JP2005192552A - 免疫調節能力の増加されたCpGオリゴデオキシヌクレオチド変形体 - Google Patents
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Abstract
ODN変形体及びこの用途を提供する。
【解決手段】免疫調節機能を有するCPGオリゴデオキシヌクレオチド(Oligodeoxynucleotide、ODN)の3′末端にデオキシリボチミン(dT)の連続配列を結合させる。
【選択図】 図1
Description
ODN変形体及びこの用途に関するものである。
Krieg, Ann. Rev. Immunol., 2002, 20, 709; McClelland & Ivarie, Nucleic Acids Res.1982, 23, 78
receptor)の一つであるtoll−like receptor 9(TLR9)を経由してこれを発現する樹状細胞やB細胞で認識をすることになり、究極的に宿主の固有免疫体系(innate
immune system)を活性化させる。固有免疫体系は、微生物や寄生虫などの感染に対する重要な防衛機制を有しているだけではなく、癌細胞の除去できる機能も有しているため、CpG
ODNを適切にデザインすることにより、免疫系の抗癌性を誘発できる抗癌性免疫補助剤を開発することができる。
ODNは、CpGジヌクレオチドを中心に5′末端と3′末端に少なくとも4個以上の塩基配列を有するが、この塩基配列によりCpG ODNの免疫活性の特徴が決定される。これを大きくK型ODNとD型ODNとに区分するが、K型ODNは、単核球とB細胞を刺激し増殖させるか、免疫グロブリンMまたはIL−6を分泌させる(非特許文献2)。D型ODNは、単核球を活性化して成熟した樹状細胞に分化させるか、ナチュラルキラー細胞を刺激しIL−6を分泌させる(非特許文献3)(非特許文献4)。また、D型ODNは、B220+樹状細胞がIFN−αを生産するようにして、TLR9+ B220+樹状細胞がIL−12を生産するようにする。このような結果から、CpG
ODNが免疫細胞を刺激して免疫増進効果を奏する過程には、いくつかの経路が存在すると判断されている(非特許文献5)(非特許文献6)。
Klinman et al., Microbes Infect., 2002, 897−901 Klinman et al., Eur. J. Immunol., 2002, 32, 2617−22 Gursel et al.,J. Leukoc. Biol., 71, 813−20, 2002。 Hemmi et al.,J Immunol.,2003, 170, 3059−3064; Kerkman et al.,J. Immunol., 2003, 170, 4465−4474。
ODNを用いた抗癌免疫に関する研究は、細胞性免疫と体液性免疫とに区分できて、細胞性免疫は、次の二つの方法により行われている。
ODNを免疫補助剤と共に使用する方法である。この方法を使用することにより、抗原提示能力の優れた樹状細胞は、癌抗原のペプチドを受け入れて、CpG ODNにより活性化されることにより、細胞毒性T細胞を活性化させることができる。活性化された細胞毒性T細胞は、効率的に癌細胞を除去することができる。この方法により、マウスからRMA(非特許文献7)を除去する結果が得られた。このような免疫反応では、IFN−γなどが重要な作用をした。樹状細胞の活性化を経由する場合ではないが、ODN 2006がB細胞に直接作用し、B細胞の抗原提示機能と、T細胞との相互作用のできる補助刺激因子の発現とを増進させることにより、樹状細胞の作用と同様な原理で抗癌免疫を活性化させることもできる(非特許文献8)。
Stern et al., J.Immunol.,2002, 168, 6099−6105 Jahrsdorfer et al., J.Leukoc. Biol., 2001, 69, 81−88
class I 分子上に癌抗原の提示を必須とする。しかし、多くの場合、癌細胞の表面に癌抗原の提示の水準が、細胞毒性T細胞が細胞毒性を示すに十分な水準ではないため、樹状細胞の活性化による癌細胞除去方法は効率的ではない場合がある。この場合、細胞表面の癌抗原提示と無関係に細胞毒性を示すナチュラルキラー細胞の活性化は、この限界を克服できる方法となる。また、活性化されたナチュラルキラー細胞は、単核球または大食細胞を活性化させて、抗原非依存性抗免疫体系を活性化させる。この方法により、マウスで、ODN 1584はB16.F1黒色腫を、ODN 1826はEL4リンパ腫を軽減させた(非特許文献9)。また、マウスに、C26大腸癌を誘発してODN 1826を癌部位に直接注射した時、癌組織を軽減させたが、この場合は、ナチュラルキラー細胞の作用と共に他の免疫作用も必要な場合である(非特許文献10)。マウスから誘発された38C13
