JP2006273740A - 抗hmw−maa抗体を結合した磁性微粒子を含むリポソーム - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 抗HMW−MAA抗体を結合した、磁性微粒子を含むリポソーム。
【選択図】 なし
Description
ジェイ・バンダージー(J. Van der Zee)著、アニュアルズ・オブ・オンコロジー(Annals of oncology)、13巻、1173−1184頁、2002年 ピー・モローズら(P. Moroz et al)著、インターナショナル・ジャーナル・オブ・ハイパーサーミア(International journal of hyperthermia)、18巻、267−284頁、2002年 エー・ジョーダンら(A. Jordan et al)著、インターナショナル・ジャーナル・オブ・ハイパーサーミア(International journal of hyperthermia)、9巻、51−68頁、1993年 ティー・ミナミムラら(T. Minamimura)著、アニュアルズ・オブ・オンコロジー(Annals of oncology)、16巻、1153−1158頁、2000年 エム・シンカイら(M. Shinkai et al)著、日本ハイパーサーミア学会誌、10巻、168−177頁、1994年 エム・シンカイら(M. Shinkai et al)著、日本癌学会誌、87巻、1179−1183頁、1996年 エム・ヤナセら(M. Yanase et al)著、日本癌学会誌、88巻、630−632頁、1997年 エム・ヤナセら(M. Yanase et al)著、日本癌学会誌、89巻、463−469頁、1998年 エム・スズキら(M. Suzuki et al)著、メラノーマ・リサーチ(Melanoma Research)、13巻、129−135頁、2003年 エイチ・マツノら(H. Matsuno et al)著、日本ハイパーサーミア学会誌、17巻、141−150頁、2001年 ビー・レら(B. Le et al)著、化学工学会誌、34巻、66−72頁、2001年 エム・シンカイら(M. Shinkai et al)著、日本癌学会誌、92巻、1138−1145頁、2001年 斎田ら編、「悪性黒色腫の診断・治療指針」、影下登志郎著、III 治療−悪性黒色腫治療の新展開、10 液性免疫療法、遺伝子治療、153−157頁、2001年3月、金原出版
(1)抗HMW−MAA抗体を結合した、磁性微粒子を含むリポソーム。
(2)上記(1)に記載のリポソームを含む、医薬組成物。
(3)磁性微粒子を含むリポソームを抗HMW−MAA抗体と接触させることを含む、上記(1)に記載のリポソームを製造するための方法。
HMW−MAAは、分子量280kDのコア蛋白質と440kDのプロテオグリカンの複合体であり、悪性黒色腫(メラノーマ)細胞にほぼ特異的に存在する。
(培養細胞)
MV3ヒトメラノーマ細胞は、10%牛胎児血清および抗生物質(100U/mlペニシリンGおよび0.1mg/mlストレプトマイシン)添加RPMI 1640培地(ギブコBRL製、ゲーサーズバーグ、メリーランド)中で培養した。細胞は、5%CO2を含む雰囲気中、37℃で増殖させた。
(抗体)
抗HMW−MAA抗体として149.53、225.28SおよびVT68.2を、対照としてマウスIgGを用いた。抗HMW−MAA抗体149.53、225.28S、VT68.2は米国Roswell Park Cancer Institute、免疫学教室のSoldano Ferrone主任教授より供与された。抗体の製造方法は以下の如くである。すなわち、Ferrone教授がすでに作製している抗体産生ハイブリドーマ細胞1×10-5−1×10-6個をBalb/cマウスの腹腔内に接種し、腹水を産生させた。得られた腹水を60mMの酢酸緩衝液(pH4.5)で5倍に薄め、その溶液に25μl/mlのカプリル酸をゆっくり加え、IgG以外の蛋白を沈殿させた。10,000G、30分(4℃)で遠沈した後、上清を濾過後、1Mトリス緩衝液(pH10.9−11)でpH7.5に調整し、0.277g/mlの硫酸アンモニウムをゆっくり加え上清中のIgG蛋白を沈殿させた(4℃)。10,000G、30分(4℃)で再び遠沈後、上清を除いた。得られた沈殿物(抗体)をリン酸緩衝液(PBS)で再び溶解し、透析チューブ(M.W.12,000−14,000)に入れ、4℃、6LのPBSの中で24時間透析した。この際、リン酸緩衝液は数回交換し、硫酸アンモニウムがリン酸緩衝液中に検出されないことを確認した。このようにして精製された抗体の濃度を分光光度計にて測定した。マウスIgGは、Chemicon社(米国)製を使用した。
