JP2003222624A - ５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法 - Google Patents
５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法Info
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- JP2003222624A JP2003222624A JP2002020759A JP2002020759A JP2003222624A JP 2003222624 A JP2003222624 A JP 2003222624A JP 2002020759 A JP2002020759 A JP 2002020759A JP 2002020759 A JP2002020759 A JP 2002020759A JP 2003222624 A JP2003222624 A JP 2003222624A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 被試験水中に５，５−ジブロモ−４，４−ジ
クロロインジゴが存在するか否かを人間の目視に頼らず
に確認する。 【解決手段】 被試験水を透過する可視紫外光の、例え
ば５００〜５９０ｎｍの低波長側の吸光度と、例えば６
００〜６８０ｎｍの高波長側の吸光度とを比較する工程
を含んでいる。低波長側の吸光度が高波長側の吸光度に
比べて小さい場合、被試験水に５，５−ジブロモ−４，
４−ジクロロインジゴが存在するものと判断することが
できる。
クロロインジゴが存在するか否かを人間の目視に頼らず
に確認する。 【解決手段】 被試験水を透過する可視紫外光の、例え
ば５００〜５９０ｎｍの低波長側の吸光度と、例えば６
００〜６８０ｎｍの高波長側の吸光度とを比較する工程
を含んでいる。低波長側の吸光度が高波長側の吸光度に
比べて小さい場合、被試験水に５，５−ジブロモ−４，
４−ジクロロインジゴが存在するものと判断することが
できる。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、５，５−ジブロモ
−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法、特に、被
試験水中に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジ
ゴが存在するか否かを確認するための存否確認方法に関
する。
−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法、特に、被
試験水中に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジ
ゴが存在するか否かを確認するための存否確認方法に関
する。
【０００２】
【従来の技術とその課題】飲料水や食品の衛生管理にお
いては、大腸菌群の存否の検査が必要不可欠となってい
る。ここで、「大腸菌群」とは、好気性または通性嫌気
性のグラム陰性無芽胞の桿菌であり、乳糖を分解して酸
とガスとを生じるか、β−ガラクトシダーゼをもつ細菌
群をいい（例えば、社団法人日本水道協会発行、「上水
試験方法２００１ 解説」８４５頁参照）、「大腸菌」
そのものとは異なる概念である。因みに、飲料水中に大
腸菌群が含まれている場合、当該飲料水は、単に汚物で
汚染されているということだけではなく、病原菌類も含
んでいる可能性があることを示唆することになるため、
水道法上の水質基準では飲用に不適なものと判定される
ことになる。
いては、大腸菌群の存否の検査が必要不可欠となってい
る。ここで、「大腸菌群」とは、好気性または通性嫌気
性のグラム陰性無芽胞の桿菌であり、乳糖を分解して酸
とガスとを生じるか、β−ガラクトシダーゼをもつ細菌
群をいい（例えば、社団法人日本水道協会発行、「上水
試験方法２００１ 解説」８４５頁参照）、「大腸菌」
そのものとは異なる概念である。因みに、飲料水中に大
腸菌群が含まれている場合、当該飲料水は、単に汚物で
汚染されているということだけではなく、病原菌類も含
んでいる可能性があることを示唆することになるため、
水道法上の水質基準では飲用に不適なものと判定される
ことになる。
【０００３】ところで、大腸菌群の指標となる性状は乳
糖発酵性であり、それに関与する酵素はβ−ガラクトシ
ダーゼ（β−galactosidase）である。したがって、飲
料水等の被試験水を細菌の培養環境に設定し、そこから
β−ガラクトシダーゼを検出することができると、間接
的に大腸菌群の存在を証明することができる。そこで、
このような大腸菌群の性状を利用した、飲料水等の被試
験水中における大腸菌群の存否を迅速に判定するための
方法として、合成酵素基質培地法が知られている。合成
酵素基質培地法は、発色物質または発光物質を結合させ