B細胞リンパ腫は、CpG ODNを単独処理した時誘発される免疫反応によっては除去できないが、38C13リンパ腫細胞の特異抗原に対する単クローン抗体を共に処理する場合は、ナチュラルキラー細胞が抗体依存性細胞毒性(antibody−dependent
cell cytotoxicity)を発揮し、38C13リンパ腫を除去することができる(非特許文献11)。
Ballas et al.,J. Immunol., 2001, 167, 4878−4886 Heckelsmiller et al.,J. Immunol., 2002, 169, 3892−3899 Woodridge at al.,Blood, 1997, 89,2994−2998
B cell lymphoma)に対し効果を示す商品化された単一クローン抗体であるが、最近、CpG ODNと組合した時抗癌性免疫反応を増進させるかに対する臨床研究が進行中であり、この結果は、数年後報告できると予想される(非特許文献12)。
Jahrsdorferら,Sem. Oncol., 2003, 30, 476−482
ODN自体は、生体に存在するDNA分子と構造上の差のない天然構造であるため、細胞毒性を示さない長所がある。しかし、天然構造であるため、生体内で分解されやすく、免疫活性能力の半減期が短い欠点がある。これを克服するために、一回投与量を増やす方法があるが、これは経済的に好ましい方法ではない。従って、CpG
ODNを合成する時、DNA分子の骨格であるフォスフォジエステル結合をフォスフォロチオエート結合に変形すると、CpG ODNの免疫活性効果が10〜100倍増加する(非特許文献13)。しかし、この方法は、天然構造ではないことから現れる細胞毒性、骨格変形により、本来のCpG
ODNの免疫活性能力の変化と免疫細胞の収容速度の変化を誘発する可能性があるため、全てのCpG ODNに適用できる方法であるかは、まだ確認されていない状態である。
Sester et al., J. Immunol., 2000, 165, 4165−4173
ODNがヒトにおいても対等な効果を示したとの報告はまだない。また、CpG ODNの作用機制はまだ知られていないため、免疫活性能力の優れたCpG ODNの開発に多くの困難がある。従って、まだ臨床実験段階まで至ったCpG
ODNはなくて、既存のCpG ODNより免疫刺激能力が優秀であるか、相対的に副作用のないCpG ODNの開発が必要である。
ODN変形体を開発し、本発明を完成した。
ODN変形体及びこの用途に関するものである。
ODN」は、免疫調節機能を示すCpGモチーフ(5′−purine purine CpG pyrimidine pyrimidine−3′)を有するオリゴデオキシヌクレオチドを意味する。用語「dTの連続配列」は、デオキシリボチミンが少なくとも4個以上連続的にフォスフォジエステル結合によりCpG
ODNに連結された形態を意味する。
ODNの塩基配列を次の表1に示す。
ODNが生体内で適切な免疫学的効果を奏するためには、その投与量を増やすか、核酸分解酵素の攻撃が避けられる構造を有していなければならない。本発明が提供するCpG
ODNは、骨格構造をフォスフォロチオエート結合にすることにより、核酸分解酵素の攻撃を避けて生体内での半減期を延長した。しかし、フォスフォロチオエート結合自体による非特異的免疫反応の誘発により、安全性に多くの問題を有している。これに対し、本発明者らがフォスフォロチオエート結合を有する50μgのODNをアルミニウムヒドロキシドで処理して、CHO細胞由来の抗原
gDE2tと共にマウスに注射してみた結果、注射部位から肉芽腫及び壊死などの異常所見が発見されず、その安定性を確認することができた。
ODN候補が、U−937、RAW264.7、THP−1などのリンパ腫細胞株を利用する一次スクリーニングによって選択された。細胞株は、実質的に本発明が提供しようとするCpG
ODNが目標とする一次細胞と異なる免疫反応を示す可能性があるため、これを確認するために、再びマウス脾臓細胞とマウス腹腔大食細胞をどのくらい活性化させるかを確認した。その結果、TNF−α、IL−6、IL−12及びIFN−γ
mRNA発現が他のCpG ODNに比べ最も多く増加して、大食細胞表面のMHC class IIとB7.2タンパク質の発現が増加する様相を示した。これにより、最終的にマウスの脾臓細胞とヒトの末梢血液単核球に含まれているナチュラルキラー細胞の活性から、抗癌免疫活性化能力が優秀であることを確認することができた。
