。上記のサイクル条件にしたがってＰＣＲをおこなった。Ｖ−Ｊハイブリッドの構築の成功を、１．５％アガロース・ゲル上に１５０ｂｐ ＰＣＲ産物を分解することによって、かつＤＮＡシーケンシングによって確認した。

（触媒機能の分析）
ヒト軽鎖の触媒機能を決定するために、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、および２７をそれぞれ、ヒトＣ_Ｌをコードする配列、例えばカッパＣ_Ｌ遺伝子に融合し、その後、ＣＭＶプロモーターおよびＶＨ４リーダー配列を含有する発現ベクター中にクローン化し、ＮＳ０またはＳＰ２／０等の非分泌骨髄腫細胞株にトランスフェクトする。トランスフェクタント由来の上清を除去して、ペプチド−ＭＣＡ基質（Ｓｉｇｍａ， Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）に対するタンパク質分解活性に関して解析する。ペプチド−ＭＣＡの様々な濃度で、白色９６穴プレート中５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１００ｍＭグリシン、および０．０２５％Ｔｗｅｅｎ ２０（ｐＨ７．７）の６０μｌ中で上清をインキュベートする。トランスフェクトされていない細胞由来の上清も解析して、バックグラウンドとして用いる。異なるウェル中同量で測定されたアミノメチルクマリンの異なる濃度の同時分析によって決定される濃度で、アミノメチルクマリン脱離基の蛍光（励起３７０ｎｍ、発光４６０ｎｍ）として、ペプチド−ＭＣＡ基質の加水分解を決定する。Ａ１８ｂおよびＡ２ｃの精製および触媒アッセイの結果を図４に示す。

プロテアーゼ阻害剤プローブに結合するＡ１８ｂおよびＡ２ｃの能力についてもおこなった。Ａ１８ｂおよびＡ２ｃを、Ｃ末端６−ヒスチジン・タグに融合した大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ペリプラズム中で発現させた。固定化ニッケル・アフィニティ・カラム上で、製造元の指示（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ， Ｃａｒｌｓｂａｄ， ＣＡ）にしたがい抗体を精製した。ビオチン標識フルオロホスホン酸プローブ（１０μＭ）を、抗体軽鎖１００ｎｇに５分間室温で添加し、その後、２ｘＳＤＳ−ＰＡＧＥローディング・バッファーでクエンチングして、３分間９４℃まで過熱した。混合物を１５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で泳動させ、ナイロン・メンブレンに移し、３％ウシ血清アルブミンで４５分間ブロッキングし、ストレプトアビジン共役アルカリホスファターゼと１時間インキュベートさせた。このメンブレンをＮＢＴ／ＢＣＩＰ試薬で現像した。共有結合抗体の同定を図５に示した。

（異種重鎖の作用性結合）
次のように、標準的なファージ提示プロトコールを用いて抗ＴＮＦα結合ｓｃＦｖを同定した。すなわち、ｓｃＦｖファージ・ライブラリー（複雑性４ｘ１０^１０）由来の１ｘ１０^１１までのファージを、ＰＢＳ中で２ラウンド、ＴＮＦα １μｇ／ウェルに対してパンニングした後、低下させた抗原濃度（ＴＮＦα ０．１μ／ウェル）を用いて第３のラウンドをおこなった。以降のパンニングのそれぞれで洗浄ストリンジェンシーを増して、最終的なパンニング条件では、０．５％Ｔｗｅｅｎ２０／ＴＢＳで２０回の洗浄である。２ないし１０倍過剰のＴＮＦα（１０ないし２０μｇ／ｍｌ）を用いた溶出によって、抗原特異的ファージを全てのパンニングから回収した。１６時間後にＴＮＦαで溶出しなかったファージを、１００ｍＭグリシン（ｐＨ２．２）でウェルを７分間処理することによって回収し、保存および滴定前に１／１０量の１．５Ｍ Ｔｒｉｓ−Ｃｌ（ｐＨ８．５）で中和した。さらなるパンニング・ラウンドのための高力価ファージ・ストックの増幅および生成の前に、各パンニングに対して回収されたファージの数を滴定によってアッセイした。新たに作製したファージ調製物のみを用いて、パンニングをおこなった。結合特異性に対する負の対照群はインターフェロン−γを含み、これらの対照群と各回で溶出したファージを用いたファージＥＬＩＳＡを図７に示す。その後、標準的なＰＣＲ反応（上述）を用いて重鎖を重複し、図６に示される発現ベクターに挿入し、それによって、抗ＴＮＦα重鎖を持つ触媒トリアドを含有するＶ_Ｌを実行可能に結合させた。

