JP2003503017A - Dr4抗体とその利用 - Google Patents
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Abstract
Description
止抗体でもよい抗体を含む。
り部分的に決定されると考えられている。しばしば壊死性細胞死と称される細胞
死の一形態は、典型的には、ある種の外傷又は細胞傷害の結果生じる細胞死の病
理的形態として特性付けられる。これに対して、通常は規則的又はコントロール
された状態で進行する細胞死の他の「生理的」形態がある。細胞死のこの規則的
又はコントロールされた形態は、しばしば「アポトーシス」と称される[例えば
、Barrら, Bio/Technology, 12:487-493(1994);Stellerら, Science, 267:14
45-1449(1995)を参照]。アポトーシス性細胞死は、免疫系におけるクローン選
択と胚の発達を含む多くの生理的プロセスにおいて自然に生じる[Itohら,Cell,
66:233-243(1991)]。アポトーシス性細胞死のレベルの減少は、癌、狼瘡、ヘ
ルペスウイスル感染を含む種々の病理的条件に関連している[Thompson, Scienc
e, 267:1456-1462(1995)]。アポトーシス性細胞死のレベルの増加は、エイズ
、アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症、色
素性網膜炎、小脳変性、無形成性貧血、心筋梗塞、脳卒中、再灌流傷害、及び毒
素誘発性肝疾患を含む様々な他の病理状態に関連している[上掲のThompsonを参
照]。
な形態学的及び生化学的変化、例えば細胞質の凝結、原形質膜の微絨毛の喪失、
核の分節化、染色体DNAの分解又はミトコンドリア機能の喪失が伴う。様々な
外因的及び内因的シグナルが、このような形態学的及び生化学的な細胞変化を惹
起又は誘発すると考えられている[Raff, Nature, 356:397-400(1992);Stelle
r, 上掲;Sachsら, Blood, 82:15(1993)]。例えば、ホルモンの刺激、例えば
未成熟胸腺細胞に対する糖質コルチコイドホルモン、並びにある種の成長因子の
退薬により惹起され得る[Watanabe-Fukunagaら, Nature, 356:314-317(1992)
]。また、幾つかの同定された発癌遺伝子、例えばmyc、rel、及びE1A
、及び腫瘍サプレッサー、例えばp53が、アポトーシスの誘発においてある役
割を有していることも報告されている。ある種の化学療法薬及びある種の放射線
も同様にアポトーシス誘発活性を有していることも見出されている[Thompson,
上掲]。
NF-β」すなわち「リンホトキシン」)、CD30リガンド、CD27リガンド
、CD40リガンド、OX-40リガンド、4-1BBリガンド、Apo-1リガ
ンド(Fasリガンド又はCD95リガンドとも称される)、及びApo-2リガ
ンド[トレイル(TRAIL)とも称される]が、サイトカインの腫瘍壊死因子(「TN
F」)ファミリーのメンバーとして同定された[例えば、Gruss及びDower, Blood
, 85:3378-3404(1995);Wileyら, Immunity, 3:673-682(1995);Pittiら, J.
Biol. Chem., 271:12687-12690(1996)]。これらの分子のなかでも、TNF-α
、TNF-β、CD30リガンド、4-1BBリガンド、Apo-1リガンド、及
びApo-2リガンド(TRAIL)は、アポトーシス性細胞死に関与していることが報
告されている。TNF-αとTNF-βの両方とも、感受性腫瘍細胞におけるアポ
トーシス性死を誘発することが報告されている[Schmidら, Proc. Natl. Acad.
Sci., 83:1881(1986);Dealtryら, Eur. J. Immunol., 17:689(1987)]。ゼン
グらは、TNF-αがCD8ポジティブT細胞のポスト刺激性アポトーシスに関
与していることを報告している[Zhengら, Nature, 377:348-351(1995)]。他
の研究者は、CD30リガンドが胸腺における自己反応性T細胞の欠失に関与し
ていることを報告している[Amakawaら, プログラム細胞死に関するコールドス
プリングハーバー研究所のシンポジウム、要約集、第10巻、(1995)]。
びgldと呼称される)における変異が幾つかの自己免疫疾患に関連しており、
Apo-1リガンドが末梢の自己反応性リンパ球のクローン除去の調節において
ある役割を担っていることを示している[Krammerら, Curr. Op. Immunol.,6:2
79-289(1994);Nagataら, Science, 267:1449-1456(1995)]。また、Apo-1
リガンドは、CD4ポジティブTリンパ球及びBリンパ球においてポスト刺激性
アポトーシスを誘発することが報告されており、それらの機能がもはや必要でな
くなった際の活性化リンパ球の除去に関与している[Krammerら, 上掲;Nagata
ら, 上掲]。Apo-1レセプターと特異的に結合するアゴニストのマウスモノ
クローナル抗体は、TNF-αに匹敵するか類似する細胞死滅活性を示すことが
報告されている[Yoneharaら, J. Exp. Med., 169:1747-1756(1989)]。
、特異的な細胞レセプターに結合することにより開始されると考えられている。
約55-kDa(TNFR1)と75-kDa(TNFR2)の2つの異なるTNFレ
セプターが同定されており[Hohmanら, J. Biol. Chem., 264:14927-14934(198
9);Brockhausら, Proc. Natl. Acad. Sci., 87:3127-3131(1990);1991年3月2
0日に公開されたEP417563]、双方のレセプター型に対応するヒト及び
マウスcDNAが単離され、特徴付けされている[Loetscherら, Cell, 61:351
(1990);Schallら, Cell, 61:361(1990);Smithら, Science, 248:1019-1023(
1990);Lewisら, Proc. Natl. Acad. Sci., 88:2830-2834(1991);Goodwinら,
Mol. Cell. Biol., 11:3020-3026(1991)]。広範な多型性が、双方のTNFレ
セプター遺伝子に関連している[例えば、Takaoら, Immunogenetics, 37:199-2
03(1993)を参照]。双方のTNFRは細胞外、膜貫通及び細胞内領域を含む細胞
表面レセプターの典型的な構造を共有する。双方のレセプターの細胞外部分はま
た可溶性TNF結合タンパク質として天然に見出される[Nophar, Yら, EMBO J.
, 9:3269(1990);及びKohno, Tら, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 87:8331
(1990)]。更に最近になって、組換え体可溶性TNFレセプターのクローニング
がヘイル(Hale)らにより報告されている[J. Cell. Biochem. 増補15F, 1991, p
.113(P424)]。
末端から出発して、1から4とされる4つのシステインに富んだドメイン(CR
D)の反復アミノ酸配列パターンを含む。各CRDは約40のアミノ酸長のもの
であり、良好に保存された位置に4から6のシステイン残基を含んでいる[Scha
llら, 上掲;Loetscherら, 上掲;Smithら, 上掲;Nopharら, 上掲;Kohnoら,
上掲]。TNFR1において、4つのCRDのおおよその境界は次の通りである
:CRD1−14から約53までのアミノ酸;CRD2−約54から約97まで
のアミノ酸;CRD3−約98から約138までのアミノ酸;CRD4−約13
9から約167までのアミノ酸。TNFR2において、CRD1は、17から約
54までのアミノ酸を、CRD2は約55から約97までのアミノ酸を;CRD
3は約98から約140までのアミノ酸を;CRD4は約141から約179ま
でのアミノ酸を含む[Bannerら, Cell, 73:431-435(1993)]。また、リガンド
結合におけるCRDの潜在的な役割は前掲のバナー(Banner)らにより記載されて
いる。
Johnsonら, Cell, 47:545(1986);Radekeら, Nature, 325:593(1987)]、B細
胞抗原CD40[Stamenkovicら, EMBO J., 8:1403(1989)]、T細胞抗原OX
40[Malletら, EMBO J., 9:1063(1990)]及びFas抗原[Yoneharaら, 上掲
、及びItohら, 上掲]を含む幾つかの他の細胞表面タンパク質に存在している。
また、CRDはショープ(Shope)及び粘液腫ポックスウィルスの可溶型TNFR(
sTNFR)様のT2タンパク質にも見出されている[Uptonら, Virology, 160
:20-29(1987);Smithら, Biochem. Biophys. Res. Commun., 176:335(1991);
Uptonら, Virology, 184:370(1991)]。これらの配列の最適なアラインメント
は、システイン残基の位置が良好に保存されていることを示している。これらレ
セプターは、しばしば集合的に、TNF/NGFレセプタースーパーファミリー
のメンバーと称される。p75NGFRに関する最近の研究では、CRD1の欠
失[Welcher, A.A.ら, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88:159-163(1991)]又は
このドメインにおける5-アミノ酸の挿入[Yan, H.及びChao, M.V., J. Biol. C
hem., 266:12099-12104(1991)]は、NGF結合にはほとんど又は全く影響を持
たないことが示されている[Yan, H.及びChao, M.V., 上掲]。p75NGFR
はNGF結合に関与せず、そのCRD4と膜貫通領域の間に約60のアミノ酸の
プロリンに富んだ伸展を含む[Peetre, C.ら, Eur. J. Hematol.,41:414-419(1
988);Seckinger, P.ら, J. Biol. Chem., 264:11966-11973(1989);Yan, H.及
びChao, M.V., 上掲]。同様のプロリンに富んだ領域はTNFR2に見出されて
いるが、TNFR1にはない。
されるものと同様のアポトーシス性細胞死をシグナル化し得ることを開示してい
る[Itohら, 上掲]。また、Apo-1抗原の発現は、細胞をTNF-α又は抗A
po-1のマウスモノクローナル抗体で処理した場合に、TNFR1のものと共
にダウンレギュレーションされることが報告されている[Krammerら, 上掲;Nag
ataら, 上掲]。従って、Apo-1及びTNFR1レセプターの双方を同時発現
する株化細胞が、共通のシグナル伝達経路を通して細胞死滅を媒介しているとの
仮説を唱える研究者もいた[同]。
ガンドは、II型の膜貫通タンパク質であり、そのC末端は細胞外にある。これ
に対して、今日までに同定されているTNFレセプター(TNFR)ファミリーの
レセプター類はI型の膜貫通タンパク質である。しかしながら、TNFリガンド
及びレセプターファミリーの双方において、ファミリーメンバー間で同定された
相同性は、主として細胞外ドメイン(「ECD」)において見出されている。TN
F-α、Apo-1リガンド及びCD40リガンドを含むTNFファミリーサイト
カインのいくつかは、細胞表面においてタンパク分解的に切断され;各場合に得
られたタンパク質は、典型的には、可溶性サイトカインとして機能するホモ三量
体分子を形成する。また、TNFレセプターファミリーのタンパク質は、通常、
タンパク分解的に切断され、同族のサイトカインの阻害剤として機能し得る可溶
性レセプターのECDを放出する。
うな新たに同定されたTNFRのメンバーは、CAR1、HVEM及びオステオ
プロテゲリン(osteoprotegerin)(OPG)[Brojatschら, Cell, 87:845-855 (
1996); Montgomeryら, Cell, 87:427-436 (1996); Marstersら, J.Biol.Chem.,
272:14029-14032 (1997); Simonetら, Cell, 89:309-319 (1997)]を含む。シモ
ネット(Simonet)らは、他の周知のTNFR様分子とは異なり、OPGは疎水性
の膜貫通−スパンニング配列を含まないと報告している。
、細胞外のシステインに富んだ反復についてTNFRファミリーに対して類似性
を示し、細胞質死亡ドメイン配列を含む点でTNFR1及びCD95に似ており
、Apo-3と称される、ヒトのポリペプチド天然配列の全長を開示している[M
arstersら,Curr. Biol., 6:1669(1996)もまた参照されたい]。他の研究者によ
れば、Apo-3はDR3、wsl-1及びTRAMPとも称されている[Chinna
iyanら, Science, 274:990(1996);Kitsonら, Nature, 384:372(1996);Bodme
rら, Immunity, 6:79(1997)]。
ンバーを開示している[Panら, Science, 276:111-113(1997)]。DR4cDN
Aは細胞表面タンパク質に特徴的な特徴を持つ468アミノ酸のオープンリーデ
ィングフレームをコードする。パン等は推定シグナルペプチドが分子の開始部(
アミノ酸−23から−1)に存在し、成熟タンパク質はアミノ酸24(Ala)か
ら出発すると記載している。残基108から206は2つのシステインに富む疑
似繰り返し部を含み、TNFR-1(4つの繰り返し部)、DR3(4つの繰り
返し部)、Fas(3つの繰り返し部)及びCAR1(2つの繰り返し部)の対
応する領域に類似している。膜貫通ドメインに続くのは、TNFR1、DR3、
Fas、及びCAR1の死亡ドメインに類似性を持つ70アミノ酸伸展を含む細
胞内領域である。DR4翻訳物は、脾臓、末梢血液白血球、小腸、及び胸腺で検
出されている。さらに、K562赤血白血病細胞、MCF7乳癌細胞及び活性化
T細胞においてもDR4の発現が見られた。パン等は、DR4がApo-2リガ
ンド又はTRAILとして知られているリガンドに対するレセプターであると考
えられることをさらに開示している。
e, 277: 815-818 (1997)においては、Apo-2リガンド(TRAIL)に対す
るレセプターと思われる他の分子が記載されている。この分子は、Apo-2と
呼ばれる(あるいは、DR5とも呼ばれる)。[1998年11月19日発行の
WO98/51793;1998年9月24日発行のWO98/41629を参照のこと]。この分子
は、更に、TRALIL−R、TR6、Tango−63、hAPO8、TRI
CK2又はKILLERに相当するとされている[Screatonら,Curr.Biol., 7:
693-696(1997);Walczakら,EMBO J., 16:5386-5387(1997);Wuら,Nature Gene
tics, 17:141-143(1997);1998年8月20日に発行のWO98/35986;1998
年10月14日に発行のEP870,827;1998年10月22日WO98/46643;19
99年1月21日に発行のWO99/02653;1999年2月25日発行のWO99/09165
;1999年3月11日発行のWO99/11791]。DR4のように、DR5は細胞質
死ドメインを含み、アポトーシスのシグナル伝達が可能であると報告されている
。Apo−2L/TRAIL及びDR5の間で形成された複合体の結晶構造は、
Hymowitzら,Molecular Cell, 4:563-571(1999)に掲載されている。
po-2リガンド(TRAIL)に対する可能なデコイレセプター(decoy receptor)である
として開示されている。Sheridanらは、DcR1がApo-2リガンドの機能をインビト
ロで阻害可能であると報告している。また、TRIDと称されるデコイレセプターの
開示については、Panら, 上掲,が参照される。DCR1は、また、LIT又はT
RAIL−3に相当するとされている[MacFarlane ら,J.Biol.Chem., 272:254
17-25420(1997);Schneiderら,FEBS Letters, 416:329-334(1997);Degli-Espo
stiら,J.Exp.Med., 186:1165-1170(1997);及びMongkolsapayaら,J.Immunol.,
160:3-6(1998)]。
2と呼ばれるレセプターが開示されている。マースターズらは、DcR2が切断
された死亡ドメインを持つ細胞内領域を含み、インビトロで阻害性Apo-2L
レセプターとして機能できることを報告している。 サイトカインのTNFファミリー及びそれらのレセプター類の概説については
、上掲のGruss及びDowerを参照されたい。
素−活性化因子、阻害剤及びエフェクターを含み;線虫(C. elegans)において、
これらの成分はそれぞれ3つの遺伝子、Ced-4、Ced-9及びCed-3に
よりコードされている[Steller, Science, 267:1445(1995);Chinnaiyanら, S
cience, 275:1122-1126(1997); Zouら, Cell, 90: 405-413 (1997)]。TNF
Rファミリーのメンバーの2つ、TNFR1及びFas/Apol(CD95)は
、アポトーシス性細胞死を活性化し得る[Chinnaiyan及びDixit, Current Biolo
gy, 6:555-562(1996);Fraser及びEvan, Cell, 85:781-784(1996)]。また、
TNFR1は転写因子、NF-κBの活性化を媒介することも知られている[Tar
tagliaら, Cell, 74:845-853(1993);Hsuら, Cell, 84:299-308(1996)]。あ
る程度のECD相同性に加えて、これら2つのレセプターは、死亡ドメインとし
て知られているオリゴマー形成界面の細胞内ドメイン(ICD)での相同性を共有
する[Tartaglia, 上掲;Nagata, Cell, 88:355(1997)]。また、死亡ドメイン
はアポトーシスを調節するいくつかの後生動物タンパク質、すなわちFADD/
MORT1、TRADD及びRIPと称されるショウジョウバエタンパク質、リ
ーパー(Reaper)及び哺乳動物タンパク質中においても見出されている[Cleavela
nd及びIhle, Cell, 81:479-482(1995)]。リガンド結合及びレセプターの集団
化に際して、TNFR1及びCD95はFADDを死亡誘導シグナル伝達複合体
に補充すると考えられる。CD95はFADDに直接結合するとされており、T
NFR1はFADDにTRADDを介して間接的に結合する[Chinnaiyanら, Ce
ll, 81: 505-512 (1995); Boldinら, J. Biol. Chem., 270: 387-391 (1995); H
suら, 上掲; Chynnaiyanら, J. Biol. Chem., 271: 4961-5965 (1996)]。FA
DDは、Ced-3-関連プロテアーゼ、MACHα/FLICE(カスパーゼ8
)を死亡シグナル伝達複合体に補充するアダプタータンパク質として提供される
と報告されている[Boldinら, Cell, 85: 803-815 (1996);Muizoら, Cell, 85:
817-827(1996)]。MACHα/FLICEは、インターロイキン-1β変換酵素
(ICE)及びCPP32/Yamaを含むアポトーシス性プロテアーゼのカス
ケードを作動させるトリガーであることがわかり、細胞死プログラムの幾つかの
重要な側面を実行させ得る[Fraser及びEvan, 上掲]。
のIL-1-変換酵素、ICEに関連したシステインプロテアーゼファミリーのメ
ンバーの活性に関与していることが最近開示された。ICE及びCPP32/Y
amaプロテアーゼの活性は、牛痘ウイルス遺伝子、crmAの産物により阻害
され得る[Rayら, Cell, 69:597-604(1992);Tewariら, Cell, 81:801-809(19
95)]。最近の研究では、CrmAがTNFR-及びCD95-誘発細胞死を阻害
し得ることが示されている[Enariら, Nature, 375:78-81(1995);Tewariら, J
. Biol. Chem., 270:3255-3260(1995)]。 テワリ(Tewari)らにより最近概説されているように、TNFR1、TNFR2
及びCD40は、転写因子、NF-KBの活性化を通して、炎症誘発性及び同時
刺激性サイトカイン、サイトカインレセプター、及び細胞接着分子の発現を変調
する[Tewariら, Curr. Op. Genet. Develop., 6:39-44(1996)]。NF-κBは
、そのサブユニットが保存Rel領域を含有する二量体転写因子のファミリーの
原型である[Vermaら, Genes Develop., 9:2723-2735(1996);Baldwin, Ann. R
ev. Immunol., 14:649-681(1996)]。その潜伏形態において、NF-KBはIK
B阻害剤ファミリーのメンバーと複合化しており;所定の刺激に反応してIKB
の不活性化の際に、放出されたNF-KBが、特異的DNA配列と結合する核に
転座して遺伝子転写を活性化する。
4抗体は、DR4及び/又はApo-2リガンド(TRAIL)に付随する生物学
的活性、特にアポトーシスを調節することができ、従って、癌や免疫関連疾患を
含む種々の疾患及び病理学的状態の治療において有用である。本発明の一実施態
様では、DR4抗体はモノクローナル抗体である。
体が提供されている。例えば、4H6抗DR4の軽及び/又は重鎖の一つ以上の
可変ドメイン(又は一つ以上の超可変ドメイン)を含む軽鎖及び/又は重鎖配列
から成るDR4抗体が、ここにおいて開示されている。DR4抗体は軽鎖を含み
、その軽鎖はFigure18A−18C(配列番号:9)のアミノ酸20から126
を含んでなる可変ドメインを含む。そのようなDR4抗体の軽鎖はFigure18A
−18C(配列番号:9)のアミノ酸1から19を含んでなるシグナル配列、又
はヒトCH1、例えばFigure18A−18C(配列番号:9)のアミノ酸127
から233を含んでなるCH1ドメインを、場合によっては含んでもよい。その
他の任意の実施態様では、DR4抗体は重鎖を含み、その重鎖は、Figure18D
−18H(配列番号:12)のアミノ酸の22から145、又はFigure18D−
18H(配列番号:12)のアミノ酸を含んでなる可変ドメインを含む。そのよ
うなDR4抗体の重鎖は、Figure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸
1から19を含んでなるシグナル配列、又はヒトCH1、CH2、及び/又はC
H3ドメインを場合によっては含んでもよい。更に、その他の任意の実施態様で
は、DR4抗体は軽鎖と重鎖を含み、その軽鎖はFigure18A−18C(配列番
号:9)のアミノ酸20から126を含んでなる可変ドメインを含み、重鎖はFi
gure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸20から145(又はFigure1
8D−18H(配列番号:12)のアミノ酸22から145)を含んでなる可変
ドメインを含む。そのようなDR4抗体の軽鎖は、更に、Figure18A−18C
(配列番号:9)のアミノ酸1から19を含んでなるシグナル配列又はFigure1
8A−18C(配列番号:9)のアミノ酸127から233を含んでなるヒトC
H1ドメインを含んでもよく、重鎖は更に、Figure18D−18H(配列番号:
12)のアミノ酸1から19又はヒトCH1、CH2、及び/又はCH3ドメイ
ンを含んでなるシグナル配列を含んでもよい。
離された核酸は抗DR4抗体をコードするDNAを含むか、そのような抗体をコ
ードする核酸配列へ相補的であり、中程度の緊縮又は緊縮条件下においてそれへ
ハイブリッドする。一実施態様では、コード化核酸はポリヌクレオチド配列、例
えば:(a)アミノ酸残基20から残基126をコードするFigure18A−18
Cの核酸配列(すなわち、ヌクレオチド58から60から376から378;配
列番号:7);(b)アミノ酸残基20から残基145をコードするFigure18
D−18Hの核酸配列(すなわち、ヌクレオチド58から60から433から4
35;配列番号:10);又は(c)遺伝子コードの縮重の範囲内の(a)又は
(b)の配列と一致する核酸配列を含んでもよい。本発明は、また、ベクターで
形質導入又は形質転換された宿主細胞によって認識されるコントロール配列へ作
用可能に連結した抗DR4抗体をコードする核酸分子を提供する。ベクター又は
核酸分子を含んでなる宿主細胞が、また提供されている。核酸分子を含んでなる
宿主細胞の培養、及び宿主細胞培養からタンパク質を回収することを含む抗DR
4抗体を製造する方法が、更に提供されている。
提供する。 本発明はまた、一つ以上DR4抗体及び担体、例えば製薬的に許容可能な担体
のような担体を含んでなる組成物を提供する。一実施態様では、そのような組成
物は、製造品又はキットに含まれていてもよい。 更に、DR4抗体の使用に関する治療及び診断方法が提供されている。
Lとしても知られる)という用語は、種々の細胞系譜においてアポトーシスを誘
発する腫瘍壊死因子(TNF)の特定のメンバーを意味する[1997年7月17日発
行のWO 97/25428; Pittiら, J. Biol. Chem., 271, 12687 (1996); Marstersら,
Curr. Biol., 6: 79 (1997); Wiley, S.ら, Immunity, 3: 637 (1995)参照]。
細胞内「死亡ドメイン」を含むTNFレセプターファミリーのメンバーであるD
R4と呼ばれている[Panら, Science, 276: 111 (1997)]。DR4は、また、
1998年7月30日に発行のWO98/32856に記載されている。「細胞死レセプタ
ー4」又は「DR4」なる用語は、ここで用いられる場合、天然配列DR4及び
DR4変異体(ここでさらに定義する)を含む。これらの用語は、ヒトを含む種
々の動物で発現されたDR4を包含する。DR4は、種々のヒト組織系列におい
て自然に起こるように内因的に発現されても、あるいは組換え又は合成法によっ
て発現されてもよい。「天然配列DR4」は、自然から誘導したDR4と同じア
ミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。よって、天然配列DR4は、任意の動
物から自然に発生したDR4のアミノ酸配列を有することができる。このような
天然配列DR4は、自然から単離することができ、あるいは組換え又は合成法に
よって作成することもできる。「天然配列DR4」なる用語は、特にDR4の自
然に発生する切断又は分泌形態(例えば、細胞外配列を含む可溶化形態など)、
自然に発生する変異形態(例えば選択的にスプライシングされた形態)及びDR
4の自然に発生する対立遺伝子変異体を含む。本発明の一実施態様では、天然配
