JP2003508077A - エキソ多糖類の製造方法 - Google Patents
エキソ多糖類の製造方法Info
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Abstract
Description
charides)を製造するプロセスに関する。一層詳細には、発明は、微生
物を、微生物によって同化できる少なくとも一種の炭素源及びタンパク質を高い
含量で有するマメ科植物に由来する少なくとも一種の有機窒素源を含有する栄養
培地中で発酵することによってエキソ多糖類を製造するプロセスに関する。
を表わす。
乳化、安定化性であるために多数の産業用途においてますます使用されている。
これより、キサンタンガムは、それの流動学的性質が格別であることにより、建
築工業、塗装、紙、繊維工業、化粧品、食品、農業、水処理、掘削、油回収等の
ようなさまざまな領域で使用される。
ミエーションによって測定して)よりも大きな分子量を有し、グルコース、マン
ノース、ガラクトース、ラムノース、グルクロン酸、マンヌロン酸、グルロン酸
の単位と、随意にアセテート及びピルベート誘導体とで形成される。それらの特
別の構造及びそれらの性質は、例えばIndustrial Gums−Whi
stler−第2版−Chapters XXI−XXIII(1973)なる
研究に記載されている。
するのが有利である。
じタイプのエキソ多糖類は、最も良く知られている微生物の中で、Agroba
cterium、Arthrobacter、Alcaligenes(Suc
cinoglycan)、Pseudomonas(Levan)、Rhizo
bium、Sclerotium(Scleroglucan)属の内の微生物
を含む高範囲の微生物によって製造することができる。
ある。工業的発酵では、炭素源及び/又は窒素源の選定は、同時にそれの入手可
能性、それのコスト及びそれの高い生産性をもたらす能力を基にする。
。これらの領域では、炭素源及び窒素源は、加えて、求められる官能的、感覚的
及び外観的要求を満足するエキソ多糖類を得るように選定しなければならない。
足する源を見出すことは容易ではない。
わりに不溶性残留生成物が残り、該生成物は、一方で、培地を、エキソ多糖類を
分離する前に果実汁(must)を分解させることができる汚染菌株の発生に好
都合にさせかつ他方で、可能な滅菌及び浄化熱処理の間エキソ多糖類を着色する
危険にさらす。所定の発酵プロセスでは、この不利を改善するために、酵素を使
用することが提案される。ろ過及び/又は遠心分離工程を採用するプロセスが、
他にある。発酵の終わりに不溶性残留生成物を除くプロセスが何であれ、それか
ら製造コストの増大が生じる。
を伴う発酵サイクルを相当に引き延ばすことの不利及び生産の損失を有する炭素
源及び/又は窒素源がいくつかある。
を得ることが求められる時に、特に重要である。窒素源の性質は、また、エキソ
多糖類の良好な生産性の原因にもなる。
来する所定の源は、微生物の発酵において特に関心のある有機窒素源であったこ
とが注目された。これらの画分は、上述した要求の全てを満足することが分かっ
た。
利なことに、特に関心のある結果、特に生産性に関して関心のある結果をもたら
す。例えばIndustrial Gums−Whistler−第2版−Ch
apters XXI−XXIII(1973)なる研究において述べられてい
るような「標準の」培地上で、対照発酵については、生産性は、0.3〜0.4
g/(kg.h)程度であり;イナゴマメに由来する画分については、この生産
性は、0.4g/(kg.h)よりも大きい。
キソ多糖類を製造するプロセスを提案するにある。
とによってエキソ多糖類を製造するプロセスを提案するにある。
酵を、微生物によって同化できる少なくとも一種の炭素源及び少なくとも一種の
有機窒素源を含有する栄養培地中で実施し、該源がイナゴマメの画分に由来する
ことを特徴とする方法に関する。
の終わりにおける不溶性残留生成物の抑制及び生産性の向上である。
ソ多糖類を得ることを可能にする。
われず、所定の場合には、向上さえされる。
ことに適用することができる。細菌、酵母、真菌類、藻類のような多数の微生物
がエキソ多糖類を産生することができる。取り分け、下記を挙げることが可能で
