JP2003532622A

JP2003532622A - 神経発生を誘導する一酸化窒素ドナー

Info

Publication number: JP2003532622A
Application number: JP2001502674A
Authority: JP
Inventors: マイケルチョップ，; リュイランチャング，
Original assignee: Henry Ford Health System
Current assignee: Henry Ford Health System
Priority date: 1999-06-14
Filing date: 2000-06-14
Publication date: 2003-11-05
Also published as: ES2313895T3; HUP0202150A2; ATE408402T1; CN101310772A; AU5488200A; ZA200110305B; EP1233670A1; EP1233670B1; CA2377373A1; US20110071168A1; NZ516513A; IL147112A0; HUP0202150A3; CN101310772B; CN1370044A; CA2377373C; US8383626B2; AU782283B2; DE60040299D1; EP1233670A4

Abstract

(57)【要約】治療量の一酸化窒素ドナー化合物を、神経発生の促進を必要としている患者に投与することにより神経発生を促進する方法が提供される。神経発生を促進するに十分な有効量の一酸化窒素ドナーを有する、神経発生を提供するための化合物もまた、提供される。神経発生を促進するための一酸化窒素化合物もまた提供される。さらに、増強を必要としている部位に有効量の一酸化窒素ドナーを投与することにより脳細胞の生成を増強し、そして細胞構造変化およびレセプター変化を促進する方法が提供される。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】（技術分野）本願は、神経発生を促進するため、ならびに神経損傷および神経変性後の回復
を促進するための方法および化合物に関する。より具体的には、本願は、神経発
生および神経系における形成性を促進するための方法および組成物に関する。

【０００２】（発明の背景）発作は、脳の区画が梗塞になった場合に起こり、脳の血液供給の中断から脳組
織の死を生じる。急性発作に関連する脳梗塞は、突然のかつ劇的な神経学的欠陥
を引き起こす。発作は、米国の成人集団における３番目に多い死因であり、そし
て障害の主要な原因である。

【０００３】薬学的介入は、発作に罹患した、生存し得る脳の領域への血流を最大化するこ
とを試みてきたが、臨床的有効性は免れることがわかった。Ｈａｒｒｉｓｏｎの
ＰｒｉｎｃｉｐｌｅｓｏｆＩｎｔｅｒｎａｌＭｅｄｉｃｉｎｅ（第９版、
１９８０、１９２６頁）において述べられているように、「．．．［脳血管拡張
薬］は、亜酸化窒素法によって測定されるように、脳の血流を増加するという実
験的証拠にも関わらず、それらは、一過性の虚血性発作、進展中の血栓症、また
は確立した発作における段階でのヒト発作における注意深い研究において有益で
あることはわからなかった。このことは、ニコチン酸、Ｐｒｉｓｃｏｌｉｎｅ、
アルコール、パパベリン、および５％二酸化炭素の吸引で真実であった．．．。
これらの方法の使用に反対して、この血管拡張薬が有益であるというよりはむし
ろ有害であるという示唆が存在する。なぜなら、全身の血圧を低下させることに
よって、頭蓋内の吻合血流を減少させるか、または正常な脳の一部における血管
を拡張することによって、梗塞から血液を移動させるからである。」。

【０００４】従って、神経発生が起こることを可能にすることによって、発作の効果を低減
するための化合物および方法を開発することは有用である。

【０００５】（発明の要旨）本発明に従って、神経発生促進の必要がある患者に治療的有効量の一酸化窒素
ドナーを投与することによって、神経発生を促進する方法が提供される。神経発
生はまた、損傷した脳以外でも促進される。神経発生を促進するのに十分な有効
量の一酸化窒素ドナーを包含する、神経発生を誘導するための化合物もまた提供
される。神経発生を促進するための一酸化窒素化合物もまた提供される。さらに
、ニューロンの産生の増大を必要とする部位に有効量の一酸化窒素ドナー化合物
を投与することによって、ニューロンの産生を増大させる方法が提供される。患
者に有効量の一酸化窒素ドナー化合物を投与することによって神経学的機能およ
び認識機能の両方を増加させる方法が提供される。

【０００６】（詳細な説明）一般的に、本発明は、神経発生を促進するための方法および化合物を提供する
。より具体的には、本発明は、神経発生を促進する有効量の一酸化窒素ドナーを
利用する、神経発生を促進するための方法および化合物を提供する。この神経発
生は、種々の位置（脳、ＣＮＳ、耳、またはその中に損傷したニューロンを含む
任意の他の位置を含むがそれらに限定されない）において必要とされ得る。

【０００７】「一酸化窒素ドナー」は、一酸化窒素を供与し得るかまたは一酸化窒素の増加
を促進し得る化合物を意味する。一酸化窒素を供与する化合物のファミリーが存
在する。これらの化合物には以下が含まれる：ＤＥＴＡＮＯＮＯａｔｅ（ＤＥＴ
ＡＮＯＮＯ、ＮＯＮＯａｔｅ、または１−置換ジアゼン−１−イウム−１，２−
ジオレートは、［Ｎ（Ｏ）ＮＯ］−官能基：ＤＥＡ／ＮＯ；ＳＰＥＲ／ＮＯ；Ｄ
ＥＴＡ／ＮＯ；ＯＸＩ／ＮＯ；ＳＵＬＦＩ／ＮＯ；ＰＡＰＡ／ＮＯ；ＭＡＨＭＡ
／ＮＯおよびＤＰＴＡ／ＮＯ含む化合物である）、ＰＡＰＡＮＯＮＯａｔｅ、Ｓ
ＮＡＰ（Ｓ−ニトロソ−Ｎ−アセチルペニシルアミン）、ニトロプルシドナトリ
ウム、およびニトログリセリンナトリウム。

【０００８】一酸化窒素の増加を促進する化合物（例えば、ホスホジエステラーゼインヒビ
ターおよびＬ−アルギニン）が存在する。

【０００９】本明細書中で使用される場合、「神経発生を促進する」は、神経成長が促進さ
れるかまたは増強されることを意味する。このことには、以下が含まれ得るがこ
れらに限定されない：新規な神経成長または既存のニューロンの成長の増強、な
らびに、実質細胞および組織形成性を促進する細胞の成長および増殖。神経発生
はまた、軸索および樹状突起の伸長ならびにシナプス形成を含むがこれらに限定
されない。

【００１０】本明細書中で使用される場合、「増大」は、特定の状況において必要とされる
ように、成長が、増強されるかまたは抑制されるかのいずれかであることを意味
する。従って、さらなるニューロン成長が必要とされる場合、一酸化窒素ドナー
の付加がこの成長を増加させる。一酸化窒素ドナーまたは一酸化窒素の供給源は
、レセプター活性化を増強すること、ならびに、細胞の形態学的変化および細胞
増殖を促進することによって、傷害、神経変性、または加齢によって引き起こさ
れた損傷を補償することを、大脳組織に準備させる。

【００１１】「神経学的」機能または「認識」機能は、本明細書中で使用される場合、脳に
おける神経成長が患者の思考能力、機能などを増強することを意味する。一酸化
窒素で処置したヒトは、認識、記憶、および運動機能の改善を容易にする脳細胞
の産生を増加させた。さらに、神経学的疾患または傷害に罹患した患者は、一酸
化窒素で処置した場合、認識、記憶、および運動機能を改善した。

【００１２】本発明の目的は、神経発生および機能的改善を促進する細胞変化を誘導するこ
とによって虚血大脳傷害または他のニューロン傷害からの改善された結果を促進
することである。患者は、発作、ＣＮＳ傷害および神経変性疾患の後に神経学的
および機能的欠損を罹患する。これらの知見は、ＣＮＳ損傷または変性後に、脳
の代償機能を増強して機能を改善する手段を提供する。一酸化窒素投与によって
誘導されるニューロンおよび細胞変化の誘導は、発作、損傷、加齢および変性疾
患後の機能的改善を促進する。このアプローチはまた、ＡＬＳ、ＭＳおよびハン
ティングトンのような、しかしこれらに限定されない、他の神経学的疾患を罹患
している患者に利益を提供し得る。