列DR4は、Fig1(配列番号:1)のアミノ酸1から468を含む成熟又は
全長の天然配列DR4である。
ドメインを実質的に有しないDR4の形態を意味する。通常、DR4ECDは、
それらの膜貫通及び/又は細胞質ドメインを1%未満、好ましくはそのようなド
メインを0.5%未満しか持たない。場合によっては、DR4ECDは、Fig
1(配列番号:1)のアミノ酸残基1から218又は残基24から218を含む。 「DR4変異体」とは、全長天然配列ヒトDR4に対してFig1に示した推
定アミノ酸配列(配列番号:1)を有するDR4と少なくとも約80又は85%の
アミノ酸配列同一性を有する生物学的に活性なDR4を意味する。このようなD
R4変異体には、例えば、Fig1の配列(配列番号:1)の配列のN-又はC-末
端において一又は複数のアミノ酸残基が付加、もしくは欠失されたDR4ポリペ
プチドが含まれる。通常、DR4変異体は、Fig1のアミノ酸配列(配列番号
:1)と、少なくとも約80%のアミノ酸配列同一性、より好ましくは少なくと
も約90%のアミノ酸配列同一性、さらにより好ましくは少なくとも約95%の
アミノ酸配列同一性を有している。
ト(%)アミノ酸配列同一性」は、配列を整列させ、最大のパーセント配列同一性
を得るために必要ならば間隙を導入し、如何なる保存的置換も配列同一性の一部
と考えないとした、DR4配列(又はDR4抗体配列)のアミノ酸残基と同一で
ある候補配列中のアミノ酸残基のパーセントとして定義される。パーセントアミ
ノ酸配列同一性を決定する目的のためのアラインメントは、当業者の技量の範囲
にある種々の方法、例えばALIGN(商品名)又はMegalign(DNASTAR)、又はALIGN-2
(Genentechが権限を持ち、1991年12月10日に米国著作権局、に出願された)のよ
うな公に入手可能なコンピュータソフトウエアを使用することにより達成可能で
ある。ALIGN-2プログラムは、UNIX(登録商標)オペレーティングシステム、好 ましくはデジタルUNIX V4.0Dでの使用のためにコンパイルされる。全ての配列比 較パラメータは、ALIGN-2プログラムによって設定され変動しない。当業者は、 比較される配列の全長に対して最大のアラインメントを達成するために必要な任 意のアルゴリズムを含む、アラインメントを測定するための適切なパラメータを 決定することができる。
使用するときは、その自然環境の成分から同定され分離され及び/又は回収され
たポリペプチドを意味する。その自然環境の汚染成分とは、ポリペプチドの診断
又は治療への使用を典型的には妨害する物質であり、酵素、ホルモン、及び他の
タンパク質様又は非タンパク質様溶質が含まれる。好ましい実施態様において、
ポリペプチドは、(1)スピニングカップシークエネーターを使用することにより
、少なくとも15のN末端あるいは内部アミノ酸配列の残基を得るのに充分なほ
ど、あるいは、(2)クーマシーブルーあるいは好ましくは銀染色を用いた非還元
あるいは還元条件下でのSDS-PAGEによる均一性が得られるように充分な
ほど精製される。Apo-2DcRの自然環境の少なくとも1つの成分が存在し
ないため、単離されたポリペプチドには、組換え細胞内のインシトゥーのポリペ
プチドが含まれる。しかしながら、通常は、単離されたポリペプチドは少なくと
も1つの精製工程により調製される。
付随している少なくとも1つの汚染核酸分子から分離された核酸分子である。単
離された核酸分子は、天然に見出される形態あるいは設定以外のものである。故
に、単離された核酸分子は、天然の細胞中に存在する核酸分子とは区別される。
しかし、単離された核酸分子は、例えば、核酸分子が天然の細胞のものとは異な
った染色体位置にある核酸を通常発現する細胞に含まれる核酸分子を含む。
的にプローブ長、洗浄温度、及び塩濃度に依存する経験的な計算である。一般に
、プローブが長くなると適切なアニーリングのための温度が高くなり、プローブ
が短くなると温度は低くなる。ハイブリッド形成は、一般的に、相補的鎖がその
融点に近いがそれより低い環境に存在する場合における変性DNAの再アニール
する能力に依存する。プローブとハイブリッド形成可能な配列との間の所望の相
同性の程度が高くなると、使用できる相対温度が高くなる。その結果、より高い
相対温度は、反応条件をより緊縮性にするが、低い温度は緊縮性を低下させる。
さらに、緊縮性は塩濃度に逆比例する。ハイブリッド形成反応の緊縮性の更なる
詳細及び説明は、Ausubelら, Current Protocols in Molecular Biology, Wiley
Interscience Publishers, (1995)を参照のこと。
温度、例えば、50℃において0.015Mの塩化ナトリウム/0.0015M
のクエン酸ナトリウム/0.1%のドデシル硫酸ナトリウムを用いるもの;(2
)ハイブリッド形成中にホルムアミド等の変性剤、例えば、42℃において50
%(vol/vol)ホルムアミドと0.1%ウシ血清アルブミン/0.1%フィコー
ル/0.1%のポリビニルピロリドン/50mMのpH6.5のリン酸ナトリウ
ムバッファー、及び750mMの塩化ナトリウム、75mMクエン酸ナトリウム
を用いるもの;(3)42℃における50%ホルムアミド、5xSSC(0.7
5MのNaCl、0.075Mのクエン酸ナトリウム)、50mMのリン酸ナト
リウム(pH6.8)、0.1%のピロリン酸ナトリウム、5xデンハード液、
超音波処理サケ精子DNA(50μg/ml)、0.1%SDS、及び10%の
デキストラン硫酸と、42℃における0.2xSSC(塩化ナトリウム/クエン
酸ナトリウム)中の洗浄及び55℃でのホルムアミド、次いで55℃におけるE
DTAを含む0.1xSSCからなる高緊縮性洗浄を用いるものによって同定さ
れる。
Manual (New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)に記載されて
いるように同定され、上記の緊縮性より低い洗浄溶液及びハイブリッド形成条件
(例えば、温度、イオン強度及び%SDS)の使用を含む。中程度の緊縮性条件
は、20%ホルムアミド、5xSSC(150mMのNaCl、15mMのクエ
ン酸三ナトリウム)、50mMリン酸ナトリウム(pH7.6)、5xデンハー
ド液、10%デキストラン硫酸、及び20mg/mLの変性剪断サケ精子DNA
を含む溶液中の37℃での一晩インキュベーション、次いで1xSSC中37−
50℃でのフィルターの洗浄といった条件である。当業者であれば、プローブ長
などの因子に適合させる必要に応じて、どのようにして温度、イオン強度等を調
節するかを認識するであろう。
したコード配列を発現するために必要なDNA配列を指す。例えば原核生物に好
適なコントロール配列は、プロモーター、場合によってはオペレータ配列、及び
リボソーム結合部位を含む。真核生物の細胞は、プロモーター、ポリアデニル化
シグナル及びエンハンサーを利用することが知られている。
る。例えば、プレ配列あるいは分泌リーダーのDNAは、ポリペプチドの分泌に
参画するプレタンパク質として発現されているなら、そのポリペプチドのDNA
に作用可能に結合している;プロモーター又はエンハンサーは、配列の転写に影
響を及ぼすならば、コード配列に作用可能に結合している;又はリボソーム結合
部位は、もしそれが翻訳を容易にするような位置にあるなら、コード配列と作用
可能に結合している。一般的に、「作用可能に結合している」とは、結合したD
NA配列が近接しており、分泌リーダーの場合には近接していて読みフェーズに
あることを意味する。しかし、エンハンサーは必ずしも近接している必要はない
。結合は簡便な制限部位でのライゲーションにより達成される。そのような部位
が存在しない場合は、従来の手法に従って、合成オリゴヌクレオチドアダプター
あるいはリンカーが使用される。
ァ-アミノ酸類に相当する。この定義は、ノルロイシン、オルニチン、及びホモ
シスチンを含むとことを意味する。アミノ酸は、一又は三文字略語のどちらかで
同定される: Asp D アスパラギン酸 Ile I イソロイシン Thr T スレオニン Leu L ロイシン Ser S セリン Tyr Y チロシン Glu E グルタミン酸 Phe F フェニルアラニン Pro P プロリン His H ヒスチジン Gly G グリシン Lys K リジン Ala A アラニン Arg R アルギニン Cys C シスチン Trp W トリプトファン Val V バリン Gln Q グルタミン Met M メチオニン Asn N アスパラギン
クレオチドを引用及び同定するために、ある他の一又は三文字略語が用いられる
。例えば、配列番号:12のアミノ酸残基20では、位置20のアミノ酸残基を
同定するために三文字略語「Xaa」が用いられ、アミノ酸は場合によってグル
タミン又はグルタミン酸でありうる。実施例16及びFigure18Dのヌクレオチ
ド配列では、表記「w」は[a」又は「t」であろうヌクレオチドを表し;「k
」は、「g」又は「t」であろうヌクレオチドを表し;「b」は、「g」又は「
t」又は「c」であろうヌクレオチドを表し;「y」は、「c」又は「t」であ
ろうヌクレオチドを表し;「r」は、「a」又は「g」であろうヌクレオチドを
表し;「s」は、「g」又は「c」であろうヌクレオチドを表し;「m」は、「
a」又は「c」であろうヌクレオチドを表し;及び「n」は、「a」又は「t」
又は「c」又は「g」であろうヌクレオチドを表す。
直接的又は間接的に、実質的にDR4の生物学的活性又は活性化を含む、促進す
る又は向上させることのできる分子を意味し又は記述する。場合によっては、「
アゴニストDR4抗体」は、Apo−2リガンド(TRAIL)として知られる
DR4のリガンドと匹敵する活性を有する抗体である。
用語は、直接的又は間接的に、実質的にDR4の生物学的活性又は活性化を妨げ
る、低下させる又は阻害することのできる分子を意味し又は記述する。
ノクローナル抗体(アゴニスト、アンタゴニスト及び中和又は阻止抗体を含む)、
及び多エピトープ特異性を持つ抗DR4抗体組成物を包含している。ここで使用
される「抗体」は、無傷の免疫グロブリン又は抗体分子、ポリクローナル抗体、
多重特異性抗体(即ち、少なくとも2つの無傷の抗体から形成される二重特異性
抗体)、及びそれらがここに記載した所望のアゴニスト特性を有する限り免疫グ
ロブリン断片(例えばFab、F(ab')2及びFv)を含む。
チドである。天然抗体は、通常はヘテロ四量体糖タンパク質であり、2つの同一
な軽(L)鎖と2つの同一な重(H)鎖とからなる。典型的には、各軽鎖は共有
ジスルフィド結合によって重鎖に結合しているが、ジスルフィド結合の数は異な
る免疫グロブリンアイソタイプの重鎖の間で変化する。また各重鎖及び軽鎖は、
規則的に離間した鎖間ジスルフィド架橋を有する。各重鎖は、一端に多数の定常
ドメインに続く可変ドメイン(VH)を持つ。各軽鎖は、一端に可変ドメイン(
VL)を、他端に定常ドメインを有し;軽鎖の定常ドメインは重鎖の第1の定常
ドメインと合わされ、軽鎖の可変ドメインは重鎖の可変ドメインと合わされる。
特定のアミノ酸残基が軽鎖と重鎖の可変ドメイン間の界面を形成すると考えられ
ている[Chothiaら, J. Mol. Biol., 186: 651-663 (1985); Novotny及びHaber,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 82: 4592-4596 (1985)]。任意の脊髄動物種か
らの抗体の軽鎖は、それらの定常ドメインのアミノ酸配列に基づいて、カッパ(6
)及びラムダ(8)と呼ばれる2つの明確に区別される型に分けることができる。そ
れらの重鎖の定常ドメインのアミノ酸配列に応じて、免疫グロブリンは異なるク
ラスに分けられる。免疫グロブリンの5つの大きなクラス:IgA、IgD、I
gE、IgG及びIgMがあり、そのうちの幾つかは、サブクラス(アイソタイ
プ)、例えば、IgG-1、IgG-2、IgG-3、及びIgG-4;IgA-1
及びIgA-2に更に分けることができる。免疫グロブリンの異なるクラスに対
応する重鎖定常ドメインは、各々、アルファ、デルタ、イプシロン、ガンマ、及
びミューと呼ばれる。
メインを含む。抗体断片の例は、Fab、Fab'、F(ab')2及びFv断片、
ダイアボディ(diabodies)、一本鎖抗体分子、及び抗体断片から形成された多重
特異性抗体を含む。
に対する結合性及び特異性の使用される可変ドメインの或る一部を記述するのに
用いられる。しかしながら、可変性は抗体の可変ドメインを通して常に均一に分
布しているわけではない。典型的には、軽鎖と重鎖の両方の可変ドメインにおい
て相補性決定領域(CDR)又は超可変ドメインと呼ばれる3つのセグメントに
集中している。可変ドメインのより高度に保存される部分はフレームワーク(F
R)と呼ばれる。天然重鎖及び軽鎖の可変ドメインは各々4つのFR領域を含み
、これは大きくβ-シート配置をとり、3つのCDRに結合してループ状結合を
形成するが、β-シート構造の一部を形成する場合もある。各鎖のCDRは、F
R領域の直近に保持され、他の鎖からのCDRとともに抗体の抗原結合部位の形
成に寄与する[Kabat, E.A.ら, Sequences of Proteins of Immunological Inte
rest, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1987)参照]。定常ドメ
インは抗体の抗原への結合には直接含まれないが、抗体依存的細胞毒性における
抗体の関与といった様々なエフェクター機能を示す。
の集団から得られる抗体を称する、すなわち、集団を構成する個々の抗体が、少
量存在しうる自然に生じる可能な突然変異を除いて同一である。モノクローナル
抗体は高度に特異的であり、一つの抗原部位に指向する。さらに、異なる決定基
(エピトープ)に対応する異なる抗体を典型的に含む従来の(ポリクローナル)抗体
調製物とは異なり、各モノクローナル抗体は抗原の単一の決定基に指向する。
拘わらず、キメラ、定常ドメインを有する抗DR4抗体の可変(高頻度可変を含
む)ドメインをスプライシングすることによって生産されるハイブリッド及び組
換え抗体(例えば「ヒト化」抗体)、又は重鎖を有する軽鎖、又は異種タンパク
質との融合体、並びにそれが所望の生物的活性を有する限り抗体断片(例えばF
ab、F(ab')2及びFv)を特に含む。例えば、米国特許第4,816,567号、及
びMageら, Monoclonal Antibody Productuon Techniques and Applications, pp
.79-97(Marcel Dekker, Inc.:ニューヨーク, 1987)を参照。
たという抗体の性質を示し、抗体を何か特定の方法で生産しなければならないこ
とを意味するものではない。例えば、本発明に従って使用されるモノクローナル
抗体は、最初にKohler及びMilsteinによって、Nature, 256:495 (1975)に記載さ
れたハイブリドーマ法によって作ることができ、あるいは例えば米国特許第4,81
6,567号に記載された組換えDNA法によって作ることができる。「モノクロー
ナル抗体」は、例えば、McCaffertyら, Nature, 348:552-554(1990)に記載され
た技術を用いてファージライブラリから単離することができる。
グロブリン鎖、あるいはそれらの断片(例えばFv、Fab、Fab'、F(ab'
)2あるいは抗体の他の抗原結合サブ配列)であって、非ヒト免疫グロブリンに由
来する最小配列を含むものである。大部分においてヒト化抗体はレシピエントの
相補性決定領域(CDR)の残基が、マウス、ラット又はウサギのような所望の特
異性、親和性及び能力を有する非ヒト(ドナー抗体)のCDRの残基によって置換
されたヒト免疫グロブリン(レシピエント抗体)である。ある場合には、ヒト免疫
グロブリンのFvフレームワーク領域(FR)残基は、対応する非ヒト残基によっ
て置換されている。更に、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、移入されたC
DRもしくはフレームワーク配列にも見出されない残基を含んでもよい。これら
の修飾は抗体の特性を更に洗練し、最適化するために行われる。一般に、ヒト化
抗体は、全てあるいはほとんど全てのCDR領域が非ヒト免疫グロブリンのもの
に対応し、全てあるいはほとんど全てのFR領域がヒト免疫グロブリン共通配列
のものである、少なくとも1つ、典型的には2つの可変ドメインの実質的に全て
を含む。ヒト化抗体は、最適には免疫グロブリン定常領域又はドメイン(Fc)、
典型的にはヒトの免疫グロブリンの定常領域又はドメインの少なくとも一部を含
んでなる。
ノ酸配列を有するもの、及び/又はここにおいて開示されたヒト抗体を製造する
いずれかの技術を使用して製造されたものである。ヒト抗体この定義は、特に非
ヒト抗原結合残基を含んでなるヒト化抗体を除く。ヒト抗体は、この分野で知ら
れている種々の技術を使用することによって生産することが可能である。 一実施態様では、ヒト抗体は、ヒト抗体を発現するファージライブラリーから
選択される(Vaughanら, Nature Biotechnology 14:309-314 (1996):Sheetsら.
PNAS, (USA)95:6157-6162(1998);Hoogenboom及びWinter, J. Mol. Biol., 227:
381 (1991);Marksら, J. Mol. Biol., 222:581 (1991))。同様に、ヒト抗体は
、ヒト免疫グロブリン座位をトランスジェニック動物、例えば内在性免疫グロブ
リン遺伝子が部分的又は完全に不活性化されたマウスに導入することにより産生
することができる。この試みでは、ヒト抗体の生産が観察され、遺伝子再構成、
構築(ジーンアセンブリ)及び抗体レパートリーを含む、あらゆる点でヒトに見
られるものと密接に類似しているヒト抗体の産生が観察される。このアプローチ
法は、例えば米国特許第5,545,807号;第5,545,806号;第5
,569,825号;第5,625,126号;第5,633,425号;第5
,661,016号、及び次の科学文献:Marksら, Bio/Technology 10:779-783
(1992);Lonbergら, Nature 368: 856-859 (1994);Morrisonら, Nature 368:
812-13 (1994);Fishwildら, Nature Biotechnology 14: 845-51 (1996);Neube
rger, Nature Biotechnology 14:826 (1996); Lonberg及びHuszar, Intern. Rev
. Immunol. 13:65-93 (1995)。あるいは、ヒト抗体は、標的抗原に対する抗体を
生産するヒトBリンパ球の固定化によって調製されてもよい(そのようなBリン
パ球は、個々から回収されてもよいし、インビトロで免疫化してもよい)。例え
ば、Coleら, Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss. p.77
(1985)及びBoernerら, J. Immunol., 147(1):86-95(1991);及び米国特許第5
,750,373号を参照のこと。
gG重鎖のC末端領域を定義するために使用される。Fc領域は、天然配列Fc
領域又は変異体Fc領域である。IgG重鎖のFc領域の境界は極めて僅かに変
化するかも知れないが、ヒトIgG重鎖Fc領域はCys226の位置のアミノ
酸残基、又は約位置Pro230からカルボキシル末端まで伸展すると定義され
る(ここにおいては、Kabatら,上掲に記載の番号方式を使用)。免疫グロブリン
のFc領域は、一般的に、二つの定常ドメイン、CH2ドメイン及びCH3ドメ
インを含み、場合によってはCH4ドメインを含む。 個々における「Fc領域鎖」とは、Fc領域の二つのポリペプチドのうちの一
つを意味する。
は通常アミノ酸残基で約231からアミノ酸残基で約340まで伸展する。CH
2ドメインは、他のドメインと密接には対をなさないという点で独特である。む
しろ、二つのN-結合分岐炭水化物鎖が未変性の天然IgG分子の二つのCH2
ドメインの間に介在されている。炭水化物はドメイン−ドメイン対形成に対する
代替物を提供し、CH2ドメインを安定化させるのに役立つと推測されてきた。
Burton, Molec. Immunol. 22:161-206 (1985)。ここにおけるCH2ドメインは
、天然配列CH2ドメイン又は変異体CH2ドメインであってもよい。
を含む(すなわち、IgGのアミノ酸残基で約位置341からアミノ酸残基で約
位置447)。ここにおけるCH3領域は、天然配列CH3ドメイン又は変異体
CH3ドメインでもよい(例えば、その一つの鎖の導入された「突出部」ともな
うCH3ドメイン、及びその他の鎖の相当する導入された「空洞」;米国特許第
5,821,333号を参照のこと)。そのような変異体CH3ドメインは、こ
こにおいて記載の多特異性(例えば、二重特異性)抗体を作製するために使用さ
れうる。
Pro230の伸展として一般に定義されている(Burton, Molec. Immunol. 22:
161-206 (1985))。他のIgGアイソタイプのヒンジ領域は、重鎖間S-S結合を
形成する最初と最後のシステイン残基を同じ位置に配することにより、IgG1
と整合させられうる。ここにおけるヒンジ領域は、天然配列ヒンジ領域又は変異
体ヒンジ領域であってもよい。変異体ヒンジ領域の二つのポリペプチド鎖は、一
般的に、少なくともポリペプチド鎖当たり少なくとも一つのシステイン残基を保
持し、変異体ヒンジ領域の二つのポリペプチド鎖は、二つの鎖の間でジスフィル
ド結合を形成できる。ここにおける好ましいヒンジ領域は、天然配列ヒトヒンジ
領域で、例えば天然配列ヒトIgG1ヒンジ領域である。
機能」を有する。模範的な「エフェクター機能」は、C1q結合を含む;補体依
存性細胞障害性(CDC);Fcレセプター結合;抗体依存性細胞障害活性(AD
CC);ファゴサイトーシス(食作用);細胞表層レセプターの下方制御(例えば
、B細胞レセプター;BCR)、など。このようなエフェクター機能は、一般的
に、結合ドメインと結合するFc領域を必要とし(例えば、抗体可変ドメイン)
、そのような抗体エフェクター機能を評価するための分野で知られた種々のアッ
セイを使用して評価できる。
アミノ酸配列を含む。「変異体Fc領域」は、少なくとも一つのアミノ酸修飾に
よって天然配列Fc領域のアミノ酸配列とは異なるアミノ酸配列を含む。好まし
くは、変異体Fc領域は、天然配列Fc領域又は親ポリペプチドのFc領域と比
較し、少なくとも一つの一アミノ酸置換を有する、例えば、天然配列Fc領域又
は親ポリペプチドのFc領域において、約1から約10アミノ酸置換、及び好ま
しくは約1から約5アミノ酸置換である。ここにおける変異体Fc領域は、好ま
しくは、天然配列Fc領域及び/又は親ポリペプチドのFc領域と少なくとも約
80%配列同一性、及びそれと同時に最も好ましくは少なくとも約90%配列同
一性、それと同時にさらに好ましくは少なくとも約95%配列同一性を有する。
)(例えば、ナチュラルキラー(NK)細胞、好中球、及びマクロファージ)を発
現する非特異的細胞傷害性細胞が標的細胞上の結合抗体を認識し、続いて標的細
胞の溶解を生じさせる細胞性反応に相当する。ADCC、NK細胞を媒介する一
次細胞は、FCγRIIIのみを発現し、一方で単球はFCγRI、FCγRII及び
FCγRIIIを発現する。造血性細胞でのFcR発現は、Ravetch及びKinet, Ann
u.Rev.Immunol., 9:457-92(1991)の464ページの表3に要約されている。対象
分子のADCC活性を評価するために、米国特許第5,500,362号又は第
5,821,337号に記載されているようなインビトロADCCアッセイがお
こなわれてもよい。そのようなアッセイのための有用なエフェクター細胞は、末
梢血単核細胞(PBMC)及びナチュラルキラー細胞(NK)細胞を含む。ある
いは、又は付加的には、対象分子のADCC活性は、インビボで評価されてもよ
い、例えばClynesら.PNAS(USA), 95:652-656(1998)に開示されたような動物モデ
ルにおいて。
エフェクター機能を果たす。好ましくは、細胞は、少なくともFCγRIIIを発
現し、ADCCエフェクター機能を果たす。ADCCを媒介するヒト白血球の例
は、末梢血単核細胞(PBMC)、ナチュラルキラー(NK)細胞、単球、細胞
傷害性T細胞及び好中球を含む;PBMC類及びNK細胞が好まれる。エフェク
ター細胞は、その天然ソースより単離されてもよい;例えばここにおいて記載の
血液又はPBMC類である。
レセプターを記述するために使用される。好適なFcRは、天然配列ヒトFcR
である。さらに好適なFcRは、IgG抗体(γレセプター)に結合し、FcγR
I、FcγRII及びFcγRIIIサブクラスのレセプターを含むものであり、こ
れらのレセプターの対立遺伝子変異体及び選択的スプライシング型を含む。Fc
γRIIレセプターは、FcγRIIA(「活性化レセプター」)及びFcγRIIB(
「阻害レセプター」)を含み、それらは、主としてその細胞質ドメインにおいて
異なる類似のアミノ酸配列を有する。活性化FcγRIIAは、その細胞質ドメイ
ンに、免疫レセプターチロシン−ベース活性化モチーフ(ITAM)を有する。
阻害レセプターFcγRIIBは、その細胞質ドメインに、免疫レセプターチロシ
ン−ベース活性化モチーフ(ITAM)を有する(Daeron, Annu. Rev. Immunol.,
15:203-234(1997)に概説されている)。FcRsはRavetch及びKinet, Annu. R
ev. Immunol 9:457-92 (1991); Capelら, Immunomethods 4:25-34 (1994);及びd
e Hasら, J. Lab. Clin. Med. 126:330-41 (1995)において概説されている。将
来同定されるものも含む他のFcRsが、ここにおける「FcR」なる用語によ
って包含される。この用語は胎児への母性IgGsの移動の原因である新生児レ
セプター、FcRnもまた含む(Guyerら, J. Immumol. 117:587 (1976)及びKim
ら, J. Immunol. 24:249 (1994))。
に関する。補体活性化経路は、同系の抗原と複合化した分子(例えば抗体)へ補
体系(C1q)の最初の構成物の結合によって開始される。補体の活性化を評価
するために、補体依存性細胞毒性(CDC)アッセイを、例えばGazzano-Santoro
ら, J. Immunol. Methods 202:163 (1996)に記載されているように実施すること
ができる。
比較し、抗原に対する抗体の親和性に改良を生じせしめる、抗体の一つ以上のC
DRにおける一つ以上の改良をともなうものである。好ましい親和性成熟抗体は
、標的抗原に対してナノモル又はピコモルの親和性を有する。親和性成熟抗体は
、当該分野において知られる方法によって生産される。Marksら. Bio/Technolog
y, 10:779-783(1992)は、VH及びVLドメイン混合による親和性成熟について
記載している。CDR及び/又はフレームワーク残基のランダム突然変異誘発は
、Barbasら, Proc Nat Acad. Sci, USA 91: 3809-3813(1994); Schier ら, Gene
, 169:147-155(1995);Yeltonら, J. Immunol., 155:1994-2004(1995);Jackson
