JP2003507089A - 機械的伸長神経細胞およびこれらの細胞の産生および使用方法 - Google Patents
機械的伸長神経細胞およびこれらの細胞の産生および使用方法Info
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Abstract
(57)【要約】
機械的伸長神経細胞および伸長細胞の機械的産生方法が提供される。脊髄損傷およびその他の神経損傷の処置のための動物への伸長神経細胞の移植方法も提供される。
Description
【０００１】
［序論］
本発明は、米国合衆国政府からの基金（ＮＩＨ助成金第ＡＧ１２５２７号）に
より一部後援されており、したがって合衆国政府は、本発明にある種の権利を有
し得る。
より一部後援されており、したがって合衆国政府は、本発明にある種の権利を有
し得る。
【０００２】
本出願は、米国特許仮出願第６０／１４９，４０８号（１９９９年８月１７日
提出）の利益を主張する。
提出）の利益を主張する。
【０００３】
［発明の背景］
米国では、毎年約１２，０００人の人々が何らかの形態の脊髄損傷（ＳＣＩ）
に罹患し、２００，０００人を上回る人々がＳＣＩから慢性麻痺になっている。
ＳＣＩのための一般的療法としては、外科手術、薬剤療法および長期リハビリテ
ーションが挙げられる。しかしながら神経組織の広範な損失およびこのような組
織の乏しい再生能力のために、一般的療法の成功は限定されている。当該損傷は
、脳および四肢間の二方向性神経信号の連続性の損失である。ほとんどのＳＣＩ
において、脊髄の病変領域は、数センチメートルの長さに達する。したがって、
これらの場合のニューロン再結合は、非常に難しい。
に罹患し、２００，０００人を上回る人々がＳＣＩから慢性麻痺になっている。
ＳＣＩのための一般的療法としては、外科手術、薬剤療法および長期リハビリテ
ーションが挙げられる。しかしながら神経組織の広範な損失およびこのような組
織の乏しい再生能力のために、一般的療法の成功は限定されている。当該損傷は
、脳および四肢間の二方向性神経信号の連続性の損失である。ほとんどのＳＣＩ
において、脊髄の病変領域は、数センチメートルの長さに達する。したがって、
これらの場合のニューロン再結合は、非常に難しい。
【０００４】
損傷に関連した欠損を低減し、機能的回復を促すための、ＳＣＩの領域への神
経組織の移植のための方法が、目下開発中である。動物での研究では、病変化脊
髄領域への胚組織移植片は、生き残り、そして脊髄のある領域を再神経支配する
ことが示されている(Bjorklund et al. 1986. Neuroscience 18:685-698; Bucha
nan and Nornes, 1986, Brain Res. 381:225-236; Moorman et al. 1990. Brain
Res. 508:194-198; Ribotta et al.1996. Brain Res. 707:245-255)。このよう
な研究は、損傷後の移植の時期、および移植される細胞の種類により、試みられ
る移植の成功に影響が及ぼされる、ということを示している。これらの移植研究
は、ex vivoドナー物質を用いた神経線維結合の再開に、または誘引物質分子に
より長い神経線維を成長させる試みに集中していた。しかしながら移植へのアプ
ローチで、数ミリメートルより長い距離を上回って神経線維を成長させるのに成
功した例はなかった。
経組織の移植のための方法が、目下開発中である。動物での研究では、病変化脊
髄領域への胚組織移植片は、生き残り、そして脊髄のある領域を再神経支配する
ことが示されている(Bjorklund et al. 1986. Neuroscience 18:685-698; Bucha
nan and Nornes, 1986, Brain Res. 381:225-236; Moorman et al. 1990. Brain
Res. 508:194-198; Ribotta et al.1996. Brain Res. 707:245-255)。このよう
な研究は、損傷後の移植の時期、および移植される細胞の種類により、試みられ
る移植の成功に影響が及ぼされる、ということを示している。これらの移植研究
は、ex vivoドナー物質を用いた神経線維結合の再開に、または誘引物質分子に
より長い神経線維を成長させる試みに集中していた。しかしながら移植へのアプ
ローチで、数ミリメートルより長い距離を上回って神経線維を成長させるのに成
功した例はなかった。
【０００５】
末梢神経の移植、無傷胎児脊髄の移植、始原細胞の移植、幹細胞の移植または
神経組織からの解離細胞の移植を含めた脊髄損傷病変を架橋するか、または充填
する方法として、種々の方法が用いられてきた(McDonald, J.W. 1999, Sci.Amer
. 281:64-73; Zompa, E.A.et al., 1997, J. Neurotrauma 14:479-506)。これら
の技法のいくつかは、脊髄損傷の動物モデルにおける機能的結果の改善を生じた
。しかしながら機能改良は、移植片による脊髄信号の再開に直接寄与しなかった
。むしろ、これらのモデルにおける移植組織の主な利点は、損傷周囲の宿主組織
のための物理的および生化学的支持である、と提唱された(Stichel, C.C. and H
.W. Muller, 1998.Prog. Neurobiol. 56:119-148; Anderson, D.K. et al.1995.
Brain Pathol. 5:451-457)。これらの研究は有望であるが、しかし脊髄病変によ
り軸索連結を再確立するという目標は未だ実現されていない。
神経組織からの解離細胞の移植を含めた脊髄損傷病変を架橋するか、または充填
する方法として、種々の方法が用いられてきた(McDonald, J.W. 1999, Sci.Amer
. 281:64-73; Zompa, E.A.et al., 1997, J. Neurotrauma 14:479-506)。これら
の技法のいくつかは、脊髄損傷の動物モデルにおける機能的結果の改善を生じた
。しかしながら機能改良は、移植片による脊髄信号の再開に直接寄与しなかった
。むしろ、これらのモデルにおける移植組織の主な利点は、損傷周囲の宿主組織
のための物理的および生化学的支持である、と提唱された(Stichel, C.C. and H
.W. Muller, 1998.Prog. Neurobiol. 56:119-148; Anderson, D.K. et al.1995.
