JP2004503498A - カンナビジオール誘導体を含んでなる医薬組成物 - Google Patents
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Abstract
本発明は、カンナビジオール誘導体及び鎮痛性、抗不安性、抗痙攣性、神経保護性、抗精神病性及び抗癌性活性を有する抗炎症剤であるカンナビジオール誘導体を含んでなる医薬組成物に関する。本発明は、更にカンナビジオール誘導体の調製のための方法に関する。これは、更にカンナビジオール誘導体又は同一物を含んでなる医薬製剤によるヒトの治療の方法における、カンナビジオール誘導体及び同一物を含んでなる医薬組成物の薬剤の調製における使用に関する。
Description
【0001】
本発明は、カンナビジオール誘導体及び鎮痛性、抗不安性、抗痙攣性、神経保護性、抗精神病性及び抗癌性活性を有する抗炎症剤であるカンナビジオール誘導体を含んでなる医薬組成物に関する。
【0002】
カンナビジオール(CBD、1a)は、ハシーシ及びマリファナのような殆んどのタイマ製剤中の主要な非向神経性カンナビノイドである。
【0003】
CBDは、Δ9−テトラヒドロカンナビノール(Δ9−THC)において典型的な、向神経性の効果のいずれをも起こさない(Martin,Pharmacol.Rev.,38,45−74 1986)。CBDは、既知のカンナビノイド受容体CB1又はCB2に結合せず、そして従ってこれらの受容体によって仲介される中枢又は末梢的効果を起こさない。然しながら、in vitroアッセイ、動物試験、並びにいくつかのヒトの予備的試用において、多くの薬理学的効果を示しており、そのあるものは、潜在的な治療的価値がある。従って、最近の報告は、マウスの腹膜マクロファージによる酸化窒素(NO)生産の阻害、及びヒトの末梢血単核細胞によるTNF、IL−1α及びIFNγの抑制のような、CBDの免疫細胞へのin vitro効果を記載している(Coffey et al.,Intern.J.Immunopharmacol.,18,749−752[1996];Watzl et al.,Int.J.Immunopharmicol.,13,1091−1093[1991];Srivastava et al.,Immunopharmacol.,179−185[1998];概観に対してはKlein et al.,Immunol.Today,19,373−381[1998]を参照されたい)並びに“Malfait et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.[U.S.A.],97,9561−9566[2000]”。これらのin vitroの研究は、動物における鎮痛性及び抗炎症性の効果についての初期の報告に支持を与える。Formukong等(Inflammation 12,361−371[1988])は、マウスのフェニルベンゾキノン身もだえ試験(標準的鎮痛性アッセイ)において、CBDが、アスピリンより大幅に強力であることを見出している。マウスの耳のテトラデカノイルホルボールアセタブル(tetradecanoylphorbolacetable)(TPA)誘導の紅斑(抗炎症性アッセイ)において、CBDは、100μg/ml溶液の適用において炎症反応の92%阻害を起こした。
【0004】
CBDは、動物モデル、並びに神経性疾病(概観についてはConsroe,(Neurobiol.Disease,5,534−551[1998]を参照されたい)、不安症(Guimaraes et al.,Gen.Pharmacol.,25,161−164[1994];Zuardi et al.,Psychopharmacology[Berlin],76,245−250[1982])、及び精神病(Zuardi et al.,J.Clin.Psychiatry,56,485−486[1995])を持つ患者において、いくつかの潜在的に治療的な効果を生じることが見出されている。Hampson等(Proc.Natl.Acad.Sci.USA,95,8268−8273[1998])は、CBDが神経保護性の抗酸化剤であることを見出している。
【0005】
驚くべきことに、鏡像異性体のTHCは、それらの生物学的活性が異なる(Mechoulam et al.,“Marijuana/Cannnabinoids:Neurobiology and Neurophysiology”ed.L.Murphy and A.Bartke,CRC Press,Boca Raton,Florida,pp 1−33[1992])が、両方のCBD鏡像異性体は、同様な抗痙攣性及びある種のホルモン的特性を有する(Leite et al.,Pharmacol.,124,141−146[1982];Cordova et al.,Psychoneuroendocrinology,5,53−62[1980])。然しながら、CBD鏡像異性体の比較薬理学は、更には探求されていない。更にCBD代謝産物の合成及び薬理学は未知である。
【0006】
前記の合成及び薬理学は、いまや探求され、そして驚くべきことに以下の一般式I:
【化2】
[ここにおいて、R’は、COOH又はCH2OHを表し;そして
R’’は、
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
を表す]
の化合物及び同一物を含んでなる医薬組成物が、抗炎症剤であり、そしてこれが鎮痛性、抗不安性、抗痙攣性、神経保護性、抗精神病性及び抗癌性活性を有することが見出された。
【0007】
従って、本発明は、活性成分として一般式Iの化合物を含んでなる鎮痛性、抗不安性、抗痙攣性、神経保護性、抗精神病性及び抗癌性活性を有する抗炎症剤である、一般式Iの化合物を含んでなる医薬製剤にある。
【0008】
一般式Iの化合物は、R’’がC5H11を表す物を除いて、新規であり、そして本発明の範囲内である。
【0009】
本発明による医薬製剤は、例えば錠剤、カプセル、粒剤、懸濁液、溶液等である、いかなる適した形態をも有することができる。これらは、活性成分に加えて、担体、崩壊剤、潤滑剤、安定剤、芳香剤のような賦形剤及び他の医薬的に有効な化合物をさえ含んでなることができる。
【0010】
本発明による医薬製剤は、慣用的な方法によって調製することができる。これらは、各種の成分を必要な量を含んでなることができる。
一般式の化合物及び同一物を含んでなる医薬製剤は、患者に対して0.01ないし20mg/kg間の化合物の一日当たり投与量で都合よく与えられる。
【0011】
本発明は、更に一般式Iの化合物及び同一物を含んでなる医薬製剤の、製剤の調製における使用にある。
本発明は、更に一般式Iの化合物又は同一物を含んでなる医薬製剤による、ヒトの治療のための方法にある。
【0012】
本発明は、更に一般式Iの化合物の調製のための方法にある。
R’=CH2OHであり、そしてR’’=
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
である、一般式Iの化合物の調製のための方法は、R’=CH3であり、そしてR’’が、上記に示した置換基の一つである一般式1の化合物から出発して、8工程を含む。
【0013】
この方法は、更なる化学的転換(工程a)、それに続く環の二重結合の選択的エポキシド化(工程b)を可能にするためのフェノール型基の遮断、エポキシド環を選択的に開環して、アリル型アルコールを形成すること(c)、次いでアリル転位によって所望する化合物のジメトキシ誘導体に導く、いくつかの工程(d、e、f、g)を含む。最後の工程(h)は、過酷な条件下の脱メトキシル化を含んで、所望するアリル型アルコールを形成する。
【0014】
Rが、CH2OHを表し、そしてR’’が、C5H11又は1’,1’−ジメチルヘプチル(DMH)を表す一般式Iの化合物の調製のための特定の方法は:
a.CBD又はそのジメチルヘプチル同族体を、ヨウ化メチル及び炭酸カリウムとDMF中で反応させ;
b.得られたジメチルエーテルを、3−クロロ安息香酸と反応させて、対応するエポキシドを得て;
c.得られたエポキシドを、メチルマグネシウムN−シクロヘキシル−イソプロピルアミドとトルエン中で反応させ;
d.工程cで得られた化合物をアセチル化し;
e.得られたアセチル化物を、臭化t−ブチルジメチルシリルと反応させ;
f.得られた臭化物を、(nBu)4NH4OAcとアセトン中で反応させて、アリルアセテートジエーテルを得て;そして
g.得られたエーテルを、水酸化ナトリウム溶液中で加熱し;そして
h.得られた化合物を、ヨウ化メチルマグネシウムと加熱して、必要とする化合物を得ること;
を含んでなる。
【0015】
R’=COOHであり、R’’=
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
である一般式Iの化合物の調製のための方法は、出発物質として図3A及び3Bに記載した合成において得られた中間体化合物(一般式6)を含む。これは、図3A、3B及び4において、R’’=C5H11である(6a)又はR’’=DMHである(6b)によって例示されている。第1の工程は、フェノール型基の脱メトキシル化(工程a)、それに続くアセチル化(b)を含む。一般式(12)を持つトリアセテートは、単一工程(c)で、転位及び臭素化して、臭化物(13)を得ることができ、これは酸化(d、e)及び加水分解(f)によって、所望の化合物に導く。
【0016】
R’が、COOHを表し、そしてR’’が、C5H11又はDMHを表す一般式Iの化合物の調製のための特定の方法は:
a.上記の工程dで得られた化合物を、ヨウ化メチルマグネシウムと反応させ;
b.得られたトリオールをアセチル化し;
c.得られたアセチル化物を、転位し、そして臭素化して、対応する臭化物を得て;
d.得られた臭化物を、クロム酸カリウムでヘキサメチルホスホン酸トリアミド中で酸化し;
e.得られたアルデヒドを、亜塩素酸ナトリウムで酸化し、そして水酸化ナトリウムの水溶液と反応させて、所望の化合物を得ること;
を含んでなる。
【0017】
上記の特定の方法は、図3A、3B及び4に例示されている。
R’が、CH3を表し、そしてR’’が
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
を表す一般式Iの化合物の出発物質は、図5に例示した方法で調製され、ここにおいてメンタ−2,8−ジエン−1−オールは、5位で置換されたレゾルシノールと縮合される(Leite et al.)。
