JP2003532079A - マクロファージ抑制サイトカイン−1(mic−1)が関連する診断アッセイおよび治療方法 - Google Patents
マクロファージ抑制サイトカイン−1(mic−1)が関連する診断アッセイおよび治療方法Info
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Abstract
Description
早産、胎児異常、癌(例えば、前立腺癌)ならびに炎症性疾患(例えば、慢性関
節リウマチ)のリスクを診断する方法を提供する。さらに、本発明は、妊娠して
いる被験者における流産および/または早産のリスクを低減するための方法を提
供する。
化および腫瘍形成等の様々な細胞過程を制御する多数の分子を含む。TGF-βスー
パーファミリーのメンバーは主要なファミリーグループに分類される。そのよう
なグループとしては、TGF-β、骨誘導因子(BMP)、増殖分化因子(GDF)、インヒビ
ン/アクチビン、ミューラー管抑制物質(MIS)、グリア細胞由来神経栄養因子(GD
NF)およびさらに最近ではマクロファージ抑制性サイトカイン-1(Bootcovら, 199
7)等が挙げられる。ヒトの妊娠におけるTGF-βスーパーファミリーの関与は、羊
水中のTGF-β1、TGF-β2、TGF-β3、アクチビンおよびインヒビンの検出、なら
びに胎盤絨毛部へのTGF-β1、アクチビンおよびインヒビンの局在化によって示
される(Grahamら, 1992 ; Petragliaら, 1993a ; Petragliaら, 1992 ; Minami
ら, 1992 ; LangおよびSearle, 1994 ; QuおよびThomas, 1992 ; Altmanら, 199
0; Canniggiaら, 1999; Wallaceら, 1997)。
中して研究されている。その生物学的特性および機能は周知であり、また、広範
囲にわたって総説されている(例えば、Miyazonoら, 1993 ; Wahl, 1992 ; およ
びRobertsら, 1993を参照されたい)。それらは、マクロファージおよび繊維芽細
胞に対する強力な化学遊走因子であり、また、おそらく分化におけるその役割の
ため通常は細胞増殖を抑制する。炎症については、TGF-βは、繊維芽細胞、コラ
ーゲンおよびマトリックスタンパク質合成の強力な刺激因子であり、血管新生を
促進し、接着分子の発現をモジュレートし、リンパ細胞増殖、いくつかのリンホ
カインの産生およびNK細胞機能を抑制する。さらに、TGF-βタンパク質は慢性の
炎症過程およびメカニズムの病因に深く関係していることが示されている。
れている。細胞と細胞との接着、細胞の移動および組織再構築を調節するTGF-β
イソ型の能力により、何人かの著者によりこれらの分子が妊娠初期における栄養
膜の侵入および着床を制御しうることを示唆している。その他の可能性ある役割
としては、胎児の成長の制御および母体の免疫系の抑制が挙げられる。胎盤の細
胞はTGF-βスーパーファミリー分子の主要な供給源であり、また、少なくともTG
F-β1、TGF-β3、アクチビンおよびインヒビンによって調節されている。例えば
、アクチビンはインヒビンの生成を抑制し、胎盤細胞によるプロゲステロン、ヒ
ト絨毛性ゴナドトロピン(hCG)、およびゴナドトロピン放出ホルモン(GnRH)を促
進する(Petragliaら, 1989)。インヒビンは胎盤性hCG、GnRHおよびアクチビンに
よって誘導されるプロゲステロンの放出を抑制する(Petragliaら, 1989)一方、T
GF-β1は胎盤に誘導されるヒト胎盤性ラクトゲン(hPL)生成を抑制する。アク
チビンとTGF-β3は妊娠初期における外側に微絨毛を有する栄養膜の侵入を調節
するときに反対の効果を有することも示されている(Caniggiaら, 1997; Caniggi
aら, 1999)。これらの知見により、TGF-β1、TGF-β3、アクチビンおよびインヒ
ビンは自己分泌様式で胎盤の成長および分化を調節することが示唆される。さら
に、TGF-β1、アクチビンおよびインヒビンは、成長および分化を調節すること
が示されている胚における適所に存在する。特に、TGF-βスーパーファミリーメ
ンバーは、中胚葉誘導を促進するその能力が周知である。
ている。実験証拠によって、分娩時に、炎症誘発性サイトカインであるインター
ロイキン-1(IL-1)、IL-6および腫瘍壊死因子-α(TNF-α)の羊水中濃度が上昇す
ることが示唆されている。さらに、子宮内感染を伴う炎症誘発性サイトカイン生
成は、胎児に対する拒絶反応または予定日前の分娩(早期分娩)に関連している
(Romeroら, 1992; Hillierら, 1993; Opsjonら, 1993)。TGF-β1およびインヒビ
ンは、それぞれマクロファージおよびリンパ細胞に由来する炎症誘発性サイトカ
インの生成を抑制する一方(BogdanおよびNathan, 1993; Petragliaら, 1991)、
アクチビンはマクロファージおよび羊膜に対して炎症誘発性作用を及ぼすことが
示されている(NusingおよびBarsig, 1997; Petragliaら, 1993b)。このことによ
り、TGF-β1およびインヒビンは、母体免疫系による炎症誘発性サイトカインの
生成を抑制することによって、胎児の生存を促進するといった示唆につながって
いる。
マクロファージ阻害サイトカイン(MIC-1)をクローニングし、特性決定した(Boot
covら, 1997)。このマクロファージ阻害サイトカイン(MIC-1)の発現はマクロフ
ァージの活性化と関連する。妊娠におけるMIC-1の何らかの機能特性を判定する
ために、本願出願人らは、MIC-1の定量化のために高感度サンドイッチ型酵素結
合免疫吸着アッセイ(ELISA)を開発した。そして、このアッセイ法を使用するこ
とによりヒト母体血清MIC-1濃度と妊娠期間との経時的関係を調査し、さらに、
羊水および胎盤抽出物中のその濃度を測定した。さらに、本願出願人らは、胎盤
絨毛癌細胞系(BeWo)のサイトカイン合成能を評価することにより、MIC-1の起源
を詳細に示す実験を実施した。以下に示す結果は、子宮内における母体由来の炎
症誘発性サイトカインの産生を抑制することによってMIC-1は胎児生存率を上昇
させることができることを示すものである。したがって、母体血清、羊水および
胎盤抽出物サンプル中のMIC-1に関する定量的診断アッセイによって、異常なレ
ベルのMIC-1を有することを検出することにより、流産および/または早産のリ
スクがある妊娠女性を検出するという可能性を提供する。
を見出し、それら全てが9位、48位および202位にわずかなアミノ酸配列の相違
を示すことを見出した(国際特許公開WO 97/00958号参照、この全ての内容を参
照により本明細書に組み入れる、参照文献中MIC-1はCL13として引用されている
)。最も重要なアミノ酸位置はアミノ酸202位であり、なぜならば、この位置は
成熟形態のMIC-1(すなわち、リーダー配列が切断により除かれている)の6位
に相当するからである。同定された変異体のいくつかにおいては、通常202位に
存在するヒスチジン(H)残基(すなわち「H6」)がアスパラギン酸(D)と置換さ
れている。これは、604位のシトシン(C)がグアノシン(G)によって置換されて
いるような、MIC-1遺伝子内の一塩基置換によるものである。現在、本願出願人
らは、Asp202-MIC-1(すなわち「D6」)対立遺伝子変異体に対してヘテロ接合性
またはホモ接合性のいずれかである被験者が、炎症性疾患および/または癌に対
して素因および疾病経過が変化しうることを認識している。
とする疾患もしくは症状の診断方法または評価方法を提供する。該方法は、以下
のステップ: (i)試験被験者から採取した身体サンプル中に存在するMIC-1の量を測定するステ
ップ、および (ii)上記ステップにおいて測定した量と、正常被験者から採取した等価な身体サ
ンプル中に存在するMIC-1量またはMIC-1量の範囲を比較するステップ、 を含むものである。
発現を試験被験者が有することを示しうるものである。例えば、本発明の好まし
い実施形態においては、身体サンプル、好ましくは妊娠試験被験者から採取した
血清、羊水または胎盤抽出物サンプル中の低下したMIC-1量を検出することによ
って、流産および/または早産のリスクが増大しうる状態(高リスク)の指標と
なりうる。
を診断する方法を提供する。該方法は、以下のステップ: (i)既知の妊娠期間にある妊娠試験被験者から採取した身体サンプル中に存在す
るMIC-1の量を測定するステップ、および (ii)上記ステップにおいて測定した量と、上記試験被験者の既知の妊娠期間と実
質的に等価な妊娠期間にある正常妊妊験被験者から採取した等価な身体サンプル
中に存在するMIC-1量またはMIC-1量の範囲を比較するステップ、 を含むものである。
、血清、羊水または胎盤抽出物由来のサンプルである。しかしながら、全血、血
漿、尿および脳脊髄液由来のサンプルもまた適している。
期間が進むに連れて増大する。したがって、試験被験者由来のサンプルの測定し
たMIC-1量を、実質的に等価な妊娠期間にある正常妊娠被験者由来の等価なサン
プル中に存在するMIC-1量とを比較することは重要である。したがって、使用す
る身体サンプルが血清サンプルである場合には、第1トリメスターの試験被験者
からは4ng/mL以下、第2トリメスターの試験被験者からは8ng/mL以下、そして
、第3トリメスターの試験被験者からは12ng/mL以下の測定量が、低減したMIC-1
レベルと、その結果として流産および/または早産の高リスクの指標となる。使
用する身体サンプルが羊水サンプルである場合には、第2トリメスターの試験被
験者からは10ng/mL以下の測定量が、低減したMIC-1レベルと、その結果として流
産および/または早産の高リスクの指標となる。さらに、使用する身体サンプル
が胎盤抽出物である場合には、第3トリメスターの試験被験者由来の胎盤抽出物
サンプル中、約18ng/mL以下、より好ましくは約10ng/mL以下の測定量が、低減し
たMIC-1レベルと、その結果として流産および/または早産の高リスクの指標と
なる。
ルと関係する異常な妊娠および/または胎盤の発達の結果である可能性がある。
すなわち、異常な胎盤の発達が、低減したMIC-1レベルの検出によって判定され
る場合、これにより、出産の早期誘導の指標となりうる。なぜならば、胎盤が正
常に発達および成長しない場合、胎児は危険な状態にありうるからである。
り、予防的治療および適用しうる他の手段(例えば、休息、食事の改善等)を行
うことが可能となる。
方法を意図するものであり、該方法はMIC-1の投与を含むことを特徴とする。
クを低減させるための妊娠被験者の治療方法を提供し、該方法は、該被験者に対
し、有効量のMIC-1を、必要に応じて薬学上許容される担体および/または賦形
剤と混合させて投与することを含むものである。
計量(すなわち、投与したMIC-1量プラス内因性MIC-1量)が15〜70ng/mL、より
好ましくは30〜50ng/mLの範囲に維持される。
のような投与経路としては、例えば、経口、経鼻、静脈内および筋肉内経路が挙
げられる。さらに、MIC-1は子宮に直接投与することもできる。本発明はさらに
、MIC-1投与のための周知の遺伝子治療技術の使用を意図するものである。その