ら, J. Immunol., 154(7):3310-9(1995);及びHawkinsら, J. Mol. Biol., 226:
889-896(1992)に記載されている。
、少なくともインビボ又はエキソビボ或いはApo−2リガンド(TRAIL)
へ結合した一型の哺乳類細胞におけるアポトーシス(アゴニスト又は刺激方式、
或いはアンタゴニスト又は遮断方式)を通してを含めた、DR4活性又はDR4
活性化を調節する能力を有していることを意味する。
型的には、細胞質の凝結、原形質膜の微絨毛の喪失、核の分節化、染色体DNA
の分解又はミトコンドリア機能の喪失を含む一又は複数の特徴的な細胞変化を伴
う、哺乳動物における細胞死の規則的又はコントロールされた形態を指す。この
活性は、例えば細胞生死判別アッセイ、FACS分析又はDNA電気泳動法等、
全て従来から知られている方法により決定し測定することができる。
する、哺乳動物における生理学的状態を指すか記述する。癌の例には、これらに
限定されるものではないが、癌腫、リンパ腫、芽細胞腫、肉腫、及び白血病が含
まれる。このような癌のより特定の例には、扁平上皮細胞癌、小細胞肺癌、非小
細胞肺癌、肺腺癌、肺扁平上皮癌、胃腸癌、Hodgkin's及び非Hodgkin'sリンパ腫
、膵臓癌、神経膠芽細胞腫、子宮頚癌、神経膠腫、卵巣癌、、肝癌及び肝臓癌の
ような肝臓癌、膀胱癌、乳癌、結腸癌、結腸直腸癌、子宮体又は子宮癌、唾液腺
癌、腎臓細胞癌及びWilms'腫瘍のような腎臓癌、基底細胞癌、黒色腫、前立腺癌
、産卵口癌、甲状腺癌、精巣癌、食道癌、及び様々な種類の頭部及び頸部の癌が
含まれる。
な状態をを引き起こし、仲介し、または寄与するような疾患を意味する。また、
免疫反応の促進又は処置が、疾患の進行に対して改善的な効果を有するような疾
患をも含む。この用語には、自己免疫疾患、免疫媒介炎症誘発性疾患、非免疫媒
介炎症誘発性疾患、感染性疾患、および免疫不全性疾患が含まれる。免疫関連炎
症誘発性疾患の例として、そのいくつかは免疫又はT細胞媒介であり、全身性エ
リトマトーデス、間接リウマチ、若年性慢性関節炎、脊椎関節症、全身性硬化症
(強皮症)、特発性炎症誘発性筋疾患、(皮膚筋炎、多発性筋炎)、シェーグレ
ン症候群、全身性血管炎、サルコイドーシス、自己免疫性溶血性貧血、(免疫性
汎血球減少症、発作性夜間血色素尿)、自己免疫性血小板減少症(特発的血小板
減少性紫斑病、免疫媒介血小板減少症)、甲状腺炎(グレーブ疾患、ハシモト甲
状腺炎、若年性リンパ性甲状腺炎、萎縮性甲状腺炎)、真性糖尿病、免疫性腎臓
疾患(糸状体腎炎、尿細管間質性腎炎)、特発性脱髄性多発神経障害、Guillain
-Barre症候群、及び慢性炎症誘発性脱髄性多発神経障害のような中枢及び抹消神
経系の脱髄性疾患、感染性肝炎(A、B、C、D、E型肝炎及び他の非肝炎性ウ
ィルス)のような肝胆道疾患、自己免疫性慢性活性肝炎、原発性胆汁性肝硬変、
肉芽腫性肝炎、及び硬化性胆管炎、炎症誘発性腸疾患(潰瘍性大腸炎、クローン
疾患)のような炎症誘発性及び線維性肺疾患、グルテン感受性腸疾患、及びフィ
ップル疾患、水泡性ヒス疾患を含む自己免疫性又は免疫媒介性皮膚疾患、多形性
紅斑及び接触皮膚炎、乾癬、喘息のようなアレルギー性疾患、アレルギー性鼻炎
、アトピー性皮膚炎、食物過敏症及びジンマシン、好酸球性肺炎のような肺の免
疫学的疾患、特発性肺線維症及び高感受性間質性肺炎、移植片拒絶及び移植片対
宿主の疾患を含む、移植関連疾患である。感染性疾患にはエイズ(HIV感染)
、肝炎A、B、C、D及びE、細菌性感染症、真菌性感染症、原生動物感染症、
寄生虫感染症が含まれる。
いられ、正常又は健康な組織の破壊が個々の哺乳動物の彼もしくは彼女自身の組
織成分に対する体液性又は細胞内免疫反応から発症する哺乳動物における疾患又
は状態のことをいう。例としては、限定されるものではないが、エリトマトーデ
ス、甲状腺炎、リウマチ性関節炎、乾癬、多発性硬化症、自己免疫糖尿病、及び
炎症誘発性腸疾患(IBD)である。
細胞の成長を阻害する化合物又は組成物のことを称する。従って、成長阻害剤の
例には、S期の遺伝子を過発現させる細胞の割合を著しく減少させるようなもの
である。成長阻害剤の例には、細胞周期の進行をブロックする薬剤(S期以外の
時点において)、例えばG1停止及びM相停止を誘発する薬剤が含まれる。伝統
的なM期ブロッカーには、ビンカス(ビンクリスチン及びビンブラスチン)、タ
キソール、トポIIインヒビター、例えばドキソルビシン、エピルビシン、ダウノ
ルビシン、エトポシド、及びブレオマイシンが含まれる。G1を停止させるこれ
らの薬剤、例えばDNAアルキル化剤、例えばタモキシフェン、プレドニソン、
ダカーバジン、メクロレタミン、シスプラチン、メトトレキセート、5-フルオ
ロウラシル、及びara-CがS相停止に溢流する。更なる情報は、Murakamiら
により「細胞分裂周期の調節、オンコジーン、及び抗新生物薬」と題された、癌
の分子的基礎、Mendelsohn及びIsrael編、第1章(WB Saunders;Philadelphia,
1995)、特に13頁に見出すことができる。
胞に対する細胞毒性が低く、より活性な親形態に、酵素的に活性化又は転換され
得る製薬的に活性な物質の先駆体又は誘導体形態を意味する。例えば、Wilman,
「Prodrugs in Cancer Chemotherapy」, Biochemical Society Transactions, 1
4, pp.375-382, 615th Meeting Belfast(1986)及びStellaら,「Prodrugs:A Chem
ical Approach to Targeted Drug Delivery」, Directed Drug Delivery, Borch
ardtら,(編), pp.247-267, Humana Press(1985)を参照。 限定するものではない
が、本発明のプロドラッグには、ホスファート含有プロドラッグ、チオホスファ
ート含有プロドラッグ、スルファート含有プロドラッグ、ペプチド含有プロドラ
ッグ、D-アミノ酸変性プロドラッグ、グリコシル化プロドラッグ、βラクタム
含有プロドラッグ、任意に置換されたフェノキシアセトアミド含有プロドラッグ
又は任意に置換されたフェニルアセトアミド含有プロドラッグ、より活性のある
細胞毒のない薬剤に転換可能な5-フルオロシトシン及び他の5-フルオロウリジ
ンプロドラッグが含まれる。限定するものではないが、本発明で使用されるプロ
ドラッグ形態に誘導体化可能な細胞障害剤の例には、下記の化学療法剤が含まれ
る。
妨害し、及び/又は細胞の破壊を引き起こす物質のことをいう。この用語は放射
活性アイソトープ(例えばAt211,I131,I125,Y90,Re186,Re1
88,Sm153,Bi212,P32,及びLuの放射性アイソトープ)、化
学療法剤、及び細菌性、真菌性、植物又は動物起源、又はそれらのフラグメント
の酵素的に活性な毒素のようなものを含むことが意図されている。
オテパ及びシクロホスファミド(CYTOXAN(商品名))のようなアルキル化剤;ブス
ルファン、インプロスルファン及びピポスルファンのようなスルホン酸アルキル
類、;ベンゾドーパ(benzodopa)、カルボコン、メツレドーパ(meturedopa)、及
びウレドーパ(uredopa)のようなアジリジン類;ウレドーパ(uredopa);アルトレ
ートアミン(altretamine)、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホラミド
、トリエチレンチオホスホラミド(triethylenethiophosphaoramide)及びトリメ
チローロメラミン(trimethylolomelamine)を含むエチレンイミン類及びメチラメ
ラミン類;アセトゲニン(acetogenins)(特にブラタシン(bullatacin)及びブラ
タシノン(bullatacinone));カンプトセシン(合成類似体トポテカン(topoteca
n)を含む);ブリオスタチン;カリスタチン(callystatin);CC−1065(
そのアドゼレシン(adozelesin)、カルゼレシン(carzelesin)及びバイゼレシン(b
izelesin)合成類似体を含む);クリプトフィシン(cryptophycin)(特にクリプ
トフィシン1及びクリプトフィシン8);ドラスタチン(dolastatin );デユカ
ロマイシン(duocarmycin )(合成類似体、KW-2189及びCBI-TMIを含む); エレ
トロビン(eleutherobin);パンクラチスタチン(pancratistatin );サルコデ
イチン(sarcodictyin);スポンジスタチン(spongistatin );クロランブシル
、クロロナファジン(chlornaphazine)、チョロホスファミド(cholophosphamide)
、エストラムスチン、メクロレタミン、メクロレタミンオキシドヒドロクロリド
、メルファラン、ノベンビチン(novembichin)、フェネステリン(phenesterine)
、プレドニムスチン(prednimustine)、トロフォスファミド(trofosfamide)、ウ
ラシルマスタードなどのナイトロジェンマスタード;エネジイン(enediyne) 抗
生物質(例えば、カリケアマイシン(calicheamicin)、特にカリケアマイシンγ
1 I及びカリケアマイシンθI 1、例えば、Agnew Chem Intl. Ed. Engl., 33:
183-186(1994)を参照のこと;ダイネミシンA(dynemicinA)を含むダイネミシ
ン(dynemicin);エスペラマイシン(esperamicin); 同様にネオカルチノスタ
チン発光団及び関連色素蛋白エネジイン(enediyne) 抗生物質発光団)、アクラ
シノマイシン(aclacinomysins)、アクチノマイシン、オースラマイシン(authram
ycin)、アザセリン、ブレオマイシン(bleomycins)、カクチノマイシン(cactinom
ycin)、カラビシン(carabicin)、カリミノマイシン(carminomycin)、カルジノ
フィリン(carzinophilin)、クロモマイシン、ダクチノマイシン、ダウノルビシ
ン、デトロビシン(detorubicin)、6-ジアゾ-5-オキソ-L-ノルロイシン、ド
キソルビシン(モルフォリノ−ドキソルビシン、シアノモルフォリノ−ドキソル
ビシン、2−ピロリノ−ドキソルビシン及びデオキシドキソルビシン)、エピル
ビシン、エソルビシン(esorubicin)、イダルビシン、マセロマイシン(marcello
mycin)、マイトマイシン(mitomycins)、マイコフェノール酸(mycophenolic ac
id)、ノガラマイシン(nogalamycin)、オリボマイシン(olivomycins)、ペプロマ
イシン、ポトフィロマイシン(potfiromycin)、ピューロマイシン、クエラマイシ
ン(quelamycin)、ロドルビシン(rodorubicin)、ストレプトニグリン、ストレプ
トゾシン、ツベルシジン(tubercidin)、ウベニメクス、ジノスタチン(zinostati
n)、ゾルビシン(zorubicin)などの抗生物質;メトトレキセート及び5−フルオ
ロウラシル(5−FU)のような抗-代謝産物;デノプテリン(denopterin)、メト
トレキセート、プテロプテリン(pteropterin)、トリメトレキセート(trimetrexa
te)のような葉酸類似体;フルダラビン(fludarabine)、6-メルカプトプリン、
チアミプリン、チオグアニンのようなプリン類似体;アンシタビン、アザシチジ
ン(azacitidine)、6-アザウリジン(azauridine)、カルモフール、シタラビン、
ジデオキシウリジン、ドキシフルリジン、エノシタビン(enocitabine)、及びフ
ロキシウリジン(floxuridine)、5−FUのようなピリミジン類似体;カルステ
ロン(calusterone)、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メ
ピチオスタン、テストラクトン(testolactone)のようなアンドロゲン類;アミノ
グルテチミド、ミトタン、トリロスタンのような抗副腎剤;フロリン酸(frolini
c acid)のような葉酸リプレニッシャー(replenisher);アセグラトン;アルドホ
スファミド;グリコシド;アミノレブリン酸;アムサクリン(amsacrine);ベス
トラブシル(bestrabucil);ビサントレン(bisantrene);エダトラキセート(edat
raxate);デフォファミン(defofamine);デメコルシン(demecolcine);ジアジコ
ン(diaziquone);エルフォルニチン(elfornithine);酢酸エリプチニウム(ellip
tinium acetate);エトグルシド(etoglucid);硝酸ガリウム;ヒドロキシ尿素;
レンチナン;ロニダミン(lonidamine);メイタンシン(maytansine)及びアンサマ
イトシン(ansamitocin )のようなメイタンシノイド(maytansinoid);ミトグアゾ
ン(mitoguazone);ミトキサントロン;モピダモール(mopidamol);ニトラクリン
(nitracrine);ペントスタチン;フェナメット(phenamet);ピラルビシン;ポド
フィリン酸(podophyllinic acid);2-エチルヒドラジド;プロカルバジン;P
KS(登録商標);ラゾキサン(razoxane);シゾフィラン;スピロゲルマニウム(s
pirogermanium);テニュアゾン酸(tenuazonic acid);トリアジコン(triaziquon
e);2,2',2''-トリクロロトリエチルアミン;トリコテセン(trichothecenes)
(特に、T−2トキシン、ベラキュリンA(verracurin A)、ロリデンA(roridin
A)及びアングイデン(anguidine));ウレタン;ビンデシン;ダカーバジン;マ
ンノムスチン(mannomustine);ミトブロニトール;ミトラクトール(mitolactol)
;ピポブロマン(pipobroman);ガシトシン(gacytosine);シトシンアラビノシド
(「Ara-C」);シクロホスファミド;チオテパ;タキソイド、例えばパクリタ
キセル(タキソール(登録商標)、Bristol-Myers Squibb Oncology, Princeton,
NJ)、及びドキセタキセル(タキソテア(登録商標)、Rhone-Poulenc Rorer, An
tony, France);クロランブシル;ゲンシタビン(gemcitabine);6-チオグアニ
ン;メルカプトプリン;メトトレキセート;シスプラチン、カルボプラチンのよ
うなプラチナ類似体;ビンブラスチン;プラチナ;エトポシド(VP−16);
イフォスファミド;マイトマイシンC;ミトキサントン;ビンクリスチン;ビノ
レルビン;ナベルビン(navelbine);ノバントロン(novantron);テニポシド;ダ
ウノマイシン;カルミノマイシン;アミノプテリン;キセローダ(xeloda);イバ
ンドロナート(ibandronate);CTP-11;トポイソメラーゼインヒビターRF
S2000;ジフルオロメチロールニチン(DMFO);レチノイン酸;エスペラ
マイシン;カペシタビン(capecitabine);並びに上述したものの製薬的に許容可
能な塩類、酸類又は誘導体が含まれる。また、この定義には、腫瘍に対するホル
モン作用を調節又は阻害するように働く抗ホルモン剤、例えばタモキシフェン、
ラロキシフェン(raloxifene)、4(5)-イミダゾール類を阻害するアロマターゼ
、4-ヒドロキシタモキシフェン、トリオキシフェン(trioxifene)、ケオキシフ
ェン(keoxifene)、LY117018、オナプリストーン(onapristone)、及びト
レミフェン(Fareston)を含む抗エストロゲン;及び抗アンドロゲン、例えばフル
タミド(flutamide)及びニルタミド(nilutamide)、ビカルタミド、ロイプロリド
、及びゴセレリン;並びに上記のものの製薬的に許容可能な塩類、酸類又は誘導
体が含まれる。
あって、他の細胞に対して細胞間メディエータとして作用するものの包括的な用
語である。そのようなサイトカインの例としては、リンフォカイン、モノカイン
、及び伝統的なポリペプチドホルモンを挙げることができる。サイトカインには
、成長ホルモン、例えばヒト成長ホルモン、N−メチオニルヒト成長ホルモン、
及びウシ成長ホルモン;副甲状腺ホルモン;チロキシン;インスリン;プロイン
スリン;リラクシン;プロリラクシン;卵胞刺激ホルモン(FSH)のような糖
タンパク質;副甲状腺刺激ホルモン(TSH)、及び黄体形成ホルモン(LH)
;肝臓成長因子;繊維芽細胞成長因子;プロラクチン;胎盤ラクトゲン;腫瘍壊
死因子−α及び−β;マレリアン(mullerian)阻害物質;マウス性腺刺激ホルモ
ン関連ペプチド;インヒビン;アクチビン;血管内皮成長因子;インテグリン;
トロンボポエチン(TPO);NGF−β、NT−3、NT−4、NT−6、BD
NF、CNTF、GDNF、AL−1あるいは他のeph受容体ファミリーのリ
ガンド等の神経因子あるいは神経成長因子;血小板成長因子;TGF−αあるい
はTGF−βのようなトランスフォーミング成長因子(TGF);インスリン様
成長因子I及びII;エリスロポイエチン(EPO);オステオインダクティブ因子
;インターフェロンα、β、γのようなインターフェロン;マクロファージ−C
SF(M−CSF)のようなコロニー刺激因子(CSF);顆粒球−マクロファ
ージ−CSF(GM−CSF)及び顆粒球−CSF(G−CSF);IL−1、I
L−1α、IL−2、IL−3、 IL−4、IL−5、IL−6、IL−7、
IL−8、IL−9、IL−11、IL−12等のインターロイキン(IL);
TNF−α又はTNF−βのような腫瘍壊死因子;及びLIF及びキットリガン
ド(KL)を含む他のポリペプチド因子が含まれる。本明細書において、サイト
カインなる用語は天然源由来あるいは組換え細胞培養由来のタンパク質及び天然
配列サイトカインの生物的に活性な等価物を含む。
予防的療法及び防護的療法を称する。 「治療的有効量」という用語は、哺乳類の疾病や疾患の治療のために有効な薬
剤の量に相当する。癌の場合は、治療的有効量の薬剤は、癌細胞の数を減少させ
;腫瘍の大きさを小さくし;癌細胞の周辺器官への浸潤を阻害(すなわち、ある
程度に遅く、好ましくは止める)し;腫瘍の転移を阻害(すなわち、ある程度に
遅く、好ましくは止める)し;腫瘍の成長をある程度阻害し;及び/又は疾患に
関連する一つ或いはそれ以上の症状をある程度和らげることが可能である。ある
程度、薬剤は、成長を妨げ及び/又は現存の癌細胞を殺すことが可能で、細胞分
裂停止性及び/又は細胞障害性である。癌治療に対しては、効力は、例えば病状
の進行時間(TTP)の評価、又は応答速度(RR)の決定及び/又は全生存を評価
することにより測定される。
を含む哺乳類と分類される全ての動物に相当する。好ましくは、哺乳類はヒトで
ある。
ローナル、モノクローナル、ヒト化、二重特異性及びヘテロ抱合体抗体が含まれ
る。これらの抗体はアゴニスト、アンタゴニスト又は阻止抗体であってよい。
方法は当業者に知られている。ポリクローナル抗体は、哺乳動物において、例え
ば免疫化剤、及び所望するのであればアジュバントを、一又は複数回注射するこ
とで発生させることができる。典型的には、免疫化剤及び/又はアジュバントを
複数回皮下又は腹腔内注射することにより哺乳動物に注射する。免疫化剤は、D
R4ポリペプチド(又はDR4ECD)又はその融合タンパク質を含みうる。免
疫化剤を、免疫化される哺乳動物で免疫原性が知られたタンパク質に抱合させる
のが有用である。そのような免疫原性タンパク質の例は、限定するものではない
が、キーホール・リンペット(keyhole limpet)ヘモシアニン、血清アルブミン、
ウシサイログロブリン及び大豆トリプシンインヒビターが含まれる。使用され得
るアジュバントの例には、フロイント完全アジュバント及びMPL-TDMアジ
ュバント(モノホスホリル脂質A、合成トレハロースジコリノミコラート)が含ま
れる。免疫化プロトコールは、過度の実験なく当業者により選択されるであろう
。哺乳動物から採血し、血清を検定してDR4抗体価を求める。望まれるならば
、抗体価が増加又は平坦化するまで哺乳動物に追加免疫を施す。
ル抗体は、Kohler及びMilstein, Nature, 256: 495 (1975)に記載されているよ
うなハイブリドーマ法を使用することで調製することができる。ハイブリドーマ
法では、マウス、ハムスター又は他の適切な宿主動物を、典型的には免疫化剤に
より免疫化することで、免疫化剤に特異的に結合する抗体を生成するかあるいは
生成可能なリンパ球を誘発する。また、リンパ球をインビトロで免疫化してもよ
い。 免疫化剤は、典型的にはDR4ポリペプチド(又はDR4ECD)又はその融
合タンパク質、例えばCR4ECD-IgG融合タンパク質を含む。あるいは、
免疫化剤は、Apo-2LのDR4への結合に参加する一又はそれ以上のアミノ
酸を有するDR4の断片又は一部を含んでもよい。好ましい実施態様では、免疫
化剤は、実施例1に記載するようなIgG配列に融合したDR4の細胞外ドメイ
ン配列を含む。
用され、あるいは非ヒト哺乳動物源が望まれている場合は、脾臓細胞又はリンパ
節細胞が使用される。次いで、リンパ球をポリエチレングリコール等の適当な融
合剤を用いて不死化株化細胞と融合させてハイブリドーマ細胞を形成する[Godi
ng, Monoclonal Antibodies: Principles and Practice, Academic Press, (198
6) pp. 59-103]。不死化株化細胞は、通常は、形質転換した哺乳動物細胞、特
に齧歯動物、ウシ、及びヒト由来の骨髄腫細胞である。通常、ラット及びマウス
の骨髄腫細胞が使用される。ハイブリドーマ細胞は、好ましくは、未融合の不死
化細胞の生存又は成長を阻害する一又は複数の物質を含有する適切な培地で培養
される。例えば、親細胞が、酵素のヒポキサンチングアニンホスホリボシルトラ
ンスフェラーゼ(HGPRT又はHPRT)を欠いていると、ハイブリドーマの培地は、典
型的には、ヒポキサチン、アミノプチリン及びチミジンを含み(「HAT培地」)
、この物質がHGPRT欠乏細胞の増殖を阻止する。
安定した高レベルの抗体発現を支援し、HAT培地のような培地に対して感受性
であるものが望ましい。より好ましい不死化株化細胞はマウス骨髄腫株であり、
これは例えばカリフォルニア州サンディエゴのSalk Institute Cell Distributi
on Centerやバージニア州マナッサスのアメリカン・タイプ・カルチャー・コレ
クションより入手可能である。このようなマウスミエローマ株化細胞は、下記実
施例2に記載するP3X63AgU.1である。ヒトモノクローナル抗体を産生
するためのヒト骨髄腫及びマウス-ヒト異種骨髄腫株化細胞も開示されている[K
ozbor, J. Immunol., 133:3001 (1984)、Brodeurら, Monoclonal Antibody Prod
uction Techniques and Applications, Marcel Dekker, Inc., New York, (1987
) pp. 51-63]。
の存在について検定する。好ましくは、ハイブリドーマ細胞によって産生された
モノクローナル抗体の結合特異性は、免疫沈降あるいはラジオイムノアッセイ(
RIA)又は酵素結合免疫測定法(ELISA)等のインビトロ結合検定法によっ
て測定する。このような技術及びアッセイは、当該分野において公知である。モ
ノクローナル抗体の結合親和性は、例えばMunson及びPollard, Anal. Biochem.,
107:220 (1980)によるスキャッチャード分析法によって測定することができる
。 所望のハイブリドーマ細胞が同定された後、クローンを制限希釈工程を経てサ
ブクローニングし、標準的な方法で増殖させることができる[Goding, 上掲]。
この目的のための適当な培地には、例えば、ダルベッコの改変イーグル培地及び
RPMI-1640培地が含まれる。あるいは、ハイブリドーマ細胞は哺乳動物
においてインビボで腹水として成長させることもできる。 サブクローンによって分泌されるモノクローナル抗体は、例えばプロテインA
−セファロース法、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィー法、ゲル電気泳
動法、透析法又はアフィニティークロマトグラフィー等の従来の免疫グロブリン
精製方法によって培地又は腹水液から分離又は精製される。
号に記載された方法により作成することができる。本発明のモノクローナル抗体
をコードするDNAは、常套的な方法によって(例えば、マウス抗体の重鎖及び
軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合可能なオリゴヌクレオチドプローブを使
用して)、容易に単離し配列決定することができる。本発明のハイブリドーマ細
胞はそのようなDNAの好ましい供給源となる。ひとたび単離されたら、DNA
は発現ベクター内に配することができ、これが宿主細胞、例えばサルCOS細胞
、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、あるいは免疫グロブリンタンパク
質を生成しない骨髄腫細胞内に形質移入され、組換え宿主細胞内でモノクローナ
ル抗体の合成をすることができる。また、DNAは、例えば相同マウス配列に換
えてヒト重鎖及び軽鎖定常ドメインのコード配列を置換することにより[米国特
許第4,816,567号;Morrisonら, 上掲]、又は免疫グロブリンコード配列に非免
疫グロブリンポリペプチドのコード配列の一部又は全部を共有結合することによ
り修飾することができる。このような非免疫グロブリンポリペプチドは、本発明
の抗体の定常ドメインの代わりに置換するか、本発明の抗体の一つの抗原結合部
位の可変ドメインの代わりに置換し、キメラ性二価抗体を産生することができる
。
る。これらの抗体の、ここで4E7.24.3及び4H6.17.8、1H5.
25.9、4G7.18.8、及び5G11.17.1と呼ばれるものは、AT
CCに寄託された。一実施態様では、本発明のモノクローナル抗体は、ATCC
の下に寄託されたハイブリドーマ細胞系によって分泌されたモノクローナル抗体
と同じ生物学的特性を有する。「生物学的特性」という用語は、モノクローナル
抗体のインビトロ及び/又はインビボ活性又は特性、例えばDR4に特異的に結
合する、あるいはDR4活性化(又はDR4関連活性)を阻止する、誘発する又
は促進する能力を意味するように用いられる。例によると、阻止抗体は、DR4
へのApo−2の結合又は哺乳類細胞(例えば癌細胞)でのApo−2リガンド
誘発アポトーシスを阻止する。本明細書に開示するように(Figure 6を参照の
こと)、モノクローナル4E7.24.3はDR4への特異的結合性(Apo-
2へは幾分の交差反応性を持つ)、アポトーシスを誘発できること、及びDR4
を阻止できないことで特徴付けられる。モノクローナル抗体4H6.17.8は
、DR4への特異的結合性(Apo-2へは幾分の交差反応性を持つ)、アポト
ーシスを誘発できること、及びDR4を阻止できることで特徴付けられる。ここ
に開示されているように、インビボ腫瘍モデルにおいて、4H6.17.8抗体
は、4E7.24.3抗体よりもさらに協力な抗癌活性を示す。更に、4E7.