【0018】
本発明は、次に以下の実施例及び実験を参照して、同一物に限定されることなく例示される。図に対する言及は、本願明細書に付属されたものを参照する。
I.実施例
全ての実施例において、1H NMRスペクトルは、Varian VXR−300S分光光度計で、TMSを内部標準として使用して測定した。全ての化学シフトは、ppmで報告されている。比旋光度は、Perkin−Elmer 141偏光計で決定した。カラムクロマトグラフィーは、ICNシリカゲル60Aで行った。有機溶液は、無水の硫酸マグネシウムで乾燥した。
【0019】
実施例1
ジメトキシ−CBD(4a)
CBD 1a(3g、9.95mmol)を、DMF(55ml)中に溶解した。K2CO3(7.35g、53.3mmol)及びCH3I(2.3ml、36.9mmol)を加え、そして混合物を室温で4時間撹拌した。反応を出発物質が消失するまでTLC(10%エーテル/P.E,)でモニターした。次いで200mlの水を加え、そして溶液をエーテルで抽出した。有機相を中性のpHまで食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。溶媒を減圧下で除去して、3.2gの産物(収率98%)を得た。
【化3】
【0020】
実施例2
ジメトキシ−CBD−DMH(4b)
出発物質としてのCBD−DMHにより、(4a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化4】
[α]D −98.1°(c 2.04mg/ml、CHCl3)。
【0021】
実施例3
1,2オキシド−ジメトキシ−ヘキサヒドロカンナビノール(5a)
3−クロロ−過安息香酸(70%純度1.2g、4.85mmol)を、50mlのCH2Cl2に溶解し、そして溶液を0℃に冷却した。(4a)(1.65g、4.82mmol)の10mlのCH2Cl2中の溶液をゆっくりと注入した。反応混合物を0℃で30分間撹拌し、そしてTLC(10%エーテル/P.E.)によってモニターした。反応物をNaHCO3の飽和水溶液の添加によってクエンチし、そして有機相を分液漏斗によって分離し、次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをフラッシュクロマトグラフィー(7%エーテル/P.E)にかけて、エポキシ誘導体(5a)(収率65%)を得た。
【化5】
【0022】
実施例4
1,2オキシドジメトキシヘキサヒドロカンナビノールDMH(5b)
(5a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、しかし収率はわずかに良好であった(70%)。
【化6】
【0023】
実施例5
(3R,4R)−3−[2,6−ジメトキシ−4−ペンチルフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(6a)
ヘキサン中のブチルリチウム(5.6ml、14mmol)を、N−シクロヘキシルイソプロピルアミン(1.85ml、11.3mmol)の無水のトルエン(10ml、ナトリウム上で蒸留)中の0℃の溶液にN2雰囲気下で加えた。15分後、エーテル中の臭化メチルマグネシウム(3.8ml、11.4mmol)を注入し、そして反応混合物を45分間室温で撹拌した。(5a)(1g、2.79mmol)の乾燥トルエン(3ml)中の溶液を加え、そして混合物を40℃に加熱し、そして2時間撹拌した。次いで反応物を0℃に冷却し、そして5MのHClのゆっくりとした添加によりクエンチした。有機相を分離漏斗によって分離し、そして次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、残留物を得て、これはTLC(20%エーテル/P.E.)でただ一つのスポットを示し、そして1H−NMRによって(6a)(収率97%)であることが証明された。
【化7】
【0024】
実施例6
(3R,4R)−3−[4−(1’,1’ジメチルヘプチル)−2,6−ジメトキシフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(6b)
(6a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化8】
【0025】
実施例7
(3R,4R)−3−[2,6−ジメトキシ−4−ペンチルフェニル]−2−アセトキシ−4イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(7a)
(6a)(0.9g、2.5mmol)を、ピリジン(2ml)及び無水酢酸(2ml)中に溶解し、そして反応物を18時間室温で撹拌した。次いで溶液を氷水(20ml)中に注ぎ、そしてエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を1NのHCl、重炭酸ナトリウム水溶液及び食塩水で連続して洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これはTLC(20%エーテル/P.E.)でただ一つのスポットを示し、そして1H−NMRによって(7a)(収率約100%)であることが証明された。
【化9】
【0026】
実施例8
(3R,4R)−3−[4−(1’,1’−ジメチルヘプチル)−2,6−ジメトキシフェニル]−2−アセトキシ−1−メチレンシクロヘキサン(7b)
(7a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化10】
【0027】
実施例9
7−ブロモ−ジメトキシCBD(8a)
(7a)(1g、2.5mmol)を、乾燥CH2Cl2(50ml、CaH2上で蒸留)中に窒素雰囲気下で溶解し、そしてTMSBr(1.6ml、12.1mmol)を加えた。反応物を室温で4時間撹拌し、次いでNaHCO3の飽和水溶液と震盪し、そして有機相を分離漏斗によって分離し、次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。溶媒の除去により残留物を得て、1H−NMR及びTLC(20%エーテル/P.E.)は、支配的に単一の化合物であることを示し、これを精製なしで直接使用した。
【化11】
【0028】
実施例10
7−ブロモ−ジメトキシCBD DMH(8b)
(8a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化12】
【0029】
実施例11
7−アセトキシ−ジメトキシCBD(9a)
(8a)(570mg、1.35mmol)を、アセトン(15ml、4A°モレキュラーシーブ上で保存)及び酢酸テトラブチルアンモニウム(450mg、1.49mmol)中に溶解した。混合物を撹拌し、還流し、そしてTLC(20%エーテル/P.E.)でモニターした。2時間後、出発物質はもはや存在しなかった。アセトンを減圧下で除去し、そして残留物を水(20ml)で希釈し、そしてエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を重炭酸ナトリウム水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、520mgの油状の残留物(96%収率)を得た。
【化13】
【0030】
実施例12
7−アセトキシ−ジメトキシCBD DMH(9b)
(9a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、収率は僅かに悪かった(90%)。
【化14】
【0031】
実施例13
7−ヒドロキシ−ジメトキシCBD(10a)
(9a)(500mg、1.25mmol)を、エタノール(20ml)中に溶解し、そして1NのNaOH(2ml)を加え、そして反応物を1時間還流した。エタノールを減圧下で除去し、そして残留物を水(20ml)で希釈し、そして2NのHClを酸性のpHまで加えた。溶液をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、430mgの油状の残留物(96%収率)を得た。
【化15】
【0032】
実施例14
7−ヒドロキシ−ジメトキシCBD DMH(10b)
(10a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化16】
【0033】
実施例15
7−ヒドロキシCBD(2a)
グリニャール試薬を、マグネシウム(100mg、4.17mmol)及びCH3I(0.26ml、4.17mmol)で、乾燥エーテル(3ml、ナトリウム上で蒸留)中で窒素雰囲気下で調製した。エーテル(1ml)中の(10a)(420mg、1.17mmol)を、撹拌された溶液にゆっくりと加え、そしてエーテルを蒸発して除去した。残留物をN2雰囲気下で210℃まで45分間加熱した。次いでフラスコを室温まで冷却し、そして反応物を氷水でクエンチした。水溶液をエーテルで数回抽出した。混合した有機抽出物をMgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(25%エーテル/P.E.)にかけて、150mgの純粋な(2a)(収率40%)を得た。
【化17】
【0034】
実施例16
7−ヒドロキシCBD−DMH(2b)
(2a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化18】
図1に示すような、アラキドン酸(A’A)誘導の耳の腫張の30分後の、CBD(1a)、7−ヒドロキシ−CBD(2a)(実施例15)、及び7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)(実施例16)並びにインドメタシンの効果。マウス(メスのSabra)を、4.5mgのA’A(5μlのEtOH中)を耳の片方の内側の表面に分散して処理した。他方の耳は、5μlのEtOHで処理した。耳の腫張を、耳の厚みをダイヤル厚みゲージ(Mitutoyo、日本)で、処理の直前及びA;Aの適用後30分に測定することによって評価した。薬物(カンナビノイドに対して40mg/kg、そしてインドメタシンに対して20mg/kg)を、A’A処理の60分前に腹膜内に注射した。***は、p<0.001を示す。
【0035】
実施例17
(3R,4R)−3−[2,6−ジヒドロキシ−4−ペンチルフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(11a)