Brain Pathol. 5:451-457)。これらの研究は有望であるが、しかし脊髄病変によ
り軸索連結を再確立するという目標は未だ実現されていない。
【０００６】
鶏感覚ニューロンからの単一軸索成長円錐における短期緊張が「ひき成長(tow
ed growth)」を生じた研究が示された(Bray, D. 1984.Develop.Neurobiol. 102:
379-389; Lamoureux, P. et al.1989.Nature 340:159-162;Zheng,J. et al.1991
.J.Neurosci. 11:1117-1125)。ほとんど理解されてはいないが、しかし、この成
長メカニズムは一般に、胚発生および発育中のシナプス化ＣＮＳ軸索に生じると
考えられる。シナプス化軸索路は成長を示さないため、それからの円錐は生物体
の成長に適合するよう延びる。軸索伸長は、軸索の中心長における再組織化およ
び構築から起こらなければならない。軸索に沿った連続緊張力がこの長さの成長
を誘発し得る。
ed growth)」を生じた研究が示された(Bray, D. 1984.Develop.Neurobiol. 102:
379-389; Lamoureux, P. et al.1989.Nature 340:159-162;Zheng,J. et al.1991
.J.Neurosci. 11:1117-1125)。ほとんど理解されてはいないが、しかし、この成
長メカニズムは一般に、胚発生および発育中のシナプス化ＣＮＳ軸索に生じると
考えられる。シナプス化軸索路は成長を示さないため、それからの円錐は生物体
の成長に適合するよう延びる。軸索伸長は、軸索の中心長における再組織化およ
び構築から起こらなければならない。軸索に沿った連続緊張力がこの長さの成長
を誘発し得る。
【０００７】
したがって、移植片のために用いられる細胞の伸長は有益である。他の種類の
細胞に関する試験は、機械的方法を用いて細胞を伸長し得ることが示されている
。例えば、ヒト内皮細胞に関する研究は、この細胞の機械的伸長が細胞配向およ
びサイズ、ならびに細胞形態および機能の変化をもたらすことを示している(Yan
o et al. 1997, J.Cell Biochem. 64:505-513; Shirinsky et al. 1989. J. Cel
l Biol. 109:331-339; Galbraith et al. 1998.Cell Motil. Cytoskel. 40:317-
330)。ある研究では、神経細胞の機械的伸長は、動力学的伸長損傷に対するこれ
らの細胞の高耐容性を実証した(Smith et al. 1999, J. Neurosci. 19:4263-426
9)。しかしながら機械的伸長による細胞の伸長に関する研究の焦点は、機能、ま
たは損傷から回復する能力を細胞が失う前に耐容され得る伸長の程度に、そして
細胞損傷モデルにおけるこれらの細胞の考え得る使用に集まっていた。
細胞に関する試験は、機械的方法を用いて細胞を伸長し得ることが示されている
。例えば、ヒト内皮細胞に関する研究は、この細胞の機械的伸長が細胞配向およ
びサイズ、ならびに細胞形態および機能の変化をもたらすことを示している(Yan
o et al. 1997, J.Cell Biochem. 64:505-513; Shirinsky et al. 1989. J. Cel
l Biol. 109:331-339; Galbraith et al. 1998.Cell Motil. Cytoskel. 40:317-
330)。ある研究では、神経細胞の機械的伸長は、動力学的伸長損傷に対するこれ
らの細胞の高耐容性を実証した(Smith et al. 1999, J. Neurosci. 19:4263-426
9)。しかしながら機械的伸長による細胞の伸長に関する研究の焦点は、機能、ま
たは損傷から回復する能力を細胞が失う前に耐容され得る伸長の程度に、そして
細胞損傷モデルにおけるこれらの細胞の考え得る使用に集まっていた。
【０００８】
機械的伸長神経細胞が産生され、損害脊髄組織を再結合し、神経信号の流れを
再開するために用いられ得る、ということがここに見出された。
再開するために用いられ得る、ということがここに見出された。
【０００９】
［発明の概要］
本発明の目的は、機械的伸長神経細胞を含む組成物を提供することである。
【００１０】
本発明の別の目的は、伸長細胞の産生方法であって、選択細胞を培養すること
、上層膜および下層膜上に、培養細胞が両膜を覆うように培養細胞を平板培養す
ること、および培養細胞が機械的に伸長され、伸長細胞により連結される2つの
集団に分割されるように、上層膜を下層膜を横断する(across)ようにモータで動
く装置を介して動かすことを含む方法を提供することである。好ましい実施形態
では、この方法はＮ−tera２細胞のような神経細胞で行われる。
、上層膜および下層膜上に、培養細胞が両膜を覆うように培養細胞を平板培養す
ること、および培養細胞が機械的に伸長され、伸長細胞により連結される2つの
集団に分割されるように、上層膜を下層膜を横断する(across)ようにモータで動
く装置を介して動かすことを含む方法を提供することである。好ましい実施形態
では、この方法はＮ−tera２細胞のような神経細胞で行われる。
【００１１】
本発明のさらに別の目的は、神経損傷の処置方法であって、神経損傷を蒙った
動物の神経に伸長神経細胞を損傷部位に移植することを含む方法を提供すること
である。
動物の神経に伸長神経細胞を損傷部位に移植することを含む方法を提供すること
である。
【００１２】
［発明の詳細な説明］
脊髄の主要な機能的構成は、ミエリン化軸索およびニューロンである。信号は
、標的身体領域と連絡する脊髄ニューロンとシナプスを形成するこれらの軸索を
介して脳から胴体および背中へ移動する。麻痺は、損傷部位より下の連絡を断絶
する軸索損害により二方向性信号伝達が遮断されるときに発症する。このような
損傷からの回復の鍵となるのは、軸索移植である。しかしながら、ニューロンか
ら成長し、次に化学的誘引物質により隣接神経細胞に導かれる軸索は、ＳＣＩに
必要な距離、即ちミリメートルでなくセンチメートルの距離で成長することがで
きなかった。
、標的身体領域と連絡する脊髄ニューロンとシナプスを形成するこれらの軸索を
介して脳から胴体および背中へ移動する。麻痺は、損傷部位より下の連絡を断絶
する軸索損害により二方向性信号伝達が遮断されるときに発症する。このような