ＶＥＧＦ等の所定の抗原に特異的なタンパク質分解抗体を真核細胞中で生成するためには、Ｃ_Ｌ遺伝子に融合させた上記でクローン化した軽鎖遺伝子（例えば、配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７）を、抗ＶＥＧＦ抗体重鎖をコードする重鎖遺伝子とともに、非分泌骨髄腫細胞ＮＳ０に共トランスフェクトする。トランスフェクタント由来のＩｇＧを含有する上清をプロテインＡセファロース・カラム上で精製して、溶出させる。特異的なタンパク質分解活性を、ＨＰＬＣを用いて組換え型ヒトＶＥＧＦ（例えば、Ａｂｃａｍ， Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ， Ｕｎｉｔｅｄ ＫｉｎｇｄｏｍまたはＰａｎＶｅｒａ， Ｍａｄｉｓｏｎ， ＷＩより市販）に対して分析する。ＨＰＬＣカラム上の異なる加水分解産物の異なる保持時間を表す複数のピークによってＶＥＧＦの切断を証明する。ＶＥＧＦに対する特性は、ＶＥＧＦが関連のないタンパク質（例えば、ＢＳＡまたはリゾチーム）で置換される同一の反応である負の対照群中にそのような複数のピークがないことによって示される。

【配列表】
（Ａ．タンパク質分解Ｖ領域のヌクレオチド配列）

図１は、本発明で具現化された組換え触媒ポリペプチドの一例を示す。完全な抗体分子の典型的な特徴が図示されており、重鎖可変領域（Ｖ_Ｈ）、３つの重鎖定常領域（ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３）、軽鎖可変領域（Ｖ_Ｌ）、および軽鎖定常領域（Ｃ_Ｌ）を有する。上記可変領域の複数の相補性決定領域（ＣＤＲ）も図示してあり、軽鎖のＣＤＲにはセリンプロテアーゼ二つ組が含まれる。 図２は、組換え型触媒軽鎖のＶ領域をコードするクローン化遺伝子のアガロース・ゲルを示す。上側のパネルでは、Ａ１７Ｖ領域をフランキングするＤＮＡ配列に特異的なプライマーを用いて、ヒト・ゲノムＤＮＡ（「Ａ１７」と標識したレーン）からＡ１７ＤＮＡが増幅されている。３通りのＰＣＲ反応では、Ｊカッパ１ミニ遺伝子がＡ１７に融合されている（「Ａ１７−ＪＫ１」と標識）。典型的なＪ領域の大きさが約５０塩基対である。１００塩基対ラダー（ｌａｄｄｅｒ）が右側に示されている。下側のパネルは、Ａｌ１８Ｖ領域（「Ａ１８ｂ」と標識）をフランキングするプライマーを用いるＰＣＲ反応を示す。 図３は、ヒト・カッパ軽鎖レパートリーのアミノ酸配列を示す。セリンプロテアーゼ三つ組を含むこれらの配列は、星印で示されている。上記トリアドのアスパラギン酸またはグルタミン酸成分は、下線が引かれており、かつ太字になっている。セリンとなりうる成分に下線が引かれており、またヒスチジン成分は黒で強調表示されている。位置番号１は、抗原結合部位に構造的に入っていることから、ＣＤＲと考えられる。 図４は、生殖細胞系軽鎖の精製および活性を示す。