た酵素基質を培地に使用し、目的とする細菌がもつ特異
酵素により当該酵素基質が加水分解されて発色または発
光することを利用した検査方法（判定方法）であり、大
腸菌群の検出用の合成酵素基質培地法として、被試験水
の変色の有無により大腸菌群の存否を判定するＸＧａｌ
−ＭＵＧ法が知られている。
糖発酵性であり、それに関与する酵素はβ−ガラクトシ
ダーゼ（β−galactosidase）である。したがって、飲
料水等の被試験水を細菌の培養環境に設定し、そこから
β−ガラクトシダーゼを検出することができると、間接
的に大腸菌群の存在を証明することができる。そこで、
このような大腸菌群の性状を利用した、飲料水等の被試
験水中における大腸菌群の存否を迅速に判定するための
方法として、合成酵素基質培地法が知られている。合成
酵素基質培地法は、発色物質または発光物質を結合させ
た酵素基質を培地に使用し、目的とする細菌がもつ特異
酵素により当該酵素基質が加水分解されて発色または発
光することを利用した検査方法（判定方法）であり、大
腸菌群の検出用の合成酵素基質培地法として、被試験水
の変色の有無により大腸菌群の存否を判定するＸＧａｌ
−ＭＵＧ法が知られている。
【０００４】ＸＧａｌ−ＭＵＧ法では、発色合成酵素基
質である５−ブロモ−４−クロロ―３−インドリル−β
−Ｄ−ガラクトピラノシド（通称Ｘ−Ｇａｌ）、大腸菌
群の栄養素となるペプトン等およびピルビン酸ナトリウ
ム等の炭素源、塩類、界面活性剤並びにｐＨ調整剤を所
定の濃度で含む合成酵素基質培地を一定量の被試験水中
に所定量添加し、３６±１℃で合成酵素基質培地の種類
に応じて２４〜４８時間培養する。ここで、被試験水中
に大腸菌群が含まれている場合は、大腸菌群が栄養素に
より培養され、β−ガラクトシダーゼが生成する。生成
したβ−ガラクトシダーゼは、発色合成酵素基質である
ＸＧａｌを加水分解し、青〜青緑色を呈する５，５−ジ
ブロモ−４，４−ジクロロインジゴを生成させる。これ
により、被試験水は青〜青緑色に変色するので、大腸菌
群を含むものと判定することができる。一方、被試験水
中に大腸菌群が含まれていない場合は、上述の合成酵素
基質培地を添加しても大腸菌群が培養されることはない
ので、被試験水中にβ−ガラクトシダーゼは生成しな
い。したがって、被試験水中において５，５−ジブロモ
−４，４−ジクロロインジゴは生成しないので、被試験
水は上述のような青〜青緑色に変色しない。この結果、
被試験水には大腸菌群が存在しないものと判定すること
ができる。
質である５−ブロモ−４−クロロ―３−インドリル−β
−Ｄ−ガラクトピラノシド（通称Ｘ−Ｇａｌ）、大腸菌
群の栄養素となるペプトン等およびピルビン酸ナトリウ
ム等の炭素源、塩類、界面活性剤並びにｐＨ調整剤を所
定の濃度で含む合成酵素基質培地を一定量の被試験水中
に所定量添加し、３６±１℃で合成酵素基質培地の種類
に応じて２４〜４８時間培養する。ここで、被試験水中
に大腸菌群が含まれている場合は、大腸菌群が栄養素に
より培養され、β−ガラクトシダーゼが生成する。生成
したβ−ガラクトシダーゼは、発色合成酵素基質である
ＸＧａｌを加水分解し、青〜青緑色を呈する５，５−ジ
ブロモ−４，４−ジクロロインジゴを生成させる。これ
により、被試験水は青〜青緑色に変色するので、大腸菌
群を含むものと判定することができる。一方、被試験水
中に大腸菌群が含まれていない場合は、上述の合成酵素
基質培地を添加しても大腸菌群が培養されることはない
ので、被試験水中にβ−ガラクトシダーゼは生成しな
い。したがって、被試験水中において５，５−ジブロモ
−４，４−ジクロロインジゴは生成しないので、被試験
水は上述のような青〜青緑色に変色しない。この結果、
被試験水には大腸菌群が存在しないものと判定すること
ができる。
【０００５】ところで、上述のようなＸＧａｌ−ＭＵＧ
法は、経験を積んだ検定者の手作業により実施され、被
試験水の変色は当該検定者が目視で判断しているため、
作業が煩雑である。このため、ＸＧａｌ−ＭＵＧ法を簡
便に実施するためには、その自動化装置の開発が不可欠
となる。このような自動化装置においては、β−ガラク
トシダーゼによるＸＧａｌの加水分解により、被試験水
中に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが生
成したか否か、すなわち、被試験水中に５，５−ジブロ
モ−４，４−ジクロロインジゴが存在するか否かを人間
の目視に頼らず機械的に正確に確認する必要がある。
法は、経験を積んだ検定者の手作業により実施され、被
試験水の変色は当該検定者が目視で判断しているため、
作業が煩雑である。このため、ＸＧａｌ−ＭＵＧ法を簡
便に実施するためには、その自動化装置の開発が不可欠
となる。このような自動化装置においては、β−ガラク
トシダーゼによるＸＧａｌの加水分解により、被試験水
中に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが生