グリニャール試薬を、マグネシウム(84mg、3.5mmol)及びCH3I(0.2ml、3.5mmol)で、N2雰囲気下の乾燥エーテル(1ml、ナトリウム上で蒸留)中で調製した。エーテル(0.5ml)中の(6a)(360mg、1mmol)を、撹拌された溶液に加え、そしてエーテルを蒸留した。残留物をN2雰囲気下で210℃まで45分間加熱した。次いでフラスコを室温まで冷却し、そして反応物を氷水でクエンチした。水溶液をエーテルで数回抽出した。混合した有機抽出物をMgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(25%エーテル/P.E.)にかけて、132mgの純粋な(11a)(収率40%)を得た。
【化19】
【0036】
実施例18
(3R,4R)−3−[4−(1’,1’−ジメチルヘプチル)−2,6−ジヒドロキシフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(11b)
(11a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、収率は僅かに良好であった(45%)。
【化20】
【0037】
実施例19
(3R,4R)−3−[2,6−ジアセトキシ−4−ペンチルフェニル]−2−アセトキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(12a)
(11a)(100mg、0.3mmol)を、ピリジン(0.5ml)及び無水酢酸(0.5ml)中に溶解し、そして反応物を18時間室温で撹拌した。次いで溶液を氷水(10ml)に注ぎ、そしてエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を1NのHCl、重炭酸ナトリウム水溶液及び食塩水で連続して洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、136mgの油状の残留物を得て、これはNMRによって(12a)(収率約100%)であることが証明された。
【化21】
【0038】
実施例20
(3R,4R)−3−[2,6−ジアセトキシ−4−(1’,1’ジメチルヘプチル)フェニル]−2−アセトキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(12e)
(12a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化22】
【0039】
実施例21
7−ブロモ−ジアセテートCBD(13a)
(12a)(100mg、0.2mmol)を、乾燥CH2Cl2(10ml、CaH2上で蒸留)中に窒素雰囲気下で溶解した。TMSBr(0.13ml、1mmol)及びZnI2(3.4mg、0.01mmol)を加えた。反応物を室温で4時間撹拌し、次いでこれをNaHCO3の飽和水溶液と震盪し、そして有機相を分離漏斗で分離し、次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。溶媒の除去により残留物を得て、これを精製なしで直接使用した。
【化23】
【0040】
実施例22
7−ブロモ−ジアセテートCBD DMH(13b)
(13a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化24】
【0041】
実施例23
7−ノル−ホルミル−ジアセテートCBD(14a)
(13a)(100mg、0.21mmol)、18−クラウン−16(55.4mg、0.21mmol)及びK2CrO4(50.9mg、0.26mmol)を、無水のHMPT(2ml、真空下で蒸留し、そして4A°モレキュラーシーブ上で保存)中に溶解した。混合物を撹拌し、そして110℃で2時間加熱した。反応物を冷却し、そして1MのHClの添加によってクエンチし、そして水相をエーテルで抽出した。有機相を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(20%エーテル/PE.)にかけて、27.7mgの純粋な(14a)(収率32%)を得た。
【化25】
【0042】
実施例24
7−ノル−ホルミル−ジアセテートCBD DMH(14b)
(14a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、収率は僅かに悪かった(28%)。
【化26】
【0043】
実施例25
7−ノル−カルボキシ−ジアセテートCBD(15a)
NaClO2(80%純度82.6mg、0.73mmol)を、(14a)(70mg、0.17mmol)、2−メチル−2−ブテン(0.45ml、4.25mmol)、KH2PO4(0.2ml)の飽和水溶液の、t−ブタノール(4ml)中の撹拌された混合物に少量ずつ加えた。反応物を室温で5時間撹拌し、そしてTLC(50%エーテル/P.E.)によってモニターした。次いで水(20ml)を加え、そして混合物を酢酸エチルで数回抽出した。有機相を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(30%エーテル\PE.)にかけて、61.8mgの(15a)(収率85%)を得た。
【化27】
【0044】
実施例26
7−ノル−カルボキシ−ジアセテートCBD DMH(15b)
(15a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化28】
【0045】
実施例27
7−ノル−カルボキシCBD(3a)
(15a)(50mg、0.12mmol)を、エタノール(10ml)中に溶解し、そして1NのNaOH(0.5ml)を加え、そして反応物を1時間還流した。エタノールを減圧下で除去し、そして残留物を水(20ml)で希釈し、そして混合物を2NのHClで酸性化した。溶液をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(30%エーテル\PE.)にかけて、38.2mgの(3a)(収率95%)を得た。
【化29】
【0046】
実施例28
7−ノル−カルボキシCBD DMH(3b)
(3a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化30】
【0047】
耳のアラキドン酸誘導の耳の腫張後の、各種の投与量のCBD−7−酸(3a)(実施例28)、及びCBD−DMH−7−酸(3b)(実施例28)並びにインドメタシン(20mg/kg)の効果を、図2に示す。効果は、アラキドン酸の投与後の75分間にわたって測定した。実験の詳細は、CBD(1a)及びその誘導体の試験に対して記載したものと同一である。
***はp<0.001;**はp<0.01;*はp<0.05を示す。
A.カンナビノイド投与量80mg/kg;インドメタシン20mg/kg
B.カンナビノイド投与量40mg/kg;インドメタシン20mg/kg
C.カンナビノイド投与量5mg/kg;インドメタシン20mg/kg。
【0048】
II.薬理学的活性
抗炎症性活性
図1、2に与えた結果は、代謝産物2a及び3a、並びにそのジメチルヘプチル同族体2b及び3bが、抗炎症性であることを示す。図1は、2a及び2bの結果が、対照溶液のそれと有意に異なっていることを示す。然しながら、両方の化合物(40mg/kgにおける)は、強力な抗炎症性薬物インドメタシン(20mg/kgにおける)より活性ではない。図1は、更に2a及び2b(40mg/kgにおける)の抗炎症性効果が、インドメタシン(20mg/kgにおける)のそれより低いが、少なくとも90分間その作用が同様であることを示す。
【0049】
いくつかのカンナビノイドが、各種のアッセイで二相的効果を示すことが以前に示されている(Sulcova et al.,Pharmacol.Biochem.Behav.59,1998)。従って3a及び3bの抗炎症性効果が広い範囲の投与量で調査された(図2)。腹膜内の40mg/kgにおける酸の効果は、インドメタシン(20mg/kg、腹膜内)のそれと本質的に同等であることが見出された。80mg/kgにおける3a及び3bの両方は、インドメタシン(20mg/kg)より有効ではなかった。然しながら、5mg/kgにおいて、3bは、完全に炎症を抑制し、そしてインドメタシン(20mg/kg)に匹敵した。化合物3aは、5mg/kgにおいて3bより活性ではなかった。
【0050】
実験のもう一つの系列において、先に記載した化合物、特にカンナビジオール−7−酸(15a)及びカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)が、in vitroにおいて、マウスのマクロファージ及び単球細胞系RAW264.7によるTNFαの生産を90%まで阻害することが見出された。阻害は、投与量依存(10μg−0.001μg/ml)である。結果の表は、以下の表A及びBに添付する。
【0051】
【表1】
【0052】
【表2】
【0053】
この抗TNFα効果は、更にin vivoでも見られる。高水準のTNFαが、5mg/kg/マウスのリポ多糖(LPS)の腹膜内注射の後、マウスの血清に現れる。0.5及び5mg/kgの二つの異なった投与量のカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)のLSPとの同時投与は、血清のTNFα水準を抑制する。0.5mg/kgの低い投与量において、TNFα水準の80%の抑制が観察された。同様な効果は、本明細書中に記載された他の化合物でも観察された。例えば7−ヒドロキシ−CBD(2a)は、腹膜内の10μg/kgの投与量で、マウスの血清のTNFαを抑制(30%)した。
【0054】
上記の化合物、特に7−ヒドロキシ−カンナビジオール(2a)及び7−ヒドロキシ−カンナビジオール−DMH(2b)は、更にマウスのマクロファージによる酸化窒素(NO)発生を顕著に阻害(90%まで)する。
化学発光によって分析された、マクロファージによる酸素ラジカル中間体(ROI)発生は、細胞がカンナビジオール−7−酸(15a)及びカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)と共にインキュベートされた場合、殆んど全ての阻害(95%まで)を証明した。結果の表は、以下の表Cに添付される。
【0055】
【表3】
【0056】
