JP2005328793A

JP2005328793A - 基質特異性に優れたピロロキノリンキノン（ｐｑｑ）依存性グルコースデヒドロゲナーゼ改変体

Info

Publication number: JP2005328793A
Application number: JP2004151905A
Authority: JP
Inventors: Tadayasu Matsumura; 肇庸松村; Takahide Kishimoto; 高英岸本; Masanori Oka; 岡　　正則; Noriaki Hirayama; 令明平山
Original assignee: Toyobo Co Ltd
Current assignee: Toyobo Co Ltd
Priority date: 2004-05-21
Filing date: 2004-05-21
Publication date: 2005-12-02

Abstract

【課題】基質特異性が改善されたピロロキノリンキノン依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＰＱＱＧＤＨ）を提供する。
【解決手段】本発明は、野生型のピロロキノリンキノン依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＰＱＱＧＤＨ）よりも二糖類に対する作用性が低下した改変型ＰＱＱＧＤＨである。

Description

本発明は基質特異性が改良された改変型グルコースデヒドロゲナーゼ（ＧＤＨ）に関し、詳しくはピロロキノリンキノン（ＰＱＱ）を補酵素とする改変型ＰＱＱ依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ピロロキノリンキノン依存性グルコースデヒドロゲナーゼ、以下ＰＱＱＧＤＨとも略記する。）、その製造法及びグルコースセンサーに関する。
本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、臨床検査や食品分析などにおけるグルコースの定量に有用である。

ＰＱＱＧＤＨは、ピロロキノリンキノン（ＰＱＱ）を補酵素とするグルコースデヒドロゲナーゼである。グルコースを酸化してグルコノラクトンを生成する反応を触媒することから、血糖の測定に用いることが可能である。血中グルコース濃度は、糖尿病の重要なマーカーとして臨床診断上きわめて重要な指標である。現在、血中グルコース濃度の測定は、グルコースオキシダーゼを使用したバイオセンサーを用いる方法が主流となっているが、反応が溶存酸素濃度に影響されるから、測定値に誤差が生じる可能性があった。このグルコースオキシダーゼにかわる新たな酵素としてＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素が注目されている。

我々のグループは、アシネトバクター・バウマンニ（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｂａｕｍａｎｎｉｉ）ＮＣＩＭＢ１１５１７株が、ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素を産生することを見出し，遺伝子のクローニングならびに高発現系を構築した（たとえば、特許文献１を参照）。しかしながら、ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素はグルコースオキシダーゼに比べて基質特異性に問題点があった。
特開平１１−２４３９４９号公報

本発明は、従来技術の課題を背景になされたもので、ＰＱＱＧＤＨの基質特異性の向上を課題としてその改良に関するものである。

本発明者らは上記課題を解決するため、鋭意研究した結果、ＰＱＱＧＤＨの特定の領域においてアミノ酸変異を導入することにより基質特異性を向上させることを可能にし、本発明を完成するに到った。
即ち本発明は、
項１．
ピロロキノリンキノン依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＰＱＱＧＤＨ）において、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列における７４位、１４６位、１６８位、１６９位、１７０位、２４５位及び３４２位の少なくとも１つの位置、または、他の種における上記と同等の位置においてアミノ酸置換を有する、野生型のＰＱＱＧＤＨよりも二糖類に対する作用性が低下した改変型ＰＱＱＧＤＨ。
項２．
アミノ酸置換が、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列におけるＤ７４Ｖ、Ｓ１４６Ａ、Ｑ１６８Ａ、Ｌ１６９Ｐ、Ａ１７０Ｌ、Ａ１７０Ｍ、Ａ１７０Ｉ、Ａ１７０Ｆ、Ｅ２４５Ｄ、Ｍ３４２Ｉ、Ｍ３４２Ｖ、Ｍ３４２Ｐ、Ｍ３４２Ａ、からなる群のうち少なくとも１つの位置、または、他の種における上記と同等の位置においてアミノ酸置換を有する、項１に記載の改変型ＰＱＱＧＤＨ
項３．
アミノ酸置換が、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列における（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｓ１４６Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）うちいずれか、または、他の種における上記と同等の位置におけるアミノ酸置換のうちいずれかである、項１に記載の改変型ＰＱＱＧＤＨ
項４．
二糖類がマルトースである、項１〜３のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨ。
項５．
項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨをコードする遺伝子。
項６．
項５に記載の遺伝子を含むベクター。
項７．
項６に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
項８．
項７に記載の形質転換体を培養することを特徴とする改変型ＰＱＱＧＤＨの製造法。
項９．
項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨを含むグルコースアッセイキット。
項１０．
項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨを含むグルコースセンサー。
項１１．
項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨを含むグルコース測定方法。
である。

本発明による改変型ＰＱＱＧＤＨは野生型ＰＱＱＧＤＨよりも二糖類に対する作用性が低下した酵素である。本発明による改変型ＰＱＱＧＤＨをグルコースアッセイキット及びグルコースセンサに使用することにより、野生型ＰＱＱＧＤＨを使用したものよりもより高精度な分析が可能となったり、より安定性の高いグルコースアッセイキット及びグルコースセンサを提供することができる。

以下、本発明を詳細に説明する。

本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、野生型ＰＱＱＧＤＨよりも二糖類に対する作用性が低下したものである。

二糖類に対する作用性とは、二糖類を脱水素する作用を意味する。二糖類としては、マルトース、シュクロース、ラクトース、セロビオースなどが例示され、特にマルトースが例示される。本願発明では、二糖類に対する作用性が低下したことを、基質特異性の向上とも表現する。

二糖類に対する作用性が低下しているかどうかの判断は、次のように行う。
後述の試験例１に記載の活性測定法において、野生型ＰＱＱＧＤＨを用いて、Ｄ−グルコースを基質溶液とした場合のＰＱＱＧＤＨ活性値（ａ）と、Ｄ−グルコースのかわりに当該二糖類を基質溶液とした場合のＰＱＱＧＤＨ活性値（ｂ）を測定し、グルコースを基質とした場合の測定値を１００とした場合に対する相対値（（ｂ）／（ａ）×１００）を求める。次いで、改変型ＰＱＱＧＤＨを用いて同様の操作を行い、その値を比較して判断する。

本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、二糖類に対する作用性が野生型ＰＱＱＧＤＨより低下していれば、グルコースに対する作用性は上昇、不変、低下のいずれであっても本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨに包含される。

本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、グルコース濃度の測定において二糖類に対する作用性が野生型ＰＱＱＧＤＨを用いた場合と比較して低下したものを含む。好ましくは、マルトースに対する作用性が低下したものである。マルトースに対する作用性は、好ましくは野生型ＰＱＱＧＤＨの９０％以下、より好ましくは７０％以下、さらに好ましくは４０％以下、特に２０％以下である。

本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、マルトースに対する作用性がグルコースに対する作用性の９０％以下であるものを含む。