【００１３】ＣＮＳ傷害後に都合の良い時点で投与された一酸化窒素は、脳における神経発
生を増進し、そして神経発生を促進し得る。このような産生のための主な機構は
、ＮＯがグルタミン酸レセプターを活性化することである。これらのグルタミン
酸レセプターは、長期の相乗作用を促進し、そして続いて、ニューロンの再生を
誘導する。最初の実験として、長い半減期（約５０時間）を有し、ＮＯを産生す
る化合物であるＤＥＴＡ／ＮＯを用いた。この化合物を発作の発症の２４時間後
にそして２４時間後を超えて投与した場合、増加した数の新たなニューロンが同
定された。

【００１４】本明細書中に含まれる実験データは、ＮＯの産生を誘導するように設計された
薬理学的介入が神経発生を促進し得ることを示す。２つの化合物（ＤＥＴＡＮＯ
ＮＯａｔｅおよびＳＮＡＰ）を用い、これらの化合物は、発作後の神経発生およ
び改善された機能的結果を好首尾に誘導した。用いた化合物は、血管脳関門を横
切るようである。神経発生は、神経化学研究の主要な最終目的である。ニューロ
ンの産生を促進する方法を開発することは、広範な種々の神経学的疾患、ＣＮＳ
傷害および神経変性を処置する機会を広げる。非損傷脳におけるニューロンの産
生を増強し、その結果、機能を上昇させることが可能である。

【００１５】ニューロンの産生を促進するクラスの薬物についての市場は、巨大である。一
酸化窒素ドナー（ＤＥＴＡＮＯＮＯは１つの例にすぎない）は、神経発生を促進
する。神経発生を増加させることは、年齢にともなって、および損傷または疾患
後に、神経学的、行動的および認知の機能を増加、改善する方法といいかえられ
る。

【００１６】上記の議論は、神経発生を促進する一酸化窒素の使用のための事実に基づく基
礎を提供する。本発明と共に用いられる方法および本発明の有用性は、以下の非
限定的な実施例および添付の図面によって示され得る。

【００１７】（方法：）分子生物学における一般的方法：当該分野で公知でありかつ詳細には記載され
ていない標準的な分子生物学的技術は、一般的に以下の通りに従い、そしてこれ
らは本明細書中に参考として援用された：Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌ
ａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ
ＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，ＮｅｗＹ
ｏｒｋ（１９８９）ならびにＡｕｓｕｂｅｌら，ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃ
ｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ
ａｎｄＳｏｎｄｓ，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，Ｍａｒｙｌａｎｄ（１９８９）なら
びにＰｅｒｂａｌ，ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＧｕｉｄｅｔｏＭｏｌｅｃｕ
ｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，ＮｅｗＹｏ
ｒｋ（１９８８）ならびにＷａｔｓｏｎら，ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＤＮＡ，
ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃＡｍｅｒｉｃａｎＢｏｏｋｓ，ＮｅｗＹｏｒｋなら
びにＢｉｒｒｅｎら（編）ＧｅｎｏｍｅＡｎａｌｙｓｉｓ：ＡＬａｂｏｒａ
ｔｏｒｙＭａｎｕａｌＳｅｒｉｅｓ，第１巻〜第４巻，ＣｏｌｄＳｐｒｉ
ｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ（
１９９８）ならびに米国特許第４，６６６，８２８号；同第４，６８３，２０２
号；同第４，８０１，５３１号；同第５，１９２，６５９号および同第５，２７
２，０５７号に示される方法論。ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を一般的にＰ
ＣＲＰｒｏｔｏｃｏｌｓ：ＡＧｕｉｄｅＴｏＭｅｔｈｏｄｓＡｎｄ
Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＳａｎＤｉｅｇ
ｏ，ＣＡ（１９９０）の通りに実施した。フローサイトメトリーと組み合わせた
インサイチュ（細胞内）ＰＣＲを、特異的ＤＮＡおよびｍＲＮＡ配列を含む細胞
の検出のために用い得る（Ｔｅｓｔｏｎｉら，１９９６，Ｂｌｏｏｄ８７：３
８２２）。

【００１８】免疫学における一般的方法：当該分野で公知でありかつ詳細には記載されてい
ない、免疫学における標準的な方法は、一般的に以下の通りである：Ｓｔｉｔｅ
ｓら（編），ＢａｓｉｃａｎｄＣｌｉｎｉｃａｌＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（
第８版），Ａｐｐｌｅｔｏｎ＆Ｌａｎｇｅ，Ｎｏｒｗａｌｋ，ＣＴ（１９９
４）ならびにＭｉｓｈｅｌｌおよびＳｈｉｉｇｉ（編），ＳｅｌｅｃｔｅｄＭ
ｅｔｈｏｄｓｉｎＣｅｌｌｕｌａｒＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，Ｗ．Ｈ．Ｆｒ
ｅｅｍａｎａｎｄＣｏ．，ＮｅｗＹｏｒｋ（１９８０）。

【００１９】（治療薬の送達：）本発明の化合物は、個々の患者の臨床状態、投与部位および投与方法、投与ス
ケジュール、患者の年齢、性別、体重および医療従事者に公知の他の因子を考慮
して、良好な医学的実施（ｇｏｏｄｍｅｄｉｃａｌｐｒａｃｔｉｃｅ）に従
って投与および投薬される。従って、本明細書中での目的のために、薬学的に「
有効な量」は、当該分野で公知のような考慮すべき事柄によって決定される。量
は、生存率の改善もしくはより迅速な回復、または当業者によって適切な尺度と
して選択されるような症状および他の指標の改善もしくは除去を含むがこれらに
限定されない、改善を達成するために有効でなければならない。

【００２０】本発明の方法では、本発明の化合物は、種々の方法で投与され得る。本発明の
化合物が、化合物としてまたは薬学的に受容可能な塩として投与され得、そして
単独で、または活性成分として、薬学的に受容可能なキャリア、希釈剤、アジュ
バントおよびビヒクルと組み合わせて投与され得ることに留意すべきである。こ
の化合物は、経口投与、皮下投与または非経口投与（静脈内、動脈内、筋肉内、
腹腔内および鼻腔内投与ならびに髄口内技術および注入技術を含む）され得る。
化学物のインプラントもまた有用である。処置される患者は、温血動物であり、
そして特にヒトを含む哺乳動物である。薬学的に受容可能なキャリア、希釈剤、
アジュバントおよびビヒクル、ならびにインプラントのキャリアとは一般に、本
発明の活性成分と反応しない、不活性な、非毒性の固体または液体のフィラー、
希釈剤またはカプセル化材料をいう。

【００２１】ヒトが一般的に、本明細書中に例示されるマウスまたは他の実験動物よりも長
く処置され、その処置は、疾患プロセスの長さおよび薬物の有効度に比例した長
さを有することが留意される。用量は、数日間の期間にわたる単一用量または複
数用量であり得るが、単一用量が好ましい。

【００２２】用量は、数日間の期間にわたる単一用量または複数用量であり得る。処置は一
般に、疾患プロセスの長さおよび薬物の有効度および処置される患者の種に比例
した長さを有する。

【００２３】本発明の化合物を非経口的に投与する場合、本発明の化合物は一般に、単位投
薬注射可能形態（溶液、懸濁液、乳液）に処方される。注射に適切な薬学的処方
物としては、無菌の水性の溶液または分散液、および無菌の注射可能な溶液また
は分散液中での再構成のための無菌の散剤が挙げられる。キャリアは、例えば、
水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、
液体ポリエチレングリコールなど）、それらの適切な混合物および植物油を含む
、溶媒または分散媒体であり得る。