24.3抗体は、DR4へのApo−2リガンドの結合を阻止できなかったにも
関わらず抗腫瘍活性を示した。この知見は、DR4上のと同じか、代わってDR
4上のApo−2リガンド結合部位と重なる、或いはApo−2リガンドをDR
4への結合を妨げる立体構造を形成するかどちらかのエピトープを有する抗DR
4抗体は、アポトーシス又は抗腫瘍活性の為に必須又は必要ではないことを示唆
している。しかしながら、そのようなエピトープ又は立体構造を有するDR4抗
体は、そのようなアポトーシス又は抗腫瘍活性の増大した能率又は効力を示す可
能性がある。1H5.25.9、4G7.18.8及び5G11.17.1抗体
の特性及び活性はまた、下記の実施例に記載されている。場合によっては、本発
明のモノクローナル抗体は、ここに開示した4E7.24.3及び4H6.17
.81H5.25.9、4G7.18.8及び/又は5G11.17.1抗体と
同じエピトープに結合する。このことは、ここ及び実施例に記載するような種々
のアッセイを実施することにより決定できる。例えば、モノクローナル抗体が、
ここにおいて特別に言及したDR4抗体と同じ特異性を有するか否かを決定する
ために、下記の実施例に記載するもののようなDR4阻止アッセイ又はアポトー
シス誘発アッセイにおいて、その活性を比較することができる。
ル抗体の軽鎖及び重鎖可変ドメインは配列が決定され、4H6.17.8抗体の
キメラ型が構築された(ここにおいて、「キメラ4H6抗体」と呼ばれる)。本
発明は、抗DR4キメラ抗体の種々の型が、ここに記載されているような治療的
及び/又は診断上の有用性を有することを考慮している。キメラ、ハイブリッド
又は組み換え体抗DR4抗体(例えば、さらに下記に記載のダイアボディー(dia
bodies)、トリアボディ(triabodies)と同様の)は、全長重鎖及び軽鎖(例えば
、Figure18A−18Hに示されている軽鎖及び重鎖)又はその断片、例えばF
ab、Fab'、F(ab')2又はFv断片、その軽鎖又は重鎖の単体又は二量体
、その重又は軽鎖がリンカー分子で結合している又はさらに他の型の抗体ドメイ
ンで結合している軽又は重鎖の可変ドメイン(超可変ドメイン)を有する単鎖F
vを含む。
8A−18C(配列番号:9)のアミノ酸20から126を含んでなる可変ドメ
インを含む。そのようなDR4抗体の軽鎖は、Figure18A−18C(配列番号
:9)のアミノ酸1−19を含んでなるシグナル配列、又はFigure18A−18
C(配列番号:9)のアミノ酸127−233を含んでなるヒトCH1ドメイン
を任意に含んでもよい。その他の任意の実施態様では、DR4抗体は重鎖を含み
、その重鎖は、Figure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸20から1
45又はFigure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸22から145を
含んでなる可変ドメインを含む。そのようなDR4抗体の重鎖は、Figure18D
−18H(配列番号:12)のアミノ酸1−19を含んでなるシグナル配列、又
はFigure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸146−476を含んで
なるヒトCH1、CH2、CH3ドメインを任意に含んでもよい。更なるその他
の任意の実施態様では、DR4抗体は軽鎖及び重鎖を有し、その軽鎖は、Figure
18A−18C(配列番号:9)のアミノ酸20から126を含んでなる可変ド
メインを含み、その重鎖は、Figure18D−18H(配列番号:12)のアミノ
酸20から145(又はFigure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸2
2から145)を含んでなる可変ドメインを含む。そのDR4抗体の軽鎖は、Fi
gure18A−18C(配列番号:9)のアミノ酸1−19を含んでなるシグナル
配列、又はFigure18A−18C(配列番号:9)のアミノ酸127−233を
含んでなるヒトCH1ドメインをさらに含んでもよく、重鎖は、Figure18D−
18H(配列番号:12)のアミノ酸1−19を含んでなるシグナル配列、又は
Figure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸146−476を含んでな
るヒトCH1、CH2、CH3ドメインを任意に含んでもよい。
いる、4H6抗体軽鎖又は重鎖の一つ以上のCDRドメイン又はフレームワーク
ドメインを含む。例えば、DR4ドメイン抗体は、Figure18A−18CのCD
R1、CDR2、及び/又はCDR3の一つ以上、又はFigure18D−18Hの
CDR1、CDR2、及び/又はCDR3の一つ以上を含んでもよい。DR4ド
メイン抗体は、Figure18A−18CのFR1、FR2、FR3及び/又はFR
4の一つ以上を含んでもよい。
超可変領域)配列(Figure18A−18Hにて同定)を含む、ここにおいて記載
の抗体配列の種々の領域又はドメインが、アミノ酸組成に関して改変されてもよ
いことが考慮されている。例えば、アミノ酸の一つ以上の保存的な置換は、Figu
re18A−18C又はFigure18D−18Hに提供されている可変ドメインにお
いて作製されてもよいこよが考慮されている。また、アミノ酸修飾は、Figure1
8A−18Hに示されている可変ドメインにおいて同定されているCDR又はフ
レームワーク領域のいずれか一つ以上において作製が可能である。
は他の生物学的特性を改良することが望ましい。抗体のアミノ酸配列変異体は、
適当なヌクレオチド変化を抗体DNAに導入することにより、又はペプチド合成
により調製される。そのような変異体は、例えば、ここの例の抗体のアミノ酸配
列内の残基の欠失、及び/又は挿入及び/又は置換を含む。欠失、挿入、及び置
換の任意の組み合わせは、最終構造物に達するまでなされるが、その最終構造物
は所望の特徴を有する。また、アミノ酸変化は、グリコシル化部位の数の変化な
どの変異抗体の翻訳後過程を変更しうる。そのような改変は、親ペプチドで作製
される、及び/又は配列が決定されている際に修飾抗体アミノ酸配列へ導入され
る。
Cunningham及びWells(Science 244: 1081-1085 (1989))に記載されているよう
に「アラニンスキャンニング突然変異誘発」と呼ばれる。ここで、標的残基の残
基又は基が同定され(例えば、arg, asp, his, lys,及びglu等の荷電残基)、中
性又は負荷電アミノ酸(最も好ましくはアラニン又はポリペプチドアニリン)に
置換され、アミノ酸と抗原との相互作用に影響を及ぼす。次いで置換に対する機
能的感受性を示すこれらのドメインは、置換部位において又はそれに対して更な
る或いは他の変異体を導入することにより精密にされる。即ち、アミノ酸配列変
異を導入する部位は予め決定されるが、変異自体の性質は予め決める必要はない
。例えば、与えられた部位における性能を分析するために、alaスキャンニング
又はランダム突然変異誘発を標的コドン又は領域で実施し、発現された抗体を所
望の活性についてスクリーニングする。
の範囲のアミノ-及び/又はカルボキシル末端融合物、並びに一又は複数のアミ
ノ酸残基の配列内挿入物を含む。末端挿入物の例は、N-末端メチオニル残基を
持つ抗体又は細胞傷害性薬剤に融合した抗体を含む。抗体分子の他の挿入変異体
は、抗体の血清半減期を向上させる酵素(例えば、ADEPTのための)又はポ
リペプチド又はPEGの抗体のN-又はC-末端への融合物を含む。
おいて少なくとも一つのアミノ酸残基が除去され、その位置に異なる残基が挿入
されている。置換突然変異について最も興味深い部位は高頻度可変領域を含むが
、FR交互変化も考慮される。保存的置換は、「好ましい置換」と題して表1に
示す。これらの置換が生物学的活性の変化をもたらす場合、表1に「例示的置換
」と名前を付けた又はアミノ酸の分類を参照して以下に更に記載するような、よ
り実質的な変化を導入し、、生成物をスクリーニングしてよい。
骨格の構造、例えばシート又は螺旋配置、(b)標的部位の電荷又は疎水性、又
は(c)側鎖の嵩を維持しながら、それらの効果において実質的に異なる置換基
を選択することにより達成される。天然発生残基は共通の側鎖特性に基づいて群
に分けることができる: (1)疎水性:ノルロイシン, met, ala, val, leu, ile; (2)中性の親水性:cys, ser, thr; (3)酸性:asp, glu; (4)塩基性:asn, gln, his, lys, arg; (5)鎖配向に影響する残基:gly, pro; 及び (6)芳香族:trp, tyr, phe。 非保存的置換は、これらの分類の一つのメンバーを他の分類に交換することを
必要とするであろう。 変異抗体の正しい配置の維持に含まれない任意のシステイン残基は、一般的に
セリンで置換し、分子の酸化的安定性を向上させて異常な架橋を防止する。逆に
、抗体にシステイン結合を付加して、その安定性を向上させてもよい。
又は複数の高頻度可変領域残基の置換を含む。一般的に、さらなる発展のために
得られた変異体は、それらが生成された親抗体に比較して向上した生物学的特性
を有している。そのような置換変異体を生成する簡便な方法は、この分野で公知
の方法を用いるファージを使用する親和性突然変異である。簡潔に言えば、高頻
度可変領域部位(例えば、6−7部位)を突然変異させて各部位における全ての
可能なアミノ酸置換を生成させる。このように生成された抗体変異体は、繊維状
ファージ粒子から、各粒子内に充填されたM13の遺伝子III産物への融合物と
して表示される。ファージ表示変異体は、次いで、ここに開示されるようなそれ
らの生物学的活性(例えば、結合親和性)についてスクリーニングされる。改変
の候補となる高頻度可変領域部位を同定するために、アラニンスキャンニング突
然変異誘発を実施し、抗原結合に有意に寄与する高頻度可変領域残基を同定する
ことができる。あるいは、又はそれに加えて、抗原-抗体複合体の結晶構造を分
析して抗体と抗原との接点を同定するのが有利である場合もある。このような接
触残基及び隣接残基は、ここに述べた技術に従う置換の候補である。そのような
変異体が生成されたら、変異体のパネルにここに記載するようなスクリーニング
を施し、一又は複数の関連アッセイにおいて優れた特性を持つ抗体を更なる開発
のために選択する。
可変ドメイン、超可変ドメイン、又はフレームワーク配列の一つ以上に対して、
少なくとも80%、好ましくは少なくとも90%、及びさらに好ましくは少なく
とも95%アミノ酸配列同一性を有する可変ドメイン配列を含んでなる軽鎖及び
/又は重鎖を含んでもよい。
架橋」という用語は、一(又は単)分子を形成するための、少なくとも二つのI
gG分子の結合を意味する。DR4抗体は種々のリンカー分子を使用して架橋さ
れてもよく、好ましくはDR4抗体は、抗IgG分子、補体、化学修飾又は分子
工学を使用して架橋される。一度抗体が表層膜へ結合すると、補体が抗体分子に
対して比較的に高い親和性を有することは、当該分野において熟練した者にとっ
ては歓迎されることである。従って、細胞表層膜へ結合している二つ以上の抗D
R4抗体を連結するための架橋分子に、補体を使用してもよいと考えられる。種
々のマウスIgアイソタイプの中で、IgM、IgG2a及びIgG2b(例え
ば、1H5、4G7、及び5G11抗体)は、補体を固定することが知られてい
る。従って、マウスIgG2クラスへ属する、下記の実施例において記載されて
いる抗体は、ウサギ補体の存在下におけるアポトーシス活性のために試験された
。インビトロにおける、架橋抗体(Apo−2Lに匹敵する)のアポトーシス活
性は、補体又はIgG−Fcクロスリンカーが、例えば癌細胞のアポトーシスの
ためのDR4抗体のオリゴマー形成の誘導に有用であることを示唆する。また、
種々の他の抗DR4抗体の架橋は、ヤギ抗マウスIgG Fc又はヤギ抗ヒトI
gG Fcのどちらかを使用した実施例に記載されている。実施例に記載されて
いるインビボ研究では、投与の前に投与されたDR4抗体が架橋しなかった場合
でさえ、アポトーシス活性がなお観察されたことが示されている。
る。当該分野の熟練者は、当該分野で知られている技術及びここにおけるDR4
抗体を使用して、そのような二量体又は多価型を組み立てることができる。 本発明の抗体は一価抗体であってもよい。一価抗体の調製方法は当該分野にお
いてよく知られてる。例えば、一つの方法は免疫グロブリン軽鎖と修飾重鎖の組
換え発現を含む。重鎖は一般的に、重鎖の架橋を防止するようにFc領域の任意
のポイントで切断される。あるいは、関連したシステイン残基を他のアミノ酸残
基で置換するか欠失させて架橋を防止する。
断片、特にFab断片の調製は、当該分野において知られている慣用的技術を使
用して達成できる。例えば、消化はパパインの使用により行うことができる。パ
パイン消化の例は、94/12/22に公開された国際特許出願第WO94/2
9348号、及び米国特許第4,342,566号に記載されている。抗体のパ
パイン消化は、典型的には、Fab断片と呼ばれ、各々が単一の抗原結合部位を
有する2つの同一の抗原結合断片と、残りのFc断片を生成する。ペプシン処理
により、2つの抗原結合部位を有し、抗原の架橋が尚も可能なF(ab')2断片
が得られる。
の第1定常ドメイン(CH1)を含む。Fab'断片は、抗体のヒンジ領域から一
又は複数のシステインを含む重鎖CH1ドメインのカルボキシ末端に幾つかの残
基が付加されているということで、Fab断片とは異なっている。Fab'-SH
とは、定常ドメインのシステイン残基が遊離のチオール基を担持しているFab
'に対するここでも命名である。F(ab’)2抗体断片は、本来は、それらの間
にヒンジシステインを有するFab’断片の対として生産された。抗体断片の他
の化学的結合もまた知られている。
に、一本鎖Fv断片も産生されうる。このような一本鎖断片の種々のリンカーを
用いた結合は、Korttら, Protein Engineering, 10: 423-433 (1997)に記載され
ている。 上記に記載の抗体に加えて、キメラ又はハイブリッド抗体が、架橋剤を含む合
成タンパク質化学における周知の方法を用いてインビトロで調製されうると考え
られる。例えば、免疫毒素はジスルフィド交換反応を用いて、又はチオエーテル
結合の形成により作成することができる。この目的に好適な試薬の例には、イミ
ノチオレート及びメチル-4-メルカプトブチルイミデートが含まれる。
ばマウス)抗体のヒト化形とは、キメラ免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖ある
いはその断片(例えばFv、Fab、Fab'、F(ab')2あるいは抗体の他の
抗原結合性サブ配列)であって、非ヒト免疫グロブリンに由来する最小配列を含
むものである。ヒト化抗体はレシピエントの相補性決定領域(CDR)の残基が、
マウス、ラット又はウサギのような所望の特異性、親和性及び能力を有する非ヒ
ト種(ドナー抗体)のCDRの残基によって置換されたヒト免疫グロブリン(レシ
ピエント抗体)を含む。ある場合には、ヒト免疫グロブリンのFvフレームワー
ク残基は、対応する非ヒト残基によって置換されている。また、ヒト化抗体は、
レシピエント抗体にも、移入されたCDRもしくはフレームワーク配列にも見出
されない残基を含んでいてもよい。一般に、ヒト化抗体は、全てあるいはほとん
ど全てのCDR領域が非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、全てあるいはほと
んど全てのFR領域がヒト免疫グロブリン共通配列のものである、少なくとも1
つ、典型的には2つの可変ドメインの実質的に全てを含む。ヒト化抗体は、最適
には免疫グロブリン定常領域(Fc)、典型的にはヒトの免疫グロブリンの定常領
域の少なくとも一部を含んでなる[Jonesら, Nature, 321:522-525 (1986); Rie
chmann ら, Nature, 332:323-329 (1988); 及びPresta, Curr. Op Struct. Biol
., 2:593-596 (1992)]。
化抗体には非ヒト由来の一又は複数のアミノ酸残基が導入されている。これら非
ヒトアミノ酸残基は、しばしば、典型的には「移入」可変ドメインから得られる
「移入」残基と称される。ヒト化は基本的にウィンター(Winter)及び共同研究者
の方法[Jonesら, Nature, 321:522-525 (1986)、Riechmannら, Nature, 332:32
3-327 (1988)、Verhoeyenら, Science, 239:1534-1536 (1988)]に従って、齧歯
動物のCDR又はCDR配列でヒト抗体の対応する配列を置換することにより実
施される。よって、このような「ヒト化」抗体は、無傷のヒト可変ドメインより
実質的に少ない分が非ヒト種由来の対応する配列で置換されたキメラ抗体である
(米国特許第4,816,567号)。実際には、ヒト化抗体は典型的には幾つかのCDR
残基及び場合によっては幾つかのFR残基が齧歯類抗体の類似部位からの残基に
よって置換されたヒト抗体である。
重鎖可変ドメインの両方の選択が非常に重要である。「ベストフィット法」に従
うと、齧歯動物抗体の可変ドメインの配列を既知のヒト可変ドメイン配列ライブ
ラリ全体に対してスクリーニングする。齧歯動物のものと最も近いヒトの配列を
次にヒト化抗体のヒトフレームワーク(FR)として受け入れる[Simsら, J. Imm
unol., 151:2296 (1993);Chothia及びLesk, J. Mol. Biol., 196:901 (1987)]
。他の方法では、軽鎖又は重鎖の特定のサブグループのヒト抗体全てのコンセン
サス配列から誘導される特定のフレームワークを使用する。同じフレームワーク
を幾つかの異なるヒト化抗体に使用できる[Carterら, Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 89:4285 (1992);Prestaら, J. Immunol., 151:2623 (1993)]。
てヒト化することが重要である。この目標を達成するべく、好ましい方法では、
親及びヒト化配列の三次元モデルを使用して、親配列及び様々な概念的ヒト化産
物の分析工程を経てヒト化抗体を調製する。三次元免疫グロブリンモデルは一般
的に入手可能であり、当業者にはよく知られている。選択された候補免疫グロブ
リン配列の推測三次元立体配座構造を図解し、表示するコンピュータプログラム
は入手可能である。これら表示を見ることで、候補免疫グロブリン配列の機能に
おける残基の役割の分析、すなわち候補免疫グログリンの抗原と結合する能力に
影響を及ぼす残基の分析が可能となる。このようにして、例えば標的抗原に対す
る親和性を高めるといった、望ましい抗体特徴が得られるように、FR残基を共
通及び移入配列から選択し、組み合わせることができる。一般的に、CDR残基
は、直接かつ最も実質的に抗原結合性に影響を及ぼしている[1994年、3月3日に
公開されたWO 94/04679を参照]。
、Kohler及びMilsteinによって最初に記載されたハイブリドーマ法を適応によっ
て作製することができる。対象抗体を生産するBリンパ球は、例えば、インフォ
ームド・コンセントを得た後に、ヒト個人から単離される。例えば、個人は、全
身性紅斑性狼瘡(Shoenfeldら,J.Clin. Invest., 70:205(1982))、免疫媒介血
小板新生紫斑病(ITP)(Nugentら,Blood, 70(1):16-22(1987))、又は癌のよ
うなある疾患とともに生じる自己抗原に対する抗体を生産している。或いは、又
は付加的に、リンパ球はインビトロで免疫化される。例えば、単離されたヒト末
梢血リンパ球をlysomotrophic agent(例えばL−ロイシン-−O−メチル エステ
ル、 L−グルタミン酸ジメチルエステル又はL−ロイシル−L−ロイシン−O
−メチル エステル)(米国特許第5,567,610号、Borrebaeckら,)へ曝
露する;及び/又はインビトロでT細胞欠損ヒト末梢血リンパ球を8−メルカプ
トグアノシン及びサイトカインのような補助剤で処理する(米国特許第5,22
9,275号、Goroffら.)してもよい。
、ヒトモノクローナル抗体を生成するために不死化される。限定されるものでは
ないが、Bリンパ球を不死化する技術は、(a)ヒトBリンパ球とヒト、マウス
ミエローマ又はマウス−ヒトヘテロミエローマ細胞との融合;(b)ウイルスに
よる形質転換(例えば、エプスタイン・バーウイルス(EBウイルス);例えば、Nug
entら,上掲,を参照のこと);(c)リンパ芽球腫細胞株との融合;又は(d
)リンパ腫細胞との融合、を含む。
と融合させ、ハイブリドーマ細胞を形成する(Goding, Monoclonal Antibodies:
Principles and Practice,590-103頁[Academic Press, 1986])。このようにして
調製されたハイブリドーマ細胞を、融合していない親の骨髄腫細胞の増殖または
生存を阻害する一又は複数の物質を好ましくは含む適当な培地に蒔き、増殖させ
る。例えば、親の骨髄腫細胞が酵素ヒポキサンチングアニジンホスホリボシルト
ランスフェラーゼ(HGPRT又はHPRT)を欠失するならば、ハイブリドーマ
のための培地は、典型的には、HGPRT欠失細胞の増殖を妨げる物質であるヒ
ポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含有するであろう(HAT培地)。
適切なヒトミエローマ及びマウス−ヒトミエローマ細胞株が記載されている(Ko
zbor, J. Immunol., 133:3001 (1984)、Brodeurら, Monoclonal Antibody Produ
ction Techniques and Applications, pp. 51-63 (Marcel Dekker, Inc., New Y
ork, 1987))。ハイブリドーマ細胞が生育している培地を、抗原に対するモノク
ローナル抗体の産生について検定する。好ましくは、ハイブリドーマ細胞により
産生されるモノクローナル抗体の結合特異性は、免疫沈降又はインビトロ結合検
定、例えばラジオイムノアッセイ(RIA)又は酵素結合免疫吸着検定(ELISA)によっ
て測定する。
が確定された後、クローンを限界希釈法によりサブクローニングし、標準的な方
法により増殖させることができる(Goding, Monoclonal Antibodies: Principles
and Practice, 59-103頁(Academic Press, 1986))。この目的に対して好適な培
地は、例えば、D-MEM又はRPMI-1640培地を包含する。サブクローンにより分泌さ
れたモノクローナル抗体は、例えばプロテインA-クロマトグラフィー、ゲル電
気泳動、透析、又はアフィニティークロマトグラフィーのような常套的な免疫グ
ロブリン精製法により、培地、腹水、又は血清から好適に分離される。
体を使用して生成してもよい。上記に記したように、免疫化することで、内在性
免疫グロブリンが生成されない状態でもヒト抗体の完全リパートリを生成するこ
とができるトランスジェニック動物(例えばマウス)を使用することが可能である
。例えば、キメラ及び生殖系列変異マウスにおいて抗体重鎖結合領域(JH)遺伝
子をホモ接合的に欠失させると内在性抗体生産の完全な阻害が生じることが記述
されている。このような生殖系列変異マウスにヒト生殖系列免疫グロブリン遺伝
子配列を移すと、抗原投与時にヒト抗体の生成が生じる。例えば、Jakobovitsら
, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:2551-255 (1993);Jakobovitsら, Nature,
362:255-258 (1993);Bruggermanら, Year in Immuno., 7:33 (1993);米国特許
第5,591,669号;米国特許第5,589,369号;及び米国特許第5
,545,807号を参照のこと。また、ヒト抗体は、SCID−huマウス(
Duchosalら,Nature 355: 258-262(1992))を使用して作製してもよい。
リより選択してもよい。抗体又はその断片のライブラリの調製は、当該分野で良
く知られており、宿主細胞へ導入可能な形質転換ベクターのファミリーの構築の
ためには、いずれの既知の方法を使用してもよい。ファージ中の抗体軽鎖及び重
鎖(Huseら,Science, 246:1275(1989))、又はファージ或いはファージミド中の
融合タンパク質のライブラリは、既知の方法によって調製が可能である。例えば
、Vaughanら, Nature Biotech 14:309 -314(1996);Barbasら,Proc. Nalt. Aca
d. Sci., USA, 88:7978-7982(1991);Marksら, J.Mol.Biol., 222:581-597(1991
);Hoogenboom及びWinter, J. Mol. Biol., 227:381-388 (1992);Barbasら,Pr
oc. Nalt. Acad. Sci., USA, 89:4457-4461(1991);Griffithsら, EMBO Journal
, 13: 3245-3260(1994);de Kruifら,J. Mol. Biol., 248:97-105(1995);WO 9
8/05344;WO 98/15833;WO 97/47314;WO 97/44491;WO 97/35196;WO 95/34648
;米国特許第5,712,089号;米国特許第5,702,892号;米国特許第5,427,908号;
米国特許第5,403,484号;米国特許第5,432,018号;米国特許第5,270,170号;WO