野生型ＰＱＱＧＤＨよりも二糖類に対する作用性が低下した本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨとしては、例えばＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列において、７４位、１４６位、１６８位、１６９位、１７０位、２４５位及び３４２位の少なくとも１つの位置においてアミノ酸置換を有する改変型ＰＱＱＧＤＨが例示される。
上記のうち、７４位、１４６位の少なくとも１つの位置においてアミノ酸置換を有する改変型ＰＱＱＧＤＨがさらに好ましい。これらの位置に変異を導入することにより、二糖類に対する作用性が低下することに加え、野生型酵素と比較してグルコースに対する反応性における比活性の向上が期待できる。また、メディエーターを含む系での反応性が向上する可能性も考えられる。

好ましくは、Ｄ７４Ｖ、Ｓ１４６Ａ、Ｑ１６８Ａ、Ｌ１６９Ｐ、Ａ１７０Ｌ、Ａ１７０Ｍ、Ａ１７０Ｉ、Ａ１７０Ｆ、Ｅ２４５Ｄ、Ｍ３４２Ｉ、Ｍ３４２Ｖ、Ｍ３４２Ｐ、Ｍ３４２Ａ、からなる群から選ばれるアミノ酸置換のうち少なくとも１つを有する改変型ＰＱＱＧＤＨである。
上記のうち、Ｄ７４Ｖ、Ｓ１４６Ａの少なくとも１つの位置においてアミノ酸置換を有する改変型ＰＱＱＧＤＨがさらに好ましい。

ここで、「Ｍ３４２Ａ」は、３４２位のＭ（Ｍｅｔ）をＡ（Ａｌａ）に置換することを意味する。

次の段落に示すいずれかの置換は、ＰＱＱＧＤＨの基質特異性の向上に寄与する。

Ｄ７４Ｖ、Ｍ３４２Ｉ、Ｍ３４２Ｖ、Ｍ３４２Ｐ、Ｍ３４２Ａ、Ｓ１４６Ａ、Ｑ１６８Ａ、Ｌ１６９Ｐ、Ａ１７０Ｌ、Ａ１７０Ｍ、Ａ１７０Ｉ、Ａ１７０Ｆ、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｓ１４６Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）
上記のうち、Ｄ７４Ｖ、Ｓ１４６Ａの少なくとも１つの位置においてアミノ酸置換を有する改変型ＰＱＱＧＤＨがさらに好ましい。

上記のＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列は、好ましくはＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓまたはＡｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｂａｕｍａｎｎｉｉ由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列である。中でも好ましくは配列番号１である。配列番号１で示される野生型ＰＱＱＧＤＨタンパク質及び配列番号２で示されるその塩基配列は、アシネトバクター・バウマンニ（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｂａｕｍａｎｎｉｉ）ＮＣＩＭＢ１１５１７株を起源とするものであり、特開平１１−２４３９４９号公報に開示されている。なお、上記および配列番号１において、アミノ酸の表記は、シグナル配列が除かれたアスパラギン酸を１として番号付けされている。

アシネトバクター・バウマンニ（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｂａｕｍａｎｎｉｉ）ＮＣＩＭＢ１１５１７株は、以前、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓに分類されていた。

なお、本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、グルコースデヒドロゲナーゼ活性を有する限り、好ましくは二糖類に対する作用性及び／又は安定性に対して実質的な悪影響を及ぼさない限り、さらに他のアミノ酸残基の一部が欠失または置換されていてもよく、また他のアミノ酸残基が付加されていてもよい。

ところで、本願出願時において、アシネトバクター・カルコアセティカス（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓ）ＬＭＤ７９．４１株由来の酵素のＸ線結晶構造解析の結果が報告され、活性中心をはじめとした該酵素の高次構造が明らかとなっている（非特許文献１，２，３，４を参照。）。
Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２８９，３１９−３３３（１９９９）ＰＮＡＳ，９６（２１），１１７８７−１１７９１（１９９９）ＴｈｅＥＭＢＯＪｏｕｒｎａｌ，１８（１９），５１８７−５１９４（１９９９）ＰｒｏｔｅｉｎＳｃｉｅｎｃｅ，９，１２６５−１２７３（２０００）

その高次構造に関する知見を基に、該酵素の構造と機能の相関に関する研究が進められているが、まだ完全に明らかになったとは言えない。例えば、水溶性グルコース脱水素酵素の第６番目のＷ−モチーフ、のＢストランドとＣストランドを結ぶループ領域（Ｗ６ＢＣ）中のアミノ酸残基の構造遺伝子の特定の部位に変異を導入することによりグルコースに対する選択性を改良しうることが考察されている（例えば、特許文献２を参照。）しかしながら、効果が実証されているのは実施例に開示されているものだけである。
特開２００１−１９７８８８

ここで、本願発明の成果をもとにこれらの高次構造に関する知見を見直すと、二糖類に対する作用性の改変には、ＰＱＱの結合に関与するアミノ酸及び／またはその周辺のアミノ酸、グルコースの結合に関与するアミノ酸及び／またはその周辺のアミノ酸、カルシウムイオンの結合に関与するアミノ酸及び／またはその周辺のアミノ酸の少なくとも１つ以上が関わっている可能性が考えられる。

本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、配列番号１に記載されるＰＱＱ依存性グルコースデヒドロゲナーゼにおいて、ＰＱＱの結合に関与するアミノ酸及び／またはその周辺のアミノ酸、および／または、グルコースの結合に関与するアミノ酸及び／またはその周辺のアミノ酸が置換されているものを含む。
一方、非特許文献３および４には、ＰＱＱに結合するアミノ酸として、Ｙ３４４、Ｗ３４６、Ｒ２２８、Ｎ２２９、Ｋ３７７、Ｒ４０６、Ｒ４０８、Ｄ４２４、グルコースに結合するアミノ酸としては、Ｑ７６、Ｄ１４３、Ｈ１４４、Ｄ１６３、Ｑ１６８、Ｌ１６９、などの記載がある。

また、本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、配列番号１に記載されるＰＱＱ依存性グルコースデヒドロゲナーゼにおいて、カルシウムイオンの結合に関与するアミノ酸及び／またはその周辺のアミノ酸が置換されているものを含む。
一方、非特許文献１には、活性中心のカルシウムイオンに結合するアミノ酸としては、Ｐ２４８、Ｇ２４７、Ｑ２４６、Ｄ２５２、Ｔ３４８などの記載がある。

また、本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、野生型酵素の活性型立体構造における活性中心から半径１５Å以内、好ましくは半径１０Å以内の範囲に位置するアミノ酸を変異することにより得られるものを含む。

また、本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、野生型酵素の活性型立体構造において基質から半径１０Å以内の範囲に位置するアミノ酸を変異することにより得られるものを含む。特に、基質がグルコースであるとき、野生型酵素の活性型立体構造において基質から半径１０Å以内の範囲に位置するアミノ酸を変異することにより得られるものが好ましい。

また、本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、野生型酵素の活性型立体構造において基質の１位の炭素に結合するＯＨ基から半径１０Å以内の範囲に位置するアミノ酸を変異することにより得られるものを含む。特に、基質がグルコースであるとき、野生型酵素の活性型立体構造において基質から半径１０Å以内の範囲に位置するアミノ酸を変異することにより得られるものが好ましい。