(磁性微粒子を含むリポソーム)
磁性微粒子を含むリポソームとしてのMLは、以下の方法で製造した。
磁性微粒子(10nmマグネタイト:戸田工業株式会社製)を脱イオン水での洗浄を十分に行って余分なイオン成分を取り除き、超音波処理を行うことにより、水に分散するマグネタイト溶液を作製した。ホスファチジルコリン/ホスファチジルエタノールアミン(比、2:1)およびN−(6−マレイミドカプロイルオキシ)−ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミンからなる脂質混合物からナス型フラスコ内壁にリン脂質膜を作成した。このリン脂質膜に上記の方法で作製したマグネタイト溶液を加え、ボルテックス撹拌しながら膜を膨潤させた。膨潤させた膜と磁性微粒子に15分間の超音波処理を施し(28W)、その後10倍濃度の生理食塩水(PBS)200μlを加え、生理食塩水中に分散している状態にした。さらに超音波処理を15分間行い(28W)、マグネタイトリポソーム(ML)を得た。
抗HMW−MAA抗体を結合した、磁性微粒子を含むリポソーム(MML: anti-melanoma magnetoliposome)の製造
上記した3種の抗HMW−MAA抗体のそれぞれをN−スクシンイミジル−3−(2−ピリジルジチオ)プロピオナート(SPDP)によって処理した。それから、SPDP修飾抗体を1,4−ジチオスレイトール(25mM))を用いて還元した。還元した抗体を70μg抗体/mgマグネタイトの濃度でMCLに添加した。続いて、リン酸ナトリウム緩衝液中で4℃で20時間インキュベーションし、MMLを製造した。対照としてのマウスIgGも同様にしてMCLに結合し、マウスIgGを結合した、磁性微粒子を含むリポソームを製造した。
20pgマグネタイト/細胞(0.11μg抗体/ml)の濃度で各MMLを含む実験的培地を用いて、MV3細胞を2×105細胞/ウェルの濃度で6ウェル細胞培養プレートに播種し、往復シェーカー(SHK−320、旭テクノグラス製、70rpm)によって、37℃で穏やかに振盪しながらインキュベーションした。1,3,6又は24時間インキュベーション後に、細胞をPBSで2回洗浄し、ラバーポリスマンを使用して回収し、MV3細胞による磁性微粒子のMML介在取り込みをみるため、マグネタイト濃度を測定した。マウスIgGを結合した、磁性微粒子を含むリポソームもMMLと同様にしてマグネタイト濃度を測定した。
MMLを用いるインビトロの温熱療法実験を行った。方法を概略すると、MV3細胞を、MMLでの処理の前に、サブコンフルエントまで培養した。次に、細胞を、20pgのマグネタイト/細胞(0.11μg抗体/ml)の濃度でMMLを含む実験的培地で培養した。MMLを含む培地での培養開始の4時間後に、細胞をマイクロ遠心チューブに集め、穏やかに遠心分離し、細胞ペレットを形成させた。チューブを、高周波磁場発生器(360kHz、120Oe、第一高周波製)のコイルの中央に配置した。細胞ペレットの温度を光ファイバ・プローブ(安立計器)をその中央に挿入することで測定し、手動で磁場強度を調整することによってペレットを恒温に維持した。交番磁場(AMF)照射時間は、30分であった。AMF照射の間、周囲温度を37℃に維持した。マウスIgGを結合した磁性微粒子を含むリポソームについても同様に処理した。処理した細胞を2×104細胞/ウェルで6ウェル細胞培養プレートに再播種した。生細胞数を、血球計数盤を用いるトリパンブルー排除方法で測定した。
Claims (3)
- 抗HMW−MAA抗体を結合した、磁性微粒子を含むリポソーム。
- 請求項1に記載のリポソームを含む、医薬組成物。
- 磁性微粒子を含むリポソームを抗HMW−MAA抗体と接触させることを含む、請求項1に記載のリポソームを製造するための方法。
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