損傷からの回復の鍵となるのは、軸索移植である。しかしながら、ニューロンか
ら成長し、次に化学的誘引物質により隣接神経細胞に導かれる軸索は、ＳＣＩに
必要な距離、即ちミリメートルでなくセンチメートルの距離で成長することがで
きなかった。
【００１３】
ニューロンの２つの集団が、他の従来技術の方法では可能でなかった距離に亘
って伸長軸索細胞により連結することができるように、神経細胞を伸長させるた
めの機械的装置がここに開発された。従来の研究は、軸索が、歪みまたは伸長に
対して短期耐容性を示すことを明示しているが、しかし長期伸長を耐容し、次に
首尾よく伸長し、そして依然として生育可能である、軸索細胞の能力は、従来は
示されていなかった。
って伸長軸索細胞により連結することができるように、神経細胞を伸長させるた
めの機械的装置がここに開発された。従来の研究は、軸索が、歪みまたは伸長に
対して短期耐容性を示すことを明示しているが、しかし長期伸長を耐容し、次に
首尾よく伸長し、そして依然として生育可能である、軸索細胞の能力は、従来は
示されていなかった。
【００１４】
細胞を伸長させるために、着脱可能な蓋およびガラス底、ならびにガス交換口
を有するプレキシグラス箱を含む封入細胞培養系が開発された。内側底面には、
ニューロン結合用の長方形吸収性膜(基材：Lactosorb, BioMet, Inc., Warsaw I
ndiana)が適所に固定された。組織中への移植のためにより適合性があるので、
生物学的吸収性膜が選択された。一端付近に下層膜の露呈領域を残して、別の短
い膜が上部に配置された(図１参照)。この上層膜は、２つのスチール製ロッドに
より駆動される可動性バーに固定された。下層膜上にわたる上層膜の動きは、モ
ータテーブルアセンブリ（Servo Systems Inc., Montville, NJ）およびマイク
ロステッパーモータ（Pacific Scientific Rockford, IL）の活性化により実施
された。動きの制御は、リニアテーブル（Aerotech, Irvine, CA）、エンコーダ
（Remco Endoders, Inc., Goleta, CA）およびインデクサ／ドライバ（Panther,
Intelligent Motor Systems, Malborough, CT; QuickStep II Driver Software
）を用いてコンピュータ駆動された。
を有するプレキシグラス箱を含む封入細胞培養系が開発された。内側底面には、
ニューロン結合用の長方形吸収性膜(基材：Lactosorb, BioMet, Inc., Warsaw I
ndiana)が適所に固定された。組織中への移植のためにより適合性があるので、
生物学的吸収性膜が選択された。一端付近に下層膜の露呈領域を残して、別の短
い膜が上部に配置された(図１参照)。この上層膜は、２つのスチール製ロッドに
より駆動される可動性バーに固定された。下層膜上にわたる上層膜の動きは、モ
ータテーブルアセンブリ（Servo Systems Inc., Montville, NJ）およびマイク
ロステッパーモータ（Pacific Scientific Rockford, IL）の活性化により実施
された。動きの制御は、リニアテーブル（Aerotech, Irvine, CA）、エンコーダ
（Remco Endoders, Inc., Goleta, CA）およびインデクサ／ドライバ（Panther,
Intelligent Motor Systems, Malborough, CT; QuickStep II Driver Software
）を用いてコンピュータ駆動された。
【００１５】
任意の細胞が、この装置により伸長され得る。「伸長細胞(elongated cells)
」とは、それらが、本発明の方法により伸長されなかった細胞と比較した場合に
長さの増大を示すよう改質された細胞を意味する。本発明の好ましい実施態様で
は、当該装置は、伸長されたニューロンを含む組成物を生成するために用いられ
る。伸長細胞のほかに、当該組成物は培地および選択増殖因子をさらに含み得る
。伸長されるニューロンは、種々の動物種、例えばヒトから得られ、濾過により
単離される。あるいは神経細胞株、例えばＮ−tera２細胞株が伸長され得る。こ
の装置を用いて、軸索またはニューロンは、伸長の１日後には０．２ｃｍより長
く、そして伸長５日後には１ｃｍより長く伸長され得る、ということが示された
。
」とは、それらが、本発明の方法により伸長されなかった細胞と比較した場合に
長さの増大を示すよう改質された細胞を意味する。本発明の好ましい実施態様で
は、当該装置は、伸長されたニューロンを含む組成物を生成するために用いられ
る。伸長細胞のほかに、当該組成物は培地および選択増殖因子をさらに含み得る
。伸長されるニューロンは、種々の動物種、例えばヒトから得られ、濾過により
単離される。あるいは神経細胞株、例えばＮ−tera２細胞株が伸長され得る。こ
の装置を用いて、軸索またはニューロンは、伸長の１日後には０．２ｃｍより長
く、そして伸長５日後には１ｃｍより長く伸長され得る、ということが示された
。
【００１６】
ニューロンを伸長させるこの装置の能力は、Ｎ−tera２細胞株および一次ラッ
トニューロンを用いて実証された。細胞(約１０００万個)を上層膜および下層膜
の外側縁上に平板培養した。細胞は、３〜７日間培養中に残存し、その時間は、
膜へのニューロンの付着、および神経線維(軸索および樹状細胞)の成長を可能に
して、ニューロン間に網状構造を形成させた。したがって、上層膜および下層膜
の両方を覆う単一ニューロン網状構造が確立された。次に装置のドライバが活性
化され、ステッパーモータが、５分毎に３．５〜７μｍまたは１〜２ｍｍ／日の
速度で下層膜上を上部(上層)膜を動かした(図１参照)。この膜の移動はニューロ
ン培養を、軸索の束で架橋された２集団に分割する(図２参照)。軸索は１ｃｍに
及ぶ距離までもの伸長に容易に適応した(図３および４参照)。
トニューロンを用いて実証された。細胞(約１０００万個)を上層膜および下層膜
の外側縁上に平板培養した。細胞は、３〜７日間培養中に残存し、その時間は、
膜へのニューロンの付着、および神経線維(軸索および樹状細胞)の成長を可能に
して、ニューロン間に網状構造を形成させた。したがって、上層膜および下層膜
の両方を覆う単一ニューロン網状構造が確立された。次に装置のドライバが活性