ような使用としては、例えば、発現可能なMIC-1コードヌクレオチド配列を含む
組換えアデノウイルスもしくはアデノウイルス関連ベクターの使用、または適当
なプロモーター配列に機能的に連結されリポソーム内に投与される線状MIC-1コ
ードDNAの使用が挙げられる。
達に伴う問題を克服することを可能とするだろう。
プル中のMIC-1量低下もしくは上昇の検出は、胎児異常のリスクが増加している
可能性がある状態(高リスク)を示唆しうる。
の方法には、以下のステップ: (i)既知の妊娠期間にある妊娠試験被験者から採取した身体サンプル中に存在す
るMIC-1の量を測定するステップ、および (ii)上記の測定した量と、上記試験被験者の既知の妊娠期間と実質的に等価な妊
娠期間にある正常妊娠被験者から採取した等価な身体サンプル中に存在するMIC-
1の量または量の範囲とを比較するステップ、を含む。
験者の適切な身体サンプルからのMIC-1の量を調べることが、癌、特に前立腺癌
、乳癌、大腸癌、直腸癌または膀胱癌の診断(および進行のモニタリング)を可
能にしうることを見出した。例えば、正常あるいは前立腺特異的抗原(PSA; 前
立腺癌のマーカー)のレベルが上昇した50人の被験者由来の血清サンプルにおい
て、MIC-1とPSAの間に強い相関関係が観察され、また何人かの患者においては、
正常レベルの10倍以上高いMIC-1のレベルが測定された(図1参照)。このこと
は、MIC-1が腫瘍マーカーとして、および前立腺癌における進行度の尺度として
有用であることを強く示唆している。さらに、広範な種類の上皮細胞においてMI
C-1の発現が観察されることは、MIC-1が同様に乳癌、大腸癌、膀胱癌などの癌に
対して有用な腫瘍マーカーでありうることを示唆する。
特徴とする癌の診断方法または評価方法を提供するものであって、その方法は、
以下のステップ: (i)試験被験者から採取した身体サンプル中に存在するMIC-1の量を測定するステ
ップ、および (ii)上記の測定した量と、正常被験者から採取した等価な身体サンプル中に存在
するMIC-1の量または量の範囲とを比較するステップ、を含む。
、脳脊髄液、関節滑液、精液または組織生検のサンプルである。
昇が慢性関節リウマチに関連していることを見出した。例えば、コルチコステロ
イドを高用量で静脈内に投与する処置後の被験者の組織生検を調べることによっ
て、浸潤細胞におけるMIC-1の発現が顕著に減少していることが示された(図2
参照)。
提供するものであって、その方法は: (i)試験被験者から採取した身体サンプル中に存在するMIC-1の量を測定するステ
ップ、および (ii)上記の測定した量と、正常被験者から採取した等価な身体サンプル中に存在
するMIC-1の量または量の範囲とを比較するステップ、を含む。
織生検サンプルを使用することができる。しかし、好ましくは、該身体サンプル
は血清、血漿もしくは関節滑液である。
ローナルもしくはポリクローナル)またはそのフラグメントを使用するイムノア
ッセイあるいは免疫組織化学(例えば、組織生検からの切片を用いて行う)によ
って容易に測定することができる。抗MIC-1抗体およびそのフラグメントは当業
者に公知の方法のいずれかにより作製することができる。
法は、被験者に対し、有効量のMIC-1を、必要に応じて薬学上許容される担体お
よび/または賦形剤と混合させて、投与することを含むものである。
は癌の診断方法または評価方法を提供し、該方法は、被験者から採取した適切な
サンプル中においてMIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応
する位置にアスパラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質の存在を判定するステ
ップを含むものである。
は癌への素因を評価する方法を提供し、該方法は、被験者から採取した適切なサ
ンプル中においてMIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応す
る位置にアスパラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質の存在を判定するステッ
プを含むものである。
ある。好ましくは、第8および第9の態様における癌は前立腺癌である。
の202位に対応する位置にアスパラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質の検出が
、慢性関節リウマチまたは慢性関節リウマチへの素因の指標となる。前立腺癌に
関しては、MIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置
にアスパラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質の検出が、前立腺癌の存在がな
いことまたは前立腺癌に対する素因が全くないかもしくはごくわずかである指標
となりうる。
くはMIC-1の202位にヒスチジンを有する変異体と202位にアスパラギン酸を有す
る変異体とを識別しうる抗体またはそのフラグメントを使用するイムノアッセイ
によって容易に判定することができる。かかる抗体またはそのフラグメントは、
当技術分野において一般的に知られている方法のいずれかを使用して、MIC-1ま
たはAsp202-MIC-1に対して作製することができる。あるいは、免疫原性ペプチド
を使用して、もしくは必要に応じてウシ血清アルブミンのような担体タンパク質
と免疫原性ペプチドを結合させて使用することにより、好適な識別能を有する抗
体またはそのフラグメントを作製することができる。かかる免疫原性ペプチドは
、未成熟ヒト野生型MIC-1タンパク質の202位を含む範囲にエピトープを含み、ま
た、変異体タンパク質の場合には、未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当する位
置を含む範囲にエピトープを含む。例えば、Asp202-MIC-1に対して特異的に結合
する抗体は、以下のアミノ酸配列を含む免疫原性ペプチドを使用して作製するこ
とができる; Ala-Arg-Asn-Gly-Asp-Asp-Cys-Pro-Leu (配列番号7)。
スパラギン酸を有するMIC-1タンパク質の存在は、かかるタンパク質と特異的に
結合する抗体を使用するイムノアッセイによって判定する。しかしながら、野生
型MIC-1および/または202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当する
位置にヒスチジンを有する変異体に特異的な抗体またはそのフラグメントを使用
する場合、あらゆる検出可能な結合の不在または低減した結合レベルが、202位
または未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当する位置にアスパラギン酸を有する
MIC-1変異体タンパク質の存在の決定因子としてみなすことができる。そのよう
なアッセイの場合、陽性対照は、サンプル中のMIC-1タンパク質の存在を確認す
るように実施するのが好ましい(例えば、野生型および変異体MIC-1タンパク質の
双方と結合する非特異的抗体またはそのフラグメントを用いたイムノアッセイに
より行う)。
、血漿および尿から採取したサンプルである。組織生検もまた好適でありうる。
を有するMIC-1タンパク質についてヘテロ接合性またはホモ接合性である被験者
は、反対に、慢性関節リウマチのような炎症性疾患に対しては素因の低減を示す
が、前立腺癌のような癌に対しては素因の増大を示すことが理解されるであろう
。
患および/または癌の診断方法または評価方法を提供し、該方法は、被験者から
採取した適切なサンプル中においてMIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-
1の202位に対応する位置にヒスチジンを有するMIC-1変異タンパク質の存在を判
定するステップを含むものである。
MIC-1遺伝子型およびMIC-1レベルが癌の再発(例えば、外科的除去手術後の再発)
および死亡率の指標となることが見出された。すなわち、野生型MIC-1(および/
または202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当する位置にヒスチジ
ンを有する変異体)についてホモ接合性である被験者は、ヘテロ接合性被験者ま
たはAsp202-MIC-1変異体についてホモ接合性である被験者よりも、通常、癌の再
発(すなわち、治療後の再発)までに長い期間を有しうる。さらに、野生型MIC-1(
および/または202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当する位置に
ヒスチジンを有する変異体)についてホモ接合性である被験者であって、身体サ
ンプル(例えば、血清)中のMIC-1レベルが高い被験者は生存期間の減少を示すこ
とが判明した。同様に、慢性関節リウマチを罹患する被験者であって、Asp202-M
IC-1変異体についてヘテロ接合性であるかまたはホモ接合性である被験者は、野
生型MIC-1(および/または202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当
する位置にヒスチジンを有する変異体)についてホモ接合性である被験者よりも
疾患の程度が重篤であると経験的に考えられることが判明した。
たは癌への素因を評価する方法を提供し、該方法は、被験者から採取した適切な
サンプル中においてMIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応
する位置にヒスチジンを有するMIC-1変異タンパク質の存在を判定するステップ
を含むものである。
診断または評価する方法に関し、該方法は、該被験者の遺伝子型を決定(すなわ
ち、MIC-1対立遺伝子構成を評価)するステップを含むものである。かかる方法は
、上記したような識別能を有する抗MIC-1抗体を含むイムノアッセイを利用する
ことができ、あるいは、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)解析または対立遺伝子間の
一塩基の相違を検出する任意の他の技法(Current Protocols in Human Genetics
Supplement 21, Chapter 7によってそのような方法の概説のいくつかが示され
る)を使用するDNAレベルでの評価を含みうる。
遺伝子型を決定する方法を提供し、該方法は、202位に(例えば、野生型MIC-1の
場合)もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当する位置にヒスチジンを有
するMIC-1タンパク質に対して、または、202位にもしくは未成熟ヒト野生型MIC-
1の202位に相当する位置にアスパラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質に対し
て、該被験者がホモ接合性であるかヘテロ接合性であるかを判定するステップを
含むものである。
または癌を診断する方法、あるいは、炎症性疾患および/または癌への素因を評
価する方法を提供する。該方法は、MIC-1に関してヒト被験者の遺伝子型を決定
するステップを含むものであり、該ステップは、202位に(例えば、野生型MIC-1
