JP2003525062A - 移植で使用される組織の無機質化を減少させる方法 - Google Patents
移植で使用される組織の無機質化を減少させる方法Info
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Abstract
Description
4号、1998年10月9日出願の米国仮特許出願第60/103,697号お
よび1998年10月28日出願の米国仮特許出願第60/105,949号に
対する優先権を主張するものである(これら米国仮特許出願に言及することによ
ってそれら全てが本明細書に組み入れられるものである)。
に行われるようになってきた。このようなプロテーゼに、実例として挙げると、
心臓弁、人工血管、膀胱、心臓ブラダー、左心室補助装置等がある。これらのプ
ロテーゼは、天然組織、無機材料、合成重合体またはそれらの組み合わせから造
ることができる。実例として、機械的心臓弁プロテーゼは、典型的には、重合体
、炭素系材料および金属のような硬質材料から構成される。他方、弁の生体プロ
テーゼ(bioprostheses)は、典型的には、ブタの大動脈弁かウシの心膜のいず
れかから作られる。
置以上に好ましい。例えば、組織由来プロテーゼは、一般に、日常的な血液凝固
防止措置を必要としない。さらに、組織由来プロテーゼが働かなくなったときで
も、それらは緩徐な分解性を示し、それは通常数ヶ月の期間にわたって、或いは
数年にもわたって継続し得る。他方、機械的装置は、一般的には、破局的破壊を
受ける。
あるけれども、プロテーゼ変性のこの原因は組織由来プロテーゼで特に重大であ
る。児童では、実に、心臓生体プロテーゼ弁インプラントの移植4年以内の機能
不全の50パーセントが石灰化によって占められると言われている。成人では、
この現象は移植10年以内に約20パーセントの機能不全率で起こる。例えば、
ショーエン(Schoen)等のJ. Lab. Invest.、52、523-532(1985)を参照された
い。この問題の臨床的重要性にもかかわらず、石灰化の病因は完全には理解され
てない。さらに、現時点で知られている効果的な治療法は明らかに存在しない。
の両者を起源とする生体プロテーゼ心臓弁の組織マトリックス中に存在する細胞
破壊片から主として始まることが示された。生体プロテーゼ架橋組織の石灰化は
、また、細胞破壊片、および血液からインプラント組織内への細胞破壊片の可能
な蓄積に関連するアルカリ性ホスファターゼの存在と結びつけて考えられていた
。さらに他の人は、無機質化はカルシウムを封鎖してアパタイト(リン酸カルシ
ウム)の核形成部位を形成する細胞破壊片中のリン脂質の結果であると提案した
。
石灰化は、ブタの大動脈弁またはウシの心膜から作られた生体プロテーゼ心臓弁
の臨床的機能不全の最も頻度の高い原因である。ヒトの大動脈同種移植インプラ
ントも、生体プロテーゼ心臓弁よりも遅い速度ではあるが、弁組織、さらにまた
それに隣接する大動脈壁の両者を巻き込んだ病的石灰化を受けることが観察され
た。狭窄および/または再生のような形で弁の機能不全を導く病的石灰化は、再
移植を必要とする。従って、生体プロテーゼ心臓弁および同種移植片の使用は、
そのような組織は石灰化を受けやすいので制限されていた。事実、小児患者では
、石灰化速度が加速されることが見いだされており、そのためこのグループには
生体プロテーゼ心臓弁の使用は禁忌である。
せ、または予防する幾つかの可能な方法が文献に記載された。一般的に言えば、
これらの方法は生体プロテーゼ弁を移植前に色々な物質で処理することを含むも
のである。役に立つと報告された物質の中に、硫酸化脂肪族アルコール、ホスフ
ェートエステル、アミノジホスフェート、カルボン酸の誘導体および各種界面活
性剤がある。それにもかかわらず、これらの方法に後−移植無機質化問題の解決
に完全に成功することが立証されたものは一つもない。
在しない。生体プロテーゼ心臓弁として使用されるブタ大動脈根組織の小葉にお
ける石灰化を予防する試剤としてアミノオレイン酸(AOA)を使用する方法はあ
るが、AOAはそのような装置の大動脈壁の無機質化を予防するのに有効であるこ
とは示されなかった。その結果、そのような装置は取り出されなければならない
可能性がある。
織由来移植用医療装置を長期石灰化抵抗性とする必要が存在する。 発明の概要 本発明は、組織由来移植用医療装置中における組織の無機質化レベルを低下さ
せる方法を提供するものである。この方法は、好ましくは、生体プロテーゼ弁の
無機質化、特に生体プロテーゼ弁の病的石灰化のレベルを低下させる。
植用医療装置は、改善された無機質化防止性、および/または生体内病的石灰化
に対して、無機質化を減少または予防する他の方法で与えられるよりも長期の抵
抗性を示す。理論で縛られることを望むものではないが、本発明の方法は、組織
内に存在する酵素、その他の蛋白質(例えば、カルシウム結合性蛋白質)がそれ
ら固有の機能を果たすのを阻害することができる。これらの蛋白質は、主として
