JP2001523977A

JP2001523977A - Ａｐａｆ−１、ｃｅｄ−４ヒト相同体、カスパーゼ−３の活性化因子

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Publication number: JP2001523977A
Application number: JP50301099A
Authority: JP
Inventors: ゾウ，フア; ジェー．ヘンゼル，ウィリアム; ワン，ジアオドン
Original assignee: ザユニバーシティオブテキサスシステムボードオブリージェンツ
Priority date: 1997-06-05
Filing date: 1998-06-05
Publication date: 2001-11-27
Also published as: EP1003856A1; CA2293724A1; AU7824398A; AU739350B2; US20020107370A1; WO1998055615A9; WO1998055615A1; US6291643B1; CA2293724C; US6346607B1

Abstract

(57)【要約】アポトーシスを変調可能なＡｐａｆ-１と命名された新規ポリペプチドが提供される。Ａｐａｆ-１キメラ、Ａｐａｆ-１をコードしている核酸、及びＡｐａｆ-１に対する抗体を含む組成物もまた提供される。

Description

【発明の詳細な説明】ＡＰＡＦ-１、ＣＥＤ-４ヒト相同体、カスパーゼ-３の活性化因子発明の分野本発明は、一般に、ここに「Ａｐａｆ-１」と命名する新規なポリペプチドの同定、単離、及び組換え生産に関する。発明の背景アポトーシス又は「プログラムされた細胞死」哺乳動物における細胞数のコントロールは、細胞増殖と細胞死のバランスにより部分的に決定されると考えられている。しばしば壊死性細胞死と称される細胞死の一形態は、典型的には、ある種の外傷又は細胞傷害の結果生じる細胞死の病理的形態として特性付けられる。これに対して、細胞死の他の「生理的」形態は通常は規則的又はコントロールされた状態で進行する。細胞死のこの規則的又はコントロールされた形態は、しばしば「アポトーシス」と称される(例えば、Bar rら，Bio/Technology，12：487-493(1994):Stellerら，Science，267：1445-144 9(1995)を参照)。アポトーシス性細胞死は、免疫系におけるクローン選択と胚の発達を含む多くの生理的プロセスにおいて自然に生じる(Itohら，Cell，66：233-243(1991))。アポトーシス性細胞死のレベルの減少は、癌、狼瘡、疱疹ウイスル感染を含む種々の病理的条件に関連している(Thompson，Science，267：1456-1462(1995))。アポトーシス性細胞死のレベルの増加は、エイズ、アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症、多発性硬化症、色素性網膜炎、小脳変性、無形成性貧血、心筋梗塞、脳卒中、再灌流傷害、及び毒素誘発性肝疾患を含む様々な他の病理状態に関連している(Thompson，上掲を参照)。典型的には、アポトーシス性細胞死には、細胞内における一又は複数の特徴的な形態学的及び生化学的変化、例えば細胞質の凝結、原形質膜の微絨毛の喪失、核の分節化、染色体ＤＮＡの分解又はミトコンドリア機能の喪失が伴う。アポトーシスの認知された生化学的マーカーはヌクレオソームフラグメントへのクロマチンの切断である。様々な外因的及び内因的シグナルが、このような形態学的及び生化学的な細胞変化を惹起又は誘発すると考えられている(Raff，Nature，356：397-400(1992) ；Steller，上掲；Sachsら，Blood，82：15(1993))。例えば、ホルモンの刺激、例えば未成熟胸腺細胞に対する糖質コルチコイドホルモン、並びにある種の成長因子の退薬により惹起され得る(Watanabe-Fukunagaら，Nature，356：314-317(1 992))。また、いくつかの同定された発癌遺伝子、例えばｍｙｃ、ｒｅｌ、及びＥ１Ａ、及び腫瘍サプレッサー、例えばｐ５３が、アポトーシスを誘発する役割を有していることも報告されている。ある種の化学療法薬及びある種の放射線も同様にアポトーシス誘発活性を有していることも見出されている(Thompson，上掲)。アポトーシスは、線虫(C．elegans)のＣｅｄ-３、ＣＣＰ３２(今はカスパーゼ-３)、ヒトのＹａｍａ／アポペイン(Apopain)、及びショウジョウバエのＤＣＰ-１を含む、アスパラギン酸残基に対して特異性を有するシステインプロテアーゼのファミリーの活性化によってもまた誘発される。これらのプロテアーゼはカスパーゼと命名されている(Alnemriら，Ce1l，87:171,(1996))。アポトーシス誘発性シグナル伝達複合体現在理解されているように、アポトーシスプログラムは、少なくとも３つの重要な成分−活性化因子、阻害剤及びエフェクターを含む。線虫において、これらの成分はそれぞれ３つの遺伝子、Ｃｅｄ-４、Ｃｅｄ-９及びＣｅｄ-３によりコード化されている(Steller，Science，267：1445(1995)；Chinnaiyanら，Scienc e，275：1122-1126(1997))。二つの遺伝子Ｃｅｄ-３とＣｅｄ-４はアポトーシスを開始するために必要とされる(YuanとHorvitz，Development 116:309-320,(199 0))。Ｃｅｄ-９は、Ｃｅｄ-３とＣｅｄ-４の上流で機能するが、Ｃｅｄ-３とＣｅｄ-４の活性化を妨げることによりアポトーシスプログラムをネガティブに調節する(Hengartnerら，Cell 76:665-676(1994))。線虫において描写されたアポトーシスプログラムは、Ｃｅｄ-９とＣｅｄ-３の相同体を含む哺乳動物細胞において保存される。これら相同体の一つＢｃｌ-２は、部分的にＣｅｄ-９に代わって線虫においてアポトーシスを妨げ得る(Hengar tner とHorvitz，1994，Cell 76:665-676)。他の相同体は、カスパーゼ-３を含む、Ｃｅｄ-３に密接に関連するシステインプロテアーゼである(Yuanら，Cell 75:641- 652(1993):Xueら，Genes & Dev．10:1073-1083(1996))。Ｃｅｄ-４は、哺乳動物の対応物が見つけられていない唯一の線虫の一般的アポトーシス遺伝子である。この遺伝子は線虫アポトーシス経路においてＣｅｄ-９の下流であるがＣｅｄ-３の上流で機能すると信じられている(ShahamとHorvitz，Genes & Dev．10:578-59 1,(1996)，Cell 86:201-208(1996))。哺乳動物細胞において、カスパーゼ-３は、細胞に死ぬようにシグナル伝達されるとき、２０ｋＤａと１０ｋＤａの活性なヘテロダイマーにタンパク分解性に変換される３２ｋＤａの不活性な前駆体としてサイトゾル画分中に通常は存在する(Schlegelら，Biol．Chem．271:1841-1844,(1996);Wangら，EMBO J．15:1012- 1020,(1996))。ミトコンドリアの外膜上に位置するＢｃｌ-２は、カスパーゼ-３の活性化を妨げる。カスパーゼ-３活性化に対する必要な補助因子であるチトクロムＣをミトコンドリアが放出することをブロックすることによりこれをなすようである(Liuら，Cell 86:147-157,(1996);Yangら，Science 275:1129-1132,(19 97);Kluck,ら，Science 275:1132-1136,(1997))。相同的組換えによりマウスゲノムからカスパーゼ-３を欠失させると、脳におけるアポトーシスの欠如のために、神経細胞の過剰な蓄積が生じる(Kuidaら,Nature 384:368-372(1996))。活性なカスパーゼ-３を正常なサイトゾルに添加すると、アポトーシスプログラムを活性化する(Enariら,nature 380:723-726(1996))。従って、カスパーゼ-３はアポトーシスを誘発するために必要かつ十分である。カスパーゼ-３に対して同定された基質には、ポリ(ＡＤＰリボース)、ポリメラーゼ(ＰＡＲＰ)、ステロール調節成分結合タンパク質(ＳＲＥＢＰ)、Ｕ１随伴７０ｋＤａタンパク質、Ｎ４-ＧＤ１、ハンチンチン(huntingtin)及びＤＮＡ依存性プロテインキナーゼが含まれる(Casicola-Rosenら，J.Exp.Med．183:1957-1 964(1996);Naら，J.Biol.Chem．271:11209-11213(1996);Goldbergら，Nat.Genet ．13(4):442-449(1996);Wangら，EMBO J．15:1012-1020(1996);Nicholsonら，Na ture 376:37-43,(1995))。本出願人は正常に成長しているＨｅｌａ細胞由来のサイトゾル画分を使用してアポトーシスを研究するためのインビトロアポトーシス系を最近確立した。この系を使用して、哺乳動物のアポトーシスに関与する２つのタンパク因子：チトクロムＣ(Liuら，1996，上掲)と４０ｋＤａと４５ｋＤａのサブユニットの新規なヘテロダイマーであるＤＮＡ断片化因子(ＤＦＦ)とを同定した。ＤＦＦは、カスパーゼ-３の下流で機能して、アポトーシスの特徴であるゲノムＤＮＡのヌクレオソームセグメントへの断片化を誘発する(Wyllieら，Nature 284:555-556,(198 0);Liuら，1997上掲)。発明の概要本出願人は、本出願において「Ａｐａｆ-１」と命名される新規なタンパク質( 配列番号：２)をコード化したＤＮＡ配列(配列番号：１)を同定した。Ａｐａｆ- １はＣｅｄ-４の哺乳動物相同体であると信じられる。ヒトＡｐａｆ-１の天然配列は、Ｃｅｄ-３の相同的ドメインをＮ末端に含み、Ｃ末端にＣｅｄ-４相同的ドメインと複数のＷＤ-４０反復が続く新規な１３０ｋＤａのポリペプチドである。Ａｐａｆ-１はチトクロムＣと複合体を形成し、アポトーシス経路においてカスパーゼ-３を活性化することが見出された。選択的にスプライシングされた転写物であるＡｐａｆ-１Ｌもまた発見された。その新規な核酸配列(配列番号：１５)とコード化タンパク質(配列番号：１６) は類似の活性を有しており、本発明においては、任意のＡｐａｆ-１ポリペプチドとして本発明内に含まれる。本発明は、単離されたＡｐａｆ-１タンパク質を提供する。特に、本発明は、図５Ａ−５０及び図６の残基１〜１１９４を含んでなるアミノ酸配列(配列番号：２)を含む、単離された天然配列Ａｐａｆ-１タンパク質を提供する。他の実施態様においては、単離されたＡｐａｆ-１タンパク質は、図５Ａ−５Ｏ及び図６の残基１〜１１９４(配列番号：２)を含んでなる天然配列Ａｐａｆ-１タンパク質と少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性を有する。他の実施態様において、本発明はＡｐａｆ-１タンパク質をコードする単離された核酸分子(配列番号：１)を提供する。核酸分子は、Ａｐａｆ-１タンパク質又はＡｐａｆ-１の特定のドメイン、例えばチトクロムＣ結合ドメイン又はＡＴＰ結合ドメインをコードするＲＮＡ又はＤＮＡであり、あるいはそのようなコード核酸配列に対して相補的であり、少なくとも中程度、場合によっては高度の厳密性条件下でそれに安定して結合したまま残る。一実施態様において、核酸配列は： (ａ)アミノ酸残基１〜１１９４をコードする図５Ａ−５０の核酸配列(配列番号：１)のコード領域(すなわち、ヌクレオチド５７８〜４１５９)； (ｂ)アミノ酸１〜１１９４をコードし、翻訳開始部位の５'末端及び／又は終止コドン配列の３'末端に位置する核酸を更に含む、図５Ａ−５Ｏの拡大されたｃＤＮＡ配列(配列番号：１)(すなわち、ヌクレオチド１〜７０４２)； (ｃ)アミノ酸残基１〜１２０５をコードする図１６Ａ−１６Ｈの核酸配列(配列番号：１５)のコード領域(すなわち、ヌクレオチド５７８〜４１９２)； (ｄ)アミノ酸残基１〜１２０５をコードし、翻訳開始部位の５'末端及び／又は終止コドン配列の３'末端に位置する核酸を更に含む、図１６Ａ−１６Ｈの拡大されたｃＤＮＡ配列(配列番号：１５)(すなわち、ヌクレオチド１〜７０７５) ；及び (ｅ)遺伝コードの縮退の範囲内において(ａ)、(ｂ)、(ｃ)又は(ｄ)配列に相当する配列；から選択される。さらなる実施態様において、本発明はＡｐａｆ-１タンパク質又はＡｄａｆ-１の特定のドメインをコード化した核酸分子を含んでなるベクターを提供する。また、該ベクター又は核酸分子を含んでなる宿主細胞も提供される。Ａｐａｆ-１の生産方法もさらに提供される。さらなる実施態様において、本発明はＡｐａｆ-１又はその一部をコードする核酸配列を含んでなるベクター及び遺伝子作成物が提供される。他の実施態様において、本発明はＡｐａｆ-１に特異的に結合する抗体を提供する。抗体はアゴニスト、アンタゴニスト又は中和抗体であってよい。本発明のさらなる実施態様では、Ａｐａｆ-１タンパク質、Ａｐａｆ-１をコードする核酸配列、又は抗Ａｐａｆ-１抗体を含む製造品及びキットが提供される。本発明の新規な遺伝子、タンパク質、及び抗体は、アポトーシスのシグナルが伝達された細胞をスクリーニングし同定するために特に有用である。加えて、本発明の遺伝子及びタンパク質は、アポトーシスを調節するのに有用な薬剤を同定するために候補化合物をスクリーニングするのに特に有用である。図面の簡単な説明図１は、Ａｐａｆ-１の精製にいたる精製手順の概略を示す。図２は、カスパーゼ-３前駆体のその活性化型へのタンパク分解性切断により検定されたアポトーシスを惹起する薬剤の組合わせを示す。図３は、モノＱカラムにより精製されたＨｅｌａ細胞上清のサイトゾル画分のＡｐａｆ-１活性(Ｓ１００)を示す。図４は、銀染色ＰＡＧＥゲル(８％)において図３に記述され、およそ１３０ｋＤａの分子量を有するカラム画分のＡｐａｆ-１タンパク質を示す。図５Ａ−５Ｏは、ヒトＡｐａｆ-１のＤＮＡ配列及び推定アミノ酸配列を示す。図６は、Ａｐａｆ-１のタンパク質配列を示す。過去に配列決定された１４のトリプシン及びＬｙｓ-Ｃペプチド(表１)に下線を引く。推定上のＷＤ反復はボックスで囲む。図７は、水平なバーで示したＡｐａｆ-１構造の概略図である。図５Ａ−５Ｏ及び６のアミノ酸残基に対応する数を示す。Ｃｅｄ-３相同領域、Ｃｅｄ-４相同領域、及び１３ＷＤ反復が示されている。図８は、Ｃｅｄ-３のＮ末端プロドメインと相同性を共有するＡｐａｆ-１のアミノ酸配列を示す(Yuanら，上掲(1993))。同一のアミノ酸は強調文字で示す。保存されたアミノ酸はボックスで囲む。図９は、Ｃｅｄ-４(YuanとHorvitz，上掲(1992))のアミノ酸と相同性を共有するＡｐａｆ-１のアミノ酸配列を示す。図１０は、Ａｐａｆ-１ｍＲＮＡの組織分布と相対的発現を示すノーザンブロットの図である。図１１は、Ａｐａｆ-１のインビトロ翻訳を示す抗Ａｐａｆ-１抗体で探索した免疫ブロットの図である。図１２は、Ａｐａｆ-１の免疫沈降を示す抗Ａｐａｆ-１抗血清で探索したウェスタンブロットである。図１３は、抗Ａｐａｆ-１抗体でのＡｐａｆ-１／チトクロムＣインキュベーション混合物からのチトクロムＣの免疫沈降を示す抗チトクロムＣ抗体で探索したウェスタンブロットである。図１４は、抗Ａｐａｆ-１抗体及び抗カスパーゼ-３抗体で探索したウェスタンブロットで、哺乳動物細胞における組換えＡｐａｆ-１とカスパーゼ-３の発現を立証するものである。図１５は、抗カスパーゼ-３抗体で探索したウェスタンブロットで、カスパーゼ-３の切断を誘発するための組換え的に発現されたＡｐａｆ-１の使用を立証するものである。図１６Ａ−１６Ｈは、Ａｐａｆ-１Ｌをコードする核酸配列を示す。Ａｐａｆ- １と比較して更に３３の核酸に下線が付されている。図１７はＡｐａｆ-１Ｌのアミノ酸配列を示す。更に１１のアミノ酸に下線が付されている。図１８は、実施例９に記載されたように、Ａｐａｆ-１Ｌの更なる３３のヌクレオチドの５'及び３'末端の両側から設計された２つのプライマーを使用してＨｅＬａのｍＲＮＡからの第一鎖を増幅することにより産生した２つのＲＴ-ＰＣＲ産物(Ａｐａｆ-１及びＡｐａｆ-１Ｌ)を示す臭化エチジウムで染色した２％アガロースゲルである。図１９Ａは、抗Ａｐａｆ-１抗体及び抗カスパーゼ-３抗体で探索したウェスタンブロットで、２９３細胞における組換えＡｐａｆ-１Ｌとカスパーゼ-３の発現を立証するものである。図１９Ｂは、抗カスパーゼ-３抗体で探索したウェスタンブロットで、カスパーゼ-３の切断を誘発するための組換え的に発現されたＡｐａｆ-１Ｌの使用を立証するものである。好適な実施態様の詳細な説明Ｉ．定義ここで使用される際の「Ａｐａｆ-１タンパク質」及び「Ａｐａｆ-１」という用語には、天然配列Ａｐａｆ-１、Ａｐａｆ-１Ｌのような選択的なスプライシング変異体(以下の実施例においてより詳細に記載する)、及びＡｐａｆ-１変異体( ここでさらに定義される)が含まれる。これらの用語には、ヒトを含む種々の哺乳動物由来のＡｐａｆ-１が含まれる。Ａｐａｆ-１は種々の供給源、例えばヒト組織型又は他の供給源から単離されたもの、あるいは組換え又は合成法により調製されたものであってよい。「天然配列Ａｐａｆ-１」には、天然由来のＡｐａｆ-１と同一のアミノ酸配列を有するポリペプチドを含んでなる。しかして、天然配列Ａｐａｆ-１は、任意の哺乳動物から自然に生じるＡｐａｆ-１のアミノ酸配列を有し得る。このような天然配列Ａｐａｆ-１は、自然から単離することもできるし、組換え又は合成手段により生産することもできる。「天然配列Ａｐａｆ-１」という用語には、特に、Ａｐａｆ-１の自然に生じる切断又は分泌形、自然に生じる変異体形(例えば、選択的にスプライシングされた型)及びＡｐａｆ-１の自然に生じる対立遺伝子変異体が含まれる。「Ａｐａｆ-１変異体」とは、図５Ａ−５Ｏ(配列番号：２)又は図１７(配列番号：１６)に示されている推定アミノ酸配列を有するＡｐａｆ-１と少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性を有する以下に定義する生物学的に活性なＡｐａｆ -１を意味する。このようなＡｐａｆ-１変異体には、例えば、図５Ａ−５Ｏ(配列番号：２)あるいは図１７(配列番号：１６)の配列のＮ-又はＣ末端において一又は複数のアミノ酸残基が付加もしくは欠失されたＡｐａｆ-１タンパク質が含まれる。通常、Ａｐａｆ-１変異体は、図５Ａ−５Ｏ(配列番号：２)又は図１７( 配列番号：１６)のアミノ酸配列と、少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性、より好ましくは少なくとも約９０％のアミノ酸配列同一性、さらにより好ましくは少なくとも約９５％のアミノ酸配列同一性を有している。ここで同定されたＡｐａｆ-１配列に対する「パーセント(％)アミノ酸配列同一性」は、配列を整列させ、最大のパーセント配列同一性を得るために必要ならば間隙を導入し、如何なる保存的置換も配列同一性の一部と考えないとした、Ａｐａｆ-１配列のアミノ酸残基と同一である候補配列中のアミノ酸残基のパーセントとして定義される。パーセントアミノ酸配列同一性を決定する目的のためのアラインメントは、当業者の知る範囲にある種々の方法、例えばALIGN^TM又はMeg align(DNASTAR)ソフトウエアのような公に入手可能なコンピュータソフトウエアを使用することにより達成可能である。当業者であれば、比較される配列の全長に対して最大のアラインメントを達成するために必要な任意のアルゴリズムを含む、アラインメントを測定するための適切なパラメータを決定することができる。