また、本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨは、野生型酵素の活性型立体構造において基質の２位の炭素に結合するＯＨ基から半径１０Å以内の範囲に位置するアミノ酸を変異することにより得られるものを含む。特に、基質がグルコースであるとき、野生型酵素の活性型立体構造において基質から半径１０Å以内の範囲に位置するアミノ酸を変異することにより得られるものが好ましい。

以上の教示にしたがって、当業者は、アシネトバクター・バウマンニ（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｂａｕｍａｎｎｉｉ）ＮＣＩＭＢ１１５１７株を起源とする配列番号１で示される野生型ＰＱＱＧＤＨタンパク質および配列番号２で示されるその塩基配列を参照し、これらとの相同性が高い（好ましくは８０％以上、さらに好ましくは９０％以上の相同性を有する）他の起源（天然のもの、改変されたもの、人工的に合成されたものを問わない）に由来する改変型ＰＱＱＧＤＨについても、当該領域でアミノ酸残基を置換することにより、過度に試行錯誤を行うことなく、野生型のＰＱＱＧＤＨよりも二糖類に対する作用性が低下した改変型ＰＱＱＧＤＨを得ることができる。

例えば、配列番号１のアミノ酸配列と、アシネトバクター・カルコアセティカス（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｃａｌｃｏａｃｅｔｉｃｕｓ）ＬＭＤ７９．４１株由来酵素のアミノ酸配列を比較すると、相違箇所はわずかで、相同性は９２．３％（シグナル配列含む）となり、非常に類似しているので、配列番号１におけるある残基が、他起源の酵素のどのアミノ酸残基に該当するかを容易に認識することができる。そして、本発明にしたがって、そのような１またはそれ以上の箇所においてアミノ酸残基を他のアミノ酸残基で欠失、置換あるいは挿入等することにより、野生型のＰＱＱＧＤＨよりも二糖類に対する作用性が低下した改変型ＰＱＱＧＤＨを得ることができる。これらの改変型ＰＱＱＧＤＨグルコース脱水素酵素も本発明の範囲内に含まれる。

本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨをコードする遺伝子は、微生物など種々の起源より得られる野生型ＰＱＱＧＤＨをコードする遺伝子を含むＤＮＡ断片を改変することにより得られる可能性がある。具体的には、例えばアシネトバクター・カルコアセティカス、アシネトバクター・バウマンニ（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｂａｕｍａｎｎｉｉ）、シュードモナス・エルギノサ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）、シュードモナス・プチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｐｕｔｉｄａ）、シュードモナス・フルオレッセンス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）、グルコノバクター・オキシダンス等の酸化細菌やアグロバクテリウム・ラジオバクター（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｒａｄｉｏｂａｃｔｅｒ）、エシェリヒア・コリ、クレブシーラ・エーロジーンズ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａａｅｒｏｇｅｎｅｓ）等の腸内細菌を挙げることができる。ただし、エシェリヒア・コリなどに存在する膜型酵素を改変して可溶型にすることは困難であり、起源としてはアシネトバクター属、さらに好ましくは相同性の高いアシネトバクター・カルコアセティカスもしくはアシネトバクター・バウマンニのいずれかの可溶性ＰＱＱＧＤＨを選択することが好ましい。

野生型ＰＱＱＧＤＨをコードする遺伝子を改変する方法としては、通常行われる遺伝情報を改変する手法が用いられる。すなわち、タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡの特定の塩基を変換することにより、或いは特定の塩基を挿入または欠失させることにより、改変蛋白質の遺伝情報を有するＤＮＡが作成される。ＤＮＡ中の塩基を変換する具体的な方法としては、例えば市販のキット（ＴｒａｎｓｆｏｒｍｅｒＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓＫｉｔ；Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ製，ＥＸＯＩＩＩ／ＭｕｎｇＢｅａｎＤｅｌｅｔｉｏｎＫｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製，ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅＳｉｔｅＤｉｒｅｃｔｅｄＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓＫｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製など）の使用、或いはポリメラーゼ連鎖反応法（ＰＣＲ）の利用が挙げられる。

作製された改変タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡは、プラスミドと連結された状態にて宿主微生物中に移入され、改変タンパク質を生産する形質転換体となる。この際のプラスミドとしては、例えば、エシェリヒア・コリー（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ）を宿主微生物とする場合にはｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ，ｐＵＣ１８などが使用できる。宿主微生物としては、例えば、エシェリヒア・コリーＷ３１１０、エシェリヒア・コリーＣ６００、エシェリヒア・コリーＪＭ１０９、エシェリヒア・コリーＤＨ５αなどが利用できる。宿主微生物に組換えベクターを移入する方法としては、例えば宿主微生物がエシェリヒア属に属する微生物の場合には、カルシウムイオンの存在下で組換えＤＮＡの移入を行なう方法などを採用することができ、更にエレクトロポレーション法を用いても良い。更には、市販のコンピテントセル（例えば、コンピテントハイＪＭ１０９；東洋紡績製）を用いても良い。

このような遺伝子はこれらの菌株より抽出してもよく、また化学的に合成することもできる。さらに、ＰＣＲ法の利用により、ＰＱＱＧＤＨ遺伝子を含むＤＮＡ断片を得ることも可能である。

本発明において、ＰＱＱＧＤＨをコードする遺伝子を得る方法としては、次のような方法が挙げられる。例えばアシネトバクター・カルコアセティカスＮＣＩＢ１１５１７の染色体を分離、精製した後、超音波処理、制限酵素処理等を用いてＤＮＡを切断したものと、リニアーな発現ベクターと両ＤＮＡの平滑末端または付着末端においてＤＮＡリガーゼなどにより結合閉鎖させて組換えベクターを構築する。該組換えベクターを複製可能な宿主微生物に移入した後、ベクターのマーカーと酵素活性の発現を指標としてスクリーニングして、ＰＱＱを補欠分子族とするＧＤＨをコードする遺伝子を含有する組換えベクターを保持する微生物を得る。

次いで、上記組換えベクターを保持する微生物を培養して、該培養微生物の菌体から該組換えベクターを分離、精製し、該発現ベクターからＧＤＨをコードする遺伝子を採取することができる。例えば、遺伝子供与体であるアシネトバクター・カルコアセティカスＮＣＩＢ１１５１７の染色体ＤＮＡは、具体的には以下のようにして採取される。

該遺伝子供与微生物を例えば１〜３日間攪拌培養して得られた培養液を遠心分離により集菌し、次いで、これを溶菌させることによりＰＱＱを補欠分子族とするＧＤＨ遺伝子の含有溶菌物を調製することができる。溶菌の方法としては、例えばリゾチーム等の溶菌酵素により処理が施され、必要に応じてプロテアーゼや他の酵素やラウリル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）等の界面活性剤が併用される。さらに、凍結融解やフレンチプレス処理のような物理的破砕方法と組み合わせてもよい。

上記のようにして得られた溶菌物からＤＮＡを分離精製するには、常法に従って、例えばフェノール処理やプロテアーゼ処理による除蛋白処理や、リボヌクレアーゼ処理、アルコール沈殿処理などの方法を適宜組み合わせることにより行うことができる。