左側：ニッケル樹脂（ＰｒｏＢｏｎｄ， Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）からなる２本の連続カラムを用いて、生殖細胞系軽鎖Ａｌ８ｂおよびＡ２ｃを大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）のペリプラズムから精製した。銀染色ゲルは、各タンパク質に対して１０ｍＭ分画、２０ｍＭ分画、および３つの３００ｍＭ分画を含んだ最終イミダゾール溶出分画を示す。右側： 三番目の３００ｍＭ分画（４００μｌ）を３Ｌの２０ｍＭＴｒｉｓバッファーに対して透析し、次に３７℃で４００ｍＭのＰＦＲ−ＭＣＡ基質によりインキュベートした。蛍光の定量を３７０／４６５ｎｍで２４時間後におこなった。星印は、アッセイ前のタンパク質熱失活を示す。 図５は、プロテアーゼ・トリアド結合プローブを用いたタンパク質分解軽鎖の同定を示す。タンパク質Ａ１８ｂおよびＡ２ｃ、ならびに制御因子Ｘａをフルオロホスホン酸塩プローブとインキュベート（各群の中間レーン）、または該プローブとのインキュベーションに先立って熱変性（各群の三番目のレーン）させ、１５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で泳動させ、ナイロン・メンブレンに移し、さらに１時間にわたってストレプトアビジン共役アルカリホスファターゼとインキュベートさせる。このメンブレンをＮＢＴ／ＢＣＩＰ試薬で現像した。 図６は、タンパク質分解抗体ライブラリー生成のためのファージ提示ベクターを示す。関連した特徴が示されており、該特徴としてシグナル・ペプチド（ＳＰ）と、触媒トリアドおよびランダム化されたＣＤＲ位置（灰色）を有する不変の軽鎖と、フレキシブルなリンカーと、６ヒスチジン・リンカー（６ｘＨＩＳ）を介して糸状バクテリオファージの遺伝子ＩＩＩに融合している重鎖のライブラリーとが含まれる。ベクターもまた、サプレッサー大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）株の遺伝子ＩＩＩと融合することなくｓｃＦｖｎｏ発現を可能とする遺伝子ＩＩＩと６ｘＨＩＳとのあいだにアンバー停止コドンを有する。重鎖または新規の不変軽鎖が容易にライブラリーに挿入しうるように、便利な制限部位が存在する。 図７は、パンニングによって抗ＴＮＦファージが濃縮されたファージＥＬＩＳＡを示す。ＴＮＦαに対するパンニングを複数回行うことで得たファージ・プールを０．５μｇ／ウエルでＴＮＦαまたはインターフェロンγ（負の対照群抗原）に対する結合について試験した。線状ファージ （ｆｄｌ） 主外殻タンパク質に対するＨＲＰ共役ｍＡｂ（Ａｍｅｒｓｈａｍ）によって、結合ファージを検出した。負の対照群ＩＦＮγと比べて引き続いて行われる各々のパンニングによって、各々のパンニングの複雑さが予想通り減少したにもかかわらず、ＴＮＦα結合ファージの比率が増加した。

Claims (80)