使用した実験方法は、Gallily等(Eur.J.Pharmacol.406,R5−R7,2000)、Avron and Gallily(J.Leukocyte Biol.57,264−268,1995)及びGallily等(J.Pharmacol.Exp.Ther.283,918−924,1997)中に記載されている。
【0057】
上記の結果は、7−ヒドロキシ−CBD(2a)及び7−ヒドロキシ−CBD DMH(2b)が、抗炎症性活性を示すことを示す。酸3a及び3bは、はるかに有望であり、3b(5mg/kgにおける)は、インドメタシン(20mg/kgにおける)ほど強力である。前記の酸は、更に鎮痛性の活性を示す。
【0058】
7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)、そして特にCBD−DMH−7−酸(3b)の強力な活性の観点から、多くの更なる側鎖同族体を調製した。これらは、図3A及び3Bによって合成され、出発レゾルシノール誘導体は:
5−(1,2−ジメチルヘプチル)−レゾルシノール
5−(1,2−ジメチルオクチル)レゾルシノール
5−(1,2−ジメチルヘキシル)レゾルシノール
5−(1,1−ジメチルヘプチル)レゾルシノール
5−(1−エチル−2−メチルプロピル)レゾルシノール
5−メチルノニルレゾルシノール
5−(1−メチルノニル)レゾルシノール
5−(1−メチルオクチル)レゾルシノール
5−(1,2,4−トリメチルヘキシル)レゾルシノール
5−(1−エチルヘプチル)レゾルシノール
であり、16型の化合物から誘導されたCBD型化合物に導いた。これらは、合成法図3及び4に従って、対応する同族体17及び18に転換された。
【0059】
側鎖が、OCH3、OC2H5、OC3H7(n)、OC4H9(n)、OCH(CH3)2、OCH(CH3)C2H5、OCH2CH(CH3)等のようなエーテルを含有する5置換レゾルシノールも更に使用されている。
使用された更なる基は、アルキル基が:
O−CH(CH3)(CH2)4CH3
O−CH(CH3)CH2CH2C6H5
O−CHCH3)CH2CH2CH2C6H5
で置換された5置換レゾルシノールに基づいていた。
【0060】
抗侵害受容性活性
2a、2b、3a及び3bが、ホルマリン誘導の化学的変化によって生じる、疼痛作用の後期を減衰することが見出されている。従ってホルマリン(生理食塩水中に溶解された3.2%)を注射されたマウスが、5分間に8±2回その足を舐めることがホルマリンの投与の30分後に記録された。四つの化合物、2a、2b、3a、3bの全て(それぞれ20mg/kg)が、舐めることを完全に妨げた。
【0061】
抗不安性及び抗痙攣性効果
予備的なデータは、抗炎症性及び鎮痛性の効果に加えて、代謝産物2a及び3a並びに同族体2b及び3bは、抗不安性及び抗痙攣性効果を有することを示した。予備的なデータは、更に1a、1b、2a及び2bのような本明細書中に記載した化合物が、エンドカンナビノイドの神経細胞への取り込みを防止し、そして従ってその活性を長引かせることができることを示した。この作用は、これらの化合物の抗不安性及び抗痙攣性の活性を説明することができる。
【0062】
抗癌効果
本明細書中に記載されたカンナビジオール及びカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)のような他の化合物が、ヒトHL−60前骨髄球白血病細胞における、高い速度のプログラムされた細胞死(アポトーシス)を起こすことが見出された。アポトーシスは、カンナビノイド投与量依存(0.1μg/mlないし8μg/ml)であった。更に、HL−60細胞がγ線(800ラド)に照射され、そしてカンナビジオール及び/又は記載された他の化合物で処理された場合、85%のアポトーシスまで達する非常に顕著な相互作用が見られた。使用された方法、即ち蛍光Hoechst33258系による決定、は、T.R.Chen(Cell Res.104,255−262,1977)によって記載されている。結果の表は、以下の表Dに添付されている。
【0063】
【表4】
【0064】
III 受容体結合アッセイ
CB1結合アッセイは、ラットの脳から調製されたシナプトソーム膜で行った(Devane et al.,1992)。CB2アッセイは、トランスフェクトされた細胞で行った(Mechoulam et al.,1995)。全てのアッセイは三重で行われた。以前に記載された[3H]HU−243プローブを、遠心法に基づいたリガンド結合アッセイ(Devane et al.,1992a、Devane et al.,1992b)において使用した。これは、45±7ppmのKi値を有する。
【0065】
動物及び薬物
メスのSabraマウス(生後2ヶ月、Harlan−Sprague Dawley,Jerusalem)を、一連の試験並びに炎症及び末梢部の疼痛に対するアッセイに対して使用した。5匹のマウスの群をそれぞれの実験に使用した。化合物2a、2b、3a及び3bを、以前に記載された(Hanus et al.,1999)ように、ベヒクル(エタノール:乳化団:生理食塩水=1:1:18)に溶解し、そして0.1ml/マウスの10gの体積で腹膜内(i.p.)に注射した。
動物における実験は、JerusalemのHebrew Universityの動物研究倫理委員会によって決定された基準に従って行われた。
【0066】
マウスにおけるアラキドン酸誘導の耳の炎症
耳の炎症を、アラキドン酸の局所適用後の耳の組織の腫張を評価することによって測定した。非ステロイド系抗炎症性薬物が、このモデルにおける腫張を減少することが示されている(Young et al.,1984)。薬物、即ちCBD誘導体又はインドメタシンの腹膜内注射の60分後、アラキドン酸(5μlのエタノール中の4.5mg)を片方の耳の内側表面に適用した。反対側の耳は、対照として取り扱った(5μlのエタノール)。耳の厚みを、ダイヤル厚みゲージ(Mitutoyo、日本)を使用して、アラキドン酸の適用の直後に始まって90分間、15分ごとに決定(0.01mm単位で)した。
【0067】
末梢部疼痛
末梢神経系によって仲介される疼痛を、皮膚(末梢)の疼痛に対する‘ホルマリン試験’で試験した(Tjolson et al.,1992;Calignano et al.,1998;Jaggar et al.,1998)。試験される化合物(又はベヒクル)を、腹膜内に注射した。ホルマリン(生理食塩水中に溶解された3.2%)を、薬物の90分後、マウスの後足の足底の表面に皮下注射(20μlの体積で)した。ホルマリン投与の直後、侵害受容を、マウスがホルマリンを注射した足を舐める回数によって評価(5分後とに1時間)した。
【0068】
統計分析
時間曲線を、二変数分散分析(ANOVA:時間×投与量)によって比較した。ベヒクル処理との差は、一変数ANOVA;s、;それに続く事後のNewman−Keuls試験(Graph Pad,San Diegoから入手のPrismソフトウェア)によって比較した。
【図面の簡単な説明】
【図1】
アラキドン酸(A’A)誘導の耳の腫張の30分後の、CBD(1a)、7−ヒドロキシ−CBD(2a)(実施例15)、及び7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)(実施例16)並びにインドメタシンの効果。
【図2】
耳のアラキドン酸誘導の耳の腫張後の、各種の投与量のCBD−7−酸(3a)(実施例28)、及びCBD−DMH−7−酸(3b)(実施例28)並びにインドメタシン(20mg/kg)の効果。
【図3】
7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)、そして特にCBD−DMH−7−酸(3b)の強力な活性の観点から、多くの更なる側鎖同族体を調製した。
【図4】
7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)、そして特にCBD−DMH−7−酸(3b)の強力な活性の観点から、多くの更なる側鎖同族体を調製した。
【図5】
R’が、CH3を表し、そしてR’’が、a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;を表す一般式Iの化合物の出発物質は、図5に例示した方法で調製され、ここにおいてメンタ−2,8−ジエン−1−オールは、5位で置換されたレゾルシノールと縮合される(Leite et al.)。
本発明は、カンナビジオール誘導体及び鎮痛性、抗不安性、抗痙攣性、神経保護性、抗精神病性及び抗癌性活性を有する抗炎症剤であるカンナビジオール誘導体を含んでなる医薬組成物に関する。
【0002】
カンナビジオール(CBD、1a)は、ハシーシ及びマリファナのような殆んどのタイマ製剤中の主要な非向神経性カンナビノイドである。
【0003】
CBDは、Δ9−テトラヒドロカンナビノール(Δ9−THC)において典型的な、向神経性の効果のいずれをも起こさない(Martin,Pharmacol.Rev.,38,45−74 1986)。CBDは、既知のカンナビノイド受容体CB1又はCB2に結合せず、そして従ってこれらの受容体によって仲介される中枢又は末梢的効果を起こさない。然しながら、in vitroアッセイ、動物試験、並びにいくつかのヒトの予備的試用において、多くの薬理学的効果を示しており、そのあるものは、潜在的な治療的価値がある。従って、最近の報告は、マウスの腹膜マクロファージによる酸化窒素(NO)生産の阻害、及びヒトの末梢血単核細胞によるTNF、IL−1α及びIFNγの抑制のような、CBDの免疫細胞へのin vitro効果を記載している(Coffey et al.,Intern.J.Immunopharmacol.,18,749−752[1996];Watzl et al.,Int.J.Immunopharmicol.,13,1091−1093[1991];Srivastava et al.,Immunopharmacol.,179−185[1998];概観に対してはKlein et al.,Immunol.Today,19,373−381[1998]を参照されたい)並びに“Malfait et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.[U.S.A.],97,9561−9566[2000]”。これらのin vitroの研究は、動物における鎮痛性及び抗炎症性の効果についての初期の報告に支持を与える。Formukong等(Inflammation 12,361−371[1988])は、マウスのフェニルベンゾキノン身もだえ試験(標準的鎮痛性アッセイ)において、CBDが、アスピリンより大幅に強力であることを見出している。マウスの耳のテトラデカノイルホルボールアセタブル(tetradecanoylphorbolacetable)(TPA)誘導の紅斑(抗炎症性アッセイ)において、CBDは、100μg/ml溶液の適用において炎症反応の92%阻害を起こした。