化され、ステッパーモータが、５分毎に３．５〜７μｍまたは１〜２ｍｍ／日の
速度で下層膜上を上部(上層)膜を動かした(図１参照)。この膜の移動はニューロ
ン培養を、軸索の束で架橋された２集団に分割する(図２参照)。軸索は１ｃｍに
及ぶ距離までもの伸長に容易に適応した(図３および４参照)。
【００１７】
５分毎に３．５μｍの段階速度を用いて、伸長により形成されていた２つの半
分体をさらに離して漸進的に動かすと、拡張中心領域に非ニューロン性細胞体が
少数存在することが判明した。しかしながらこの拡張中心領域を架橋するのは、
直径３〜４０μｍの軸索の多数の大きな束であった。この束は、分離前に上層膜
と下層膜との間の分裂線と交差していた軸索の繊維束路から生じた。これらの束
路は、本発明の方法による伸長の前は無作為方向性配向を有したが、拡張間隙と
交差する軸索束は漸次直線配向で平行に整列されるように推定された(図４参照)
。これらの架橋軸索は、それらがその元の長さまたは１００〜２００μｍの長さ
を増大し、あるいは７日間の延伸成長(stretch-growth)で７ｍｍより長くなった
場合でも、伸長に容易に適応するようであった。これらの架橋軸索は、太さなら
びに長さが成長した。特に、ニューロン集団の縁での軸索束の塚が、伸長中によ
り広くなった(図３参照)。一般的肥厚のほかに、延伸成長中に隣接軸索束が一緒
に接合するのが認められた。したがって、ニューロンの２つの集団を架橋する軸
索の繊維束路は漸進的により少なく、しかしより幅広くなった。１μｍ未満の典
型的軸索直径の場合は、大型束は１０００本より多い軸索を含有すると概算され
た。これらの軸索の相対的に急速な延伸成長にもかかわらず、細胞を含入するフ
ラスコを撹拌すると、軸索束の側方運動が観察されたが、これは軸索束中に依然
として何らかの弛みが存在し、軸索束の中心部分が膜に結合されていなかったこ
とを示す。しかしながら間隙の縁に最も近い束の領域は、下層膜に付着している
ように見えた。
分体をさらに離して漸進的に動かすと、拡張中心領域に非ニューロン性細胞体が
少数存在することが判明した。しかしながらこの拡張中心領域を架橋するのは、
直径３〜４０μｍの軸索の多数の大きな束であった。この束は、分離前に上層膜
と下層膜との間の分裂線と交差していた軸索の繊維束路から生じた。これらの束
路は、本発明の方法による伸長の前は無作為方向性配向を有したが、拡張間隙と
交差する軸索束は漸次直線配向で平行に整列されるように推定された(図４参照)
。これらの架橋軸索は、それらがその元の長さまたは１００〜２００μｍの長さ
を増大し、あるいは７日間の延伸成長(stretch-growth)で７ｍｍより長くなった
場合でも、伸長に容易に適応するようであった。これらの架橋軸索は、太さなら
びに長さが成長した。特に、ニューロン集団の縁での軸索束の塚が、伸長中によ
り広くなった(図３参照)。一般的肥厚のほかに、延伸成長中に隣接軸索束が一緒
に接合するのが認められた。したがって、ニューロンの２つの集団を架橋する軸
索の繊維束路は漸進的により少なく、しかしより幅広くなった。１μｍ未満の典
型的軸索直径の場合は、大型束は１０００本より多い軸索を含有すると概算され
た。これらの軸索の相対的に急速な延伸成長にもかかわらず、細胞を含入するフ
ラスコを撹拌すると、軸索束の側方運動が観察されたが、これは軸索束中に依然
として何らかの弛みが存在し、軸索束の中心部分が膜に結合されていなかったこ
とを示す。しかしながら間隙の縁に最も近い束の領域は、下層膜に付着している
ように見えた。
【００１８】
これらの結果は、連続的機械的引張りに応答したシナプス形成化ＣＮＳ軸索の
大型束路の実質的漸進的成長の第一の実証である。さらに、これらのデータは、
最初に、軸索束の機械的伸長が大型束路に統合することを示す。さらに、伸長さ
れた軸索／ニューロン培養は、依然として移植片物質として用いるために十分に
可変性であった。これらの試験は７日の延伸成長で終結されたが、しかしこれら
は、より長期間の延伸成長によりさらなる伸長が達成され得ないことを示したわ
けではない。
大型束路の実質的漸進的成長の第一の実証である。さらに、これらのデータは、
最初に、軸索束の機械的伸長が大型束路に統合することを示す。さらに、伸長さ
れた軸索／ニューロン培養は、依然として移植片物質として用いるために十分に
可変性であった。これらの試験は７日の延伸成長で終結されたが、しかしこれら
は、より長期間の延伸成長によりさらなる伸長が達成され得ないことを示したわ
けではない。
【００１９】
伸長速度を３．５μｍ／５分から７μｍ／５分に倍増すると、軸索束のほぼ全
体的な閉塞が生じ、３日の伸長で間隙に及んだのは数個の残りのものだけであっ
た。したがって、伸長速度に関しては、長期伸長の耐容性に限界があり、これは
、それらの成長円錐から引っ張られた単一軸索の短期伸張に関して前に報告され
た耐容性より低い。
体的な閉塞が生じ、３日の伸長で間隙に及んだのは数個の残りのものだけであっ
た。したがって、伸長速度に関しては、長期伸長の耐容性に限界があり、これは
、それらの成長円錐から引っ張られた単一軸索の短期伸張に関して前に報告され
た耐容性より低い。
【００２０】
本発明の伸長神経細胞を含む組成物は、ＳＣＩならびにその他の神経損傷患者
のための移植片物質の供給源として有用である。本発明の方法により産生された
細胞の移植のための方法は、細胞移植の業界の当業者に周知である。
のための移植片物質の供給源として有用である。本発明の方法により産生された
細胞の移植のための方法は、細胞移植の業界の当業者に周知である。
【００２１】
一実施形態では、機械的伸長ニューロンは、移植細胞が個体の神経機能に取っ
て代わり、その神経を再結合して、損傷を治療し、そうでなければ改善するよう
、生細胞に最も近い病変部の両端に移植される。ニューロンは、損害神経の作用
（processes）の代わりをして、それにより損害神経網状構造を修復するようそ
こから発生する作用を可能にする位置に移植される。したがって、本明細書中で
用いる場合、「神経損害部位またはその付近」という用語は、破壊、損害、また
は機能不全神経細胞に取って代わるために、および／または破壊、損害または機
能不全神経細胞に起因する機能を回復させるために、神経細胞が移植される位置
を指すことを意味する。その位置は、このような移植細胞が、破壊、損害または
機能不全神経細胞の代替細胞として発達し得る、かつ破壊、損害または機能不全
神経細胞により失われた機能を回復するために必要な連結を為し得る部位である