92/06176;WO 99/06587;米国特許第5,514,548号;WO 97/08320;及び米国特許
第5,702,892号。対象抗原は、標的抗原と結合するファージ抗体を選択するため
の分野において既知の方法を使用し、ファージライブラリに対して選別される。
特性を有する。そのようなDR4抗体は、限定されないが、キメラ、ヒト化、ヒ
ト、及び親和性成熟抗体を包含してもよい。記載されているように、DR4抗体
は、これらの所望する活性又は特性を達成するための種々の技術を使用して構築
又は設計される。一実施態様では、DR4抗体は、少なくとも105M−1、好
ましくは106M−1から107M−1の範囲、さらに好ましくは少なくとも1
08M−1から1012M−1の範囲、及びよりさらに好ましくは少なくとも1
09M−1から1012M−1の範囲のDR4レセプター結合親和性を有する。
DR4抗体の結合親和性は、スキャッチャード分析法(Munsonら、上掲を参照の
こと)及びKinExAアッセイ(商品名)(実施例9を参照のこと)を包含す
る当該分野において既知の技術に従ったDR4抗体の試験による過度の実験なし
に測定することができる。場合によっては、実施例9に記載のように、実施例9
に記載のKinExAアッセイ(商品名)を使用しての結合親和性のため、及び
DR4−IgGレセプター構成物へのDR4抗体の結合親和性の測定のために、
DR4抗体をアッセイすることができる。
4上の同じエピトープ、又はApo−2Lが結合するDR4上のエピトープと一
致又は重複するDR4上のエピトープと結合する。また、Apo−2リガンドが
DR4抗体へ結合することを妨げる立体構造を作り出すように、DR4抗体は相
互作用する。本発明のDR4抗体のエピトープ結合特性は、当該分野において知
られている技術で決定されてもよい。例えば、DR4抗体は、競争阻害アッセイ
のような、DR4へのApo−2Lの結合をブロック又は阻害するDR4抗体の
能力を測定するためのインビトロアッセイにおいて試験されてもよい。場合によ
っては、DR4−IgG構成物(実施例1に記載のような)へApo−2Lポリ
ペプチド(実施例17に記載のような)の結合を阻害するDR4抗体の能力を測
定するために、DR4抗体は競争阻害アッセイにおいて試験されてもよい。場合
によっては、DR4抗体は、少なくとも50%、好ましくは少なくとも75%近
く、及びなおさらに好ましくは少なくとも90%近く、DR4へのApo−2L
の結合を遮断又は阻害することができ、これは一例として、Apo−2リガンド
(TRAIL)の可溶型及びDR4 ECD−IgG(実施例1に記載のような)
を使用するインビトロ競争阻害アッセイにおいて測定されてもよい。また、DR
4抗体のエピトープ結合特性は、Apo−2誘導アポトーシスをブロックするD
R4抗体の能力を試験するためのインビトロアッセイを使用して決定してもい。
例えば、DR4抗体は、9D細胞(又は、DR4レセプターを発現している他の
癌細胞)におけるApo−2誘導アポトーシスをブロックするDR4抗体の能力
を測定する実施例4に記載のアッセイにおいて試験してもよい。場合によっては
、DR4抗体は、選択された哺乳類癌細胞型におけるApo−2誘導アポトーシ
スを、少なくとも50%、好ましくは少なくとも75%近く、及びよりさらに好
ましくは少なくとも90%又は95%近くブロック又は阻害することが可能であ
り、これは例えば、実施例4に記載のインビトロアッセイにおいて測定されても
よい。
匹敵する活性を有するアゴニスト抗体を含む。好ましくは、そのようなアゴニス
DR4ト抗体は、少なくとも一種類の癌又は腫瘍細胞株或いは原発腫瘍において
アポトーシスを誘導する。アゴニスDR4ト抗体のアポトーシス活性は、既知の
インビトロ又はインビボアッセイを使用して測定してもよい。そのようなインビ
トロ又はインビボアッセイの例は、下記の実施例部分に詳細に記載されている。
インビトロでは、アポトーシス活性は、アネキシンV結合(AnnexinV binding)
のような既知の技術を使用して測定することが可能である。インビボでは、アポ
トーシス活性は、例えば、腫瘍の負担又は容積の減少を測定することで測定して
もよい。
モノクローナル抗体、好ましくはヒトもしくはヒト化抗体である。本発明の場合
において、結合特異性の一方はDR4に対してであり、他方は任意の他の抗原、
好ましくは細胞表面タンパク質又はレセプター又はレセプターサブユニットに対
してである。 二重特異性抗体を生成する方法は当該技術分野において周知である。伝統的に
は、二重特異性抗体の組換え生成方法は、二つの重鎖が異なる特異性を持つ二つ
の免疫グロブリン重鎖/軽鎖対の同時発現に基づく[Milstein及びCuello, Natu
re, 305:537-539 (1983)]。免疫グロブリンの重鎖と軽鎖を無作為に取り揃えた
ため、これらハイブリドーマ(クアドローマ)は10種の異なる抗体分子の潜在的
混合物を作成でき、その内一種のみが正しい二重特異性構造を有する。正しい分
子の精製は、アフィニティークロマトグラフィー工程によって通常達成される。
同様の手順が1993年5月13日公開の国際特許出願第 WO 93/08829号、及びTraune
ckeら, EMBO J.,10:3655-3656 (1991)に開示されている。
ブリン定常ドメイン配列に融合することができる。融合は、好ましくは少なくと
もヒンジ部、CH2及びCH3領域の一部を含む免疫グロブリン重鎖定常ドメイ
ンとのものである。少なくとも一つの融合には軽鎖結合に必要な部位を含む第一
の重鎖定常領域(CH1)が存在することが望ましい。免疫グロブリン重鎖融合を
コードするDNA、及び望むのであれば免疫グロブリン軽鎖を、別々の発現ベク
ターに挿入し、適当な宿主生物に同時形質移入する。二重特異性抗体を生成する
ための更なる詳細については、例えばSureshら, Methods in Enzymology, 121:2
10(1986)を参照されたい。
に結合した抗体からなる。このような抗体は、例えば、免疫系細胞を不要な細胞
に対して標的化させるため[米国特許第4,676,980号]及びHIV感染の治療の
ために[WO 91/00360; WO 92/200373; EP 03089]提案された。本抗体は、架橋
剤に関連したものを含む合成タンパク質化学における既知の方法を使用してイン
ビトロで調製することができると考えられる。例えば、ジスルフィド交換反応を
使用するか又はチオエーテル結合を形成することにより免疫毒素を作成すること
ができる。この目的に対して好適な試薬の例には、イミノチオレート及びメチル
-4-メルカプトブチリミデート、及び例えば米国特許第4,676,980号に開示され
ているものが含まれる。
desら及び上掲のKorttらに記載されている。
は、プロドラッグ(例えばペプチジル化学療法剤、国際公開81/01145号
を参照)を活性な抗癌剤に転化させるプロドラッグ活性化酵素に抗体をコンジュ
ゲートさせることにより、ADEPTにおいて使用することができる。例えば国
際公開88/07378及び米国特許第4975278号を参照されたい。また
、この技術は、「抗体依存性酵素媒介性プロドラッグ治療法」(ADEPT)と
呼ばれている。
態に転化するように、プロドラッグに作用し得る任意の酵素が含まれる。限定す
るものではないが、この発明の方法に有用な酵素には、ホスファート含有プロド
ラッグを遊離の薬剤に転化するのに有用なアルカリ性ホスファターゼ;スルファ
ート含有プロドラッグを遊離の薬剤に転化するのに有用なアリールスルファター
ゼ;非毒性5-フルオロシトシンを抗癌剤5-フルオロウラシルに転化するのに有
用なシトシンデアミナーゼ;プロテアーゼ、例えばセラチアプロテアーゼ、サー
モリシン、サブチリシン、カルボキシペプチダーゼ及びカテプシン(例えば、カ
テプシンB及びL)で、ペプチド含有プロドラッグを遊離の薬剤に転化するのに
有用なもの;D-アミノ酸置換基を含有するプロドラッグの転化に有用なD-アラ
ニルカルボキシペプチダーゼ;炭水化物切断酵素、例えばグリコシル化プロドラ
ッグを遊離の薬剤に転化するのに有用なノイラミニダーゼ及びβガラクトシダー
ゼ;βラクタムで誘導体化された薬剤を遊離の薬剤に転化させるのに有用なβラ
クタマーゼ;及びペニシリンアミダーゼ、例えばそれぞれフェノキシアセチル又
はフェニルアセチル基で、それらのアミン性窒素において誘導体化された薬剤を
遊離の薬剤に転化するのに有用なペニシリンVアミダーゼ又はペニシリンGアミ
ダーゼが含まれる。あるいは、「アブザイム」としてもまた公知の酵素活性を有
する抗体を、遊離の活性薬剤に本発明のプロドラッグを転化させるために使用す
ることもできる(例えば、Massey, Nature 328:457-458[1987]を参照)。抗体-ア
ブザイムコンジュゲートは、ここで記載されているようにして、腫瘍細胞個体群
にアブザイムを送達するために調製することができる。
テロ二官能性架橋試薬を使用することにより、抗体に共有的に結合させることが
できる。あるいは、本発明の抗体の少なくとも結合領域を本発明の酵素の少なく
とも機能的に活性な部位に結合せしめてなる融合タンパク質を、当該技術におい
てよく知られている組換えDNA技術を使用して作成することができる(Neuberg
erら, Nature 312:604-608[1984])。
非タンパク質様ポリマー、例えばポリエチレングリコール、ポリプロピレングリ
コール、又はポリオキシアルキレン、又はポリエチレングリコールとポリプロピ
レングリコールのコポリマーに結合してもよい。また抗体は、例えばコアセルベ
ーション法又は界面重合により調製されたマイクロカプセル(例えば、それぞれ
ヒドロキシメチルセルロース又はゼラチン-マイクロカプセル及びポリ-(メチル
メタクリレート)マイクロカプセル)にコロイド状薬物送達系(例えば、リポソー
ム、アルブミンミクロスフィア、マイクロエマルション、ナノ粒子及びナノカプ
セル)又はマクロエマルションに捕捉することができる。このような技術はRemin
gton's Pharmaceutical Sciences, 16th edition, A. Osol編(1980)に開示され
ている。抗体の血清半減期を増大させるために、米国特許5,739,277に
記載されているように抗体(特に抗体断片)へサルベージレセプター結合エピト
ープを組み込んでもよい。ここで使用される「サルベージレセプター結合エピト
ープ」という用語は、IgG分子のインビボでの血清半減期を増加させる原因と
なるIgG分子(例えばIgG1、IgG2、IgG3又はIgG4)のFc領域
のエピトープを意味する。
核酸を含むベクター及び宿主細胞、及びポリペプチド変異体の生産に対する組換
え方法を提供する。 ポリペプチド変異体の組換え生産のために、それをコードする核酸が単離され
、さらなるクローニング(DNAの増幅)又は発現のために、複製可能なベクター
内に挿入される。ポリペプチド変異体をコードするDNAは直ぐに単離され、通
常の手法(例えば、ポリペプチド変異体をコードする遺伝子に特異的に結合可能
なオリゴヌクレオチドを使用するもの)を用いて配列決定される。多くのベクタ
ーが入手可能である。ベクター成分としては、一般に、これらに制限されるもの
ではないが、次のものの一又は複数が含まれる:シグナル配列、複製開始点、一
又は複数のマーカー遺伝子、エンハンサーエレメント、プロモーター、及び転写
終結配列である。 ここにおける方法は、抗DR−4抗体軽鎖又は重鎖(又は両軽鎖及び重鎖の両
方)をコーするDNA配列を含んでなるベクターを提供する、宿主をベクターで
トランスフェクト又は形質転換する、及び組み換え体抗DR4抗体産物を生産す
るのに十分な条件下で宿主細胞を培養する段階を含む、キメラ又は組み換え体抗
DR4抗体の生産のための方法を包含する。一実施態様では、組み換え的に生産
された抗体の軽鎖及び/又は重鎖は、ここに開示されたマウス4H6抗体の可変
ドメインのすべて又は一部を含んでもよい。
、シグナル配列あるいは成熟タンパク質あるいはポリペプチドのN末端に特異的
切断部位を有する他のポリペプチドである異種性ポリペプチドとの融合ペプチド
としても生産される。好ましく選択された異種シグナル配列は宿主細胞によって
認識され加工される(すなわち、シグナルペプチダーゼによって切断される)もの
である。天然ポリペプチド変異体シグナル配列を認識せずプロセシングしない原
核生物宿主細胞に対しては、シグナル配列は、例えばアルカリホスファターゼ、
ペニシリナーゼ、lppあるいは熱安定なエンテロトキシンIIリーダーの群から
選択される原核生物シグナル配列により置換される。酵母の分泌に関しては、天
然シグナル配列は、酵母インベルターゼリーダー、アルファ因子リーダー(酵母
菌属(Saccharomyces)及びクルイベロマイシス(Kluyveromyces)α因子リーダーを
含む)、又は酸ホスフォターゼリーダー、白体(C.albicans)グルコアミラーゼリ
ーダー、又は国際特許出願第WO90/13646号に記載されているシグナルにより置換
されうる。哺乳動物細胞の発現においては、哺乳動物のシグナル配列並びにウイ
ルス分泌リーダー、例えば単純ヘルペスgDシグナルが利用できる。 このような前駆体領域のDNAは、好ましくは、抗体をコードするDNAにリ
ーディングフレームが結合される。
てベクターの複製を可能にする核酸配列を含む。一般に、この配列はクローニン
グベクターにおいて、宿主染色体DNAとは独立にベクターが複製することを可
能にするものであり、複製開始点又は自律的複製配列を含む。そのような配列は
多くの細菌、酵母及びウイルスに対してよく知られている。プラスミドpBR3
22に由来する複製開始点は大部分のグラム陰性細菌に好適であり、2μプラス
ミド開始点は酵母に適しており、様々なウイルス開始点(SV40、ポリオーマ
、アデノウイルス、VSV又はBPV)は哺乳動物細胞におけるクローニングベ
クターに有用である。一般には、哺乳動物の発現ベクターには複製開始点成分は
不要である(SV40開始点が典型的には初期プロモーターを有しているため用
いられる)。
選択遺伝子を含む。典型的な選択遺伝子は、(a)アンピシリン、ネオマイシン、
メトトレキセートあるいはテトラサイクリンのような抗生物質あるいは他の毒素
に耐性を与え、(b)栄養要求性欠陥を補い、(c)例えばバシラス菌に対する遺伝子
コードD-アラニンラセマーゼのような、複合培地から得られない重要な栄養素
を供給する、タンパク質をコードする。 選択技術の一例においては、宿主細胞の成長を抑止する薬物が用いられる。異
種性遺伝子で首尾よく形質転換した細胞は、抗薬物性を付与し、選択工程を生存
するタンパク質を生産する。このような優性選択の例としては、薬物ネオマイシ
ン、ミコフェノール酸又はハイグロマイシンが使用される。 哺乳動物細胞に適切な選択可能なマーカーの他の例は、ポリペプチド変異体核
酸を捕捉することのできる細胞成分を同定することのできるもの、例えばDHF
R、チミジンキナーゼ、メタロチオネインI及びII、好ましくは、霊長類メタ
ロチオネイン遺伝子、アデノシンデアミナーゼ、オルニチンデカルボキシラーゼ
等々である。
の競合的アンタゴニストであるメトトリキセート(Mtx)を含む培地において形質
転換物の全てを培養することで同定される。野生型DHFRを用いた場合の好適
な宿主細胞は、DHFR活性に欠陥のあるチャイニーズハムスター卵巣(CHO)
株化細胞である。 あるいは、RTDをコードするDNA配列、野生型DHFRタンパク質、及び
アミノグリコシド3'-ホスホトランスフェラーゼ(APH)のような他の選べるマー
カーで形質転換あるいは同時形質転換した宿主細胞(特に、内在性DHFRを含
む野生型宿主)は、カナマイシン、ネオマイシンあるいはG418のようなアミ
ノグリコシド抗生物質のような選択可能マーカーの選択剤を含む培地における細
胞増殖により選択することができる。米国特許第4,965,199号を参照。
p1遺伝子である(Stinchcombら, Nature, 282:39(1979))。trp1遺伝子は
、例えば、ATCC第44076号あるいはPEP4-1のようなトリプトファ
ン内で成長する能力に欠ける酵母の突然変異株に対する選択マーカーを提供する
。Jones, Genetics, 85:12 (1977)。酵母宿主細胞ゲノムにtrp1破壊が存在
することは、トリプトファンの不存在下における増殖による形質転換を検出する
ための有効な環境を提供する。同様に、Leu2欠陥酵母株(ATCC 20,622あるい
は 38,626)は、Leu2遺伝子を有する既知のプラスミドによって補完される。 さらに、1.6μmの円形プラスミドpKD1由来のベクターは、クルイヴェ
ロマイシス(Kluyveromyces)酵母の形質転換に用いることができる。あるいは、
組換え子ウシのキモシンの大量生産のための発現系がK.ラクティス(lactis)に
対して報告されている。Van den Berg, Bio/Technology, 8:135 (1990)。クルイ
ヴェロマイシスの工業的な菌株からの、組換えによる成熟したヒト血清アルブミ
ンを分泌する安定した複数コピー発現ベクターも開示されている。Fleer ら, Bi
o/Technology,9:968-975 (1991)。
プロモーター系[Cahng ほか, Nature, 275:615 (1978), Goeddel ほか, Nature
, 281:544 (1979)]、アルカリホスファターゼ、トリプトファン(trp)プロモー
ター系、及びハイブリッドプロモーター、例えばtacプロモーターを含む。し
かし、他の既知の細菌プロモーターも好適である。細菌系で使用するプロモータ
もまたRTDをコードするDNAと作用可能に結合したシャイン・ダルガーノ(S
.D.)配列を有する。 真核生物に対してもプロモーター配列が知られている。実質的に全ての真核生
物の遺伝子は、転写開始部位からおよそ25ないし30塩基上流に見出されるA
T富化領域を有する。多数の遺伝子の転写開始位置から70ないし80塩基上流
に見出される他の配列は、Xが任意のヌクレオチドであるCXCAAT領域であ
る。大部分の真核生物遺伝子の3'末端には、コード配列の3'末端へのポリA尾
部の付加に対するシグナルであるAATAAA配列がある。これらの配列は全て
真核生物の発現ベクターに適切に挿入される。
セラートキナーゼ又は他の糖分解酵素、例えばエノラーゼ、グリセルアルデヒド
-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸
デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース-6-リン酸イソメラ
ーゼ、3-ホスホグリセレートムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオセリン酸
イソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、及びグルコキナーゼが含まれる
。 他の酵母プロモーターとしては、成長条件によって転写が制御される付加的効
果を有する誘発的プロモーターであり、アルコールデヒドロゲナーゼ2、イソチ
トクロムC、酸ホスファターゼ、窒素代謝と関連する分解性酵素、メタロチオネ
イン、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、及びマルトース及びガ
ラクトースの利用を支配する酵素のプロモーター領域がある。酵母の発現に好適
に用いられるベクターとプロモータはEP 73657に更に記載されている。また酵母
エンハンサーも酵母プロモーターと共に好適に用いられる。
リオーマウィルス、伝染性上皮腫ウィルス、アデノウィルス(例えばアデノウィ
ルス2)、ウシ乳頭腫ウィルス、トリ肉腫ウィルス、サイトメガロウィルス、レ
トロウィルス、B型肝炎ウィルス及び最も好ましくはサルウィルス40(SV40)の
ようなウィルスのゲノムから得られるプロモーター、異種性哺乳動物プロモータ
ー、例えばアクチンプロモーター又は免疫グロブリンプロモーター、ヒートショ
ックプロモーターによって、提供されるこのようなプロモーターが宿主細胞系に
適合し得る限り、調節される。 SV40ウィルスの初期及び後期プロモーターは、SV40ウイルスの複製起
点をさらに含むSV40制限断片として簡便に得られる。ヒトサイトメガロウィ
ルスの最初期プロモーターは、HindIIIE制限断片として簡便に得られる。
ベクターとしてウシ乳頭腫ウィルスを用いて哺乳動物宿主でDNAを発現する系
が、米国特許第4,419,446号に開示されている。この系の変更例は米国特許第4,6
01,178号に開示されている。また、単純ヘルペスウイルス由来のチミジンキナー
ゼプロモーターの調節下でのマウス細胞におけるヒトβインターフェロンcDN
Aの発現について、Reyesら, Nature, 297:598-601(1982)を参照されたい。あ
るいは、ラウス肉腫ウィルス長末端反復をプロモーターとして使用することがで
きる。
写は、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することによって増強され得る。哺
乳動物の遺伝子由来の多くのエンハンサー配列が現在知られている(グロビン、
エラスターゼ、アルブミン、α-フェトプロテイン及びインスリン)。しかしなが
ら、典型的には、真核細胞ウィルス由来のエンハンサーが用いられるであろう。
例としては、複製起点の後期側のSV40エンハンサー(100-270塩基対)
、サイトメガロウィルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポ
リオーマエンハンサー及びアデノウィルスエンハンサーが含まれる。真核生物の
プロモーターの活性化のための増強要素については、Yaniv, Nature, 297:17-18
(1982)もまた参照のこと。エンハンサーは、抗体コード配列の5'又は3'位で
ベクター中にスプライシングされ得るが、好ましくはプロモーターから5'位に
位置している。
物由来の有核細胞)に用いられる発現ベクターは、また転写の終結及びmRNA
の安定化に必要な配列を含む。このような配列は、真核生物又はウィルスのDN
A又はcDNAの5'、時には3'の非翻訳領域から一般に取得できる。これらの
領域は、多価抗体をコードしているmRNAの非翻訳部分にポリアデニル化断片
として転写されるヌクレオチドセグメントを含む。一つの有用な転写終結成分は
ウシ成長ホルモンポリアデニル化領域である。国際公開WO 94/11026とここに開
示した発現ベクターを参照されたい。
宿主細胞は、上述の原核生物、酵母、又は高等真核生物細胞である。この目的に
とって適切な原核生物は、限定するものではないが、真正細菌、例えばグラム陰
性又はグラム陽性生物体、例えばエシェリチアのような腸内菌科、例えば大腸菌
、エンテロバクター、エルウィニア(Erwinia)、クレブシエラ、プロテウス、サ
ルモネラ、例えばネズミチフス菌、セラチア属、例えばセラチア・マルセスキャ
ンス及び赤痢菌属、並びに桿菌、例えば枯草菌及びバシリ・リチェフォルミス(l
icheniformis)(例えば、1989年4月12日に公開された DD 266,710に開示されたバ
シリ・リチェニフォルミス41P)、シュードモナス属、例えば緑膿菌及びスト
レプトマイセス属を含む。一つの好適な大腸菌クローニング宿主は大腸菌294
(ATCC31446)であるが、他の大腸菌B、大腸菌X1776(ATCC3
1537)及び大腸菌W3110(ATCC27325)のような株も好適である
。これらの例は限定するものではなく例示的なものである。
異体をコードするベクターのための適切なクローニング又は発現宿主である。サ
ッカロミセス・セレヴィシア、又は一般的なパン酵母は下等真核生物宿主微生物
のなかで最も一般的に用いられる。しかしながら、多数の他の属、種及び菌株も
、一般的に入手可能でここで使用でき、例えば、シゾサッカロマイセスポンベ;
クルイベロマイセス宿主、例えばK.ラクティス、K.フラギリス(ATCC12
424)、K.ブルガリカス(ATCC16045)、K.ウィッケラミイ(ATC
C24178)、K.ワルチイ(ATCC56500)、K.ドロソフィラルム(A
TCC36906)、K.サーモトレランス、及びK.マルキシアナス;ヤロー
ウィア(EP402226);ピチアパストリス(EP183070);カンジダ;
トリコデルマ・リーシア(EP244234);アカパンカビ;シュワニオマイセ
ス、例えばシュワニオマイセスオクシデンタリス;及び糸状真菌、例えばパンカ
ビ属、アオカビ属、トリポクラジウム、及びコウジカビ属(Aspergillus)宿主、
例えば偽巣性コウジ菌(Aspergillus nidulans)及びクロカビ(Aspergillus nige
r)が使用できる。
のような宿主細胞は、複雑なプロセシング及びグリコシル化活動が可能である。
原則的には、脊椎動物であろうと無脊椎動物培養であろうと、任意のより高等の
真核生物細胞培養が使用できる。無脊椎動物細胞の例としては植物及び昆虫細胞
が含まれる。多数のバキュロウィルス株及び変異体及び対応する許容可能な昆虫
宿主細胞、例えばスポドプテラ・フルギペルダ(毛虫)、アエデス・アエジプティ
(蚊)、アエデス・アルボピクトゥス(蚊)、ドゥロソフィラ・メラノガスター(シ
ョウジョウバエ)、及びボンビクス・モリが同定されている。トランスフェクシ
ョンのための種々のウィルス株、例えば、オートグラファ・カリフォルニカNP
VのL-1変異体とボンビクス・モリ NPVのBm-5株が公に利用でき、その
ようなウィルスは本発明においてここに記載したウィルスとして使用でき、特に
スポドプテラ・フルギペルダ(Spodoptera frugiperda)細胞の形質転換に使用で
きる。 綿花、コーン、ジャガイモ、大豆、ペチュニア、トマト、及びタバコのような
植物細胞培養を宿主として利用することができる。
での脊椎動物細胞の増殖は常套的な手順になった。有用な哺乳動物宿主株化細胞
の例は、SV40によって形質転換されたサル腎臓CV1株 (COS-7, ATCC CRL
1651);ヒト胚腎臓株[293又は懸濁培養での増殖のためにサブクローン化された2