の場合)もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に相当する位置にヒスチジンを
有するMIC-1タンパク質に対して、または、202位にもしくは未成熟ヒト野生型MI
C-1の202位に相当する位置にアスパラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質に対
して、被験者がホモ接合性であるかヘテロ接合性であるかを判定することを含む
ものである。
熟ヒト野生型 MIC-1の202位に相当する位置にアスパラギン酸を有するMIC-1変異
タンパク質をコードしている)であると決定された被験者およびヘテロ接合性H6/
D6遺伝子型であると決定された被験者は、炎症性疾患を罹患するか、もしくは炎
症性疾患への素因を示すことが予想されうる。さらに、かかる被験者は、前立腺
癌には罹患しないか、および/または、前立腺への素因を全くもしくはわずかに
しか示さないことが予想されうる。反対に、ホモ接合性H6/H6遺伝子型であると
決定された被験者は、前立腺癌への素因の増大を示すことが予想されうる。
例えば、頬細胞サンプル)から単離されたDNAまたはRNAを使用して得られたポリ
メラーゼ連鎖反応(PCR)産物の配列決定または制限酵素切断解析によって簡便に
調べることができる。あるいは、標的とする野生型MIC-1配列または変異MIC-1配
列からのみPCR産物が産生されることを確実にするために、MIC-1コード配列の可
変領域を標的とするプライマーを使用する高ストリンジェンシー条件下でPCRを
行うことができる。
アミノ酸配列を図3に示す。
「MIC-1/H6」として示されるアミノ酸配列を有するMIC-1タンパク質を意味する
。また、「野生型MIC-1」とは、上記タンパク質の成熟形態(すなわち、切断に
よりリーダー配列が除去されている)を意味する。
)という語は、さらなるステップ、成分、もしくは特性、またはステップ群、成
分群、もしくは特性群を含みまたは含むことなく、上記のステップ、成分、もし
くは特性、またはステップ群、成分群、もしくは特性群を含むことを意味するこ
とを意図するものである。
発明の内容を提供するものである。これらの事項のいずれかまたは全てが、本願
の各特許請求の範囲における、優先日前にオーストラリアに存在していた本発明
に関連する分野における従来技術にもとづく一般的知識または共通した一般的知
識の部分を構成するものであるとみなされるものではない。
説明する。
いずれの女性も薬物を摂取していなかった。各事例において、妊娠期間は初期妊
娠超音波走査により決定した。その後、全ての女性が満期(37〜41週)で健常な
正常に成長した乳児を正常な経膣分娩により分娩した。血清サンプルは、妊娠10
〜14週の間に6人の女性から、妊娠の26〜30週および37〜40週の間に8人の女性
から採取した。この時期は各トリメスターの最後に相当する。各トリメスターに
対応するサンプルをプールした後、MIC-1レベルを測定した。また4人の女性か
らは妊娠30週から分娩までほぼ毎週に連続母体血清サンプルを採取した。またこ
の4人の女性は全て正常な単生児妊娠で健常であり、また妊娠満期に正常経膣分
娩により正常な健常乳児を分娩した。さらに、10人の女性から、妊娠15〜17週に
胎児染色体分析のために羊水穿刺検査を行って、羊水を採取した。全事例におい
て、染色体分析の適応は高齢の母体(>37歳)であった。羊水も同様にプールし
た後にMIC-1レベルを測定した。
0℃で保存した)を1mのリン酸緩衝化生理食塩水(PBS)中でホモジネートした
。ホモジネートを10,000rpmで30秒間遠心し、上清をチューブに移した。総タン
パク質をBCA総タンパク質アッセイ(Pierce)を用いて製造業者の指示に従って
測定した。0〜1000μg/mlの範囲のBSA溶液を標準溶液として使用した。
ウエルの組織培養プレートに、4.5g/l D-グルコース、110mg/lピルビン酸ナトリ
ウム、0.584g/l L-グルタミン、4mg/l塩酸ピリドキシンおよび1×Nutridoma-S
R(Boehringer Mannheim, Germany)を含むダルベッコの改変イーグル培地(DME
M;Gibco BRL)250μl中に1ウエル当たり5000個の上記細胞を接種し、5%二酸
化炭素の存在下で37℃にて1〜5日間培養した。この時点で、培養プレートを10
00rpmで10分間遠心し、上清を取り出し、MIC-1の定量まで-20℃で保存した。
造業者により指示される方法で総RNAを単離した。1μg RNA、poly (T)15プライ
マーおよび50ユニットのExpand逆転写酵素(Roche)を用いて製造業者が推奨す
る条件を用いて、総反応量20μlで逆転写(RT)を行った。RT反応のアリコート
5μlをPfuポリメラーゼ(Promega)および下記のプライマーを用いてPCR反応で
増幅した: MSB-1(5'-AGGACCTGCTAACCAGGCTGCGGGCCAACCAGAGC-3';配列番号5)および MSB-5(5'-GGCTAACAAGTCATCATAGGTCTGGAGCGACAC-3';配列番号6) これらはMIC-1の1つのイントロンと隣接するものである。PCR条件は次のとおり
とした:最初の変性ステップを95℃にて1分間、続いて、95℃にて30秒、60℃に
て30秒、72℃にて2分間を35サイクル行った。RNAを除いたRT反応を陰性対照と
して用い、MIC-1 pre-pro-MIC/FLAGコード配列(Bootcovら、1997)を有するプ
ラスミドを陽性対照として実験に含めた。PCR産物は0.8% (w/v) アガロースゲ
ル上で分離させた。
号に記載の方法に従って合成した組換えヒトMIC-1(rhMIC-1)を完全フロイント
アジュバントと共に用いて免疫感作することにより作製した。追加免疫は6ヶ月
の期間にわたって行い、最終免疫(注射)後10日目にヒツジから採血した。IgG
画分に富む正常ヒツジ血清および233B3は、カプリル酸沈降とそれに続く硫安沈
降により調製した。IgG富化233B3画分を233Pと称した。
免疫したマウスから作製した。ハイブリドーマを、20%FCS(CSL, Melbourne)
を添加した、4.5g/l D-グルコース、110mg/l ピルビン酸ナトリウム、0.584g/l
L-グルタミン、4mg/l塩酸ピリドキシンを含むDMEM(Gibco BRL)中で培養した
。MAbを回収するために、ハイブリドーマを、Nutridoma-SR(Boehringer Mannhe
im)を添加した新鮮なDMEM-hiグルコースに7日間移した。培養上清を2000rpmで
10分間遠心し、細胞破砕物を除去し、使用まで凍結した。PAbおよびMAb調製物の
感受性は直接ELISA法により確認した。
.1M 炭酸塩、pH 9.4-9.8)中の18 ng/ml rhMIC-1または20 ng/ml rhTGF-β1(R
& D Systems)のいずれかで40℃にて24時間かけて被覆(100μl/ウエル)した。
次にプレートを300μlの洗浄バッファー(0.05% (v/v) Tween-20 (Sigma)を含
有するPBS)で3回洗浄し、非特異的結合を、PBS中1%(w/v) BSA(Boehringer
Mannheim)250μlで37℃にて2時間ブロッキングした。抗体希釈液(1%(w/v)
BSAおよび0.05%(v/v) Tween-20を含有するPBS)で500,000倍希釈した抗MIC-1 M
AbおよびヒツジPAb 233B3-Pを含有するハイブリドーマ血清不含培地;マウスミ
エローマ細胞系SP2/0で調整した培養培地;DMEM+Nutridoma;抗体希釈液で500,
000倍希釈したイムノグロブリンG富化正常ヒツジ血清;DMEM+Nutridoma中の200
ng/ml マウスIgG1(R & D Systems);または抗体希釈液単独、をプレートに添
加し(100μl/ウエル)、37℃にて1時間インキュベートした。プレートを3回
洗浄した後、抗体希釈液で10,000倍希釈したビオチン化ロバ抗ヒツジIgG(Jacks
on Immunoresearch)またはビオチン化ヤギ抗マウスIgG(Jackson Immunoresear
ch)を100μl/ウエルで添加して、37℃にて1時間インキュベートした。プレー
トを3回洗浄し、抗体希釈液で2000倍希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼコン
ジュゲートストレプトアビジン(Genzyme)を100μl/ウエルでプレートに添加し
、37℃にて30分間インキュベートした。プレートを4回洗浄した後、100μl/ウ
エルのペルオキシダーゼ基質(0.014% H2O2, pH5.0(Sigma)を含む0.05M リン
酸-クエン酸バッファー中の1mg/ml o-フェニレンジアミンジヒドロクロリド(S
igma))を添加した。呈色反応を5〜15分間にわたり行い、100μl/ウエルの4N
H2SO4を添加して呈色反応を終結させた。吸光度はマイクロプレートリーダー(P
asteur Diagnostics)において490nmにて測定した。
b 233-Pを用いて行った。両抗体の最適濃度は経験に基づいて決定して以下の全
試験に使用した。96ウエルのMaxisorp ELISAプレートを、被覆用バッファーで5
倍希釈した抗MIC-1 MAb上清(最終イムノグロブリン濃度は約20ng/mlとした)で
40℃にて24時間かけて被覆した。続いてプレートを300μlの洗浄バッファーで3
回洗浄し、非特異的結合を250μlの1%(w/v) BSAのPBS溶液で37℃にて2時間か
けてブロッキングした。次に抗体希釈液で希釈したrhMIC-1標準、組織培養上清
、母体血清、胎盤抽出物または羊水をプレートに添加し(100μl/ウエル)、37
℃にて1時間インキュベートした。プレートを3回洗浄した後、抗体希釈液で50
00倍希釈したヒツジPAb 233-Pを100μl/ウェルで添加し、37℃で1時間インキュ
ベートした。続いてプレートを3回洗浄し、抗体希釈液で5000倍希釈したビオチ
ン化ロバ抗ヒツジIgGを100μl/ウエルで添加し、37℃にて1時間インキュベート
した。その後、直接ELISA法を行うためにプレートを発色させた。サンプル中のh
MIC-1濃度は、rhMIC-1標準曲線との比較により決定した。この標準曲線における
rhMIC-1レベルは総タンパク質含量に基づいて決定しているため、絶対量の点で
は明らかな誤りとなる。しかしながら、本実施例全体にわたって同じ標準を用い
たために、本実施例において評価した相対値には差が生じなかった。全サンプル
を少なくとも2つの試験(occasion)において3連でアッセイした。結果は、平
均値±SDとして表す。MIC-1サンドイッチアッセイの感度は、500 pg/mlまでの量
のTGF-β1およびインヒビンA(いずれもTGF-βスーパーファミリーに属する)
を用いて試験することにより評価した。
mlのハイブリドーマ用血清不含培地を用いて行った。血清および培地サンプル
(1ml)を上記抗体と共に40℃にて一晩インキュベートした後、1%(v/v) Trit
on X-100を含有するPBSで5回洗浄した。結合したタンパク質は、非還元ドデシ
ル硫酸ナトリウム(SDS)-サンプルバッファーを用いて溶出し、SDS-ポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)(Laemmli, 1970)とそれに続くヒツジポリ