【００２４】適切な流動度は、例えば、レシチンのようなコーティングの使用によって、分
散物の場合に必要とされる粒子サイズの維持によって、そして界面活性剤の使用
によって維持され得る。非水性ビヒクル（例えば、綿実油、ゴマ油、オリーブ油
、ダイズ油、トウモロコシ油、ヒマワリ油またはラッカセイ油およびイソプロピ
ルミリステートのようなエステル）もまた、化合物組成物のための溶媒系として
用いられ得る。さらに、組成物の安定性、無菌性および等張性を増強する種々の
添加剤（抗微生物性保存剤、抗酸化剤、キレート剤および緩衝剤を含む）もまた
添加され得る。微生物の作用の防止は、種々の抗微生物剤および抗真菌剤（例え
ば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸など）によって確実
にされ得る。多くの場合、等張剤（例えば、糖、塩化ナトリウムなど）を含むこ
とが所望され得る。注射可能な薬学的形態の長期吸収は、吸収遅延剤（例えば、
モノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチン）の使用によってもたらされ得る
。しかし、本発明によれば、使用される任意のビヒクル、希釈剤または添加剤は
、化合物と適合性でなければならない。

【００２５】無菌の注射可能溶液は、本発明の実施の際に利用される化合物を、必要とされ
る量の適切な溶媒に、所望により種々の他の成分と共に取り込むことによって調
製され得る。

【００２６】本発明の薬理学的処方物は、任意の適合性キャリア（例えば、種々のビヒクル
、アジュバント、添加物および希釈剤）を含む注射可能な処方物において患者に
投与され得る；または本発明において利用される化合物は、徐放性皮下インプラ
ントまたは標的化送達系の形態（例えば、モノクローナル抗体、ベクター化（ｖ
ｅｃｔｏｒｅｄ）送達、イオン導入、ポリマーマトリックス、リポソームおよび
ミクロスフェア）で患者に対して非経口的に投与され得る。本発明において有用
な送達系の例としては、５，２２５，１８２；５，１６９，３８３；５，１６７
，６１６；４，９５９，２１７；４，９２５，６７８；４，４８７，６０３；４
，４８６，１９４；４，４４７，２３３；４，４４７，２２４；４，４３９，１
９６および４，４７５，１９６が挙げられる。多くの他のこのようなインプラン
ト、送達系およびモジュールは、当業者に周知である。

【００２７】本発明において利用される化合物の薬理学的処方物は、患者へと経口投与され
得る。化合物を錠剤、懸濁剤、液剤、乳剤、カプセル剤、散剤、シロップ剤など
において投与することのような従来法が使用され得る。これらを経口的または静
脈内に送達し、そして生物学的活性を保持する公知の技術が好適である。

【００２８】１つの実施形態では、本発明の化合物は、最初に、静脈内注射によって投与さ
れて、血液レベルを適切なレベルにし得る。次いで、患者のレベルは、経口投薬
形態によって維持されるが、患者の状態に依存して、そして上記に示したように
、他の投与形態が使用され得る。投与されるべき量は、処置される患者によって
異なり、１日あたり、約１００ｎｇ／ｋｇ体重〜１００ｍｇ／ｋｇ体重で変化し
、そして好ましくは１日あたり１０ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇである。

【００２９】（実施例）（実施例１）脳における神経発生を促進するための薬理学的な方法を開発した。オスのＷｉ
ｓｔａｒラットを、右側中大脳動脈（ＭＣＡ）の起点において、血塊の動脈内配
置によりＭＣＡの閉塞に供した。発作誘導して２４および４８時間後、動物に一
酸化窒素ドナー化合物（ＤＥＴＡＮＯＮＯ）を投与（ｉｖ/ｉｐ）した（群１）
か、あるいは発作誘導して２４時間後、動物にＮＯドナー化合物を毎日注射（ｉ
ｐ）した（群２）。新細胞の形成を同定するチミジンアナログであるＢｒｄＵを
、虚血の開始から１４日間にわたり、毎日注射（ｉｐ）した。細胞型の同定を、
特異的な細胞タンパク質の免疫反応性を標識することにより決定した。このよう
に、ニューロンをＮｅｕＮ、ＭＡＰの発現により、そして形成された星状細胞を
ＧＦＡＰにより同定した。神経発生の測定を、脳の特定の領域、脳室下（ｓｕｂ
ｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）領域および歯状回内で行った。

【００３０】結果：データにより、未処置の群において見いだされたＢｒｄＵ陽性細胞の数
と比較して、ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置されたラットにおいてＢｒｄＵ陽性細胞の
数が有意に増加していることが示された。群２については、結果は次の通りであ
った：脳室下領域：２７４８±３２６対１６５３±９１．４、歯状回：顆粒
細胞層、１３５±１８．９対３７．３±３．６；５３．７±６．３対３
４．９±２．８、門、４３．８±１０．２対１０．１±２．４。群１につい
て、顆粒細胞層のＢｒｄＵ細胞における有意な増加が、処置ラット対未処置
ラットにおいて、それぞれ、８９．５±１２対３７．３±３．６という数値
で検出された。歯状回内の新たに形成された細胞の大部分（９０％を超える）は
、ニューロンであった。脳の他の領域においては、新しく形成された細胞は、グ
リア表現型および星状細胞表現型を示した。

【００３１】非虚血性の脳のＤＥＴＡＮＯＮＯ処置：外科手術の手法をまったく受けていな
いラットを、ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した。単一の用量（ｉｖ０．１２ｍｇ）
として薬物を投与した。処置後、ＢｒｄＵを１４日にわたり毎日注射した。１つ
の集団（群３）のラットを、ＢｒｄＵ注射の最終日に屠殺した。他の集団（群４
）を、最後のＢｒｄＵ注射後、４週目に屠殺した。ＤＥＴＡＮＯＮＯを投与しな
かった動物に、ＤＥＴＡＮＯＮＯ処置されたラット（群５）と同じプロトコール
を用いてＢｒｄＵを与えた。

【００３２】群３対群５の結果は、次に示された通りである：脳室下領域において、結
果はそれぞれ２９５２±１０２．６対１４３２．６±１０４．６；２７２５
．３±１１５．５対１６５５．２±１０２．９、歯状回（顆粒細胞層）にお
いては７３．７±８．１１対３９．９±７．２６であった。群４対群５
の脳室下領域において、結果は次に示す通りであった：それぞれ、４５６．５±
４２．３対２１４．６±６７．９；５１８．４±６７．２対２３３．１
±４９．２；歯状回（門）においては、それぞれ７．７１±８．９対３．２
３±１．２２であった。ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置したラットは、未処置のラット
に比べ、２つの時点で新たに形成された細胞数の有意な増加を示した。新たに形
成された細胞の増加は、脳室下領域および海馬において顕著であった。ＢｒｄＵ
反応性細胞は、ニューロンのマーカーであるＮｅｕＮおよびＮＡＰ２、ならびに
星状細胞のマーカーであるＧＦＡＰで２重標識されていた。新たに形成された細
胞は、ニューロンあるいは星状細胞タンパク質を示していた。

【００３３】図１は、海馬におけるＢｒｄＵならびにニューロンマーカーであるＮｅｕＮお
よびＮＡＰ２、ならびにＢｒｄＵおよび星状細胞マーカーであるＧＦＡＰの２重
標識免疫組織化学性を示している。これは、ＤＥＴＡＮＯＮＯ処置し、発作（ｓ
ｔｒｏｋｅ）に供したラットにおいて調べられている。細胞は、新たに形成され
た細胞のニューロン表現型および星状細胞表現型の両方を示す２つのマーカーに
対する免疫反応性を示した。海馬内で新たに形成された９０％を超える細胞が、
ニューロン表現型を示すことが見積もられる。

【００３４】これらのデータは、ＮＯドナーの投与が虚血性脳において神経発生を促進する
ことを示している。このアプローチは、多くの型のＣＮＳ病理学および傷害に応
用できる。さらに、ＮＯはまた、「普通の」成体の脳において神経発生を促進す
る。