ODNは、高いTh−1免疫反応誘導活性を示すと共に、生体内で毒性を示さないた安定性に優れており、効果的なワクチン補助剤として使用することができる。
以下、実施例を通じて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
本発明で使用したCpG ODNは、MetaBion社(ドイツ)に依頼して合成したが、塩基間の全てのフォスフォジエステル結合は、フォスフォロチオエート結合により置換された。高性能液体クロマトグラフィーとNAP精製過程を経て純度を最大に維持した後、凍結乾燥された状態で供給を受けた。本発明で使用したCpG
ODNの塩基配列は、前記表1に示した。
本実験は、細胞株を利用した免疫活性化実験を通じて抗癌免疫活性化能力があると期待されるCpG
ODNと、既に免疫活性能力が報告されているCpG ODNとを、各々マウスの脾臓細胞と腹腔大食細胞に処理した時、これら細胞の増殖を誘発するかどうかを確認するために、次のように実験した。
ODNに比べ、高い増殖誘導能力を示し、対照群(非処理群)や非CpG ODNであるKSK−1に比べ、統計的に有意な増殖誘導能力を示した。
ODNの効果に比べ、目立つ結果を示した。脾臓細胞の増殖を誘導するためには、CpG ODNを48時間処理しなければならなかった。72時間 CpG ODNを処理した時は、増殖の程度が減少した。KSK−13の脾臓細胞増殖誘導能力は、マウスに効果的なKSK−2に比べ、平均値は多少低かったが、統計的に有意な差ではなかった。
本実施例では、マウス腹腔大食細胞の増殖を誘導することが確認されたKSK−13が、これら細胞で抗癌免疫に係わるサイトカインの分泌をどのくらい誘導するかを調べるために、次のような実験を行った。
CpG ODNで12時間処理した。処理された細胞からTRIzol(登録商標)試薬(Life Technology社、アメリカ)を使用しトータルRNAを分離して、吸光度を測定しトータルRNAの濃度を決定した。この中で1μgを鋳型RNAとして、MMLV逆転写酵素(Promega社、アメリカ)を使用しcDNAを合成した。合成されたcDNAを鋳型DNAとして、次の表2のPCR条件によりTNF−α、IL−6、IL−12そしてIFN−γPCRを行った。
mRNAの発現を増加させた(図2)。このような差異は、in vivoでさらに大きいが、これは、KSK−13が生体内条件でさらにその効果を発揮するとの証拠となる(図3)。
本実施例では、マウス脾臓細胞の増殖を誘導することが確認されたKSK−13が、これら細胞で抗癌免疫に係わるサイトカインの分泌をどのくらい誘導するかを調べるために、次のような実験を行った。
Technology社、アメリカ)を使用しトータルRNAを分離して、吸光度を測定しトータルRNAノ濃度を決定した。この中の1μgを鋳型RNAとして、MMLV逆転写酵素(Promega社、アメリカ)を使用しcDNAを合成した。合成されたcDNAを鋳型DNAとして、上記表2のPCR条件によりTNF−α、IL−6、IL−12そしてIFN−γPCRを行った。PCR産物を1%アガロースゲル電気泳動に付して、各条件の反応で各々のサイトカインmRNAの発現を比較した。
本実施例では、試験管内でマウス腹腔大食細胞を活性化させることが確認されたKSK−13が、生体内でも腹腔大食細胞を活性化させるかを確認するために、次のような実験を行った。
class II単クローン抗体で標識して、細胞分析機により分析した。図6及び7で、対照群は非処理群を示し、KSK−1、KSK−2、KSK−7、KSK−12、KSK−13は各々0.6μg/mlを処理したことを示し、LPSは、0.1μg/mlを処理したことを示す。
ODNであるKSK−12の17.3%に近接した活性化比率であり、非CpG ODNであるKSK−1の5.1%とは確実な差のある数値である(図6)。
class II分子の発現は、基準範囲内で26.5%を示したが、本発明の提示するKSK−13は、33.7%を示した。この数値は、典型的なマウスCpG
ODNであるKSK−2の35.8%や、ヒトCpG ODNであるKSK−12の30.2%に類似した活性化比率であり、非CpG ODNであるKSK−1の25.0%とは確実な差のある数値である(図7)。
class II分子とB7.2分子の発現増加は、腹腔大食細胞が抗原提示能力を活性化させたということを意味するため、KSK−13の免疫増強剤としての効力を立証する結果である。
本実施例では、試験管内でマウス脾臓細胞を活性化させることが確認されたKSK−13が、生体内で脾臓細胞を活性化させるかを確認するために、次のような実験を行った。
class II単クローン抗体で標識して、細胞分析器により分析した。