微生物から分離、精製されたＤＮＡを切断する方法は、例えば超音波処理、制限酵素処理などにより行うことができる。好ましくは特定のヌクレオチド配列に作用するＩＩ型制限酵素が適している。

クローニングする際のベクターとしては、宿主微生物内で自律的に増殖し得るファージまたはプラスミドから遺伝子組換え用として構築されたものが適している。ファージとしては、例えばエシェリヒア・コリを宿主微生物とする場合にはＬａｍｂｄａｇｔ１０、Ｌａｍｂｄａｇｔ１１などが例示される。また、プラスミドとしては、例えば、エシェリヒア・コリを宿主微生物とする場合には、ｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１９、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔなどが例示される。

クローニングの際、上記のようなベクターを、上述したＧＤＨをコードする遺伝子供与体である微生物ＤＮＡの切断に使用した制限酵素で切断してベクター断片を得ることができるが、必ずしも該微生物ＤＮＡの切断に使用した制限酵素と同一の制限酵素を用いる必要はない。微生物ＤＮＡ断片とベクターＤＮＡ断片とを結合させる方法は、公知のＤＮＡリガーゼを用いる方法であればよく、例えば微生物ＤＮＡ断片の付着末端とベクター断片の付着末端とのアニーリングの後、適当なＤＮＡリガーゼの使用により微生物ＤＮＡ断片とベクターＤＮＡ断片との組換えベクターを作成する。必要に応じて、アニーリングの後、宿主微生物に移入して生体内のＤＮＡリガーゼを利用し組換えベクターを作製することもできる。

クローニングに使用する宿主微生物としては、組換えベクターが安定であり、かつ自律増殖可能で外来性遺伝子の形質発現できるものであれば特に制限されない。一般的には、エシェリヒア・コリＷ３１１０、エシェリヒア・コリＣ６００、エシェリヒア・コリＨＢ１０１、エシェリヒア・コリＪＭ１０９、エシェリヒア・コリＤＨ５ αなどを用いることができる。

宿主微生物に組換えベクターを移入する方法としては、例えば宿主微生物がエシェリヒア・コリの場合には、カルシウム処理によるコンピテントセル法やエレクトロポーレーション法などを用いることができる。

上記のように得られた形質転換体である微生物は、栄養培地で培養されることにより、多量のＧＤＨを安定に生産し得る。宿主微生物への目的組換えベクターの移入の有無についての選択は、目的とするＤＮＡを保持するベクターの薬剤耐性マーカーとＰＱＱの添加によりＧＤＨ活性を同時に発現する微生物を検索すればよい。例えば、薬剤耐性マーカーに基づく選択培地で生育し、かつＧＤＨを生成する微生物を選択すればよい。

上記の方法により得られたＰＱＱを補欠分子族とするＧＤＨ遺伝子の塩基配列は、Ｓｃｉｅｎｃｅ，第２１４巻，１２０５（１９８１）に記載されたジデオキシ法により解読した。また、ＧＤＨのアミノ酸配列は上記のように決定された塩基配列より推定した。

上記のようにして、一度選択されたＰＱＱを補欠分子族とするＧＤＨ遺伝子を保有する組換えベクターより、ＰＱＱ生産能を有する微生物にて複製できる組換えベクターへの移入は、ＧＤＨ遺伝子を保持する組換えベクターから制限酵素やＰＣＲ法によりＧＤＨ遺伝子であるＤＮＡを回収し、他のベクター断片と結合させることにより容易に実施できる。また、これらのベクターによるＰＱＱ生産能を有する微生物の形質転換は、カルシウム処理によるコンピテントセル法やエレクトロポーレーション法などを用いることができる。

ＰＱＱ生産能を有する微生物としては、メチロバクテリウム（Ｍｅｔｈｙｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属等のメタノール資化性細菌、アセトバクター（Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ）属やグルコノバクター（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ）属の酢酸菌、フラボバクテリウム（Ｆｌａｖｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属、シュードモナス属、アシネトバクター属等の細菌を挙げることができる。なかでも、シュードモナス属細菌とアシネトバクター属細菌が利用できる宿主−ベクター系が確立されており利用しやすいので好ましい。

シュードモナス属細菌では、シュードモナス・エルギノサ、シュードモナス・フルオレッセンス、シュードモナス・プチダなどを用いることができる。また、アシネトバクター属細菌ではアシネトバクター・カルコアセティカス、アシネトバクター・バウマンニ等を用いることができる。

上記微生物にて複製できる組換えベクターとしては、ＲＳＦ１０１０由来のベクターもしくはとその類似のレプリコンを有するベクターがシュードモナス属細菌に利用可能である。例えば、ｐＫＴ２４０、ｐＭＭＢ２４等（Ｍ．Ｍ．Ｂａｇｄａｓａｒｉａｎら，Ｇｅｎｅ，２６，２７３（１９８３））、ｐＣＮ４０、ｐＣＮ６０等（Ｃ．Ｃ．Ｎｉｅｔｏら，Ｇｅｎｅ，８７，１４５（１９９０））やｐＴＳ１１３７等を挙げることができる。また、ｐＭＥ２９０等（Ｙ．Ｉｔｏｈら、Ｇｅｎｅ，３６，２７（１９８５））、ｐＮＩ１１１、ｐＮＩ２０Ｃ（Ｎ．Ｉｔｏｈら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１１０，６１４（１９９１））も利用できる。

アシネトバクター属細菌では、ｐＷＭ４３等（Ｗ．Ｍｉｎａｓら，Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，５９，２８０７（１９９３））、ｐＫＴ２３０、ｐＷＨ１２６６等（Ｍ．Ｈｕｎｇｅｒら，Ｇｅｎｅ，８７，４５（１９９０））がベクターとして利用可能である。

こうして得られた形質転換体である微生物は、栄養培地で培養されることにより、多量の改変タンパク質を安定して生産し得る。形質転換体である宿主微生物の培養形態は、宿主の栄養生理的性質を考慮して培養条件を選択すればよく、多くの場合は液体培養で行う。工業的には通気攪拌培養を行うのが有利である。

培地の栄養源としては，微生物の培養に通常用いられるものが広く使用され得る。炭素源としては資化可能な炭素化合物であればよく、例えば、グルコース、シュークロース、ラクトース、マルトース、ラクトース、糖蜜、ピルビン酸などが使用される。また、窒素源としては利用可能な窒素化合物であればよく、例えば、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、カゼイン加水分解物、大豆粕アルカリ抽出物などが使用される。その他、リン酸塩、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類、特定のアミノ酸、特定のビタミンなどが必要に応じて使用される。

培養温度は菌が成育し、改変型ＰＱＱＧＤＨを生産する範囲で適宜変更し得るが、上記のようなＰＱＱ生産能を有する微生物の場合、好ましくは２０〜４２℃程度である。培養時間は条件によって多少異なるが、改変型ＰＱＱＧＤＨが最高収量に達する時期を見計らって適当時期に培養を完了すればよく、通常は６〜４８時間程度である。培地のｐＨは菌が発育し、改変型ＰＱＱＧＤＨを生産する範囲で適宜変更し得るが、好ましくはｐＨ６．０〜９．０程度の範囲である。