クローナル抗体233-Pを用いたイムノブロット分析により分析した。イムノブロ
ット分析は、ポリクローナル抗体233-Pを7000倍希釈して1次抗体として使用し
、ロバ抗ヒツジIgG-ビオチンを5000倍希釈して2次抗体として使用した以外は、
本質的にBootcovら(1997)により記載された手法に従って行った。
により調べた。抗体希釈液で500,000倍希釈したMAbおよびヒツジPAb 233-Pを含
む未希釈組織培養上清はいずれも1.8 ngの固定化rhMIC-1と強く結合したことが
わかった(図4)。マウスミエローマ細胞系SP2/0で調整した培養培地、未調整
培養培地、マウスIgG1、イムノグロブリン富化正常ヒツジ血清、または抗体希釈
液単独はいずれもrhMIC-1とは反応しなかった。非被覆ウエルに対する最小のバ
ックグラウンド結合は、試験した全サンプルで観察された。抗MIC-1 MAbまたは
ポリクローナル抗体233-Pを固定化rhTGF-β1と共にインキュベートした場合には
いずれにおいても反応は検出されなかった。
およびPAb 233-Pを用いるサンドイッチELISA法を確立した(図5)。ヒト血清お
よび培養培地中に存在する因子がこのサイトカインの測定に及ぼす影響を調べる
ために、500 pg/mlのrhMIC-1を10%(v/v)正常ヒト血清または10%(v/v) DMEM+N
utridomaのいずれかを含有する抗体希釈液に添加した後、定量した。サンドイッ
チELISA法は補正値(correct value)5%以内で正確であることがわかった。試
験毎の変動は5%未満であった。TGF-β1およびインヒビンAを用いるサンドイ
ッチELISA法においては、これらの構造的に関連したサイトカインとの交差反応
は観察されなかった。
イッチELISA法によりMIC-1を定量した。プールした正常ヒト血清は、約0.36(±
0.04)ng/mlのMIC-1を含有していることを確認した(図6A)。プールした母体
血清においては、MIC-1濃度が妊娠期間の間に顕著に増大することが認められた
。第1トリメスターに対応する母体血清サンプルは約6.3(±0.02)ng/mlのMIC-
1を含有し、第2トリメスターには12.24(±0.54)にまで上昇し、第3トリメス
ターには15.3(±1.31)ng/mlでピークを示した。
C-1の存在を確認した。MIC-1は、抗MIC-1 MAbを用いた免疫沈降法、続いてPAb 2
33B3-Pを用いたイムノブロット分析により可視化した。ジスルフィド結合した成
熟MIC-1ペプチドに対応する1バンド(約25kDa)を第2および第3トリメスター
の妊娠血清サンプルにおいてみとめることができる(図6B、レーン3〜4)。
最大MIC-1レベルは、第3トリメスターのサンプルにおいてみとめられた。イム
ノブロット分析の感度が低いために、正常血清または第1トリメスターに相当す
るサンプルにおいては類似したバンドは観察されなかった(図6B、レーン1〜
2)。
。妊娠30週において、4人の女性由来の血清全てが約4ng/mlのMIC-1を含有して
いた(図7)。母体血清MIC-1レベルは妊娠30週から分娩まで増大することがみ
とめられた。MHおよびJBと称する検体は、妊娠の最終週においてMIC-1母体血清
レベルがわずかに低減していた。
取した羊水をプールし、サンドイッチELISA法によりMIC-1レベルを定量した。プ
ールした羊水サンプルは約13.68(±0.16)ng/mlのMIC-1を含有することが確認
された(図6A)。プールした羊水の免疫沈降法およびウエスタンブロット分析
によって、ジスルフィド結合した成熟MIC-1ペプチドに相当する約25kDaのバンド
が明らかとなった(図6B、レーン5)。
ために、MIC-1の存在について5つのヒト胎盤抽出物をサンドイッチELISA法によ
り調べた。全5つのサンプルは5.04〜54ng/mlの濃度範囲でMIC-1陽性であること
がわかった(図8)。重要なことは、早産から唯一得られたPL2と称するサンプ
ルの含有するMIC-1レベルが他のサンプルよりもはるかに低かったことである。
oもまたこのサイトカインを産生する可能性があると考えられた。従って、休止
状態のBeWo細胞で調整した組織培養培地は、サンドイッチELISA法により分泌MIC
-1の存在について試験を行った。BeWo細胞の24時間培養に使用した培地は約21.6
(±2.95)ng/mlのMIC-1を含有していることが確認された(図9A)。5日間の
インキュベーション後の培養培地中のMIC-1濃度は約117(±7.2)ng/mlまで増大
した。非刺激BeWo細胞のMIC-1分泌能もまた免疫沈降法およびウエスタンブロッ
ト分析により調べた。高レベルで分泌された成熟MIC-1は、約25kDaのバンドとし
て示されるが、これが5日間にわたりBeWo細胞で調整した培地において観察され
た(図9B)。55kDaおよび12.5kDaの位置に移動した他のバンドが観察されたが
、これはそれぞれMIC-1が不完全にプロセシングされた半二量体(hemidimer)お
よび単量体を表すと考えられる。BeWo細胞に暴露されなかった培養培地は、サン
ドイッチELISA法または免疫沈降法で試験した場合に検出可能なMIC-1を含有して
いなかった。
NAを24時間培養したBeWo細胞から抽出し、上述のようにRT-PCRを行った。0.4kbp
の単一産物が観察され、これはMIC-1転写産物がBeWo細胞に存在することを示し
ている(図9C)。BeWoまたはプラスミドDNAの不在下では産物が検出されなか
った。
進行に伴って実質的に上昇することを示している。
胎児がこのサイトカインに暴露されていることを必ずしも意味するものではない
。しかしながら、羊水中でMIC-1が検出されたということは、胎児への暴露につ
いての直接的な証拠を示している。羊水中のMIC-1レベルは第2および第3トリ
メスターの母体血清中に存在するレベルと匹敵しており、これは正常ヒト血清中
に存在するレベルよりもはるかに過剰である。妊娠期間に胎児が大量の羊水を摂
取し、また胎児の薄い上皮から羊水を吸収する可能性もある。従って上記知見は
、発育中の胎児が高濃度のMIC-1に暴露されていることを示す強力な証拠となる
。
を調べるために、ヒト胎盤抽出物中のMIC-1を測定し、これにより、その抽出物
が大量のMIC-1タンパク質を含有することが確証された。興味深いことに、5つ
の胎盤抽出物のうち4つに存在するMIC-1量(>18 ng/ml)は、プールされた母
体血清および羊水中で検出されたものよりも高かった。免疫組織化学およびin s
ituハイブリダイゼーションを利用することによりMIC-1転写産物およびMIC-1タ
ンパク質が、合胞体栄養細胞層に多量に存在する構造体である胎盤の終末絨毛(
terminal villi)に存在することが確証されている(Paralkarら、1998)。従っ
て、このことはBeWoヒト栄養膜細胞系がこのサイトカインを合成し分泌する可能
性を示す根拠となる。BeWo細胞はMIC-1転写産物を構成的に発現し、休止状態で
多量のMIC-1を分泌する。このような知見は、胎盤内の栄養膜細胞が母体血清お
よび羊水中に存在するMIC-1の主な由来源となることを示唆している。しかしな
がら、MIC-1転写産物およびMIC-1タンパク質がラットの18日胚における発生中の
上皮に局在化するということ(Paralkarら、1998)は、この胚もまた観察された
MIC-1レベルに寄与している可能性があることを示唆している。
結果および他に報告されている実験結果に基づいた場合、MIC-1は妊娠期間中の
免疫調節的な役割を果たしていると考えられる。例えば、rhMIC-1がLPS活性化マ
クロファージからの炎症性サイトカインの放出を抑制することが既に報告されて
いる(Bootcovら、1997)。さらに、MIC-1は、正常ヒト非付着性T細胞が枯渇し
た骨髄細胞からの赤血球および顆粒球/マクロファージ細胞系統の形成を抑制す
ることが知られている(Hromasら、1997)。これらの知見は、MIC-1が炎症の広
範なインヒビターであり、単球/マクロファージ系統の発達およびそれらの前炎
症媒介物質の産生能力の両者を抑制することを示している。
は未熟児分娩と関連している(Romeroら、1992;Hillierら、1993;Opsjonら、1
993)。この点に関して、本発明者は、胎盤および羊水中に存在するMIC-1が子宮
内の炎症誘発性サイトカインの産生を抑制することにより妊娠を維持するために
作用していると考えている。正常妊娠と比較して早産分娩に由来する胎盤抽出物
が含有するMIC-1濃度が低下していたという本実施例の知見は、上記考察を強く
支持するものである。
カインには少なくとも2種類の対立遺伝子が存在することがわかった。その後の
ヒトを対象とした実験においては、2つの対立遺伝子が一般的な集団においてみ
とめられることが確認された。これらの対立遺伝子は、成熟正常、すなわち「野
生型」MIC-1のアミノ酸配列の6位におけるヒスチジン(H6)が6位におけるア
スパラギン酸(D6)に変化する点突然変異において異なっている。これは、弱塩
基性の芳香族アミノ酸から強酸性の非環式アミノ酸への非保存的置換であること
を示している。
報WO 97/00958号に記載の方法に従って酵母(Pichia pastoris)で産生させた組
換えヒトMIC-1(rhMIC-1)で免疫したマウスから作製した。ハイブリドーマを、
20%FCS(CSL, Melbourne)を添加した、4.5g/l D-グルコース、110mg/l ピルビ
ン酸ナトリウム、0.584g/l L-グルタミン、4mg/l塩酸ピリドキシンを含むDMEM
(Gibco BRL)中で培養した。MAbを回収するために、ハイブリドーマを、Nutrid
oma-SR(Boehringer Mannheim)を添加した新鮮なDMEM-hiグルコースに7日間移
した。培養上清を2000rpmで10分間遠心し、細胞破砕物を除去し、使用まで凍結
した。
-1キメラを用いたウエスタンブロット分析によりエピトープマッピング試験を行
った。Mabは全てMIC-1のマウス相同体またはhTGF-β1のいずれとも交差反応せず
、Mabエピトープは全てコンホメーションに依存的であった。種々の抗原との区
別可能な交差反応パターンが各Mabについて観察され、このことは、MIC-1表面上
には少なくとも5つの免疫原性領域が存在することを示唆している。このMabの
うちの2種(13C4H3および26G6H6)をそれらの高親和性(それぞれED50の範囲は
1.3〜2.5×10-9Mである)に基づいてさらなる試験のために選択した。
い親和性を有する成熟ヒト野生型MIC-1(すなわち6位がヒスチジン)のアミノ
末端(1-13位)に結合することが見出され、それにより、ヒト野生型MIC-1とAsp202 -MIC-1とを区別することが可能となる。Mab 13C4H3はマウス-ヒトMIC-1キメ
ラ(ヒト配列と異なるアミノ末端(1-13)のアミノ酸は全てヒトMIC-1の対応す
るアミノ酸と置き換えられている)を認識することはできなかったため、アミノ
末端以外にもヒトとマウスのタンパク質の差異をもたらす他の残基が関与してい
る可能性があると結論付けた。
ープ(成熟ヒト野生型MIC-1の24-37位、56-68位および91-98位の領域内のアミノ