、ホスフェートおよびカルシウムの代謝に関わり、無機質化組織の主要成分であ
るリン酸カルシウムの形成に重要であるだろう。本発明の方法による処理は、そ
のような蛋白質の活性を効果的に不活性化し、そして移植後の組織中におけるホ
スフェートおよび/またはカルシウムの蓄積を減少させ、かくして無機質化プロ
セスの開始を少なくすることができる。
製造する方法を通じて組織について行われる処理を提供する。これらの処理工程
は、例えば動物から組織を切除して直ぐに、またはその組織を上記医療装置に組
み込んだ後に実行することができる。一つの好ましい装置は生体プロテーゼ心臓
弁である。この方法は、その装置を患者に移植した後に、弁状小葉、および大動
脈壁のような支持構造体上での無機質化を減少させる。弁状小葉および大動脈壁
の両者の無機質化の減少は、その装置の改善された性能をインプラントの持続期
間にわたって可能にする。
する。この方法は、組織を、少なくとも1種の酸化剤を含んでいる組成物とその
医療装置の移植前に接触させる工程を含んでいる。この方法は、組織を洗浄して
酸化剤の少なくとも一部分、好ましくは実質的に全てを除去する工程をさらに含
んでいることが好ましい。この組織由来移植用医療装置は心臓弁であるのが好ま
しく、その心臓弁はブタの大動脈根組織、ウシの大動脈根組織、ブタの心膜、ウ
シの心膜、ウシの静脈、ブタの静脈、ウシの動脈またはブタの動脈に由来するこ
とができる。
ウ素酸ナトリウム、過ヨウ素酸ナトリウム、過蟻酸、過ヨウ素酸、重クロム酸カ
リウム、過マンガン酸カリウム、クロラミンT、過酢酸およびそれらの組み合わ
せの群から選ばれるのが好ましい。酸化剤は、次亜塩素酸ナトリウム、過蟻酸、
過ヨウ素酸、過酢酸およびそれらの組み合わせの群から選ばれるのがさらに好ま
しい。
いるのが好ましい。適したキレート化剤の例として、エチレンジアミン四酢酸(
EDTA)、エチレンビス(オキシエチレンニトリロ)四酢酸(EGTA)、クエン酸、
それらの塩およびそれらの組み合わせが挙げられる。
buffering agent])をさらに含んでいるのが好ましい。バッファーは約7.0
〜約7.5のpKaを有するのが好ましい。バッファーはHEPES、TES、BES、MES 、
MOPSまたはPIPESのような有機バッファーであるのがさらに好ましい。このよう
な組成物においては、酸化剤、緩衝剤およびキレート化剤の多様な組み合わせを
用いることができる。
の心臓から解剖で取り出され、次いで、その組織に対する自己消化性損傷を低下
させ、かつ輸送中の細菌増殖を最小限に抑えるために、氷を使用して運ばれる。
好ましくは、屠殺現場か、その直ぐ後の場所のいずれかにおいて、組織が有意の
損傷および/または分解を受ける前に、その組織を本発明の方法に従って処理す
ることができる。例えば、約20〜30ミリモル(mM)のEDTAまたはEGTA、約
10〜約30mMのHEPES、および約1:400希釈度以上の濃度の次亜塩素酸
ナトリウム(5%ストック漂白剤溶液)または約1:50以下のストック漂白剤
(これは、一般に、約2〜約20mMに相当する)を含有している食塩溶液(好
ましくは、濃度約0.8〜約1.0重量%の生理食塩溶液)中に組織を浸漬する
ことができる。この組織は、上記漂白剤溶液中に、室温で、好ましくは約24時
間以上、さらに好ましくは約36時間以下浸漬したままにして置かれる。
織を洗浄剤組成物と接触させるのが好ましい。これは組織を第一洗浄剤組成物と
、次いで第二洗浄剤組成物と接触させる工程を含んでいるのがさらに好ましい。
第一洗浄剤組成物がイオン性洗浄剤を含み、そして第二洗浄剤組成物が非イオン
性洗浄剤を含んでいるのが好ましい。これらの工程は少なくとも約30℃の温度
で行われるのが好ましい。ある特定の態様では、これらの工程は、組織を、それ
が洗浄剤組成物中にある間に、約30〜約45℃の温度において超音波処理する
ことを含む。
ら蛋白質の三次構造のために、必ずしも接近することができない。従って、還元
剤の使用を、還元剤は生物活性を持つ蛋白質を不活性化する際に有効である可能
性があるので、採用することができる。かくして、ある特定の好ましい態様につ
いては、洗浄剤組成物はDTT、およびジスルフィド結合を還元する能力がある他
の還元剤のような還元剤を含んでいることができる。
方法に関する。この方法は次の:組織を少なくとも1種の酸化剤を含んでいる組
成物と接触させ;その組織を洗浄して酸化剤の少なくとも一部分を除去し;そし
てその組織を、上記医療装置の移植に先立って、少なくとも1種の還元剤を含ん
でいる洗浄剤組成物と接触させる工程を含んでいる。
させる方法に関する。この方法は次の:組織を非ホスフェート緩衝有機食塩溶液
と接触させ;その組織を少なくとも1種の酸化剤を含んでいる組成物と接触させ
;その組織を洗浄して酸化剤の少なくとも一部分を除去し;その組織を、少なく
とも1種のイオン性洗浄剤および少なくとも1種の還元剤を含んでいる第一洗浄
剤組成物と接触させ;その組織を洗浄して第一洗浄剤組成物の少なくとも一部分
を除去し;そしてその組織を、上記医療装置の移植に先立って、少なくとも1種