培養物中の改変型ＰＱＱＧＤＨを生産する菌体を含む培養液をそのまま採取し、利用することもできるが、一般には、常法に従って、改変型ＰＱＱＧＤＨが培養液中に存在する場合はろ過、遠心分離などにより、改変型ＰＱＱＧＤＨ含有溶液と微生物菌体とを分離した後に利用される。改変型ＰＱＱＧＤＨが菌体内に存在する場合には、得られた培養物からろ過または遠心分離などの手段により菌体を採取し、次いで、この菌体を機械的方法またはリゾチームなどの酵素的方法で破壊し、また、必要に応じて、ＥＤＴＡ等のキレート剤及び界面活性剤を添加してＧＤＨを可溶化し、水溶液として分離採取する。

上記のようにして得られたＧＤＨ含有溶液を、例えば減圧濃縮、膜濃縮、さらに硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、あるいは親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどによる分別沈殿法により沈殿せしめればよい。また、加熱処理や等電点処理も有効な精製手段である。その後、吸着剤あるいはゲルろ過剤などによるゲルろ過、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィーを行うことにより、精製されたＧＤＨを得ることができる。

例えば、セファデックス（Ｓｅｐｈａｄｅｘ）ゲル（ファルマシアバイオテク）などによるゲルろ過、ＤＥＡＥセファロースＣＬ−６Ｂ（ファルマシアバイオテク）、オクチルセファロースＣＬ−６Ｂ（ファルマシアバイオテク）等のカラムクロマトグラフィーにより分離、精製し、精製酵素標品を得ることができる。該精製酵素標品は、電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一のバンドを示す程度に純化されていることが好ましい。

上記のようにして得られた精製酵素を、例えば凍結乾燥、真空乾燥やスプレードライなどにより粉末化して流通させることが可能である。その際、精製酵素はリン酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液やＧＯＯＤの緩衝液に溶解しているものを用いることができる。好適なものはＧＯＯＤの緩衝液であり、なかでも、ＰＩＰＥＳ、ＭＥＳもしくはＭＯＰＳ緩衝液が特に好ましい。また、カルシウムイオンまたはその塩、およびグルタミン酸、グルタミン、リジン等のアミノ酸類、さらに血清アルブミン等を添加することによりＧＤＨをより安定化することができる。

本発明の改変タンパク質の製造方法は、特に限定されないが、以下に示すような手順で製造することが可能である。タンパク質を構成するアミノ酸配列を改変する方法としては、通常行われる遺伝情報を改変する手法が用いられる。すなわち、タンパク質の遺伝情報を有するＤＮＡの特定の塩基を変換することにより、或いは特定の塩基を挿入または欠失させることにより、改変蛋白質の遺伝情報を有するＤＮＡが作成される。ＤＮＡ中の塩基を変換する具体的な方法としては、例えば市販のキット（ＴｒａｎｓｆｏｒｍｅｒＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓＫｉｔ；Ｃｌｏｎｅｔｅｃｈ製，ＥＸＯＩＩＩ／ＭｕｎｇＢｅａｎＤｅｌｅｔｉｏｎＫｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製，ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅＳｉｔｅＤｉｒｅｃｔｅｄＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓＫｉｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ製など）の使用、或いはポリメラーゼ連鎖反応法（ＰＣＲ）の利用が挙げられる。

本発明では、配列番号１に示されるＰＱＱＧＤＨの７４位、１４６位、１６８位、１６９位、１７０位、２４５位及び３４２位に着目し、そのアミノ酸置換体を作成したところ、基質特異性が改善されたＰＱＱＧＤＨ改変体を得ることができた。基質特異性に関しては、
Ｄ７４Ｖ、Ｍ３４２Ｉ、Ｍ３４２Ｖ、Ｍ３４２Ｐ、Ｍ３４２Ａ、Ｓ１４６Ａ、Ｑ１６８Ａ、Ｌ１６９Ｐ、Ａ１７０Ｌ、Ａ１７０Ｍ、Ａ１７０Ｉ、Ａ１７０Ｆ、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｓ１４６Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）が特に好ましい。

改変タンパク質は、液状（水溶液、懸濁液等）、粉末、凍結乾燥など種々の形態をとることができる。凍結乾燥法としては、特に制限されるものではなく常法に従って行えばよい。本発明の酵素を含む組成物は凍結乾燥物に限られず、凍結乾燥物を再溶解した溶液状態であってもよい。また、グルコース測定を行なう際には、グルコースアッセイキット、グルコースセンサーなどの種々の形態をとることができる。この様にして得られた精製された改変タンパク質は、以下のような方法により安定化することができる。

精製された改変タンパク質に（１）アスパラギン酸、グルタミン酸、α−ケトグルタル酸、リンゴ酸、α−ケトグルコン酸、α−サイクロデキストリンおよびそれらの塩からなる群から選ばれた１種または２種以上の化合物および（２）アルブミンを共存せしめることにより、改変タンパク質をさらに安定化することができる。

凍結乾燥組成物中においては、ＰＱＱＧＤＨ含有量は、酵素の起源によっても異なるが、通常は約５〜５０％（重量比）の範囲で好適に用いられる。酵素活性に換算すると、１００〜２０００Ｕ／ｍｇの範囲で好適に用いられる。

アスパラギン酸、グルタミン酸、αーケトグルタル酸、リンゴ酸、及びαーケトグルコン酸の塩としては、ナトリウム、カリウム、アンモニウム、カルシウム、及びマグネシウム等の塩が挙げられるが特に限定されるものではない。上記化合物とその塩及びα−シクロデキストリンの添加量は、１〜９０％（重量比）の範囲で添加することが好ましい。これらの物質は単独で用いてもよいし、複数組み合わせてもよい。

含有される緩衝液としては特に限定されるものではないが、トリス緩衝液、リン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、ＧＯＯＤ緩衝液などが挙げられる。該緩衝液のｐＨは５．０〜９．０程度の範囲で使用目的に応じて調整される。凍結乾燥物中においては緩衝剤の含有量は、特に限定されるものではないが、好ましくは０．１％（重量比）以上、特に好ましくは０．１〜３０％（重量比）の範囲で使用される。

使用できるアルブミンとしては、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、卵白アルブミン（ＯＶＡ）などが挙げられる。特にＢＳＡが好ましい。該アルブミンの含有量は、好ましくは１〜８０％（重量比）、より好ましくは５〜７０％（重量比）の範囲で使用される。

組成物には、さらに他の安定化剤などをＰＱＱＧＤＨの反応に特に悪い影響を及ぼさないような範囲で添加してもよい。本発明の安定化剤の配合法は特に制限されるものではない。例えばＰＱＱＧＤＨを含む緩衝液に安定化剤を配合する方法、安定化剤を含む緩衝液にＰＱＱＧＤＨを配合する方法、あるいはＰＱＱＧＤＨと安定化剤を緩衝液に同時に配合する方法などが挙げられる。