成したか否か、すなわち、被試験水中に５，５−ジブロ
モ−４，４−ジクロロインジゴが存在するか否かを人間
の目視に頼らず機械的に正確に確認する必要がある。
【０００６】本発明の目的は、被試験水中に５，５−ジ
ブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在するか否かを
人間の目視に頼らずに確認することにある。
ブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在するか否かを
人間の目視に頼らずに確認することにある。
【０００７】
【課題を解決するための手段】本発明の方法は、被試験
水中に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが
存在するか否かを確認するための方法であり、被試験水
を透過する可視紫外光の低波長側の吸光度と高波長側の
吸光度とを比較する工程を含んでいる。
水中に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが
存在するか否かを確認するための方法であり、被試験水
を透過する可視紫外光の低波長側の吸光度と高波長側の
吸光度とを比較する工程を含んでいる。
【０００８】ここで、低波長側の吸光度は、例えば５０
０〜５９０ｎｍの波長の可視紫外光の吸光度であり、ま
た、高波長側の吸光度は、例えば６００〜６８０ｎｍの
波長の可視紫外光の吸光度である。
０〜５９０ｎｍの波長の可視紫外光の吸光度であり、ま
た、高波長側の吸光度は、例えば６００〜６８０ｎｍの
波長の可視紫外光の吸光度である。
【０００９】
【発明の実施の形態】合成酵素基質培地法であるＸＧａ
ｌ−ＭＵＧ法により水中に大腸菌群が存在するか否かを
判定する場合を例にして、本発明の実施の一形態に係る
５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確
認方法を説明する。
ｌ−ＭＵＧ法により水中に大腸菌群が存在するか否かを
判定する場合を例にして、本発明の実施の一形態に係る
５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確
認方法を説明する。
【００１０】ＸＧａｌ−ＭＵＧ法により水中に大腸菌群
が存在するか否かを判定する場合は、石英ガラスなどの
透光性を有する無色透明の材料を用いて形成された容器
（例えば試験管）内に試験対象となる水（被試験水）を
注入する。ここで、被試験水の注入量は、通常、５０ｍ
ｌに設定する。
が存在するか否かを判定する場合は、石英ガラスなどの
透光性を有する無色透明の材料を用いて形成された容器
（例えば試験管）内に試験対象となる水（被試験水）を
注入する。ここで、被試験水の注入量は、通常、５０ｍ
ｌに設定する。
【００１１】次に、容器内の被試験水中にＸＧａｌ−Ｍ
ＵＧ法を実施するための合成酵素基質培地、すなわちＸ
Ｇａｌ−ＭＵＧ培地を所定量供給する。ここで用いられ
るＸＧａｌ−ＭＵＧ培地は、例えば、社団法人日本水道
協会発行、「上水試験方法２００１ 解説」８４２〜８
４３頁の表に挙げられたＸＧａｌ−ＭＵＧ培地やピルビ
ン酸添加ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地である。因みに、ピルビ
ン酸添加ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地は、１リットル中におい
て次のような酵素基質、大腸菌群培養のための栄養成
分、塩類、界面活性剤およびｐＨ調製剤を含みかつｐＨ
が７．１±０．２に調整されたものである。
ＵＧ法を実施するための合成酵素基質培地、すなわちＸ
Ｇａｌ−ＭＵＧ培地を所定量供給する。ここで用いられ
るＸＧａｌ−ＭＵＧ培地は、例えば、社団法人日本水道
協会発行、「上水試験方法２００１ 解説」８４２〜８
４３頁の表に挙げられたＸＧａｌ−ＭＵＧ培地やピルビ
ン酸添加ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地である。因みに、ピルビ
ン酸添加ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地は、１リットル中におい
て次のような酵素基質、大腸菌群培養のための栄養成
分、塩類、界面活性剤およびｐＨ調製剤を含みかつｐＨ
が７．１±０．２に調整されたものである。
【００１２】酵素基質
β−ガラクトシターゼと反応して発色する発色合成酵素
基質であるＸＧａｌ（５−ブロモ−４−クロロ―３−イ
ンドリル−β−Ｄ−ガラクトピラノシド）を０．１０
ｇ、大腸菌群酵素誘導剤であるＩＰＴＧ（１−イソプロ
ピル−β−Ｄ−１−チオガラクトピラノシド）を０．１
０ｇおよび大腸菌検出のための酵素基質であるＭＵＧ
（４−メチルアンベルリフェリル−β−グルクロニド）
を０．１０ｇ。大腸菌群培養のための栄養成分 ペプトンを５．０ｇおよびその他の炭素源としてピルビ