「エピトープタグ」なる用語は、ここで用いられるときは、「タグポリペプチド」に融合したＡｐａｆ-１、又はそれらのドメイン配列を含んでなるキメラポリペプチドを指す。タグポリペプチドは、その抗体が産生され得るエピトーブを提供するに十分な数の残基を有しているが、その長さはＡｐａｆ-１の活性を阻害しないよう充分に短い。また、タグポリペプチドは、好ましくは、抗体が他のエピトープと実質的に交差反応をしないようにかなり独特である。適切なタグポリペプチドは、一般に、少なくとも６のアミノ酸残基、通常は約８〜約５０のアミノ酸残基(好ましくは約１０〜約２０の残基)を有する。「単離された」とは、ここで開示された種々のポリペプチドを記述するために使用するときは、その自然環境の成分から同定され分離され及び／又は回収されたポリペプチドを意味する。その自然環境の汚染成分とは、ポリペプチドの診断又は治療への使用を典型的には妨害する物質であり、酵素、ホルモン、及び他のタンパク質様又は非タンパク質様溶質が含まれる。好ましい実施態様において、ポリペプチドは、(１)スピニングカップシークエネーターを使用することにより、少なくとも１５のＮ末端あるいは内部アミノ酸配列の残基を得るのに充分なほど、あるいは、(２)クーマシーブルーあるいは好ましくは銀染色を用いた非還元あるいは還元条件下でのＳＤＳ−ＰＡＧＥによる均一性が得られるように充分なほど精製される。Ａｐａｆ-１の自然環境の少なくとも１つの成分が存在しないため、単離されたポリペプチドには、組換え細胞内のインシトゥーのポリペプチドが含まれる。しかしながら、通常は、単離されたポリペプチドは少なくとも１つの精製工程により調製される。「単離された」Ａｐａｆ-１核酸分子は、同定され、Ａｐａｆ-１核酸の天然源に通常付随している少なくとも１つの汚染核酸分子から分離された核酸分子である。単離されたＡｐａｆ-１核酸分子は、天然に見出される形態あるいは設定以外のものである。ゆえに、単離されたＡｐａｆ-１核酸分子は、天然の細胞中に存在するＡｐａｆ-１核酸細胞とは区別される。しかし、単離されたＡｐａｆ-１核酸分子は、例えば、核酸分子が天然の細胞のものとは異なった染色体位置にあるＡｐａｆ-１を通常発現する細胞に含まれるＡｐａｆ-１核酸分子を含む。「対照配列」という表現は、特定の宿主生物において作用可能に関連付けられたコード配列を発現するために必要なＤＮＡ配列を指す。例えば原核生物に好適な対照配列は、プロモーター、場合によってはオペレータ配列、及びリボソーム結合部位を含む。真核生物の細胞は、プロモーター、ポリアデニル化シグナル及びエンハンサーを利用することが知られている。核酸は、他の核酸配列と機能的な関係にあるときに「作用可能に関連付けられ」ている。例えば、プレ配列あるいは分泌リーダーのＤＮＡは、ポリペプチドの分泌に寄与するプレタンパク質として発現されているならそのポリペプチドのＤＮＡに作用可能に関連付けられている；プロモーター又はエンハンサーは、配列の転写に影響を及ぼすならばコード配列に作用可能に関連付けられている；又はリボソーム結合部位は、もしそれが翻訳を容易にするような位置にあるならコード配列と作用可能に関連付けられている。一般的に、「作用可能に関連付けられる」とは、関連付けられたＤＮＡ配列が近接しており、分泌リーダーの場合には近接していて読みフェーズにある。しかし、エンハンサーは必ずしも近接しているわけではない。結合は簡便な制限部位でのライゲーションにより達成される。そのような部位が存在しない場合は、通常の手法にしたがって、合成されたオリゴヌクレオチドアダプターあるいはリンカーが使用される。「抗体」という用語は最も広い意味において使用され、特に抗Ａｐａｆ-１モノクローナル抗体(アゴニスト、アンタゴニスト、及び阻止又は中和抗体を含む) 、及び多エピトープ特異性抗Ａｐａｆ-１抗体組成物を包含している。ここで使用される「モノクローナル抗体」という用語は、実質的に均一な抗体の集団から得られる抗体を称する、すなわち、集団を構成する個々の抗体が、少量存在しうる自然に生じる可能な突然変異を除いて同一である。モノクローナル抗体は高度に特異的であり、一つの抗原部位に対応する。更に、異なる決定基( エピトープ)に対応する異なる抗体を典型的に含む通常の(ポリクローナル)抗体とは異なり、各モノクローナル抗体は抗原の単一の決定基に対応する。ここで、モノクローナル抗体は、起源の種又は免疫グロブリンクラス又はサブクラスの命名に拘わらず、定常ドメインを有する抗Ａｐａｆ-１抗体の可変(高頻度可変を含む)ドメイン、又は重鎖を有する軽鎖、他の種由来の鎖を有するある種由来の鎖、あるいは異種タンパク質との融合体をスプライシングすることによって得られるハイブリッド及び組換え抗体、並びにそれが所望の生物的活性を有する限りそれら抗体断片(例えばＦａｂ、Ｆ(ａｂ')₂及びＦｖ)を特に含む。例えば、米国特許第４８１６５６７号、及びMageら，Monoclonal Antibody Production Tec hniques and Applications ，pp.79-97(Marcel Dekker，Inc.:ニューヨーク，198 7)を参照。従って、「モノクローナル」との形容は、実質的に均一な抗体集団から得られたという抗体の性質を示し、抗体を何か特定の方法で生産しなければならないことを意味するものではない。例えば、本発明に従って使用されるモノクローナル抗体は、最初にKohler及びMilsteinによって、Nature，256:495(1975)に記載されたハイブリドーマ法によって作ることができ、あるいは例えば米国特許第４８１６５６７号に記載された組換えＤＮＡ法によって作ることができる。「モノクローナル抗体」は、例えばMcCaffetyら，Nature，348：552-554(1990)に記載された技術を用いてファージ抗体ライブラリから単離してもよい。非ヒト(例えばマウス)抗体の「ヒト化」形とは、キメラ免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖あるいはそれらの断片(例えばＦｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、Ｆ(ａｂ')₂ あるいは抗体の他の抗原結合サブ配列)であって、非ヒト免疫グロブリンに由来する最小配列を含むものである。大部分においてヒト化抗体はレシピエントの相補性決定領域(ＣＤＲ)の残基が、マウス、ラット又はウサギのような所望の特異性、親和性及び能力を有する非ヒト(ドナー抗体)のＣＤＲの残基によって置換されたヒト免疫グロブリン(レシピエント抗体)である。ある場合には、ヒト免疫グロブリンのＦｖフレームワーク領域(ＦＲ)残基は、対応する非ヒト残基によって置換されている。更に、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、移入されたＣＤＲもしくはフレームワーク配列にも見出されない残基を含んでもよい。これらの修飾は抗体の特性を更に洗練し、最適化するために行われる。一般に、ヒト化抗体は、全てあるいはほとんど全てのＣＤＲ領域が非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、全てあるいはほとんど全てのＦＲ領域がヒト免疫グロブリン配列のものである、少なくとも１つ、典型的には２つの可変ドメインの実質的に全てを含む。ヒト化抗体は、最適には免疫グロブリン定常領域又はドメイン(Ｆｃ)、典型的にはヒトの免疫グロブリンの定常領域又はドメインの少なくとも一部を含んでなる。ここで意図している「生物学的に活性な」及び「所望の生物学的活性」とは、ここに記載する無細胞系においてもしくはインビボ又はエキソビボで少なくとも１種の哺乳動物細胞において(作用的又は刺激する形で)アポトーシスを変調する能力を有していることを意味する。特に、Ａｐａｆ-１の生物学的活性は、アポトーシス事象を誘発するためのカスパーゼ-３の活性化である。「アポトーシス」及び「アポトーシス活性」という用語は広義に使用され、典型的には、細胞質の凝結、原形質膜の微絨毛の喪失、核の分節化、染色体ＤＮＡの分解又はミトコンドリア機能の喪失を含む一又は複数の特徴的な細胞変化を伴う、哺乳動物における細胞死の規則的又はコントロールされた形態を指す。この活性は、例えば細胞生死判別アッセイ、ＦＡＣＳ分析、又はＤＮＡ電気泳動法等、全て従来から知られている方法により決定し測定することができる。特に、アポトーシスは、以下の実施例と上掲のLiuらに記載される無細胞系において測定することができる。ここで使用される「治療する」、「治療」及び「治療法」とは、治癒的療法及び予防的療法及び防護的療法を称する。ここで使用される「哺乳動物」という用語は、ヒトウシ、ウマ、イヌ及びネコを含む哺乳動物として分類されるあらゆる動物を指す。本発明の好ましい実施態様においては、哺乳動物はヒトである。ＩＩ．本発明の組成物と方法本発明は、新規に同定され、単離されたＡｐａｆ-１タンパク質を提供する。特に本出願人は、ヒトＡｐａｆ-１タンパク質を同定し、分離した。このＡｐａｆ-１タンパク質の性質と特徴は、以下の実施例においてさらに詳細に記載する。ここで開示されるＡｐａｆ-１タンパク質の性質と特徴に基づき、Ａｐａｆ-１はＣｅｄ-４の哺乳動物相同体であるというのが本出願人の信ずるところである。Ａ．Ａｐａｆ-１はＣｅｄ-４の哺乳動物相同体であるＡｐａｆ-１がＣｅｄ-４の哺乳動物の相同体であることを一連の証拠が示唆している。第一に、Ａｐａｆ-１は、３００を越えるアミノ酸にわたってＣｅｄ-４と有意の配列相同性を示す；第二に、保存されたヌクレオチド結合領域、及び２５８位のイソロイシンを含むＣｅｄ-４の幾つかの重要な領域がＡｐａｆ-１において保存されている(図８)；第三に、カスパーゼ-３の活性化を媒介するＡｐａｆ-１の生化学的機能は遺伝子研究により描写されるようにＣｅｄ-４の機能と一致している。遺伝子研究は、Ｃｅｄ-４の過剰発現による線虫のＡＬＭニューロンの死滅がＣｅｄ-３突然変異体において大きく低減される一方、Ｃｅｄ-３の過剰発現によるこれらニューロンの死滅はＣｅｄ-４の突然変異によっては影響を受けないので(Hengartnerら，上掲;ShahamとHorvitz，上掲)、Ｃｅｄ-９Ｃｅｄ-４がＣｅｄ-９の下流であるがＣｅｄ-３の上流で機能することを示している。同様に、ｂｃｌ-２はＡｐａｆ-１活性の補助因子であるチトクロムＣの放出を制御することによりＡｐａｆ-１の上流で機能する(Kluckら,上掲;Yangら,上掲)。Ｂ．カスパーゼ-３活性化の誘発メカニズムＡｐａｆ-１自体はカスパーゼではないと思われる。同定された全てのカスパーゼ中に存在する保存された活性部位ペンタペプチドＱＡＣＲ(又はＱ／Ｇ)ＧはＡｐａｆ-１には存在していない。ＷＤ反復を含むタンパク質の殆どは、機能が酵素的というよりもむしろ調節性である(Neerら，1994，Nature 371:297-300)。ＡＴＰを利用するタンパク質のなかで保存されている領域の同定は、カスパーゼ -３活性化反応におけるｄＡＴＰの必要性と一致する。この場合、ｄＡＴＰはＡＴＰより好ましい。Ａｐａｆ-１はアポトーシスの開始における重要な因子であると思われる。Ａｐａｆ-１は、双方ともアポトーシスの誘発における重要な因子であるチトクロムＣとｄＡＴＰに結合する。協働して、Ａｐａｆ-１、チトクロムＣ、ｄＡＴＰ及びＡｐａｆ-３は、無細胞系又は細胞及び組織内において、アポトーシスに対する独特なモデル系を形成する。Ａｐａｆ-１、並びにＡｐａｆ-１キメラ分子及び抗Ａｐａｆ-１抗体を如何に調製するかにつき、以下に説明する。Ｂ．Ａｐａｆ-１の調製以下の説明は、主として、Ａｐａｆ-１核酸を含むベクターで形質転換又はトランスフェクトされた細胞を培養してＡｐａｆ-１を生産する方法に関する。もちろん、当該分野においてよく知られている他の方法を用いてＡｐａｆ-１を調製することはできると考えられる。１．Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡの単離Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡは、Ａｐａｆ-１ｍＲＮＡを保有していてそれを検出可能なレベルで発現すると考えられる組織から調製された任意のｃＤＮＡライブラリから得ることができる。従って、ヒトＡｐａｆ-１ＤＮＡは、実施例２に記載されたヒトのＨｅＬａ細胞ｃＤＮＡのライブラリのように、ヒトの組織から調製されたｃＤＮＡライブラリ、及び他のライブラリ、特に高いアポトーシス活性が知られている脾臓、胎性脳等のような組織から調製されたＤＮＡライブラリから簡便に得ることができる。そのようなＤＮＡライブラリは、例えばクローンテック及びストラタジーンから商業的に入手可能である。またＡｐａｆ-１コード化遺伝子は、ゲノムライブラリから又はオリゴヌクレオチド合成により得ることもできる。ライブラリは、対象となる遺伝子あるいはその遺伝子によりコードされるタンパク質を同定するために設計された(Ａｐａｆ-１に対する抗体又は少なくとも約２０−８０塩基のオリゴヌクレオチド等の)プローブによってスクリーニングされる。選択されたプローブによるｃＤＮＡ又はゲノムライブラリのスクリーニングは、例えばSambrookら，Molecular Cloning:A Laboratory Manual(New York:C old Spring Harbor Laboratory Press，1989)に記載されている標準的な手順を使用して実施することができる。Ａｐａｆ-１をコードする遺伝子を単離する他の方法はＰＣＲ方法論を使用するものである(Sambrookら,上掲；Dieffenbachら,PCR Primer ：A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor Laboratory Press，199 5))。スクリーニングの好ましい方法は、種々のヒト組織からｃＤＮＡライブラリをスクリーニングするために選別したオリゴヌクレオチド配列を用いることである。以下の実施例２には、ｃＤＮＡライブラリのスクリーニング技術を記載している。プローブとして選択されたオリゴヌクレオチド配列は、充分な長さで、疑陽性が最小化されるよう充分に明瞭でなければならない。オリゴヌクレオチドは、スクリーニングされるライブラリ内のＤＮＡとのハイブリダイゼーション時に検出可能であるように標識されていることが好ましい。標識化の方法は、当該分野において良く知られており、³²Ｐ標識されたＡＴＰのような放射標識、ビオチン化あるいは酵素標識の使用が含まれる。中程度の厳密性及び高厳密性を含むハイブリダイゼーション条件は、上掲のSambrookらに提供されている。全てのタンパク質コード化配列を有する核酸は、初めてここで開示された推定アミノ酸配列を使用し、また必要ならば、ｃＤＮＡに逆転写されなかったｍＲＮＡの生成中間体及び先駆物質を検出する上掲のSambrookらにより記述されている従来のプライマー伸展法を使用し、選択されたｃＤＮＡ又はゲノムライブラリをスクリーニングすることにより得られる。Ａｐａｆ-１変異体はＡｐａｆ-１ＤＮＡに適切なヌクレオチド変化を導入するか、所望のＡｐａｆ-１ポリペプチドを合成することにより、調製することができる。アミノ酸の変化により、グリコシル化部位の数と位置の変化、膜係留特性の変更のように、Ａｐａｆ-１の翻訳後過程を改変し得ることは当業者であれば理解されることである。ここで記載されている天然全長配列Ａｐａｆ-１又はＡｐａｆ-１の種々のドメインにおける変異は、例えば米国特許第５３６４９３４号に記載された保存的あるいは非保存的突然変異に関する技術とガイドラインの任意のものを使用して発生させることができる。変異は、Ａｐａｆ-１をコードしている一又は複数のコドンの置換、欠失又は挿入であり、天然配列Ａｐａｆ-１に対してＡｐａｆ-１のアミノ酸配列に変化が生じている。場合によっては、変異は、Ａｐａｆ-１分子の一又は複数のドメインにおいて、少なくとも１つのアミノ酸を任意の他のアミノ酸に置換することによりなされる。変異は、オリゴヌクレオチド媒介(部位特異的)突然変異誘発、アラニンスキャニング、及びＰＣＲ突然変異誘発のような、当該分野において既知の方法を用いて行うことができる。部位特異的突然変異誘発(Carterら，Nucl．Acids．Res.，13：4331(1986)；Zollerら，Nucl．Acids ．Res.，10：6487(1987))、カヤット突然変異(Wellsら，Gene，34：315(1985)) 、制限選択的突然変異誘発(Wellら，Philos．Trans．R．Soc．London．SerA，31 7：415(1986))又は他の既知の技術をクローンＤＮＡに実施してＡｐａｆ-１変異体のＤＮＡを生産することができる。また、特定のリガンド又はレセプターとの相互作用に関与する、近接配列に沿った一又は複数のアミノ酸を同定するために、スキャニングアミノ酸分析法を使用することもできる。好ましいスキャニングアミノ酸は、比較的小さい中性アミノ酸である。このようなアミノ酸には、アラニン、グリシン、セリン及びシステインが含まれる。変異体の主鎖構造をあまり改変することなく、ベータ炭素を越えた側鎖が除去されるため、アラニンがこの群のなかで好ましいスキャニングアミノ酸である。またアラニンは最も一般的なアミノ酸であることも好ましい。さらに、アラニンは埋設及び露出位置の双方に頻繁に見出される(Creighton，The Proteins， (W.H．Freeman & Co.，N.Y.)；Chothia，J．Mol．Biol.，150：１(1976))。アラニン置換により適切な量の変異体を生じない場合には、アイソテリックアミノ酸を使用することができる。一度選択されたＡｐａｆ-１変異体が生産されると、例えばここで記載する無細胞系において以下の実施例３に記載するようにして、カスパーゼ-３の活性化におけるそれらの活性に対して、それらをスクリーニングすることができる。２．複製可能なベクターへの核酸の挿入Ａｐａｆ-１をコードした核酸(例えば、ｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡ)は、さらなるクローニング又は発現のために、複製可能なベクター内に挿入される。様々なベクターが公的に入手可能である。ベクター成分としては、一般に、これらに制限されるものではないが、次のものの一又は複数が含まれる：シグナル配列、複製開始点、一つ又は複数のマーカー遺伝子、エンハンサーエレメント、プロモーター、及び転写終結配列であり、それぞれ以下に説明する。 (ｉ)シグナル配列成分Ａｐａｆ-１は直接的に組換え手法によって生産されるだけではなく、シグナル配列あるいは成熟タンパク質あるいはポリペプチドのＮ末端に特異的切断部位を有する他のポリペプチドである異種性ポリペプチドとの融合ペプチドとしても生産される。一般に、シグナル配列はベクターの成分であるか、ベクターに挿入されるＡｐａｆ-１ＤＮＡの一部である。好ましく選択された異種シグナル配列は宿主細胞によって認識され加工される(すなわち、シグナルペプチダーゼによって切断される)ものである。シグナル配列は、例えばアルカリンフォスファターゼ、ベニシリナーゼ、ｌｐｐあるいは熱安定なエンテロトキシンIIリーダーの群から選択される原核生物シグナル配列であってよい。酵母の分泌に関しては、シグナル配列は、例えば、酵母インベルターゼリーダー、アルファ因子リーダー (酵母菌属(Saccharomyces)及びクルイベロマイシス(Kluyveromyces)α因子リーダーを含み、後者は米国特許第5,010,182号に記載されている)、又は酸フォスフォターゼリーダー、白体 (C.albicans)グルコアミラーゼリーダー(1990年4月4日発行のEP 362,179)、又は１９９０年１１月１５日に公開された国際特許第ＷＯ９０／１３６４６号に記載されているシグナルであり得る。