また、カルシウムイオンを添加しても安定化効果が得られる。すなわち、カルシウムイオンまたはカルシウム塩を含有させることにより、改変タンパク質を安定化させることができる。カルシウム塩としては、塩化カルシウムまたは酢酸カルシウムもしくはクエン酸カルシウム等の無機酸または有機酸のカルシウム塩などが例示される。また、水性組成物において、カルシウムイオンの含有量は、１×１０^−４〜１×１０^−２Ｍであることが好ましい。

カルシウムイオンまたはカルシウム塩を含有させることによる安定化効果は、グルタミン酸、グルタミンおよびリジンからなる群から選択されたアミノ酸を含有させることにより、さらに向上する。

グルタミン酸、グルタミンおよびリジンからなる群から選択されるアミノ酸は、１種または２種以上であってもよい。前記の水性組成物において、グルタミン酸、グルタミンおよびリジンからなる群から選択されたアミノ酸の含有量は、０．０１〜０．２重量％であることが好ましい。

さらに血清アルブミンを含有させてもよい。前記の水性組成物に血清アルブミンを添加する場合、その含有量は０．０５〜０．５重量％であることが好ましい。

緩衝剤としては、通常のものが使用され、通常、組成物のｐＨを５〜１０とするものが好ましい。具体的にはトリス塩酸、ホウ酸、グッド緩衝液が用いられるが、カルシウムと不溶性の塩を形成しない緩衝液はすべて使用できる。

前記の水性組成物には、必要により他の成分、例えば界面活性剤、安定化剤、賦形剤などを添加しても良い。

本発明においては以下の種々の方法によりグルコースを測定することができる。
グルコースアッセイキット
本発明はまた、本発明に従う改変型ＰＱＱＧＤＨを含むグルコースアッセイキットを特徴とする。本発明のグルコースアッセイキットは、本発明に従う改変型ＰＱＱＧＤＨを少なくとも１回のアッセイに十分な量で含む。典型的には、キットは、本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨに加えて、アッセイに必要な緩衝液、メディエーター、キャリブレーションカーブ作製のためのグルコース標準溶液、ならびに使用の指針を含む。本発明に従う改変型ＰＱＱＧＤＨは種々の形態で、例えば、凍結乾燥された試薬として、または適切な保存溶液中の溶液として提供することができる。好ましくは本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨはホロ化した形態で提供されるが、アポ酵素の形態で提供し、使用時にホロ化することもできる。

グルコースセンサー
本発明はまた、本発明に従う改変型ＰＱＱＧＤＨを用いるグルコースセンサーを特徴とする。電極としては、カーボン電極、金電極、白金電極などを用い、この電極上に本発明の酵素を固定化する。固定化方法としては、架橋試薬を用いる方法、高分子マトリックス中に封入する方法、透析膜で被覆する方法、光架橋性ポリマー、導電性ポリマー、酸化還元ポリマーなどがあり、あるいはフェロセンあるいはその誘導体に代表される電子メディエーターとともにポリマー中に固定あるいは電極上に吸着固定してもよく、またこれらを組み合わせて用いてもよい。好ましくは本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨはホロ化した形態で電極上に固定化するが、アポ酵素の形態で固定化し、ＰＱＱを別の層としてまたは溶液中で提供することもできる。典型的には、グルタルアルデヒドを用いて本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨをカーボン電極上に固定化した後、アミン基を有する試薬で処理してグルタルアルデヒドをブロッキングする。

グルコース濃度の測定は、以下のようにして行うことができる。恒温セルに緩衝液を入れ、ＰＱＱおよびＣａＣｌ_２、およびメディエーターを加えて一定温度に維持する。メディエーターとしては、フェリシアン化カリウム、フェナジンメトサルフェートなどを用いることができる。作用電極として本発明の改変型ＰＱＱＧＤＨを固定化した電極を用い、対極（例えば白金電極）および参照電極（例えばＡｇ／ＡｇＣｌ電極）を用いる。カーボン電極に一定の電圧を印加して、電流が定常になった後、グルコースを含む試料を加えて電流の増加を測定する。標準濃度のグルコース溶液により作製したキャリブレーションカーブに従い、試料中のグルコース濃度を計算することができる。

以下、本発明を実施例に基づきより詳細に説明する。
実施例１：ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素遺伝子の発現プラスミドの構築
野生型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素の発現プラスミドｐＮＰＧ５は、ベクターｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＳＫ（−）のマルチクローニング部位にアシネトバクター・バウマンニ（Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒｂａｕｍａｎｎｉｉ）ＮＣＩＭＢ１１５１７株由来のＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする構造遺伝子を挿入したものである。その塩基配列を配列表の配列番号２に、また該塩基配列から推定されるＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素のアミノ酸配列を配列表の配列番号１に示す。

実施例２：変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素の作製
野生型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素遺伝子を含む組換えプラスミドｐＮＰＧ５と配列番号３記載の合成オリゴヌクレオチド及びこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを基に、ＱｕｉｃｋＣｈａｎｇｅ^ＴＭＳｉｔｅ−ＤｉｒｅｃｔｅｄＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓＫｉｔ（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ製）を用いて、そのプロトコールに従って変異処理操作を行い、更に塩基配列を決定して、配列番号２記載のアミノ酸配列の７４番目のアスパラギン酸がバリンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−７４Ｖ）を取得した。
ｐＮＰＧ５と配列番号４記載の合成オリゴヌクレオチド及びこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを基に、上記方法と同様にして配列番号２記載のアミノ酸配列の３４２番目のメチオニンがイソロイシンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−３４２Ｉ）を取得した。
その他上記と同様に、目的のアミノ酸部位を置換するよう設計した合成オリゴヌクレオチド及びこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドを用いて、配列番号２記載のアミノ酸配列の３４２番目のメチオニンがバリンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−３４２Ｖ）、プロリンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−３４２Ｐ）、アラニンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−３４２Ａ）を取得した。また１４６番目のセリンがアラニンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−１４６Ａ）、１７０番目のアラニンがロイシンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−１７０Ｌ）、１７０番目のアラニンがメチオニンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−１７０Ｍ）、１７０番目のアラニンがイソロイシンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−１７０Ｉ）、１７０番目のアラニンがフェニルアラニンに置換された変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素をコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−１７０Ｆ）を取得した。それぞれの合成オリゴヌクレオチドを配列番号５〜１２に記載する。
ｐＮＰＧ５、ｐＮＰＧ５−７４Ｖ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｐ、ｐＮＰＧ５−３４２Ａ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｌ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｍ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｉ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｆの各組換えプラスミドで大腸菌コンピテントセル（エシェリヒア・コリーＪＭ１０９；東洋紡績製）を形質転換し、該形質転換体をそれぞれ取得した。