【００３５】本発明の目的は、神経発生の誘導による虚血性の大脳傷害あるいは他のニュー
ロンの傷害に由来する結果の改良を促進することである。患者は、発作、ＣＮＳ
傷害および神経変性疾患の後、神経的および機能的欠損を被る。これらの所見は
、ＣＮＳ損傷あるいは変性後の機能を改善する脳補償機構を高めるための手段を
供給する。ニューロンの誘導は、発作後の機能的な改善を促進する。ＣＮＳ傷害
後、好都合な時間に投与された一酸化窒素は、脳における神経発生を促し、神経
発生を促進することが可能である。そのような産生の機構は、ＮＯがグルタミン
酸受容体を活性化することである。これらのグルタミン酸受容体は、長期の薬効
の増加を促し、その後、ニューロンの再生を誘導する。始めの実験として、ＮＯ
を産生する半減期の長い（約５０時間）化合物ＤＥＴＡ/ＮＯを用いた。発作の
開始から２４時間後におよび２４時間以降にこの化合物が投与されると、新しい
ニューロンの数が増加することが同定された。

【００３６】本明細書中に含まれる実験データは、ＮＯの生産を誘導するように設計された
薬理学的介入が、神経発生を促進し得ることを示している。用いられた化合物は
、血液脳関門を通過するようである。神経発生は、神経科学研究における重要な
最終目標である。ニューロンの生産を促進するための方法の開発は、様々な種類
の神経病、ＣＮＳ傷害および神経変性を処置するための道を切り開く。機能を増
進するために、損傷を受けていない脳でのニューロンの産生を増加させることは
可能である。

【００３７】ニューロンの産生を促す類の薬物のマーケットは莫大である。一酸化窒素ドナ
ー（ＤＥＴＡＮＯＮＯはその１例に過ぎない）は、神経発生を促進する。神経発
生の増加は、加齢および傷害あるいは疾患後に伴う、神経学的、行動的、および
認識的な機能を増進し、改善させるための方法と言い換えることができる。

【００３８】発作後に神経発生を誘導するためのＮＯドナーあるいは特にこの薬物の応用例
は以前には存在しない。

【００３９】成体の齧歯類動物の脳は、その動物の一生を通して、脳室下領域（ＳＶＺ）お
よび海馬の歯状回において、ニューロン前駆体細胞を産生し得る。しかし、前駆
体細胞の増殖および分化を調節するシグナルはまだ知られていない。一酸化窒素
（ＮＯ）は、生物学的系において化学的メッセンジャーであり、脳において神経
伝達物質として働く。本研究では、成体ラットのＳＶＺおよび歯状回におけるニ
ューロン前駆体細胞の増殖に対するＮＯの効果を調べた。

【００４０】二つの実験を行った。始めの実験では、非虚血性の成体ラットのＳＶＺおよび
歯状回におけるニューロン前駆体細胞の増殖に対するＮＯの効果を調べた。二番
目の実験では、虚血性の成体ラットのＳＶＺおよび歯状回におけるニューロン前
駆体細胞の増殖に対するＮＯの効果を調べた。

【００４１】体重３００−３５０ｇのオスのＷｉｓｔａｒラットを、本研究に用いた（Ｃｈ
ａｒｌｅｓＲｉｖｅｒＢｒｅｅｄｉｎｇＣｏｍｐａｎｙ、Ｗｉｌｍｉｎｇ
ｔｏｎ、ＭＡ）。生理学的条件下で、半減期が２０時間であるＤＥＴＡＮＯＮＯ
ａｔｅ（ＮＯドナー）を、ＡＬＥＸＩＳＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌＣｏｒｐｏ
ｒａｔｉｏｎから購入した。有糸分裂標識として用いたチミジンアナログである
ブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）を、ＳｉｇｍａＣｈｅｍｉｃａｌから購
入した。ＢｒｄＵに対するマウスモノクローナル抗体を、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ
Ｍａｎｎｈｅｉｍから購入した。

【００４２】体重３００−３５０ｇのオスのＷｉｓｔａｒラット（ｎ＝２８）をハロタン（
７０％Ｎ₂Ｏおよび３０％Ｏ₂と混合して１〜３．５％）で顔面マスクにより麻
酔した。直腸の温度を、フィードバック調節による水加熱システムを用いて、外
科的手術の間中、３７±１℃に維持した。右大腿動脈および静脈を、それぞれ連
続的に血圧をモニターし、血中ガス（ｐＨ、ｐＯ₂、ｐＣＯ₂）を測定し、薬物投
与するために、ＰＥ５０カテーテルを用いてカニューレを通した。ＤＥＴＡＮＯ
ＮＯａｔｅを、ラットの静脈内および腹腔内に注射した。

【００４３】（ＤＥＴＡＮＯＮＯ処置：）ラットを、ランダムに４群に分けた。群１（単一
のＲｘ）のラットに、静脈内に、１５分ごとに４回の連続的ボーラス用量のＤＥ
ＴＡＮＯＮＯを注射した（１回につき０．１ｍｇ/ｋｇ、全用量で０．４ｍｇ/ｋ
ｇ）。群２（二回のＲｘ群）のラットに、１５分ごとに４回の連続的ボーラス用
量のＤＥＴＡＮＯＮＯを静脈内に注射した（１回につき０．１ｍｇ/ｋｇ、全用
量で０．４ｍｇ/ｋｇ）。そして２４時間後、ラットに２回目の処置を行った。
群３（７回のＲｘ群）のラットに、実験初日、１５分ごとに４回の連続的ボーラ
ス用量のＤＥＴＡＮＯＮＯを与えた（１回につき０．１ｍｇ/ｋｇ）、さらに６
日間連続で腹腔内にボーラス用量のＤＥＴＡＮＯＮＯ（０．４ｍｇ/ｋｇ）を毎
日注射した。群４（コントロール）のラットに、生理食塩水のみを与えた（一回
の投与）。

【００４４】ラットに、初日のＤＥＴＡＮＯＮＯ処置の際に、ＢｒｄＵ（５０ｍｇ/ｋｇ）
を腹腔内に注射し、その後、さらに１４日間、ＢｒｄＵを毎日腹腔内注射した。
成体ラットのＳＶＺおよび歯状回における細胞の増殖および分化がＮＯにより影
響されるかどうかを決定するために、１回目の用量でＤＥＴＡＮＯＮＯ処置され
てから１４日（１群あたりｎ＝３〜５）および４２日（１群につきｎ＝３〜５）
後にそれぞれラットを屠殺した。ラットを、１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．
４）中の４％パラホルムアルデヒドで心臓を経て（ｔｒａｎｓｃａｒｄｉａｌｌ
ｙ）灌流した。脳を取り出し、４％ホルムアルデヒドで固定した。

【００４５】ＢｒｄＵ免疫染色のために、まず始めに、脳の切片（６μｍ）を５０％ホルム
アミド、２×ＳＳＣ中、６５℃で２時間、その後、２ＮＨＣｌ中で３７℃で３
０分間インキュベートすることにより、ＤＮＡを変性した。その後、切片をＴｒ
ｉｓ緩衝液中でリンスし、内在性ペルオキシダーゼをブロックするために１％の
Ｈ₂Ｏ₂で処置した。切片を室温で１時間、ＢｒｄＵに対する１次抗体とともにイ
ンキュベートし、その後、ビオチン化した二次抗体（１：２００，Ｖｅｃｔｏｒ
、Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ、ＣＡ）とともに１時間インキュベートした。反応産物
を、３’３’−ジアミノベンジン−テトラヒドロクロライド（ＤＡＢ、Ｓｉｇｍ
ａ）を用いて検出した。