ある: Xanthomonas属に属する細菌、一層特にBergey’s Man
ual of Determinative Bacteriology(第8
版−1974−Williams N.Wilkins Co. Baltim
ore)に記載されている種、例えばXanthomonas begonia
e、Xanthomonas campestris、Xanthomonas
carotae、Xanthomonas hederae、Xanthom
onas incanae、Xanthomonas malvacearum
、Xanthomonas papavericola、Xanthomona
s phaseoli、Xanthomonas pisi、Xanthomo
nas vasculorum、Xanthomonas vesicator
ia、Xanthomonas vitians、Xanthomonas p
elargoniiのようなものに属する細菌;
r stabilis種、Arthrobacter viscosus種のよ
うなものに属する細菌;
indicus種に属する細菌;
ium radiobacter種、Agrobacterium rhizo
genes種、Agrobacterium tumefaciens種に属す
る細菌;
faecalisに属する細菌;
methanicaに属する細菌;
xaに属する細菌;
lucanicum種、Schlerotium rolfsii種又はPle
ctania、Schlerotium occidentalis種に属する
真菌類;
itaconicus種、Aspergillus terreus種に属す
る真菌類;
属する酵母。
ampestris種の細菌であるのが好ましい。
酵を、微生物によって同化できる少なくとも一種の炭素源及び少なくとも一種の
有機窒素源を含有する栄養培地中で実施し、該源がイナゴマメの画分に由来する
ことを特徴とするプロセスに関する。
イナゴマメ、一層特にこのマメの胚乳画分は、「イナゴマメガム」の名前ですで
に広く開発されている。この胚乳画分に密接に関連するのは、胚芽であり、胚芽
は、イナゴマメガムを分離する間に多量に得られる副生物である。
て本発明のプロセスに一層特に適していたことが分かる。
少なくとも45重量%を有するのが有利であり、少なくとも50重量%を有する
のが好ましく、少なくとも60重量%を有するのが一層優先的である。
かつヘリウムの流れ中の導電率によって測定する窒素の測定から計算する。使用
する装置は、LECO FP 428である。
、高い含量のアルギン、グルタミン及び/又はグルタミン酸及びリシンを有する
のが有利であるものを採用することに在る。
重量により、9〜20%であるのが有利であり、12〜14%であるのが好まし
い。
計に対して重量/重量により、18〜30%であるのが有利であり、22〜27
%であるのが好ましい。
あるのが有利であり、12〜14%であるのが好ましい。
る。
脂質を含有するイナゴマメの画分に由来する少なくとも一種の有機窒素源を含有
する栄養培地中で発酵することによって産生されるエキソ多糖類は、一層特にそ
れらの官能的、外観的及び感覚的性質が著しく改良されるのが見られる。これら
の脂質は、同様に予備培養段階におけるフォーミングを防ぐ。
利であり、少なくとも5重量%であるのが有利であり、少なくとも7〜15重量
%の範囲であるのが更に一層有利である。
でヘキサンで抽出することによって求める。作業様式は、下記の通りである: イナゴマメ胚芽粉末約10g、すなわちEグラムを精確に秤量して抽出器のカ
ートリッジ中に入れ、脱脂綿の栓でシールする; ヘキサン150mlを、あらかじめ風袋を量った(P0グラム)250ml丸
底フラスコ中に導入する; 混合物を約6時間抽出する; 回転抽出器を使用して溶媒を蒸発させ、残分の乾燥をオーブン中105℃にお
いて1時間で完了する; デシケーター中で冷却した後に、残分を収容する丸底フラスコ、すなわちP1
グラムを秤量する。
リン酸、オレイン酸及びリノール酸を挙げることが可能である。
とができる。
分を除く。
末は、下記のタイプの微粉砕機中で粉砕するような慣用の手段によって得る: 平均粒度測定100メッシュタイプの粉末、すなわち80メッシュよりも大き