【0004】
CBDは、動物モデル、並びに神経性疾病(概観についてはConsroe,(Neurobiol.Disease,5,534−551[1998]を参照されたい)、不安症(Guimaraes et al.,Gen.Pharmacol.,25,161−164[1994];Zuardi et al.,Psychopharmacology[Berlin],76,245−250[1982])、及び精神病(Zuardi et al.,J.Clin.Psychiatry,56,485−486[1995])を持つ患者において、いくつかの潜在的に治療的な効果を生じることが見出されている。Hampson等(Proc.Natl.Acad.Sci.USA,95,8268−8273[1998])は、CBDが神経保護性の抗酸化剤であることを見出している。
【0005】
驚くべきことに、鏡像異性体のTHCは、それらの生物学的活性が異なる(Mechoulam et al.,“Marijuana/Cannnabinoids:Neurobiology and Neurophysiology”ed.L.Murphy and A.Bartke,CRC Press,Boca Raton,Florida,pp 1−33[1992])が、両方のCBD鏡像異性体は、同様な抗痙攣性及びある種のホルモン的特性を有する(Leite et al.,Pharmacol.,124,141−146[1982];Cordova et al.,Psychoneuroendocrinology,5,53−62[1980])。然しながら、CBD鏡像異性体の比較薬理学は、更には探求されていない。更にCBD代謝産物の合成及び薬理学は未知である。
【0006】
前記の合成及び薬理学は、いまや探求され、そして驚くべきことに以下の一般式I:
【化2】
[ここにおいて、R’は、COOH又はCH2OHを表し;そして
R’’は、
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
を表す]
の化合物及び同一物を含んでなる医薬組成物が、抗炎症剤であり、そしてこれが鎮痛性、抗不安性、抗痙攣性、神経保護性、抗精神病性及び抗癌性活性を有することが見出された。
【0007】
従って、本発明は、活性成分として一般式Iの化合物を含んでなる鎮痛性、抗不安性、抗痙攣性、神経保護性、抗精神病性及び抗癌性活性を有する抗炎症剤である、一般式Iの化合物を含んでなる医薬製剤にある。
【0008】
一般式Iの化合物は、R’’がC5H11を表す物を除いて、新規であり、そして本発明の範囲内である。
【0009】
本発明による医薬製剤は、例えば錠剤、カプセル、粒剤、懸濁液、溶液等である、いかなる適した形態をも有することができる。これらは、活性成分に加えて、担体、崩壊剤、潤滑剤、安定剤、芳香剤のような賦形剤及び他の医薬的に有効な化合物をさえ含んでなることができる。
【0010】
本発明による医薬製剤は、慣用的な方法によって調製することができる。これらは、各種の成分を必要な量を含んでなることができる。
一般式の化合物及び同一物を含んでなる医薬製剤は、患者に対して0.01ないし20mg/kg間の化合物の一日当たり投与量で都合よく与えられる。
【0011】
本発明は、更に一般式Iの化合物及び同一物を含んでなる医薬製剤の、製剤の調製における使用にある。
本発明は、更に一般式Iの化合物又は同一物を含んでなる医薬製剤による、ヒトの治療のための方法にある。
【0012】
本発明は、更に一般式Iの化合物の調製のための方法にある。
R’=CH2OHであり、そしてR’’=
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
である、一般式Iの化合物の調製のための方法は、R’=CH3であり、そしてR’’が、上記に示した置換基の一つである一般式1の化合物から出発して、8工程を含む。
【0013】
この方法は、更なる化学的転換(工程a)、それに続く環の二重結合の選択的エポキシド化(工程b)を可能にするためのフェノール型基の遮断、エポキシド環を選択的に開環して、アリル型アルコールを形成すること(c)、次いでアリル転位によって所望する化合物のジメトキシ誘導体に導く、いくつかの工程(d、e、f、g)を含む。最後の工程(h)は、過酷な条件下の脱メトキシル化を含んで、所望するアリル型アルコールを形成する。
【0014】
Rが、CH2OHを表し、そしてR’’が、C5H11又は1’,1’−ジメチルヘプチル(DMH)を表す一般式Iの化合物の調製のための特定の方法は:
a.CBD又はそのジメチルヘプチル同族体を、ヨウ化メチル及び炭酸カリウムとDMF中で反応させ;
b.得られたジメチルエーテルを、3−クロロ安息香酸と反応させて、対応するエポキシドを得て;
c.得られたエポキシドを、メチルマグネシウムN−シクロヘキシル−イソプロピルアミドとトルエン中で反応させ;
d.工程cで得られた化合物をアセチル化し;
e.得られたアセチル化物を、臭化t−ブチルジメチルシリルと反応させ;
f.得られた臭化物を、(nBu)4NH4OAcとアセトン中で反応させて、アリルアセテートジエーテルを得て;そして
g.得られたエーテルを、水酸化ナトリウム溶液中で加熱し;そして
h.得られた化合物を、ヨウ化メチルマグネシウムと加熱して、必要とする化合物を得ること;
を含んでなる。
【0015】
R’=COOHであり、R’’=
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
である一般式Iの化合物の調製のための方法は、出発物質として図3A及び3Bに記載した合成において得られた中間体化合物(一般式6)を含む。これは、図3A、3B及び4において、R’’=C5H11である(6a)又はR’’=DMHである(6b)によって例示されている。第1の工程は、フェノール型基の脱メトキシル化(工程a)、それに続くアセチル化(b)を含む。一般式(12)を持つトリアセテートは、単一工程(c)で、転位及び臭素化して、臭化物(13)を得ることができ、これは酸化(d、e)及び加水分解(f)によって、所望の化合物に導く。
【0016】
R’が、COOHを表し、そしてR’’が、C5H11又はDMHを表す一般式Iの化合物の調製のための特定の方法は:
a.上記の工程dで得られた化合物を、ヨウ化メチルマグネシウムと反応させ;
b.得られたトリオールをアセチル化し;
c.得られたアセチル化物を、転位し、そして臭素化して、対応する臭化物を得て;
d.得られた臭化物を、クロム酸カリウムでヘキサメチルホスホン酸トリアミド中で酸化し;
e.得られたアルデヒドを、亜塩素酸ナトリウムで酸化し、そして水酸化ナトリウムの水溶液と反応させて、所望の化合物を得ること;
を含んでなる。
【0017】
上記の特定の方法は、図3A、3B及び4に例示されている。
R’が、CH3を表し、そしてR’’が
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
を表す一般式Iの化合物の出発物質は、図5に例示した方法で調製され、ここにおいてメンタ−2,8−ジエン−1−オールは、5位で置換されたレゾルシノールと縮合される(Leite et al.)。
【0018】
本発明は、次に以下の実施例及び実験を参照して、同一物に限定されることなく例示される。図に対する言及は、本願明細書に付属されたものを参照する。
I.実施例
全ての実施例において、1H NMRスペクトルは、Varian VXR−300S分光光度計で、TMSを内部標準として使用して測定した。全ての化学シフトは、ppmで報告されている。比旋光度は、Perkin−Elmer 141偏光計で決定した。カラムクロマトグラフィーは、ICNシリカゲル60Aで行った。有機溶液は、無水の硫酸マグネシウムで乾燥した。
【0019】
実施例1
ジメトキシ−CBD(4a)
CBD 1a(3g、9.95mmol)を、DMF(55ml)中に溶解した。K2CO3(7.35g、53.3mmol)及びCH3I(2.3ml、36.9mmol)を加え、そして混合物を室温で4時間撹拌した。反応を出発物質が消失するまでTLC(10%エーテル/P.E,)でモニターした。次いで200mlの水を加え、そして溶液をエーテルで抽出した。有機相を中性のpHまで食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。溶媒を減圧下で除去して、3.2gの産物(収率98%)を得た。
【化3】
【0020】
実施例2
ジメトキシ−CBD−DMH(4b)
出発物質としてのCBD−DMHにより、(4a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化4】
[α]D −98.1°(c 2.04mg/ml、CHCl3)。
【0021】
実施例3
1,2オキシド−ジメトキシ−ヘキサヒドロカンナビノール(5a)
3−クロロ−過安息香酸(70%純度1.2g、4.85mmol)を、50mlのCH2Cl2に溶解し、そして溶液を0℃に冷却した。(4a)(1.65g、4.82mmol)の10mlのCH2Cl2中の溶液をゆっくりと注入した。反応混合物を0℃で30分間撹拌し、そしてTLC(10%エーテル/P.E.)によってモニターした。反応物をNaHCO3の飽和水溶液の添加によってクエンチし、そして有機相を分液漏斗によって分離し、次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをフラッシュクロマトグラフィー(7%エーテル/P.E)にかけて、エポキシ誘導体(5a)(収率65%)を得た。
【化5】
【0022】
実施例4
1,2オキシドジメトキシヘキサヒドロカンナビノールDMH(5b)
(5a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、しかし収率はわずかに良好であった(70%)。
【化6】
【0023】
実施例5
(3R,4R)−3−[2,6−ジメトキシ−4−ペンチルフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(6a)