の非イオン性洗浄剤および少なくとも1種の還元剤を含んでいる第二洗浄剤組成
物と接触させる工程を含んでいる。
発明の処理工程は所望とされる任意の順序で行うことができる。例えば、組織を
酸化剤を含んでいる組成物で処理し、続いて還元剤を含みまたは含まない一つま
たは二つ以上の洗浄剤組成物で処理し、次いでその組成物を固定化することがで
きる。或いはまた、組織を還元剤を含みまたは含まない洗浄剤組成物で処理し、
続いて酸化剤で処理し、次いで還元剤を含みまたは含まない第二洗浄剤組成物で
処理し、続いて固定化処理することができる。或いは、例えば組織を酸化剤また
は洗浄剤組成物と接触させる前に、(例えば、グルタルアルデヒドまたはカルボ
ジイミドに基づく方法を使用する)固定化プロセスをまず実施することができる
。
物、典型的には哺乳類に由来するか、または他の有機組織から作られて、単独で
または生体プロテーゼの一部として移植されることになる器官または組織を含む
ことを意味する。かくして、この用語は、一般に心臓、心臓弁、大静脈根組織と
他の心臓構成要素、心膜、血管代替物、例えば静脈および/または動脈、または
移植体、心臓代替物、尿管と膀胱代替物、腸管並びに組織切除物等のような生体
プロテーゼ組織を包含する。
しくない沈着のことを言う。いかなる理論または機構によっても縛られるもので
はないが、石灰化は宿主因子、インプラント因子、および他の患者関連外来因子
に起因するだろう。カルシウムの沈着物は、失活細胞、特に最早機能していない
か、または機能不全になっているカルシウムチャンネルを有する細胞膜に関係付
けられることを示唆している証拠がある。石灰化は、組織由来移植用装置中で、
結局は、弁の機能不全に導き得る結節に発達するヒドロキシアパタイトを形成さ
せるのに適切な濃度および分子整列の条件下で存在するカルシウムおよびリンの
蓄積から始まることが観察された。
医療装置に対する、リン酸カルシウム無機塩のような無機質の観察された蓄積の
量的減少のことを言い、そして好ましくはそのような装置の大動脈壁または小葉
に対する上記の量的減少のことを言う。
ことができる。本発明においては、組織由来移植用医療装置用組織を提供するの
に適した哺乳動物の種として、例えば豚、雌牛、羊等々が挙げられる。哺乳動物
の種は豚または雌牛であるのが好ましい。本発明の方法における使用に好ましい
組織としては、例えばブタの大動脈根組織、ウシの大動脈根組織、ブタおよび/
またはウシの心膜または静脈および動脈が挙げられる。組織由来移植用医療装置
は心臓弁を含んでいるのが好ましい。
屠殺場で解剖され、そして望まれない周囲の組織が取り除かれる。組織は、屠殺
現場か、その直ぐ後の場所のいずれかにおいて、組織が有意の損傷および/また
は分解を受ける前に、本発明に従って処理される。それは、本発明の色々な工程
で、広範囲の順序のいずれででも処理することができる。
を低下させ、そして輸送中の細菌増殖を最小限に抑えるために、その組織は氷を
使用して運ばれる。組織は、本明細書に記載される組織の処理を行い得る場所ま
で約24時間以内に運ばれ、受け取られるのが好ましい。
れる。非ホスフェート緩衝有機食塩溶液は、組織と接触する可能性がある過剰の
血液および体液の除去を助けつつ、その組織のマトリックスを安定化する。本発
明の方法では、非ホスフェート緩衝有機食塩溶液は組織由来移植用医療装置中の
ホスフェート含有物質を除去する役を果たすので、そのような有機食塩溶液が好
ましい。
衝剤は、生理的に許容できるpHを保つのに足る緩衝能を有し、そして組織由来
移植用医療装置に対して有害な影響を引き起こさないそのような緩衝剤である。
非ホスフェート緩衝有機食塩溶液は、緩衝剤を約10〜約30mMの濃度で含ん
でいるのが好ましい。緩衝剤としては、例えば酢酸塩、硼酸塩、クエン酸塩、HE
PES(N−2−ヒドロキシエチルピペラジン−N’−2−エタンスルホン酸)、B
ES(N,N−ビス[2−ヒドロキシエチル]−2−アミノ−エタンスルホン酸)
、TES(N−トリス[ヒドロキシメチル]メチル−2−アミノエタンスルホン酸
)、MOPS(モルホリンプロパンスルホン酸)、PIPES(ピペラジン−N,N’−
ビス[2−エタンスルホン酸]またはMES(2−モルホリノエタンスルホン酸)
が挙げられ、そしてこの緩衝剤は、典型的には、約6.5〜約8.5のpH範囲
で緩衝作用を与える。有機バッファーは、一般的には、組織マトリックスに、リ
ン酸ナトリウムのようなこの技術分野で知られている他の生理的バッファーがそ
うであるように、ヒドロキシアパタイトの形成に関与し得る追加のホスフェート
を加えないので、有機バッファーが好ましい。有機バッファーは、また、引き続
く架橋化学作用を妨害することなく、溶液を緩衝する手段を提供する。緩衝剤は
、HEPES、TES、BES、MOPS、PIPESまたはMESであるのが好ましい。本発明の食塩
溶液で用いられる緩衝剤はHEPESであるのがさらに好ましい。HEPESは、組織の加
工処理に非常に適している約7.4のpKaを与えるからである。