な粒子が多くて1質量%でかつ200メッシュよりも小さな粒子が多くて10質
量%の粉末についてシリンダーミル; 一層微細な粒度測定の粉末についてピンミル; 200メッシュタイプ、すなわち80メッシュよりも大きな粒子が無くてか
つ200メッシュよりも小さな粒子が多くて60質量%の粉末、及び 175メッシュタイプ、すなわち80メッシュよりも大きな粒子が多くて1
質量%でかつ200メッシュよりも小さな粒子が多くて75質量%の粉末。
使用することができる:アルカリ性、酸性及び/又は中性プロテアーゼ;リパー
ゼ;フィターゼ;アルカリ性、酸性及び/又は中性ホスファターゼ;アミラーゼ
。酵素による処理は、慣用のかつ知られた方法によって実施する。
された粉末の場合には、この粒度測定は、一層特に20〜60ミクロンであり、
30〜50ミクロンであるのが好ましい。
されているMALVERN粒度計の助けによってレーザー粒度測定技術によって
実施することができる。
散液又は予備懸濁液の形態でさえの胚乳を分離した後に使用することをもくろむ
ことが可能である。
ラのようなその他のマメ科植物に同様に適用することができる。これらのマメ科
植物を、直説的かつ制限しない量で挙げる。
で行う。
ウムホスフェート又はスルフェート、マグネシウムスルフェート、カリウム又は
ナトリウムスルフェートから単独で又は混合物として選ぶことができる。
は3〜50g/l、一層優先的には5〜30g/lである。
ス、スクロース、フルクトース、ガラクトース、トレハロース、マンノース、マ
ロビオース、ラフィノース、マルトトリオース、マルトース、ラクトース、ラク
ツロース、メチル−β−ガラクトピラノシド、メチル−α−ガラクトピラノシド
、セロビオース、ゲンチオビオース、メチル−β−D−グルコピラノシド、メチ
ル−α−D−グルコピラノシド、エスクリン、リボース、アラビノース、キシロ
ース、パラチノース、ラムノース、フコース、メレチトース、D(+)アラビト
ール、L(−)アラビトール、キシリトール、ズルシトール、タガトース、グリ
セロール、ミオイノシトール、マンニトール、マルチトール、ツラノース、ソル
ビトール、アドニトール、リキソース、エリトリトール、有利に加水分解された
デンプン、デンプン水解物、これらの糖の混合物、及びこれらの糖の内の少なく
とも一種を含む混合物。グルコース及びスクロースが好適な糖である。
るのが好ましい。
ルシウム、マンガン、マグネシウム、ナトリウム、カリウム、ニッケル、コバル
ト、銅、亜鉛の硫酸塩、塩化物又はこれらの混合物のような微量のミネラル塩、
並びにビタミン、ヌクレオチド及び/又はpH調整剤や消泡剤のようなその他の
慣用の添加剤のようなものを含有することができる。
素、例えばアルカリ性、酸性及び/又は中性プロテアーゼ;ポリサッカラーゼ;
アミダーゼ;ペプチダーゼ;アミログルコシダーゼ;ホスファターゼ;フィター
ゼのようなものの存在において実施することができる。
おいて実施することが可能であることに在る。極めて驚くべきことに、酵素の不
存在において、発酵プロセスの時間も生産性も影響されなかったことに注目され
た。加えて、酵素の抑制は、発酵の終わりに不溶性及び不溶解残留生成物を蓄積
し、これが培地を、エキソ多糖類を分離する前に果実汁を分解させることができ
る汚染菌株の発生に好都合にさせ得ることを伴わなかった。
件、特にインキュベーションの温度及び時間、並びに該微生物の維持培地の性質
を、微生物の関数として選定することができよう。
い。予備培養は、細菌菌株を、エキソ多糖を産生しないで発生させ及び繁殖させ
るに在る工程を意味するものと理解される。
る方法で導入する。
℃で実施することが可能である。
Hは、ケースに従い、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム又はアンモニアのよう
な塩基で、或は硫酸、リン酸、塩酸又は硝酸のような酸で調整することができる
。
きる。この撹拌は、例えば往復式撹拌機、旋回式撹拌機、1つ又はそれ以上の撹
拌移動体或はバブルカラムによって行うことができる。発酵時間は、30時間よ
りも長いのが通例であるが、40〜100時間が普通である。
、果実汁1kgに対するgで表わす。発明のプロセスにより、生産性の向上3〜