酸を含む)に対して反応することが見出された。Mab 26G6H6は6位にヒスチジン
またはアスパラギン酸を有するMIC-1タンパク質を区別することができなかった
。
することによってヘテロ接合性個体とホモ接合性個体を検出することが可能であ
る。すなわち、Mab 13C4H3を用いた場合には、H6/H6ホモ接合体では最大結合が
観察され、D6/D6ホモ接合体では結合なし(ゼロ)が観察されると予想されるが
、中間(例えば50%)レベルの結合は、H6/D6ヘテロ接合体であると予測されう
る。
れている。
がら重炭酸バッファーpH 9.4-9.8中1:500の26G6H6 80μlを用いて4℃にて24
時間かけて被覆し、MIC-1濃度測定値に応じてサンプルをサンプルバッファー(
1% w/v BSA(Progen)および0.05% v/v Tween(Sigma)を含むPBS(pH7.2)
)で3〜100倍希釈した。MIC-1の「標準」は、サンプルバッファーで1μg/ml r
hMIC-1(1% BSA w/v、3mM HCl中)を1000倍希釈した後、8倍希釈(1000 pg/
ml〜7.8 pg/ml)して調製した。
エルで3回洗浄した。ブロッキングは、250μlの1% BSA w/vと共に21℃にて1
時間インキュベートすることにより行った。続いてブロッキングバッファーを除
き、その間に洗浄を行わずに100μl/ウエルの標準またはサンプルを21℃にて1
時間かけて添加した。次に、検出抗体である233-Pをサンプルバッファーで25000
倍(v/v)希釈し、添加(100μl/ウエル)し、4℃にて16時間インキュベートし
た。サンプルバッファーで5000倍(v/v)希釈したロバ抗ヒツジビオチン化IgG(
Jackson's Laboratories)を21℃にて1時間かけて1OOμl/ウエルで添加した後
、サンプルバッファーで2000倍(v/v)希釈したストレプトアビジン-HRPコンジ
ュゲート(Genzyme)と共に(100μl/ウエル)、21℃にて30分間インキュベート
した。製造業者が推奨するバッファー中0.4 mg/mlのOPD(Sigma)を100μl/ウエ
ルで、7.8pg/mlの標準とゼロの標準とに明らかな差がみとめられるまでインキュ
ベートした。1000pg/mlの標準は少なくとも1より大きいODをしめすことになる
。最後に、100μl/ウエルの2N H2S04を用いて反応を停止させた。
を用いて作成した。サンプルの値はこの曲線から外挿してもとめた。
0μl/ウエルの洗浄バッファーで洗浄した。
A法により調べた。抗体希釈液で500000倍希釈したMAb 13C4H3およびヒツジPAb 2
33-Pを含む未希釈組織培養上清の両者が1.8ngの固定化rhMIC-1と強く結合するこ
とがわかった。rhMIC-1と、マウスミエローマ細胞系SP2/0で調整した培養培地、
未調整培養培地、マウスIgG1、イムノグロブリン富化正常ヒツジ血清または抗体
希釈液との間に反応は観察されなかった。非被覆ウエルに対する結合の最小バッ
クグラウンド値は試験した全サンプルについて観察された。13C4H3または233-P
を固定化rhTGF-β1と共にインキュベートした場合にはいずれにおいても反応は
検出されなかった。
と、その後の種々のMIC-1特異的抗体を用いたイムノブロット分析により調べた
。MIC-1抗体は全て25kDのMIC-1二量体を特異的に認識した。さらに、抗体のブロ
ッキングは、精製rhMIC-1と共に抗体をプレインキュベートすることにより行い
、その後ウエスタンブロット分析を行った。この結果、抗体とMIC-1特異的25kD
バンドとの相互作用が大幅に低減し、このことは抗体Mab 13C4H4、26G6H6および
233-Pの特異性を確証している。更に、試験した上記抗体はTGF-βスーパーファ
ミリーの他のメンバーであるインヒビンを認識しなかった。典型的なアッセイ標
準曲線を図10に示す。誤差を示すバー(error bar)は1つの標準偏差を示す
。
比較してH6対立遺伝子とD6対立遺伝子との間に検出されるMIC-1の差は大きくな
る。この差は、H6エピトープおよびD6エピトープの13C4H4に対する親和性の差異
の関数である。233-Pの存在は、長い時間にわたるインキュベーションにおいて
、捕捉抗体13C4H4と結合するD6を次第に低下させる。これらの未結合となった分
子は、13C4H4結合部位に対し特異的なポリクローナル抗体のより高い親和性成分
と次第に結合することになる。これらの分子は測定されるMIC-1から排除された
ことになる。
1の各分子は、多数の233-P抗体を排除する。これにより、233-Pがポリクローナ
ルであるためMIC-1分子の多くの部分と結合する。結果としては、MIC-1と233-P
との免疫複合体がアッセイから排除されるということである。233-P抗体はバッ
クグラウンド値の主な寄与因子であるため、観察されるMIC-1濃度の差はさらに
増大する。ホモ接合性D6/D6遺伝子型の場合には、バックグラウンド染色は、広
範な濃度差にわたってゼロ以下の読み取り値が得られる点まで低減する。H6対立
遺伝子の場合には、ポリクローナル抗体との結合から遊離するMIC-1の比率は非
常に低く、観察されるMIC-1濃度とはさらに大きく異なっている。
った2つのサンドイッチ酵素結合免疫吸着アッセイはそれぞれ26G6H6および13C4
H4を捕捉抗体として使用している。分析サンプルは、組織培養物(組織培養培地
もしくは細胞抽出物)、ヒト血清または血漿、あるいは、液相状態のまたは任意
の処理により液相状態に処理された任意のヒトサンプルに由来するものとしうる
。
いて4℃にて24時間かけて被覆したELISAプレート(Maxisorb, Nunc)を用いた
(多くの蒸発を防ぐために注意を払う必要がある)。13C4H4アッセイ濃度で判定
したMIC-1測定値に応じて、サンプルをサンプルバッファー(PBS, pH7.2中1%
w/v BSA(Progen)、0.05% v/v Tween(Sigma))で3〜100倍に希釈した。サ
ンプル濃度は50〜150pg/mlとなるようにする必要がある。MIC-1標準(1% BSA
w/v, 3mM HCL中の1μg/ml組換えMIC-1)をサンプルバッファーで1000倍希釈し
、その後8倍希釈を行った(1000pg/ml〜7.8pg/ml)。
エルで3回洗浄した。ブロッキングは、250μlの1% BSA w/vと共に21℃にて1
時間インキュベートすることにより行った。続いてブロッキングバッファーを除
き、その間に洗浄を行わずに100μl/ウエルの標準またはサンプルを21℃にて1
時間かけて添加した。検出抗体である233-Pはサンプルバッファーで10000倍(v/
v)希釈してから添加し(100μl/ウエル)、4℃にて16時間インキュベートした
。サンプルバッファーで5000倍(v/v)希釈したロバ抗ヒツジビオチン化IgG(Ja
ckson's Laboratories)を添加し(100μl/ウエル)、21℃にて1時間インキュ
ベートした後、サンプルバッファーで2000倍(v/v)希釈したストレプトアビジ
ン-HRPコンジュゲート(Genzyme)と共に(100μl/ウエル)、21℃にて30分間イ
ンキュベートした。7.8pg/mlの標準とゼロの標準との間に明らかな差がみとめら
れるまで、製造業者が推奨するバッファー中0.4mg/mlのOPD(Sigma)を100μl/
ウエルでインキュベートした。1000pg/mlの標準は、少なくとも1より大きいOD
を示すはずである。100μl/ウエルの2N H2SO4を用いて反応を停止させた。
モデルを用いて作成した。サンプルの値はこの曲線から外挿してもとめた。
0μl/ウエルの洗浄バッファーで洗浄した。
測定値を26G6H6アッセイで測定した総MIC-1濃度で割った。それぞれの対立遺伝
子に対するカットオフ比率は、両方のアッセイにおいて使用したホモ接合性H6/H
6およびD、ならびにヘテロ接合性(HD)対照により判定した。検定データを以下
に示すように入れた。
を、そして0.7以上の比率はホモ接合性H6/H6を示す。1を超える比率があること
に留意されたい。アッセイの動特性のために、ホモ接合性D6/D6タンパク質に関
しては、濃度が高い場合にはODが0をはるかに下回ることもある。
。DNA配列決定により調べたところ、これらのうち18人がMIC-1遺伝子型を有して
いた。18人の被験者のDNA配列とELISA法により判定した遺伝子型は100%一致し
ていた。さらに95サンプルを分析したが、このサンプルは、48人の20〜69歳の男
性と47人の17〜71歳の女性を含む健常な血液ドナーから得られたものである。ホ
モ接合性D6/D6遺伝子型を有する被験者が5人、ヘテロ接合性遺伝子型が45人、
ホモ接合性H6/H6遺伝子型が45人いた。
として利用されている。これらのアッセイの中には、より感度が高く簡便な集約
型ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)アッセイに取って代わられたものもある。突然
変異検出アッセイのその他のものとしては、2つの方法を組み合わせて異なるDN
A多型を検出するものがある。MIC-1の場合には、H6-D6対立遺伝子の点突然変異
の領域は約90%がGCであるGCリッチ領域である。このことにより、競合的PCRな
どの対立遺伝子または遺伝子型の相違を検出する手法を利用することが非常に困
難となっている。従って、PCR増幅したDNAセグメントのRFLP分析を利用する必要
がある。
依存するものである。これらの部位は、通常は固有のものであり、そのため制限
酵素消化物を分子量により分離した際に可視化されるバンドのパターンが区別可
能な相違を示す。典型的には、このアッセイはアガロースゲルDNA電気泳動を用
いて行われる。MIC-1の対立遺伝子の相違する部分の領域内には、CからGへの
点突然変異によりもたらされる有用な固有の制限部位はない。このため、臭化エ
チジウム検出を用いるDNAアガロースゲル電気泳動の特性を利用するRFLPアッセ
イに新規な改変を加える必要がある。高アガロース濃度(例えば3%)を利用す
ることにより、小さな分子量のDNAバンドについての解像能が向上する。UV光を
照射した場合には、臭化エチジウム染色の差異がDNA濃度の差異と比例する。
CGGTGCAGGCTCGTCTTGAT3'(配列番号9))は、消化した際にD6対立遺伝子におけ
る共通のAVRII部位が主要産物(147bp)となるような産物を与えるように設計し
た。H6対立遺伝子の場合には、また別のAVRII部位によって102bpの主要産物がも
たらされ、これはDNAアガロースゲル電気泳動の検出限界に近い。残る断片は、
アガロースゲル上では可視化するのが困難なより小さな45bpの産物である(図1
1の制限地図を参照されたい)。
推奨に従って、1反応当たり20μlの容量で10 pM 5pプライマーおよび3pプライ
マーの各々1μlを含むように調製した。各被験者からのゲノムDNA 100ngを鋳型
として使用した。
。製造業者の説明書に従い、AVA II(New England Biolabs)を用いて3℃にて
一晩かけてPCR産物を消化した。
観察されるまで泳動を行った。その後、対照(DD、HD、HH)に従って遺伝子型を
決定した。
物のみが可視化される。ヘテロ接合体では2つの産物(147bpおよび102bp)が3
:1の比で現れ、ホモ接合性H6/H6では等量の147bp断片および102bp断片が現れ
