JP2005290383A - 6−o−硫酸化n−アセチルヘパロサン及び造血幹細胞増殖助剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 N−アセチルヘパロサンを構成するN−アセチルグルコサミンの第1級水酸基が硫酸化された6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン。
【選択図】 なし
Description
例えば、ヘパリン前駆物質であるとされているN−アセチルヘパロサンなどが挙げられる。N−アセチルヘパロサンは、グルクロン酸とN−アセチルグルコサミンの二糖単位の繰り返し構造を特徴とするグリコサミノグリカンであり、大腸菌のある種の菌株によって産生される夾膜多糖であり、K5抗原と呼ばれている(非特許文献4)。
(1) N−アセチルヘパロサンを構成するN−アセチルグルコサミンの第1級水酸基が硫酸化された6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン。
(2) グリコサミノグリカン分解酵素による分解と高速液体クロマトグラフィーによる分析を組み合わせた二糖分析により得られる不飽和二糖組成において、ΔDiHS−6Sで示される2−アセトアミド−2−デオキシ−4−O−(4−デオキシ−α−L−threo−hex−4−エノピラノシルウロン酸)−6−O−スルホ−D−グルコースが30−70モル%である(1)記載の6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン。
(3) グリコサミノグリカン分解酵素による分解と高速液体クロマトグラフィーによる分析を組み合わせた二糖分析により得られる不飽和二糖組成において、ΔDiHS−0Sで示される2−アセトアミド−2−デオキシ−4−O−(4−デオキシ−α−L−threo−hex−4−エノピラノシルウロン酸)−D−グルコースが70−30モル%である(1)または(2)に記載の6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン。
(4) 造血幹細胞の増殖を促進する作用を有し、(1)〜(3)のいずれかに記載の6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンを有効成分とする造血幹細胞増殖助剤。
(5) 造血幹細胞が、ヒト由来造血幹細胞である(4)記載の造血幹細胞増殖助剤。
(6) 造血幹細胞が、骨髄、末梢血または臍帯血由来の造血幹細胞である(4)または(5)に記載の造血幹細胞増殖助剤。
(7) インビトロ(in vitro)またはエクスビボ(ex vivo)での細胞培養に用いられる(4)〜(6)のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤。
(8) 生体への移植用造血幹細胞の増殖を促進するための、(4)〜(7)のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤。
(9) (4)〜(8)のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤と造血幹細胞の培養に必要な他の培地成分とを含む造血幹細胞用培地。
(10) 他の培地成分が、インターロイキン3、マクロファージ炎症性蛋白、幹細胞因子および血小板因子4からなる群から選択された1以上のサイトカインである(9)に記載の造血幹細胞用培地。
(11) (4)〜(8)のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤の存在下、または(9)もしくは(10)記載の造血幹細胞用培地中において、造血幹細胞を培養することからなる造血幹細胞の培養方法。
(12) (11)に記載の方法で培養された造血幹細胞を、哺乳動物の骨髄に移植することからなる血液疾患の治療方法。
本発明の6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンは、N−アセチルヘパロサンのN−アセチルグルコサミンの第1級水酸基が硫酸化されたものである。
以下、本明細書において、重量平均分子量(Mw)とは、特に、HPLCによるゲル濾過クロマトグラフィー法を用いて測定を行った場合の分子量(Biochem.Biophys.Acta.,1117,60−70(1992))を表す。
なお、該増殖助剤には6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンの他に、水、緩衝液等を含んでいてもよい。
また、本発明の造血幹細胞増殖剤を含む造血幹細胞培養培地中で培養され増殖した造血幹細胞は、血液疾患などの治療を目的として生体への移植用として用いることができる。
(実施例1)