実施例３：シュードモナス属細菌で複製できる発現ベクターの構築
実施例２で得た組換えプラスミドｐＮＰＧ５−７４ＶのＤＮＡ５μｇを制限酵素ＢａｍＨＩおよびＸＨｏＩ（東洋紡績製）で切断して、変異型ＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素の構造遺伝子部分を単離した。単離したＤＮＡとＢａｍＨＩおよびＸＨｏＩで切断したｐＴＭ３３（１μｇ）とをＴ４ＤＮＡリガーゼ１単位で１６℃、１６時間反応させ、ＤＮＡを連結した。連結したＤＮＡはエシェリヒア・コリＤＨ５αのコンピテントセルを用いて形質転換を行った。得られた発現プラスミドをｐＮＰＧ６−７４Ｖと命名した。
ｐＮＰＧ５、ｐＮＰＧ５−３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｐ、ｐＮＰＧ５−３４２Ａ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｌ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｍ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｉ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｆの各組換えプラスミドについても上記方法と同様にして発現プラスミドを取得した。得られた発現プラスミドそれぞれｐＮＰＧ６、ｐＮＰＧ６−３４２Ｉ、ｐＮＰＧ６−３４２Ｖ、ｐＮＰＧ６−３４２Ｐ、ｐＮＰＧ６−３４２Ａ、ｐＮＰＧ６−１４６Ａ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｌ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｍ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｉ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｆと命名した。

実施例４：シュードモナス属細菌の形質転換体の作製
シュードモナス・プチダＴＥ３４９３（微工研寄１２２９８号）をＬＢＧ培地（ＬＢ培地＋０．３％グリセロール）で３０℃、１６時間培養し、遠心分離（１２，０００ｒｐｍ、１０分間）により菌体を回収し、この菌体に氷冷した３００ｍＭシュークロースを含む５ｍＭＫ−リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）８ｍｌを加え、菌体を懸濁した。再度遠心分離（１２，０００ｒｐｍ、１０分間）により菌体を回収し、この菌体に氷冷した３００ｍＭシュークロースを含む５ｍＭＫ−リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）０．４ｍｌを加え、菌体を懸濁した。
該懸濁液に実施例３で得た発現プラスミドｐＮＰＧ６−７４Ｖを０．５μｇ加え、エレクトロポレーション法により形質転換した。１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンを含むＬＢ寒天培地に生育したコロニーより、目的とする形質転換体を得た。
ｐＮＰＧ６、ｐＮＰＧ６−３４２Ｉ、ｐＮＰＧ６−３４２Ｖ、ｐＮＰＧ６−３４２Ｐ、ｐＮＰＧ６−３４２Ａ、ｐＮＰＧ６−１４６Ａ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｌ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｍ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｉ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｆの各発現プラスミドについても上記方法と同様にして、該形質転換体をそれぞれ取得した。

試験例１
ＧＤＨ活性の測定方法
測定原理
Ｄ−グルコース＋ＰＭＳ＋ＰＱＱＧＤＨ → Ｄ−グルコノ−１，５−ラクトン＋ＰＭＳ（ｒｅｄ）
２ＰＭＳ（ｒｅｄ）＋ＮＴＢ → ２ＰＭＳ＋ジホルマザン
フェナジンメトサルフェート（ＰＭＳ）（ｒｅｄ）によるニトロテトラゾリウムブルー（ＮＴＢ）の還元により形成されたジホルマザンの存在は、５７０ｎｍで分光光度法により測定した。
単位の定義
１単位は、以下に記載の条件下で１分当たりジホルマザンを０．５ミリモル形成させるＰＱＱＧＤＨの酵素量をいう。
（３）方法
試薬
Ａ．Ｄ−グルコース溶液：０．５Ｍ（０．９ｇＤ−グルコース（分子量１８０．１６）／１０ｍｌＨ_２Ｏ）
Ｂ．ＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液，ｐＨ６．５：５０ｍＭ（６０ｍＬの水中に懸濁した１．５１ｇのＰＩＰＥＳ（分子量３０２．３６）を、５ＮＮａＯＨに溶解し、２．２ｍｌの１０％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を加える。５ＮＮａＯＨを用いて２５℃でｐＨを６．５±０．０５に調整し、水を加えて１００ｍｌとした。）
Ｃ．ＰＭＳ溶液：３．０ｍＭ（９．１９ｍｇのフェナジンメトサルフェート（分子量８１７．６５）／１０ｍｌＨ_２Ｏ）
Ｄ．ＮＴＢ溶液：６．６ｍＭ（５３．９６ｍｇのニトロテトラゾリウムブルー（分子量８１７．６５）／１０ｍｌＨ_２Ｏ）
Ｅ．酵素希釈液：１ｍＭＣａＣｌ_２，０．１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００，０．１％ＢＳＡを含む５０ｍＭＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ６．５）
手順
遮光ビンに以下の反応混合物を調製し、氷上で貯蔵した（用時調製）
１．８ｍｌＤ−グルコース溶液（Ａ）
２４．６ｍｌＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ６．５）（Ｂ）
２．０ｍｌＰＭＳ溶液（Ｃ）
１．０ｍｌＮＴＢ溶液（Ｄ）

３．０ｍｌの反応混合液を試験管（プラスチック製）に入れ、３７℃で５分間予備加温した。
０．１ｍｌの酵素溶液を加え、穏やかに反転して混合した。
５７０ｎｍでの水に対する吸光度の増加を３７℃に維持しながら分光光度計で４〜５分間記録し、曲線の初期直線部分からの１分当たりのΔＯＤを計算した（ＯＤテスト）。
同時に、酵素溶液に代えて酵素希釈液（Ｅ）加えることを除いては同一の方法を繰り返し、ブランク（ΔＯＤブランク）を測定した。
アッセイの直前に氷冷した酵素希釈液（Ｅ）で酵素粉末を溶解し、同一の緩衝液で０．１−０．８Ｕ／ｍｌに希釈した（該酵素の接着性のためにプラスチックチューブの使用が好ましい）。
計算
活性を以下の式を用いて計算する：
Ｕ／ｍｌ＝｛ΔＯＤ／ｍｉｎ（ΔＯＤテスト− ΔＯＤブランク）×Ｖｔ×ｄｆ｝／（２０．１×１．０×Ｖｓ）
Ｕ／ｍｇ＝（Ｕ／ｍｌ）×１／Ｃ
Ｖｔ：総体積（３．１ｍｌ）
Ｖｓ：サンプル体積（１．０ｍｌ）
２０．１：ジホルマザンの１／２ミリモル分子吸光係数
１．０：光路長（ｃｍ）
ｄｆ：希釈係数
Ｃ：溶液中の酵素濃度（ｃｍｇ／ｍｌ）