と定義される。
て代わり、その神経を再結合して、損傷を治療し、そうでなければ改善するよう
、生細胞に最も近い病変部の両端に移植される。ニューロンは、損害神経の作用
（processes）の代わりをして、それにより損害神経網状構造を修復するようそ
こから発生する作用を可能にする位置に移植される。したがって、本明細書中で
用いる場合、「神経損害部位またはその付近」という用語は、破壊、損害、また
は機能不全神経細胞に取って代わるために、および／または破壊、損害または機
能不全神経細胞に起因する機能を回復させるために、神経細胞が移植される位置
を指すことを意味する。その位置は、このような移植細胞が、破壊、損害または
機能不全神経細胞の代替細胞として発達し得る、かつ破壊、損害または機能不全
神経細胞により失われた機能を回復するために必要な連結を為し得る部位である
と定義される。
【００２２】
移植戦略は、脊髄病変の長さに伸長軸索培養の長さを適合させることである。
移植片は、軸索束の両端のニューロンが脊髄病変の末端縁の生育可能組織に近接
して存在するように、病変部に培養細胞を伴う膜を配置することにより進行する
。脊髄修復のほかに、移植片物質は、他の種類の神経損傷、例えば視神経損害お
よび末梢神経損害のための架橋として用いられ得る。末梢神経損害修復のための
伸長軸索の移植片は、ＣＮＳと比較して、末梢神経系におけるより寛容な神経成
長環境のために、最も最適であり得る。
移植片は、軸索束の両端のニューロンが脊髄病変の末端縁の生育可能組織に近接
して存在するように、病変部に培養細胞を伴う膜を配置することにより進行する
。脊髄修復のほかに、移植片物質は、他の種類の神経損傷、例えば視神経損害お
よび末梢神経損害のための架橋として用いられ得る。末梢神経損害修復のための
伸長軸索の移植片は、ＣＮＳと比較して、末梢神経系におけるより寛容な神経成
長環境のために、最も最適であり得る。
【００２３】
in vivoでの軸索再生および機能回復を促すための移植伸長ニューロンの能力
は、脊髄損傷の動物モデルを用いて実証され得る。例えば成体ラットが、外科的
に麻酔され、無菌手術準備がなされる。これらの試験ために、ラットを先ず、一
上肢における機能損失を引き起こすＣ３〜Ｃ４の椎弓切除および頚椎半側切断を
施す前に、前足機能を評価するために、「階段試験」で訓練する。半側切断直後
に、一群の動物に、病変の長さに伸長された伸長軸索を有する膜を移植する。病
変の長さに伸長された伸長軸索を有する膜は、その場合、膜の各端のニューロン
集団が病変の各末端の生育可能組織中に挿入されるように、移植される。第二群
の動物は、対象として未処置のままである。
は、脊髄損傷の動物モデルを用いて実証され得る。例えば成体ラットが、外科的
に麻酔され、無菌手術準備がなされる。これらの試験ために、ラットを先ず、一
上肢における機能損失を引き起こすＣ３〜Ｃ４の椎弓切除および頚椎半側切断を
施す前に、前足機能を評価するために、「階段試験」で訓練する。半側切断直後
に、一群の動物に、病変の長さに伸長された伸長軸索を有する膜を移植する。病
変の長さに伸長された伸長軸索を有する膜は、その場合、膜の各端のニューロン
集団が病変の各末端の生育可能組織中に挿入されるように、移植される。第二群
の動物は、対象として未処置のままである。
【００２４】
移植後１週目の開始時に、背側脊髄を電気生理学的に検査して、病変の近位お
よび遠位領域間の連絡が再確立されたか否かを確定する。
よび遠位領域間の連絡が再確立されたか否かを確定する。
【００２５】
熟練前足機能は、各々５段の作り付けの左右の階段を有するプラスチック箱か
らなる階段装置を用いても評価される。階段は、動物が右前足以外の任意の足で
は右階段に達することができないように、また逆についても同様となるよう、互
いに離される。各階段の５段には小食物ペレットが載せられて、１５分間に各前
足を別々に用いてできるだけ多くの食物ペレットを動物は獲得できる。ラットが
消費したペレットの数は、各試験期間の終わりに計数され、「摂取ペレット数」
として記録される。各動物は、階段試験で、術前、ならびに移植後１、４および
８週目に評価される。移植後８週目に、動物を屠殺し、脊髄の切片を、セロトニ
ン（５−ＨＴ）免疫組織化学的知見のために処理して、下降性セロトニン作動性
繊維を同定する。
らなる階段装置を用いても評価される。階段は、動物が右前足以外の任意の足で
は右階段に達することができないように、また逆についても同様となるよう、互
いに離される。各階段の５段には小食物ペレットが載せられて、１５分間に各前
足を別々に用いてできるだけ多くの食物ペレットを動物は獲得できる。ラットが
消費したペレットの数は、各試験期間の終わりに計数され、「摂取ペレット数」
として記録される。各動物は、階段試験で、術前、ならびに移植後１、４および
８週目に評価される。移植後８週目に、動物を屠殺し、脊髄の切片を、セロトニ
ン（５−ＨＴ）免疫組織化学的知見のために処理して、下降性セロトニン作動性
繊維を同定する。
【００２６】
ヒトにおいて、同様の移植手法が実施できる。例えば、Ｎ−tera２細胞は一般
に、ヒト脳卒中患者の脳への移植に関して評価されている。移植前に、脊髄に対
するあらゆる損害の位置および存在、ならびに損害の容積を、ＭＲＩおよびＣＴ
により診断するのが好ましい。移植のための神経細胞は、前記と同様に伸長され
る。細胞の容積は、伸長される脊髄の損害領域の容積と同一であるのが好ましい
。次に医者が、既知の技法を用いて、脊椎の適切なレベル（単数または複数）を
突き止めて、損害領域、ならびに神経再生を遮断し得るその他の屑を除去する脊
柱管を評価する。次に、伸長軸索が病変部の長さを架橋し、膜の各末端のニュー
ロン集団が病変部の各末端の生育可能組織に挿入されるように、医者は、この領
域に伸長神経細胞の膜を配置する。次に、浅層の場合と同様に、脊椎周囲の層が
閉じられる。外傷後のこの技法の緊急適用の場合には、メチルプレドニソロンが
、通常脊椎損傷用量で手術開始時に投与され、外科医が必要であると考える限り
継続され、これは１週間から数ヶ月であり得る。細胞がレシピエントと組織適合
性である場合には、または医者の判断下での他の情況では、抗拒絶療法は必要と
されない。
に、ヒト脳卒中患者の脳への移植に関して評価されている。移植前に、脊髄に対
するあらゆる損害の位置および存在、ならびに損害の容積を、ＭＲＩおよびＣＴ
により診断するのが好ましい。移植のための神経細胞は、前記と同様に伸長され