93細胞、Grahamほか, J. Gen Virol., 36:59 (1977)];ハムスター乳児腎細胞(B
HK, ATCC CCL 10);チャイニーズハムスター卵巣細胞/-DHFR(CHO, Urlaub
及びChasin, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77:4216 (1980));マウスのセルトリ
細胞[TM4, Mather, Biol. Reprod., 23:243-251 (1980)];サルの腎細胞 (CVI
ATCC CCL 70); アフリカミドリザルの腎細胞(VERO-76, ATCC CRL-1587); ヒト子
宮頸癌細胞 (HELA, ATCC CCL 2); イヌ腎細胞 (MDCK, ATCC CCL 34); バッファ
ローラット肝細胞 (BRL 3A, ATCC CRL 1442); ヒト肺細胞 (W138, ATCC CCL 75)
; ヒト肝細胞 (Hep G2, HB 8065); マウス乳房腫瘍細胞 (MMT 060562, ATTC CCL
51);TRI細胞[Motherほか, Annals N.Y. Acad. Sci., 383:44-68 (1982)];
MRC5細胞;FS4細胞;及びヒト肝癌株(HepG2);ミエローマ又はリン
パ腫(例えば、Y0, J558L, P3及びNS0細胞)(米国特許第5,807,715号を参照のこ
と)である。 宿主細胞は、抗体生成のための発現又はクローニングベクターで形質転換し、
プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードしている
遺伝子を増幅するために適当に修飾された常套的栄養培地で培養する。
することができる。市販培地の例としては、ハム(Ham)のF10(シグマ)、最小
必須培地(「MEM」,シグマ)、RPMI-1640(シグマ)及びダルベッコの改
良イーグル培地(「DMEM」,シグマ)が宿主細胞の培養に好適である。また、Hamら
, Meth. Enz. 58:44 (1979), Barnesら, Anal. Biochem. 102:255 (1980), 米国
特許第4,767,704号;同4,657,866号;同4,927,762号;4,560,655号;又は同5,12
2,469号;国際公開WO 90/03430;国際公開WO 87/00195;又は米国特許再発行第3
0,985号に記載された任意の培地も宿主細胞に対する培地として使用できる。こ
れらの培地はいずれも、ホルモン及び/又は他の成長因子(例えばインスリン、
トランスフェリン、又は表皮成長因子)、塩類(例えば、塩化ナトリウム、カルシ
ウム、マグネシウム及びリン酸塩)、バッファー(例えばHEPES)、ヌクレオ
シド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えば、ゲンタマイシン(商品
名)薬)、微量元素(最終濃度がマイクロモル範囲で通常存在する無機化合物とし
て定義される)及びグルコース又は同等のエネルギー源を必要に応じて補充する
ことができる。任意の他の必要な補充物質もまた当業者に知られている適当な濃
度で含むことができる。培養条件、例えば温度、pH等々は、発現のために選ば
れた宿主細胞について以前から用いられているものであり、当業者には明らかで
あろう。
又は培地に直接分泌され得る。抗体が細胞内に生成される場合、第1段階として
、粒状屑、宿主細胞又は溶菌断片を、例えば遠心分離又は超遠心分離にかけて取
り除く。培地又は溶菌物を遠心分離にかけ、粒状屑、例えば宿主細胞又は溶菌断
片を取り除く。Carterら, Bio/Technology 10:163-167(1992)は、大腸菌の細胞
膜周辺腔に分泌されるタンパク質を単離するための手順について記載している。
簡単に述べると、細胞ペーストを酢酸ナトリウム(pH3.5)、EDTA、及び
フェニルメチルスルホニルフロリド(PMSF)の存在下で、30分以上かけて解凍す
る。細胞屑は遠心分離により除去することができる。抗体が培地へ分泌されてい
る場合、そのような発現系からの上清は、一般的には第1に市販のタンパク質濃
縮フィルター、例えばAmicon又はMillipore Pelliconの限外濾過ユニットを用い
て濃縮する。PMSFなどのプロテアーゼ阻害剤を上記の任意の工程に含めてタ
ンパク質分解を阻害してもよく、抗生物質を含めて外来性の汚染物の成長を防止
してもよい。
フィー、ゲル電気泳動、透析、及びアフィニティクロマトグラフィを用いて精製
でき、アフィニティクロマトグラフィが好ましい精製技術である。アフィニティ
リガンドとしてのプロテインAの適合性は、ポリペプチド変異体に存在する免疫
グロブリンFc領域の種及びアイソタイプに依存する。プロテインAは、ヒトγ
1、γ2、又はγ4重鎖に基づくポリペプチド変異体の精製に用いることができ
る(Lindmarkら, J. immunol. Meth. 62: 1-13 (1983))。プロテインGは、全
てのマウスアイソタイプ及びヒトγ3に推奨されている(Gussら, EMBO J. 5: 1
6571575 (1986))。アフィニティリガンドが結合されるマトリクスはアガロース
であることが最も多いが、他の材料も使用可能である。孔制御ガラスやポリ(ス
チレンジビニル)ベンゼン等の機械的に安定なマトリクスは、アガロースで達成
できるものより早い流速及び短い処理時間を可能にする。ポリペプチド変異体が
CH3ドメインを含む場合、Bakerbond ABX(商品名)樹脂(J.T. Baker, Phillip
sburg, NJ)が精製に有用である。イオン交換膜での分画、エタノール沈殿、逆
相HPLC、シリカ上のクロマトグラフィー、アニオン又はカチオン交換樹脂(
ポリアスパラギン酸カラム)上でのヘパリンSEPHAROSE(商品名)クロマトグラフ
ィー、クロマトフォーカシング、SDS−PAGE、及び硫酸アンモニウム沈殿
などの他の技術も、回収される抗体に応じて利用可能である。
抗体は、癌や免疫関連疾患などの病理学的状態の治療方法の用いることができる
。そのような状態の診断は医療従事者又は臨床家の日常的技量の範囲内である。
この方法において、DR4抗体、好ましくはDR4アゴニスト抗体は、哺乳動物
へ単独又はさらに他の治療薬又は技術と組み合わせて投与される。 ここに記載の種々の病理学的状態の哺乳類の診断は、熟練した実務者によって
行うこよが可能である。診断技術は、例えば、哺乳類の癌又は免疫関連疾患の診
断と検知を考慮する技術分野において入手可能である。例えば、癌は、限定され
るものではないが、触診(法)、血液分析、X線、NMR及びその類似を包含す
る技術を通して同定され得る。また、免疫関連疾患は容易に同定できる。全身性
エリテマトーデスでは、疾患の中心媒介物は自己タンパク質/組織に対する自己
反応性抗体、及び引き続き起こる免疫媒介炎症である。腎臓、肺、骨格筋系、皮
膚と粘膜、眼、中枢神経系、心臓血管系、胃腸管、骨髄及び血液を包含する複数
の臓器と系が、臨床的に影響を受けた。
疾患であり、結果として関節軟骨に傷害が生じる。病原はTリンパ球依存であり
、リウマチ因子、自己IgGに指向する自己抗体の生成を付随し、結果として関
節体液及び血液において高レベルに達する免疫複合体が形成される。関節におけ
るこれらの複合体は、滑膜へのリンパ球及び単球の顕著な浸潤と、続いての顕著
な滑膜変化を誘発しうる;多数の好中球の添加により同様の細胞で浸潤されるな
らば関節空間/体液でもである。影響を受けている組織は、多くの場合対照的な
パターンで主に関節である。しかしながら、2つの主な形態の関節外疾患も生じ
る。一方の形態は進行中の進行性関節疾患及び肺線維症の局部的障害、血管炎、
及び皮膚潰瘍を伴う関節外障害の発達である。関節外疾患の第2の形態はいわゆ
るフェルティー症候群であり、RA疾患経路の末期、時々は関節疾患が鎮静した
後に生じ、好中球減少、血小板減少及び脾肥大の存在に関与する。これは、梗塞
、皮膚潰瘍及び壊疽の形成を伴う多数の器官及び血管炎に付随する。多くの場合
、患者では、発病している関節上にある皮下組織にリウマチ様小結節が発達し;
小結節は、混合炎症細胞浸潤に包囲された壊死性中心を有する。RAで生じる可
能性のある他の徴候には:心外膜炎、胸膜炎、冠動脈炎、肺線維症を伴う間質性
肺炎、乾性角結膜炎、及びリウマチ様小結節が含まれる。
る。その表現型はRAといくつかの類似点があり;リウマチ因子がポジティブで
ある患者の中には若年性リウマチ様関節炎に分類されるものもいる。この疾患は
主な3つのカテゴリー:小関節(pauarticular)、多関節(polyarticular)及び全
身性ものに亜分類される。関節炎は重度で局所的な破壊が生じ、関節強直症及び
遅延成長に至るおそれもある。他の徴候には慢性前ブドウ膜炎及び全身性アミロ
イド症が含まれる。
つかの共通した臨床的特徴を有する疾患のグループである。疾患には:強直症、
脊椎炎(sponylitis)、ライター症候群(反応性関節炎)、炎症性大腸疾患に関連し
た関節炎、乾癬に関連した脊椎炎、若年発生脊椎関節症及び未分化脊椎関節症が
含まれる。区別する特徴には、脊椎炎を伴うか伴わない仙腸関節炎;HLA-B
27(血清学的には、クラスI MHCのHLA-B座位にある定義された対立遺
伝子)を伴う炎症非対称性関節炎;眼の炎症、及び他のリウマチ疾患に関連した
自己抗体の不在が含まれる。疾患の誘導における鍵として関わるほとんどの細胞
はCD8+Tリンパ球であり、クラスI MHC分子により付与される抗原を標
的としている細胞である。CD8+T細胞は、MHCクラスI分子により発現し
た外来ペプチドであるかのように、クラスI MHC対立遺伝子HLA-B27と
反応する。HLA-27のエピトープが細菌性又は他の微生物の抗原エピトープ
を模倣し、よってCD8+細胞の反応が誘発されると仮定されている。
であり;これは活性化炎症プロセスにより誘発される。強皮症は局部的又は全身
的であり:血管障害が一般的で、微小血管系における内皮細胞傷害は全身性硬化
症の発達における初期の重要な事象であり;血管傷害は免疫媒介されうる。免疫
学的基準では、皮膚障害における単核細胞浸潤の存在、多くの患者において抗細
胞核抗体の存在を意味する。多くの場合、ICAM-1は皮膚障害における線維
芽細胞の細胞表面をアップレギュレーションし、これらの細胞と相互作用するT
細胞が疾患の病因における役割を担っていることが示唆される。関連する他の器
官には:胃腸管:萎縮症及び線維症があり、結果として異常なぜん動/運動性と
なっている平滑筋:腎臓:小弓形及び小葉間動脈に影響を及ぼし、結果として腎
皮質の血流が低下し、タンパク尿、高窒素血尿及び高血圧になる同心性内皮下内
膜増殖:骨格筋:萎縮、間質性線維症:炎症:肺:間質性肺炎及び間質性線維症
:及び心臓:収縮バンド壊死、瘢痕/線維症が含まれる。
知られていない慢性筋肉炎症疾患であり、筋肉の弱化に至る。筋肉損傷/炎症は
多くの場合対称的で進行性である。自己抗体は多くの形態と関連している。これ
らの筋炎特異的自己抗体は、タンパク質合成に係る成分、タンパク質及びRNA
に対して産生されてその機能を阻害する。
ものである。この疾患は炎症結合組織疾患を伴うか又は伴わない。この疾患は、
双方ともが小RNA-タンパク質複合体であるRo及びLa抗原に対する抗体産
出に関連している。障害により、結果として乾性角結膜炎、bilary硬変を含む他
の徴候又は会合を伴う口内乾燥、末梢又は感覚ニューロパシー、及び明白な紫斑
病に至る。
して影響を受けた脈管により供給される組織に虚血/壊死/変性が生じ、最終的
な末端器官ではいくつかのケースで機能障害になるといった疾患である。また、
第2の障害として血管炎(vasculitides)、又は他の免疫炎症媒介疾患、例えばリ
ウマチ様関節炎、全身性硬化症等、特に免疫複合体の形成に関連した疾患等の続
発症が生じるおそれがある。主な全身性血管炎症症グループの疾患には:全身壊
死性血管炎:多動脈炎結節(polyarteritis nodosa)、アレルギー性脈管炎、及び
肉芽腫症、多脈管炎:ヴェゲナー肉芽腫症;リンパ腫様肉芽腫症:及び巨細胞動
脈炎が含まれる。種々の血管炎には:粘膜皮膚リンパ節症候群(MLNS又は川
崎病)、単離したCNS血管炎、ベヘット(Behet's)病、閉塞性血栓性血管炎(バ
ージャー病)及び皮膚壊死性細静脈炎(venulitis)が含まれる。列挙した血管炎の
ほとんどの種類の病原メカニズムは、主に脈管壁に免疫グロブリン複合体が付着
し、続いてADCC、補体活性又は双方を介して炎症反応が誘発されることによ
ると考えられている。
し、肺ではほとんど一般的に包含されることにより特徴付けられる、病因がよく
知られていない病状である。病原には疾患部位に活性マクロファージ及びリンパ
球が残留していることに関連しており、続いてこれらの細胞種より放出される局
部的又は全身的活性物質の放出の結果として慢性続発症が生じる。
免疫性溶血性貧血は、赤血球細胞(いくつかのケースにおいは、血小板を含む他
の血液細胞)表面で発現する抗原と反応する抗体が産出される結果によるもので
あり、補体媒介溶解及び/又はADCC/Fc-レセプター-媒介メカニズムを介
して、その抗体被覆細胞の除去に反映される。
血小板減少を含む自己免疫性血小板減少では、抗体又は補体が血小板に接合し、
続いて補体溶解、ADCC又はFc-レセプター-媒介メカニズムによる除去の結
果として生じる。 グレーブス疾患、ハシモト甲状腺炎、若年性リンパ球性甲状腺炎、萎縮性甲状
腺炎を含む甲状腺炎は、甲状腺内に多くの場合特異的に存在するタンパク質と反
応する抗体の産出を伴う、甲状腺抗原に対する自己免疫反応の結果によるもので
ある。実験用モデルには:内在的モデルラット(BUF及びBBラット)及びチキ
ン(肥満チキン種);誘導性モデル:チログロブリン、甲状腺ミクロソーム抗原(
甲状腺ペルオキシダーゼ)を用いた動物の免疫化が含まれる。 I型真性糖尿病又はインシュリン依存性糖尿病は膵臓小島β細胞の自己免疫破
壊であり;この破壊は自己抗体及び自己反応性T細胞により媒介される。また、
インシュリン又はインシュリン様レセプターに対する抗体は、インシュリン-非-
反応性の表現型を産出することができる。
己反応性抗体又はT細胞が産出される結果により直接的に、又は他の非腎抗原に
対して反応する、腎臓における抗体及び/又は免疫複合体の沈着の結果により間
接的に、腎組織に抗体又はT細胞媒介傷害が生じることによるものである。よっ
て、免疫複合体の形成の結果生じる他の免疫媒介疾患により、間接的続発症等の
免疫媒介腎疾患が誘発される。直接的及び間接的免疫メカニズムの双方により、
結果として腎組織における障害発達が産出/誘発されるといった炎症反応が生じ
、器官機能が損なわれ、いくつかのケースでは腎臓機能不全が進行する。体液及
び細胞免疫メカニズムに双方が障害の病原に関与している。
障害、又はギラン-バレー症候群;及び慢性炎症脱髄性多発神経障害は、自己免
疫基準であり、神経脱髄が生じて、オリゴデンドロサイト又はミエリンに直接的
に起因するダメージの結果によるものと考えられている。MSにおいて、疾患の
誘発及び進行はTリンパ球に依存すると示唆される証拠がある。多発性硬化症は
、Tリンパ球依存性であり、再発性弛緩経路又は慢性進行経路のいずれかを有す
る脱髄疾患である。病因はよく知られていないが、ウイルス感染、遺伝的素因、
環境及び自己免疫性の全てが寄与している。障害はT細胞媒介小膠細胞の優先的
湿潤、及びマイクロファージの浸潤を含み;CD4+Tリンパ球は障害において
優先的な細胞型であった。オリゴデンドロサイトの細胞死及び続く脱髄のメカニ
ズムはよく知られていないが、Tリンパ球の駆動によると思われる。
には、調節されない免疫炎症反応が関連している。反応を阻害することは治療的
に有益なことである。 水疱性皮膚疾患、多形性紅斑及び接触性皮膚炎を含む自己免疫又は免疫媒介皮
膚疾患は自己抗体により媒介され、Tリンパ球に依存して発生する。 乾癬はTリンパ球媒介炎症疾患である。障害はTリンパ球、マクロファージ及
び抗原プロセシング細胞及びある種の好中球の浸潤が含まれる。 喘息;アレルギー性鼻炎;アトピー性皮膚炎;食物過敏症及び蕁麻疹等を含む
アレルギー性疾患はT細胞依存性である。この疾患は炎症により誘発されるTリ
ンパ球、及びIgE媒介炎症、又は双方の組合せにより主に媒介される。 拒絶反応及び移植片対宿主疾患(GVHD)を含む移植関連疾患は、Tリンパ球
依存性であり;Tリンパ球の機能を阻害することで改善される。
はないがウイルス感染(限定するものではないがAIDS、A型、B型、C型、
D型及びE型肝炎、ヘルペス)、細菌感染、真菌感染、原生動物感染及び寄生虫
感染(MLRを刺激する分子(又は誘導体/アゴニスト)を治療に利用し、感染要
因に対する免疫反応性を増強することができる)、MLRを刺激する(分子/誘導
体/アゴニスト)を治療に利用し、受け継ぎ、獲得し、感染誘発された(例えばH
IV感染)又は医原性(例えば化学療法)免疫欠損疾患の病状に対する免疫反応増
強することができる免疫欠損疾患、及び異常増殖が含まれる。
投与される。適切な担体とそれらの製剤は、Osloらにより編集された、Remingto
n's Pharmaceutical Sciences, 16th ed., 1980, Mack Publishing Co.,に記載
されている。典型的には、適量の製薬的に許容可能な塩が、製剤を等浸透圧にす
るために製剤において使用される。担体の例には、生理食塩水、リンガー液及び
デキストロース液が含まれる。溶液のpHは、好ましくは約5から8、さらに好
ましくは約7から7.5である。さらに担体には、抗体を含む固体疎水性ポリマ
ーの半透性マトリックス等の徐放性製剤が含まれ、このマトリックスは、例えば
フィルム状、リポソーム状又はマイクロ粒子状等の成形物の形態をしている。例
えば投与される抗体の投与経路及び濃度によっては、ある種の担体がより好まし
くなることは、当業者には明らかである。
のように、有効な形態で血流への送達を確実にする他の方法で哺乳動物に投与す
ることができる。抗体は、また、単離された組織灌流などの単離された灌流技術
で投与されて、局所的治療効果を発揮する。局所的又は静脈注射が好ましい。
き、そのような決定は当業者の技量の範囲に含まれる。当業者であれば、投与さ
れなければならない抗体の用量が、抗体を受入れる哺乳動物、投与経路、使用さ
れる抗体の特定の種類、及び哺乳動物に投与されている他の薬剤に依存して変わ
りうることは理解できるであろう。抗体の適切な投与量の選択における指針は、
抗体の治療的用途に関する文献、例えば、Handbook of Monoclonal Antibodies,
Ferroneら, eds., Noges Publications, Park Ridge, N.J., (1985)ch.22及びp
p.303-357;Smithら, Antibodies in Human Diagnosis and Therapy, Haberら,
eds., Raven Press, New York(1977)pp.365-389に見出される。単独で使用され
る抗体の典型的な一日の投与量は、上述の要因に依存し、1日当たり約1μg/
kg体重から100mg/kg体重又はそれ以上の範囲である。
てもよい。一又は複数の治療薬又は治療には、限定されないが、化学療法(化学
療法剤)、放射線治療、イムノアジュバント、成長阻害剤、細胞障害性剤、及び
サイトカインが含まれる。哺乳動物細胞においてアポトーシスを誘発する他の薬
剤も用いられ、そのような薬剤にはアポトーシスを誘導する抗体とともにTNF
-アルファ、TNF-ベータ、CD30リガンド、4-1BBリガンド及びApo-
2リガンドが含まれる。一つ又はそれ以上の治療は治療的抗体(DR4抗体以外
)を含んでもよく、そのような抗体は抗-Herレセプター抗体(例えばHercepti
n(商品名))、抗-VEGF抗体、及び抗−Apo−2(DR5)抗体のようなAp
o−2リガンドに対する他の抗体を含んでもよい。
されている化学物質又は薬剤、例えばドキソルビシン、5-フルオロウラシル、
エトポシド、カンプトテシン、ロイコボリン、シトシンアラビノシド、シクロホ
スファミド、チオテパ、ブスルファン、サイトキシン、タキソール、メトトレキ
セート、シスプラチン、メルファラン、ビンブラスチン及びカルボプラチンが含
まれる。このような化学療法に対する調製法及び用量スケジュールは、製造者の
指示に従って使用されるか、熟練した実務家により経験的に決定される。そのよ
うな化学療法に対する調製法及び用量スケジュールはまた、化学療法サービス(C
hemotherapy Cervice), M.C.Perry編, Williams & Wilkins, Baltimore, MD に
記載されている。 化学療法剤は、好ましくは上述したような製薬的に許容可能な担体中で投与さ
れる。化学療法剤の投与形態は、DR4抗体に用いたものと同じでもよく、ある
いは異なる形態で哺乳動物に投与してもよい。例えば、DR4抗体を注射し、化
学療法剤を経口で哺乳動物に投与してもよい。
て哺乳動物に施される。このような治療は、セリウム、イリジウム、ヨウ素又は
コバルト照射であってよい。放射線治療は、全身照射でも、又は身体の特定部位
又は組織を局所的に指向してもよい。典型的には、放射線治療は、約1から約2
週間の期間に渡ってパルス状に施される。しかし、放射線治療は、より長い時間
に渡って施してもよい。場合によっては、放射線治療は、単独線量、多重又は続
発的線量として施してもよい。 抗体は、一又は複数の他の治療薬と連続して又は同時に投与してもよい。抗体
及び治療薬の量は、例えば、使用される薬剤の種類、治療される病理学的状態、
及び投与スケジュールと経路に依存するが、各々が個々に使用される場合よりも
一般に少ない。
れている種々の方法でモニターすることができる。 また、DR4阻止抗体も治療において使用すると考えられる。例えば、DR4
阻止抗体は、Apo-2Lのレセプター結合を阻止するために(上記したように
)哺乳動物に投与し、よってApo-2Lのアポトーシスを誘発する生物学的利
用能を増大させることができる。
ッセイで使用することで調べられる。例えば免疫関連疾患又は癌の発生及び原因
におけるここで同定されたDR4抗体の役割を更に理解するために、そして候補
治療剤の有効性を試験するために、種々の良く知られた動物モデルが使用できる
。これらモデルのインビボの性質によって、ヒト患者における反応を予測できる
。免疫関連疾患の動物モデルは、非組換え及び組換え(トランスジェニック)動
物の両方を含む。非組換え動物モデルは、例えば、齧歯類、例えばマウスモデル
を含む。このようなモデルは、標準的な技術、例えば、皮下注射、尾部静脈注射
、脾臓移植、腹膜内移植、腎被膜下移植等により、細胞を同系マウスに導入する
ことにより作成される。
疾患は、免疫担当細胞が免疫抑制又は寛容患者に移植されたときに起こる。ドナ
ー細胞が宿主抗原を認識して反応する。反応は生命を脅かす重篤な炎症から下痢
又は体重減少の軽い場合まで変わり得る。移植片対宿主疾患モデルはMHC抗原
及び少数の移植抗原に対するT細胞の反応性を評価する手段を提供する。好適な
手法は、上記のCurrent Protocols in Immunology, unit 4.3に詳細に記載され
ている。
試験する手段であり、移植片拒絶におけるそれらの役割の基準である。最も普通
で許容されるモデルは、マウスの尾の皮膚移植である。繰り返し実験により、皮
膚同種移植片拒絶はT細胞、ヘルパーT細胞尾キラー効果T細胞に媒介され、抗
体ではないことが示された。Auchincloss, H. Jr.及びSachs, D.H., Fundamenta
l Immunology, 2版, W.E. Paul編, Raven Press, NY, 1989, 889-992。好適な手
法は、上記のCurrent Protocols in Immunology, unit 4.4に詳細に記載されて
いる。本発明の化合物の試験に使用できる他の移植片拒絶モデルは、Tanabe, M.
ら, Transplantation (1994) 58: 23及びTinubu, S.A.ら, J. Immunol. (1994)
4330-4338に記載されている同種心臓移植モデルである。
る。詳細な型の過敏症反応は、抗原負荷後時間が経過するまでピークに達しない
炎症を特徴とするT細胞媒介免疫反応である。これらの反応はまた、組織特異的
自己免疫疾患、例えば多発性硬化症(MS)及び実験的自己免疫性脳脊髄炎(E
AE、MSのモデル)を起こす。好適な手法は、上記のCurrent Protocols in I
mmunology, unit 4.5に詳細に記載されている。
己免疫性慢性関節リウマチと臨床的、組織学的及び免疫学的特徴を共有し、ヒト
の自己免疫性関節炎の許容されるモデルである。マウス及びラットモデルは、滑
膜炎、軟骨及び肋軟骨下骨の浸食を特徴とする。本発明のDR4抗体は、上記の
Current Protocols in Immunology, unit 15.5に記載されているプロトコールを
用いて、自己免疫性関節炎に対する活性について試験できる。また、Issekutz,
A.C.ら, Immunology (1996) 88: 569に記載されているCD18及びVLA-4イ
ンテグリンに対するモノクローナル抗体を用いたモデルも参照のこと。
症及び炎症が、動物をオボアルブミンで感作し、次いで動物にエアロゾルで運ば
れる同じタンパク質を負荷することにより誘発される。幾つかの動物モデル(モ
ルモット、ラット、非ヒト霊長類)は、エアロゾル抗原で負荷した際にヒトのア
トピー性喘息に似た徴候を示す。マウスモデルは、ヒト喘息の多くの特徴を持つ
。本発明の化合物の喘息治療における活性及び有効性を試験するための好適な方
法は、Wolyniec, W.W.ら, Am. J. Respir. Cell Mol. Biol., (1998) 18: 777
及びその引用文献に記載されている。
、乾癬についてのT細胞病原を示唆している。本発明の化合物は、Schon, M.P.