哺乳動物細胞の発現においては、同一あるいは関連ある種の分泌ポリペプチド由来のシグナル配列、並びに単純ヘルペスグリコタンパク質Ｄシグナルのようなウイルス分泌リーダーのような他の哺乳動物のシグナル配列がタンパク質の直接分泌に使用できるが、インビボにおけるヒト細胞の細胞膜へのＡｐａｆ-１の挿入を通常指示する天然Ａｐａｆ-１プレ配列が十分である。このような前駆体領域のＤＮＡは、好ましくは、Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡにリーディングフレームが結合される。 (ｉｉ)複製開始点成分発現とクローニングベクターは共に一又は複数の選択された宿主細胞においてベクターの複製を可能にする核酸配列を含む。一般に、この配列はクローニングベクターにおいて、宿主染色体ＤＮＡとは独立にベクターが複製することを可能にするものであり、複製開始点又は自律的複製配列を含む。そのような配列は多くの細菌、酵母及びウイルスに対してよく知られている。プラスミドｐＢＲ３２２に由来する複製開始点は大部分のグラム陰性細菌に好適であり、２μプラスミド開始点は酵母に適しており、様々なウイルス開始点(ＳＶ４０、ポリオーマ、アデノウイルス、ＶＳＶ又はＢＰＶ)は哺乳動物細胞におけるクローニングベクターに有用である。一般には、哺乳動物の発現ベクターには複製開始点成分は不要である(ＳＶ４０開始点が典型的には初期プロモーターを有しているため用いられる)。多くの発現ベクターは「シャトル」ベクターである、すなわち、それらは少なくとも一つのクラスの生物において複製可能であるが、発現のために他の生物に形質移入され得る。例えば、大腸菌においてベクターがクローン化され、そのベクターが酵母あるいは哺乳動物細胞に形質移入され、宿主細胞染色体と独立して複製することはできないとしても、発現する。ＤＮＡは宿主ゲノムに挿入することによって増殖され得る。これは、例えばベクターにバシラスゲノムＤＮＡに見られる配列と相補的なＤＮＡ配列を含めることにより、宿主としてバシラス(Bacillus)種を用いて容易に達成される。このベクターを用いたバシラスの形質移入は、ゲノムとの相同的組換え及びＡｐａｆ- １ＤＮＡの挿入をもたらす。しかし、Ａｐａｆ-１をコードするゲノムＤＮＡの回収は、Ａｐａｆ-１ＤＮＡを切除するのに制限酵母による消化を必要とするために、外来的に複製したベクターの場合よりも複雑である。 (ｉｉｉ)選択ゲノム成分発現及びクローニングベクターは、典型的には、選択的マーカーとも称される選択遺伝子を含む。この遺伝子は、選択的培地で成長させた形質転換宿主細胞の生存又は成長に必要なタンパク質をコードする。選択遺伝子を含むベクターと共に形質転換していない宿主細胞は培地で生存しない。典型的な選択遺伝子は、(a )アンピシリン、ネオマイシン、メトトレキサートあるいはテトラサイクリンのような抗生物質あるいは他の毒素に耐性を与え、(b)栄養要求性欠陥を補い、(c) 例えばバシリ(Bacilli)に対する遺伝子コードＤ-アラニンラセマーゼのような、複合培地から得られない重要な栄養素を供給する、タンパク質をコードする。選択技術の一例においては、宿主細胞の成長を抑止する薬品が用いられる。異種性遺伝子で首尾よく形質転換した細胞は、抗薬品性を付与し、選択工程を生存するタンパク質を生産する。このような優性選択の例としては、ネオマイシン(S outhernら，J．Molec．Appl．Genet.，1：327(1982))、ミコフェノール酸(Mulli ganら，Science，209:1422(1980))又はハイグロマイシン(Sugdenら，Mol．Cell ．Biol.，5：410-413(1985))が使用される。上述した３つの例は、真核生物のコントロール下で細菌遺伝子を用いて、適切な薬品Ｇ４１８又はネオマイシン(ジェネテシン)、ｘｇｐｔ(ミコフェノール酸)、又はハイグロマイシンにそれぞれ耐性を付与する。哺乳動物の細胞に適切な選択的マーカーの他の例は、ＤＨＦＲあるいはチミジンキナーゼのように、Ａｐａｆ-１核酸を捕捉することのできる細胞成分を同定することのできるものである。哺乳動物細胞の形質転換細胞は、マーカーを捕捉することによって当該形質転換細胞のみが生存できるような独特に適応化された淘汰圧下に置かれる。淘汰圧は、培地中の選択剤の濃度が次第に変化する条件下で形質転換細胞を培養することにより課し、選択遺伝子とＡｐａｆ-１をコードするＤＮＡの双方を増幅させる。増幅は、成長に重要なタンパク質の生産に対する要求度が高い遺伝子が、組換え細胞の後の世代の染色体内に直列に反復されるプロセスである。増幅されたＤＮＡから増大したＡｐａｆ-１量が合成される。増幅可能な遺伝子のほかの例には、メタロチオネインＩ及びＩＩ、アデノシンディアミナーゼ、及びオルニチンデカルボキシラーゼが含まれる。ＤＨＦＲ選択遺伝子によって形質転換された細胞は、まず、ＤＨＦＲの競合的アンタゴニストであるメトトリキセート(Mtx)を含む培地において形質転換物の全てを培養することで同定される。野生型ＤＨＦＲを用いた場合の好適な宿主細胞は、Urlaubほかにより，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，77:7216(1980)に記載されているようにして調製され増殖されたＤＨＦＲ活性に欠陥のあるチャイニーズハムスター卵巣(ＣＨＯ)株化細胞である。形質転換した細胞は次に濃度の高いメトトレキセートに接触させる。これによりＤＨＦＲ遺伝子の複数コピーが合成され、同時に、Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡのような発現ベクターを含む他のＤＮＡの複数コピーが作られる。この増幅方法は、もしＭｔｘに高度に耐性である変異体ＤＨＦＲ遺伝子が使用されたような場合には内在性ＤＨＦＲの存在にかかわらず、任意の他の適切な宿主、例えば、ＡＴＣＣ番号ＣＣＬ６１ＣＨＯ− Ｋ１を使用することができる(EP117,060)。あるいは、Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡ配列、野生型ＤＨＦＲタンパク質、及びアミノグリコシド３'-ホスホトランスフェラーゼ(ＡＰＨ)のような他の選択的マーカーで形質転換あるいは同時形質転換した宿主細胞(特に、内在性ＤＨＦＲを含む野生型宿主)は、カナマイシン、ネオマイシンあるいはＧ４１８のようなアミノグリコシド抗生物質のような選択可能マーカーの選択剤を有する培地における細胞成長により選択することができる。米国特許第４９６５１９９号を参照。酵母中での使用に好適な選択遺伝子は酵母プラスミドＹＲｐ７に存在するｔｒｐ１遺伝子である(Stinchcombら，Nature，282：39(1979)；Kingmanら，Gene，7 ：141(1979)；Tschemperら，Gene，10：157(1980))。ｔｒｐ１遺伝子は、例えば、ＡＴＣＣ第４４０７６号あるいはＰＥＰ４-１のようなトリプトファン内で成長する能力に欠ける酵母の突然変異株に対する選択マーカーを提供する(Jones， Genetics，85:12(1977))。酵母宿主細胞ゲノムにｔｒｐ１破壊が存在することは、トリプトファンの不存在下における成長による形質転換を検出する有効な環境を提供する。同様に、Ｌｅｕ２欠陥を有する酵母株(ATCC 20,622あるいは38,626 )は、Ｌｅｕ２遺伝子を有する既知のプラスミドによって補完される。更に、１．６μｍの円形プラスミドｐＫＤ１由来のベクターは、クルイヴェロマイシス(Kluyveromyces)酵母の形質転換に用いることができる(Bianchiほか.， Curr．Genet.，12:185(1987))。より最近では、組換え子ウシのキモシンの大量生産のための発現系がＫ.ラクティス(lactis)に対して報告されている(Van den Berg，Bio/Technology，8:135(1990))。クルイヴェロマイシスの工業的な菌株からの、組換えによる成熟したヒト血清アルブミンを分泌する安定した複数コピー発現ベクターも開示されている(Fleerほか.，Bio/Technology，9:968-975(1991) )。 (ｉｖ)プロモーター成分発現及びクローニングベクターは、通常、宿主生物によって認識され、Ａｐａｆ-１核酸に作用可能に結びついているプロモーターを含む。プロモーターは、作用可能に結合しているＡｐａｆ-１核酸配列のような特定の核酸配列の転写及び翻訳を制御する構造的な遺伝子(一般的に約１００ないし１０００ｂｐ)の開始コドンの上流側(５')に位置する未翻訳配列である。このようなプロモーターは典型的には、誘発的なクラス及び構成的なクラスの２つのクラスに属する。誘発的なプロモーターは、養分の存在あるいは不存在、温度変化等の培養条件の変化に対応してその制御の下でＤＮＡからの転写レベルを上昇させるプロモーターである。現時点において多種の可能な宿主細胞により認識される非常に多くのプロモーターがよく知られている。これらのプロモーターは、制限酵素の消化によって供給源ＤＮＡからプロモーターを排除し、ベクターに単離したプロモーター配列を挿入することで、Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡに作用的に結合している。天然のＡｐａｆ-１プロモーター配列及び多くの異種性プロモーターはいずれもＡｐａｆ-１ＤＮＡの直接増幅及び／又は発現に用いることができる。原核生物宿主での使用に好適なプロモーターはβ-ラクタマーゼ及びラクトースプロモーター系(Changほか.，Nature，275:615(1978)，Goeddelほか.，Nature ，281:544(1979))、アルカリホスファターゼ、トリプトファン(trp)プロモーター系(Goeddel，Nucleic Acids Res.，8:4057(1980);EP36,776)、及びハイブリッドプロモーター、例えばｔａｃプロモーターを含む(deBoerほか.，Proc．Natl． Acad．Sci．USA，80:21-25(1983))。しかし、他の既知の細菌プロモーターも好適である。これらのヌクレオチド配列は公表されており、よって当業者は、任意の所望の制限部位を提供するためにリンカーあるいはアダプターを使用することでＡｐａｆ-１をコードするＤＮＡ(Siebenlistほか.，Cell，20:269(1980))にそれらを作用可能に結合させることが可能である。細菌系で使用するプロモータもまたＡｐａｆ-１をコードするＤＮＡと作用可能に結合したシャイン・ダルガーノ(S. D.)配列を有する。真核生物に対してもプロモーター配列が知られている。実質的に全ての真核生物の遺伝子は、転写開始部位から２５ないし３０塩基上流に見出されるＡＴリッチ領域を有する。多数の遺伝子の転写開始位置から７０ないし８０塩基上流に見出される他の配列は、Ｘが任意のヌクレオチドであるＣＸＣＡＡＴ領域である。大部分の真核生物遺伝子の３'末端には、コード配列の３'末端にポリＡ尾部が付加されていることを示すシグナルであるＡＡＴＡＡＡ配列がある。これらの配列は全て真核生物の発現ベクターに適切に挿入される。酵母宿主と共に用いて好適なプロモーター配列の例としては、３-ホスホグリセラートキナーゼ(Hitzemanほか，J．Biol．Chem.，255:2073(1980))又は他の糖分解酵素(Hessほか，J．Adv．EnzymeReg.，7:149(1968)；Holland，Biochemistr y，17：4900(1987))、例えばエノラーゼ、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース-６-リン酸イソメラーゼ、３-ホスホグリセレートムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオセリン酸イソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、及びグルコキナーゼが含まれる。他の酵母プロモーターとしては、成長条件によって転写が制御される付加的効果を有する誘発的プロモーターであり、アルコールデヒドロキナーゼ２、イソサイトクロムＣ、酸ホスファターゼ、窒素代謝と関連する分解性酵素、メタロチオネイン、グリセルアルデヒド-３-リン酸デヒドロゲナーゼ、及びマルトース及びガラクトースの利用を支配する酵素のプロモーター領域がある。酵母の発現に好適に用いられるベクターとプロモータは欧州特許第７３６５７号に記載されている。また酵母エンハンサーも酵母プロモーターと共に好適に用いられる。哺乳動物の宿主細胞におけるベクターからのＡｐａｆ-１転写は、例えば、ポリオーマウィルス、伝染性上皮腫ウィルス(1989年7月5日公開のUK 2,211,504)、アデノウィルス(例えばアデノウィルス２)、ウシ乳頭腫ウィルス、トリ肉腫ウィルス、サイトメガロウィルス、レトロウィルス、Ｂ型肝炎ウィルス及び最も好ましくはサルウィルス４０(SV40)のようなウィルスのゲノムから得られるプロモーター、異種性哺乳動物プロモーター、例えばアクチンプロモーター又は免疫グロブリンプロモーター、熱衝撃プロモーター、そしてＡｐａｆ-１配列に通常付随するプロモーターによって、このようなプロモーターが宿主細胞系に適合し得る限り、調節される。ＳＶ４０ウィルスの初期及び後期プロモーターは、ＳＶ４０ウイルスの複製起点をさらに含むＳＶ４０制限断片として簡便に得られる(Fiersほか，Nature，27 3:113(1978);Mulligan及びBerg，Science，209:1422-1427(1980)；Pavlakisほか，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，78:7398-7402(1981))。ヒトサイトメガロウィルスの最初期プロモーターは、ＨｉｎｄＩＩＩＥ制限断片として簡便に得られる (Greenawayほか，Gene，18:355-360(1982))。ベクターとしてウシ乳頭腫ウィルスを用いて哺乳動物宿主でＤＮＡを発現する系が、米国特許第４４１９４４６号に開示されている。この系の修飾は、米国特許第４６０１９７８号に記載されている(サルの細胞での免疫インターフェロンをコードしているｃＤＮＡの発現について、Grayら，Nature，295：503-508(1982)を；単純ヘルペスウイルス由来のチミジンキナーゼプロモーターの調節下でのマウス細胞のヒトγ-インターフェロンｃＤＮＡの発現について、Nature,297:598-601(1982)；培養マウス及びウサギ細胞におけるヒトインターフェロン１の発現について、Canaani及びBerg，Pro c．Natl．Acad．Sci．USA，79：5166-5170(1982)を；プロモーターとしてラウス肉腫ウィルスの長い末端反復配列を用いたＣＶ-１サル腎臓細胞、ニワトリ胚線維芽細胞、チャイニーズハムスター卵巣細胞、ＨｅＬａ細胞、及びマウスＮＩＨ -３Ｔ３細胞における細菌ＣＡＴ配列の発現について、Gormanほか，Proc．Natl ．Acas．Sci．USA，79:6777-6781(1982)を参照のこと)。 (ｖ)エンハンサーエレメント成分より高等の真核生物による本発明のＡｐａｆ-１をコードしているＤＮＡの転写は、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することによって増強され得る。エンハンサーは、通常は約１０から３００ｂｐで、プロモーターに作用してその転写を増強するＤＮＡのシス作動要素である。エンハンサーは、相対的に方向及び位置に独立しており、転写ユニットの５'(Laiminsほか，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，7 8:993(1981))及び３'(Luskyほか，Mol．Cell Bio.，3:1108(1983))、イントロン内部(Banerjiほか，Cell，33:729(1983))並びにコード配列自身の内部(Osborne ほか，Mol．Cell Bio.，4:1293(1984))に見出されている。哺乳動物の遺伝子由来の多くのエンハンサー配列が知られている(グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α-フェトプロテイン及びインスリン)。しかしながら、典型的には、真核細胞ウィルス由来のエンハンサーが用いられるであろう。例としては、複製起点の後期側のＳＶ４０エンハンサー(ｂｐ１００-２７０)、サイトメガロウィルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポリオーマエンハンサー及びアデノウィルスエンハンサーが含まれる。真核生物のプロモーターの活性化のための増強要素については、Yaniv，Nature，297:17-18(1982)もまた参照のこと。エンハンサーは、Ａｐａｆ-１コード配列の５'又は３'位でベクター中にスプライスされ得るが、好ましくはプロモーターから５'位に位置している。 (ｖｉ)転写終止成分真核生物宿主細胞(酵母、真菌、昆虫、植物、動物、ヒト又は他の多細胞生物由来の有核細胞)に用いられる発現ベクターは、また転写の終止及びｍＲＮＡの安定化に必要な配列を含む。このような配列は、真核生物又はウィルスのＤＮＡ又はｃＤＮＡの５'、時には３'の非翻訳領域から一般に取得できる。これらの領域は、Ａｐａｆ-１をコードしているｍＲＮＡの非翻訳部分にポリアデニル化断片として転写されるヌクレオチドセグメントを含む。 (ｖｉｉ)ベクターの組立てと分析一又は複数の上に列挙した成分を含む適切なベクターの組立てには標準的なライゲーション技術を用いる。分離されたプラスミド又はＤＮＡ断片を切断し、整え、そして必要とされるプラスミドの生成のために望ましい型に再ライゲーションする。組立てられたプラスミドが正しい配列であることを確認する分析のために、ライゲーション混合物を用いて、大腸菌Ｋ１２菌株２９４(ATCC 31446)を形質転換し、適当な場合にはアンピシリン又はテトラサイクリン耐性によって、形質転換細胞を好適に選択する。形質転換細胞からプラスミドを調製し、制限エンドヌクレアーゼ消化により分析し、及び／又はMessingほか，Nucleic Acids Res.，9:309（1981 ）の方法又はMaxamほか，Methods in Enzymology，65:499(1980)の方法によって配列決定する。 (ｖｉｉｉ)一過性発現ベクターＡｐａｆ-１をコードしているＤＮＡの哺乳動物細胞における一過性発現をもたらす発現ベクターを使用することができる。一般に、一過性発現は、宿主細胞が発現ベクターの多くのコピーを蓄積し、次にその発現ベクターによってコードされている所望のポリペプチドを高レベルで合成するように、宿主細胞中で効果的に複製できる発現ベクターを使用することを含む(Sambrookほか，上掲)。一過性発現系は、適切な発現ベクターと宿主細胞を含むが、クローニングされたＤＮＡによりコードされているポリペプチドの簡便で確実な同定並びに所望の生物学的又は生理学的性質についてのポリペプチドの迅速なスクリーニングを可能にする。したがって、一過性発現系は、本発明において、Ａｐａｆ-１変異体を同定する目的のために特に有用である。 (ｉｘ)適切な例示的脊椎動物細胞ベクター組換え脊椎動物細胞培養でのＡｐａｆ-１の合成に適応するのに適切な他の方法、ベクター及び宿主細胞は、Gethingほか，Nature，293:620-625(1981);Mante iほか，Nature，281:40-46(1979);欧州特許第１１７０６０号;及び欧州特許第１１７０５８号に記載されている。３．宿主細胞の選択及び形質転換ここに記載のベクターにＤＮＡをクローニングあるいは発現するために適切な宿主細胞は、原核生物、酵母、又は上述の高等真核生物細胞である。この目的にとって適切な原核生物は、限定するものではないが、真正細菌、例えばグラム陰性又はグラム陽性生物体、例えばエシェリチアのような腸内菌科、例えば大腸菌、エンテロバクター、エルウィニア(Erwinia)、クレブシエラ、プロテウス、サルモネラ、例えばネズミチフス菌、セラチア属、例えばセラチア・マルセスキャンス及び赤痢菌属、並びに桿菌、例えば枯草菌及びバシリ・リチェフォルミス(l icheniformis)(例えば、1989年4月12日に公開されたDD 266,710に開示されたバシリ・リチェニフォルミス４１Ｐ)、シュードモナス属、例えば緑膿菌及びストレプトマイセス属を含む。好ましくは、宿主細胞は最小量のタンパク質分解酵素を分泌すべきである。原核生物に加えて、糸状菌又は酵母菌のような真核微生物は、Ａｐａｆ-１をコードするベクターのための適切なクローニング又は発現宿主である。サッカロミセス・セレヴィシア、又は一般的なパン酵母は下等真核生物宿主微生物のなかで最も一般的に用いられる。しかしながら、多数の他の属、種及び菌株も、一般的に入手可能で有用である。グリコシル化Ａｐａｆ-１の発現に適切な宿主細胞は、多細胞生物から誘導される。このような宿主細胞は、複雑なプロセシング及びグリコシル化活動が可能である。原則的には、脊椎動物であろうと無脊椎動物培養であろうと、任意のより高等の真核生物細胞培養が使用できる。無脊椎動物細胞の例としては植物及び昆虫細胞が含まれる。多数のバキュロウィルス株及び変異体及び対応する許容可能な昆虫宿主細胞、例えばスポドプテラ・フルギペルダ(毛虫)、アエデス・アエジプティ(蚊)、アエデス・アルボピクトゥス(蚊)、ドゥロソフィラ・メラノガスター(ショウジョウバエ)、及びボンビクス・モリが同定されている(例えば、Luc kowほか，Bio/Technology，6:47-55(1988);Millerほか，Genetic Engineering， Setlowほか，eds.，Vol．8(Plenum Publishing，1986)，pp.277-279;及びMaeda ほか，Nature，315:592-594(1985)を参照のこと)。トランスフェクションのための種々のウィルス株、例えば、オートグラファ・カリフォルニカＮＰＶのＬ−１変異体とボンビクス・モリＮＰＶのＢｍ−５株が公に利用できる。綿花、コーン、ジャガイモ、大豆、ペチュニア、トマト及びタバコのような植物細胞培養を宿主として利用することができる。典型的には、植物細胞は、細菌アグロバクテリウム・トゥメファシエンスのある菌株と共にインキュベートすることによってトランスフェクトされる。Ａ．トゥメファシエンスと共に植物細胞培養をインキュベートする間に、Ａｐａｆ-１をコードしているＤＮＡが、植物細胞宿主がトランスフェクトされるようにその植物細胞宿主に移され、そして適切な条件下でＡｐａｆ-１をコードしているＤＮＡを発現させる。加えて、例えば、ノパリンシンターゼプロモーター及びポリアデニル化シグナル配列のような、植物細胞と適合しうる調節及びシグナル配列が利用できる(Depickerほか，J． Mol．Appl．Gen.，1:561(1982))。また、Ｔ-ＤＮＡ７８０遺伝子の上流領域から分離されるＤＮＡセグメントは、組換えＤＮＡを含む植物組織中の植物発現遺伝子の転写レベルを活性化又は増強しうる(1989年6月21日公開のEP 321,196)。培養(組織培養)中での脊椎動物細胞の増殖は、当該分野おいてよく知られている(例えば、Tissue Culture,Academic Press,編者Kruse and Patterson(1973)を参照のこと)。有用な哺乳動物宿主株化細胞の例は、ＳＶ４０によって形質転換されたサル腎臓ＣＶ１株(COS-7，ATCC CRL 1651);ヒト胚腎臓株(２９３又は懸濁培養での成長のためにサブクローン化された２９３細胞、Grahamほか，J．Gen V irol.，36:59(1977));ハムスター乳児腎細胞(BHK，ATCC CCL 10)；チャイニーズハムスター卵巣細胞／−ＤＨＦＲ(CHO，Urlaub及びChasin，Proc．Natl．Acad． Sci．USA，77:4216(1980));マウスのセルトリ細胞(TM4，Mather，Biol．Reprod. ，23:243-251(1980));サルの腎細胞(CVI ATCC CCL70);アフリカミドリザルの腎細胞(VERO-76，ATCC CRL-1587);ヒト子宮頸癌細胞(HELA，ATCCC CL 2);イヌ腎細胞(MDCK，ATCC CCL 34);バッファローラット肝細胞(BRL 3A，ATCC CRL 1442);ヒト肺細胞(W138，ATCC CCL 75);ヒト肝細胞(Hep G2，HB 8065);マウス乳房腫瘍細胞(MMT 060562，ATTC CCL51);ＴＲＩ細胞(Motherほか，Annals N.Y．Acad．Sci. ，383:44-68(1982));ＭＲＣ５細胞;及びＦＳ４細胞である。宿主細胞をトランスフェクトし、そして好ましくは上述のＡｐａｆ-１生成のための発現又はクローニングベクターで形質転換し、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードしている遺伝子を増幅するために適当に修飾された常套的栄養培地で培養する。トランスフェクションは、如何なるコード配列が実際に発現されるか否かにかかわらず、宿主細胞による発現ベクターの取り上げを意味する。多数のトランスフェクションの方法が当業者に知られている。例えば、ＣａＰＯ₄及びエレクトロポレーションである。このベクターの操作のあらゆる徴候が宿主細胞内で生じたときに成功したトランスフェクションが一般に認められる。形質転換は、染色体外のエレメントとしてであろうと染色体成分によってであろうと、ＤＮＡが複製可能であるように、生物体中にＤＮＡを導入することを意味する。用いられる宿主細胞に応じて、そのような細胞に対して適した標準的な方法を用いて形質転換はなされる。前掲のSambrookほかにより記載された塩化カルシウムを用いるカルシウム処理又はエレクトロポレーションは、原核生物又は実質的な細胞壁障壁を含む他の細胞に対して用いられる。アグロバクテリウム・トゥメファシエンスによる感染が、Shawほか，Gene，23:315(1983)及び1989年6月29日公開の国際特許第８９／０５８５９号に記載されたように、ある種の植物細胞の形質転換に用いられる。加えて、1991年1月10日に公開された国際特許第ＷＯ９１／００３５８号に記載されているように、超音波処理を用いて植物をトランスフェクトすることもできる。このような細胞壁のない哺乳動物の細胞に対しては、Graham及びvan der Eb， Virology，52:456-457(1978)のリン酸カルシウム沈殿法が好ましい。哺乳動物細胞の宿主系形質転換の一般的な側面は米国特許第４３９９２１６号に記載されている。酵母中の形質転換は、典型的には、Van Solingenほか，J．Bact.，130:94 6(1977)及びHsiaoほか，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，76:3829(1979)の方法によって実施する。しかしながら、ＤＮＡを細胞中に導入する他の方法、例えば、核マイクロインジェクション、エレクトロポレーション、無傷の細胞、又はポリカチオン、例えばポリブレン、ポリオルニチン等を用いる細菌プロトプラスト融合もまた用いることもできる。哺乳動物細胞を形質転換するための種々の技術については、Keownほか，Methods in Enzymology，185:527-537(1990)及びMansour ほか，Nature，336:348-352(1988)を参照のこと。４．宿主細胞の培養本発明のＡｐａｆ-１を生成するために用いられる原核細胞は、前掲のSambroo kほかにより記載されているような適切な培地で培養される。Ａｐａｆ-１の生産に用いられる哺乳動物の宿主細胞は種々の培地において培養することができる。市販培地の例としては、ハム(Ham)のＦ１０(Sigma)、最小必須培地(「MEM」，Sigma)、ＲＰＭＩ-１６４０(Sigma)及びダルベッコの改良イーグル培地(「DMEM」，Sigma)が含まれる。これらの培地はいずれも、ホルモン及び／又は他の成長因子(例えばインスリン、トランスフェリン、又は表皮成長因子)、塩類(例えば、塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウム及びリン酸塩 )、バッファー(例えばＨＥＰＥＳ)、ヌクレオシド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えば、ゲンタマイシン^TM薬)、微量元素(最終濃度がマイクロモル範囲で通常存在する無機化合物と定義される)及びグルコース又は同等のエネルギー源を必要に応じて補充することができる。任意の他の必要な補充物質もまた当業者に知られている適当な濃度で含むことができる。培養条件、例えば温度、ｐＨ等々は、発現のために選ばれた宿主細胞について以前から用いられているものであり、当業者には明らかであろう。一般に、哺乳動物の細胞培養の生産性を最大にするための原理、プロトコール、及び実用技術は、Mammalian Cell Biotechnology:a Practical Approach，M． Butler編(IRL Press，1991)に見出すことができる。この明細書において言及される宿主細胞は培養中の細胞並びに宿主動物内にある細胞を包含する。５．遺伝子増幅／発現の検出遺伝子の増幅及び／又は発現は、ここで提供された配列に基づき、適切に標識されたプローブを用い、例えば、従来よりのサザンブロット法、ｍＲＮＡの転写を定量化するノーザンブロット法(Thomas，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，77:52 01-5205(1980))、ドットブロット法(ＤＮＡ分析)、又はインシトゥハイブリッド形成法によって、直接的に試料中で測定することができる。種々の標識を用いることができ、最も一般的なものは放射性同位元素、特に³²Ｐである。しかしながら、他の方法、例えばポリヌクレオチド中への導入のためのビオチン修飾されたヌクレオチドもまた使用することができる。ついで、このビオチンは、例えば放射性ヌクレオチド、蛍光剤又は酵素等のような広範囲の標識で標識することができるアビジン又は抗体への結合部位として作用する。また、ＤＮＡ二本鎖、ＲＮＡ二本鎖及びＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド二本鎖又はＤＮＡ-タンパク二本鎖を含む、特異的二本鎖を認識することができる抗体を用いることもできる。ついで、抗体を標識し、アッセイを実施することができ、ここで二本鎖は表面に結合しており、その結果二本鎖の表面での形成の時点でその二本鎖に結合した抗体の存在を検出することができる。あるいは、遺伝子の発現は、遺伝子産物の発現を直接的に定量する免疫学的な方法、例えば細胞又は組織切片の免疫組織化学的染色及び細胞培養又は体液のアッセイによって、測定することもできる。免疫組織化学的染色技術では、細胞試料を、典型的には脱水と固定によって調製し、結合した遺伝子産物に対し特異的な標識化抗体と反応させるが、この標識は通常は視覚的に検出可能であり、例えば酵素的標識、蛍光標識、又はルミネサンス標識である。試料液の免疫組織化学的染色及び／又はアッセイに有用な抗体は、モノクローナルでもポリクローナルでもよく、任意の哺乳動物で調製することができる。簡便には、抗体は、天然配列Ａｐａｆ-１ポリペプチドに対して、又はここで提供されるＤＮＡ配列をベースとした合成ペブチドに対して、又はＡｐａｆ-１ＤＮＡに融合し特異的抗体エピトープをコードする外因性配列に対して調製され得る。６．Ａｐａｆ-１ポリペプチドの精製Ａｐａｆ-１は、培地又は宿主細胞の溶菌液から回収することができる。Ａｐａｆ-１が膜結合性であるならば、適切な洗浄液(例えばトリトン-Ｘ１００)を用いて膜から引き離すか、又はその細胞外ドメインを酵素的に切断して引き離すことができる。Ａｐａｆ-１がヒト起源以外の組換え細胞でつくられるときは、Ａｐａｆ-１はヒト起源のタンパク質又はポリペプチドを含んでいない。しかしながら、Ａｐａｆ-１に関して実質的に相同である調製物を得るには、組換え細胞タンパク又はポリペプチドからＡｐａｆ-１を精製することが望ましい。第一段階として、培地又は溶菌液を遠心分離して粒状の細胞屑を除去することができる。ついで、Ａｐａｆ-１を、汚染した可溶性タンパク質及びポリペプチドから、適切な精製手順の例である次の手順により精製される：すなわち、イオン交換カラムでの分画；エタノール沈殿；逆相ＨＰＬＣ；シリカ又はカチオン交換樹脂、例えばＤＥＡＥによるクロマトグラフィー；クロマトフォーカシング；ＳＤＳ-ＰＡＧＥ；硫酸アンモニウム沈殿；例えばセファデックスＧ-７５を用いるゲル濾過；及びＩｇＧのような汚染物を除くプロテインＡセファロースカラムである。残基が欠失され、挿入され、又は置換されたＡｐａｆ-１変異体は、その変異によってしばしば惹起された実質的な性質変化を考慮に入れて、天然配列Ａｐａｆ-１と同じようにして回収することができる。例えば、他のタンパク質又はポリペプチド、例えば細菌性もしくはウイルス性抗原、免疫グロブリン配列、又はレセプター配列とＡｐａｆ-１との融合体の調製は精製を容易にする；配列に対する抗体を含む免疫アフィニティーカラムを、融合ポリペプチドを吸着するために使用することができる。他の種類のアフィニティーマトリックスもまた使用することもできる。例えばフェニルメチルスルホニルフロリド(ＰＭＳＦ)のようなプロテアーゼインヒビターもまた精製の間のタンパク分解を阻害するのに有用であり、偶発的な汚染物質の成長を防止するために抗生物質を含めることができる。天然配列Ａｐａｆ-１に適切な精製方法は、組換え細胞培養の発現の際におけるＡｐａｆ-１又はその変異体の特性の変化の起因となる改変が必要となることは、当業者であれば分かるであろう。７．Ａｐａｆ-１ポリペプチドの共有結合的修飾Ａｐａｆ-１の共有結合的修飾は本発明の範囲内に含まれる。Ａｐａｆ-１の共有結合的修飾の一つの型は、Ａｐａｆ-１の標的アミノ酸残基を、Ａｐａｆ-１のＮ末端又はＣ末端残基、又は選択された側鎖と反応できる有機誘導体化剤と反応させることによって分子内に導入することができる。二官能性試薬による誘導体形成は、抗Ａｐａｆ-１抗体を精製する方法に使用する水不溶性支持体マトリックス又は表面へのＡｐａｆ-１の架橋に有用であり、またその逆も同様である。二官能性試薬による誘導体形成は、Ａｐａｆ-１分子を架橋させてＡｐａｆ-１二量体を産生するのにも有用である。このような二量体により結合アビディティーが増大させられ、インビボにおける分子の半減期が延びる。通常使用される架橋剤には、例えば、１,１-ビス(ジアゾアセチル)- ２-フェニルエタン、グルタルアルデヒド、Ｎ-ヒドロキシスクシンイミドエステル、例えば、４-アジドサリチル酸とのエステル、３,３'-ジチオビス(スクシンイミジルプロピオナート)のようなジスクシンイミジルエステルを包含するホモ二官能性イミドエステル、及びビス-Ｎ-マレイミド-１,８-オクタンのような二官能性マレイミドが含まれる。メチル-３-((ｐ-アジドフェニル)ジチオ)プロピオイミダートのような誘導体化剤は、光の存在下で架橋を形成することができる光活性化中間体を生じる。また、臭化シアン活性化炭水化物のような反応性の水不溶性マトリックス及び米国特許第３９６９２８７号；３６９１０１６号；４１９５１２８号；４２４７６４２号；４２２９５３７号及び４３３０４４０号に記載されている反応性基質がタンパク固定に用いられる。その他の修飾は、それぞれ対応するグルタミル及びアスパルチル残基へのグルタミニル及びアスパラギニル残基の脱アミド化、プロリンとリジンのヒドロキシル化、セリル又はスレオニル残基のヒドロキシル基のリン酸化、リジン、アルギニン、及びヒスチジン側鎖のαアミノ基のメチル化(T.E．Creighton，Proteins:St ructure and Molecular Properties ，W.H．Freeman & Co.，San Francisco，PP. 79-86(1983))、Ｎ末端アミンのアセチル化、及び任意のＣ末端カルボキシル基のアミド化を含む。残基の修飾型も本発明の範囲に入る。本発明の範囲内に含まれるＡｐａｆ-１ポリペプチドの共有結合的修飾の他のタイプは、ポリペプチドの天然グリコシル化パターンを変更することを含む。「天然グリコシル化パターンの変更」とは、天然配列Ａｐａｆ-１に見出される一又は複数の炭水化物部分の欠失、及び／又は天然配列Ａｐａｆ-１に存在しない一又は複数のグリコシル化部位を付加することを意味することをここでは意図している。ポリペプチドのグリコシル化は、典型的には、Ｎ結合又はＯ結合の何れかである。Ｎ結合とは、アスパラギン残基の側鎖への炭水化物部分の結合を指す。アスパラギン-Ｘ-セリン及びアスパラギン-Ｘ-スレオニン(ここでＸはプロリンを除く任意のアミノ酸)というトリペプチド配列は、アスパラギン側鎖への炭水化物部分の酵素的結合のための認識配列である。したがって、ポリペプチド中にこれらのトリペプチド配列の何れかが存在すると、可能性の有るグリコシル化部位が作り出される。Ｏ結合グリコシル化は、ヒドロキシルアミノ酸、最も一般的にはセリン又はスレオニン(５-ヒドロキシプロリン又は５-ヒドロキシリジンもまた用いられるが)に、糖類Ｎ-アセチルガラクトーサミン、ガラクトース、又はキシロースの一つが結合することを意味する。Ａｐａｆ-１ポリペプチドへのグリコシル化部位の付加は、アミノ酸配列を、それが一又は複数の上述したトリペプチド配列(Ｎ結合グリコシル化部位のもの) を含むように変化させることによって達成される。この変化は、天然配列Ａｐａｆ-１への一又は複数のセリン又はスレオニン残基の付加、又はこれによる置換によってもなされる(Ｏ結合グリコシル化部位の場合)。場合によっては、Ａｐａｆ-１アミノ酸はＤＮＡレベルでの変化によって、特に、所望のアミノ酸に翻訳するコドンが産生されるように予め選んだ塩基でＡｐａｆ-１ポリペプチドをコードしているＤＮＡを突然変異することによって変更される。このＤＮＡ突然変異は、上記に記載され前掲の米国特許第５３６４９３４号に記載された方法を用いてなされる。Ａｐａｆ-１ポリペプチド上の炭水化物部分の数を増加させる他の手段は、該ポリペプチドへのグリコシドの化学的又は酵素的結合による。用いられる結合様式に応じて、糖(類)は、(ａ)アルギニンとヒスチジンに、(ｂ)遊離のカルボキシル基に、(ｃ)遊離のスルフヒドリル基、例えばシステインのものに、(ｄ)セリン、スレオニン又はヒドロキシプロリンのもののような遊離のヒドロキシル基に、 (ｅ)フェニルアラニン、チロシン又はトリプトファンのような芳香族残基、又は (ｆ)グルタミンのアミノ基に結合される。これらの方法は１９８７年９月１１日公開の国際特許第ＷＯ８７／０５３３０号及びAplin及びWriston，CRC Crit ．Re v．