【００４６】ＢｒｄＵで免疫染色した切片を、ＭＣＩＤコンピュータ画像解析システム（Ｉ
ｍａｇｉｎｇＲｅｓｅａｒｃｈ、Ｓｔ．Ｃａｔｈａｒｉｎｅｓ、Ｃａｎａｄａ
）を用いて、４０倍の対物レンズ（ＯｌｙｍｐｕｓＢＸ４０）下でデジタル化
した。ＢｒｄＵ免疫反応性の核は、視覚化を改善するために、コンピュータモニ
ター上で計数したが、これは過剰サンプリングを避けるために、１つの焦点面に
おいて行った。構造は、それぞれの切片（ＲＭＳおよびＯＢ）であらかじめ決め
られた領域を選択することによるか、あるいはそれぞれの切片（歯状回およびＳ
ＶＺ）の全構造を解析することのいずれかによりサンプリングした。

【００４７】４０番目毎の冠状切片を、それぞれのラットからＡＰ＋１０．６ｍｍ（脳梁膝
）とＡＰ＋８．７４ｍｍ（前交連横断）（ＰａｘｉｎｏｓおよびＷａｔｓｏｎ、
１９８６）との間の合計七つの切片として選択した。ＢｒｄＵ免疫反応陽性核を
、左側脳室において計数した。これらの領域中の全ての免疫反応陽性核は、１ｍ
ｍ２あたりのＢｒｄＵ免疫反応性細胞の数として表される。７つの切片の密度を
、それぞれの動物について平均密度値を得るために平均化した。

【００４８】２０番目毎の切片を、ＯＢ/前頭皮質の一連の矢状面から合計６つの切片とし
て、それぞれのラットから選択した。図１に示されているように、ＲＭＳにおけ
る、あらかじめ決められた２つの領域（１００×１００μｍ）およびＯＢの顆粒
細胞層（ＧＣＬ）における４つの領域（３００×３００μｍ）を、それぞれの切
片において解析した。これらの選択された領域において、ＢｒｄＵポジティブで
あった全ての核は、１ｍｍ２あたりの細胞数として表されている。６つの切片に
対するＢｒｄＵ密度を、それぞれの動物について平均密度値を得るために平均化
した。

【００４９】５０番目毎の頭頂切片を、それぞれのラットから、門、脳室下領域（ＳＧＺ）
ならびに内部の１番目、二番目、および三番目の顆粒細胞層（ＧＣＬ）を含むＡ
Ｐ＋５．８６ｍｍとＡＰ＋２．９６ｍｍとの間の８つの切片として選択した。Ｇ
ＣＬと門との境界に沿った２細胞体幅領域として規定されるＳＧＺを、定量のた
めにＧＣＬと常に組み合わせた。これらの領域におけるＢｒｄＵ免疫反応性の核
は、１ｍｍ２あたりのＢｒｄＵ免疫反応性細胞の数として表されている。８つの
切片の密度を、それぞれの動物について、平均密度値を得るために平均化した。

【００５０】（結果）ＤＥＡＮＯＮＯで処置したラットは、処置後１４日目および４２日目において
、生理食塩水で処置したラットと比較して、ＳＶＺにおけるＢｒｄＵ免疫反応性
細胞の数が有意（ｐ＜０．０５）に増加する（図２ａ）。７用量のＤＥＴＡＮＯ
ＮＯを受けたラットは、処置後１４日目において、１用量および２用量のＤＥＴ
ＡＮＯＮＯを受けたラットと比較して最も多くの数のＢｒｄＵ免疫反応性細胞を
示した。１用量のＤＥＴＡＮＯＮＯと７用量のＤＥＴＡＮＯＮＯとの間において
ＢｒｄＵ免疫反応性細胞数の有意な差異が検出された（図２ｂ）。このことは、
ＢｒｄＵ免疫反応性細胞の増加は用量依存様式であることを示唆する。処置後１
４日目の細胞の数と比較して、処置後４２日目におけるＢｒｄＵ免疫反応性細胞
の数は減少したが、残存するＢｒｄＵ免疫反応性細胞の数は、コントロール生理
食塩水動物におけるその数と比較して、有意に増加した（図２ａ）。

【００５１】ＢｒｄＵ免疫反応性細胞の数は、処置後１４日目および４２日目において、Ｄ
ＥＴＡＮＯＮＯで処置したラットのＲＭＳにおいて有意に増加しなかった（表１
）。しかし、ＢｒｄＵ免疫反応性細胞の有意な増加が、コントロール群と比較し
て、１セットのＤＥＴＡＮＯＮＯ処置後４２日目ならびに２および７セットのＤ
ＥＴＡＮＯＮＯ処置後１４日目および４２日目におけるＯＢにおいて検出された
（表１）。このことはＳＶＺ前駆体の移動が増加したことを示唆する。

【００５２】１回のＤＥＴＡＮＯＮＯ処置は、処置後１４日目および４２日目において、歯
状回のＢｒｄＵ免疫反応性細胞の数を有意に増加させなかった（図３）。対照的
に、２および７セットのＤＥＴＡＮＯＮＯで処置したラットは、コントロール群
と比較して、処置後１４日目および４２日目において、歯状回のＢｒｄＵ免疫反
応性細胞数の有意な増加（ｐ＜０．０１）を示した（図３）。歯状回のＢｒｄＵ
免疫反応性細胞の分布のパーセンテージは、ＤＥＴＡＮＯＮＯを用いる処置が、
コントロール群と比較して、処置後１４日目および４２日目において、顆粒層の
下の領域（ｓｕｂｇｒａｎｕｌａｒｚｏｎｅ）におけるＢｒｄＵ免疫反応性細
胞のパーセンテージを有意に減少させ、そして顆粒層において有意に増加させる
ということを示した（図４ａおよび４ｂ）。このことは、ＮＯがＢｒｄＵ免疫反
応性細胞の移動を促進させることを示唆する。ＢｒｄＵ免疫反応性細胞は、楕円
形で丸みを帯びており、そして顆粒層の顆粒細胞の核と同じサイズかまたはより
小さいかのいずれかである（図５）。

【００５３】このデータは、成体ラットに対するＤＥＴＡＮＯＮＯを用いる処置は、ＳＶＺ
および歯状回前駆体細胞の増殖を増加させるだけでなく、増殖した前駆体細胞の
生存をも延長することを実証する。いくつかのＢｒｄＵ免疫反応性細胞は、歯状
回の顆粒細胞の形態学的特徴を有する。従って、このデータは、ＮＯが成体ラッ
ト脳における神経発生を増強することを示唆する。

【００５４】上記のデータに基いて、第２の実験を、限局性塞栓性大脳虚血性脳（ｆｏｃａ
ｌｅｍｂｏｌｉｃｃｅｒｅｂｒａｌｉｓｃｈｅｍｉｃｂｒａｉｎ）に対
するＮＯ効果を調査するために実施した。全ての手順は、以下の手順を除いて第
１の手順と同じであった。

【００５５】雄性ウィスターラット（ｎ＝３０）（体重３００〜３５０ｇ）を中大脳動脈（
ＭＣＡ）閉塞に供した。ＭＣＡを、ＭＣＡの起点に塞栓を配置することによって
閉塞した。手短には、１つのインタクトなフィブリンリッチな２４時間齢の相同
血塊（ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓｃｌｏｔ）（約１μｌ）を、１５ｍｍ長の改変さ
れたＰＥ−５０カテーテルを介して、ＭＣＡの起点に配置した。実験のプロトコ
ルは、４つの群から構成された。Ｉ群（コントロール群）において、ラットを、
ＭＣＡ閉塞に供し、そして虚血後２４時間において、生理食塩水の４回の連続静
脈内ボーラス投与用量（各々０．５２ｍｌ、１５分毎）を受けた。ＩＩ群（ＤＥ
ＴＮＯ／ＮＯ前条件）ラットに、塞栓形成の２４時間前に、ＤＥＴＡＮＯＮＯの
４回の連続静脈内ボーラス用量（各々０．１ｍｇ／ｋｇ、１５分毎、および総用
量０．４ｍｇ／ｋｇ）を受容させた。ＩＩＩ群（ＤＥＴＡＮＯＮＯの２セット群
）において、動物に、閉塞後２４時間および４８時間において、ＤＥＴＡＮＯＮ
Ｏの連続静脈内ボーラス用量（各々０．１ｍｇ／ｋｇ、１５分毎、および総用量
０．４ｍｇ／ｋｇ）を受容させた。ＩＶ群（ＤＥＴＡＮＯＮＯの７セット群）に
おいて、動物に、塞栓形成後２４時間において、ＤＥＴＡＮＯＮＯの連続静脈内
ボーラス用量（各々０．１ｍｇ／ｋｇ、１５分毎、および総用量０．４ｍｇ／ｋ
ｇ）を受容させた。引続き、ラットに、ＤＥＴＡ／ＮＯを毎日６日連続で０．４
ｍｇ／ｋｇにて腹腔内注射した。