15%、好ましくは5〜10%が観測された。
れている方法に従って、エキソ多糖を果実汁から回収しかつ精製することができ
る。
糖類を包含する。発明は、一層特に発明のプロセスによって製造されるキサンタ
ンガムを包含する。
、高い透明度、すなわち70〜95%程度又は80〜95%程度でさえの高い透
明度を有する。水溶液の透過率を600nmにおける分光測光によって測定する
。
ない。
段階1及び2について記載する。予備培養1 : 予備培養培地の組成: 酵母エキストラクト 3g/l Oxoid 麦芽エキストラクト 3g/l Oxoid 大豆ペプトン 5g/l Oxoid スクロース 10g/l Eurosucre pHをH2SO4で調整して7にする 飲料水で1リットルにする程の量
500ml Erlenmeyerフラスコ中に画分112mlで分配する。 配合物を120℃で30分間オートクレーブで処理する。
されたチューブの形態で貯蔵する。
する: 麦芽エキストラクト 3g (Oxoidから得られる) 酵母エキストラクト 3g (Oxoid) 大豆ペプトン 5g (Oxoid) グルコース 10g (Prolaboから得られる) 1リットルにする程の量の湧水
調整して6.5にする。培地をオートクレーブ中で120℃において20分間滅
菌する。
ンキュベートした後に、純粋の無菌グリセロール10容積%を培養に加える。次
いで、培養を容量が1〜10ml、好ましくは2〜4mlの範囲の低温チューブ
(cryotube)中に分散させる。
種する。低温チューブのすべて又は50%を、500ml Erlenmeye
rフラスコであって、それらの培地をオートクレーブで処理し、次いで上記した
ようにして滅菌しておいたものの中に無菌導入する。
機で28℃において24時間インキュベートする。
5の範囲であり、それの粘度が50〜500mPa.sでありかつそれのXan
thomonas campestrisの細菌個体数が1010/mlよりも大
きいものを得る。
る。完全な培地を、該培地を500ml Erlenmeyerフラスコ中に画
分112mlで分配した後に、120℃で30分間オートクレーブで処理する。
lを播種する。これらのErlenmeyerフラスコを、220rpm及び振
幅50mmの旋回式撹拌機で28℃において24〜30時間インキュベートする
。
.8〜7.1の範囲であり、それの粘度が100〜1000mPa.sでありか
つそれのXanthomonas campestrisの細菌個体数が109
/mlよりも大きいものを得る。
機及び無機の混合窒素源を用いる発酵プロセスに従ってエキソ多糖を調製して得
ることについて記載する。
rlenmeyerフラスコ中で行い、これらは、培地100mlに相当する(
例1及び2を参照)。
0リットル発酵槽(それの15リットルが有用である)中で行う。
ットルにする程の量の軟水又は飲料水中に溶解する。pHを10%H2SO4で下
げて5.2にする。溶液をオートクレーブ中120℃のMariotteフラス
コ中で45分間滅菌する。
0g、MgSO4.7H2O 3.75g、及び消泡剤7.5mlを7リットルに
する程の量の軟水中に溶解する。pHを10%H2SO4で調整して6にする。こ
の混合物を現場で120℃において45分間滅菌する。1N水酸化ナトリウム⇒
NaOHペレット40gを1リットルにする程の量の蒸留水中に溶解する。溶液
をオートクレーブ中120℃のMariotteフラスコ中で30分間滅菌する
。
酵槽に十分な量の予備培養2を接種する。
rpm 通気⇒0から18時間400リットル/時、次いで24時間から発酵の終わりま
で825リットル/時 温度を28℃に調節する。 pHを1N NaOHで調整して6.8にする。 圧力は、大気圧である。
る。pHを10%H2SO4で調整して5にする。溶液をオートクレーブ中120
℃のMariotteフラスコ中で30分間滅菌する。
3mlを7リットルにする程の量の軟水中に溶解する。この溶液のpHを10%
H2SO4で調整して6にする。この混合物を現場で120℃において45分間滅
菌する。
留水中に溶解する。溶液をオートクレーブ中120℃のMariotteフラス
コ中で30分間滅菌する。
とによって調製する。この溶液をアルカリ性、酸性及び/又は中性プロテアーゼ