Biochem. ，pp259-306(1981)に記載されている。Ａｐａｆ-１ポリペプチド上に存在する炭水化物部分の除去は、化学的又は酵素的あるいはグリコシル化の標的となるアミノ酸残基をコードするコドンの突然変異的置換によりなされる。例えば、化学的脱グリコシル化は、化合物トリフルオロメタンスルホン酸、又は等価な化合物へ該ポリペプチドを曝露し、該ポリペプチドを無傷のまま残しながら、結合糖(Ｎ-アセチルグルコサミン又はＮ-アセチルガラクトサミン)を除く殆ど又は全ての糖を切断する。化学的脱グリコシル化は、Hakimuddinほか，Arch．Biochem Biophys.，259:52(1987)及びEdgeほか， Anal．Biochem.，118:131(1981)により記載されている。ポリペプチド上の炭水化物部分の酵素的切断は、Thotakuraほか，Meth．Enzymol.，138:350(1987)に記載されているように、種々のエンド及びエキソグリコシダーゼを使用して達成することができる。潜在的なグリコシル化部位でのグリコシル化は、Duskinほか，J．Biol．Chem. ，257:3105(1982)によって記載されているように、化合物ツニカマイシンを使用して防ぐことができる。ツニカマイシンはタンパク質-Ｎ-グルコシド結合の形成を阻害する。Ａｐａｆ-１の共有結合的修飾の他のタイプは、米国特許番第４６４０８３５号；第４４９６６８９号；第４３０１１４４号；第４６７０４１７号；第４７９１１９２号又は第４１７９３３７号に記載されているように、Ａｐａｆ-１ポリペプチドを、種々の非タンパク性ポリマーの一つ、例えばポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、又はポリオキシアルキレンに結合させることを含む。８．Ａｐａｆ-１キメラまた本発明は、他の異種性ポリペプチド又はアミノ酸配列と融合したＡｐａｆ -１を含むキメラ分子を提供する。一実施態様では、キメラ分子は、抗タグ抗体が選択的に結合するエピトープを提供するタグポリペプチドとのＡｐａｆ-１の融合体を含む。エピトープタグは一般にＡｐａｆ-１のアミノ又はカルボキシル末端に位置させられる。Ａｐａｆ- １のこのようなエピトープタグが付けられた形は、その存在をタグポリペプチドに対する抗体を用いて検出することができる。また、エピトープタグを供給すると、Ａｐａｆ-１を抗タグ抗体又はエピトープタグに結合する他の種類のアフィニティーマトリックスを用いたアフィニティー精製によって直ぐに精製することができる。様々なタグポリペプチドとその各抗体は従来から良く知られている。例には、ｆｌｕＨＡタグポリペプチドとその抗体１２ＣＡ５(Fieldほか，Mol．Cell．Bio l.，8:2159-2165(1988))；ｃ-ｍｙｃタグとそれに対する８Ｆ９、３Ｃ７、６Ｅ１０、Ｇ４、Ｂ７及び９Ｅ１０抗体(Evanほか，Molecular and Cellular Biolog y，5:3610-3616(1985))；及び単純ヘルペスウィルス糖タンパクＤ(ｇＤ)タグとその抗体(Paborskyほか，Protein Engineering，3(6):547-553(1990))が含まれる。他のタグポリペプチドには、フラッグ-ペプチド(Flag-peptide)(Hoppほか， BioTechnology，6:1204-1210(1988))；ＫＴ３エピトープペプチド(Martinほか， Science，255:192-194(1992))；α-チューブリンエピトープペプチド(Skinnerほか，J．Biol．Chem.，266:15163-15166(1991))；及びＴ７遺伝子１０タンパクペプチドタグ(Lutz-Freyermuthほか，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，87:6393-6397 (1990))が含まれる。ひとたびタグポリペプチドが選択されれば、それに対する抗体を、ここに開示した方法を用いて産生することができる。一般的に、エピトープタグＡｐａｆ-１は、上述した方法に従い作成され生産される。エピトープタグＡｐａｆ-１は以下の実施例においてもまた記載されている。Ａｐａｆ-１タグポリペプチド融合体は、Ａｐａｆ-１タンパク質をインフレームでコードしているｃＤＮＡ配列をタグポリペプチドＤＮＡ配列に融合させ、得られたＤＮＡ融合作成物を適当な宿主細胞に発現させることによって好ましく作成される。通常は、本発明のＡｐａｆ-１タグポリペプチドキメラを調製するときは、Ａｐａｆ-１をコードしている核酸を、タグポリペプチドのＮ末端をコードしている核酸にその３'末端で融合させるが、５'融合もまた可能である。例えば、約５〜約１０のヒスチジン残基を有するポリヒスチジン配列はＮ末端又はＣ末端で融合され、アフィニティークロマトグラフィーにおける精製ハンドルとして使用される。エピトープタグＡｐａｆ-１は、抗タグ抗体を用いてアフィニティークロマトグラフィーによって精製することができる。アフィニティー抗体が付着されるマトリックスには、例えばアガロース、調製穴明きガラス又はポリ(スチレンジビニル)ベンゼンが含まれる。ついで、エピトープタグＡｐａｆ-１は、当該分野において知られた技術を使用して、アフィニティーカラムから溶出される。他の実施態様において、キメラ分子は免疫グロブリン配列と融合したＡｐａｆ -１ポリペプチドを含む。キメラ分子は、また特定のＡｐａｆ-１ドメイン配列、例えば免疫グロブリン配列と融合したＡｐａｆ-１の細胞外ドメイン配列も含む。これには、モノマー、又はホモ-又はヘテロ-マルチマー、そして特にはホモ- 又はヘテロダイマー又は-テトラマー型のものが含まれ；場合によっては、キメラはダイマー型又はホモダイマー重鎖型であり得る。一般的に、これらの構築免疫グロブリンは以下の図に示されるような既知の単位構造を有している。基本的な４鎖の構造単位はＩｇＧ、ＩｇＤ及びＩｇＥが存在する型である。４鎖の単位がより大なる高分子量の免疫グロブリンにおいて繰り返される；ＩｇＭが一般にジスルフィド結合によって一緒になった基本的な４鎖単位のペンタマーとして存在する。ＩｇＡグロブリン、そして時折ＩｇＧグロブリンはまた血清中にマルチマー型で存在する。マルチマーの場合は、各４鎖単位は同一であるか異なっている。次の図は、いくつかの例示的なモノマー、ホモ-及びヘテロダイマー及びホモ- 及びヘテロマルチマー構造を示している。これらの図は単に例証するためのものであって、マルチマーの鎖は、天然免疫グロブリンと同様にジスルフィド結合していると考えられる。モノマー：ホモダイマー：ヘテロダイマー：ホモテトラマー：ヘテロテトラマー：及び上図において、「Ａ」はＡｐａｆ-１配列又は異種性配列に融合したＡｐａｆ- １配列を意味する；Ｘは、Ａと同一でも異なっていてもよい付加的な薬剤、免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーの一部で、例えば天然又はキメラ免疫グロブリン可変領域を含む可変領域又は可変領域様ドメイン、例えばシュードモナス外毒素又はリシンのような毒素、又は他のサイトカイン(すなわち、IL-1、インターフェロン-γ)又は細胞表面分子(すなわち、NGFR、CD40、OX40、Fas抗原、ショープ及び粘液腫ポックスウィルスのT2タンパク質)のような他のタンパク質に機能的に結合している配列、又は定常ドメインと通常は結合していないポリペプチド治療剤である；Ｙはリンカー又は他のレセプター配列である；Ｖ_L、Ｖ_H 、Ｃ_L及びＣ_Hは免疫グロブリンの軽又は重鎖の可変又は定常ドメインを表す。「Ａ」としてＡｐａｆ-１配列の少なくとも１つのＣＲＤと、「Ｘ」としてＣＲＤの反復性パターンを有する他の細胞表面タンパク質とを含む構造体が特に含まれる。上図は、単に本発明の可能性のあるキメラ構造を例証したものであって、全ての可能性を包括するものではない。例えば、これらの作成物のいずれにおいても、望ましくはいくつかの異なった「Ａ」、「Ｘ」又は「Ｙ」があるかもしれない。また、重又は軽鎖定常ドメインは、同一又は異なる免疫グロブリンから由来したものであってもよい。図示された類似の構造のあらゆる可能な組合わせは全て本発明の範囲に入る。一般的にキメラ分子は、ある種の抗体からの可変ドメインが他の種の可変ドメインで置換されたキメラ抗体と同様にして作成することができる。例えば、EP 0 125 023；EP 173,494；Munro，Nature，312：597(1984年12月13日)；Neuberger ら， Nature，312：604-608(1984年)；Sharonら，Nature，309：364-367(1984年)；Mo rrisonら，Proc．Nat'l．Acad．Sci．USA，81：6851-6855(1984)；Morrisonら， Science，229：1202-1207(1985)；Boulianneら，Nature，312：643-646(1984年) ；Caponら，Nature，337：525-531(1989)；Trauneckerら，Nature，339：68-70( 1989)を参照のこと。あるいは、キメラ分子は以下のようにして作製することができる。所望の配列、例えばＡｐａｆ-１及び／又はＴＮＦＲ配列をコードする領域を含むＤＮＡを、免疫グロブリン様ドメインをコードするドメインの３'末端又はその近傍で、及びＡｐａｆ-１又はＴＮＦＲポリペプチドのＮ末端をコードするＤＮＡもしくはその近傍の点(異なるリーダーの使用が想定される)で、又はＴＮＦＲのＮ末端コード領域もしくはその近傍(そこでは天然シグナルが使用される)で、制限酵素により切断する。ついで、このＤＮＡ断片を免疫グロブリン軽又は重鎖定常ドメインをコードするＤＮＡの近傍に直ちに挿入し、必要ならば、得られた作成体を欠失変異誘導により整える。好ましくは、キメラ分子がヒトに対するインビボ治療法を意図したものである場合、Ｉｇはヒト免疫グロブリンである。免疫グロブリン軽又は重鎖定常領域をコードするＤＮＡは既知であるか、ｃＤＮＡライブラリから直ぐに入手できるか合成される。例えば、Adamsら，Biochemistry，19：2 711-2719(1980)；Goughら，Biochemistry，19：2702-2710(1980)；Dolbyら，Pro c．Natl．Acad．Sci.．USA，77：6027-6031(1980)；Riceら，Proc．Natl．Acad ．Sci.，79：7862-7865(1982)；Falknerら，Nature，298：286-288(1982)；及び Morrisonら，Ann．Rev．Immunol.，2：239-256(1984)を参照のこと。このような融合体の調製方法のさらなる詳細は、イムノアドヘシンの調製に関する刊行物に見出される。イムノアドヘシン一般、及び特にＣＤ４-Ｉｇ融合分子は、１９８９年４月６日に公開された国際特許第ＷＯ８９／０２９２２号に開示されている。ＩｇＧ重鎖定常領域に結合している、ヒト免疫不全ウイルス(ＨＩＶ)のレセプター、ＣＤ４の細胞外部分を含む分子は当該分野において知られており、ＣＤ４の可溶性細胞外部分よりも著しく長い半減期とより低いクリアランスを有することが見出された(Caponら，上掲；Byrnら，Nature，344：667(199 0))。また、特異的キメラＴＮＦＲ-ＩｇＧ分子の作成が、Ashkenaziら，Proc．N atl．Acad．Sci.， 88：10535-10539(1991)；Lesslauerら，(J．Cell．Biochem．Supplement 15F，1 991，p.115(P432)；及びPeppelとBeutler，J．Cell.Biochem．Supplement 15F， 1991，p.118(P439))に記載されている。Ｂ．Ａｐａｆ-１の治療的又は非治療的用途本明細書に開示されているように、Ａｐａｆ-１は、アポトーシスを誘発するために使用される。このアポトーシスの誘発は、以下の実施例に記載するように、無細胞系又は哺乳動物細胞においてなされる。また、本発明のＡｐａｆ-１は非治療的用途においても有用性を有している。Ａｐａｆ-１をコードしている核酸配列を、組織特異性の分類のための診断に使用することもできる。例えば、インシトゥハイブリッド形成、ノーザン及びサザンブロット法、及びＰＣＲ分析のような手順を、Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡ及び／又はＲＮＡが評価されている細胞型中に存在しているか否か、またいくらの量のタンパク質又はＲＮＡが細胞で生産されるのかを決定するために使用することができる。この実施態様は、死滅が運命付けられている細胞を同定する方法を提供する。(非アポトーシス制御と比較して)多量の細胞が、死滅が運命付けられた細胞と相関する。より少ない量になると、細胞が死滅する可能性が低くなることになる。アポトーシス細胞中でのＡｄａｆ-１の発現は正常な非アポトーシス細胞における発現より少なくとも２−１０Ｘ大きいことが予想される。Ａｐａｆ-１をコードしている核酸配列は、ここに記載されている組換え技術によるＡｐａｆ-１の調製にもまた有用である。単離されたＡｐａｆ-１は、未知量のＡｐａｆ-１を含有するサンプルが調製された対照として、定量的診断アッセイに使用され得る。またＡｐａｆ-１調製物は、抗体を産生する際、Ａｐａｆ-１に対するアッセイにおける標準として(例えば、ラジオイムノアッセイ、ラジオレセプターアッセイ又は酵素結合免疫測定法における標準としての使用のためにＡｐａｆ-１を標識することにより)、アフィニティー精製法において、及び例えば放射性ヨウ素、酵素又はフルオロフォアで標識された場合、特に競合型レセプター結合アッセイにおいて有用である。Ａｐａｆ-１の修飾型、例えば前述のＡｐａｆ-１-ＩｇＧキメラ分子(イムノアドヘシン)は、抗Ａｐａｆ-１抗体の生産における免疫原として使用することができる。また、Ａｐａｆ-１をコードする核酸又はその修飾型は、トランスジェニック動物か「ノックアウト」動物を産生するのに使用でき、これらは治療的に有用な試薬の開発やスクリーニングに有用である。トランスジェニック動物(例えばマウス又はラット)とは、出生前、例えば胚段階で、その動物又はその動物の祖先に導入された導入遺伝子を含む細胞を有する動物である。導入遺伝子とは、トランスジェニック動物が発生する細胞のゲノムに組み込まれたＤＮＡである。一実施形態では、Ａｐａｆ-１をコードするｃＤＮＡ、又はその適当な配列(例えば、Ａｐａｆ-１-ＩｇＧ)を、確立された技術によりＡｐａｆ-１をコードするゲノムＤＮＡをクローン化するために使用することができ、ゲノム配列を、Ａｐａｆ- １をコードするＤＮＡを発現する細胞を有するトランスジェニック動物を産生するために使用することができる。特にマウス又はラット等のトランスジェニック動物を産生する方法は当該分野において常套的になっており、例えば米国特許第４７３６８６６号や第４８７０００９号に記述されている。典型的には、特定の細胞を組織特異的エンハンサーでのＡｐａｆ-１導入遺伝子の導入の標的にする。胚段階で動物の生殖系列に導入されたＡｐａｆ-１をコードする導入遺伝子のコピーを含むトランスジェニック動物はＡｐａｆ-１をコードするＤＮＡの増大した発現の影響を調べるために使用できる。このような動物は、例えば過度のアポトーシスを伴う病理的状態に対して保護をもたらすと思われる試薬のテスター動物として使用できる。発明のこの側面においては、動物を試薬で治療し、導入遺伝子を有する未治療の動物に比べ病状の発病率が低ければ、疾患に対する治療的処置の可能性が示される。あるいは、Ａｐａｆ-１の非ヒト相同体は、動物の胚性細胞に導入されたＡｐａｆ-１をコードする変更ゲノムＤＮＡと、Ａｐａｆ-１をコードする内在性遺伝子との間の相同的組換えによって、Ａｐａｆ-１をコードする欠陥又は変更遺伝子を有する「ノックアウト」動物を作成するために使用できる。例えば、Ａｐａｆ-１をコードするＤＮＡは、確立された技術に従い、Ａｐａｆ-１をコードするゲノムＤＮＡのクローニングに使用できる。Ａｐａｆ-１をコードするゲノムＤＮＡの一部を欠失したり、組み込みを監視するために使用する選択可能なマーカーをコードする遺伝子等の他の遺伝子で置換することができる。典型的には、ベクターは無変更のフランキングＤＮＡ(５'と３'末端の両方)を数キロベース含む (例えば、相同的組換えベクターについてはThomas and Capecchi，Cell，51:503(1987)を参照のこと)。ベクターは胚性幹細胞に(例えば電気穿孔法等によって)導入し、導入されたＤＮＡが内在性ＤＮＡと相同的に組換えられた細胞を選択する(例えば、Li ほか，Cell，69:915(1992)参照)。選択された細胞は次に動物(例えばマウス又はラット)の胚盤胞内に注入され、集合キメラを形成する(例えば、Bradley，Terat ocarcinomas and Embryonic Stem Cells:A Practical Approach，E．J．Roberts on，ed．(IRL，Oxford，1987)，pp．113-152参照)。その後、キメラ性胚を適切な偽妊娠の雌性乳母に移植し、胎仔に妊娠期間を経させて「ノックアウト」動物を作る。胚細胞に相同的に組換えられたＤＮＡを有する子孫は標準的な技術により同定され、それらを利用して動物の全細胞が相同的に組換えられたＤＮＡを含む動物を繁殖させることができる。ノックアウト動物は、例えば細胞の非制御成長及び／又は腫瘍の発達を含む、Ａｐａｆ-１ポリペプチドが不在であることによるある種の病理的状態及び病理的状態の発達に対して防御する能力によって特徴付けられる。Ａｐａｆ-１タンパク質はアポトーシスを変調する治療的に活性な分子を同定するアッセイにおいて有用である。特に、アポトーシスの開始を阻害するかそのような開始を亢進させる化合物をこれらスクリーニング方法により簡便に同定することができる。アポトーシスを阻害する分子は、例えば変性疾患における細胞死を防ぐために、又は培養細胞の寿命を延ばすために有用である。アポトーシスの開始を亢進又は促進する分子は、例えば癌の治療あるいはインビトロにおいて特定の細胞の死滅を促進するために有用である。Ａｐａｆ-１への特異的結合に対してチトクロムＣと競合的に競合し得る候補化合物のアッセイは、化学ライブラリの高処理スクリーニング系を提供する。通常は１０Ｋ分子量未満の小分子は、細胞に対して透過性である可能性が高いので薬物療法に望ましく、細胞による分解を被りにくく、タンパク質ほど免疫応答を誘発しない。小分子は、限定されるものではないが、合成有機又は無機化合物を含む。多くの製薬会社がそのような分子の広範なライブラリを保有しており、それをＡｄａｆ-１への結合を評価することにより簡便にスクリーニングすることができる。上述の無細胞アポトーシスアッセイにおいてチトクロムＣと置換しうる候補化合物のアッセイは、有用なスクリーニング法をさらに提供する。Ａｐａｆ-１、Ａｐａｆ-３、ｄＡＴＰ、及び候補薬物を、例えばカスパーゼ３前駆体の存在下で組合わせると、アポトーシスの誘発が、酵素のタンパク分解性切断又はＤＮＡ断片化により測定される。Ｃ．抗Ａｐａｆ-１抗体の調製本発明は、さらに抗Ａｐａｆ-１抗体を提供するものである。Ａｐａｆ-１に対する抗体は以下のようにして調製することができる。抗体の例としては、ポリクローナル、モノクローナル、ヒト化、二重特異性及び異種抱合体抗体が含まれる。１．ポリクローナル抗体Ａｐａｆ-１抗体はポリクローナル抗体を含む。ポリクローナル抗体の調製方法は当業者に知られている。哺乳動物においてポリクローナル抗体は、例えば免疫化剤、所望するのであればアジュバントを、一又は複数回注射することで発生させることができる。