1. 標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチドであって、異種抗体重鎖に実行可能に結合しているヒト抗体軽鎖を含み、ここで、該軽鎖がセリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有し、該重鎖が該標的タンパク質に対して所定の特異性を有する、組換え触媒ポリペプチド。
2. 前記標的タンパク質が成長因子、細胞表面受容体、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群より選択される、請求項１に記載の組換え触媒ポリペプチド。
3. 前記標的タンパク質が血管内皮増殖因子である、請求項２に記載の組換え触媒ポリペプチド。
4. 前記標的タンパク質がインターフェロンγである、請求項２に記載の組換え触媒ポリペプチド。
5. 前記標的タンパク質がＴＮＦαである、請求項２に記載の組換え触媒ポリペプチド。
6. 前記標的タンパク質がＩｇＥファミリーのメンバーである、請求項２に記載の組換え触媒ポリペプチド。
7. 前記標的タンパク質がＥＧＦ受容体ファミリーのメンバーである、請求項２に記載の組換え触媒ポリペプチド。
8. 前記標的タンパク質がＣＤ２０である、請求項２に記載の組換え触媒ポリペプチド。
9. 前記ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項１に記載の組換え触媒ポリペプチド。
10. 前記組換え触媒ポリペプチドが、前記ヒト抗体軽鎖および前記抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である、請求項１に記載の組換え触媒ポリペプチド。
11. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の組換え触媒ポリペプチド。
12. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の組換え触媒ポリペプチド。
13. 前記ヒト抗体軽鎖が配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の組換え触媒ポリペプチド。
14. 標的タンパク質を切断するための方法であって、該方法は、
    標的タンパク質を、実行可能に異種抗体重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含む組換え触媒ポリペプチドと接触させる工程を包含し、ここで、該軽鎖がセリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有し、該重鎖が該標的タンパク質に対して所定の特性を有し、該接触の条件が該標的タンパク質を切断するのに適している、方法。
15. 前記標的タンパク質が成長因子、細胞表面受容体、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群より選択される、請求項１４に記載の方法。
16. 前記ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項１４に記載の方法。
17. 前記組換え触媒ポリペプチドが、前記ヒト抗体軽鎖および前記抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である、請求項１４に記載の方法。
18. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項１４に記載の方法。
19. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項１４に記載の方法。
20. 前記ヒト抗体軽鎖が配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項１４に記載の方法。
21. 標的タンパク質を切断する組換え触媒ポリペプチドの酵素活性を変えるための方法であって、該方法は、抗体重鎖の少なくとも１つのＣＤＲを突然変異させる工程および、該ポリペプチドの酵素活性が変化した突然変異体を決定する工程を包含し、ここで、該組換え触媒ポリペプチドは、実行可能に異種抗体重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含み、該軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有し、該重鎖は、該標的タンパク質に対して所定の特異性を有する、方法。
22. エクソヌクレアーゼが前記抗体重鎖のＣＤＲの少なくとも１つを突然変異させる工程で使用される、請求項２１に記載の方法。
23. 前記標的タンパク質が成長因子、細胞表面受容体、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群より選択される、請求項２１に記載の方法。
24. 前記ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項２１に記載の方法。
25. 前記組換え触媒ポリペプチドが、前記ヒト抗体軽鎖および前記抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である、請求項２１に記載の方法。
26. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項２１に記載の方法。
27. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項２１に記載の方法。
28. 前記ヒト抗体軽鎖が配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項２１に記載の方法。
29. 標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチドメンバーのライブラリーであって、該ライブラリーのメンバーは、組換え触媒ポリペプチドを含み、該メンバーのそれぞれは、実行可能に異種抗体重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含み、ここで、該軽鎖がセリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有し、該重鎖が該標的タンパク質に対して特異性を有し、そして、該メンバーがそれぞれの重鎖において異なるＣＤＲを有する、ライブラリー。
30. 前記標的タンパク質が成長因子、細胞表面受容体、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群より選択される、請求項２９に記載のライブラリー。
31. 前記ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項２９に記載のライブラリー。
32. 前記組換え触媒ポリペプチドが、前記ヒト抗体軽鎖および前記抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である、請求項２９に記載のライブラリー。
33. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項２９に記載のライブラリー。
34. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項２９に記載のライブラリー。
35. 前記ヒト抗体軽鎖が配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項２９に記載のライブラリー。
36. ファージ提示ライブラリーである、請求項２９に記載のライブラリー。
37. リボソーム提示ライブラリーである、請求項２９に記載のライブラリー。
38. ｍＲＮＡ提示ライブラリーである、請求項２９に記載のライブラリー。
39. 異種抗体重鎖に実行可能に結合しているヒト抗体軽鎖を含む組換え触媒ポリペプチドの投与によって、哺乳動物内で標的タンパク質を切断するための方法であって、ここで、該軽鎖は、セリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプトダーゼ活性を有し、重鎖は、該標的タンパク質に対して所定の特異性を有し、該組換え触媒ポリペプチドが該哺乳動物中の該標的タンパク質の濃度を低下させるのに十分な量で投与される、方法。