ン酸ナトリウムを１．０ｇ。塩類 塩化物として塩化ナトリウムを５．０ｇ、硝酸塩として
硝酸カリウムを１．０ｇ。界面活性剤 ラウリル硫酸ナトリウムを０．１０ｇ。ｐＨ調整剤 リン酸二水素カリウムを１．０ｇ、リン酸水素二カリウ
ムを４．０ｇ。
基質であるＸＧａｌ（５−ブロモ−４−クロロ―３−イ
ンドリル−β−Ｄ−ガラクトピラノシド）を０．１０
ｇ、大腸菌群酵素誘導剤であるＩＰＴＧ（１−イソプロ
ピル−β−Ｄ−１−チオガラクトピラノシド）を０．１
０ｇおよび大腸菌検出のための酵素基質であるＭＵＧ
（４−メチルアンベルリフェリル−β−グルクロニド）
を０．１０ｇ。大腸菌群培養のための栄養成分 ペプトンを５．０ｇおよびその他の炭素源としてピルビ
ン酸ナトリウムを１．０ｇ。塩類 塩化物として塩化ナトリウムを５．０ｇ、硝酸塩として
硝酸カリウムを１．０ｇ。界面活性剤 ラウリル硫酸ナトリウムを０．１０ｇ。ｐＨ調整剤 リン酸二水素カリウムを１．０ｇ、リン酸水素二カリウ
ムを４．０ｇ。
【００１３】なお、上述のようなピルビン酸添加ＸＧａ
ｌ−ＭＵＧ培地は市販されており、一例として日水製薬
株式会社の商品名“ＥＣブルー”を挙げることができ
る。
ｌ−ＭＵＧ培地は市販されており、一例として日水製薬
株式会社の商品名“ＥＣブルー”を挙げることができ
る。
【００１４】次に、ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地が添加された
被試験水を十分に撹拌しながら３６±１℃に加温し、被
試験水を大腸菌群の培養に適した環境に設定する。そし
て、当該温度で被試験水を２４時間維持した後、被試験
水中に大腸菌群が存在するか否かを判定する。このよう
な培養環境において、被試験水が大腸菌群を含む場合、
この大腸菌群は、ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地により培養さ
れ、β−ガラクトシダーゼを生成する。このβ−ガラク
トシダーゼは、ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地中に含まれるＸＧ
ａｌを加水分解し、５，５−ジブロモ−４，４−ジクロ
ロインジゴを被試験水中に生成させる。一方、被試験水
が大腸菌群を含まない場合、被試験水中で大腸菌群が培
養されることはないので、被試験水中において５，５−
ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴは生成しない。
被試験水を十分に撹拌しながら３６±１℃に加温し、被
試験水を大腸菌群の培養に適した環境に設定する。そし
て、当該温度で被試験水を２４時間維持した後、被試験
水中に大腸菌群が存在するか否かを判定する。このよう
な培養環境において、被試験水が大腸菌群を含む場合、
この大腸菌群は、ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地により培養さ
れ、β−ガラクトシダーゼを生成する。このβ−ガラク
トシダーゼは、ＸＧａｌ−ＭＵＧ培地中に含まれるＸＧ
ａｌを加水分解し、５，５−ジブロモ−４，４−ジクロ
ロインジゴを被試験水中に生成させる。一方、被試験水
が大腸菌群を含まない場合、被試験水中で大腸菌群が培
養されることはないので、被試験水中において５，５−
ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴは生成しない。
【００１５】したがって、被試験水中に大腸菌群が存在
するか否かは、被試験水中に５，５−ジブロモ−４，４
−ジクロロインジゴが存在するか否かの確認により判定
することができる。そこで、次に、被試験水中における
５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確
認方法を説明する。
するか否かは、被試験水中に５，５−ジブロモ−４，４
−ジクロロインジゴが存在するか否かの確認により判定
することができる。そこで、次に、被試験水中における
５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確
認方法を説明する。
【００１６】５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロイン
ジゴは、青〜青緑色を呈する物質であり、被試験水中に
微量に存在するだけで人間の目視で判定可能な程度に被
試験水を青〜青緑色に変色させる。このため、被試験水
について可視紫外光の吸収スペクトルを測定すれば、そ
の吸収スペクトルの測定結果から、被試験水が青〜青緑
色に変色しているか否か、すなわち、被試験水中に５，
５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在するか
否かを確認することができる。
ジゴは、青〜青緑色を呈する物質であり、被試験水中に
微量に存在するだけで人間の目視で判定可能な程度に被