ヘキサン中のブチルリチウム(5.6ml、14mmol)を、N−シクロヘキシルイソプロピルアミン(1.85ml、11.3mmol)の無水のトルエン(10ml、ナトリウム上で蒸留)中の0℃の溶液にN2雰囲気下で加えた。15分後、エーテル中の臭化メチルマグネシウム(3.8ml、11.4mmol)を注入し、そして反応混合物を45分間室温で撹拌した。(5a)(1g、2.79mmol)の乾燥トルエン(3ml)中の溶液を加え、そして混合物を40℃に加熱し、そして2時間撹拌した。次いで反応物を0℃に冷却し、そして5MのHClのゆっくりとした添加によりクエンチした。有機相を分離漏斗によって分離し、そして次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、残留物を得て、これはTLC(20%エーテル/P.E.)でただ一つのスポットを示し、そして1H−NMRによって(6a)(収率97%)であることが証明された。
【化7】
【0024】
実施例6
(3R,4R)−3−[4−(1’,1’ジメチルヘプチル)−2,6−ジメトキシフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(6b)
(6a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化8】
【0025】
実施例7
(3R,4R)−3−[2,6−ジメトキシ−4−ペンチルフェニル]−2−アセトキシ−4イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(7a)
(6a)(0.9g、2.5mmol)を、ピリジン(2ml)及び無水酢酸(2ml)中に溶解し、そして反応物を18時間室温で撹拌した。次いで溶液を氷水(20ml)中に注ぎ、そしてエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を1NのHCl、重炭酸ナトリウム水溶液及び食塩水で連続して洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これはTLC(20%エーテル/P.E.)でただ一つのスポットを示し、そして1H−NMRによって(7a)(収率約100%)であることが証明された。
【化9】
【0026】
実施例8
(3R,4R)−3−[4−(1’,1’−ジメチルヘプチル)−2,6−ジメトキシフェニル]−2−アセトキシ−1−メチレンシクロヘキサン(7b)
(7a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化10】
【0027】
実施例9
7−ブロモ−ジメトキシCBD(8a)
(7a)(1g、2.5mmol)を、乾燥CH2Cl2(50ml、CaH2上で蒸留)中に窒素雰囲気下で溶解し、そしてTMSBr(1.6ml、12.1mmol)を加えた。反応物を室温で4時間撹拌し、次いでNaHCO3の飽和水溶液と震盪し、そして有機相を分離漏斗によって分離し、次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。溶媒の除去により残留物を得て、1H−NMR及びTLC(20%エーテル/P.E.)は、支配的に単一の化合物であることを示し、これを精製なしで直接使用した。
【化11】
【0028】
実施例10
7−ブロモ−ジメトキシCBD DMH(8b)
(8a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化12】
【0029】
実施例11
7−アセトキシ−ジメトキシCBD(9a)
(8a)(570mg、1.35mmol)を、アセトン(15ml、4A°モレキュラーシーブ上で保存)及び酢酸テトラブチルアンモニウム(450mg、1.49mmol)中に溶解した。混合物を撹拌し、還流し、そしてTLC(20%エーテル/P.E.)でモニターした。2時間後、出発物質はもはや存在しなかった。アセトンを減圧下で除去し、そして残留物を水(20ml)で希釈し、そしてエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を重炭酸ナトリウム水溶液で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、520mgの油状の残留物(96%収率)を得た。
【化13】
【0030】
実施例12
7−アセトキシ−ジメトキシCBD DMH(9b)
(9a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、収率は僅かに悪かった(90%)。
【化14】
【0031】
実施例13
7−ヒドロキシ−ジメトキシCBD(10a)
(9a)(500mg、1.25mmol)を、エタノール(20ml)中に溶解し、そして1NのNaOH(2ml)を加え、そして反応物を1時間還流した。エタノールを減圧下で除去し、そして残留物を水(20ml)で希釈し、そして2NのHClを酸性のpHまで加えた。溶液をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、430mgの油状の残留物(96%収率)を得た。
【化15】
【0032】
実施例14
7−ヒドロキシ−ジメトキシCBD DMH(10b)
(10a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化16】
【0033】
実施例15
7−ヒドロキシCBD(2a)
グリニャール試薬を、マグネシウム(100mg、4.17mmol)及びCH3I(0.26ml、4.17mmol)で、乾燥エーテル(3ml、ナトリウム上で蒸留)中で窒素雰囲気下で調製した。エーテル(1ml)中の(10a)(420mg、1.17mmol)を、撹拌された溶液にゆっくりと加え、そしてエーテルを蒸発して除去した。残留物をN2雰囲気下で210℃まで45分間加熱した。次いでフラスコを室温まで冷却し、そして反応物を氷水でクエンチした。水溶液をエーテルで数回抽出した。混合した有機抽出物をMgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(25%エーテル/P.E.)にかけて、150mgの純粋な(2a)(収率40%)を得た。
【化17】
【0034】
実施例16
7−ヒドロキシCBD−DMH(2b)
(2a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化18】
図1に示すような、アラキドン酸(A’A)誘導の耳の腫張の30分後の、CBD(1a)、7−ヒドロキシ−CBD(2a)(実施例15)、及び7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)(実施例16)並びにインドメタシンの効果。マウス(メスのSabra)を、4.5mgのA’A(5μlのEtOH中)を耳の片方の内側の表面に分散して処理した。他方の耳は、5μlのEtOHで処理した。耳の腫張を、耳の厚みをダイヤル厚みゲージ(Mitutoyo、日本)で、処理の直前及びA;Aの適用後30分に測定することによって評価した。薬物(カンナビノイドに対して40mg/kg、そしてインドメタシンに対して20mg/kg)を、A’A処理の60分前に腹膜内に注射した。***は、p<0.001を示す。
【0035】
実施例17
(3R,4R)−3−[2,6−ジヒドロキシ−4−ペンチルフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(11a)
グリニャール試薬を、マグネシウム(84mg、3.5mmol)及びCH3I(0.2ml、3.5mmol)で、N2雰囲気下の乾燥エーテル(1ml、ナトリウム上で蒸留)中で調製した。エーテル(0.5ml)中の(6a)(360mg、1mmol)を、撹拌された溶液に加え、そしてエーテルを蒸留した。残留物をN2雰囲気下で210℃まで45分間加熱した。次いでフラスコを室温まで冷却し、そして反応物を氷水でクエンチした。水溶液をエーテルで数回抽出した。混合した有機抽出物をMgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(25%エーテル/P.E.)にかけて、132mgの純粋な(11a)(収率40%)を得た。
【化19】
【0036】
実施例18
(3R,4R)−3−[4−(1’,1’−ジメチルヘプチル)−2,6−ジヒドロキシフェニル]−2−ヒドロキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(11b)
(11a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、収率は僅かに良好であった(45%)。
【化20】
【0037】
実施例19
(3R,4R)−3−[2,6−ジアセトキシ−4−ペンチルフェニル]−2−アセトキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(12a)
(11a)(100mg、0.3mmol)を、ピリジン(0.5ml)及び無水酢酸(0.5ml)中に溶解し、そして反応物を18時間室温で撹拌した。次いで溶液を氷水(10ml)に注ぎ、そしてエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を1NのHCl、重炭酸ナトリウム水溶液及び食塩水で連続して洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により、136mgの油状の残留物を得て、これはNMRによって(12a)(収率約100%)であることが証明された。
【化21】
【0038】
実施例20
(3R,4R)−3−[2,6−ジアセトキシ−4−(1’,1’ジメチルヘプチル)フェニル]−2−アセトキシ−4−イソプロペニル−1−メチレンシクロヘキサン(12e)
(12a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化22】
【0039】
実施例21
7−ブロモ−ジアセテートCBD(13a)