ら, Nat. Med. (1997)3: 183によって記載された、マウスが乾癬に類似する組織
病原学的皮膚疾患を示すscid/scidマウスモデルでも試験できる。他の好適なモ
デルは、Nickoloff, B.J.ら, Am . J. Path. (1995) 146: 580に記載されたよう
に調製されるヒト皮膚/scidマウスキメラである。 候補治療組成物の抗癌活性の試験のための種々の動物モデルが知られている。
これらは、胸腺欠損マウス又はscid/scidマウス、或いはp53ノック
アウトマウスのような遺伝的マウス腫瘍モデルへ異種移植するヒト腫瘍を含む。
ド部分を、トランスジェニック動物作成のための標準的技術を用いて、対象とす
る動物のゲノムに導入することにより加工できる。トランスジェニック操作の標
的として提供できる動物は、限定されないが、マウス、ラット、ウサギ、モルモ
ット、ヒツジ、ヤギ、ブタ、及び非-ヒト霊長類、例えばヒヒ、チンパンジー及
びサルを含む。これらの動物に導入遺伝子を導入するのにこの分野で知られた技
術は、全核マイクロインジェクション(Hoppe及びWanger, 米国特許第4,873,191
号);胚系列へのレトロウイルス媒介遺伝子転移(例えば、Van der Puttenら,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82, 6148-615 [1985]);胚性肝細胞での遺伝子標
的化(Thompsonら, Cell 56, 313-321 [1989]);胚のエレクトロポレーション
(Lo, Mol. Cel. Biol. 3, 1803-1814 [1983]);精子媒介遺伝子転移(Lavitra
noら, Cell 57, 717-73 [1989])を含む。概説のためには、例えば、米国特許第
4,736,866号を参照のこと。
子を有するもの(「モザイク動物」)を含む。導入遺伝子は、単一の導入遺伝子
として、又はコンカテマー、例えば頭部と頭部又は頭部と尾部の直列型として組
み込まれる。特定の細胞型への導入遺伝子の選択的導入も、例えば、Laskoら, P
roc. Natl. Acad. Sci. USA 89, 6232-636 (1992)の技術に従って可能である。 トランスジェニック動物における導入遺伝子の発現は、標準的技術によって監
視できる。例えば、導入遺伝子の組み込みの確認にサザンブロット分析又はPC
R増幅が用いられる。次いで、mRNA発現のレベルは、インサイツハイブリッ
ド形成、ノーザンブロット分析、PCR、又は免疫組織化学などの技術を用いて
分析できる。動物は、例えば、免疫細胞の特定組織への浸潤を決定する組織学的
試験により、或いは免疫疾患病理の徴候について更に試験してもよい。
DNAと、同じポリペプチドをコードする内在性遺伝子との間の相同的組換えに
よって、ここに同定するポリペプチドをコードする欠陥又は変更遺伝子を有する
「ノックアウト」動物を作成することができる。例えば、特定のポリペプチドを
コードするcDNAは、確立された技術に従い、そのポリペプチドをコードする
ゲノムDNAのクローニングに使用できる。特定のポリペプチドをコードするゲ
ノムDNAの一部を欠失したり、組み込みを監視するために使用する選択可能な
マーカーをコードする遺伝子等の他の遺伝子で置換することができる。典型的に
は、ベクターは無変化のフランキングDNA(5'と3'末端の両方)を数キロベー
ス含む[例えば、相同的組換えベクターについてはThomas and Capecchi, Cell,
51: 503 (1987)を参照のこと]。ベクターは胚性幹細胞に(例えばエレクトロポ
レーションによって)導入し、導入されたDNAが内在性DNAと相同的に組換
えられた細胞を選択する[例えば、Liら, Cell,69:915 (1992)参照]。選択され
た細胞は次に動物(例えばマウス又はラット)の胚盤胞内に注入され、集合キメラ
を形成する[例えば、Bradley, Teratocarcinomas and Embryonic Stem Cells:
A Practical Approach, E. J. Robertson, ed. (IRL, Oxford, 1987), pp. 113-
152参照]。その後、キメラ性胚を適切な偽妊娠の雌性乳母に移植し、「ノック
アウト」動物を作ると言われる。胚細胞に相同的に組換えられたDNAを有する
子孫は標準的な技術により同定され、それらを利用して動物の全細胞が相同的に
組換えられたDNAを含む動物を繁殖させることができる。ノックアウト動物は
、そのポリペプチドが不在であることによるある種の病理的状態及び病理的状態
の進行に対して防御する能力によって特徴付けられる。
る。例えば、抗体は、特定細胞及び組織におけるDR4の過剰発現を検出するた
めの診断アッセイに用いてもよい。当該分野において知られている様々な診断ア
ッセイ技術、例えば、インビボ画像アッセイ、インビトロ競合的結合アッセイ、
直接的又は間接的サンドイッチアッセイ及び不均一又は均一相の何れにおいても
実施される免疫沈降検定を使用することができる[Zola, Monoclonal Antibodie
s: A Manual of Techniques,CRC Press,Inc.,(1987) pp.147-158]。診断アッセ
イ法に使用されるアゴニストは、検出可能部分で標識することができる。検出可
能部分は、直接的に又は間接的に検出可能なシグナルをつくりだすことができな
ければならない。例えば、検出可能部分は、3H、14C、32P、35S又は 125 I等の放射性同位体、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン又
はルシフェリン等の蛍光又は化学発光化合物、もしくはアルカリホスファターゼ
、β-ガラクトシダーゼ又はセイヨウワサビペルオキシダーゼ等の酵素であって
もよい。Hunterら, Nature, 144: 945 (1962)、Davidら, Biochemistry,13:1014
(1974)、Painら, J. Immunol. Meth.,40:219 (1981)及びNygrenら, J. Histoche
m. and Cytochem.,30:407 (1982)などに記載されている方法を含み、検出可能部
分に抗体を抱合させるための当該分野において知られている任意の方法を使用す
ることができる。
ィー精製にも有用である。この方法においては、DR4に対する抗体を、当該分
野でよく知られている方法を使用して、セファデックス樹脂や濾紙のような適当
な支持体に固定化する。次に、固定化された抗体を、精製するDR4を含有する
試料と接触させ、次いで、固定化された抗体に結合したDR4以外の試料中の物
質を実質的に全て除去する適当な溶媒で支持体を洗浄する。最後に、DR4を抗
体から離脱させる他の適当な溶媒で支持体を洗浄する。
又は精製に有用な物質を含む製造品が提供される。製造品にはラベルが付された
容器が含まれる。適切な容器には、例えばボトル、バイアル、及び試験管が含ま
れる。容器はガラス又はプラスチックのような種々の材料から作製できる。容器
は、病理学的状態の治療又はDR4の検出又は精製に有効な活性剤を有する組成
物を収容する。組成物中の活性剤は、DR4抗体であり、好ましくはDR4に特
異的なモノクローナル抗体を含む。容器のラベルには、組成物が病理学的状態の
治療又はDR4の検出又は精製に使用されることが示され、また上述のもののよ
うな、インビボ又はインビトロのいずれかの使用の指示が示されている。
る。それは、商業上及び使用者の観点から望まれる、他のバッファー、希釈剤、
フィルター、針、注入器及び使用説明が記されたパッケージ挿入物を含む他の材
料をさらに含んでもよい。
決して限定することを意図するものではない。 本明細書で引用した全ての特許及び参考文献の全体を、出典明示によりここに
取り込む。
造者の使用説明に従い使用した。ATCC登録番号により次の実施例及び明細書
全体を通して特定している細胞の供給源はアメリカン・タイプ・カルチャー・コ
レクション,マナサス,バージニア(American Type Culture Collection, Manna
sas, Virginia)である。
D配列(Fig1に示すアミノ酸1-218)を、pCMV−1Flagベクター
(Kodak)のFlagシグナル配列の下流にクローニングし、既に記載されてい
るようにして[Aruffoら,Cell, 61:1303-1313(1990)]ヒト免疫グロブリンG1
重鎖のCH1、ヒンジ及びFc領域に融合した。イムノアドヘシンは、ヒト29
3細胞に一過性形質移入して発現させ、前掲のAshkenaziら,により記載された
プロテインAアフィニティークロマトグラフィーにより細胞上清から精製した。
例1に記載)(Ribi Immunochemical Research Inc., Hamilton, MTから購入し
たMPL-TDMアジュバントで希釈)を、各々の後足の裏の柔らかい部分に、3−4日
間隔で11回注射することで、Balb/cマウス(チャールズリヴァー研究所
から得たもの)を免疫化した。 最終の追加免疫から3日後に、膝窩リンパ節をマウスから取り出し、単細胞懸
濁液を、1%のペニシリン-ストレプトマイシンが補われたDMEM培地(Biowhi
takker Corp.から得たもの)中で調製した。次いで、リンパ節細胞を35%のポ
リエチレングリコールを使用してマウス骨髄腫細胞P3X63AgU.1(ATCC C
RL 1597)と融合させ、96-ウェル培養プレートで培養した。融合の結果得られ
たハイブリドーマをHAT培地において選択した。融合から10日後に、ハイブ
リドーマ培養の上清をELISAでスクリーニングし、DR4ECDイムノアド
ヘシンタンパク質(実施例1に記載)に結合するモノクローナル抗体の存在を試
験した。
GFc(Cappel Laboratoriesから購入)が入ったものを50μl添加して、9
6-ウェルマイクロタイタープレート(Maxisorb; Nunc, Kamstrup, Denmark)をコ
ートし、4℃で一晩インキュベートした。次いでプレートを洗浄用バッファー(
0.05%のトゥイーン20を含有するPBS)で3回洗浄した。次いで、マイ
クロタイタープレートのウェルを、2.0%のウシ血清アルブミン(BSA)5
0μlでブロックし、室温で1時間インキュベートした。次いで、プレートを洗
浄用バッファーで再度3回洗浄した。 洗浄工程後、アッセイ用バッファー中の0.4μg/mlのDR4ECDイム
ノアドヘシンタンパク質50μlを各ウェルに添加した。プレートを振盪装置上
で、室温で1時間インキュベートし、続いて洗浄用バッファーで3回洗浄した。
ァロースカラム精製抗体(10μg/ml)を指定ウェルに添加した。100μ
lのP3X63AgU.1骨髄腫細胞条件培地を他の指定ウェルに対照として添
加した。プレートを振盪装置上で、室温で1時間インキュベートし、続いて洗浄
用バッファーで3回洗浄した。 次に、アッセイ用バッファー(0.5%のウシ血清アルブミン、0.05%の
トゥイーン20(Tween-20)がPBS中に入ったもの)で、1:1000に希釈さ
れたHRP-抱合ヤギ抗マウスIgG Fc(Cappel Laboratories社から購入)の
50μlを各々のウェルに添加し、プレートを振盪装置上で、室温で1時間イン
キュベートした。プレートを洗浄用バッファーで3回洗浄し、次いで各々のウェ
ルに50μlの基質(TMBマイクロウェルペルオキシダーゼ基質;Kirkegaard
& Perry, Gaithersburg, MD)を添加し、室温で10分間インキュベートした。5
0μlのTMB1−成分終止溶液(ジエチルグリコール;Kirkegaard & Perry)を
各々のウェルに添加して反応を終了させ、450nmでの吸光度を自動マイクロ
タイタープレート読取装置で読み取った。
GではなくDR4−IgGに結合するそれらの能力について考慮した。ELIS
Aで陽性とされた上清は、9D細胞(DR4を発現するヒトB細胞系;Genentec
h, Inc.)及びFITC抱合ヤギ抗マウスIgGを用いたFACS分析でさらに
分析した。この分析のために、セルソーター用バッファー(1%のFCS及び0
.02%のNaN3を含むPBS)中の細胞懸濁物(4x106細胞/ml)の
25μlを、U字底のミクロタイターウェルに添加し、100μl培養上清又は
セルソーター用バッファー中の精製抗体(10μg/ml)と混合し、氷上で3
0分間インキュベートした。次いで、細胞を洗浄し、100μlのFITC抱合
ヤギ抗マウスIgGとともに4℃で30分間インキュベートした。次いで、細胞
を2回洗浄し、150μlのセルソーター用バッファーに再懸濁し、FACSc
an(Becton Dickinson, Mountain View, CA)によって分析した。 Fig2は、9D細胞のFACS染色を示す。2つの特定の抗体、4E7.2
4.3及び4H6.17.8は、9Dは細胞上のDR4レセプターを認識した。
れた9D細胞のアポトーシスを誘発する能力について試験した。9D細胞(5x
105細胞/0.5ml)を1μgのDR4mAb(4E7.24.3又は4H
6.17.8は、9D;上記実施例2参照)又はIgG対照抗体とともに200
μl完全RPMI培地中、4℃で15分間インキュベートした。次いで、細胞を
、10μgのヤギ抗マウスIgGFc抗体(ICN Pharmaceuticals)共なう又は
共なわない、300μlの完全RPMI培地中、37℃で5分間インキュベート
した。この時点で、細胞を7%のCO2存在下、37℃で一晩インキュベートし
た。次いで細胞を回収し、PBSで1回洗浄した。細胞の生存を、製造者の推奨
(Clontech)に従ってホスファチジルセリンに結合するFITC−アネキシンV
の染色によって決定した。細胞をPBS中で洗浄し、200μlの結合バッファ
ー中に再懸濁させた。10μlのアネキシン-V−FITC(1μg/ml)及
び10μlのヨウ化プロピジウムを細胞に添加した。暗中で15分間インキュベ
ートした後、9D細胞をFACSで分析した。
しで)対照抗体に比較して9D細胞のアポトーシスを誘発した。しかし、両方の
DR4抗体のアゴニスト活性は、、ヤギ抗マウスIgGFc存在下でのDR4レ
セプター交差結合によって促進された(Fig4参照)。両方のDR4抗体によ
るこの促進されたアポトーシス(Fig4)は、9D細胞におけるApo-2L
のアポトーシス活性に匹敵した(データは示さず)。
セイ ハイブリドーマ上清及び精製抗体(上記実施例2に記載)を、Apo-2リガ
ンドに誘発された9D細胞アポトーシスを阻止する能力について試験した。 9D細胞(5x105細胞/0.5ml)を完全RPMI培地(RPMIプラ
ス10%のFCS、グルタミン、非必須アミノ酸、ペニシリン、ストレプトマイ
シン、ピルビン酸ナトリウム)中に懸濁させ、個々のファルコン2052管に蒔
いた。0.5mlのApo-2L(1μg/ml;WO 97/25428に記載されたよう
に調製した可溶性His-タグApo-2L)を完全RPMI培地に懸濁させ、連
続的に希釈した抗体(4H6.17.8)及び/又はApo-2抗体(mAb3
F11、Genentech, Inc.)とともにプレインキュベートし、次いで9D細胞を
含む管に添加した。9D細胞を氷上で15分間インキュベートし、次いで7%の
CO2存在下、37℃で一晩インキュベートした。次いでインキュベートした細
胞を回収し、PBSで1回洗浄した。細胞の生存を、製造者の推奨(Clontech)
に従ってホスファチジルセリンに結合するFITC−アネキシンVの染色によっ
て決定した。特に、細胞をPBSで洗浄し、200μlの結合バッファーに再懸
濁した。10mlのアネキシン-V−FITC(1μg/ml)及び10μlの
ヨウ化プロピジウムを細胞に添加した。暗中で15分間インキュベートした後、
9D細胞をFACSで分析した。
するので、Apo-2Lは9D細胞においてDR4又はApo-2と呼ばれるレセ
プターのいずれかとの相互作用によってアポトーシスを誘発できる。よって、D
R4抗体の阻止活性を検出するために、Apo-2とApo-2Lとの相互作用を
阻止する必要があった。抗Apo-2抗体、3F11と組み合わせることにより
、DR4抗体4H6.17.8は、Apo-2に誘発されたアポトーシスの約5
0%を阻止することができた。残りの約50%のアポトーシス活性は、Fig5
に示したように、DR4抗体単独のアゴニスト活性によると考えられる。従って
、4H6.17.8はDR4抗体を阻止していると考えられる(同じ様に行われ
たアッセイでは、出願人は、実施例7に記載の1H5抗体がApo−2Lによる
9D細胞のアポトーシスをブロックすることを見出した)。
イプは、アイソタイプ特異的約抗マウスIg(Fisher Biotech, Pittsburgh, PA
)でコートしたミクロタイタープレートにより4℃で一晩測定された。次いでプ
レートを洗浄用バッファー(上記実施例2に記載)で洗浄した。次いでミクロタ
イタープレートのウェルを200μlの2%ウシ血清アルブミンでブロックし、
室温で1時間インキュベートした。プレートは、再度洗浄用バッファーで3回洗
浄した。 次に、100μlの5μg/mlの精製DR4抗体又は100μlのハイブリ
ドーマ培地上清を指定ウェルに添加した。プレートを室温で30分間インキュベ
ートし、次いで50μlのHRP-抱合ヤギ抗マウスIgG(上記に記載)を各
ウェルに添加した。プレートを室温で30分間インキュベートした。プレートに
結合したHRPのレベルを上記のHRP基質を用いて検出した。 アイソタイピング分析は、4E7.24.3および4H6.17.8抗体がI
gG1抗体であることを示した。
アッセイ 実施例2に記載した2つのDR4抗体がDR4以外の知られたApo-2Lレ
セプターに結合できるか否かを決定するためにELISAを実施した。特に、D
R4抗体をApo-2[例えば、Sheridanら, Science, 277: 818-821 (1997)参
照]、DcR1[Sheridanら, 上掲]、及びDcR2[Marstersら, Curr. Biol
., al., 7: 1003-1006 (1997)]に対する結合性について試験した。ELISA
は、基本的に上記実施例2に記載したように実施した。 結果をFig6に示す。DR4抗体4E7.24.3及び4H6.17.8は
DR4に結合するし、Apo-2、DcR1、又はDcR2に対して幾分の交差
反応性を示した。
製された。実施例2に記載の捕捉ELISAを使用し、1H5.24.9、1H
8.17.5、3G1.17.2、4G7.18.8、4G10.20.6及び
5G11.17.1と呼ばれるさらなる抗DR4抗体が同定された(Figure17
の表を参照のこと)。FACS(実施例2に記載の技術を使用)による更なる分
析は、DR4を発現する9D細胞へこれらの抗体が結合することを確かなものに
した(データは示されていない)。
、4G10.20.6及び5G11.17.1抗DR4抗体のアイソタイプ(実
施例7に記載)は、実施例5に記載のように決定された。 アイソタイピング分析は、1H8.17.5、3G1.17.2、及び4H1
0.20.6抗体がIgG1抗体であることを示した。抗DR4抗体1H5.2
4.9及び4G7.18.8は、IgG2a抗体であり、抗体5G11.17.
1はIgG2b抗体である。
正をともなうBlakeら,Journal of Biological Chemistry, 271:27677-685(1996
);及びCraigら,Journal of Molecular Biology, 281:183-201(1998)によって
記載された自動化免疫アッセイ系(Sapidyne Instruments, Inc., Boise ID)で
あるKinExA(商品名)を使用して決定された。要約すると、1.0mlの
抗ヒトIgGアガロースビーズ(56μm、Sigma, St Louis, MO)は、室温で1
時間に渡って緩やかに混合されることによって、PBS中の20μgのDR4−
IgG(実施例1に記載)で被膜された。PBS洗浄後、非特異的結合部位は、
室温で1時間に渡ってPBS中の10%ヒト血清でインキュベートすることによ
ってブロックされた。
ローセルの中でつくられた。ブロックされたビーズは、30mlのアッセイバッ
ファー(0.01%BSA/PBS)で希釈された。希釈ビーズ(500μl)は
、次に20μmスクリーンでフローセル中を通して流され、1mlのランニング
バッファー(0.01%BSA;PBS中の0.05%Tween20)で洗浄
された。次に、ビーズはランニングバッファーの短いバッグフラッシュによって
緩やかに破壊され、次に均一で再現性のあるビーズパックを作るための20秒設
定期間が続いた。平衡測定のために、選択されたDR4(0.01%BSA/P
BS中の5ng/ml)はDR4−IgG(2.5nMから開始し、5.0pM
まで)の連続希釈で混合され、室温で2時間に渡ってインキュベートされた。一
度平衡に達すると、4.5mlのこの混合物はビーズ中を流され、その次に25
0μlのラニングバッファーで非結合抗体が洗い流された。ビーズに結合した一
次抗体は、1.5mlのヤギ抗マウスIgGでラベルされたフィコエリトリン(J
ackson Immunoresearch)で検出された。非結合物質は、4.5mlの0.5M
NaClを、3分間に渡ってビーズパック中を流すことによって取り除いた。平
衡定数は、製造者(Sapidyne, Inc.)によって提供されたソフトウエアを使用し
て計算された。
そしてDR5抗体、3F11、DR5のIg構成物に対するDR4及びDR5レ
セプターのイムノアドヘシン構成物の親和性決定は、比較されて示されている。
4E7.24.3、4H6.17.8及び5G11抗体の親和性(Kd−1)は
、それぞれ2pM、5pM、及び22pMであり、これらのモノクローナル抗体
がDR4−IgGに対して強い親和性を有していることを示している。(4G7
及び3G1抗体の親和性(Kd−1)は、それぞれ20pM、40pMであるが
、Figure7にはデータが示されていない)
のアポトーシスが検査された。 ヒト9D細胞(5x105)を100マイクロリッターの完全RPMI培地(
RPMIプラス10%のFCS、グルタミン、非必須アミノ酸、ペニシリン、ス
トレプトマイシン、ピルビン酸ナトリウム)に懸濁し、24ウェルのミクロタイ
タープレート(5x105細胞/0.5ml/ウェル)に配した。10マイクロ
グラム/mlの精製DR4抗体の100マイクロリッター、又は培地上澄みの1
00マイクロリッターを次に9D細胞を含むウェルへ添加した。次に、マクロタ
イタープレートを7%CO2の存在下で一晩37℃でインキュベートした。 インキュベーションの終わりには、細胞をPBSで洗浄した。洗浄された細胞
は、200マイクロリッター結合バッファー(Clontech)中に再懸濁され、10マ
イクロリッターのFITCアネキシンV-FITC(Clontech)及び10マイクロ
リッターのヨウ化プロオピジウムが細胞に添加された(Mooreら,Meth. In Cell
Biol., 57:265(1998))。暗中15分のインキュベーションの後、細胞をFAC
Scanで分析した。 結果はFigure8Aに示されている。Figure8Aのグラフは、1H5、4G7、
及び5G11抗体自身がある程度(弱い)のアポトーシスを9D細胞内に誘導す
るが、各抗体のアポトーシス活性は、これらのモノクローナル抗体がヤギ抗マウ
スIgGFc又は補体のどちらかによって交差結合した時に顕著に増加したこと
を示している(下記の実施例11に記載)。
細胞(5x105)を100マイクロリッターの完全RPMI培地(RPMIプ
ラス10%のFCS、グルタミン、非必須アミノ酸、ペニシリン、ストレプトマ
イシン、ピルビン酸ナトリウム)に懸濁し、氷上で15分間、1マイクログラム
のDR4抗体/100マイクロリッターでインキュベートした。細胞は、300
マイクロリッター完全培地中の1:10の最終希釈のウサギ補体(Cedar Lane)又
は100マイクログラム/mlのヤギ抗マウスIgG−Fc(Cappel Laboratori
es)で、7%CO2の存在下で一晩37℃でインキュベートした。
ッター結合バッファー(Clontech)中に再懸濁した。次に、10マイクロリッター
のFITC-アネキシンV(Clontech)及び10マイクロリッターのヨウ化プロオ
ピジウムが細胞に添加された(Mooreら,Meth. In Cell Biol., 57:265(1998))
。暗中15分のインキュベーションの後、細胞をFACScanで分析した。 結果はFigure8A及び8Bに示されている。結果は、補体をリンカーとして使
用し誘導されたアポトーシスの程度は、ヤギ抗マウスIgG−Fcリンカーの使
用と比較して同じ程に強力ではないが、4G7.17.8、5G11.17.1
及び1H5.24.9抗DR4抗体が9D細胞のアポトーシスを誘導したことを
示す。しかしながら、交差DR4抗体のアポトーシス活性(約1−2マイクログ
ラム/mlの濃度)は、同じような濃度のApo−2Lのアポトーシス活性に対
して匹敵する。
後の癌細胞の細胞生存度を決定するアッセイにで更に検定した。 SKMES−1細胞(ヒト肺腫瘍細胞株;ATCC)及びHCT−116細胞(
ヒト結腸腫瘍細胞株;ATCC)は、組織培地プレート中の、グルタミン、ペニ
シリン及びスプレプトマイシンで補充した完全高グルコース50:50培地に4
x104細胞/ウェルで播種され、一晩37℃で付着された。その後、培地はウ
ェルから取り除かれ、0.1mlの抗体(完全培地で0.001−10マイクロ
グラム/mlに希釈された抗DR4抗体)が選択ウェルへ添加された。抗体を含
まないコントロールウェルは、Apo−2Lを含む或いは含まない培地変換が行
われた。そして、プレートは、室温で一時間に渡ってインキュベートされた。
ヤギ抗マウスIgG−Fc(Cappel Laboratories)又はウサギ補体(Cedar Lane;
1:10へ培地中で希釈)がウェルへ添加された。コントロールウェルにおいて
培地が変えられた。プレートは、一晩37℃でインキュベートされた。コントロ
ールとして、Apo−2L(実施例4に記載)(リン酸カリウムバッファー、p
H7.0で)は2マイクログラム/mlへ希釈された。0.1mlの希釈Apo
−2L溶液が選択ウェルへ添加され、そして次に連続 三倍希釈がプレートを残した。 次に、吸引によって培養上清をウェルから取り除き、プレートはメタノール溶
液中の0.5%クリスタルバイオレット溶液で浸された。15分後、クリスタル
バイオレット溶液は、プレートを流水中の水道水で浸すことで取り除かれた。そ
して、プレートを一晩乾燥させた。
40nmで測定した。Excel macro 及び4pfit を使用してデ
ータを分析した。SKMES細胞のDR4抗体の活性を示した結果は、Figure9
及び10に示されている。 Figure9及び10Aは、細胞が1H8.17.5、4E7.24.3、4G7.