試験水を青〜青緑色に変色させる。このため、被試験水
について可視紫外光の吸収スペクトルを測定すれば、そ
の吸収スペクトルの測定結果から、被試験水が青〜青緑
色に変色しているか否か、すなわち、被試験水中に５，
５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在するか
否かを確認することができる。
【００１７】被試験水が５，５−ジブロモ−４，４−ジ
クロロインジゴにより青〜青緑色に変色している場合、
被試験水の可視紫外光吸収スペクトルは、図１に実線で
示すように、青〜青緑色に対応する６５０ｎｍ付近に吸
収ピークを有することになる。これに対し、被試験水が
青〜青緑色に変色していない場合（すなわち、被試験水
が５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴを含ま
ない場合）、被試験水の可視紫外光吸収スペクトルは、
図１に点線で示すように高波長側に向けてなだらかに減
少し、特定の波長での吸収ピークを示さない。
クロロインジゴにより青〜青緑色に変色している場合、
被試験水の可視紫外光吸収スペクトルは、図１に実線で
示すように、青〜青緑色に対応する６５０ｎｍ付近に吸
収ピークを有することになる。これに対し、被試験水が
青〜青緑色に変色していない場合（すなわち、被試験水
が５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴを含ま
ない場合）、被試験水の可視紫外光吸収スペクトルは、
図１に点線で示すように高波長側に向けてなだらかに減
少し、特定の波長での吸収ピークを示さない。
【００１８】ところで、上述のようなＸＧａｌ−ＭＵＧ
法において、被試験水が大腸菌群を含まず、大腸菌群以
外の細菌を含む場合、被試験水は、５，５−ジブロモ−
４，４−ジクロロインジゴによる青〜青緑色には変色し
ないが、大腸菌群以外の細菌の増殖のために白濁する。
このため、この場合における被試験水の可視紫外光吸収
スペクトルは、図１に一点鎖線で示すように高波長側に
向けてなだらかに減少し、被試験水が５，５−ジブロモ
−４，４−ジクロロインジゴを含まない場合と同じく特
定の波長での吸収ピークを示さないが、全波長領域にお
ける吸光度が５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロイン
ジゴを含まない場合に比べて上昇することになる。
法において、被試験水が大腸菌群を含まず、大腸菌群以
外の細菌を含む場合、被試験水は、５，５−ジブロモ−
４，４−ジクロロインジゴによる青〜青緑色には変色し
ないが、大腸菌群以外の細菌の増殖のために白濁する。
このため、この場合における被試験水の可視紫外光吸収
スペクトルは、図１に一点鎖線で示すように高波長側に
向けてなだらかに減少し、被試験水が５，５−ジブロモ
−４，４−ジクロロインジゴを含まない場合と同じく特
定の波長での吸収ピークを示さないが、全波長領域にお
ける吸光度が５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロイン
ジゴを含まない場合に比べて上昇することになる。
【００１９】したがって、青〜青緑色に対応する６５０
ｎｍ付近の吸光度の測定結果からだけでは、被試験水中
に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在
しているのか否かを単純に確認するのは困難である。し
かし、被処理液が５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロ
インジゴのために青〜青緑色に変色している場合、その
可視紫外光吸収スペクトルは、６５０ｎｍ付近の高波長
側の吸光度に比べ、当該波長付近の吸収ピークの低波長
側の裾にあたる５５０ｎｍ付近の吸光度が小さくなる。
これに対し、被試験水中に５，５−ジブロモ−４，４−
ジクロロインジゴが存在しない場合若しくは被試験水が
上述のように白濁しているだけの場合、被試験水は、６
５０ｎｍ付近の吸光度が５５０ｎｍ付近の吸光度よりも
小さくなる。これによると、５５０ｎｍ付近の吸光度
（すなわち、低波長側の吸光度）と６５０ｎｍ付近の吸
光度（すなわち、高波長側の吸光度）とを比較し、前者
が後者に比べて小さい場合は、被試験水が青〜青緑色に
変色しているものと判断することができ、被試験水中に
５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在し
ていることを確認することができる。逆に、前者が後者
に比べて大きい場合は、被試験水が青〜青緑色に変色し
ていないものと判断することができ、被試験水中に５，
５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在しない
ものと確認することができる。
ｎｍ付近の吸光度の測定結果からだけでは、被試験水中