の可能性を低下させる。溶液を緩衝するのにホスフェート塩を使用することは、
ホスフェート・PO4 3-のレベルを、そのホスフェート塩がカルシウムのような有
効二価カチオンを結合し、かくしてリン酸カルシウム塩を沈殿させ易い環境を作
り出す点まで高める。試験管内石灰化モデルでは、過度に高いホスフェートおよ
びカルシウムのレベルが使用された。これら元素のそのようなマトリックスを奪
うことは、核形成は、組織が移植に先立って固定および貯蔵された後も、長期効
果を有していることができるので、初期の核形成事象が組織の加工処理を進めて
いる最中に起こるのを前もって妨げることになる。従って、第一処理工程では、
解剖組織をできるだけ速やかに、典型的には24時間以内に本発明の非ホスフェ
ート緩衝有機食塩溶液で処理するのが好ましい。組織の初期処理は、この処理で
、一般に、カルシウム、ホスフェート、マグネシウム、二価カチオンおよび非イ
オン性化合物のような可溶性イオンの、組織からのより良好な拡散が可能になる
ので好ましい。これらの元素は、一般に、異栄養性無機質化、具体的には同石灰
化の一次成分である。
加の成分を含み、そしてこの成分としては、例えば、好ましくは約0.8〜約1
.0重量%の食塩溶液が挙げられる。さらに、非ホスフェート緩衝有機食塩溶液
はキレート化剤を含んでいるのが好ましい。キレート化剤はその食塩溶液中に約
20〜約30mMの濃度で存在するのが好ましい。適したキレート化剤として、
例えばEDTA(エチレンジアミン四酢酸)、EGTA(エチレンビス(オキシエチレン
ニトリロ)四酢酸)、クエン酸またはそれらの塩、およびクエン酸ナトリウムが
挙げられる。本発明の方法で用いられるキレート化剤は、好ましくはカルシウム
、マグネシウム、亜鉛およびマンガンのような二価のカチオンを結合する。初期
加工処理中に組織由来移植用医療装置からのそのようなイオンの除去は、組織を
、組織中に存在することがあるホスフェートイオンと一緒の、これら二価イオン
の自然沈殿に対する感受性をより小さくする。かくして、これら二価カチオンを
取り去ることがアパタイトの形成を妨げることになる。
塩が約0.9重量%であり、約10mM(ミリモル)〜約30mMのHEPESバッ
ファーの緩衝作用により約7.4のpHとされ、そして約20〜約30mMのED
TAを含んでいる。前記の非ホスフェート緩衝有機食塩溶液中での洗浄に続いて、
組織由来医療装置は、さらに加工処理されるまで、約4℃において約4〜約16
時間保持して置くことができる。
達された組織を酸化剤含有組成物に移し、その中に浸漬するのが好ましい。或い
はまた、その組織を直ちに洗浄し、そして酸化剤を含んでいる組成物中に貯蔵す
ることもできる。この組成物は組織を屠殺場から製造施設まで輸送するために用
いることができる。
を受容する能力を有するが、但しこの特定の系ではそれらはその能力では機能し
ないこともある。酸化剤は次亜塩素酸ナトリウム、臭素酸ナトリウム、水酸化ナ
トリウム、ヨウ素酸ナトリウム、過ヨウ素酸ナトリウム、過蟻酸、過ヨウ素酸、
重クロム酸カリウム、過マンガン酸カリウム、クロラミンT、過酢酸およびそれ
らの組み合わせの群から選ばれるのが好ましい。酸化剤は次亜塩素酸ナトリウム
、過蟻酸、過ヨウ素酸、過酢酸およびそれらの組み合わせの群から選ばれるのが
さらに好ましい。酸化剤はその組成物中に好ましくは約2〜約20mM、さらに
好ましくは約5〜約10mMの量で存在する。
、また緩衝剤および食塩溶液を前記の濃度で含んでいるのも好ましい。緩衝剤は
、約6.5〜約7.5のpKaを有しているのが好ましい。緩衝剤は、HEPES、TES
、BESまたは前記の他のもののような有機バッファーであるのがさらに好ましい
。組織は、約20〜約30ミリモル(mM)のEDTA、約10〜約30mMのHEPE
S、および約1:400希釈度以上の濃度の次亜塩素酸ナトリウム(5%ストッ
ク漂白剤溶液)または約1:50以下のストック漂白剤(これは、一般に、約2
〜約20mMに相当する)を含有している0.9%食塩溶液(生理食塩溶液)中
に浸漬されるのが好ましい。組織は、上記漂白剤溶液中に、室温で、好ましくは
約24時間以上、さらに好ましくは約36時間以下浸漬したままにして置かれる
。
ファターゼ、および石灰化プロセスの開始に不可欠であろう組織マトリックス内
の他の蛋白質のような特定の蛋白質の活性を「不活性化する」ように作用するこ
とができる。この組成物中で酸化剤を使用することによって蛋白質構造の生物学
的機能を阻害することができると考えられる。例えば、アミノ酸側鎖の特定−R
基の酸化は特定の蛋白質の折り畳みを阻止することができ、かくしてこの酵素の
固有のコンフォメーションを乱して、その酵素をして基質を加工することができ
ないようにする。
:extra-cellular matrix)中に存する細胞内において起こる酵素反応を切り離
すと考えられる。これらの酵素は、カルシウムとホスフェートを、色々なエネル
ギー利用と細胞信号発信機構で利用する。組織の加工処理中に存在し得る適正な
条件下では、これらの酵素はECM中でアパタイト(即ち、ヒドロキシアパタイト