(12a)(100mg、0.2mmol)を、乾燥CH2Cl2(10ml、CaH2上で蒸留)中に窒素雰囲気下で溶解した。TMSBr(0.13ml、1mmol)及びZnI2(3.4mg、0.01mmol)を加えた。反応物を室温で4時間撹拌し、次いでこれをNaHCO3の飽和水溶液と震盪し、そして有機相を分離漏斗で分離し、次いで水相をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。溶媒の除去により残留物を得て、これを精製なしで直接使用した。
【化23】
【0040】
実施例22
7−ブロモ−ジアセテートCBD DMH(13b)
(13a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化24】
【0041】
実施例23
7−ノル−ホルミル−ジアセテートCBD(14a)
(13a)(100mg、0.21mmol)、18−クラウン−16(55.4mg、0.21mmol)及びK2CrO4(50.9mg、0.26mmol)を、無水のHMPT(2ml、真空下で蒸留し、そして4A°モレキュラーシーブ上で保存)中に溶解した。混合物を撹拌し、そして110℃で2時間加熱した。反応物を冷却し、そして1MのHClの添加によってクエンチし、そして水相をエーテルで抽出した。有機相を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(20%エーテル/PE.)にかけて、27.7mgの純粋な(14a)(収率32%)を得た。
【化25】
【0042】
実施例24
7−ノル−ホルミル−ジアセテートCBD DMH(14b)
(14a)に対して報告したと同じ手順で調製したが、収率は僅かに悪かった(28%)。
【化26】
【0043】
実施例25
7−ノル−カルボキシ−ジアセテートCBD(15a)
NaClO2(80%純度82.6mg、0.73mmol)を、(14a)(70mg、0.17mmol)、2−メチル−2−ブテン(0.45ml、4.25mmol)、KH2PO4(0.2ml)の飽和水溶液の、t−ブタノール(4ml)中の撹拌された混合物に少量ずつ加えた。反応物を室温で5時間撹拌し、そしてTLC(50%エーテル/P.E.)によってモニターした。次いで水(20ml)を加え、そして混合物を酢酸エチルで数回抽出した。有機相を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(30%エーテル\PE.)にかけて、61.8mgの(15a)(収率85%)を得た。
【化27】
【0044】
実施例26
7−ノル−カルボキシ−ジアセテートCBD DMH(15b)
(15a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化28】
【0045】
実施例27
7−ノル−カルボキシCBD(3a)
(15a)(50mg、0.12mmol)を、エタノール(10ml)中に溶解し、そして1NのNaOH(0.5ml)を加え、そして反応物を1時間還流した。エタノールを減圧下で除去し、そして残留物を水(20ml)で希釈し、そして混合物を2NのHClで酸性化した。溶液をエーテルで抽出した。混合した有機抽出物を食塩水で洗浄し、MgSO4で乾燥し、そして濾過した。減圧下の溶媒の除去により残留物を得て、これをシリカゲルのクロマトグラフィー(30%エーテル\PE.)にかけて、38.2mgの(3a)(収率95%)を得た。
【化29】
【0046】
実施例28
7−ノル−カルボキシCBD DMH(3b)
(3a)に対して報告したと同じ手順で調製した。
【化30】
【0047】
耳のアラキドン酸誘導の耳の腫張後の、各種の投与量のCBD−7−酸(3a)(実施例28)、及びCBD−DMH−7−酸(3b)(実施例28)並びにインドメタシン(20mg/kg)の効果を、図2に示す。効果は、アラキドン酸の投与後の75分間にわたって測定した。実験の詳細は、CBD(1a)及びその誘導体の試験に対して記載したものと同一である。
***はp<0.001;**はp<0.01;*はp<0.05を示す。
A.カンナビノイド投与量80mg/kg;インドメタシン20mg/kg
B.カンナビノイド投与量40mg/kg;インドメタシン20mg/kg
C.カンナビノイド投与量5mg/kg;インドメタシン20mg/kg。
【0048】
II.薬理学的活性
抗炎症性活性
図1、2に与えた結果は、代謝産物2a及び3a、並びにそのジメチルヘプチル同族体2b及び3bが、抗炎症性であることを示す。図1は、2a及び2bの結果が、対照溶液のそれと有意に異なっていることを示す。然しながら、両方の化合物(40mg/kgにおける)は、強力な抗炎症性薬物インドメタシン(20mg/kgにおける)より活性ではない。図1は、更に2a及び2b(40mg/kgにおける)の抗炎症性効果が、インドメタシン(20mg/kgにおける)のそれより低いが、少なくとも90分間その作用が同様であることを示す。
【0049】
いくつかのカンナビノイドが、各種のアッセイで二相的効果を示すことが以前に示されている(Sulcova et al.,Pharmacol.Biochem.Behav.59,1998)。従って3a及び3bの抗炎症性効果が広い範囲の投与量で調査された(図2)。腹膜内の40mg/kgにおける酸の効果は、インドメタシン(20mg/kg、腹膜内)のそれと本質的に同等であることが見出された。80mg/kgにおける3a及び3bの両方は、インドメタシン(20mg/kg)より有効ではなかった。然しながら、5mg/kgにおいて、3bは、完全に炎症を抑制し、そしてインドメタシン(20mg/kg)に匹敵した。化合物3aは、5mg/kgにおいて3bより活性ではなかった。
【0050】
実験のもう一つの系列において、先に記載した化合物、特にカンナビジオール−7−酸(15a)及びカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)が、in vitroにおいて、マウスのマクロファージ及び単球細胞系RAW264.7によるTNFαの生産を90%まで阻害することが見出された。阻害は、投与量依存(10μg−0.001μg/ml)である。結果の表は、以下の表A及びBに添付する。
【0051】
【表1】
【0052】
【表2】
【0053】
この抗TNFα効果は、更にin vivoでも見られる。高水準のTNFαが、5mg/kg/マウスのリポ多糖(LPS)の腹膜内注射の後、マウスの血清に現れる。0.5及び5mg/kgの二つの異なった投与量のカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)のLSPとの同時投与は、血清のTNFα水準を抑制する。0.5mg/kgの低い投与量において、TNFα水準の80%の抑制が観察された。同様な効果は、本明細書中に記載された他の化合物でも観察された。例えば7−ヒドロキシ−CBD(2a)は、腹膜内の10μg/kgの投与量で、マウスの血清のTNFαを抑制(30%)した。
【0054】
上記の化合物、特に7−ヒドロキシ−カンナビジオール(2a)及び7−ヒドロキシ−カンナビジオール−DMH(2b)は、更にマウスのマクロファージによる酸化窒素(NO)発生を顕著に阻害(90%まで)する。
化学発光によって分析された、マクロファージによる酸素ラジカル中間体(ROI)発生は、細胞がカンナビジオール−7−酸(15a)及びカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)と共にインキュベートされた場合、殆んど全ての阻害(95%まで)を証明した。結果の表は、以下の表Cに添付される。
【0055】
【表3】
【0056】
使用した実験方法は、Gallily等(Eur.J.Pharmacol.406,R5−R7,2000)、Avron and Gallily(J.Leukocyte Biol.57,264−268,1995)及びGallily等(J.Pharmacol.Exp.Ther.283,918−924,1997)中に記載されている。
【0057】
上記の結果は、7−ヒドロキシ−CBD(2a)及び7−ヒドロキシ−CBD DMH(2b)が、抗炎症性活性を示すことを示す。酸3a及び3bは、はるかに有望であり、3b(5mg/kgにおける)は、インドメタシン(20mg/kgにおける)ほど強力である。前記の酸は、更に鎮痛性の活性を示す。
【0058】
7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)、そして特にCBD−DMH−7−酸(3b)の強力な活性の観点から、多くの更なる側鎖同族体を調製した。これらは、図3A及び3Bによって合成され、出発レゾルシノール誘導体は:
5−(1,2−ジメチルヘプチル)−レゾルシノール
5−(1,2−ジメチルオクチル)レゾルシノール
5−(1,2−ジメチルヘキシル)レゾルシノール
5−(1,1−ジメチルヘプチル)レゾルシノール
5−(1−エチル−2−メチルプロピル)レゾルシノール
5−メチルノニルレゾルシノール
5−(1−メチルノニル)レゾルシノール
5−(1−メチルオクチル)レゾルシノール
5−(1,2,4−トリメチルヘキシル)レゾルシノール
5−(1−エチルヘプチル)レゾルシノール
であり、16型の化合物から誘導されたCBD型化合物に導いた。これらは、合成法図3及び4に従って、対応する同族体17及び18に転換された。
【0059】
側鎖が、OCH3、OC2H5、OC3H7(n)、OC4H9(n)、OCH(CH3)2、OCH(CH3)C2H5、OCH2CH(CH3)等のようなエーテルを含有する5置換レゾルシノールも更に使用されている。
使用された更なる基は、アルキル基が:
O−CH(CH3)(CH2)4CH3
O−CH(CH3)CH2CH2C6H5
O−CHCH3)CH2CH2CH2C6H5
で置換された5置換レゾルシノールに基づいていた。
【0060】
抗侵害受容性活性
2a、2b、3a及び3bが、ホルマリン誘導の化学的変化によって生じる、疼痛作用の後期を減衰することが見出されている。従ってホルマリン(生理食塩水中に溶解された3.2%)を注射されたマウスが、5分間に8±2回その足を舐めることがホルマリンの投与の30分後に記録された。四つの化合物、2a、2b、3a、3bの全て(それぞれ20mg/kg)が、舐めることを完全に妨げた。
【0061】
抗不安性及び抗痙攣性効果
予備的なデータは、抗炎症性及び鎮痛性の効果に加えて、代謝産物2a及び3a並びに同族体2b及び3bは、抗不安性及び抗痙攣性効果を有することを示した。予備的なデータは、更に1a、1b、2a及び2bのような本明細書中に記載した化合物が、エンドカンナビノイドの神経細胞への取り込みを防止し、そして従ってその活性を長引かせることができることを示した。この作用は、これらの化合物の抗不安性及び抗痙攣性の活性を説明することができる。