に５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在
しているのか否かを単純に確認するのは困難である。し
かし、被処理液が５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロ
インジゴのために青〜青緑色に変色している場合、その
可視紫外光吸収スペクトルは、６５０ｎｍ付近の高波長
側の吸光度に比べ、当該波長付近の吸収ピークの低波長
側の裾にあたる５５０ｎｍ付近の吸光度が小さくなる。
これに対し、被試験水中に５，５−ジブロモ−４，４−
ジクロロインジゴが存在しない場合若しくは被試験水が
上述のように白濁しているだけの場合、被試験水は、６
５０ｎｍ付近の吸光度が５５０ｎｍ付近の吸光度よりも
小さくなる。これによると、５５０ｎｍ付近の吸光度
（すなわち、低波長側の吸光度）と６５０ｎｍ付近の吸
光度（すなわち、高波長側の吸光度）とを比較し、前者
が後者に比べて小さい場合は、被試験水が青〜青緑色に
変色しているものと判断することができ、被試験水中に
５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在し
ていることを確認することができる。逆に、前者が後者
に比べて大きい場合は、被試験水が青〜青緑色に変色し
ていないものと判断することができ、被試験水中に５，
５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴが存在しない
ものと確認することができる。
【００２０】そこで、被試験水中における５，５−ジブ
ロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認をする場合
は、被試験水における低波長側の可視紫外光の吸光度
と、高波長側の可視紫外光の吸光度とを測定し、両吸光
度を比較する。そして、低波長側の吸光度が高波長側の
吸光度よりも小さい場合、被試験水中に５，５−ジブロ
モ−４，４−ジクロロインジゴが存在しているものと判
断する。逆に、低波長側の吸光度が高波長側の吸光度よ
りも大きい場合、被試験水中に５，５−ジブロモ−４，
４−ジクロロインジゴが存在していないものと判断す
る。
ロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認をする場合
は、被試験水における低波長側の可視紫外光の吸光度
と、高波長側の可視紫外光の吸光度とを測定し、両吸光
度を比較する。そして、低波長側の吸光度が高波長側の
吸光度よりも小さい場合、被試験水中に５，５−ジブロ
モ−４，４−ジクロロインジゴが存在しているものと判
断する。逆に、低波長側の吸光度が高波長側の吸光度よ
りも大きい場合、被試験水中に５，５−ジブロモ−４，
４−ジクロロインジゴが存在していないものと判断す
る。
【００２１】このような５，５−ジブロモ−４，４−ジ
クロロインジゴの存否確認方法において、低波長側の可
視紫外光の吸光度は、通常、５００〜５９０ｎｍの範囲
の波長の可視紫外光の吸光度が好ましく、５５０ｎｍの
波長の可視紫外光の吸光度が特に好ましい。一方、高波
長側の可視紫外光の吸光度は、通常、６００〜６８０ｎ
ｍの範囲の波長の可視紫外光の吸光度が好ましく、６５
０ｎｍの波長の可視紫外光の吸光度が特に好ましい。比
較する吸光度がこれらの波長の吸光度以外の場合、被試
験水中における５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロイ
ンジゴの存否を正確に確認するのが困難になる場合があ
る。
クロロインジゴの存否確認方法において、低波長側の可
視紫外光の吸光度は、通常、５００〜５９０ｎｍの範囲
の波長の可視紫外光の吸光度が好ましく、５５０ｎｍの
波長の可視紫外光の吸光度が特に好ましい。一方、高波
長側の可視紫外光の吸光度は、通常、６００〜６８０ｎ
ｍの範囲の波長の可視紫外光の吸光度が好ましく、６５
０ｎｍの波長の可視紫外光の吸光度が特に好ましい。比
較する吸光度がこれらの波長の吸光度以外の場合、被試
験水中における５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロイ
ンジゴの存否を正確に確認するのが困難になる場合があ
る。
【００２２】上述のように、この実施の形態に係る５，
５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方
法では、上述のような低波長側の吸光度と高波長側の吸
光度とを比較しているので、被試験水の色や可視紫外光
の吸収スペクトルを人間の目視で確認しなくても、被試
験水中における５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロイ
ンジゴの存否を機械的に正確に確認することができる。
５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方