【００５６】塞栓のＭＣＡ閉塞は、非虚血ラットと比較して、ＭＣＡ閉塞後１４日目におい
て、同側のＳＶＺおよびＯＢのＢｒｄＵ免疫反応性細胞数の有意な（ｐ＜０．０
５）増加を生じた（表２）。ＭＣＡ閉塞後４２日目において、ＢｒｄＵ反応性細
胞数は減少した。このことは、限局性大脳虚血が、同側のＳＶＺにおける前駆体
細胞の増殖の一過性の増加を誘導することを示す（表２）。ＭＣＡ閉塞は、反対
側のＳＶＺおよびＯＢならびに両方の歯状回における前駆体細胞の増殖に影響を
与えなかった（表２）。

【００５７】ＢｒｄＵ免疫反応性細胞数の有意な（ｐ＜０．０５）増加が、非処置ＭＣＡ閉
塞群と比較して、ＭＣＡ閉塞後１４日目における反対側のＳＶＺおよび前条件付
けされた群のＭＣＡ閉塞後４２日目における両方のＳＶＺにおいて検出された（
図６Ａ、６Ｂ）。２つの投薬量群のラットは、ＭＣＡ閉塞後１４日目における同
側のＳＶＺにおいてＢｒｄＵ免疫反応性細胞数が有意に増加し、そしてまた、Ｍ
ＣＡ閉塞後４２日目における両方のＳＶＺにおいてＢｒｄＵ免疫反応性細胞数が
有意に増加した（図６Ａ、６Ｂ）。７セットのＤＥＴＡＮＯＮＯ注射で処置した
ラットは、ＭＣＡ閉塞後１４日目および４２日目において反対側のＳＶＺおよび
同側のＳＶＺにおいてＢｒｄＵ免疫反応性細胞の有意な増加を示した。

【００５８】ＢｒｄＵ免疫反応性細胞の有意な増加は、ＭＣＡ閉塞後１４日目および４２日
目において、ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した虚血性ラットのＯＢにおいて検出され
た（図７Ａ、７Ｂ）。

【００５９】ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した虚血性ラットは、ＭＣＡ閉塞群と比較して、ＭＣ
Ａ閉塞後１４日目および４２日目の歯状回におけるＢｒｄＵ免疫反応性細胞が有
意に増加した（図８Ａ、８Ｂ）。

【００６０】ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した虚血性ラットは、虚血性病変量（ｉｓｃｈｅｍｉ
ｃｌｅｓｉｏｎｖｏｌｕｍｅ）の有意な減少を示さなかった（図９）。

【００６１】これらのデータは、塞栓のＭＣＡ閉塞それ自体が、同側ＳＶＺの前駆体細胞の
増殖を増加させるということを実証する。ＳＶＺに由来する多くの細胞は、ＲＭ
Ｓに沿ってＯＢ内へ移動し、ここでそれらの細胞は、ニューロンに分化する。従
って、同側ＯＢにおけるＢｒｄＵ免疫反応性細胞数の増加は、同側ＳＶＺ前駆体
細胞の移動が増加したことを示唆する。これらのデータはまた、ＭＣＡ閉塞後の
前駆体細胞の増殖を増加させるシグナルが、一過性であり、なおかつ局所的であ
ることを示唆する。しかし、前駆体細胞の増殖の有意な増加は、虚血性ラットを
ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した場合、ＭＣＡ閉塞後少なくとも４２日間維持した。
前駆体細胞の増殖の増加は、ＮＯにより誘導される。なぜなら、ＢｒｄＵ免疫反
応性細胞数の増加は、両方のＳＶＺのみならず、両方の歯状回にも関与していた
からである。しかし、ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した非虚血性ラットとＤＥＴＡＮ
ＯＮＯで処置した虚血性ラットとの間にＢｒｄＵ細胞数における差異が存在する
。ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した虚血性ラットは、ＤＥＴＡＮＯＮＯで処置した非
虚血性ラットのＭＣＡ閉塞後１４日目および４２日目における歯状回のＢｒｄＵ
免疫反応性細胞数と比べて、より多くの絶対数を有した。このことは、ＮＯが虚
血により生成されるシグナルを増幅させて、前駆体細胞の増殖を増加させる得る
ことを示唆する。従って、このデータは、限局性大脳虚血は前駆体細胞の一過的
な増殖を産生することおよびＮＯが、虚血脳における前駆体細胞の増殖を増強さ
せるということを示す。

【００６２】（実施例２）一酸化窒素ドナー化合物（ＤＥＴＡ／ＮＯ）の正常ラットおよび虚血性ラット
への投与は、非虚血性脳および虚血性脳における神経発生を促進させる。その後
、さらなる実験を実施して、ＤＥＴＡ／ＮＯにより誘導される神経発生は、発作
の後の機能改善を促進するという仮説を試験した；そのデータは、本明細書中に
提供される。ＤＥＴＡ／ＮＯを、発作の誘導後１日目（１群）または７日目（２
群）に動物に投与し（ｉｖ／ｉｐ）、次に７日間に渡って毎日ＤＥＴＡ／ＮＯの
注射（ｉｐ）を行った。別のＮＯドナー化合物（ＳＮＡＰ）を、虚血性ラットに
、発作後１日目および２日目に投与した（ｉｖ）（３群）。若齢（３ヶ月齢）ラ
ットを１群および２群において使用した。中齢（１０〜１２ヶ月齢）ラットを３
群において使用した。一連の神経学的機能試験を、発作後２日目〜４２日目まで
測定した。これらの試験は、以下のこと含んだ：１）運動機能、感覚機能、およ
び反射機能を測定し、そしてヒトにおいて記載された対側性無視試験（ｃｏｎｔ
ｒａｌａｔｅｒａｌｎｅｇｌｅｃｔｔｅｓｔｉｎｇ）に類似している神経学
的重症度得点（ＮＳＳ）。得点が高いほど、その損傷は重症である；２）ロータ
ロッド試験は、前肢および後肢の運動協調性およびバランスを測定する。データ
は、ベースライン値のパーセンテージとして表わされる；３）フットフォールト
（Ｆｏｏｔｆａｌｔ）試験は、前肢および後肢の運動協調性を測定する。数字が
大きいほど、その損傷は重症である；４）粘着性除去試験は、感覚運動障害を測
定する。データは時間（秒）として表わされる。時間が長いほど、その損傷は重
症である；５）動物の体重。

【００６３】（結果）（群１：）運動機能および感覚運動機能（図１０ロータロッド試験、図１１
接着除去試験、図１２ＮＳＳ試験）および動物の体重（図１３）において、
コントロールラットと比較して有意な改善が、ＤＥＴＡ／ＮＯで処置したラット
において検出された。

【００６４】（群２：）神経性機能の、コントロール動物と比較して有意な完全は、発作の
２８および４２日後におけるロータロッド試験においてのみ検出された（図１４
）。

【００６５】（群３：）ＳＮＡＰで処置した動物は、運動機能および感覚運動機能において
、コントロール動物と比較して有意な改善を示した（図１５ロータロッド試験
、図１６フットフォール試験、および図１７接着除去試験）。