17.8、4H6.17.8、4G10.20.6、及び5G11.17.1抗
体の各々とヤギ抗マウスIgG Fcを加えたものとインキュベートした際に、
1H8.17.5、4E7.24.3、4G7.17.8、4H6.17.8、
4G10.20.6、及び5G11.17.1抗体がSKMES細胞の細胞死を
誘導したことを示す(1H5抗体もまた、SKMES細胞の細胞死を誘導するこ
とが見出された。データはFigure9及び10Aに示されていない)。対照的に、
3G1.17.2抗体は、IgG Fc架橋剤の存在下でさえも、細胞に細胞死
を誘導しなかった。Figure10Bは、ウサギ補体存在下での、SKMES細胞上
の4G7(IgG2aアイソタイプ)及び5G11(IgG2bアイソタイプ)抗
体のアポトーシス活性を示している。 Figure11に示された結果は、HCT116結腸癌細胞のDR4抗体の活性を
示している。IgG2アイソタイプDR4抗体、4G7及び5G11は、IgG
Fc又は補体の存在下において、結腸癌細胞にアポトーシスを誘導する。DR
4抗体、4E7(IgG1アイソタイプ)は、ヤギ抗マウスIgG Fcの存在下
で強力なアポトーシス活性を示したが、補体の存在下でアポトーシスを誘導しな
かった。
イ DR4に加えて、他のApo−2LレセプターへのDR4抗体の結合を測定す
るために、ELISAアッセイが(実施例2及び6に記載)行われた。 5G11.17.1抗体は、DR4及びApo−2へ結合し、DcR1及びD
cR2に対してある程度(弱い)の交差反応性を示した。4G10.20.6抗
体はDR4へ結合し、Apo−2に対してある程度(弱い)の交差反応性を示し
た。他の抗体、1H8.17.5、4G7.18.8、1H5.24.9、及び
3G1.17.2はDR4へ結合するが、Apo−2、DcR1,又はDcR2
レセプターのいずれへも結合しない。
通常の補体溶解によって達成されたのかを決定するために、PARPアッセイが
行われた。 9D細胞(100マイクロリッターの完全RPMI培地中の5x105(実施
例11に記載)を100μgの抗体(4G7又は5G11)とともに氷上で15
分間でインキュベートした。そして、300μlのウサギ補体(Cedar Lane;1
.0mlの冷蒸留水で希釈し、2.0mlの培地を添加)を細胞へ加えた。次い
で、細胞を一晩37℃でインキュベートした。インキュベーシュンの終了時には
、細胞は超遠近分離にかけられ、集められ、そして細胞洗浄バッファー(50m
M Tris−HCl,pH7.5,0.15M NaCl,1mM CaCl2
,1mM MgCl2)で一度洗浄された。次に、細胞ペレットをプロテアーゼ
インヒビターを含む50μlの細胞溶解バッファー(細胞洗浄バッファーに1%
のNP40を加えた)で溶解し、氷上で30分間インキュベートし、そして13,0
00rpmで10分間遠心分離にかけた。
の後、タンパク質は7.5%SDS PAGEゲルで分離され、イムノブロット
PVDF膜(Gelman)へ移された。ブロッキングバッファー(Boehringer Mannheim
)によって非特異的結合部位をブロックした後、HRP−ウサギ抗−ポリ(ADP
−リボース)−ポリメラーゼ(Boehringer Mannheim)を使用してポリ−(ADP−
リボース) ポリメラーゼが検出された。この抗体は、アポトーシスの初期段階で
生成された分解(85kd)PARPのみならず無傷(116kd)PARPも検
出する。結合抗−HRP−ウサギ抗−ポリ(ADP−リボース)−ポリメラーゼは
、製造者指示書(Amersham, Arlington Heights, IL)に従って化学発光免疫アッ
セイシグナル試薬を使用することで検出された。 結果はFigure12に記載されている。補体へ4G7又は5G11のどちらかを
加えたもので処理した細胞は、分解85kd PARPの存在を示し、これは、
それぞれの抗体によって誘導された9D細胞死のメカニズムがアポトーシスによ
るものであることを示した。アッセイへ添加された補体が、56℃で30分間イ
ンキュベートすることによって熱熱失活した場合、PARPの85kd分解断片
は検出されない。この結果は、ウサギ血清の補体が細胞へ結合している抗DR4
抗体のオリゴマー化を誘導し、それが9D細胞のアポトーシスとなったことを示
唆している。
から(上記の実施例に記載)、動物に存在する天然補体分子の存在下で、これら
の抗体がインビボで腫瘍細胞のアポトーシスを誘導すことが可能かどうかを決定
するためにインビボアッセイが行われた。 HCT116細胞(ヒト結腸腫瘍細胞株;ATCC)又はColo205細胞(
ヒト結腸腫瘍細胞株;ATCC)は、10%FCS、2mMグルタミン、100
μg/mlのペニシリン、及び100μg/mlのストレプトマイシンで補充さ
れた高グルコースF−12:DMEM(50:50)培地で生育された。細胞は
、5分間、細胞分離培地(Sigma, IAC)で処理した後に収集された。PBSで洗
浄後、腫瘍細胞を3x107細胞/mlの濃度でPBSに懸濁した。 ヌードマウスの背側へ、3−5x106の細胞を0.1mlの容量で皮下注射
した。HCT腫瘍を産する動物の腫瘍のサイズが所望のサイズになった際、マウ
スは、週3回、100μgのPBS中の単量体抗DR4抗体を腹腔内に注射され
、腫瘍サイズは3回/週測定された。Colo205腫瘍を産する動物は、種々
の濃度のDR4抗体、4G7及び4H6を腹腔内に注射された(Figure 15及び
16に示したように)。HCT116腫瘍の調べる実験の終了時には、マウスが
犠牲にされ、各腫瘍の重さが測定された。
CT116腫瘍の成長を阻害したことを示している。抗体5G11及び4G7に
よる処理後、それぞれおおよそ35−40%そして50%のHCT116腫瘍の
成長阻害があった。 Figure15及び16に図示されている結果は、4G7及び5G11の両方がC
olo205腫瘍の成長を阻害したことを示している。Fig.15は、腫瘍のサイ
ズが小さいほど、抗体治療がさらに効果的であることを図示している。Fig.16
は、25−200マイクログラムの4G7で治療されたマウス(週に三回注射)
、4G7の50マイクログラム投与を受けたマウスがColo205腫瘍成長の
最大阻害(70%)に達したことを示している。4H6抗体は、10日の治療の
後、Colo205腫瘍成長をゼロ付近まで減少させた。10日目の4H6(1
00マイクログラム/注射)による治療の終了時には、4/8マウスはColo
205腫瘍成長を示さなかった(データは示されていない)。関連した実験では
、出願人は、週一度の5mg/kgの4H6による治療で、腫瘍退行が同じよう
に達成されたことを見出した。4H6抗体の投与後に再出現した幾つかの腫瘍が
静止することは知られており、これは、幾つかの腫瘍細胞が治療中に完全に除去
されなかったことを示唆している。5mg/kgの4H6抗体の一本の腹腔内注
射の三日後、Colo205腫瘍の組織学的切片は、広範なアポトーシスを示し
た(4G7抗体のコントロール抗体で処理したマウスは、ほんの僅かなアポトー
シスを示した)。対照的に、腫瘍における細胞浸潤物の広がりと組成物は、4H
6抗体及びコントロール抗体で処理された動物と同じようにみえた。このデータ
は、4H6抗体が、免疫エフェクター機能を補充することで間接的に抗腫瘍活性
を発揮するよりも、腫瘍細胞においてアポトーシスを誘導することを通して抗腫
瘍活性を発揮することを示唆している。
類似のインビボ実験では、マウスは、1H5及び3G1抗体を含む前記の抗DR
4抗体の2.5mg/kgで、週3回、4日目から治療された。22日目には、
腫瘍のサイズが測定され、%成長阻害が、4H6モノクローナル抗体の抗腫瘍活
性を100%阻害としたことを基礎に計算された。PBS(コントロール)及び
4H6抗体で処理された動物の腫瘍サイズは、それぞれ498±322m3及び
m3であった。3G1、4E7、及び4H6抗体(すべてIgG1アイソタイプ
抗体)は、IgG2アイソタイプ抗体、1H5、4G7、及びmIgG2a−4
H6アイソタイプスイッチ変異体(下記に記載)よりも強い抗癌活性を示した。
IgG1抗体及びIgG2a抗体による腫瘍成長阻害の範囲は、それぞれ42−
100%及び27−30%であった。3G1抗体は、インビトロ交差結合におい
て比較的に弱いアゴニストの活性を示したにもかかわらず、3G1抗体は、イン
ビトロにおいて42%のColo205腫瘍の成長を阻害した。これらの結果は
、DR4レセプターを通しての抗腫瘍活性の媒介において、mIgG1アイソタ
イプはmIgG2aアイソタイプよりもより効果的である可能性がることを示唆
している。
DR4抗体は、活性抗癌剤に成り得ることを示唆している。すべてが理解された
のではないが、内在的メカニズムを通してのオリゴマー化、例えばFc領域と動
物に存在する天然補体、又はエフェクター細胞のFcガンマーレセプターとの相
互作用、或いは自発的自己Fc−Fc凝集を通しての相互作用によって、投与さ
れた抗体がアポトーシスを誘導することは可能である。IgG1、IgG2、又
はIgG3(補体を固定できる)のようなヒトIgアイソタイプの抗DR4抗体
が、補体を使用して交差結合すること及びアポトーシスを誘導することが同様に
可能であり得ると考えられている。 上記の二つの抗DR4抗体の活性の相対的相違をさらに調べるために、4H6
マウスモノクローナル抗体のマウスIgG2aアイソタイプスイッチ変異体が作
製され、そのインビボとインビトロ活性、及び親4H6マウスモノクローナル抗
体の間で比較が行われた。
(1992)に記載されているようにTaq ポリメラーゼを使用することで、相当す
る4H6ハイブリドーマからのmRNAをPCR増幅することで単離された。抗
センスPCRプライマーが4H6の軽鎖及び重鎖の各鎖のマウスフレームワーク
4のコンセンサス配列に基づいているのに対して、4H6の軽鎖及び重鎖のN末
端アミノ酸配列はセンス鎖PCRプライマーの設計に使用された。増幅DNA断
片は、軽鎖については制限酵素Nsi及びRsrII、重鎖についてはMluI及
びApaIで消化された(更なる詳細は、下記の実施例16を参照のこと)。軽
鎖及び重鎖の可変ドメインcDNAは、プラスミド発現ベクターにおいてマウス
Ck及びIgG2 CH1−CH2−CH3ドメインと別々に組み合わせられた
。軽及び重鎖cDNAベクターは、7日間に渡って293細胞へ同時トランスフ
ェクションされ、培地は収集され、分泌IgG2a−4H6型はプロテインGを
使用したアフィニテイー精製によって回収された。
に代わって、Colo205細胞が使用されたことを除いて)では、ヤギ抗マウ
スIgGとの交差結合において、二つの異なる4H6アイソタイプが同じような
活性を示した。対照的に、インビボの実施例15に記載の通りに行われたアッセ
イ(2.5mg/kgで週二回の抗体の投与で動物を治療したことを除いて)では、
4H6のIgG1アイソタイプは、そのIgG2a対応物よりもかなり活性があ
った。2.5mg/kgの週二回の投与で、22日目までに、IgG1−4H6及び
IgG2a−4H6は、Colo205腫瘍の成長をそれぞれ96%、35%阻
害した。IgG2a−4G7抗体の抗腫瘍活性は、IgG2a−4H6抗体のそ
れに類似していた。従って、少なくともこれら二つの抗体については、インビボ
活性にためには、抗体のアイソタイプが標的エピトープよりも重要であると思わ
れる。
例2を参照のこと)の配列が決定された。N末端配列のデータは、軽及び重鎖の
可変領域の5'末端に対して特異的なPCRプライマーを設計するために使用さ
れ、3'末端プライマーは、各鎖のコンセンサスフレームワーク4へアニールす
るように設計された(Kabatら, Sequences of Proteins of Immunological Inter
est,5版, Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda
, MD.(1991))。手短に言うと、抗体のためのすべての潜在的なフレームワーク
4を表す3'縮重プライマーが設計された。クローニングのための制限酵素部位
が加えられるようにプライマーは設計された;特に軽鎖のためのNsiI及びR
srII、及び重鎖のためのMluI及びApaI(位置は下記に太字で示されてい
る)。 3'縮重プライマー: w=a/t,k=g/t,b=g/t/c,y=c/t,r=a/g,s=g/
c, m=a/c,n=a/g/t/c 軽鎖:tgc agc cac ggw ccg wkt bak ytc car ytt kgt ssc RsrII (配列番号:3) 重鎖:gac cga tgg gcc cgt cgt ttt ggc tgm rga rac ngt gas ApaI (配列番号:4) 5'特異的プライマー 4H6軽鎖(4H6LF1): gct aca aat gca tac gct gat atc cag atg aca cag (配列番号:5)NsiI 上記の下線部コドンは、Figure18A−C(配列番号:9)に示されているア
ミノ酸21−26をコードする4H6抗体軽鎖の天然配列のコドン(Figure18
A)に相当する。 4H6重鎖(4H6HF1): gct aca aac gcg tac gct cag gtg cag ctg aag gag (配列番号:6)MluI 上記の配列番号:6の下線部コドンは、重鎖可変ドメインの最初の6アミノ酸
をコードする4H6抗体重鎖の天然配列のコドンに相当する。天然配列4H6可
変ドメインの最初の2アミノ酸はグルタミン(Q)及びバリン(V)で、それぞれ
コドンcag及びgtgでコードされていることが知られている。対照的に、Fi
gure18D−18Hでは、重鎖可変ドメインの最初の2アミノ酸(シグナル配列
に続く位置20及び21に現れる)は、それぞれコドンgaa及びgttでコー
ドされているグルタミン酸(E)及びバリン(V)として示されている。重鎖可変
ドメインの最初の二つのアミノ酸をコードするコドンの交換は、使用されたベク
ター構築物のためである;そして、Figure18Dでは、可変ドメインの最初の二
つのアミノ酸(及び相当するコドン)(位置20及び21に現れる)は、実際にベ
クター由来のアミノ酸を反映している。
マ4H6.17.8(実施例2を参照のこと)から抽出した全RNAは、RT−
PCRの基質として使用された。フレームワーク4縮重プライマー及びSuperscr
ipt II RNase H-Reverse Transcriptase(スーパースクリプトII リボヌクレアー
ゼH−逆転写酵素)(Gibco 18064-014)を使用する標準的条件(Kawasaki,E.S. in
PCR Protocols: A Guide to Method and Applications, Innis, M.A., ら,eds
. pp21-27, Academic Press, Inc., San Diego, 1990)の下で、逆転写は行われ
た。PCR増幅には、2%DMSOが反応混合液に含まれていたことを除いて、
記載されていたように(Kawasaki, E.S., 上掲)Taqポリメラーゼを用いた。
増幅されたDNA断片は、制限酵素NsiI及びRsrII(軽鎖)又はMluI及
びApaI(重鎖)で消化され、ゲルで精製され、ベクターss.vegf4chimeraへク
ローンされた(Prestaら, Cancer Research, 57: 4593-4599(1997))。軽及び重
鎖マウス可変ドメインcDNAは、上流及びフレーム単位でヒトカッパ及びIg
G1CH1ドメインへ挿入された。F(ab')2生成の過程でジスルフィド架橋
を形成するpAK19の重鎖のC末端システイン(Carterら,Bio/Technology, 1
0:163(1992))は、抗体のFab型の発現を可能にするために取り除かれた。F
abタンパク質が特にその同系のレセプターDR4−IgGへ結合することが、
捕獲ELISA(HRP−ヒツジ親和性精製IgG及び抗ヒトIgG F(ab)'2(
Capplel Laboratories)を1:2500で使用したを除いて実施例2に記載の通
りに行った)によって確められた。一度特異性が確かめられると、4H6.17
.8のマウス重鎖可変ドメインが制限酵素PvuII及びApaIで消化され、ゲ
ルで精製され、Carterら., Proc. Natl. Acad. Sci., 89: 4285(1992)に記載の
ヒトIgG1ベクター構成物へクローンされた(4D5抗体のヒト化との関連で)
。重鎖の最初アミノ酸はベクター由来で、上記に記載したような4H6.17.
8の基の又は天然配列からはQがEへ変化したものであった。天然配列の2番目
のアミノ酸は、異なったコドンでコードされ、上記に記載のようにベクター由来
であるにもかかわらず、VでありVのままである。マウス軽鎖及び重鎖cDNA
の可変ドメインは、上流及びフレーム単位でヒトカッパ及びIgG1 CH1−
CH2−CH3ドメインへ挿入された。軽及び重鎖キメラcDNAベクターは、
標準的技術を使用してCHO細胞へ同時トランスフェクションされ、次に分泌抗
体はプロテインGカラムを使用したアフィニティ精製によって回収された。
配列及び推定上のアミノ酸配列がFigure18A−18Hに示されている。軽鎖は
、Figure18A−18C(配列番号:9)のアミノ酸20から126を含んでな
る可変ドメインを含んだ。Figure18A−18Cはまた、シグナル配列(Figure
18A−18C(配列番号:9)のアミノ酸1から19)及びアミノ酸127か
ら233(Figure18A−18C;配列番号:9)を含んでなるヒトCH1ドメ
インを示す。重鎖は、Figure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸20
から145を含んでなる可変ドメインを含んだ。Figs.18D−18Hはまた、
シグナル配列(Figure18D−18H(配列番号:12)のアミノ酸1から19)
及びヒトCH1、CH2、及びCH3ドメイン(Figure18D−18H(配列番号
:12)のアミノ酸146から476)を示す。
6を参照のこと)の効力は、クリスタルバイオレット染色によって測定される。
SK−MES−1細胞(ヒト肺腫瘍細胞;ATCC)(4x104細胞/100u
l/ウェル)は、ヤギ抗マウスIgG Fc(10μg/ml)又はヤギ抗ヒトI
gG Fc(10μg/ml)を共なうか共なわないモノクローナル抗体の連続希
釈物を共なって一晩インキュベートされた(10%FCS、2mMグルタミン及
び抗生物質を補充したDMEM/F−12(50:50)培地中で)。試験され
たモノクローナル抗体は、マウス4H6.17.8、精製マウス4H.17.8
抗体(実施例2に記載)、及びキメラ4H6抗体(実施例16に記載)からのF(
ab)'2調製物を含んだ。最終容量が100μlに調製されたApo2L/TR
AILの連続希釈物(WO97/25428に開示された大腸菌で発現されたApo2L/
TRAIL配列のアミノ酸114−281;また、Ashkenaziら,J. Clin. Inve
st., 104:155-162(1999)を参照のこと)は、正のコントロールとして各プレート
へ添加された。37℃で一晩のインキュベーションの後、培地は取り除かれ、Fl
ickら, J. Immunol. Methods, 68:167-175(1984)に記載されているようにクリス
タルバイオレットを使用して、生細胞を染色した。プレートは、SLTプレート
リーダーで540nMで読み取られた。
SK−MES−1細胞は、マウスモノクローナル4H6.17.8に匹敵する。 インビトロにおいて、キメラ4H6抗体が抗体依存性細胞障害活性(ADCC)
を誘導するのかどうかを調べるために、その他のアッセイが行われた。 エフェクター細胞のソースとして、51Cr−ラベル化Colo205細胞(
ヒト結腸腫瘍細胞株;ATCC)(10%FCS、1%L−グルタミン、1%ペ
ニシリン−ストレプトマイシンを補充したRPMI培地中の2x104細胞/ウ
ェル)を最初にキメラ4H6抗体(5μg/ml)と、次にヒトPBLと一晩イ
ンキュベートすることで、実験は行われた。PBLは、フィコール・ハイパック
遠心分離 (Ficoll-Hypaque centrifugation)によってヒト全血液から精製された
。正のコントロールとして、キメラ4H6抗体にヤギ抗ヒトIgG (10μg/
ml)を加えたもの(ICN Pharmaceuticalsより購入した)で処理した 51Cr
−Colo205細胞を含めた。負のコントロールとして、抗ヒトIgE抗体("
2E5";Genentech)が加えられた。Figure20に示されているように、キメラ
4H6抗体にヤギ抗ヒトIgG で処理した51Cr−Colo205細胞は、
52%の51Crを遊離する結果となった。エフェクターの標的への比率が40
:1では、40%の51Crを遊離があり、これは、キメラ4H6抗体が顕著な
レベルのADCCを誘導することを示唆した。パーセント51Cr遊離は、1%
トライトンX-100(Triton X-100)処理後の51Cr−Colo205細胞の5
1Crを遊離を基礎として計算された。
0%FCS、2mM グルタミン、及び抗生物質で補充されたDMEM/F−1
2(50:50)培地中で生育された。メス胸腺欠損ヌードマウス(4−6週齢、
グループ当たり7−8マウス)の背側部分へ、0.2mlPBS中の5x106 のColo205細胞を皮下注射した。一度、腫瘍のサイズが50−100m3 に達すると、マウスはランダムにグループ分けされ、モノクローナル抗体(精製
マウス4H6.17.8抗体(実施例2を参照のこと);キメラ4H6抗体(実施
例16を参照のこと);及びコントロールIgG1抗体)は、5mg/kg、0.1
mlの容量で週1回、腹腔内に与えられた。 Fig.21に示されているように、キメラ4H6抗体の抗腫瘍活性がマウス4H
6.17.8モノクローナル抗体ほどに強力でないにもかかわらず、キメラ4H
6抗体は、異種移植片ヌードモデルにおいて抗腫瘍活性を示した。キメラ4H6
抗体のより弱い抗腫瘍活性は、インビボ研究のために使用された異種システムが
原因であると考えられている。
y Blvd., Manassas, Virginia, USA(ATCC)に寄託した: 材料 ATCC寄託番号 寄託日 4E7.24.3 HB−12454 1998年1月13日 4H6.17.8 HB−12455 1998年1月13日 1H5.25.9 HB−12695 1999年4月 1日 4G7.18.8 PTA−99 1999年5月21日 5G11.17.1 HB−12694 1999年4月 1日
約及びその規則(ブダペスト条約)の規定に従って行われた。これは、寄託の日付
から30年間、寄託の生存可能な培養が維持されることを保証するものである。
寄託物はブダペスト条約の条項に従い、またジェネンテク社とATCCとの間の合意
に従い、ATCCから入手することができ、これは、どれが最初であろうとも、関連
した米国特許の発行時又は任意の米国又は外国特許出願の公開時に、寄託培養物
の後代を永久かつ非制限的に入手可能とすることを保証し、米国特許法第122条
及びそれに従う特許庁長官規則(特に参照番号886OG638の37CFR第1.14条を含む)
に従って権利を有すると米国特許庁長官が決定した者に後代を入手可能とするこ
とを保証するものである。
死亡もしくは損失又は破壊されたならば、材料は通知時に同一の他のもの即座に
取り替えることに同意する。寄託物質の入手可能性は、特許法に従いあらゆる政
府の権限下で認められた権利に違反して、本発明を実施するライセンスであると
みなされるものではない。
分であると考えられる。寄託した態様は、本発明のある側面の一つの説明として
意図されており、機能的に等価なあらゆる作成物がこの発明の範囲内にあるため
、寄託された作成物により、本発明の範囲が限定されるものではない。ここでの
物質の寄託は、文書による説明が、そのベストモードを含む、本発明の任意の側
面の実施を可能にするために不十分であることを認めるものではないし、それが
表す特定の例証に対して請求の範囲を制限するものと解釈されるものでもない。
実際、ここに示し記載したものに加えて、本発明を様々に改変することは、前記
の記載から当業者にとっては明らかなものであり、添付の請求の範囲内に入るも
のである。
:2)及びそれより派生するアミノ酸配列(配列番号:1)を示す。ヒトDR4
に関するそれぞれのヌクレオチド及びアミノ酸配列はまた、Panら,Science, 27
6:111(1997)に報告されている。
、4E7.24.3("4E7")及び4H6.17.8("4H6")(太い線に
よって例示)によるDR4結合のFACS分析を示す。両抗体は、ヒト9D細胞
に発現されたDR4レセプターを認識した。
って9D細胞内に誘導されたパーセント(%)アポトーシスを示すグラフ。
、抗DR4抗体、4E7.24.3及び4H6.17.8によって9D細胞内に
誘導されたパーセント(%)アポトーシスをApo−2Lとの比較で示す棒グラ
フ。
を阻止する抗DR4抗体4H6.17.8の能力を図解する棒線図。
他の既知のApo−2LレセプターへのDR4抗体、4E7.24.3及び4H
6.17.8の結合を試験したELISAの結果を示すグラフ。
4−IgGへのDR4抗体、4E7、4H6、及び5G11.17.1("5G1
1")の結合親和性を示す。例えばApo−2LへのDR4及びDR5イムノア
ドヘシンの免疫接着結合親和性が比較として示されている。
いは存在下における、DR4抗体1H5.25.9("1H5")、4G7.18
.8("4G7")、及び5G11の種々の濃度によって9D細胞内に誘導される
パーセント(%)アポトーシス(FACS分析によって測定されるような)を図
解するグラフを示す。
おける、9D細胞でのDR4抗体4G7及び5G11のアポトーシス活性(FA
CS分析によって測定されるような)を図解するグラフを示す。
S−1肺腫瘍細胞でのDR4抗体、4H6、4E7、4G7、4G10.20.
6(4G10)、3G1.17.2(3G1)、5G11、1H8.17.5(1
H8)、及び1H5.24.9(1H5)のアポトーシス活性を示す。
おける、SKMES−1肺腫瘍細胞でのDR4抗体、4G7、及び5G11のア
ポトーシス活性を示す。
−1肺腫瘍細胞でのDR4抗体、4G7、及び5G11のアポトーシス活性を示
す。
T116結腸腫瘍細胞でのDR4抗体、4G7及び5G11のアポトーシス活性
を示す。
6結腸腫瘍細胞でのDR4抗体、4G7、及び5G11のアポトーシス活性を示
す。
16結腸腫瘍の成長に対するDR4抗体、4G7及び5G11の影響を示す。
16結腸腫瘍の成長に対するDR4抗体、4G7及び5G11の影響を示す。
腸205結腸腫瘍の成長に対するDR4抗体、4G7及び4H6の影響を示す。
.17.2;4E7.24.3;4G7.18.8;4H6.17.8;4G1
0.20.6;及び5G11.17.1の各抗体について同定された種々の性質
及び活性と同じく、それぞれの抗体について同定した表を提供する。
クレオチドコード化配列(配列番号:7)及びその相補的DNA配列(配列番号:
8)を含み、シグナル配列(ベクター由来)(配列番号:9のアミノ酸残基1から
19として同定)を含む推定上のアミノ酸配列(配列番号:9);軽鎖の可変ド
メイン(配列番号:9のアミノ酸残基20から126として同定);及びヒトカ
ッパCH1定常ドメイン(配列番号:9のアミノ酸残基127から233として
同定)を示す。それぞれのフレームワーク(FR1、FR2、FR3、及びFR
4)及びCDR(CDR1、CDR2、CDR3)領域も示されている;各領域は
、下線が引かれている。
クレオチドコード化配列(配列番号:10)及びその相補的DNA配列(配列番号
:11)を含み、シグナル配列(ベクター由来)(配列番号:12のアミノ酸残基
1から19として同定)を含む推定上のアミノ酸配列(配列番号:12);重鎖
の可変ドメイン(配列番号:12のアミノ酸残基20から145として同定);
及びヒトIgG1CH1、CH2、及びCH3定常ドメイン(配列番号:12の
アミノ酸残基146から476として同定)を示す。位置20のアミノ酸(4H
6マウス重鎖可変ドメインの最初のアミノ酸に一致)は、グルタミン酸残基であ
ると示されている。4H6.17.8ハイブリドーマより配列が決定された天然
4H6マウス重鎖可変ドメインにおいては、最初のアミノ酸はグルタミン残基で
あり、グルタミン酸ではないことは知られている。それぞれのフレームワーク(
FR1、FR2、FR3、及びFR4)及びCDR(CDR1、CDR2、CDR
3)領域も示されている;各領域は、下線が引かれている。
4H6抗体(Ch4H6)(ヤギ抗ヒトIgG Fcを加えた)の影響(SK−ME
S−1のインビボ細胞死滅)を示す。マウス4H6モノクローナル抗体(4H6
)、F(ab)'2 4H6及びApo2Lも示されている。
キメラ4H6抗体(c4H6)(ヤギ抗ヒトIgG Fcを加えた)のADCC効
果を示す。
5結腸腫瘍の成長に対するキメラ4H6抗体(ch−4H6)の影響を示す。マ
ウスモノクローナル抗体(4H6)及びIgG1の影響も示されている。
Claims (34)
- 【請求項1】 アメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号 ATC
C HB−12695の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株によって生産され
るモノクローナル抗体と、同じ生物学的特徴を有する単離された抗DR4抗体。 - 【請求項2】 アメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号 ATC
C HB−12694の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株によって生産され
るモノクローナル抗体と、同じ生物学的特徴を有する単離された抗DR4抗体。 - 【請求項3】 アメリカンタイプカルチャーコレクション特許寄託指定 P
TA−99の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株によって生産されるモノクロ
ーナル抗体と、同じ生物学的特徴を有する単離された抗DR4抗体。 - 【請求項4】 抗体がアメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号
ATCC HB−12695の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株よって生産
されるモノクローナル抗体が結合するのと同じエピトープと結合する、単離され
た抗DR4抗体。 - 【請求項5】 抗体がアメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号
ATCC HB−12694の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株より生産さ
れるモノクローナル抗体が結合するのと同じエピトープと結合する、単離された
抗DR4抗体。 - 【請求項6】 抗体がアメリカンタイプカルチャーコレクション特許寄託指
定 PTA−99の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株より生産されるモノク
ローナル抗体が結合するのと同じエピトープと結合する、単離された抗DR4抗
体。 - 【請求項7】 アメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号 ATC
C HB−12695の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株。 - 【請求項8】 アメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号 ATC
C HB−12694の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株。 - 【請求項9】 アメリカンタイプカルチャーコレクション特許寄託指定 P
TA−99の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株。 - 【請求項10】 アメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号 AT
CC HB−12695の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株より生産される
モノクローナル抗体。 - 【請求項11】 アメリカンタイプカルチャーコレクション登録番号 AT
CC HB−12694の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株より生産される
モノクローナル抗体。 - 【請求項12】 アメリカンタイプカルチャーコレクション特許寄託指定
PTA−99の下へ寄託されたハイブリドーマ細胞株より生産されるモノクロー
ナル抗体。 - 【請求項13】 軽鎖可変ドメインが配列番号:9のアミノ酸残基20から
126を含む、軽鎖可変ドメインを含んでなる単離された抗DR4抗体。 - 【請求項14】 抗DR4抗体が配列番号:9のアミノ酸残基127から2
33を含んでなる軽鎖CH1ドメインをさらに含む、請求項13の抗DR4抗体
。 - 【請求項15】 抗DR4抗体が配列番号:9のアミノ酸残基1から19を
含んでなる軽鎖シグナル配列をさらに含む、請求項13の抗DR4抗体。 - 【請求項16】 抗DR4抗体が配列番号:12のアミノ酸残基20から1
45を含んでなる重鎖可変ドメインをさらに含む、請求項13の抗DR4抗体。 - 【請求項17】 抗DR4抗体が配列番号:12のアミノ酸残基146から
476を含んでなるCH1、CH2、及びCH3ドメインをさらに含む、請求項
16の抗DR4抗体。 - 【請求項18】 配列番号:9のアミノ酸残基20から126を含んでなる
軽鎖可変ドメイン、及び配列番号:12のアミノ酸残基20から145を含んで
なる重鎖可変ドメインを含むキメラ抗DR4抗体をコードする単離された核酸。 - 【請求項19】 請求項18の単離された核酸を含んでなるベクター。
- 【請求項20】 請求項19のベクターを含んでなる宿主細胞。
- 【請求項21】 大腸菌である請求項20の宿主細胞。
- 【請求項22】 チャイニーズハムスター卵巣細胞である請求項20の宿主
細胞。 - 【請求項23】 酵母細胞である請求項20の宿主細胞。
- 【請求項24】 請求項20の宿主細胞を培養すること、及び宿主細胞培養
より抗体を回収することを含んでなる、抗DR4抗体を生産する方法。 - 【請求項25】 DR4レセプターに対して、少なくとも108M−1から
1012M−1の結合親和性を有する単離された抗DR4モノクローナル抗体。 - 【請求項26】 キメラ抗体を含んでなる請求項25の抗DR4抗体。
- 【請求項27】 ヒト化抗体を含んでなる請求項26の抗DR4抗体。
- 【請求項28】 ヒト抗体を含んでなる請求項25の抗DR4抗体。
- 【請求項29】 哺乳類細胞を抗DR4キメラ抗体の有効量へ曝露すること
を含んでなる、哺乳類癌細胞にアポトーシスを誘導する方法。 - 【請求項30】 前記哺乳類癌細胞が結腸癌細胞を含む、請求項29の方法
。 - 【請求項31】 前記哺乳類へアゴニストDR4抗体の有効量を投与するこ
とを含んでなる、哺乳類の免疫関連疾患を治療する方法。 - 【請求項32】 DR4抗体がキメラ抗体を含む、請求項31の方法。
- 【請求項33】 前記免疫関連疾患が関節炎である、請求項31の方法。
- 【請求項34】 前記免疫関連疾患が自己免疫疾患である、請求項31の方
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