<6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンの合成>
大腸菌K5株培養物から得られた218.7mgのN−アセチルヘパロサンを10mlの蒸留水に溶解した後、蒸留水で平衡化したアンバーライトIR−120B(オルガノ社製)カラム(φ2x15cm)に通塔し、溶出液を3mlごとに分画した。最終的に得られた30本の画分のpHを測定した後、酸性画分を集めN−アセチルヘパロサンの総カルボキシル基の3.0当量に相当する0.42mlのn−トリブチルアミン(TBA)を添加した。この溶液を凍結乾燥することによりN−アセチルヘパロサンTBA塩を得た。特異的に6−O−硫酸化反応を行うために、下記2種類の反応に応じてXmgのN−アセチルヘパロサンTBA塩に対し25mlのジメチルホルムアミド(DMF)を添加し、50℃の温度条件下で4時間撹拌した。さらに、Ymgのピリジン−サルフォトリオキサイド複合体(Py−SO3)を添加した後、50℃にて撹拌条件下2時間の反応を進行させた。なお、X,Yの組み合わせに基づき次に示すA、Bの2種類の反応を実施した。
反応A:X=50.4mg,Y=83.9mg(二糖単位あたり3.1当量)
反応B:X=46.5mg,Y=86.0mg(二糖単位あたり3.8当量)
反応を終結させるために、反応液を氷冷し25mlの蒸留水を添加した後、流水透析した。透析内液を濃縮し、アンバーライトIR−120Bカラム(φ2x15cm)に通塔した。最終的に得られた30本の画分のpHを測定した後、酸性画分を集め1N NaOHを適量加えてpH7.0に調整した。これを0.2M NaClで平衡化したCellulofine GCL−90(生化学工業(株)販売)カラム(φ3x120cm)、次いで蒸留水で平衡化したCellulofine GCL−25(生化学工業(株)販売)カラム(φ3.3x36cm)にて順次精製した。その後、凍結乾燥処理に付すことにより反応A及びB由来の凍結乾燥粉末を、それぞれ42.7mg及び52.2mg得た。
<6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンのゲル濾過HPLCと分子量測定>
各50μg/5μlのN−アセチルヘパロサンおよび6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンを、0.2M NaClで平衡化した4,000、3,000および2,500G タイプの TSKgel−PWXLカラムを上流から順に各一本ずつ連結したCCPM型HPLC(東ソー社製)に付し、ゲル濾過(GPC)−HPLC分析を行った。なお、分析はカラムオーヴンCO−8020(東ソー社製)40℃、0.6ml/分の定流速下で、示差屈折計RI−8020(東ソー社製)を用い、示差屈折(RI)を指標として行った。その結果、図2に示すように、反応A由来画分I(図2a)、反応A由来画分II(図2b)及び反応B産物(図2c)は、それぞれ溶出時間(以下、同様)29.1分、29.0分、及び28.9分 に溶出された。分子量標品を用いた検量線との比較の結果、反応A由来画分I、反応A由来画分II、及び反応B産物の分子量は、それぞれ6.1x104Da、6.2x104Daおよび6.3x104Daと算出された。なお、図2d,e,fには、反応A由来画分I,II及び反応B産物の酵素消化後のパターンを示した。
<6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンの不飽和二糖組成分析>
不飽和二糖組成分析は、Kariya et al.の方法(Comp.Biochem.Physiol.(1992)103B,473−479)に従って実施した。なお、酵素消化は、各40mUのheparitinase I,II及びheparinase(いずれも生化学工業株式会社製)の混合物を用い、各基質200μgにつき37℃にて2時間の条件で行った。酵素消化物を強イオン交換(SAX)−HPLC(CarboPak PA−1 column,Dionex社製)で分析した結果、図3に示すように、反応A由来画分I、反応A由来画分II、及び反応B産物のSAX− HPLCパターンが得られた。図3aは、コントロールのN−アセチルヘパロサンの酵素消化物のSAX−HPLCパターンである。図3b,3c,及び3dのパターンは、それぞれ反応A由来画分I、反応A由来画分II、及び反応B産物のSAX−HPLCパターンを示す。図3aのN−アセチルヘパロサンのパターンでは、2.5分の溶出時間にΔDiHS−0Sの単一ピークのみが観察される。
<造血幹細胞増殖活性の測定>