ODNであるKSK−12の6.85%よりは高い数値であって、非CpG ODNであるKSK−1の3.31%とは確実な差のある数値である(図8)。
ODNであるKSK−12の18.6%よりは高い活性化比率であって、非CpG ODNであるKSK−1の17.5%とは確実な差のある数値である(図9)。
class II分子とB7.2分子の発現増加は、脾臓細胞中のB細胞などの抗原提示能力を活性化させたということを意味するため、KSK−13の免疫増強剤としての効力を立証する結果である。
本実施例では、マウス脾臓細胞と腹腔大食細胞を活性化させることが確認されたKSK−13が、マウスにB型肝炎表面抗原を免疫させる時ワクチン補助剤としての効能を有するかを確認するために、次のような実験を行った。
Freund‘s Adjuvant)を使用した場合と同一な閾値を示した。この結果から、KSK−13はワクチン補助剤として効果的であることが分かる。
本実施例では、マウス脾臓細胞と腹腔大食細胞を活性化させることが確認されたKSK−13が、脾臓細胞に含まれたナチュラルキラー細胞の癌細胞除去能力を活性化させるかを確認するために、次のような実験を行った
ODNで2時間処理した後、5×103個の51Cr標識されたYAC−1細胞と共に図10及び11に示した比率で培養した。上層液を取ってガンマ計数器を使用し、溶出された51Crの量を測定した。
1)B16黒色腫肺転移抑制効果
全てのB16黒色腫細胞を熱で非活性化させた10%の牛胎児血清の添加されたRPMI
1640で培養した後、 2×105 黒色腫細胞(0.2mlPBS)をマウスの側面尻尾静脈に注射した。B16黒色腫細胞を転移させたマウス(無菌状態の生後7〜8週の雌マウスC57BL/6)を治療するために、治療用CpGオリゴ核酸を各マウスに10μgずつ腹腔内(I.P.)投与した(投与日:1、3、5、7、9日)(図12)。
各群当たり6匹ずつのC57BL/6マウスにEL4(T cell lymphoma, 2x104)細胞を静脈注射し癌細胞を接種して、1、3、5、7、9日目、CpG ODN (10μg/mouse)を腹腔注射した後、生存率を比較測定した。KSK−13のCpG
ODNの場合、6匹のマウス全部の生存率が延長し、特に2匹は、60日以後にも死亡せず生き続けられた。
ヒト末梢血液単核球細胞からネガティブセレクション(negative selection)により単核球を除いたB、T、NK
細胞のみを使用して、マウスの脾臓細胞からは、非吸着性(non−adherent)細胞のみを分離し、即ち、大食細胞を除いた細胞をエフェクター細胞として使用して、NK細胞に選択的に作用する、ヒト末梢血液単核球細胞ではK523腫瘍細胞を、マウスの脾臓細胞ではYAC−1を 標的細胞として使用し、NK 活性を51Cr release assayにより測定して確認した(図15)。
ICRマウス6匹に本発明のKSK−13を0.5mgずつ筋肉注射(大殿筋または三角筋)の方法により投与した。一匹のマウスには2週間隔で2回、他の一匹のマウスには2週間隔で2回投与した後、一ヶ月の間をおいてから再び2週間隔で3回の投与を実施した。
注射用水にB型肝炎表面抗原1mg、本発明のdTの修飾されたオリゴデオキシヌクレオチド10mg、アルミニウムヒドロキシド1mg、チメロサール0.01w/v%、緩衝剤として適量のリン酸二水素カリウムとリン酸水素ナトリウム、適量の塩化ナトリウム、そして酸度調整のために塩酸を適量加えて、ワクチンを製造した。
Claims (8)
- 免疫活性を示し、CpGモチーフを有するフォスフォジエステルオリゴデオキシヌクレオチド(ODN)において、ODNの3′末端にデオキシリボチミン(deoxyribothimine、dT)の連続配列が結合されることを特徴とする、dTの修飾されたオリゴデオキシヌクレオチド。
- 前記dTの連続配列が4〜15個のヌクレオチド長さを有する、請求項1記載のdTの修飾されたオリゴデオキシヌクレオチド。
- 前記ODNが脾臓細胞、大食細胞または末梢血液単核細胞の免疫活性を増進させる、請求項1記載のdTの修飾されたオリゴデオキシヌクレオチド。
- 前記ODNが配列番号5で表される塩基配列である、請求項1乃至3のいずれか1項記載のdTの修飾されたオリゴデオキシヌクレオチド。
- 請求項1に記載のdTの修飾されたオリゴヌクレオチドを有効成分として含むことを特徴とするワクチン補助剤。
- 他の抗原と共に追加的に使用される、請求項5記載のワクチン補助剤。
- 前記ワクチンがB型肝炎の予防または治療用のものである、請求項5または6記載のワクチン補助剤。
- 請求項1に記載のdTの修飾されたオリゴヌクレオチドを有効成分として含むことを特徴とする抗癌剤。
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