【0062】
抗癌効果
本明細書中に記載されたカンナビジオール及びカンナビジオール−DMH−7−酸(15b)のような他の化合物が、ヒトHL−60前骨髄球白血病細胞における、高い速度のプログラムされた細胞死(アポトーシス)を起こすことが見出された。アポトーシスは、カンナビノイド投与量依存(0.1μg/mlないし8μg/ml)であった。更に、HL−60細胞がγ線(800ラド)に照射され、そしてカンナビジオール及び/又は記載された他の化合物で処理された場合、85%のアポトーシスまで達する非常に顕著な相互作用が見られた。使用された方法、即ち蛍光Hoechst33258系による決定、は、T.R.Chen(Cell Res.104,255−262,1977)によって記載されている。結果の表は、以下の表Dに添付されている。
【0063】
【表4】
【0064】
III 受容体結合アッセイ
CB1結合アッセイは、ラットの脳から調製されたシナプトソーム膜で行った(Devane et al.,1992)。CB2アッセイは、トランスフェクトされた細胞で行った(Mechoulam et al.,1995)。全てのアッセイは三重で行われた。以前に記載された[3H]HU−243プローブを、遠心法に基づいたリガンド結合アッセイ(Devane et al.,1992a、Devane et al.,1992b)において使用した。これは、45±7ppmのKi値を有する。
【0065】
動物及び薬物
メスのSabraマウス(生後2ヶ月、Harlan−Sprague Dawley,Jerusalem)を、一連の試験並びに炎症及び末梢部の疼痛に対するアッセイに対して使用した。5匹のマウスの群をそれぞれの実験に使用した。化合物2a、2b、3a及び3bを、以前に記載された(Hanus et al.,1999)ように、ベヒクル(エタノール:乳化団:生理食塩水=1:1:18)に溶解し、そして0.1ml/マウスの10gの体積で腹膜内(i.p.)に注射した。
動物における実験は、JerusalemのHebrew Universityの動物研究倫理委員会によって決定された基準に従って行われた。
【0066】
マウスにおけるアラキドン酸誘導の耳の炎症
耳の炎症を、アラキドン酸の局所適用後の耳の組織の腫張を評価することによって測定した。非ステロイド系抗炎症性薬物が、このモデルにおける腫張を減少することが示されている(Young et al.,1984)。薬物、即ちCBD誘導体又はインドメタシンの腹膜内注射の60分後、アラキドン酸(5μlのエタノール中の4.5mg)を片方の耳の内側表面に適用した。反対側の耳は、対照として取り扱った(5μlのエタノール)。耳の厚みを、ダイヤル厚みゲージ(Mitutoyo、日本)を使用して、アラキドン酸の適用の直後に始まって90分間、15分ごとに決定(0.01mm単位で)した。
【0067】
末梢部疼痛
末梢神経系によって仲介される疼痛を、皮膚(末梢)の疼痛に対する‘ホルマリン試験’で試験した(Tjolson et al.,1992;Calignano et al.,1998;Jaggar et al.,1998)。試験される化合物(又はベヒクル)を、腹膜内に注射した。ホルマリン(生理食塩水中に溶解された3.2%)を、薬物の90分後、マウスの後足の足底の表面に皮下注射(20μlの体積で)した。ホルマリン投与の直後、侵害受容を、マウスがホルマリンを注射した足を舐める回数によって評価(5分後とに1時間)した。
【0068】
統計分析
時間曲線を、二変数分散分析(ANOVA:時間×投与量)によって比較した。ベヒクル処理との差は、一変数ANOVA;s、;それに続く事後のNewman−Keuls試験(Graph Pad,San Diegoから入手のPrismソフトウェア)によって比較した。
【図面の簡単な説明】
【図1】
アラキドン酸(A’A)誘導の耳の腫張の30分後の、CBD(1a)、7−ヒドロキシ−CBD(2a)(実施例15)、及び7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)(実施例16)並びにインドメタシンの効果。
【図2】
耳のアラキドン酸誘導の耳の腫張後の、各種の投与量のCBD−7−酸(3a)(実施例28)、及びCBD−DMH−7−酸(3b)(実施例28)並びにインドメタシン(20mg/kg)の効果。
【図3】
7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)、そして特にCBD−DMH−7−酸(3b)の強力な活性の観点から、多くの更なる側鎖同族体を調製した。
【図4】
7−ヒドロキシ−CBD−DMH(2b)、そして特にCBD−DMH−7−酸(3b)の強力な活性の観点から、多くの更なる側鎖同族体を調製した。
【図5】
R’が、CH3を表し、そしてR’’が、a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;b.R’’’が、5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;c.nが、1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が、1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;を表す一般式Iの化合物の出発物質は、図5に例示した方法で調製され、ここにおいてメンタ−2,8−ジエン−1−オールは、5位で置換されたレゾルシノールと縮合される(Leite et al.)。
Claims (14)
- 錠剤、カプセル、粒剤、及び溶液中の懸濁物の間から選択される、請求項1に記載の医薬組成物。
- 活性成分に加えて、担体、崩壊剤、潤滑剤、安定剤、芳香剤、希釈剤の間から選択される賦形剤及びもう一つの医薬的に有効な化合物を含んでなる、請求項1又は2に記載の医薬組成物。
- 希釈剤が、医薬的に受容可能な補助溶媒、天然又は合成のイオン性若しくは非イオン性界面活性剤で調製されたミセル溶液、或いはこのような補助溶媒及びミセル溶液の組み合わせを含んでなる水性補助溶媒溶液である、請求項3に記載の医薬組成物。
- 本質的に、エタノール、界面活性剤、又は水の溶液からなる担体を含んでなる、請求項3に記載の医薬組成物。
- 本質的に、トリグリセリド、レシチン、グリセリン、乳化剤、抗酸化物、及び水を含んでなる乳液からなる担体を含んでなる、請求項3に記載の医薬組成物。
- 薬剤の調製における一般式Iの化合物及び同一物を含んでなる、医薬組成物の使用。
- 一般式Iの化合物又は同一物を含んでなる医薬製剤による、ヒトの治療のための方法。
- R’が、COOH又はCH2OHを表し、そして
R’’が、
a.6ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
を表す、一般式Iの化合物。 - R’=CH2OHであり、そしてR’’=
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;
である、一般式Iの化合物の、
a.R’がCH3を表し、そしてR’’が上記と同一の意味を有する一般式Iの化合物のフェノール型基を遮断し;
b.工程aで得られた化合物中の環の二重結合を選択的にエポキシド化し;
c.工程bで得られた化合物中のエポキシド環を選択的に開環して、対応するアリルアルコールを形成し;
d.工程cで得られた化合物のアリル転位を行って、一般式Iの所望する化合物のジメトキシ化合物を得て;そして
e.工程dで得られた化合物を脱メトキシル化して、一般式Iの所望する化合物を形成すること;
を含んでなる、調製のための方法。 - a.CBD又はそのジメチルヘプチル同族体を、ヨウ化メチル及び炭酸カリウムとDMF中で反応させ;
b.得られたジメチルエーテルを、3−クロロ安息香酸と反応させて、対応するエポキシドを得て;
c.得られたエポキシドを、メチルマグネシウムN−シクロヘキシル−イソプロピルアミドとトルエン中で反応させ;
d.工程cで得られた化合物をアセチル化し;
e.得られたアセチル化物を、臭化t−ブチルジメチルシリルと反応させ;
f.得られた臭化物を、(nBu)4NH4Oacとアセトン中で反応させて、アリルアセテートジエーテルを得て;そして
g.得られたエーテルを、水酸化ナトリウム溶液中で加熱し;そして
h.得られた化合物を、ヨウ化メチルマグネシウムと加熱して、必要とする化合物を得ること;
を含んでなる、RがCH2OHを表し、そしてR’’がC5H11又はDMHのいずれかを表す一般式Iの化合物の調製のための、請求項10に記載の方法。 - 酸(R’=COOHであり、そしてR’’=
a.5ないし12個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキル;
b.R’’’が5ないし9個の炭素原子の直鎖又は分枝鎖アルキルであるか、或いは末端炭素原子においてフェニル基によって置換された直鎖又は分枝鎖アルキルである、−O−R’’’基;
c.nが1ないし7の整数であり、そしてアルキル基が1ないし5個の炭素原子を含有する、−(CH2)n−O−アルキル基;である一般式I)
の、
a.請求項10に記載の方法の工程dで得られた化合物を脱メトキシ化し;
b.工程aで得られた化合物をアセチル化し;
c.工程bで得られたトリアセテートを転位し、そして臭素化して、対応する臭化物を得て;そして
d.臭化物を、酸化及び加水分解して、一般式Iの所望の化合物を形成すること;
を含んでなる、調製のための方法。 - a.上記工程dで得られた化合物を、ヨウ化メチルマグネシウムと反応させ;
b.得られたトリオールをアセチル化し;
c.得られたアセチル化物を、転位し、そして臭素化して、対応する臭化物を得て;
d.得られた臭化物を、クロム酸カリウムでヘキサメチルホスホン酸トリアミド中で酸化し;
e.得られたアルデヒドを、亜塩素酸ナトリウムで酸化し、そして水酸化ナトリウムの水溶液と反応させて、所望の化合物を得ること;
を含んでなる、R’が、COOHを表し、R’’が、C5H11又はDMHを表す一般式Iの化合物の調製のための、請求項12に記載の方法。 - カンナビジオール及び一般式Iの化合物によるγ線照射抗癌治療の向上のための方法。
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