【００６６】（結論）これらのデータは、１）虚血性ラットへのＤＥＴＡＮＯＮＯの投与が、神経性
機能の回復を改善し、そしてこれらの改善は、ＤＥＴＡＮＯＮＯが発作の数日後
に投与された場合であってさえも達成され得ること；２）ＤＥＴＡＮＯＮＯに加
えて、虚血性ラットへのＳＮＡＰの投与はまた、神経性機能を改善し、このこと
は、ＮＯドナー化合物の投与が機能の回復を増強し得ることを示唆すること；お
よび３）中年ラットへのＳＮＡＰの投与は、機能回復を改善することに対して有
効であり、この機能回復は、ほとんどの発作の患者が中年以上であることから、
重要かつ臨床的に適切であることを示す。これらのデータは、ＮＯドナーが神経
発生を促進することを示す以前のデータと共に、ＮＯドナー化合物が、虚血性の
脳において、神経発生の促進を介して発作後の神経性機能の回復を増強すること
を示唆する。

【００６７】本願全体を通して、米国特許を含む種々の刊行物が、著者および年ならびに特
許（番号により）により参照される。刊行物についての全引用がいかに列挙され
る。これらの刊行物および特許の開示は、本発明が属する分野の状態をより完全
に記載するために、その全体が本明細書によって本願中に参考として援用される
。

【００６８】本発明は、例示的様式で記載されており、そして使用されいてる用語が、限定
ではなく、本質的に説明の語の範囲に入ることが意図されることは理解されるべ
きである。

【００６９】明らかに、上記の技術を考慮した本発明の多くの改変およびバリエーションが
、可能である。従って、記載される発明の範囲内で、本発明が具体的に記載され
る以外に実施され得ることは理解されるべきである。

【００７０】

【表１】

【００７１】

【表２】（参考文献）ＢｕｒｋｅおよびＯｌｓｏｎ，「ＰｒｅｐａｒａｔｉｏｎｏｆＣｌｏｎｅ
ＬｉｂｒａｒｉｅｓｉｎＹｅａｓｔＡｒｔｉｆｉｃｉａｌＣｈｒｏｍｏ
ｓｏｍｅＶｅｃｔｏｒｓ」，ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，
１９４巻，「ＧｕｉｄｅｔｏＹｅａｓｔＧｅｎｅｔｉｃｓａｎｄＭｏｌ
ｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ」，Ｃ．ＧｕｔｈｒｉｅおよびＧ．Ｆｉｎｋ編，
ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．，第１７章，２５１−２７０頁（１９
９１）。

【００７２】Ｃａｐｅｃｃｈｉ，「Ａｌｔｅｒｉｎｇｔｈｅｇｅｎｏｍｅｂｙｈｏ
ｍｏｌｏｇｏｕｓｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ」Ｓｃｉｅｎｃｅ２４４：１
２８８−１２９２（１９８９）。

【００７３】Ｄａｖｉｅｓら，「Ｔａｒｇｅｔｅｄａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓｉｎｙｅ
ａｓｔａｒｔｉｆｉｃｉａｌｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓｆｏｒｉｎｔｅｒ
ｓｐｅｃｉｅｓｇｅｎｅｔｒａｎｓｆｅｒ」，ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓ
Ｒｅｓｅａｒｃｈ，第２０巻，第１１号，２６９３−２６９８頁（１９９２）
。

【００７４】Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎら，「Ｈｉｇｈｆｒｅｑｕｅｎｃｙｇｅｎｅｔａｒ
ｇｅｔｉｎｇｕｓｉｎｇｉｎｓｅｒｔｉｏｎａｌｖｅｃｔｏｒｓ」，Ｈｕ
ｍａｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＧｅｎｅｔｉｃｓ，第２巻，第８号，１２９９−
１３０２頁（１９９３）。

【００７５】ＤｕｆｆおよびＬｉｎｃｏｌｎ，「Ｉｎｓｅｒｔｉｏｎｏｆａｐａｔｈ
ｏｇｅｎｉｃｍｕｔａｔｉｏｎｉｎｔｏａｙｅａｓｔａｒｔｉｆｉｃ
ｉａｌｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｃｏｎｔａｉｎｉｎｇｔｈｅｈｕｍａｎ
ＡＰＰｇｅｎｅａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎＥＳｃｅｌｌｓ」
，ＲｅｓｅａｒｃｈＡｄｖａｎｃｅｓｉｎＡｌｚｈｅｉｍｅｒ’ｓＤｉ
ｓｅａｓｅａｎｄＲｅｌａｔｅｄＤｉｓｏｒｄｅｒｓ，１９９５。

【００７６】Ｈｕｘｌｅｙら，「ＴｈｅｈｕｍａｎＨＰＲＴｇｅｎｅｏｎａｙ
ｅａｓｔａｒｔｉｆｉｃｉａｌｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｉｓｆｕｎｃｔｉ
ｏｎａｌｗｈｅｎｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄｔｏｍｏｕｓｅｃｅｌｌｓ
ｂｙｃｅｌｌｆｕｓｉｏｎ」，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ，９：７４２−７５０頁
（１９９１）。

【００７７】Ｊａｋｏｂｏｖｉｔｓら，「Ｇｅｒｍ−ｌｉｎｅｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｏｎ
ａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆａｈｕｍａｎ−ｄｅｒｉｖｅｄｙ
ｅａｓｔａｒｔｉｆｉｃｉａｌｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ」，Ｎａｔｕｒｅ，第
３６２巻，２５５−２６１頁（１９９３）。

【００７８】Ｌａｍｂら，「Ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ
ｏｆｔｈｅ４００ｋｉｌｏｂａｓｅｐｒｅｃｕｒｓｏｒａｍｙｌｏｉ
ｄｐｒｏｔｅｉｎｇｅｎｅｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｍｉｃｅ」，Ｎ
ａｔｕｒｅＧｅｎｅｔｉｃｓ，第５巻，２２−２９頁（１９９３）。

【００７９】ＰｅａｒｓｏｎおよびＣｈｏｉ，Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｔｈｅｈｕ
ｍａｎｂ−ａｍｙｌｏｉｄｐｒｅｃｕｒｓｏｒｐｒｏｔｅｉｎｇｅｎｅ
ｆｒｏｍａｙｅａｓｔａｒｔｉｆｉｃｉａｌｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ
ｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｍｉｃｅ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．ＵＳＡ，１９９３．９０：１０５７８−８２。

【００８０】Ｒｏｔｈｓｔｅｉｎ，「Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ，ｄｉｓｒｕｐｔｉｏｎ，ｒｅｐ
ｌａｃｅｍｅｎｔ，ａｎｄａｌｌｅｌｅｒｅｓｃｕｅ：ｉｎｔｅｇｒａｔｉ
ｖｅＤＮＡｔｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎｉｎｙｅａｓｔ」，Ｍｅｔｈ
ｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，第１９４巻，「ＧｕｉｄｅｔｏＹｅ
ａｓｔＧｅｎｅｔｉｃｓａｎｄＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ」，
Ｃ．ＧｕｔｈｒｉｅおよびＧ．Ｆｉｎｋ編，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，
Ｉｎｃ．，第１９章，２８１−３０１頁（１９９１）。

【００８１】Ｓｃｈｅｄｌら，「Ａｙｅａｓｔａｒｔｉｆｉｃｉａｌｃｈｒｏｍｏｓ
ｏｍｅｃｏｖｅｒｉｎｇｔｈｅｔｙｒｏｓｉｎａｓｅｇｅｎｅｃｏｎ
ｆｅｒｓｃｏｐｙｎｕｍｂｅｒ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｅｘｐｒｅｓｓｉｏ
ｎｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｍｉｃｅ」，Ｎａｔｕｒｅ，第３６２巻，２
５８−２６１頁（１９９３）。

【００８２】Ｓｔｒａｕｓｓら，「Ｇｅｒｍｌｉｎｅｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｏｎｏｆ
ａｙｅａｓｔａｒｔｉｆｉｃｉａｌｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓｐａｎｎ
ｉｎｇｔｈｅｍｕｒｉｎｅａ₁（Ｉ）ｃｏｌｌａｇｅｎｌｏｃｕｓ」，
Ｓｃｉｅｎｃｅ，第２５９巻，１９０４−１９０７頁（１９９３）。