)を形成するのに必要なイオンを封鎖する原因であろう。蛋白質の活性部位の変
性以外に、他の反応も起こり得る。特定の蛋白質中に存在し得るジスルフィド結
合が破壊されて、その三次構造の一部を変えることによって蛋白質の機能異常を
もたらす。
ン硫酸、デルマチン硫酸のようなグリコサミノグリカン中に存在する糖の還元に
作用することができる。その酸化過程は、架橋に敏感なこれらの化合物を生成さ
せることができると思われる。この溶液は殺菌性溶液であると考えることができ
、輸送中のその溶液中における細菌の増殖を阻害するだろう。酸化剤を含んでい
る上記組成物中に入れられた組織由来移植用医療装置は、所望どおりに貯蔵およ
び/または輸送することができる。
療装置は、その酸化剤を完全に除去するために、前記の非ホスフェート緩衝有機
食塩溶液で徹底的に洗浄されるのが好ましい。組織由来移植用医療装置は室温で
約8〜約18時間洗浄されるのが好ましい。非ホスフェート緩衝有機食塩溶液は
、頻繁に、例えば約20〜約30分毎に替えられるのが好ましい。この頻繁な液
替え(solution change)は、洗浄処理中に、ほぼ32−容積変化(volume chan
ge)、即ち1容積変化当たり約250mLに等しくなるようにすることができる
。
ート緩衝有機食塩溶液比、即ち組織−対−容積比はかなり大きいのがよい。この
方法で用いられる大きな組織−対−容積比は、組織のECMから外への溶質の最大
可能拡散(即ち、除去)勾配を作り出し、そして物質をその周りの非ホスフェー
ト緩衝有機食塩溶液への運動を促進するように設計される。上記の頻繁な容積変
化は、拡散勾配を、酸化剤をECMから除去するのを助けるように維持するのに有
効である。本明細書中で説明される洗浄処理中に、組織は、所望によって、超音
波処理器を用いて超音波処理に付すことができる。超音波処理器を使用すること
は、それが組織からの物質の拡散をさらに助けると言う点で有利であるだろう。
処理温度の維持は、熱交換システムを超音波処理と併用することによって成し遂
げることができる。熱交換システムは、洗浄剤組成物を(組織を含んでいる)反
応容器から水浴中に浸漬されているステンレス鋼製コイル(熱交換器)へと、好
ましくは約35〜約45℃の温度においてポンプ輸送し、そして反応容器に戻す
ことを含む。
くとも1種の洗浄剤を含んでいる第一組成物中に浸漬するのが好ましい。洗浄剤
はドデシル硫酸ナトリウム(SDS)のようなイオン性洗浄剤であるのが好ましい
が、但し非常に多くの他のイオン性洗浄剤も使用することができる。例を挙げる
と、カプリル酸ナトリウム、デオキシコール酸ナトリウムおよび1−デカンスル
ホン酸ナトリウムがある。イオン性洗浄剤の濃度は約0.5〜約2.5%(固体
については重量/容量、または液体については容量/容量)の範囲内にあるのが
好ましく、約0.5〜約1.5%(固体については重量/容量、または液体につ
いては容量/容量)の範囲がさらに好ましい。洗浄剤組成物は、また、約10〜
約30mMのHEPES(または前記の他のバッファー)、約20〜約30mMのEDT
A(または前記の他のキレート化剤)、および(重量で)約0.8〜約1.0%
の量での食塩を含んでいるのが好ましい。
のそのような試剤)のような還元剤を10〜約200mMの範囲で含んでいるこ
とができる。他の適した還元剤の例として、例えば2−メルカプトエチルアミン
およびDTE(ジチオエリトリトール)が挙げられる。還元剤も蛋白質を不活性化
する可能性を有し、そしてそのような処理は生物活性化合物の三次構造を一部変
えてそれらを不活性にする。或いはまた、組織は上記還元剤、および場合によっ
て使用される他の成分を含み、洗浄剤を含んでいない水溶液で処理することもで
きる。
くとも約24時間入れて置かれる。このプロセスが行われる温度は、除去または
変性されるべき細胞膜および関連蛋白質のリン脂質に接近する洗浄剤の能力に有
意の影響を及ぼし得る。リン脂質の二重層が加熱されると、それら二重層は特定
の温度範囲にわたって物理的性質に変化を受けることが知られている。この「相
転移」は脂肪アシル鎖の炭素−炭素結合の周りの増加した運動に起因するもので
ある。このアシル鎖は、より低い温度(即ち、室温)における高配向ゲル様状態
からより高温でのより移動性の高い流動状態へと推移する。ゲル−流体転移中に
熱エネルギーが吸収され、リン脂質二重層はその「溶融温度」を通り過ぎる。こ
のプロセスで用いられる温度における細胞膜の二重層の流動度は、その細胞膜の
溶解容易性をより大きくするのを可能にする。
る。この処理中の温度は、例えば、熱交換システムを超音波処理システムと併用
して、典型的には約50℃以下、好ましくは約45℃以下に保たれる。
に使用される。細胞膜および細胞器官の膜は、無機質化プロセス中のアパタイト
形成の核化に関係する酵素および蛋白質の大部分を収容していることが知られて
いる。これら膜の可溶化も、抽出プロセス中にそれら蛋白質を変質させることに
よって石灰化の抑制を助けることができる。細胞膜の最も大きな部分を構成して