典型的には、免疫化剤及び／又はアジュバントを複数回皮下又は腹腔内注射により、哺乳動物に注射する。免疫化剤は、Ａｐａｆ-１ポリペプチド又はその融合タンパク質を含みうる。適切な免疫化剤の例は、Ａｐａｆ -１-ＩｇＧ融合タンパク質又はキメラ分子(Ａｐａｆ-１ＥＤＣ-ＩｇＧ融合タンパク質を含む)である。また、その表面にＡｐａｆ-１を発現する細胞を使用してもよい。免疫化されている哺乳動物において免疫原性であることが知られているタンパク質に免疫化剤を抱合させることが有用である。使用され得るそのような免疫原性タンパク質の例は、限定するものではないが、キーホールリンペットヘモシアニン、血清アルブミン、ウシサイログロブリン及び大豆トリプシンインヒビターが含まれる。また、哺乳動物の免疫反応を増強するために、ミョウバンのような凝集剤を使用してもよい。使用され得るアジュバントの例には、フロイント完全アジュバント及びＭＰＬ-ＴＤＭアジュバント(モノホスホリル脂質Ａ、合成トレハロースジコリノミコラート)が含まれる。免疫化プロトコールは、過度の実験なく当業者により選択されるであろう。哺乳動物から採血し、血清を検定して抗体価を求める。望まれるならば、抗体価が増加又はプラトーするまで哺乳動物に追加免疫を施す。２．モノクローナル抗体あるいは、Ａｐａｆ-１抗体はモノクローナル抗体であってもよい。モノクローナル抗体は、Kohler及びMilstein,上掲に記載されているようなハイブリドーマ法を使用することで調製することができる。ハイブリドーマ法では、マウス、ハムスター又は他の適切な宿主動物を典型的には免疫化剤により免疫化することで、 (上述したようにして)免疫化剤に特異的に結合する抗体を生成するかあるいは生成可能なリンパ球を誘発する。また、リンパ球をインビトロで免疫化することもできる。免疫化剤は、典型的にはＡｐａｆ-１ポリペプチド又はその融合タンパク質を含む。適切な免疫化剤の例は、Ａｐａｆ-１-ＩｇＧ融合タンパク質又はキメラ分子である。Ａｐａｆ-ＩＥＤＣ-ＩｇＧ免疫原の特定の例は、以下の実施例９に記載している。表面でＡｐａｆ-１を発現する細胞もまた使用することができる。一般にヒト由来の細胞が望まれる場合には末梢血リンパ球(「ＰＢＬ」)が使用され、あるいは非ヒト哺乳動物源が望まれている場合は、脾臓細胞又はリンパ節細胞が使用される。次いで、ポリエチレングリコール等の適当な融合剤を用いてリンパ球を不死化株化細胞と融合させ、ハイブリドーマ細胞を形成する(Goding，M onoclonal Antibodies:Principles and Practice ,Academic Press，(1986)pp．5 9-103)。不死化株化細胞は、通常は、形質転換した哺乳動物細胞、特に齧歯動物、ウシ、及びヒト由来の骨髄腫細胞である。通常、ラット及びマウスの骨髄腫細胞が使用される。ハイブリドーマ細胞は、好ましくは、未融合の不死化細胞の生存又は成長を阻害する一又は複数の物質を含有する適切な培地で培養される。例えば、親の形質転換細胞が、酵素のヒポキサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ(HGPRT又はHPRT)を欠いていると、ハイブリドーマの培地は、典型的には、ヒポキサチン、アミノプチリン及びチミジン(「ＨＡＴ培地」)を含み、この物質がＨＧＰＲＴ欠乏性細胞の成長を阻止する。好ましい不死化株化細胞は、効率的に融合し、選択された抗体生成細胞による安定した高レベルの抗体発現を支援し、ＨＡＴ培地のような培地に対して感受性であるものが望ましい。より好ましい不死化株化細胞はマウス骨髄腫株であり、これはカリフォルニア州サンディエゴのSalk Institute Cell Distribution Cen terやバージニア州マナッサスのアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションより入手可能である。ヒトモノクローナル抗体を生成するためのヒト骨髄腫及びマウス-ヒト異種骨髄腫株化細胞も開示れている(Kozbor，J．Immunol.，133:3 001 (1984)、Brodeurほか、Monoclonal Antibody Production Techniques and A pplications，M arcel Dekker，Inc.，New York，(1987)pp．51-63)。ハイブリドーマ細胞を培養する培地を、Ａｐａｆ-１に対するモノクローナル抗体の存在について検定する。好ましくは、ハイブリドーマ細胞によって生成されたモノクローナル抗体の結合特異性は免疫沈降又はラジオイムノアッセイ(ＲＩＡ)や酵素結合免疫測定法(ＥＬＩＳＡ)等のインビトロ結合検定法によって測定する。このような技術及びアッセイは、当該分野において公知である。モノクローナル抗体の結合親和性は、例えばMunson及びPollard，Anal．Biochem.，107 :220（1980）によるスキャッチャード分析法によって測定することができる。所望のハイブリドーマ細胞が同定されたら、クローンを制限希釈工程を経てサブクローニングし、標準的な方法で成長させることができる(Goding，上掲)。この目的のための適当な培地には、例えば、ダルベッコの改変イーグル培地及びＲＰＭＩ-１６４０倍地が含まれる。更に、ハイブリドーマ細胞は哺乳動物においてインビボで腹水として成長させることもできる。サブクローンによって分泌されるモノクローナル抗体は、例えばプロテインＡセファロース法、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィー法、ゲル電気泳動法、透析法又はアフィニティークロマトグラフィー等の従来の免疫グロブリン精製方法によって培地又は腹水液から分離又は精製される。また、モノクローナル抗体は、組換えＤＮＡ法、例えば米国特許第４８１６５６７号に記載された方法により作製することができる。本発明のモノクローナル抗体をコードするＤＮＡは、常套的な方法によって(例えば、マウス抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合可能なオリゴヌクレオチドプローブを使用して)、容易に単離し配列決定することができる。本発明のハイブリドーマ細胞はそのようなＤＮＡの好ましい供給源となる。ひとたび単離されたら、ＤＮＡは発現ベクター内に配することができ、これが宿主細胞、例えばサルＣＯＳ細胞、チャイニーズハムスター卵巣(ＣＨＯ)細胞、あるいは免疫グロブリンタンパク質を生成等しない骨髄腫細胞内にトランスフェクトされ、組換え宿主細胞内でモノクローナル抗体の合成をすることができる。また、ＤＮＡは、例えば相同マウス配列に換えてヒト重鎖及び軽鎖定常ドメインのコード配列を置換することにより(米国特許第４８１６５６７号；Morrisonほか,上掲)、又は免疫グロブリンコード配列に非免疫グロブリンポリペプチドのコード配列の一部又は全部を共有結合することにより修飾することができる。このような非免疫グロブリンポリペプチドは、本発明の抗体の定常ドメインの代わりに置換するか、本発明の抗体の一つの抗原結合部位の可変ドメインの代わりに置換し、キメラ性二価抗体を産生することができる。抗体は一価抗体であってもよい。一価抗体の調製方法は当該分野においてよく知られてる。例えば、一つの方法は免疫グロブリン軽鎖と修飾重鎖の組換え発現を含む。重鎖は一般的に、重鎖の架橋を防止するようにＦｃ領域の任意のポイントで切断される。あるいは、関連したシステイン残基を他のアミノ酸残基で置換するか欠失させて架橋を防止する。一価抗体の調製にはインビトロ法もまた適している。抗体の消化による、その断片、特にＦａｂフラグメントの調製は、当該分野において知られている慣用的技術を使用して達成できる。例えば、消化はパパインの使用により行うことができる。パパイン消化の例は、９４／１２／２２に公開された国際特許第ＷＯ９４／２９３４８号、及び米国特許第４３４２５６６号に記載されている。抗体のパパイン消化は、典型的には、Ｆａｂフラグメントと呼ばれ、各々が単一の抗原結合部位を有する２つの同一の抗原結合フラグメントと、残りのＦｃフラグメントを生成する。ペプシン処理により、２つの抗原結合部位を有し、抗原の架橋が尚も可能なＦ(ａｂ')₂フラグメントが得られる。また、抗体の消化により生産されたＦａｂフラグメントは、軽鎖の定常ドメインと重鎖の第１定常ドメイン(ＣＨ₁)を含む。Ｆａｂ'フラグメントは、抗体のヒンジ領域から一又は複数のシステインを含む重鎖ＣＨ₁ドメインのカルボキシ末端にいくつかの残基が付加されているということで、Ｆａｂフラグメントとは異なっている。Ｆａｂ'-ＳＨとは、定常ドメインのシステイン残基が遊離のチオール基を担持しているＦａｂ'に対するここでも命名である。Ｆ(ａｂ')₂抗体フラグメントは、本来は、それらの間にヒンジシステインを有するＦａｂ'フラグメントの対として生産された。抗体フラグメントの他の化学的結合もまた知られている。３．ヒト化抗体本発明のＡｐａｆ-１抗体は、さらにヒト化抗体又はヒト抗体を含む。非ヒト( 例えばマウス)抗体のヒト化形とは、キメラ免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖あるいはその断片(例えばＦｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、Ｆ(ａｂ')₂あるいは抗体の他の抗原結合サブ配列）であって、非ヒト免疫グロブリンに由来する最小配列を含むものである。ヒト化抗体はレシピエントの相補性決定領域(ＣＤＲ)の残基が、マウス、ラット又はウサギのような所望の特異性、親和性及び能力を有する非ヒト種 (ドナー抗体)のＣＤＲの残基によって置換されたヒト免疫グロブリン(レシピエント抗体)を含む。ある場合には、ヒト免疫グロブリンのＦｖフレームワーク残基は、対応する非ヒト残基によって置換されている。更に、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、移入されたＣＤＲもしくはフレームワーク配列にも見出されない残基を含んでいてもよい。一般に、ヒト化抗体は、全てあるいはほとんど全てのＣＤＲ領域が非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、全てあるいはほとんど全てのＦＲ領域がヒト免疫グロブリンコンセンサス配列のものである、少なくとも１つ、典型的には２つの可変ドメインの実質的に全てを含む。ヒト化抗体は、最適には免疫グロブリン定常領域(Ｆｃ)、典型的にはヒトの免疫グロブリンの定常領域の少なくとも一部を含んでなる(Jonesほか，Nature，321:522-525(1986); Reichmannほか，Nature，332:323-329(1988);及びPresta，Curr．Op Struct．Bi ol.，2:593-596(1992))。非ヒト抗体をヒト化する方法は従来からよく知られている。一般的に、ヒト化抗体には非ヒト由来の一又は複数のアミノ酸残基が導入される。これら非ヒトアミノ酸残基は、しばしば、典型的には「移入」可変ドメインから得られる「移入」残基と称される。ヒト化は基本的に齧歯動物のＣＤＲ又はＣＤＲ配列でヒト抗体の該当する配列を置換することによりウィンター及び共同研究者(Jonesほか， Nature，321:522-525(1986)、Riechmannほか，Nature，332:323-327(1988)、Ver hoeyenほか，Science，239:1534-1536(1988))の方法を使用して行える。よって、このような「ヒト化」抗体は、無傷のヒト可変ドメインより実質的に少ない分が非ヒト種由来の該当する配列で置換されたキメラ抗体(U.S．4,816,567)である。実際には、ヒト化抗体は典型的にはある程度のＣＤＲ残基及び場合によってはいくらかのＦＲ残基が齧歯類抗体の類似する部位からの残基によって置換されるヒト抗体である。抗原性を軽減するには、ヒト化抗体を生成するために使用するヒトの軽及び重可変ドメインの両方の選択が非常に重要である。「ベストフィット法」では、齧歯動物抗体の可変ドメインの配列を既知のヒト可変ドメイン配列ライブラリ全体に対してスクリーニングする。齧歯動物のものと最も近いヒトの配列を次にヒト化抗体のヒトフレームワーク(ＦＲ)として受け入れる(Simsほか，J．Immunol.，151: 2296(1993)；Chothia及びLesk，J．Mol．Biol.，196:901(1987))。他の方法では、軽又は重鎖の特定のサブグループのヒト抗体全てのコンセンサス配列から誘導される特定のフレームワークを使用する。同じフレームワークをいくつかの異なるヒト化抗体に使用できる(Carterほか，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，89:4285 (1992)；Prestaほか，J．Immunol.，151:2623(1993))。更に、抗体は、抗原に対する高親和性や他の好ましい生物学的性質を保持してヒト化することが重要である。この目標を達成するべく、好ましい方法では、親及びヒト化配列の三次元モデルを使用して、親配列及び様々な概念的ヒト化産物の分析工程を経てヒト化抗体を調製する。三次元免疫グロブリンモデルは一般的に入手可能であり、当業者にはよく知られている。選択された候補免疫グロブリン配列の推測三次元立体配座構造を図解し、表示するコンピュータプログラムは購入可能である。これら表示を見ることで、候補免疫グロブリン配列の機能における残基の役割の分析、すなわち候補免疫グログリンの抗原と結合する能力に影響を及ぼす残基の分析を可能とする。このようにして、例えば標的抗原に対する親和性を高めるといった、望ましい抗体特徴が得られるように、ＦＲ残基をコンセンサス及び移入配列から選択し、組み合わせることができる。一般的に、ＣＤＲ残基は、直接かつ最も実質的に抗原結合性に影響を及ぼしている(1994年、3月 3日に公開されたWO 94/04679を参照)。免疫化することで、内在性免疫グロブリンが生成されない状態でもヒト抗体の完全リパートリを生成することができるトランスジェニック動物(例えばマウス) を使用することが可能である。このような生殖系列変異マウスにヒト生殖系列免疫グロブリン遺伝子配列を移すと、抗原による誘発時にはヒト抗体の生成が生じる(例えば、Jakobovitsほか，Proc．Natl．Acad．Sci．USA，90:2551-255(1993) ；Jakobovitsほか，Nature，362:255-258(1993);Bruggermanほか，Year in Immu no.，7:33(1993)を参照)。また、ヒト抗体はファージ表示ライブラリ(Hoogenboo m及びWinter，J．Mol．Biol.，227:381(1991);Marksほか，J．Mol．Biol.，222: 581(1991))において産生することもできる。また、Coleら及びBoernerらの方法も、ヒトモノクローナル抗体の調製に利用することができる(Coleら，Monoclonal Antibo dies and Cancer Therapy，Alan R．Liss．p.77(1985)及びBoernerら，J．Immun ol.，147(1)：86-95(1991))。４．二重特異性抗体二重特異性抗体は、少なくとも２つの異なる抗原に対して結合特異性を有するモノクローナル、好ましくはヒトもしくはヒト化抗体である。本発明の場合において、結合特異性の一方はＡｐａｆ-１に対してであり、他方は任意の他の抗原、好ましくは細胞表面タンパク質又はレセプター又はレセプターサブユニットに対してである。二重特異性抗体を生成する方法は当該技術分野において周知である。伝統的には、二重特異性抗体の組換え生成方法は、二つの重鎖が異なる特異性を持つ二つの免疫グロブリン重鎖／軽鎖対の同時発現に基づく(Millstein及びCuello，Natu re，305:537-539(1983))。免疫グロブリンの重鎖と軽鎖のランダムな混合のため、これらハイブリドーマ(クアドローマ)は１０種の異なる抗体分子の潜在的混合物を生成でき、その内一種のみが正しい二重特異性構造を有する。正しい分子の精製は、アフィニティークロマトグラフィー工程によって通常達成される。同様の手順が１９９３年５月１３日公開の国際特許第ＷＯ９３／０８８２９号、及び Trauneckerほか，EMBO J.，10:3655-3659(1991)に開示されている。別のより好ましいアプローチによれば、所望の結合特異性(抗体-抗原組合せ部位)を有する抗体可変ドメインを免疫グロブリン定常ドメイン配列に融合する。融合は、好ましくは少なくともヒンジ部、ＣＨ２及びＣＨ３領域の一部を含む免疫グロブリン重鎖定常ドメインで起きる。少なくとも一つの融合には軽鎖結合に必要な部位を含む第一の重鎖定常領域(ＣＨ１)が存在することが望ましい。免疫グロブリン重鎖融合をコードするＤＮＡ、望むのであれば免疫グロブリン軽鎖を、別々の発現ベクターに挿入し、適当な宿主生物に同時形質移入する。これは、構築に使用する三つのポリペプチド鎖が不等の比である時に最高の収率が得られる実施態様において、三つのポリペプチドフラグメントの相互比率を調整する際に大なる柔軟性をもたらす。しかし、少なくとも二つのポリペプチド鎖が同比率で発現すると高収率が得られる場合や比率が特に重要ではない場合には、一つの発現ベクターに二つ又は三つ全てのポリペプチド鎖のコード配列を挿入することができる。このアプローチの好適な形態では、二重特異性抗体は、一方のアームの第一結合特異性を有するハイブリッド免疫グロブリン重鎖と、他方のアームのハイブリッド免疫グロブリン重鎖／軽鎖対(第二の結合特異性をもたらす)からなる。このような非対称的構造は、二重特異性分子の半分にのみ免疫グロブリン軽鎖が存在すると容易な方法で分解できるので、所望の二重特異性化合物を不要な免疫グロブリン鎖の組み合わせから分解し易くすることが見出された。このアプローチは１９９４年３月３日公開の国際特許第ＷＯ９４／０４６９０号によって開示されている。二重特異性抗体を生成するためのさらなる詳細については、例えばSureshほか，Me thods in Enzymology，121:210(1986)を参照されたい。５．異種抱合体抗体ヘテロ抱合抗体もまた本発明の範囲に入る。ヘテロ抱合抗体は、２つの共有的に結合した抗体からなる。このような抗体は、例えば、免疫系細胞を不要な細胞に対してターゲティングさせるため(米国特許第4,676,980号)及びＨＩＶ感染の治療(WO 91/00360、WO 92/200373；EP 03089)のために提案された。本抗体は、架橋剤に関連したものを含む合成タンパク化学における既知の方法を使用して、インビトロで調製することができると考えられる。例えば、ジスルフィド交換反応を使用するか又はチオエーテル結合を形成することにより、免疫毒素を作成することができる。この目的に対して好適な試薬の例には、イミノチオレート及びメチル-４-メルカプトブチリミデート、及び例えば米国特許第４６７６９８０号に開示されているものが含まれる。Ｄ．Ａｐａｆ-１抗体の治療的及び非治療的用途本発明の抗Ａｐａｆ-１抗体は治療的な有用性を有している。例えば、アゴニスト抗Ａｐａｆ-１抗体は癌細胞においてアポトーシスを活性化又は刺激するために使用することができる。あるいは、アンタゴニスト抗体を使用して過剰のアポトーシス(例えば、神経変性疾患)をブロックするか、カスパーゼ-３の活性化により生じるＡｐａｆ-１の潜在的な自己免疫／炎症効果をブロックすることができる。