Blood(2000)95,147−155 の方法に従って、ex vivoでの反応A由来画分I、反応A由来画分II、及び反応B産物の造血幹細胞増殖促進活性を測定する。すなわち、造血幹細胞増殖培地には、12.5%fetal calf serum、12.5%horse serum、2mM L−グルタミン、1000U/mlペニシリン、100U/mlストレプトマイシン及び10-6mol/Lハイドロコルチゾンを含むISCOVE改変ダルベッコ培地(LTBMC培地)を基本培地とし、前記LTBMC培地にIL−3及びMIP−1α添加後、各6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン(反応A由来画分I、反応A由来画分II及び反応B産物)を加え、造血幹細胞増殖培地として用
いる。CD34+/HLA−DR-細胞(造血幹細胞)を6又は24ウェルのマイクロタイタープレートに10〜14×103個/ウェルとなるよう各ウェルに加え、更に、前記造血幹細胞増殖培地を3ml(6ウェル)又は0.8ml(24ウェル)ずつ添加する。培養は、5%CO2中、37℃で行う。2〜5週間後、コロニーを形成したCD34+/HLA−DR-細胞を各ウェルから取り出し、メチルセルロース培地に移す。前記コロニー形成細胞(CFC)の細胞数を限定希釈分析法を用いて計測する。
<活性化部分トロンボプラスチン時間(APTT)測定>
ラットの下大動脈より3.2 %クエン酸1/10容量で採取した血液を1000xg、10分間遠心分離して得た血漿100μlと様々な濃度のN−脱硫酸化N−再アセチル化ヘパリンあるいは各6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン(反応A由来画分I、反応A由来画分II及び反応B産物)各100μlを測定用カップに入れ、37℃で1分間保温する。その後、予め37℃に保温しておいたアクチン(商品名:三菱ウェルファーマ(株))100μlを添加し、さらに2分間保温する。次いで、37℃に保温しておいた0.02M塩化カルシウム溶液100μlを添加し、この時より凝固が起こるまでの時間を血液凝固自動測定装置(KC−10A;アメルング社製)で測定する。
Claims (12)
- N−アセチルヘパロサンを構成するN−アセチルグルコサミンの第1級水酸基が硫酸化された6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン。
- グリコサミノグリカン分解酵素による分解と高速液体クロマトグラフィーによる分析を組み合わせた二糖分析により得られる不飽和二糖組成において、ΔDiHS−6Sで示される2−アセトアミド−2−デオキシ−4−O−(4−デオキシ−α−L−threo−hex−4−エノピラノシルウロン酸)−6−O−スルホ−D−グルコースが30−70モル%である請求項1記載の6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン。
- グリコサミノグリカン分解酵素による分解と高速液体クロマトグラフィーによる分析を組み合わせた二糖分析により得られる不飽和二糖組成において、ΔDiHS−0Sで示される2−アセトアミド−2−デオキシ−4−O−(4−デオキシ−α−L−threo−hex−4−エノピラノシルウロン酸)−D−グルコースが70−30モル%である請求項1または2に記載の6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサン。
- 造血幹細胞の増殖を促進する作用を有し、請求項1〜3のいずれかに記載の6−O−硫酸化N−アセチルヘパロサンを有効成分とする造血幹細胞増殖助剤。
- 造血幹細胞が、ヒト由来造血幹細胞である請求項4記載の造血幹細胞増殖助剤。
- 造血幹細胞が、骨髄、末梢血または臍帯血由来の造血幹細胞である請求項4または5に記載の造血幹細胞増殖助剤。
- インビトロ(in vitro)またはエクスビボ(ex vivo)での細胞培養に用いられる請求項4〜6のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤。
- 生体への移植用造血幹細胞の増殖を促進するための、請求項4〜7のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤。
- 請求項4〜8のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤と造血幹細胞の培養に必要な他の培地成分とを含む造血幹細胞用培地。
- 他の培地成分が、インターロイキン3、マクロファージ炎症性蛋白、幹細胞因子および血小板因子4からなる群から選択された1以上のサイトカインである請求項9に記載の造血幹細胞用培地。
- 請求項4〜8のいずれかに記載の造血幹細胞増殖助剤の存在下、または請求項9もしくは10に記載の造血幹細胞用培地中において、造血幹細胞を培養することからなる造血幹細胞の培養方法。
- 請求項11に記載の方法で培養された造血幹細胞を、哺乳動物の骨髄に移植することからなる血液疾患の治療方法。
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