【００８３】Ｇｉｌｂｏａ，Ｅ，Ｅｇｌｉｔｉｓ，ＭＡ，Ｋａｎｔｏｆｆ，ＰＷ，Ａｎｄｅ
ｒｓｏｎ，ＷＦ：Ｔｒａｎｓｆｅｒａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｃ
ｌｏｎｅｄｇｅｎｅｓｕｓｉｎｇｒｅｔｒｏｖｉｒａｌｖｅｃｔｏｒｓ
．ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ４（６）：５０４−５１２，１９８６。

【００８４】ＣｒｅｇｇＪＭ，ＶｅｄｖｉｃｋＴＳ，ＲａｓｃｈｋｅＷＣ：Ｒｅｃｅ
ｎｔＡｄｖａｎｃｅｓｉｎｔｈｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＦｏｒ
ｅｉｇｎＧｅｎｅｓｉｎＰｉｃｈｉａｐａｓｔｏｒｉｓ，Ｂｉｏ／Ｔｅ
ｃｈｎｏｌｏｇｙ１１：９０５−９１０，１９９３。

【００８５】Ｃｕｌｖｅｒ，１９９８．Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄｒｅｃｏｍｂｉｎａ
ｔｉｏｎｆｏｒｒｅｐａｉｒｏｆｍｕｔａｔｉｏｎｓｉｎｔｈｅ
ｈｕｍａｎＡＤＡｇｅｎｅ．（要約）ＡｎｔｉｓｅｎｓｅＤＮＡ＆Ｒ
ＮＡｂａｓｅｄｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，１９９８，２月，Ｃｏｒｏｎａ
ｄｏ，ＣＡ。

【００８６】Ｈｕｓｔｏｎら，１９９１「Ｐｒｏｔｅｉｎｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇｏｆ
ｓｉｎｇｌｅ−ｃｈａｉｎＦｖａｎａｌｏｇｓａｎｄｆｕｓｉｏｎ
ｐｒｏｔｅｉｎｓ」，ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（ＪＪ
Ｌａｎｇｏｎｅ編；ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ，ＮＹ）
２０３：４６−８８。

【００８７】ＪｏｈｎｓｏｎおよびＢｉｒｄ，１９９１「Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎｏｆ
ｓｉｎｇｌｅ−ｃｈａｉｎＦｖｂｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓｏｆｍｏｎ
ｏｃｌｏｎａｌａｎｔｉｂｏｄｉｅｓａｎｄｔｈｅｉｒｐｒｏｄｕｃｔ
ｉｏｎｉｎＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉｉｎＭｅｔｈｏｄｓｉ
ｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（ＪＪＬａｎｇｏｎｅ編；ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒ
ｅｓｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ，ＮＹ）２０３：８８−９９。

【００８８】ＭｅｒｎａｕｇｈおよびＭｅｒｎａｕｇｈ，１９９５「Ａｎｏｖｅｒｖｉｅ
ｗｏｆｐｈａｇｅ−ｄｉｓｐｌａｙｅｄｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔａｎｔ
ｉｂｏｄｉｅｓ」，ＭｏｌｅｃｕｌａｒＭｅｔｈｏｄｓＩｎＰｌａｎｔ
Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ（ＲＰＳｉｎｇｈおよびＵＳＳｉｎｇｈ編；ＣＲＣ
ＰｒｅｓｓＩｎｃ．，ＢｏｃａＲａｔｏｎ，ＦＬ）３５９−３６５頁。

【００８９】本発明が、以下に添付の図面と共に考慮された場合に、上記の詳細な説明に対
する参照によってより良好に理解されるようになるにつれて、本発明の他の利点
はより容易に理解される。

【図面の簡単な説明】

【図１】図１は、選択した領域におけるＢｒｄＵ−陽性核を示す写真である。

【図２Ａ】図２Ａおよび２Ｂは、脳室下領域（ＳＶＺ）におけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量
を示すグラフである。

【図２Ｂ】図２Ａおよび２Ｂは、脳室下領域（ＳＶＺ）におけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量
を示すグラフである。

【図３】図３は、歯状回におけるＢｒｄ−Ｕ陽性細胞の量を示すグラフである。

【図４Ａ】図４Ａおよび４Ｂは、歯状回におけるＢｒｄＵ細胞の分布のパーセントを示す
グラフである。

【図４Ｂ】図４Ａおよび４Ｂは、歯状回におけるＢｒｄＵ細胞の分布のパーセントを示す
グラフである。

【図５】図５は、顆粒層における顆粒細胞に関連するＢｒｄＵ免疫反応性細胞のサイズ
を示す写真である。

【図６Ａ】図６Ａおよび６Ｂは、ＳＶＺにおけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量を示すグラフで
ある。

【図６Ｂ】図６Ａおよび６Ｂは、ＳＶＺにおけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量を示すグラフで
ある。

【図７Ａ】図７Ａおよび７Ｂは、嗅球（ＯＢ）におけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量を示すグ
ラフである。

【図７Ｂ】図７Ａおよび７Ｂは、嗅球（ＯＢ）におけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量を示すグ
ラフである。

【図８Ａ】図８Ａおよび７Ｂは、歯状回におけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量を示すグラフで
ある。

【図８Ｂ】図８Ａおよび７Ｂは、歯状回におけるＢｒｄＵ−陽性細胞の量を示すグラフで
ある。

【図９】図９は、病変の体積研究を示すグラフである。

【図１０】図１０は、時間対ＭＣＡｏで、接着除去試験の結果を示すグラフである。

【図１１】図１１は、Ｒｏｔａｒｏｄ試験の結果を示すグラフである。

【図１２】図１２は、ＮＳＳ試験の結果を示すグラフである。

【図１３】図１３は、重量パーセントを示すグラフである。

【図１４】図１４は、Ｒｏｔａｒｏｄ試験の結果を示すグラフである。

【図１５】図１５は、Ｒｏｔａｒｏｄ試験のさらなる結果を示すグラフである。

【図１６】図１６は、フットフォールト試験の結果を示すグラフである。

【図１７】図１７は、さらなる接着除去試験の結果を示すグラフである。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷＦターム(参考） 4C084 AA02 AA03 AA17 BA44 MA17 MA22 MA23 MA24 MA35 MA37 MA41 MA43 MA52 MA66 NA14 ZA022 ZA152 ZC20 4C206 AA01 AA02 HA05 HA32 JA26 JA76 MA01 MA04 MA37 MA42 MA43 MA44 MA55 MA57 MA61 MA63 MA72 MA86 NA14 ZA02 ZA15 ZC20

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】神経発生を促進する方法であって、以下の工程：治療量の一酸化窒素ドナー化合物を、神経発生の促進を必要としている患者に
投与する工程、を包含する、方法。
【請求項２】神経発生を促進するに十分な有効量の一酸化窒素ドナーを含
む、神経発生を促進するための化合物。
【請求項３】薬学的に受容可能なキャリア中に一酸化窒素ドナーを含む、
神経発生促進剤。
【請求項４】前記一酸化窒素ドナーが、組織中で一酸化窒素を増大させる
、請求項３に記載の神経発生促進剤。
【請求項５】前記一酸化窒素ドナーが、ホスホジエステラーゼインヒビタ
ーおよびＬ−アルギニンから本質的になる群より選択される、請求項４に記載の
神経発生促進剤。
【請求項６】有効量の一酸化窒素ドナーを、増大を必要としている部位に
投与することにより、ニューロンの生成を増大させる方法。
【請求項７】有効量の一酸化窒素ドナーを患者に投与することにより、神
経性機能を上昇させる方法。
【請求項８】有効量の一酸化窒素ドナー化合物を患者に投与することによ
り、認知機能および神経性機能を上昇させる方法。