40. 前記標的タンパク質が成長因子、細胞表面受容体、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群より選択される、請求項３９に記載の方法。
41. 前記ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項３９に記載の方法。
42. 前記組換え触媒ポリペプチドが、前記ヒト抗体軽鎖および前記抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である、請求項３９に記載の方法。
43. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項３９に記載の方法。
44. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項３９に記載の方法。
45. 前記ヒト抗体軽鎖が配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項３９に記載の方法。
46. 標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸であって、実行可能に異種抗体重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含み、該軽鎖がセリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有し、重鎖は、該標的タンパク質に対して所定の特異性を有する、核酸。
47. 前記標的タンパク質が成長因子、細胞表面受容体、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群より選択される、請求項４６に記載の核酸。
48. 前記ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項４６に記載の核酸。
49. 前記組換え触媒ポリペプチドが、前記ヒト抗体軽鎖および前記抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である、請求項４６に記載の核酸。
50. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項４６に記載の核酸。
51. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項４６に記載の核酸。
52. 前記ヒト抗体軽鎖が配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項４６に記載の核酸。
53. 標的タンパク質を切断するための組換え触媒ポリペプチドをコードする核酸の宿主である細胞であって、実行可能に異種抗体重鎖に結合しているヒト抗体軽鎖を含み、該軽鎖がセリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有し、該重鎖が該標的タンパク質に対して所定の特異性を有する、細胞。
54. 前記標的タンパク質が成長因子、細胞表面受容体、サイトカイン、および免疫グロブリンからなる群より選択される、請求項５３に記載の細胞。
55. 前記ヒト抗体軽鎖がセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項５３に記載の細胞。
56. 前記組換え触媒ポリペプチドが、前記ヒト抗体軽鎖および前記抗体重鎖を含む単一のポリペプチド鎖である、請求項５３に記載の細胞。
57. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項５３に記載の細胞。
58. 前記ヒト抗体軽鎖が、配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項５３に記載の細胞。
59. 前記ヒト抗体軽鎖が配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項５３に記載の細胞。
60. セリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有する単離されたポリペプチドであって、該ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、単離されたポリペプチド。
61. 前記ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項６０に記載の単離されたポリペプチド。
62. 前記ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項６０に記載の単離されたポリペプチド。
63. 前記ポリペプチドがセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項６０に記載の単離されたポリペプチド。
64. セリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有するポリペプチドをコードする核酸であって、該ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、核酸。
65. 配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする、請求項６４に記載の核酸。
66. 配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする、請求項６４に記載の核酸。
67. 配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７のヌクレオチド配列を含む、請求項６４に記載の核酸。
68. セリンプロテアーゼ三つ組を有するポリペプチドをコードする、請求項６４に記載の核酸。
69. セリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有するポリペプチドをコードする核酸の宿主である細胞であって、該ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、細胞。
70. 前記ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項６９に記載の細胞。
71. 前記ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項６９に記載の細胞。
72. 前記核酸が配列番号１、３、または５のヌクレオチド配列を含む、請求項６８に記載の細胞。
73. 前記ポリペプチドがセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項６９に記載の細胞。
74. セリンプロテアーゼ二つ組活性およびエンドペプチダーゼ活性を有するＶ_Ｌポリペプチドをコードする核酸を含む導入遺伝子を発現する、トランスジェニック非ヒト哺乳動物。
75. 前記ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項７４に記載の哺乳動物。
76. 前記ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８に対して少なくとも９５％の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項７４に記載の哺乳動物。
77. 前記ポリペプチドが配列番号２、４、６、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、または２８のアミノ酸配列を含む、請求項７４に記載の哺乳動物。
78. 前記核酸が配列番号１、３、５、７、９、１１、１３、１５、１７、１９、２１、２３、２５、または２７のヌクレオチド配列を含む、請求項７４に記載の哺乳動物。
79. 前記ポリペプチドがセリンプロテアーゼ三つ組を有する、請求項７４に記載の哺乳動物。
80. げっ歯類動物である、請求項７４に記載の哺乳動物。

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