る。ホモ接合性H6/H6とヘテロ接合性対立遺伝子との間での消化産物の比の大き
な違いは裸眼で容易に観察することができ、特殊な分析を必要とするものではな
い。147bp産物と102bp産物にはわずかな強度の違いが観察される。これは、臭化
エチジウムのインターカレーションの量の差異によるものである。この作用はさ
らに、異なる比の小さなDNA消化産物に対する染色強度の差異を増強する。大き
なDNA断片の場合には、この作用はそれほど顕著なものではない。
を有していると判定された。上記PCRから得られた産物はアガロースゲルから精
製し、Perkins-Elmer ABI prism DNAシーケンサーを用いて製造業者が推奨する
プロトコールに従って配列決定を行った。各被験者において、5pプライマーおよ
び3pプライマーをそれぞれ用いて、フォーワード方向およびリバース方向の配列
決定を行った。
にまとめた(表1)。DNA配列決定を行った18人の被験者については、これらの
方法において結果が100%一致した。さらに21人の被験者は、ELISA法により遺伝
子型を判定し、種々の遺伝子型のMIC-1の濃度範囲について13/26の比の範囲であ
ると判定した。
ッセイ 以下の方法に従って、RAを罹患する集団から無作為抽出した21個体、および従
来の治療に応答を示さなかった非常に重篤なRAを患う9個体に由来する血清サン
プルにおいてELISAアッセイを行った。結果は以下の表2に示す。
G6H6)、そして検出に標識ヒツジポリクローナル抗体(PAb 233-P)を使用して
行った。抗体の最適濃度は経験に基づいて決定して以下の全試験に使用した。96
ウエルのMaxisorp ELISAプレートを、被覆用バッファーで5倍希釈した抗MIC-1
MAb上清(最終イムノグロブリン濃度は約20ng/mlとした)で40℃にて24時間かけ
て被覆した。続いてプレートを300μlの洗浄バッファーで3回洗浄し、非特異的
結合を250μlの1%(w/v) BSAのPBS溶液で37℃にて2時間かけてブロッキングし
た。次にrhMIC-1標準、組織培養上清、および血清をプレートに添加し(100μl/
ウエル)、37℃にて1時間インキュベートした。プレートを3回洗浄した後、抗
体希釈液で5000倍希釈したヒツジPAb 233B3-Pを100μl/ウェルで添加し、37℃で
1時間インキュベートした。続いてプレートを3回洗浄し、抗体希釈液で5000倍
希釈したビオチン化ロバ抗ヒツジIgGを100μl/ウエルで添加し、37℃にて1時間
インキュベートした。その後、直接ELISA法を行うためにプレートを発色させた
。サンプル中のhMIC-1濃度は、rhMIC-1標準曲線との比較により決定した。
節リウマチ(RA)に対する素因が高いことを示唆している。
える28個体とPSAレベルが正常範囲内の41個体)から採取した血清サンプルを用
いて、RAに関する実施例4に記載の方法と同様に行った。結果は以下の表3に示
す。
合体を示す個体はなかった。この結果は、D6/D6遺伝子型およびH6/D6遺伝子型が
前立腺癌の発症に対し防御的である可能性があること、そしてこの腫瘍は他の遺
伝子型とより高頻度に関連していることを示している。
の尺度として一般的に使用されている。このため、CEAは種々の治療に対する応
答の尺度としても有用なものとなっている。本発明者は、転移性CRCを患う10人
の患者に由来する血清を分析し、そのMIC-1血清レベルを測定した。CEA血清レベ
ルは、慣用されている標準的な研究室における分析法により測定した。MIC-1とC
EA血清レベルとの間には有意な正の相関がみられた(図13)。試験した数が小
さかった点を考慮すると、これは非常に重要な知見であると考えられる。
および経済的に非常に重要である。TGF-β1サイトカインは中でも顕著に上皮細
胞に重要な調節的影響を与える。該サイトカインは、上皮増殖、細胞運動および
付着を調節し、また血管形成および免疫調節活性のあることが示されている。TG
F-β1経路の複数の異常が、乳房、大腸および前立腺の悪性腫瘍に関して記載さ
れている。このような異常としては、それらの分泌、受容体発現および受容体後
の経路における異常がある。前立腺の場合には、in vitroおよびin vivo細胞系
、ならびに動物試験において、TGF-β1は、p53依存的および非依存的経路を介し
て細胞周期の「チェックポイント」およびその後のアポトーシスにおいて機能し
ていることが示されている。TGF-β1は、正常な前立腺により発現される負の調
節を担う増殖因子であると示されているが、前立腺癌の全過程にわたって、その
経路の脱調節の結果としてTGF-β1分泌が上昇しうる。血小板を枯渇させた血清
中で測定したTGF-β1の血清レベルの増大は、生存率の低減と、疾患のより迅速
な進行と関連している。MIC-1は、元々はマクロファージ活性化と関連した高発
現に基づいて同定された、TGF-β1スーパーファミリーから分岐したメンバーで
ある。MIC-1は、TGF-β1と同様に、正常前立腺において発現され、p53依存的お
よび非依存的に細胞機能に関与している。一方、TGF-β1とは異なり、循環血管
成分により産生されるものではないため、血清または血漿中で容易に測定するこ
とが可能である。本実施例は、MIC-1の大腸癌(CRC)における局所的発現と、こ
のサイトカインの血液中への全身性の放出の両方を示す証拠を提供する。得られ
た結果はまた、血清MIC-1レベルと遺伝子型との相関を、臨床学的ステージおよ
びCRCの進行と共に示しており、このことは、このサイトカインの測定が臨床的
および治療的用途となることを示している。
により切除した224人の一連の個体が本研究に登録した。手術前に放射線療法ま
たは化学療法をうけた個体はのぞいた。炎症性腸疾患を罹患するか、または家族
性腺腫様ポリープ(FAP)もしくは遺伝的非結腸ポリポーシス(HNPCC)の既往症
がある個体ものぞき、さらには原発性腫瘍を完全には切除できなかった個体もの
ぞいた。
る正常大腸粘膜を直ちに70℃にて凍結した。男性141人および女性86人(32〜93
歳、平均66.6±12.4歳)から合計224の新鮮な腫瘍検体をアッセイした。これら
の腫瘍のうち19検体はTNMステージIであり、22検体はステージIIであり、111検
体はステージIIIであり、72検体はステージIVであった。大腸癌および他の悪性
腫瘍の家族歴は個体またはその親族にインタビューして調べた。癌の推測される
全ての原因および不確定な死因を、死亡証明書およびカルテを入手するかまたは
主治医と接触することにより確認した。家族歴を利用することにより、HNPCCに
ついてアムステルダムの診断基準または改変診断基準のいずれかを満たす家系を
調べた。
腫瘍について独立して腫瘍の組織病理型、ステージおよびサイズを判定した。ミ
スマッチ修復状態を知らない状態で、腫瘍のグレード、ムチン産生の程度、腫瘍
成長パターン、ならびにクローン病様炎症性浸潤、上皮細胞間リンパ球または腫
瘍周囲リンパ球の存在をその見込みについて判定した。10%未満の細胞が腺を形
成していた腫瘍を高いグレードに分類し(ほとんど区別できない)、50%を超え
る細胞外ムチンを含む腫瘍はムチン性と分類した。
のいずれかと判断した。腫瘍周囲のリンパ系反応の程度およびクローン病様のリ
ンパ系反応の程度は、Jassら(1996)の方法に従って分類した。上皮細胞間リン
パ球は、光学顕微鏡により、ヘマトキシリンおよびエオシン切片上でリンパ球の
形態を有した細胞が完全に腫瘍上皮内にあるようにみられるものとして同定した
。これらは、10高倍率視野当たり30個を超える細胞が存在した場合には顕著に存
在すると分類した。
縦の寸法(cm)、T=周囲の寸法(cm)、D=腫瘍の奥行き(cm))を用いて、
報告されている腫瘍寸法から評価した。
されているようにREMS-PCRを用いて検出した。腫瘍細胞内のp53の蓄積を同定す
るために、腫瘍組織のパラフィン包埋切片に対し、マウス抗ヒトp53抗体DO7(DA
KO)を用いたp53の免疫組織化学分析を行った。間質細胞および正常上皮の染色
がなく、腫瘍細胞のうち20%を超えるものが中程度から高程度の強度の核染色を
示した場合に、その腫瘍はp53タンパク質の蓄積を示すとみなした。
ベルおよび遺伝子型を判定した。分散分析、パラメトリックおよびノンパラメト
リック相関、カプラン−マイヤー分析、ならびに単純なロジスティック回帰を利
用して、MIC-1血清レベルおよび遺伝子型を上記概説したようにまとめた以前の
データと比較した。
ら決定した正常範囲に基づいて正常群および異常群に層別化した。MIC-1レベル
が1050pg/mlを超えた場合にはそれを異常と分類した。統計解析は、血清および
上述したように層別化したレベルの両方を用いて行った。パラメトリック検定を
用いた場合には血清レベルの対数を用いた。
分散分析を利用したところ(ANOVA)、グレード1とグレード4との間、および
グレード2とグレード4との間に有意差がみとめられた(p<0.05)。TNM腫瘍
グレードは、低グレード(TNMグレード1〜2)と高グレード(TNMグレード3〜
4)の2つの群に層別化した。これらの群が有意に異なるかどうかを調べるため
に、これらの群が等しいという仮説で分散F検定の等値を利用してデータを分析
した。その結果これらの群は異なっていた(p<0.0001:F=21.01)。この分
散における相違は、高いMIC-1が腫瘍グレードの高さと有意に連関していること
を示している。
患を有する可能性が高かった(p<0.04)(図14)。
遺伝子型と疾患を患わない生存期間の延長との間に有意な連関があった。また、
ヘテロ接合性H6/D6とホモ接合性D6/D6はそれぞれ疾患を患わない生存期間が短か
った(p<0.02:対数順位(マンテル−コクス)(図15)。これは遺伝子量の
影響を示している。全個体を分析した場合には、MIC-1遺伝子型と診断から再発
までの時間との間に類似した関連性がみとめられた。CRCで死亡した被験者に存
在するものと同じ遺伝子量の影響が集団全体に存在する。
部分集団内においてMIC-1の正常レベルと異常レベルとを比較して分析した。ホ
モ接合性H6/H6 MIC-1が異常に高いレベルの個体は、疾患の診断および初期治療
から再発までの時間が短かった(p<0.03)(図16)。ヘテロ接合性H6/D6 MI
C-1遺伝子型またはホモ接合性D6/D6 MIC-1遺伝子型を示す被験者に関しては、血
清MIC-1レベルの正常レベルと異常レベルとの間に、疾患を患わない生存期間に
ついて統計学的に有意な差はなかった。このことは、腫瘍の挙動に対してMIC-1
遺伝子型が機能的に影響を及ぼしていることを示している。
個体を分析した場合、わずかな影響がみとめられた。ホモ接合性D6/D6およびヘ
テロ接合性H6/D6は、ホモ接合性H6/H6と比較して全体的に生存に関して有利であ
った。遺伝子量の影響をみとめることはできたが、統計学的有意差には達しなか
った。少数のホモ接合性D6/D6被験者しか存在しなかったため、それらを除外し
た。残った個体をデュークスのステージに従って層別化した。全ての群において
ヘテロ接合性H6/D6 MIC-1遺伝子型は生存の有利性が高かった。これは、デュー
クスのステージD群において有意性に達した(p<0.05)(図17)。このこと
は、よりMIC-1レベルが高くなるデュークスのステージDにおいては全体の腫瘍
体積がより大きくなるため、より大きな影響があることに起因すると考えられる