いるリン脂質が石灰化の開始に関係すると言うことも提案された。洗浄剤処理は
蛋白質を抽出するプロセスで細胞膜のリン脂質二重層を解体する。
の非ホスフェート緩衝有機食塩溶液を利用するもう一つの徹底的な洗浄プロセス
に通される。洗浄後に、その組織由来移植用医療装置を第二洗浄剤組成物に入れ
る。この第二洗浄剤組成物は上記の第一洗浄剤組成物よりも大きなリン脂質親和
性を有する。第二洗浄剤組成物は洗浄剤MP-40を含んでいるのが好ましいが、但
しトリトン(Triton)X−100、ツイーン(Tween)シリーズおよびオクチル
グルコシドのような他の非イオン性洗浄剤も使用することができる。この洗浄剤
の使用は、細胞物質および同破壊片の除去をさらに助けるように設計される。
他のバッファー)、約20〜約30mMのEDTA(または前記の他のキレート化剤
)、および(重量で)約0.8〜約1.0%の量での食塩を含んでいるのが好ま
しい。この洗浄剤も前記で第一洗浄剤組成物において説明された還元剤を含んで
いることができる。第二洗浄剤含有組成物中で用いられる洗浄剤濃度は、第一洗
浄剤含有組成物中で用いられる洗浄剤濃度と同様であるが、この場合使用される
標準濃度は約0.5〜約2.5%(液体について容量/容量)であるのが好まし
く、約0.5〜約1.5%(液体について容量/容量)であるのがさらに好まし
い。本明細書に記載される非イオン性洗浄剤は、色々な濃度において異なる仕方
で作用するだろう。例えば、(臨界ミセル濃度よりも高い)高濃度では、非イオ
ン性洗浄剤は、洗浄剤とリン脂質と内在膜蛋白質との混合ミセルを形成すること
によって生体膜を可溶化する。低濃度では、非イオン性洗浄剤はほとんどの膜蛋
白質の疎水性領域に結合し、それら蛋白質を水溶液中に溶けるようにする。
も約30℃の温度で少なくとも約24時間入れて置かれる。このプロセスのこの
段階中に、組織由来移植用医療装置を、前記のように、超音波処理に付すことが
できる。前記でさらに説明されたように、温度は、熱交換システムと超音波処理
システムとを併用して、典型的には約50℃以下、好ましくは約45℃以下に保
たれる。
ホスフェート緩衝有機食塩溶液中で、室温(例えば、約25〜約30℃)におい
て約24時間徹底的に洗浄される。この洗浄処理の完了時に、組織由来移植用医
療装置は非ホスフェート緩衝有機食塩溶液中に入れて置かれ、そして固定化プロ
セスまで4℃において貯蔵される。
れるであろう。即ち、組織由来移植用医療装置の非イオン性洗浄剤含有組成物に
よる処理は、組織由来移植用医療装置のイオン性洗浄剤含有組成物による処理の
前に用いることができる。さらに、本明細書に記載される方法は、具体的には、
個々の処理工程を組織由来移植用医療装置の加工処理手順内のどこにでも置くこ
とができると言う点で、モジュール式となすように設計される。例えば、洗浄剤
を酸化剤の曝露に先だって輸送溶液中で使用し、続いてもう一つの洗浄剤処理を
行うことができる。
、但し固定化は本明細書に記載されるいかなる処理工程の前でも行うことができ
るだろう。典型的には、固定化に先立って、組織由来移植用医療装置は、前記の
非ホスフェート緩衝有機食塩溶液と同様の非ホスフェート緩衝有機食塩溶液で洗
浄されるが、しかしHEPESのような緩衝剤は約10〜約20mMの濃度で用いら
れる。本発明の方法では、組織由来移植用医療装置を保存する二つの択一的固定
化処理法を用いることができる。第一の固定化処理は、組織由来移植用医療装置
を、上記の調製された非ホスフェート緩衝有機食塩溶液中の約0.2%グルタル
アルデヒド溶液に案内する架橋法を用いるものである。この固定化法は完結させ
るのにほぼ7日かかるが、この方法は当業者に周知である。
dot]等)および同第5,733,339号明細書(ジアルドット等)、並びに
欧州特許第897942A明細書(カハラン[Cahalan]等)に開示される、組
織由来移植用医療装置をほぼ水溶性のカルボジイミドに案内する架橋法を用いる
ものである。この固定化法は、コラーゲン分子のアミノ酸骨格上の有効側鎖のよ
り多くを利用する二段階法である。
よび手順は単に説明のためのものであって、本発明をいかなる意味でも限定しよ
うとするものではない。
ない。文献で公にされている報告によると、石灰化の開始事象はそのほとんどが
細胞に基づくことは確かである。この核化の正確な機構は未知であるが、細胞内
の蛋白質またはイオンバランスの信号変換、エネルギー利用、後トランスナショ
ナル変性(post transnational modifications)におけるカルシウムおよび/ま
たはホスフェートの使用に関係する蛋白質が与っている可能性がある。
試みにおいて、それら機能を変質により不活性化する理論を吟味するために蛋白
質が用いられた。このモデル系では、処理後の蛋白質の機能を試験するために、
プロテアーゼが用いられる。これらの蛋白質では、異なる結合機構によってそれ
らの三次構造を、水素結合によってトリプシンを、そしてジスルフィド結合と水
素結合との組み合わせによってキモトリプシンを保持するのが促進される。