さらに、抗Ａｐａｆ-１抗体は抗Ａｐａｆ-１の診断検定法、例えば特異的細胞、組織又は血清における発現を検出する検定法に使用することができる。当該分野において知られている様々な診断検定技術、例えば、競合的結合検定、直接的又は間接的サンドイッチ検定及び不均一又は均一相の何れにおいても実施される免疫沈降検定を使用することができる(Zola，Monoclonal Antibodies:A Manual of T echniques，CRC Press，Inc.，(1987)pp．147-158)。診断検定法に使用される抗体は、検出可能部分で標識することができる。検出可能成分は、直接的に又は間接的に検出可能なシグナルをつくりだすことができなければならない。例えば検出可能成分は、³Ｈ、¹⁴Ｃ、³²Ｐ、³⁵Ｓ又は¹²⁵Ｉ等の放射性同位体、蛍光イソチオシアネート、ローダミン又はルシフェリン等の蛍光又は化学発光化合物、もしくはアルカリホスファターゼ、β-ガラクトシダーゼ又は西洋わさびペルオキシダーゼ等の酵素であってもよい。Hunterほか，Nature，144:945(1962)、Davidほか，Biochemistry，13:1014(1974)、Painほか，J．Immunol．Meth.，40:219(198 1)及びNygrenほか，J．Histochem．and Cytochem.,30:407(1982)等に記載されている方法を含み、検出可能部分に抗体を抱合させるための当該分野において知られている任意の方法を使用することができる。また、抗Ａｐａｆ-１抗体は天然供給源又は組換え細胞培養由来のＡｐａｆ-１のアフィニティー精製にも有用である。この方法においては、Ａｐａｆ-１に対する抗体を、当該分野でよく知られている方法を使用して、セファデックス樹脂や濾過紙のような適当な支持体に固定する。次に、固定された抗体を、精製するＡｐａｆ-１を含む試料と接触させ、ついで、固定された抗体に結合したＡｐａｆ-１以外の試料内の物質を実質的に全て除去する適当な溶媒で支持体を洗浄する。最後に、Ａｐａｆ-１を抗体から離脱させる他の適当な溶媒で支持体を洗浄する。抗Ａｐａｆ-１抗体はまた細胞中のＡｐａｆ-１発現を同定するために有用であり、死滅する運命にある細胞に対する有用なマーカーを提供する。Ｅ．Ａｐａｆ-１又は抗Ａｐａｆ-１抗体を含むキット本発明のさらなる実施態様においては、例えば上述の治療的又は非治療的用途に使用可能なＡｐａｆ-１又は抗Ａｐａｆ-１抗体を含むキット及び製造品が提供される。製造品にはラベルが付された容器が含まれる。適切な容器には、例えばボトル、バイアル、及び試験管が含まれる。容器はガラス又はプラスチックのような種々の物質から形成できる。容器は、上述の治療的又は非治療的用途に有効な活性剤を含む組成物を収容する。組成物中の活性剤は、Ａｐａｆ-１又は抗Ａｐａｆ-１抗体である。容器のラベルには、組成物が特定の治療的又は非治療的用途に使用されることが示され、また上述のもののようなインビボ又はインビトロのいずれかの使用の指示が示されている。本発明のキットは、典型的には、前掲の容器と、商業上及び使用者の観点から望まれる、バッファー、希釈液、フィルター、針、注入器及び使用説明が記されたパッケージ挿入物を含む、材料を含む一又は複数の他の容器を含んでいる。Ｆ．アポトーシスのモデル系アポトーシスのモデル系が、Ａｐａｆ-１、Ａｐａｆ-３、ｄＡＴＰ及びチトクロムＣを組合わせることにより提供される。無細胞系と哺乳動物細胞の双方においての、この薬剤の組合わせは、アポトーシスを誘発するのに十分である。アポトーシスはカスパーゼ３のタンパク分解性切断とＤＮＡの断片化により確認される。このモデル系を使用して、新規な薬剤が、そのアポトーシス変調能についてスクリーニングされる。実施例以下の実施例は例示するためにのみ提供されるものであって、本発明の範囲を決して限定することを意図するものではない。実験手順全体的方法と材料ｄＡＴＰと他のヌクレオチドはファーマシアから；放射性材料はアマシャムから；ＳＤＳ−ＰＡＧＥとゲル濾過クロマトグラフィー用の分子量標準はバイオラドから得た。タンパク質濃度はブラッドフォードアッセイ法により測定した。一般的な分子生物学手法は、上掲のSambrookらに記載されているようにして実施した。実施例１サイトゾルの分画とカスパーゼ-３活性化の再構成アポトーシスプログラムがデオキシＡＴＰ(ｄＡＴＰ)の添加により開始される Liuら(Cell 86:147-157,(1996))に記載されているような無細胞インビトロ系を、これらの研究において使用した。この系は、アポトーシスプロテアーゼの活性化とＤＮＡ断片化を誘発する生化学成分の分画と精製を可能にする。アポトーシスプログラムの開始により、カスパーゼ-３の活性化が生じ、究極的には核内におけるＤＮＡの断片化が生じる。無細胞系は、上掲のLiuらにおいて記載されているようにチトクロムＣ及び活性化ｄＡＴＰと、Ｈｅｌａ細胞の懸濁培養液から調製した１０００００Ｘｇのサイトゾル上清の画分(Ｓ１００)を一緒にした。カスパーゼ-３の活性化を、インビトロ翻訳された³⁵Ｓ標識アフィニティー精製カスパーゼ-３前駆体の切断によりモニターした。タンパク分解断片を、ＳＤＳ-ポリアクリルアミドゲル電気泳動法(ＰＡＧＥ)と続くリン光体イメージングにより可視化した。図１は、２つの他の必要な因子であるＡｐａｆ-１とＡｐａｆ−３からのチトクロムＣ(Ａｐａｆ-２)の分離に対して使用した分画法を示す。最初の工程は、Ｈｅｌａ細胞サイトゾルのＳ１００画分のＳＰ-セファロースクロマトグラフィーで、Ａｐａｆ-１とＡｐａｆ-３(流出分)からチトクロムＣ(結合画分)を分離した。Ａｐａｆ-１とＡｐａｆ-３を分離するには、流出画分をヒドロキシルアパタイトカラム上に負荷した。流出及び結合画分を収集した。アポトーシス開始プログラムを再構成するために、流出(Ａｐａｆ-３)及び結合(Ａｐａｆ-１)画分の一定分量(それぞれ４μｌ)とチトクロムＣの一定分量(１ μｌ中に０．２μｇ)を、単独又は組合わせて、また１ｍＭのｄＡＴＰの存在又は不存在下でインキュベートした。各試料にインビトロ翻訳された³⁵Ｓ標識アフィニティー精製カスパーゼ-３を添加し、最終容量２５μｌのバッファーＡ(２０ｍＭのＨｅｐｅｓ-ＫＯＨ、ｐＨ７．５、１０ｍＭのＫＣｌ、１．５ｍＭのＭｇＣｌ₂、１ｍＭのＥＤＴＡナトリウム、１ｍＭのＥＧＴＡナトリウム、１ｍＭのジチオスレイトール、及び０.１ｍＭのＰＭＳＦ)で試料を３０℃で１時間インキュベートした。インキュベーションの終りに、７μｌの４ＸＳＤＳ試料バッファーを各反応に添加した。３分間沸騰させた後、各試料をついで１５％ＳＤＳＰＡＧＥにかけ、ゲルをニトロセルロースフィルターに移した。フィルターを室温で１６時間の間、リン光体イメージングプレートに露光させ、フジＢＡＳ-１０００リン光体イメージャーで可視化した。図２に示すように、チトクロムＣとｄＡＴＰと共にインキュベーションしたとき (１−６レーン)どの画分も単独ではカスパーゼ-３を活性化するためにコンピテントではなかった。しかし、２つの画分(Ａｐａｆ-１とＡｐａｆ-３)をチトクロムＣとｄＡＴＰの存在下で混合したとき、カスパーゼ-３の活性化が回復した(７レーン)。ｄＡＴＰとチトクロムＣを反応から取除いたときは活性は検出されなかった(５及び８レーン)。実施例２Ａｐａｆ-１の精製さらなる精製のために、実施例１に対して上述したように、チトクロムＣ、ｄＡＴＰ、未精製Ａｐａｆ-３画分、及び基質カスパーゼ-３と共に様々なサイトゾル画分をインキュベートすることにより、Ａｐａｆ-１活性をアッセイした。実施例１に対して上に示したように、Ａｄａｆ-１活性はカスパーゼ-３を切断する。Ａｐａｆ-１の精製は６段階の手順により達成した。ＨｅＬａＳ-１００からのＡｐａｆ-１の精製全ての精製工程を４℃で実施した。ＳＰ-セファロースカラム(ファーマシア) と１回目のヒドロキシアパタイトカラム(バイオラド)以外の全てのクロマトグラフィー工程を、自動高速タンパク質液体クロマトグラフィー(ＦＰＬＣ)ステーション(ファーマシア)を使用して実施した。１００リットルの培養ＨｅＬａ細胞懸濁液からの７００ｍｌ(４．９ｇのタンパク質)のＨｅＬａＳ-１００を、上掲のLiuら,1996に記載されたようにして調製し、バッファーＡで平衡にしたＳＰ-セファロースカラム(総容積２００ｍｌ) に適用した。バッファーＡは実施例１において上述されたようにして調製した。８００ｍｌの流出画分(３６４８ｍｇのタンパク質)を収集し、バッファーＡで平衡にしたヒドロキシアパタイトカラム(総容積５０ｍｌ)に直接負荷した。カラムを、１ＭのＮａＣｌを含む３カラム容量のバッファーＡで洗浄し、続いて２カラム容量のバッファーＡで洗浄した。結合した物質を２００ｍｌの０．３ＭＫＰＯ₄、ｐＨ７．５で溶出させた。タンパク質のピークをカラムから溶出させ(１１５ｍｌ、２８７ｍｇのタンパク質)、バッファーＡに対して透析し、ついでバッファーＡで平衡にした第２のヒドロキシアパタイトカラム(総容積１０ｍｌ)上に負荷した。カラムを２００ｍｌのバッファーＡから２５０ｍＭのＫＰＯ₄、ｐＨ７．５の線形勾配で溶出させた。各１０ｍｌの画分を収集し、実施例１に記載したようにして、Ａｐａｆ-１活性(カスパーゼ-切断)について検定した。活性な画分(５０ｍｌ、１１ｍｇのタンパク質)をプールし、バッファーＡに対して透析し、ついでバッファーＡで平衡にした５ｍｌのヘパリン-セファロースカラム(ファーマシア)上に負荷した。カラムを、１００ｍＭのＮａＣｌを含む２０ｍｌのバッファーＡで洗浄し、１００ｍＭのＮａＣｌを含む５０ｍｌのバッファーＡから４００ｍＭのＮａＣｌを含むバッファーＡの線形勾配で溶出させた。４ｍｌの画分を収集し、Ａｐａｆ-１活性について検定した。活性な画分(８ｍｌ、０．８６ｍｇのタンパク質)をプールし、１００ｍＭのＮａＣｌを含むバッファーＡで平衡にしたスーパーデックス２００１６／６０ゲル濾過カラム上に直接負荷した。カラムを同じバッファーで溶出させ(４回)、４ｍｌの画分を、３０ｍｌの溶出から始めて、収集した。画分をＡｐａｆ-１活性について検定し、活性な画分をプールし(１６ｍｌ、３２μｇのタンパク質)、１００ｍＭのＮａＣｌを含むバッファーＡで平衡にしたモノＱ５／５カラム(ファーマシア)上に直接負荷した。カラムを、１００ｍＭのＮａＣｌを含む２０ｍｌのバッファーＡから３００ｍＭのＮａＣｌを含むバッファーＡの線形勾配で溶出させた。１ｍｌの画分を収集し、Ａｐａｆ-１活性について検定した。精製の最後の工程であるモノＱカラムクロマトグラフィーの結果を図３に示す。Ａｐａｆ-１活性は２５０ｍＭのＮａＣｌでモノＱカラムから溶出した(画分１４−１６)。同じ画分をＳＤＳ-ＰＡＧＥと続いて銀染色にかけ、およそ１３０ｋＤａの単一のポリペプチドバンドがＡｐａｆ-１活性と共溶出することが観察された(図４)。他のタンパク質はピーク画分において銀染色によっては検出されなかった(図４、画分１４−１６)。約１３０ｋＤａでゲル濾過カラムからＡｐａｆ -１活性が溶出したが、これは、Ａｐａｆ-１が溶液中にモノマーとして存在していることを示している(データ示さず)。約１０マイクログラムの純粋なＡｐａｆ -１を１００リットルのＨｅＬａ細胞からのサイトゾルから得た。実施例３Ａｐａｆ-１の配列決定とｃＤＮＡクローニング１３０ｋＤａのＡｐａｆ-１タンパク質をＳＤＳゲルから切除し、トリプシン及びＬｙｓ-Ｃ消化にかけた。得られたペプチドをキャピラリー逆相高圧液体クロマトグラフィー(ＨＰＬＣ)により分離した。Ａｐａｆ-１のタンパク質配列決定実施例２に記載されたようにして製造され図４(４−８ｐｍｏｌ)に示した１３０ｋＤａのＡｐａｆ-１タンパク質バンドをＰＶＤＦ膜上のＳＤＳポリアクリルアミドゲル(ProBlott,アプライド・バイオシステム)から電気溶出させ、切除した。バンドを、以前に記載されているようにして(Henzelら，Proc.Natl.Acad.Sc i．USA 90:5011-5015(1993))、低減させ、イソプロピルアセトアミドでアルキル化し、２０μｌの０．０５Ｍの炭酸水素アンモニウム、２０％のアセトニトリル中で０．２μｇのトリプシン(プロメガ)又はリシン-Ｃ(和光)で３７℃で１７時間、消化させた。消化された溶液をついで０．３２ｘ１５０ｍｍのＣ１８キャピラリーカラム(ＬＣパッキング・インク)上に直接注入した。溶媒Ａは０．１％の水性ＴＦＡであり溶媒Ｂは０．０７％のＴＦＡを含むアセトニトリルであった。ペプチドを、０−８０％の溶媒Ｂの線形勾配で１２０分かけて溶出させた。ｐペプチドのピークを１９５ｎｍで検出し、０．５ｍｌのエッペンドルフ管に手で収集した。単離したＨＰＬＣ画分の各々の一定分量(０．２μｌ)を、標的位置にある予めつくられたマトリックス(５０％アセトン／５０％２-プロパノールに入れた２０ｍｇ／ｍｌのα-シアノ-４-ヒドロキシケイ皮酸プラス５ｍｇ／ｍｌのニトロセルロースの０.５μｌ)のスポットに適用した(Shevchenkoら，Anal.Chem.,68:850 -858,(1996))。イオンを３３７ｎｍの窒素レーザでのマトリックス補助レーザ脱離／イオン化により形成した。線形遅延抽出モードで操作したパーセプティブ・バイオシステムズ・ボイジャー・エリート・フライトタイム質量分析計によりスペクトルを取得した。ついで、選択された前駆体質量に対する断片イオンをポストソース減衰(ＰＳＤ)実験により得た(Kaufmannら，International J．Mass Spe ctro．and Ion Processes，131:355-385,(1994))。低質量のイオン存在量を高めるために、衝突ガス(空気)を、断片イオンスペクトルの低部分(＜２００μ)の獲得の間、衝突細胞に導入した。各ペプチド質量とその随伴断片イオン質量を使用して、ＦＲＡＧＦＩＴプログラムの増強版(Henzelら,上掲)でインハウス配列データベースを検索した。自動タンパク質配列決定を、オンラインのＰＴＨアナライザーを装備したアプライド・バイオシステムズのシークエンサー、プロサイス(Procise)４９４Ａ及び４９４ＣＬモデルで実施した。ピークを、ネルソン・アナリティカル７６０インターフェースを使用してジャスティス・イノベーション・ソフトウェアで積分した。配列の解読をＤＥＣアルファで実施した(Henzelら，1987,J.Chromatogr.4 04:41-52)。１４のペプチドの配列を質量分析及びエドマン分解法により測定した(表１)。タンパク質データベース検索から、データベース中のどのタンパク質もＡｐａｆ -１とは同一ではなかった。表１エドウィン配列決定法とＭＡＬＤＩＭＳ分析法により分析されたペプチド ^a平均同位体質量を示す質量^b 該ペプチドは３２ダルトンが追加となる酸化トリトファンを含んでいた。ペプチド２及び４をコードしている変性オリゴヌクレオチド(表１を参照のこと)を鋳型として使用してＨｅＬａｃＤＮＡライブラリでポリメラーゼ連鎖反応( ＰＣＲ)を開始させた。Ａｐａｆ-１のｃＤＮＡクローニングＡＥｌｏｘＨｅｌａのｃＤＮＡライブラリ(Yokoyamaら，Cell，75:187-197，( 1993))の１μｌ(１０⁸ｐｆｕ)の一定分量を９９℃で１５分間加熱してＤＮＡ内容物を放出させた。ＤＮＡを３００ｐｍｏｌのプライマー-１変性オリゴヌクレオチド(配列番号：３)と２０ｐｍｏｌのＳＰ６プライマー(配列番号：４)で、９４℃で３０秒、６０℃で３０秒；及び７２℃で１分の５サイクルと続いて９４℃ で３０秒、５５℃で３０秒、そして７２℃で１分の２５サイクルのＰＣＲ反応を使用して直接増幅した。ＰＣＲ生成物を、ＰＣＲ精製カラム(キアゲン(Qiagen)) を通過させて精製した。精製した生成物の一部分(１／５０)を更に上述のＰＣＲ反応において３００ｐｍｏｌのプライマー-２(配列番号：５)及びｐｍｏｌのプライマー-３(配列番号：６)を使用して増幅した。２８５ｂｐのＰＣＲ産物が得られ、続いて、ＴＡクローニングキット(インビトロゲン)を使用するＰＣＲIIベクター内にサブクローニングした後に配列決定をした。配列決定により、ペプチド３をまたコードしていた２８５塩基対のＤＮＡフラグメントを得た。ＨｅＬａのｃＤＮＡライブラリをこのＰＣＲフラグメントで探索して、１３６０８８ダルトンの計算分子量を持つ１１９４アミノ酸をコードしているオープンリーディングフレームを持つ２つのオーバーラップするｃＤＮＡを同定した(図５Ａ-５Ｏ)。多重インフレーム終止コドンをｃＤＮＡの５'不飽和領域に同定したが、これは、これらのｃＤＮＡクローンが全長Ａｐａｆ-１をコードしていることを示している(データは示さず)。２８５ｂｐのＰＣＲ生成物をｒｅｄｉプライムランダムプライマー標識キット (アマシャム)を使用してα-³²Ｐ-ｄＣＴＰで標識し、ラピッド・ハイブ・バッファー(アマシャム)中で一晩かけて４２℃で複製フィルターをハイブリダイズすることによりＨｅＬａのλＥｘｌｏｘｃＤＮＡライブラリをスクリーニングした。フィルターを１ｘクエン酸塩溶液(ＳＳＣ)／０.１％ＳＤＳで室温で１５分間２回洗浄し、０．５ｘＳＳＣ／０．１％ＳＤＳにより６５℃で１０分間１回洗浄した。スクリーニングした６ｘ１０⁵のプラークのなかで、４のポジティブなクローンを同定し、１.６ｋｂの部分クローンを特性付けた。１.６ｋｂのインサートを切除し、上述のようにしてα-³²Ｐ-ｄＣＴＰで標識した。Ｈｅｌａ細胞のｃＤＮＡライブラリを、上述の手順を使用してこの１.６ｋｂのｃＤＮＡで再スクリーニングした。ポジティブなクローン(４５)を同定し特性付けした。Ａｐａｆ- １の５'部分を含む最も長いクローン(３ｋｂ)を配列決定した。このプラスミドの４０ｎｇの一定分量を、３ｋｂインサートの３'末端によりＡＰＰＮ(５'ＡＣＡＴＣＡＣＧＡＡＴＣＴＴＴＣＣＣＧＣ)(配列番号：７)及びＡＰＰＣ(５'ＡＡＣＡＣＴＴＣＡＣＴＡＴＣＡＣＴＴＣＣ３')(配列番号：８)と命名された２つのＰＣＲプライマーにより増幅した。６００ｂｐのＰＣＲフラグメントを産生し、上述のようにしてα-³²Ｐ-ｄＣＴＰで標識した。同じフィルターをこのＰＣＲフラグメントで再スクリーニングし、３５のポジティブなクローンを同定し特性付けした。４．５ｋｂのインサートを有する最長のものを配列決定した。このクローンは３ｋｂの５'クローンと５００ｂｐがオーバーラップするＡｐａｆ-１の３ '末端を含んでいた。全長ｃＤＮＡを、５００ｂｐのオーバーラップ領域内に位置するＥｃｏＲＩ部位で２つのクローンをライゲーションすることにより得て、図５Ａ−Ｏ(配列番号：１)に示す。図５Ａ−ＯはまたヒトＡｐａｆ-１(配列番号：１)によりコード化された予想アミノ酸配列(配列番号：２)を示す。これまでに配列決定された１４のペプチドの全てが(下線で示された)ｃＤＮＡのオープンリーディングフレームによりコード化された。質量分析計により測定されたこれらのペプチドの分子量は計算分子量に一致しており、これらのペプチドの翻訳後の修飾がないことを示している。実施例４Ａｐａｆ-１のドメイン構造タンパク質のデータベース(ジェンバンク及びプロサイト)のサーチにより、Ａｐａｆ-１のＣＯＯＨ末端セグメントが１３ＷＤ-４０の反復を含むことが明らかになった。この緩く保存された配列の集合は、ヘテロトリマーＧプロテインのβ -サブユニット(Neerら，Nature，371:297-300，(1994);Wallら,Cell,83:1047-10 58，(1995);Sondekら，Nature，379:369-374，(1996))、ミラー-ダイカー脳回欠損に対するＬＩＳ-１遺伝子(Hattoriら，1994，Nature 370:216-218)、及びＳＲＥＢＰ切断活性化タンパク質(ＳＣＡＰ)(Huaら，Cell，87:415-426，(1996))を含む、多くの調節タンパク質に見出されている。