。
あった(p=0.0006:Z=3.5)(図18)。このような傾向は正常集団におい
てはみとめられなかった。
有意な関係はみとめられなかった。さらに、遺伝子型と比較した場合のMIC-1レ
ベルの有意な相違はなかった。
在と相関している。このことは、腫瘍体積が大きくなるほどMIC-1レベルが高く
なることを示している。腫瘍体積の測定値は、原発腫瘍の体積であって、必ずし
も全腫瘍量を有効に表すものではなかった。遺伝子型の影響を考慮した場合、パ
ラドックスがあるように思われる。ホモ接合性H6/H6遺伝子型は、疾患を患わな
い生存時間の延長と関連すると同時に、全体の生存期間が短いこととも関連する
。これらの観察結果は、以下の理論により説明することができると考えられる。
ホモ接合性H6/H6 MIC-1は腫瘍増殖を遅滞させるが、免疫系を阻害する点で負の
効果も有する。初期の腫瘍抑制の期間の後、腫瘍は抵抗性を有し、さらに増大し
た高レベルのMIC-1を産生する。この時点で、免疫系に対する高レベルのMIC-1の
有害な影響が明らかに生じ、死亡へのより迅速な進行の一因となる。対照的に、
ヘテロ接合性H6/D6およびホモ接合性D6/D6 MIC-1は腫瘍増殖を遅滞させないが、
正の影響として免疫系を抑制することもない。従って、疾患がより早く再発して
も、免疫抑制は小さい。その結果、腫瘍の制御がより良好であり、そのため全体
の生存期間が長くなる。
。前立腺腫瘍が成長するに従って、最初はTGF-β1の増殖の負の影響に対し応答
するが、最後にはシグナル伝達経路の種々の変化によりこの腫瘍に対する影響は
失われる。これらの変化によって、より迅速な疾患の進行に伴ってTGF-β1の産
生およびそれに付随する免疫抑制が増大する。
る。TGF-β1は、前立腺癌に対する細胞性免疫をその用量と関連して低減するこ
とが証明されている。MIC-1は最初にマクロファージ活性化について選択された
サブトラクションクローニングライブラリーから単離され、このことはMIC-1が
細胞性免疫に対する影響を有している可能性があることを示している。D対立遺
伝子の存在は生存の高い有利性と関連している。生存の有利性は、HおよびD対
立遺伝子が介在する細胞性免疫機能の示差的な変化により媒介されると考えられ
る。ホモ接合性 H6/H6 MIC-1遺伝子型が存在する場合には、MIC-1血清レベルが
上昇するにつれ、他のMIC-1遺伝子型のその血清レベルの変化と同等の変化より
も大きく免疫が抑制される。D対立遺伝子の場合には、免疫抑制が低く、これに
より細胞性免疫が腫瘍を抑制した状態に維持することになり、生存の有利性をも
たらす可能性がある。この影響がデュークスのステージDにおいてのみ有意であ
るという理由は2つある。第1に、各群の数が小さいことである。第2に、デュ
ークスのステージDにおけるMIC-1血清レベルが高いほどより大きな影響がある
ということである。これらの2つの要因が、統計的有意差には達しないが疾患の
初期段階にみられるパターンに寄与している。これはTGF-β1の状況と類似して
いる。2つのTGF-β1遺伝子のうち一方に機能障害がある動物の場合には、新生
物の発生頻度が高くなる。
型対立遺伝子があり、作用機構に関する疑問が生じる。MIC-1分子における点突
然変異は、TGF-β1スーパーファミリーの受容体結合部位であることが知られて
いない領域内にある。TGF-β1と類似した状況は、本発明者が記載しているよう
に、従来は受容体の異常によるものと、受容体後の経路の異常によるものである
と考えられている。MIC-1の場合には、D突然変異はプロペプチドから成熟ペプ
チドとなる切断部位に近接している。対立遺伝子間の機能的相違を説明する他の
ものとしては、細胞プロセシングによる干渉とおそらくMIC-1の分泌がある。
の可能性に関して患者を層別化することができる。治療に関して、D対立遺伝子
を有する患者はホモ接合性H6/H6 MIC-1による利点があるが、この利点はMIC-1投
与の免疫抑制作用により平衡化されると考えられる。この平衡化は、その標的化
送達により克服されうる。
1つは、既に治療をうけておりまた疾患が拡大している、RAを患う患者20人から
なる無作為選択群である。これらの個体は、1gの静脈内投与メチルプレドニゾ
ロン(抗炎症剤)で治療を受けていた。これらの個体を、治療前、ならびに治療
後4時間および24時間において評価した。標準的な研究室における手法を用いて
、上記の時点において血清C反応性タンパク質(CRP)を測定した。
ら構成された。これらの個体は、5種の疾患改善薬による治療を既に行ったが、
治癒していなかった。幹細胞は顆粒球-コロニー刺激因子を用いた前処置の後に
回収した。続いて個体を高用量のシクロホスファミド(化学療法剤)を用いて治
療した。次に、自己由来の既に回収済みの幹細胞を注入した。これにより脊髄機
能が有効に「レスキュー」された。血液サンプルは、治療の6日前および治療の
1.5ヶ月後において採取した。CRPおよび腫瘍壊死因子(TNF)の血清レベルを測
定した。
アを測定し、健康評価アンケート(HAQ)を行った。これらの測定値は、各時点
についてもとめた。
清レベルについて分析した。これらの結果は、上記の変数、および100人の正常
血液ドナーからなる正常集団のMIC-1血清レベルと比較した。
ベルは、正常集団(n=100)と比較して有意に高かった(RA 平均=893pg/ml
、SD=614:正常 平均=406pg/ml、SD=253、p<0.0001)(図20)。
よりも高かった(対応のあるt検定解析を用いた;p=0.021)。また、移植後1
.5ヶ月において関節膨潤および圧痛スコアならびにHAQもまた有意に低下した(
p<0.003)ことは注目に値する。CRPおよびTNF血清レベルには有意な変化はな
かった(対応のあるt検定)。移植前と移植後1.5ヶ月におけるMIC-1レベルの変
化の程度は、1.5ヶ月の時点における関節スコアの変化と正相関していた(p=0
.006;相関Z検定)。移植後の異常に高いMIC-1血清レベル(>1050pg/ml)はTN
Fレベルの変化と負の相関を示す(p<0.03;マン−ホイットニーu検定)。移
植前のMIC-1血清レベルは移植後のTNF血清レベルと関連しているが、有意性には
至っていない(p=0.058;ケンドールの相関検定)。その他には有意な関係は
なかった。
性関節機能障害の予測因子であることを示す可能性がある。このデータはまた、
MIC-1血清レベルおよびこのレベルの変化が、TNF血清レベルに関連している可能
性も示している。TNFは、RAの病理発生に寄与していることが知られるサイトカ
インである。また他にTNFは、再形成する骨髄からのサイトカイン分泌の上昇を
示す。
が、これは相関Z検定を用いて有意性(p=0.064)には達しなかった。
高く、また移植後の関節膨潤スコアが高かった(p<0.05;ANOVA)。これはま
た移植前のTNFレベルとも一致するが、統計学的有意性にはわずかに至らなかっ
た(p=0.058;ANOVA)。
高かった(p<0.02)(図21)。これらのHD遺伝子型の個体はまた、治療前な
らびに治療後4および24時間の時点で、C反応性タンパク質(CRP)レベルが有
意に低かった(p<0.02;マン−ホイットニーu検定)。びらん性疾患を患う個
体はまた3つの時点全てにおいてCRPレベルが低かった(p<0.05;マン−ホイ
ットニーu検定)(図22および23)。このことは、MIC-1の遺伝子型が、RAの
発症を判定するための機能的役割を果たすことを示唆している。
型はまたRA患者におけるCRP血清レベルの変動と関連している。CRPはRAにおける
炎症活性の主要な測定対象の1つである。さらに、正常群と比較してRA患者にお
いてはMIC-1血清レベルが有意に上昇している。MIC-1血清レベルの変化は、TNF
血清レベルの変化と関連していると考えられる。またこれらの変化はMIC-1遺伝
子型依存的である。TNFは、RAの病理発生において主に機能している別のサイト
カインである。これらの相関を組み合わせて分析すると、MIC-1がRAの病理発生
においてある役割を果たしている可能性があり、個体の所定のMIC-1遺伝子型に
より疾患過程を予測しうることがわかる。
く、具体的な実施形態に示す本発明に多数の変更および/または改変を行いうる
ことは理解できるであろう。従って本発明の実施形態は、全ての点で例示を目的
としたものであり限定されないものと考えられる。
IC-1レベルとPSAレベルとの関係を表すグラフを示す。
1レベルを表すグラフを示す。
列(B)を示す。
ートは、1.8ng rhMIC-1、2ng rhTGF-β1、あるいはコーティングバッファー単独
でコーティングした。抗MIC-1マウスモノクローナル抗体(MAb)を含有する培養上
清、マウスミエローマ細胞系SP2/0によって調整した培養培地、未調整培養培地(
DMEM+Nutridoma)、および抗体希釈液(Ab dil)を希釈せずに評価し、IgG を富化
した正常ヒツジ血清およびヒツジポリクローナル抗体233-PをAb dilで500, 000
倍希釈した。マウスIgG1は20 ng/mlで評価した。
抗体233B3-Pを利用するサンドイッチ型ELISA法によって作成された組換えヒトMI
C-1標準曲線を示す。
とを示す実験結果を示す。 図6Aは、サンドイッチ型ELISA法によって測定した、プールされた正常ヒト
血清(normal human serum: NHS)、プールされた各妊娠期における母体血清、お
よびプールされた羊水(amniotic fluid: AF)中のMIC-1濃度の概算値を示すグラ
フである。 図6Bは、プールされた正常ヒト血清(レーン1)、プールされた各妊娠期に
おける母体血清(レーン2〜4)、およびプールされた羊水(レーン5)における
MIC-1の免疫沈降およびウエスタンブロット分析である。
サンドイッチ型ELISA法によって測定することにより示したグラフである。
出物中におけるMIC-1濃度の測定結果を示すグラフである。
めに実施した実験の結果を示す。 図9Aは、サンドイッチ型ELISA法によって測定した、培養1日後および5日
後におけるBeWo細胞によるMIC-1分泌を示す。 図9Bは、BeWo細胞によって分泌されたMIC-1の免疫沈降およびウエスタンブ
ロット分析を示す。レーン1:無調整培養培地;レーン2:BeWo細胞によって5
日間調整した培養培地。 図9Cは、未刺激のBeWo細胞によるMIC-1発現の逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖
反応(RT-PCR)解析を示す図である。レーン1:24時間培養したBeWo細胞からの全
RNAに関するRT-PCR;レーン2:陰性対照(RNAを含まず);レーン3:陽性PCR対
照。
-1、7.8〜1000 pg/ml、すなわち、8回2倍希釈した)。
制限酵素切断部位を示す。
産物を示す。また、これらはDNA配列決定法により確認した。3%アガロースゲ
ル上で臭化エチジウムと一緒に電気泳動を行った。45塩基対のPCR産物が、矢印
で示したホモ接合体H6中に見られる。
レベルとを比較したグラフを示す。
較したグラフを示す。誤差を示す棒は標準誤差を示す。
ラン−メイヤープロットを示す。測定した時間は月数で表す。
カプラン−メイヤープロットを示す。測定した時間は月数で表す。
ついてカプラン−メイヤープロットを示す。測定した時間は月数で表す。