実施例５：ホロ型発現精製酵素の調製
５００ｍｌのＴｅｒｒｉｆｉｃｂｒｏｔｈを２Ｌ容坂口フラスコに分注し、１２１℃、２０分間オートクレーブを行い、放冷後別途無菌濾過したストレプトマイシンを１００μｇ／ｍｌになるように添加した。この培地に１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンを含むＰＹ培地で予め３０℃、２４時間培養したシュードモナス・プチダＴＥ３４９３（ｐＮＰＧ６−７４Ｖ）の培養液を５ｍｌ接種し、３０℃で４０時間通気攪拌培養した。培養終了時のＰＱＱ依存性グルコース脱水素酵素活性は、前記活性測定において、培養液１ｍｌ当たり約３０Ｕ／ｍｌであった。
上記菌体を遠心分離により集菌し、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁した後、超音波処理により破砕し、更に遠心分離を行い、上清液を粗酵素液として得た。得られた粗酵素液をＨｉＴｒａｐ−ＳＰ（アマシャム−ファルマシア）イオン交換カラムクロマトグラフィーにより分離・精製した。次いで１０ｍＭＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ６．５）で透析した後に終濃度が１ｍＭになるように塩化カルシウムを添加した。最後にＨｉＴｒａｐ−ＤＥＡＥ（アマシャム−ファルマシア）イオン交換カラムクロマトグラフィーにより分離・精製し、精製酵素標品を得た。本方法により得られた標品は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ的にほぼ単一なバンドを示した。
ｐＮＰＧ６、ｐＮＰＧ６−３４２Ｉ、ｐＮＰＧ６−３４２Ｖ、ｐＮＰＧ６−３４２Ｐ、ｐＮＰＧ６−３４２Ａ、ｐＮＰＧ６−１４６Ａ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｌ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｍ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｉ、ｐＮＰＧ６−１７０Ｆによるシュードモナス・プチダＴＥ３４９３形質転換体についても上記方法と同様にして精製酵素標品を取得した。
このようにして取得した精製酵素を用いて性能を評価した。

基質特異性
上記の活性測定方法に従い、ＰＱＱＧＤＨの活性を測定した。グルコースを基質溶液とした場合の脱水素酵素活性値とマルトースを基質溶液とした場合の脱水素酵素活性値を測定し、グルコースを基質とした場合の測定値を１００とした場合の相対値を求めた。マルトースを基質溶液とした場合の脱水素酵素活性に際しては、０．５Ｍのマルトース溶液を調製して活性測定に用いた。結果を表２に示す。
野生型ＰＱＱＧＤＨでは、グルコースとマルトースの反応性がほぼ等しくなっているのに対し、本願発明の改変型ＰＱＱＧＤＨではマルトースの反応性が低下している。

実施例６：多重変異体の作成と基質特異性
ｐＮＰＧ５、ｐＮＰＧ５−７４Ｖ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−３４２Ｐ、ｐＮＰＧ５−３４２Ａ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｌ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｍ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｉ、ｐＮＰＧ５−１７０Ｆの各プラスミドを鋳型とし、配列番号８記載の合成オリゴヌクレオチド及びこれと相補的な合成オリゴヌクレオチド、１６８番目のグルタミンをアラニンに１６９番目のロイシンをプロリンに１７０番目のアラニンをロイシンに置換するよう設計した配列番号１３記載の合成オリゴヌクレオチド及びこれと相補的な合成オリゴヌクレオチド、１６８番目のグルタミンをアラニンに１６９番目のロイシンをプロリンに１７０番目のアラニンをメチオニンに置換するよう設計した配列番号１４記載の合成オリゴヌクレオチド及びこれと相補的な合成オリゴヌクレオチド及び２４５番目のグルタミン酸をアスパラギン酸に置換するよう設計した配列番号１５記載の合成オリゴヌクレオチド及びこれと相補的な合成オリゴヌクレオチドをそれぞれ用い、実施例２記載の方法に準じて、配列番号２記載のアミノ酸配列の１４６番目のセリンがアラニンに１７０番目のアラニンがロイシンに置換された変異型ＰＱＱＧＤＨをコードする組換えプラスミド（ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋１７０Ｌ）、以下同義にて、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋１７０Ｍ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ、ｐＮＰＧ５−Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋２４５Ｄ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ＋３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ＋３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋３４２Ｐ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ＋３４２Ｐ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋３４２Ｐ、ｐＮＰＧ５−１４６Ａ＋３４２Ａ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ＋３４２Ａ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋３４２Ａ、ｐＮＰＧ５−７４Ｖ＋１４６Ａ、ｐＮＰＧ５−７４Ｖ＋１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ、ｐＮＰＧ５−７４Ｖ＋１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ＋２４５Ｄ＋３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋２４５Ｄ＋３４２Ｉ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ＋２４５Ｄ＋３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋２４５Ｄ＋３４２Ｖ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｌ＋２４５Ｄ＋３４２Ａ、ｐＮＰＧ５−１６８Ａ＋１６９Ｐ＋１７０Ｍ＋２４５Ｄ＋３４２Ａを取得、さらに該形質転換体を取得した。なお、１度の変異導入により該変異プラスミドが取得できないものに関しては、異なる合成オリゴヌクレオチドを用いて、同方法を２度繰り返すことにより該変異プラスミドを取得した。
さらに実施例３〜５記載の方法に準じて、各形質転換体より、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｓ１４６Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）の精製酵素標品を取得し、基質特異性を評価した。結果を表３に示す。

本発明によれば、基質特異性が改善されたＰＱＱＧＤＨを得ることができる。この改変型ＰＱＱＧＤＨは、グルコースアッセイキット、グルコースセンサーに利用できる。

Claims

ピロロキノリンキノン依存性グルコースデヒドロゲナーゼ（ＰＱＱＧＤＨ）において、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列における７４位、１４６位、１６８位、１６９位、１７０位、２４５位及び３４２位の少なくとも１つの位置、または、他の種における上記と同等の位置においてアミノ酸置換を有する、野生型のＰＱＱＧＤＨよりも二糖類に対する作用性が低下した改変型ＰＱＱＧＤＨ。
アミノ酸置換が、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列におけるＤ７４Ｖ、Ｓ１４６Ａ、Ｑ１６８Ａ、Ｌ１６９Ｐ、Ａ１７０Ｌ、Ａ１７０Ｍ、Ａ１７０Ｉ、Ａ１７０Ｆ、Ｅ２４５Ｄ、Ｍ３４２Ｉ、Ｍ３４２Ｖ、Ｍ３４２Ｐ、Ｍ３４２Ａ、からなる群のうち少なくとも１つの位置、または、他の種における上記と同等の位置においてアミノ酸置換を有する、請求項１に記載の改変型ＰＱＱＧＤＨ
アミノ酸置換が、Ａｃｉｎｅｔｏｂａｃｔｅｒ属由来ＰＱＱＧＤＨのアミノ酸配列における（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ｐ）、（Ｓ１４６Ａ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｓ１４６Ａ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ）、（Ｄ７４Ｖ＋Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｉ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ｖ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｌ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）、（Ｑ１６８Ａ＋Ｌ１６９Ｐ＋Ａ１７０Ｍ＋Ｅ２４５Ｄ＋Ｍ３４２Ａ）うちいずれか、または、他の種における上記と同等の位置におけるアミノ酸置換のうちいずれかである、請求項１に記載の改変型ＰＱＱＧＤＨ
二糖類がマルトースである、請求項１〜３のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨ。
請求項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨをコードする遺伝子。
請求項５に記載の遺伝子を含むベクター。
請求項６に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
請求項７に記載の形質転換体を培養することを特徴とする改変型ＰＱＱＧＤＨの製造法。
請求項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨを含むグルコースアッセイキット。
請求項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨを含むグルコースセンサー。
請求項１〜４のいずれかに記載の改変型ＰＱＱＧＤＨを含むグルコース測定方法。