法では、上述のような低波長側の吸光度と高波長側の吸
光度とを比較しているので、被試験水の色や可視紫外光
の吸収スペクトルを人間の目視で確認しなくても、被試
験水中における５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロイ
ンジゴの存否を機械的に正確に確認することができる。
【００２３】
【発明の効果】本発明に係る５，５−ジブロモ−４，４
−ジクロロインジゴの存否確認方法は、被試験水を透過
する可視紫外光の低波長側の吸光度と高波長側の吸光度
とを比較しているので、被試験水中に５，５−ジブロモ
−４，４−ジクロロインジゴが存在するか否かを人間の
目視に頼らずに確認することができる。
−ジクロロインジゴの存否確認方法は、被試験水を透過
する可視紫外光の低波長側の吸光度と高波長側の吸光度
とを比較しているので、被試験水中に５，５−ジブロモ
−４，４−ジクロロインジゴが存在するか否かを人間の
目視に頼らずに確認することができる。
【図１】被試験水中に５，５−ジブロモ−４，４−ジク
ロロインジゴが存在する場合としない場合とにおける被
試験水の一般的な可視紫外光吸収スペクトルを示す図。
ロロインジゴが存在する場合としない場合とにおける被
試験水の一般的な可視紫外光吸収スペクトルを示す図。
フロントページの続き
(72)発明者 舘野 一博
愛媛県松山市堀江町７番地 株式会社三浦
研究所内
(72)発明者 寒川 良浩
愛媛県松山市堀江町７番地 株式会社三浦
研究所内
(72)発明者 高井 政貴
愛媛県松山市堀江町７番地 株式会社三浦
研究所内
(72)発明者 中岡 洋志
愛媛県松山市堀江町７番地 株式会社三浦
研究所内
Ｆターム(参考） 2G045 AA28 BB24 CB25 FA13 FA29
GC10
2G059 AA10 BB04 BB11 CC00 DD01
DD03 EE01 EE12 FF10 HH02
Claims (2)
- 【請求項１】被試験水中に５，５−ジブロモ−４，４−
ジクロロインジゴが存在するか否かを確認するための方
法であって、 前記被試験水を透過する可視紫外光の低波長側の吸光度
と高波長側の吸光度とを比較する工程を含む、５，５−
ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法。 - 【請求項２】前記低波長側の吸光度が５００〜５９０ｎ
ｍの波長の可視紫外光の吸光度であり、前記高波長側の
吸光度が６００〜６８０ｎｍの波長の可視紫外光の吸光
度である、請求項１に記載の５，５−ジブロモ−４，４
−ジクロロインジゴの存否確認方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2002020759A JP2003222624A (ja) | 2002-01-29 | 2002-01-29 | ５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2002020759A JP2003222624A (ja) | 2002-01-29 | 2002-01-29 | ５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2003222624A true JP2003222624A (ja) | 2003-08-08 |
Family
ID=27744170
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2002020759A Pending JP2003222624A (ja) | 2002-01-29 | 2002-01-29 | ５，５−ジブロモ−４，４−ジクロロインジゴの存否確認方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2003222624A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017033809A1 (ja) * | 2015-08-26 | 2017-03-02 | 倉敷紡績株式会社 | 細胞測定方法 |
-
2002
- 2002-01-29 JP JP2002020759A patent/JP2003222624A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017033809A1 (ja) * | 2015-08-26 | 2017-03-02 | 倉敷紡績株式会社 | 細胞測定方法 |
| US10514334B2 (en) | 2015-08-26 | 2019-12-24 | Kurashiki Boseki Kabushiki Kaisha | Cell measurement method |
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