る。細胞の容積は、伸長される脊髄の損害領域の容積と同一であるのが好ましい
。次に医者が、既知の技法を用いて、脊椎の適切なレベル（単数または複数）を
突き止めて、損害領域、ならびに神経再生を遮断し得るその他の屑を除去する脊
柱管を評価する。次に、伸長軸索が病変部の長さを架橋し、膜の各末端のニュー
ロン集団が病変部の各末端の生育可能組織に挿入されるように、医者は、この領
域に伸長神経細胞の膜を配置する。次に、浅層の場合と同様に、脊椎周囲の層が
閉じられる。外傷後のこの技法の緊急適用の場合には、メチルプレドニソロンが
、通常脊椎損傷用量で手術開始時に投与され、外科医が必要であると考える限り
継続され、これは１週間から数ヶ月であり得る。細胞がレシピエントと組織適合
性である場合には、または医者の判断下での他の情況では、抗拒絶療法は必要と
されない。
【００２７】
以下の例により本発明をさらに説明するが、本発明はこれらに限定されない。
【００２８】
例
例１：細胞培養
強健ヒトニューロンに分化するこの細胞株の十分特徴づけられた能力のために
、Ｎ−tera２細胞株を選択した（Pleasure et al. 1992, J. Neurosci. 12:1802
-1815; Pleasure, S.J. and Lee, V.M.J. 1993, J.Neurosci. Res. 35:585-602
）。さらに、この細胞株は、一次神経細胞培養の場合と同様の方式で興奮性損傷
に応答することが示されている（Munir et al. 1995, J. Neurosci. 15:7847-78
60）。ＮＴ２細胞は、５％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ、HyClone, Logan, UT）および
１％ペニシリン−ストレプトマイシン（Pen-Strep;Life Technologies）を補充
されたオプティＭＥＭ（Life Technologies, Gaithersburg, MD）培地を有する
培養中に保持された。ＮＴ２細胞をニューロン（ＮＴ２Ｎ）に分化させるために
、ＮＴ２細胞を、１０％ＦＢＳ（HyClone）、抗生物質（１％Pen-Strep;Life Te
chnologies）および１０μＭのレチン酸（Sigma, St.Louis, MO）を補充したＤ
ＭＥＭ中で５週間培養した。培養中のニューロンを単離するために、細胞をトリ
プシン処理し、口焼きパスツールピペットで粉砕して、５％ＦＢＳおよび有糸分
裂阻害剤（１０μＭ５−フルオロ−２’−デオキシウリジン、１０μＭウリジン
および１μＭシトシンβ−アラビノ−フラノシド、Sigma）を補充したＤＭＥＭ
中に９日間再度平板培養した。この操作後に残存する細胞は、９９％神経細胞性
であると確定された。ＮＴ２Ｎニューロンを、当該装置の吸収性膜上に植え付け
、培養を条件調節培地（一次再平板培養からの培地５０％、および５％ＦＢＳを
有するＤＭＥＭ５０％）中で保持した。
、Ｎ−tera２細胞株を選択した（Pleasure et al. 1992, J. Neurosci. 12:1802
-1815; Pleasure, S.J. and Lee, V.M.J. 1993, J.Neurosci. Res. 35:585-602
）。さらに、この細胞株は、一次神経細胞培養の場合と同様の方式で興奮性損傷
に応答することが示されている（Munir et al. 1995, J. Neurosci. 15:7847-78
60）。ＮＴ２細胞は、５％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ、HyClone, Logan, UT）および
１％ペニシリン−ストレプトマイシン（Pen-Strep;Life Technologies）を補充
されたオプティＭＥＭ（Life Technologies, Gaithersburg, MD）培地を有する
培養中に保持された。ＮＴ２細胞をニューロン（ＮＴ２Ｎ）に分化させるために
、ＮＴ２細胞を、１０％ＦＢＳ（HyClone）、抗生物質（１％Pen-Strep;Life Te
chnologies）および１０μＭのレチン酸（Sigma, St.Louis, MO）を補充したＤ
ＭＥＭ中で５週間培養した。培養中のニューロンを単離するために、細胞をトリ
プシン処理し、口焼きパスツールピペットで粉砕して、５％ＦＢＳおよび有糸分
裂阻害剤（１０μＭ５−フルオロ−２’−デオキシウリジン、１０μＭウリジン
および１μＭシトシンβ−アラビノ−フラノシド、Sigma）を補充したＤＭＥＭ
中に９日間再度平板培養した。この操作後に残存する細胞は、９９％神経細胞性
であると確定された。ＮＴ２Ｎニューロンを、当該装置の吸収性膜上に植え付け
、培養を条件調節培地（一次再平板培養からの培地５０％、および５％ＦＢＳを
有するＤＭＥＭ５０％）中で保持した。
【００２９】
例２：伸長細胞の顕微鏡検査
ニコン８００８カメラを備えたニコンＤｉａｐｈｏｔ顕微鏡で、位相差顕微鏡
および顕微鏡写真法を実施した。ツァイスＬＳＭ５（Heidelberg, Germany）で
共焦点顕微鏡検査を実施した。Hiraoka et al. 1987, Science 238:36-41により
記載された逆重畳顕微鏡検査を、冷却ＣＣＤ（Princeton Instruments ,Trenton
, NJ）およびDelta Vision強制反復逆重畳ソフトウェア（Applied Precision, I
ssaquah, WA）を装備したツァイスＡｘｉｏｖｅｒｔ１００顕微鏡で実施した。
および顕微鏡写真法を実施した。ツァイスＬＳＭ５（Heidelberg, Germany）で
共焦点顕微鏡検査を実施した。Hiraoka et al. 1987, Science 238:36-41により
記載された逆重畳顕微鏡検査を、冷却ＣＣＤ（Princeton Instruments ,Trenton
, NJ）およびDelta Vision強制反復逆重畳ソフトウェア（Applied Precision, I
ssaquah, WA）を装備したツァイスＡｘｉｏｖｅｒｔ１００顕微鏡で実施した。
【図１】
軸索の「伸長誘導成長」の過程を示す図である。上図では、アルミニウムブロ
ックに結合された短い膜が長い長方形の膜の上部に置かれる。これらの構造は、
ガス交換口（図示せず）を有するプレキシグラス箱中に封入される。小室がアル
ミニウムブロックにより形成され、この中に哺乳類ＣＮＳニューロンを平板培養