着色した副生成物を遊離するコラーゲン系基質(アゾコール[AZOCOLL]、シグ
マ・ケミカル社[Sigma Chemical])を消化するそれらの能力に基づいて選択さ
れた。
は複数種)のいずれかに対する曝露による幾つかの変質/不活性化法に付した。
予備的データは、変質はこれら蛋白質の三次構造を変えることによってそれら蛋
白質を不活性化し得ることを示している。
・ケミカル社、セントルイス(St. Louis)、MO; 生理食塩(NS)、シグマ430AG−4、シグマ社(Sigma); アゾコール(アゾ染料含浸コラーゲン、製品No.194933)、カルバイ
オケム社(Calbiochem)、サンディエゴ(San Diego)、CA; 次亜塩素酸ナトリウム(漂白剤); 過酢酸、アルドリッチ・ケミカル社(Aldrich Chemical Co.)、ミルウォーキ
ー(Milwaukee)、WI; SDS、シグマ製品No.L4509、シグマ・ケミカル社; トリプシン(タイプI、ウシの膵臓、製品No.T4665)、シグマ社; キモトリプシン(ウシの膵臓、製品No.C4129)、シグマ社; DTT(ジチオトレイトール、製品No.D0632)、シグマ社; 水浴 分光光度計(ベックマンモデル[Beckman Model]) VI.方法 蛋白質の調製 これら酵素の自己消化に対する感受性の故に、蛋白質溶液は全て実験当日に新
しく調製し、そして使用するまで氷を使用して貯蔵した。
乾燥粉末からpH7.4のPBS中で室温において可溶化した。蛋白質の濃度は1
mg/mLに設定した。蛋白質の各溶液を0.45μmのシリンジフィルターを
通して滅菌濾過して可能性のある細菌汚染を排除した。
釈することによって調製した。 蛋白質の処理 蛋白質を各々次の条件下で各種試剤に曝露した。
に、それら蛋白質を脱塩カラム(セファデックス[Sephadex]G−25)を通過
させて酸化剤を蛋白質から分離した。そのカラムからPBSを用いて蛋白質を溶離
させた。蛋白質の溶離を、UV吸光度を280nmにおいてモニターすることに
よって追跡した。溶離蛋白質を0.5mLの一定量ずつに分けて採取した。最大
UV吸光度を有するそれら部分標本を分析に使用した。
(1%重量:容量)の存在下で曝露した。この蛋白質を還元剤と共に2時間イン
キュベートした。全てのジスルフィド結合に作用し、そしてそれら結合が完全に
還元されるのを確実にするために、反応を昇温下(37〜40℃)で行った。そ
の蛋白質を、その検定の準備のために、上記のように、セファデックスG−25
カラムを通過させた。その蛋白質をカラムから溶離させた後、それを直ちに検定
で使用した。
した。その蛋白質をPBSに対して透析して過剰のSDSを除去することによって検定
の準備を整えた。透析は自己消化を最小限に抑えるために4℃で行われた。
と共にインキュベートすることによってその蛋白質の活性を評価した。アゾコー
ルはPBS中に1mg/mLの濃度で懸濁せしめられた。
応をエッペンドルフ・ミクロフュージュ管(Ependorff microfuge tubes)中で
37℃において20分間行った。反応時間の終点で、その混合物を遠心分離して
、その水溶性から未消化アゾコールを分離することによって反応を停止させた。
その水溶性をそれら遠心管から取り出し、そして(可溶性アゾ染料を含んでいる
)その溶液の吸光度を520nmにおいてモニターした。
であったが、その蛋白質自体を含んでいない陰性対照より成るものであった。陽
性対照は上記処理に曝露されない酵素であった。それらの一定量ずつをストック
溶液からアゾコールの反応容器に直接分取した。
実験はモデル系の実行可能性を試験するために行われた;色々なグループについ
て、またはそれらグループ間で統計的分析を行う試みはしなかった。
のに役立てることができることを示唆している。後続の組織マトリックス処理を
評価するために、あるモデルを採用し、その評価に信頼性があると考える前に、
評価しなければならない幾つかの点がある。第一は陰性対照中の反応した基質の
外観である。これは、酸化剤の場合、試薬の会合により起こるある種の可能な反
応が存在することを意味しているだろう。
る酵素から検定に運び込まれる過剰のSDSに起因している可能性がある。SDSはア
ゾコールに結合してその分解感受性をより小さくするだろう。
々に言及されて含まれているとしても、ここに言及することにより本明細書に組
み入れられるものである。以上、本発明を色々な特定の好ましい態様および技術
を参照して説明した。しかし、多くの変更および修正をなし得、それらも同時に
本発明の精神と範囲内に留まるものであることを理解されるべきである。
Claims (30)
- 【請求項1】 組織由来移植用医療装置の製造方法であって、該組織を、該
医療装置の移植に先立って、少なくとも1種の酸化剤を含んで成る組成物と接触
させる工程を含んで成る上記の方法。 - 【請求項2】 組織を洗浄して酸化剤の少なくとも一部分を除去する工程を
さらに含んでいる、請求項1に記載の方法。 - 【請求項3】 組織が哺乳類から得られている、請求項1に記載の方法。