; C. 乳癌; D. リウマチ滑液。矢印はMIC-1を染色した領域を表す。右側のパネ
ルは、IgGを富化した正常ヒツジ血清で染色したそれぞれの対照である。
C-1レベルと正常被験者のMIC-1レベルとを比較したグラフを示す。
ロ接合型(H6/D6)の中で、びらん性(黒色)RAと非びらん性(白色)RAとの割合
を示すグラフを示す。
比較したCRPを示すグラフを示す。
Claims (36)
- 【請求項1】 異常なレベルのMIC-1の発現を特徴とする疾患もしくは症状
の診断または評価方法であって、以下のステップ: (i) 試験被験者から採取した身体サンプル中に存在するMIC-1の量を測定するス
テップ;および (ii)上記(i)における測定量と、正常被験者から採取した等価な身体サンプル中
に存在するMIC-1の量または量の範囲を比較するステップ; を含む上記方法。 - 【請求項2】 上記身体サンプルが、全血、血清、血漿および尿から選択さ
れる、請求項1に記載の方法。 - 【請求項3】 流産のリスクおよび/または早産の診断方法であって、以下
のステップ: (i) 既知の妊娠期にある妊娠試験被験者から採取した身体サンプル中に存在する
MIC-1の量を測定するステップ;および (ii)上記(i)における測定量と、上記試験被験者の既知の妊娠期と実質的に等価
な妊娠期にある正常妊娠被験者から採取した等価な身体サンプル中に存在するMI
C-1の量または量の範囲を比較するステップ; を含む上記方法。 - 【請求項4】 上記身体サンプルが、全血、血清、血漿、羊水、胎盤抽出物
、尿および脳脊髄液から選択される、請求項3に記載の方法。 - 【請求項5】 上記身体サンプルが、血清、羊水、および胎盤抽出物から選
択される、請求項4に記載の方法。 - 【請求項6】 上記身体サンプルが血清由来のサンプルである、請求項3〜
5のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項7】 上記試験被験者が妊娠期の第1トリメスターにあり、該試験
被験者の血清中に存在するMIC-1の測定量が4ng/mL以下であることが流産および
/または早産の高リスクの指標となる、請求項6に記載の方法。 - 【請求項8】 上記試験被験者が妊娠期の第2トリメスターにあり、該試験
被験者の血清中に存在するMIC-1の測定量が8ng/mL以下であることが流産および
/または早産の高リスクの指標となる、請求項6に記載の方法。 - 【請求項9】 上記試験被験者が妊娠期の第3トリメスターにあり、該試験
被験者の血清中に存在するMIC-1の測定量が12ng/mL以下であることが流産および
/または早産の高リスクの指標となる、請求項6に記載の方法。 - 【請求項10】 上記身体サンプルが羊水由来のサンプルである、請求項3
〜5のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項11】 上記試験被験者が妊娠期の第2トリメスターにあり、該試
験被験者の羊水サンプル中に存在するMIC-1の測定量が10ng/mL以下であることが
流産および/または早産の高リスクの指標となる、請求項10に記載の方法。 - 【請求項12】 上記身体サンプルが胎盤抽出物由来のサンプルである、請
求項3〜5のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項13】 上記試験被験者が妊娠期の第3トリメスターにあり、該試
験被験者の胎盤抽出物サンプル中に存在するMIC-1の測定量が約18ng/mL以下であ
ることが流産および/または早産の高リスクの指標となる、請求項12に記載の
方法。 - 【請求項14】 上記試験被験者が妊娠期の第3トリメスターにあり、該試
験被験者の胎盤抽出物サンプル中に存在するMIC-1の測定量が約10ng/mL以下であ
ることが流産および/または早産の高リスクの指標となる、請求項12に記載の
方法。 - 【請求項15】 流産および/または早産のリスクを低減させるための妊娠
被験者の治療方法であって、該被験者に対し、有効量のMIC-1を、必要に応じて
薬学上許容される担体および/または賦形剤と混合させて、投与すること、を含
む上記方法。 - 【請求項16】 上記有効量のMIC-1は、投与されたMIC-1と被験者の胎盤組
織中に存在する内因性MIC-1との合計量が15〜70ng/mLの範囲に維持される量であ
る、請求項15に記載の方法。 - 【請求項17】 上記有効量のMIC-1は、投与されたMIC-1と被験者の胎盤組
織中に存在する内因性MIC-1との合計量が30〜50ng/mLの範囲に維持される量であ
る、請求項15に記載の方法。 - 【請求項18】 流産および/または早産のリスクを低減させるための妊娠
被験者を治療する方法であって、発現可能なMIC-1コードヌクレオチド配列を含
む組換えアデノウイルスベクターもしくは組換えアデノウイルス関連ベクターを
該被験者に投与するステップ;あるいは、適切なプロモーター配列に機能的に連
結された線状MIC-1コードDNAを含むリポソームを該被験者に投与するステップ、
を含む上記方法。 - 【請求項19】 胎児異常の診断方法であって、以下のステップ: (i) 既知の妊娠期にある妊娠試験被験者から採取した身体サンプル中に存在する
MIC-1の量を測定するステップ;および (ii)上記(i)における測定量と、上記試験被験者の既知の妊娠期と実質的に等価
な妊娠期にある正常妊娠被験者から採取した等価な身体サンプル中に存在するMI
C-1の量または量の範囲を比較するステップ; を含む上記方法。 - 【請求項20】 異常なレベルのMIC-1の発現を特徴とする癌の診断方法ま
たは評価方法であって、以下のステップ: (i) 試験被験者から採取した身体サンプル中に存在するMIC-1の量を測定するス
テップ;および (ii)上記(i)における測定量と、正常被験者から採取した等価な身体サンプル中
に存在するMIC-1の量または量の範囲を比較するステップ; を含む上記方法。 - 【請求項21】 上記身体サンプルが、血清、血漿、尿、脳脊髄液、滑液、
精液または組織生検から選択される、請求項20に記載の方法。 - 【請求項22】 上記癌が、前立腺癌、乳癌、大腸癌、直腸癌または膀胱癌
である、請求項20または21に記載の方法。 - 【請求項23】 慢性関節リウマチの診断方法であって、以下のステップ:
(i) 試験被験者から採取した身体サンプル中に存在するMIC-1の量を測定するス
テップ;および (ii)上記(i)における測定量と、正常被験者から採取した等価な身体サンプル中
に存在するMIC-1の量または量の範囲を比較するステップ; を含む上記方法。 - 【請求項24】 上記身体サンプルが、血清、血漿および滑液から選択され
る、請求項23に記載の方法。 - 【請求項25】 身体サンプル中に存在するMIC-1の量を、MIC-1に対する抗
体またはそのフラグメントを使用するイムノアッセイまたは免疫組織化学によっ
て測定する、請求項1〜14または19〜24のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項26】 被験者の炎症を治療する方法であって、該被験者に対し、
有効量のMIC-1を、必要に応じて薬学上許容される担体および/または賦形剤と
混合させて、投与すること、を含む上記方法。 - 【請求項27】 ヒト被験者における炎症性疾患および/または癌の診断方
法または評価方法であって、被験者から採取した適切なサンプル中においてMIC-
1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置にアスパラギン
酸を有するMIC-1変異タンパク質の存在を判定するステップを含む上記方法。 - 【請求項28】 ヒト被験者における炎症性疾患および/または癌への素因
を評価する方法であって、被験者から採取した適切なサンプル中においてMIC-1
の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置にアスパラギン
酸を有するMIC-1変異タンパク質の存在を判定するステップを含む上記方法。 - 【請求項29】 ヒト被験者における炎症性疾患および/または癌の診断方
法または評価方法であって、被験者から採取した適切なサンプル中においてMIC-
1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置にヒスチジンを
有するMIC-1変異タンパク質の存在を判定するステップを含む上記方法。 - 【請求項30】 ヒト被験者における炎症性疾患および/または癌への素因
を評価する方法であって、被験者から採取した適切なサンプル中においてMIC-1
の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置にヒスチジンを
有するMIC-1変異タンパク質の存在を判定するステップを含んでなる上記方法。 - 【請求項31】 上記炎症性疾患が慢性関節リウマチである、請求項27〜
30のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項32】 上記癌が前立腺癌である、請求項27〜30のいずれか1
項に記載の方法。 - 【請求項33】 上記サンプル中のMIC-1変異タンパク質の存在を、ヒト野
生型MIC-1および/もしくは202位にヒスチジンを有する変異体または202位にアス
パラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質と特異的に結合する抗体、あるいはそ
のフラグメントを使用するイムノアッセイによって判定する、請求項27〜32
のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項34】 上記サンプルが、全血、血清、血漿、尿または組織生検か
ら選択される、請求項27〜33のいずれか1項に記載の方法。 - 【請求項35】 MIC-1に関してヒト被験者の遺伝子型を決定する方法であ
って、MIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置にヒ
スチジンを有するMIC-1タンパク質に対して、または、MIC-1の202位もしくは未
成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置にアスパラギン酸を有するMIC-1変
異タンパク質に対して、該被験者がホモ接合型またはヘテロ接合型であるかどう
かを判定することを含む上記方法。 - 【請求項36】 ヒト被験者における炎症性疾患および/または癌の診断方
法または評価方法、あるいは、ヒト被験者における炎症性疾患および/または癌
への素因を評価する方法であって、MIC-1に関してヒト被験者の遺伝子型を決定
するステップを含み、該ステップは、MIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MI
C-1の202位に対応する位置にヒスチジンを有するMIC-1タンパク質に対して、ま
たは、MIC-1の202位もしくは未成熟ヒト野生型MIC-1の202位に対応する位置にア
スパラギン酸を有するMIC-1変異タンパク質に対して該被験者がホモ接合型また
はヘテロ接合型であるかどうかを判定することを含むものである、上記方法。
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