し、３日間組織化させる。上部および底部膜間の縁全体に成長する軸索を含めた
神経網状構造が形成される。下図では、培養を分割し、３．５μｍ／５分の段階
速度で上部膜を底部膜を横断して滑らせることにより反対半分を漸進的に分離す
るコンピュータ制御マイクロステッパーモータ系によるアルミニウムブロックの
動きが示されている。この技法は、２つの膜に及ぶ軸索の繊維束路の伸長誘導性
成長を生じる。
ックに結合された短い膜が長い長方形の膜の上部に置かれる。これらの構造は、
ガス交換口（図示せず）を有するプレキシグラス箱中に封入される。小室がアル
ミニウムブロックにより形成され、この中に哺乳類ＣＮＳニューロンを平板培養
し、３日間組織化させる。上部および底部膜間の縁全体に成長する軸索を含めた
神経網状構造が形成される。下図では、培養を分割し、３．５μｍ／５分の段階
速度で上部膜を底部膜を横断して滑らせることにより反対半分を漸進的に分離す
るコンピュータ制御マイクロステッパーモータ系によるアルミニウムブロックの
動きが示されている。この技法は、２つの膜に及ぶ軸索の繊維束路の伸長誘導性
成長を生じる。
【図２】
統合化ＣＮＳ軸索の伸長誘導性成長を実証する位相差顕微鏡写真である。伸長
２日目（上）、４日目（中）および７日目（下）の漸進的拡張生培養の同一領域
が示されている。各端には、底部膜（右）および上部膜（左）に付着する親およ
び標的ニューロンが存在する。これらのニューロンにまたがって、漸進的伸長軸
索路の大きい束が存在する。棒は、１ｍｍを表す。
２日目（上）、４日目（中）および７日目（下）の漸進的拡張生培養の同一領域
が示されている。各端には、底部膜（右）および上部膜（左）に付着する親およ
び標的ニューロンが存在する。これらのニューロンにまたがって、漸進的伸長軸
索路の大きい束が存在する。棒は、１ｍｍを表す。
【図３】
伸長２日目（左）、４日目（中）および７日目（右）の上部膜の縁の延伸成長
軸索の一領域の位相差顕微鏡写真である。隣接軸索束の段階的接合および上部膜
の縁での束の肥厚に留意。棒は５０μを表す。
軸索の一領域の位相差顕微鏡写真である。隣接軸索束の段階的接合および上部膜
の縁での束の肥厚に留意。棒は５０μを表す。
【図４】
固定培養中の免疫染色微小管タンパク質により明示される、伸長誘導性成長の
７日目の軸索路の典型的蛍光光学顕微鏡写真である。左は、伸長誘導性成長によ
り産生された、平行に整列した多数の長い繊維束軸索路がある(棒＝５０μ)。右
は、微小管の実質的網状構造を実証する大型４０μ繊維束軸索路のわずかな拡大
図である。
７日目の軸索路の典型的蛍光光学顕微鏡写真である。左は、伸長誘導性成長によ
り産生された、平行に整列した多数の長い繊維束軸索路がある(棒＝５０μ)。右
は、微小管の実質的網状構造を実証する大型４０μ繊維束軸索路のわずかな拡大
図である。
Claims (7)
- 【請求項１】 機械的伸長神経細胞を含む組成物。
- 【請求項２】 神経細胞の軸索が０．２ｃｍより長く伸長される、請求項1
に記載の組成物。 - 【請求項３】 神経細胞の軸索が１ｃｍより長く伸長される、請求項1に記
載の組成物。 - 【請求項４】 伸長細胞の産生方法であって、以下の： （ａ）選択細胞を培養すること、 （ｂ）上層膜および下層膜上に、培養細胞が両膜を覆うように培養細胞を平板
培養すること、 （ｃ）培養細胞が機械的に伸ばされ、伸長細胞により連結される2つの集団に
分割されるように、上層膜を下層膜を横断するように動かすこと、 を含む、前記方法。 - 【請求項５】 選択細胞が神経細胞である、請求項4に記載の方法。
- 【請求項６】 動物における神経損傷の処置方法であって、神経損傷を蒙っ
た動物の神経に、請求項1に記載の組成物を神経損害部位またはその付近で移植
することを含む、前記方法。 - 【請求項７】 動物における脊髄損傷の処置方法であって、脊髄損傷を蒙っ
た動物の脊髄に、請求項1に記載の組成物を神経損害部位またはその付近で移植
することを含む方法。
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| US60/149,408 | 1999-08-17 | ||
| PCT/US2000/021078 WO2001012207A1 (en) | 1999-08-17 | 2000-08-02 | Mechanically elongated neuronal cells and methods for producing and using these cells |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2003507089A true JP2003507089A (ja) | 2003-02-25 |
| JP2003507089A5 JP2003507089A5 (ja) | 2007-10-04 |
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Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2001516552A Expired - Fee Related JP4679780B2 (ja) | 1999-08-17 | 2000-08-02 | 機械的伸長神経細胞およびこれらの細胞の産生および使用方法 |
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|---|---|
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| EP (1) | EP1225906B1 (ja) |
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| CA (1) | CA2380943C (ja) |
| DE (1) | DE60040860D1 (ja) |
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| WO (1) | WO2001012207A1 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2009531127A (ja) * | 2006-03-29 | 2009-09-03 | スウェノラ バイオテック エービー | 神経再生装置の製造方法及び型 |