タイプ酵素;リパーゼ;フィターゼ;アルカリ性、酸性及び/又は中性ホスファ
ターゼ;アミラーゼで処理しない又は処理することができ;その後に、所望なら
ば、最終生成物の品質を妨げ得る不純物を除くために、水平回転デカンター上で
デカントすることができる。
2)。次いで、発酵槽に十分な量の予備培養2を接種する。
rpm 通気⇒0から24時間まで400リットル/時、次いで24時間から発酵の終わ
りまで825リットル/時 温度を28℃に調節する pHを1N NaOHで調整して6.8にする 圧力は、大気圧又は0.5〜4バールの範囲にすることができる圧力である。
プロパノールで沈殿可能な乾燥物質は、20〜30g/kgの範囲であり、使用
する炭素源に対する重量による収率は、50〜70%の範囲である。得られる発
酵果実汁は、その他のいずれの窒素源によっても決して観測されない明るさ及び
光沢を有する。
Claims (16)
- 【請求項1】 微生物の発酵によるエキソ多糖類の製造方法であって、発酵
を、微生物によって同化できる少なくとも一種の炭素源及び少なくとも一種の有
機窒素源を含有する栄養培地中で実施し、該源がイナゴマメの画分に由来するこ
とを特徴とする方法。 - 【請求項2】 イナゴマメの画分が、乾燥物質の乾燥重量に対してタンパク
質含量少なくとも45重量%、好ましくは少なくとも50重量%、一層優先的に
は少なくとも60重量%を有することを特徴とする請求項1の方法。 - 【請求項3】 タンパク質が、高い含量のアルギニン、グルタミン及び/又
はグルタミン酸及びリシンを有するのが有利であることを特徴とする請求項2の
方法。 - 【請求項4】 イナゴマメの画分が、乾燥物質に対して脂質含量少なくとも
4重量%、有利には少なくとも5重量%、更に一層有利には7〜15重量%の範
囲を含有することを特徴とする請求項1〜3のいずれか一記載の方法。 - 【請求項5】 画分が、イナゴマメの胚芽であることを特徴とする請求項1
〜4のいずれか一記載の方法。 - 【請求項6】 イナゴマメ画分が、粉末の形態であることを特徴とする請求
項1〜5のいずれか一記載の方法。 - 【請求項7】 粉末の粒度測定が10〜150ミクロンの範囲であることを
特徴とする請求項6の方法。 - 【請求項8】 発酵を、少なくとも一種の無機窒素源を含有する栄養培地中
で実施することを特徴とする請求項1〜7のいずれか一記載の方法。 - 【請求項9】 無機窒素源をアンモニウム又はナトリウムニトレート、アン
モニウムホスフェート又はスルフェート、マグネシウムスルフェート、カリウム
又はナトリウムスルフェートから単独で又は混合物として選ぶことを特徴とする
請求項8の方法。 - 【請求項10】 発酵培地中の有機及び随意に無機窒素源の濃度が、1〜8
0g/l、好ましくは3〜50g/l、一層優先的には5〜30g/lであるこ
とを特徴とする請求項1〜9のいずれか一記載の方法。 - 【請求項11】 同化できる炭素源をグルコース又はスクロースから選ぶこ
とを特徴とする請求項1〜10のいずれか一記載の方法。 - 【請求項12】 同化できる炭素源の濃度が、1〜100g/l、好ましく
は15〜80g/lであることを特徴とする請求項1〜11のいずれか一記載の
方法。 - 【請求項13】 微生物の発酵を酵素の不存在において実施することを特徴
とする請求項1〜12のいずれか一記載の方法。 - 【請求項14】 発酵を温度15〜100℃、好ましくは25〜80℃、一
層特に25〜35℃で実施することを特徴とする請求項1〜13のいずれか一記
載の方法。 - 【請求項15】 微生物をXanthomonas属、Alcaligen
es属、Agrobacterium属、Arthrobacter属、Azo
tobacter属、Pseudomonas属、Corynebacteri
um属の細菌、Sclerotium属、及びAspergillus属の真菌
類、Hansenula属の酵母の群において選ぶことを特徴とする請求項1〜
14のいずれか一記載の方法。 - 【請求項16】 請求項1〜15のいずれか一記載の方法によって得られる
エキソ多糖類。
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