- 【請求項4】 組織由来移植用医療装置を生体内病的石灰化に対して抵抗性
にする、請求項1に記載の方法。 - 【請求項5】 組織由来移植用医療装置が心臓弁から成る、請求項1に記載
の方法。 - 【請求項6】 心臓弁がブタの大動脈根組織、ウシの大動脈根組織、ブタの
心膜、ウシの心膜、ウシの静脈、ブタの静脈、ウシの動脈またはブタの動脈に由
来するものである、請求項5に記載の方法。 - 【請求項7】 酸化剤を次亜塩素酸ナトリウム、臭素酸ナトリウム、水酸化
ナトリウム、ヨウ素酸ナトリウム、過蟻酸、過ヨウ素酸ナトリウム、過ヨウ素酸
、重クロム酸カリウム、過マンガン酸カリウム、クロラミンT、過酢酸およびそ
れらの組み合わせの群から選択する、請求項1に記載の方法。 - 【請求項8】 酸化剤を次亜塩素酸ナトリウム、過蟻酸、過ヨウ素酸、過酢
酸およびそれらの組み合わせの群から選択する、請求項7に記載の方法。 - 【請求項9】 次亜塩素酸ナトリウムが約2〜約20mMの濃度にある、請
求項8に記載の方法。 - 【請求項10】 酸化剤を含んで成る組成物が少なくとも1種のキレート化
剤をさらに含んでいる、請求項1に記載の方法。 - 【請求項11】 キレート化剤をエチレンジアミン四酢酸、エチレンビス(
オキシエチレンニトリロ)四酢酸(EGTA)、クエン酸、それらの塩およびそれら
の組み合わせの群から選択する、請求項10に記載の方法。 - 【請求項12】 少なくとも1種の酸化剤を含んで成る組成物が少なくとも
1種の緩衝剤をさらに含んでいる、請求項1に記載の方法。 - 【請求項13】 緩衝剤が約7.0〜約7.5のpKaを有する、請求項12
に記載の方法。 - 【請求項14】 緩衝剤が有機緩衝剤である、請求項12に記載の方法。
- 【請求項15】 緩衝剤をHEPES、TES、BES、MOPS、PIPES、MESおよびそれ
らの組み合わせの群から選択する、請求項14に記載の方法。 - 【請求項16】 組織を少なくとも1種の酸化剤を含んで成る組成物と接触
させる工程を少なくとも約24時間行う、請求項1に記載の方法。 - 【請求項17】 組織を洗浄剤組成物と接触させる工程をさらに含んでいる
、請求項1に記載の方法。 - 【請求項18】 洗浄剤組成物が少なくとも1種の還元剤を含んでいる、請
求項17に記載の方法。 - 【請求項19】 洗浄剤組成物がイオン性洗浄剤または非イオン性洗浄剤を
含んで成る、請求項17に記載の方法。 - 【請求項20】 組織を洗浄剤組成物と接触させる工程を少なくとも約30
℃の温度で行う、請求項17に記載の方法。 - 【請求項21】 組織を洗浄剤組成物と接触させる工程が、該組織を該組織
が該組成物中に浸漬されている間に超音波処理することを含んでいる、請求項1
7に記載の方法。 - 【請求項22】 組織を洗浄剤組成物と接触させる工程が、該組織を第一お
よび第二洗浄剤組成物と接触させることから成る、請求項17に記載の方法。 - 【請求項23】 第一洗浄剤組成物がイオン性洗浄剤を含んで成り、そして
第二洗浄剤組成物が非イオン性洗浄剤を含んで成る、請求項22に記載の方法。 - 【請求項24】 第一および/または第二洗浄剤組成物が少なくとも1種の
還元剤を含んでいる、請求項23に記載の方法。 - 【請求項25】 組織を洗浄剤組成物と接触させる工程を、該組織を酸化剤
を含んで成る組成物と接触させた後に行う、請求項17に記載の方法。 - 【請求項26】 組織を固定化用組成物で処理する工程をさらに含んでいる
、請求項1に記載の方法。 - 【請求項27】 組織を固定化用組成物で処理する工程が、グルタルアルデ
ヒドまたはカルボジイミドに基づく方法を使用することを含んでいる、請求項2
6に記載の方法。 - 【請求項28】 固定化用組成物が少なくとも1種の緩衝剤をさらに含んで
いる、請求項27に記載の方法。 - 【請求項29】 組織由来移植用医療装置の無機質化を減少させる方法であ
って、 上記組織を少なくとも1種の酸化剤を含んで成る組成物と接触させ; 上記組織を洗浄して上記酸化剤の少なくとも一部分を除去し;そして 上記組織を上記医療装置の移植に先立って少なくとも1種の還元剤を含んでい
る洗浄剤組成物と接触させる 工程を含んで成る上記の方法。 - 【請求項30】 組織由来移植用医療装置の無機質化を減少させる方法であ
って、 上記組織を非ホスフェート緩衝有機食塩溶液と接触させ; 上記組織を少なくとも1種の酸化剤を含んで成る組成物と接触させ; 上記組織を洗浄して上記酸化剤の少なくとも一部分を除去し; 上記組織を、少なくとも1種のイオン性洗浄剤および少なくとも1種の還元剤
を含んで成る第一洗浄剤組成物と接触させ; 上記組織を洗浄して上記第一洗浄剤組成物の少なくとも一部分を除去し;そし
て 上記組織を、上記医療装置の移植に先立って、少なくとも1種の非イオン性洗
浄剤および少なくとも1種の還元剤を含んで成る第二洗浄剤組成物と接触させる
工程を含んで成る上記の方法。
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