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|---|---|---|---|---|
| US7831305B2 (en) | 2001-10-15 | 2010-11-09 | Advanced Neuromodulation Systems, Inc. | Neural stimulation system and method responsive to collateral neural activity |
| WO2003047422A2 (en) | 2001-12-04 | 2003-06-12 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Device and method using integrated neuronal cells and an electronic device |
| US20160250385A1 (en) * | 2013-11-04 | 2016-09-01 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Neuronal replacement and reestablishment of axonal connections |
| US20170368180A1 (en) * | 2014-12-12 | 2017-12-28 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Methods of promoting nervous system regeneration |
| US11156595B2 (en) | 2015-05-28 | 2021-10-26 | Axogen Corporation | Organotypic DRG-peripheral nerve culture system |
| US11513039B2 (en) | 2015-05-28 | 2022-11-29 | Axogen Corporation | Nerve culture system |
| JP7235509B2 (ja) | 2016-04-14 | 2023-03-08 | ザ トラスティーズ オブ ザ ユニバーシティ オブ ペンシルバニア | 植え込み可能な生きた電極およびその製造方法 |
| CN109628305A (zh) * | 2018-12-12 | 2019-04-16 | 北京理工大学 | 用于体外轴突应力学响应机制研究的多通道差速牵拉装置 |
| WO2021102021A1 (en) * | 2019-11-18 | 2021-05-27 | The Trustees Of The University Of Pennsylvania | Preservation of neuron health and regenerative capacity following nervous system injury |
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|---|---|---|---|---|
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| US5968921A (en) * | 1997-10-24 | 1999-10-19 | Orgegon Health Sciences University | Compositions and methods for promoting nerve regeneration |
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2000
- 2000-08-02 CA CA2380943A patent/CA2380943C/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-08-02 DE DE60040860T patent/DE60040860D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-08-02 AU AU68926/00A patent/AU766096B2/en not_active Expired
- 2000-08-02 WO PCT/US2000/021078 patent/WO2001012207A1/en active IP Right Grant
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- 2000-08-02 US US09/630,461 patent/US6264944B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-08-02 AT AT00957283T patent/ATE414523T1/de not_active IP Right Cessation
- 2000-08-02 DK DK00957283T patent/DK1225906T3/da active
-
2001
- 2001-03-06 US US09/800,395 patent/US6365153B2/en not_active Expired - Lifetime
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| JPN6010041704, Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．， ｖｏｌ．１９， ｐｐ．４２６３−４２６９ （１９９９） * |
| JPN6010041705, Ｎｅｕｒｏｎ， ｖｏｌ．１０， ｐｐ．３４５−３５７ （１９９３） * |
| JPN6010041707, 「細胞の分子生物学（第３版）」（１９９５年７月２０日株式会社ニュートンプレス発行）第１１１９〜１１２ * |
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| JP2009531127A (ja) * | 2006-03-29 | 2009-09-03 | スウェノラ バイオテック エービー | 神経再生装置の製造方法及び型 |
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