また、タンパク質のデータベース(ジェンバンク)のサーチにより、Ａｐａｆ- １と、線虫においてアポトーシスプログラムに必要とされる２つのタンパク質であるＣｅｄ-３及びＣｅｄ-４(Yuan及びHorvitz,上掲)との間の有意な類似性が明らかになった(図８と９を参照)。Ａｐａｆ-１のＮＨ₂末端の８５のアミノ酸はＣｅｄ-３のＮＨ₂末端のプロドメインと２１％の同一性と５３％の類似性を示す( 図９参照)。Ａｐａｆ-１ｍｐアミノ酸配列とＣｅｄ-３のＮ末端プロドメインを、ＤＮＡＳＴＡＲプログラムのリップマン-パーソン法で整列させた。このドメインには、上述のように、整列されたＣｅｄ-４と２２％の同一性と４８％の類似性を示す３１０アミノ酸の伸展が続く(図９)。Ｃｅｄ-４で保存されたアミノ酸の２つの最長の伸展はＡｐａｆ-１の１４２−１５７及び２２７−２３４位にある(図７、下線)。これらの２つの領域は、ヌクレオチド結合タンパク質に対するウォーカーのＡ及びＢボックスコンセンサス配列にそれぞれ対応する(Walkerら,1982,EMBO J．1:945 -951)。２５０−２５１位に２つのアスパラギン酸残基と２５８位にイソロイシンを含むＣｅｄ-４活性に必要であることが知られている幾つかのアミノ酸(Yuan 及びHorvita,上掲;Chinnaiyanら,上掲)がＡｐａｆ-１において保存される(図９、星印)。実施例５Ａｐａｆ-１の組織分布ノーザンブロット分析複数のヒト成人及び胚性組織からの、レーン当り２μｇのポリ(Ａ)＋ＲＮＡを含むポリ(Ａ)＋ＲＮＡブロットをクローンテックから購入した。ラピッド-ハイブバッファー(アマシャム)中で一晩かけて６５℃で、(５'ＡＣＡＴＣＡＣＧＡＡＴＣＴＴＴＣＣＣＧＣ３'(配列番号：９)と５'ＣＡＡＣＡＣＴＴＣＡＣＴＡＴＣＡＣＴＴＣＣ３')(配列番号：１０)で増幅された)アミノ酸５９０−７９２に対応するランダムに初回刺激された６０７ｂｐのＡｐａｆ-１ＰＣＲフラグメント２ｘ１０⁶ｃｐｍ／ｍｌでブロットをハイブリダイズした。フィルターを、６５ ℃で１５分間１ｘＳＳＣ／０．５％ＳＤＳで、続いて６５℃で２０分間０．５％ＳＳＣ／０．５％ＳＤＳで、２回洗浄した。同じフィルターをまた２．０ｋｂのβ-アクチンｃＤＮＡプローブにより６５ ℃で２時間ハイブリダイズし、ついでフィルターを上述のようにして洗浄した。左のフィルターを−８０℃で８日間増感スクリーンでＸ線フィルムに感光させ、右側の２つのフィルターを−８０℃で４日間増感スクリーンでＸ線フィルムに感光させた。次に、同じフィルターをまたヒトβ-アクチンとハイブリダイズし、 −８０℃で増感スクリーンで２時間(左フィルター)又は３０分(右の２つのフィルター)フィルムに感光させた。ヒト成人又は胎児組織からの試料を示す。図１０は上述の方法でヒト成人及び胎児組織のノーザンブロットにより分析されたＡｐａｆ-１のｍＲＮＡの組織分布を示す。成人脳、心臓、肝臓、脾臓、骨格筋、肺、膵臓、胸腺、小腸、大腸、末梢血白血球、腎臓、精巣、卵巣、及び胚性脳、肝臓、腎臓を含む検査した全ての組織において、約８０００のヌクレオチドの主要ｍＲＮＡを検出したが、これは、Ａｐａｆ-１の一様な発現を示している。発現は成人脾臓及び末梢血白血球及び胚性脳、腎臓及び肺において最も高く、その全てが高いレベルのアポトーシスを有している。実施例６組換えＡｐａｆ-１の生産Ａｐａｆ-１を、ＰＣＤＮＡ３．１(-)ベクター(インビトロゲン)のＮｏｔＩ及びＥｃｏＲＩ部位にクローニングされたＡｐａｆ-１の全コード領域プラス５７７ｂｐの５'非翻訳領域及び約１．５ｋｂの３'非翻訳領域を含む６．０ｋｂのｃＤＮＡフラグメントからインビトロで翻訳した。３'領域を、配列番号：１のヌクレオチド５７２７に位置するＥｃｏＲＩ部位で切り詰めた。ＴＮＴＴ７がカップリングした網状赤血球ライヤート系(プロメガ)を製造者の指示に従って使用した。翻訳生成物をウェスタンブロット法により分析した。レーン１は３０μｌのＡｐａｆ-１インビトロ翻訳生成物を含んでいた。レーン２は３０μｌの翻訳混合対照を含んでおり、そこではベクターだけが同じ翻訳反応において鋳型として使用された。レーン３は実施例１に対して記載されたようにして精製された５μｌのＡｐａｆ-１を含んでいた。電気泳動後に、試料をニトロセルロースフィルターに移し、フィルターを、Ａｐａｆ-１[配列番号：１]のアミノ酸１０−２５４を含む組換え融合タンパク質に対して産生されたＡｐａｆ-１に対する抗血清(１：５０００希釈)で探索した。融合タンパク質(０．５ｍｇ)を使用して、フロイント完全アジュバント中のタンパク質(１：１)の皮下注射によりウサギを免疫化した。フロイント不完全アジュバント中のタンパク質(１：１)を２週間の間隔で２回追加免疫した。ブロットに形成された抗原-抗体複合体を上述のようなＥＣＬ法により可視化した。フィルターをコダックＸ-ＯＭＡＴＸ線フィルムに５秒間感光させた。図１１に示すように、抗Ａｐａｆ-１ポリクローナル抗体は精製タンパク質と反応した(レーン３)。同じ抗体は、ウサギ網状摂家球ライセート系におけるＡｐａｆ-１のｃＤＮＡのインビトロ翻訳により合成されたＡｐａｆ-１にも反応した (レーン１）。インビトロ翻訳されたＡｐａｆ-１は精製Ａｐａｆ-１と同一の位置に遊走したが、これは、ｃＤＮＡが全長Ａｐａｆ-１をコード化したことを確認するものである。実施例７チトクロムＣはＡｐａｆ-１に結合する上に記載したように、Ａｐａｆ-１とＡｐａｆ-３によるカスパーゼ-３の活性化にはチトクロムＣ並びにｄＡＴＰが必要となる。Ａｐａｆ-１がチトクロムＣと直接相互作用をするかどうかを測定するために、結合実験を実施した。部分的に精製したＡｐａｆ-１の１００μｌの一定分量を１ｍＭのｄＡＴＰの不存在又は存在下で単独又は２μｇのチトクロムＣと共に３０℃で２０分間インキュベートした。Ａｐａｆ-１を、実施例２に対して記載されたように、ＳＰセファロースカラム並びにハイドロキシアパタイトカラムを通してＨｅＬａ細胞サイトゾルから部分的に精製した。インキュベーション時間後、試料を抗Ａｐａｆ-１抗血清で免疫沈降させた。抗Ａｐａｆ-１抗血清を、以下のようにして生産した組換えＡｐａｆ-１融合タンパク質でウサギを免疫することにより、産生した。プライマー５'-ＧＣＡＡＡＧＣＴＣＧＡＡＡＴＣＡＴＡＴＧＣＴＴＣＡＡＣＡＴＡＧＡＧ-３'(配列番号：１１)及び５'-ＴＣＧＣＧＧＣＣＧＣＣＴＣＧＡＧＧＧＣＴＣＴＧＧＴＴＧＴＡＡＧ-３'(配列番号：１２)を設計して、１．６ｋｂのプラスミドＡｐａｆ-１ｃＤＮＡオープンリーディングフレームをＰＣＲ増幅した。増幅された８００ｂｐのＡｐａｆ-１のアミノ酸１０−２５４をコードしているフラグメントを、細菌発現ベクターｐＥＴ-１５ｂ(ノバゲン)のＮｄｅＩ／ＸｈｏＩ部位にインフレームでサブクローン化した。発現プラスミドを細菌ＢＬ２１(ＤＥ３)に形質転換した。典型的なＡｐａｆ-１の調製では、１０ｍｌの一晩をかけて培養されたＡｐａｆ-１発現ベクター含有細菌を５００ｍｌのＬＢブロスに添加し、３７℃、２２０ｒｐｍで振とうすることにより３時間培養した。ついで、イソプロピル-１-チオ-Ｂ-Ｄ-ガラクトピラノシド(ＩＰＴＧ)を１ｍＭの最終濃度になるまで添加し、混合物をさらに２時間培養した。細菌ペレットを１０ｍｌのバッファーＢ(６ＭのＧｕＨＣｌ、０．１Ｍのリン酸ナトリウム、０．０１ＭのトリスＨＣｌ、ｐＨ８．０)に再懸濁した。１００００ｇで１５分間遠心分離した後、上清をニッケルアフィニティーカラムに負荷した(６ｍｌ)。カラムを、３０ｍｌのバッファーＢと続く３０ｍｌのバッファーＣ(８Ｍの尿素、０．１Ｍのリン酸ナトリウム、０．０１ＭのトリスＨＣｌ、ｐＨ８．０)で洗浄した。２５０ｍＭのイミダゾールを含むバッファーＣでカラムを溶出させた。約１０ｍｇのＡｐａｆ-１タンパク質が５００ｍｌの培養物から精製された。チトクロムＣのウェスタンブロット分析を上掲のLieらに記載されているようにして実施した。抗Ａｐａｆ-１抗血清を、上述のようにして生産された組換えＡｐａｆ-１融合タンパク質でウサギを免疫することにより産生した。免疫ブロット分析を、増強化学ルミネッセンスウェスタンブロット検出試薬(アマシャム) を使用して西洋わさびペルオキシダーゼ抱合ヤギ抗マウス(チトクロムＣ)又はヤギ抗ウサギ(Ａｐａｆ-１)免疫グロブリンＧで実施した。図１２に示されるように、Ａｐａｆ-１に対する抗血清はＡｐａｆ-１を沈殿させたが、同じ動物からの免疫前血清はそうではなかった。Ａｐａｆ-１に対する抗血清はまたチトクロムＣを沈殿させたが(図１３)、これはチトクロムＣがＡｐａｆ-１と複合体を形成することを示している。免疫前血清はそのような沈殿を生じなかった。Ａｐａｆ-１に対するチトクロムＣの結合はｄＡＴＰの有無には影響されなかった(図１３、レーン３−６)。未精製サイトゾル抽出物においてチトクロムＣがＡｐａｆ-１と相互作用をすることを確認するために、免疫沈降実験を、非分画ＨｅＬａ細胞Ｓ-１００を使用して実施した。図１２のレーン７−８に示されているように、Ｓ-１００画分のＡｐａｆ-１は抗Ａｐａｆ-１抗血清により沈殿させられた。均質化の間サイトゾルに放出されるチトクロムＣ(Liuら,1996,上掲)がＡｐａｆ-１と共沈降した( 図１２、レーン８)。免疫前血清はタンパク質を沈降させなかった(レーン７)。実施例８２９３細胞におけるＡｐａｆ-１の発現Ａｐａｆ-１の全コード領域プラス５７７ｂｐの５'非翻訳領域及び約１．５ｋｂの３'非翻訳領域を含む５．７ｋｂのｃＤＮＡ(実施例６に対して上述したように、ヌクレオチド５７２７でＥｃｏＲＩ部位で切り詰めたもの)をｐｃＤＮＡ３. １(-) ベクター(インビトロゲン)のＮｏｔＩ及びＥｃｏＲＩ部位にサブクローニングし、プラスミド(ｐＡｐａｆ-１)をキアゲンメガ(Qiagen Mega)プラスミドキットを使用して調製した。ヒト胚性腎臓２９３細胞を、１０％のウシ胎児血清が補填された培地Ａ(１００Ｕ／ｍｌのペニシリンと１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシンサルフェートを含むダルベコの変性イーグル培地)に、１００ｍｍ皿当り１ｘ１０⁶細胞にてプレーティングし、６−７％ＣＯ₂の雰囲気中で３７℃で単層で成長させた。２４時間のインキュベーション後、細胞を、１５μｇのベクターだけ；１０μｇのｐＡｐａｆ-１プラス５μｇのベクター；１０μｇのベクタープラス５μｇのｐＣＰＰ３２(ハムスターカスパーゼ-３)(Wangら，1996，EMBO J． 15:1012-1020):又は１０μｇのｐＡｐａｆ-１プラス５μｇのｐＣＰＰ３２で、( Huaら，Cell 87:415-426(1996))に記載されたようなＭＢＳトランスフェクションキット(ストラタジーン)を使用してトランスフェクトした。３６時間のさらなるインキュベーション後、細胞を収集し、サイトゾルＳ-１００画分を実施例２に対して上述したようにして調製した。対照(レーン１)、ｐＡｐａｆ-１トランスフェクト(レーン２、４)及びｐＣＰＰ３２トランスフェクト(レーン３、４)細胞からのサイトゾルの一定分量(３０ μｇ)を８％のＳＤＳ-ＰＡＧＥ(図１４の上のパネル)又は１５％のＳＤＳ-ＰＡＧＥ(下のパネル)で分析し、ニトロセルロースフィルター上にブロットした。フィルターを、ウサギ抗Ａｐａｆ-１抗血清(１：２０００、上のパネル)又はウサギ抗ハムスターカスパーゼ-３(１：２０００、下のパネル)の何れかで探索した。抗原−抗体複合体を、上述のような西洋わさびペルオキシダーゼ抱合抗体及び増強化学ルミネッセンスウェスタンブロット試薬(アマシャム)で可視化させた。フィルムを３０秒(上のパネル)又は４０秒(下のパネル)の間露光させた。レーン５は実施例２に対して記載されたモノＱカラム工程まで精製された３μｌのＡｐａｆ-１タンパク質を含んでいた。結果は図１４に示され、ｐＡｐａｆ-１とｐカスパーゼ-３の哺乳動物細胞における発現を示している。トランスフェクトされた細胞のサイトゾルに対して、実施例１に対して上述した無細胞アッセイを使用して、そのアポトーシスを誘導する能力を更に分析した。提示されたプラスミドでトランスフェクトされた２９３細胞から調製されたサイトゾル４０μｇの一定分量をバッファーＡで、１ｍＭのｄＡＴＰ；０．２μｇのチトクロムＣ；又は１ｍＭのｄＡＴＰプラス０．２μｇのチトクロムＣの存在下で、３０℃で３０分間、最終容量が２０μｌに調整されたバッファーＡでインキュベートした。試料を、１５％ＳＤＳ-ＰＡＧＥにかけ、次いでウサギ抗カスパーゼ３抗体(１：２０００)を使用してウェスタンブロット分析を実施した。抗原- 抗体複合体を上述のＥＣＬ法により可視化した。図１５に示されるように、哺乳動物細胞において発現された組換えＡｐａｆ- １はｄＡＴＰとチトクロムＣとの組合わせで効果的であった。この混合物はカスパーゼ３前駆物質のその活性な切断産物への切断を誘発した。実施例９選択的にスプライシングされた転写物：Ａｐａｆ-１Ｌ非一致ペプチドフラグメント：上述のＡｐａｆ-１遺伝子の配列と同一性を確認するために、遺伝子から発現されたタンパク質を、実施例３に記載されたようにして、精製し、消化させ、キャピラリー逆相ＨＰＬＣにより分離し、マトリックス補助レーザー脱着／イオン化及び質量分析によりペプチドフラグメントを分析した。発現されたタンパク質のフラグメントに対して得られたスペクトルを、実施例３の精製タンパク質から得られたスペクトルと比較した。発現されたタンパク質からのペプチド質量の各々は、１つのフラグメントを除いて、精製タンパク質からのペプチド質量と一致しているようであった。実施例３と図５Ａ−ＯのＡｐａｆ-１ｃＤＮＡの５'領域との、Ａｐａｆ-１(Ａｐ２)の５'領域をコードしている１．４ｋｂの部分クローンの核酸配列の比較により、Ａｐ２が、クローン化Ａｐａｆ-１には見られなかったｃｅｄ-４の相同領域の最初の１１のアミノ酸をコードしている３３のヌクレオチドを含んでいたことが明らかにされた。選択的にスプライシングされた転写物：選択的にスプライシングされた転写物の存在を確認するために、Ａｐａｆ-１の選択的にスプライシングされた領域を増幅するために設計された特定のプライマーを使用してＲＴ-ＰＣＲを実施した。ラピッドｍＲＮＡ精製キット(ファーマシア)を使用してＨｅＬａポリ(Ａ)＋ｍＲＮＡを精製した。実施例３に対して上述された３ｋｂのクローンの３'末端から設計した、特定のプライマーＡｐｐＣ５'-ＡＡＣＡＣＴＴＣＡＣＴＡＴＣＡＣＴＴＣＣ-３'[配列番号：８]が、第１ストランドｃＤＮＡ合成キット(ファーマシア)を使用して、第１ストランドｃＤＮＡに運ばれた。この第１ストランドのｃＤＮＡの４００ｎｇの一定分量を、２つのＰＣＲプライマー：更なる３３のヌクレオチドの５'側と３'側のそれぞれから設計されたＡｐｎ５'ＴＡＡＴＧＡＴＴＣＣＴＡＣＧＴＡＴＣＡＴＴＣＴＡＣＡＡＴＧＣ-３'[配列番号：１３]及びＡｐｓ１０５'-ＧＡＡＴＧＡＴＣＴＣＴＡＡＣＡＧＣＴＴＣ-３'[配列番号：１４] により増幅した。３１６ｂｐと２８３ｂｐの双方のＰＣＲ生成物(図１７に示す)をＴＡクローニングキット(インビトロゲン)を使用してＰＣＲＩＩベクター内にクローン化し配列決定した。Ａｐａｆ-１Ｌの得られた核酸配列を以下に示す[配列番号：１５] 。その計算上見積もったアミノ酸配列もまた示す[配列番号：１６]。Ａｐａｆ-１とＡｐａｆ-１Ｌの間の差：Ａｐａｆ-１Ｌのアミノ酸配列[配列番号：１６]は、Ａｐａｆ-１Ｌのアミノ酸配列において下線で示されたアミノ酸残基１０８の後に挿入された更に１１のアミノ酸(ＧＫＤＳＶＳＧＩＴＳＹ)を有していることで、Ａｐａｆ-１アミノ酸配列[配列番号：２]と異なる(図１７を参照)。下線が付された更に３３の核酸(ＴＧＧＴＡＡＡＧＡＴＴＣＡＧＴＴＡＧＴＧＧＡＡＴＡＡＣＴＴＣＧＴＡ)を持つＡｐａｆ-１Ｌの核酸配列[配列番号：１５]を図１６Ａ−１６Ｈに示す。２つのＰＣＲ生成物が、図１８に示されるように、ＲＴ-ＰＣＲ反応から観察され、これは、この領域にわたって選択的にスプライシングされた転写物の存在を示している。２つのＰＣＲ生成物の直接配列解析により、より長い配列(Ａｐａｆ-１Ｌ)がＡｐ２の配列をコード化し、挿入された１１のアミノ酸を有していることが確認された。より短い生成物はＡｐａｆ-１の同一配列を有していた。更に１１のアミノ酸がＣｅｄ-３相同領域とＣｅｄ-４相同領域の接合部に位置しているので、Ｃｅｄ-３及びＣｅｄ-４とのＡｐａｆ-１Ｌの全体の相同性はＡｐａｆ-１のものと同じままである。Ａｐａｆ-１Ｌのアミノ酸８２−１００の計算分子量は、実施例３に対して上述した精製Ａｐａｆ-１のＫ４３ペプチドに対して測定された質量とまた相関しており、Ａｐａｆ-１ＬがＨｅＬａ細胞から精製されたＡｐａｆ-１内に存在していることを示している。Ａｐａｆ-１Ｌの機能性発現：組換えＡｐａｆ-１Ｌの機能を試験するために、ハムスターカスパーゼ-３をコードしているｃＤＮＡインサートを含むプラスミドを、Ａｐａｆ-１Ｌ(Ａｐａｆ -１Ｌの全コード領域プラス５７７塩基対の５'非翻訳領域と１．５ｋｂの３'非翻訳領域)をコードしているｃＤＮＡインサートを含むプラスミドと共にヒト胚性腎臓２９３細胞内に同時形質転換し、もしくはＡｐａｆ-１の同じ領域をｐｃＤＮＡ３．１内に挿入した。形質転換方法は実施例８に対して上述したものとした。形質転換した細胞について、実施例３に対して記載したようにして、カスパーゼ-３活性化能を検査した。図１９Ａ及び１９Ｂに示されるように、Ａｐａｆ-１Ｌは、カスパーゼ-３のより高い発現がＡｐａｆ-１Ｌと共に同時形質転換されたときに観察されたので、Ａｐａｆ-１と同様に機能した。また、Ａｐａｆ-１Ｌ過剰発現細胞からの細胞抽出物はより高いカスパーゼ活性化能を示した。本明細書で引用した全ての特許及び参考文献の全体を、出典明示によりここに取り込む。

【手続補正書】【提出日】平成１１年１２月１０日（１９９９．１２．１０）【補正内容】請求の範囲１．配列番号：２の配列又は配列番号：１６の配列と、少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性を有する単離Ａｐａｆ-１タンパク質。２．配列番号：２の配列又は配列番号：１６の配列と、少なくとも約９０％のアミノ酸配列同一性を有する請求項１に記載のＡｐａｆ-１タンパク質。３．配列番号：２の配列又は配列番号：１６の配列と、少なくとも約９５％のアミノ酸配列同一性を有する請求項２に記載のＡｐａｆ-１タンパク質。４．配列番号：２又は配列番号：１６のアミノ酸残基を含んでなる単離Ａｐａｆ-１タンパク質。５．異種性アミノ酸配列に融合した請求項１に記載のＡｐａｆ-１タンパク質を含んでなるキメラ分子。６．前記異種性アミノ酸配列がエピトープタグ配列である請求項５に記載のキメラ分子。７．前記異種性アミノ酸配列が免疫グロブリン配列である請求項５に記載のキメラ分子。８．前記免疫グロブリン配列がＩｇＧである請求項７に記載のキメラ分子。９．請求項１に記載のＡｐａｆ-１タンパク質に結合する抗体。１０．前記抗体がモノクローナル抗体である請求項９に記載の抗体。１１．アゴニスト抗体である請求項９に記載の抗体。１２．請求項１に記載のＡｐａｆ-１をコードする核酸配列を含んでなる単離核酸。１３．前記核酸配列が、配列番号：２又は配列番号：１６のアミノ酸配列のアミノ酸配列をコードしている請求項１２に記載の核酸。１４．請求項１２に記載の核酸を含んでなるベクター。１５．ベクターで形質転換した宿主細胞により認識される対照配列に作用可能に結合した請求項１４に記載のベクター。１６．請求項１４に記載のベクターを含んでなる宿主細胞。１７．請求項１６に記載の宿主細胞を培養して、宿主細胞中にＡｐａｆ-１タンパク質を発現させることを含んでなるＡｐａｆ-１タンパク質の生成方法。１８．Ａｐａｆ-１タンパク質をコードする挿入核酸配列を発現する細胞を含む非ヒト・トランスジェニック動物。１９．マウス又はラットである請求項１８に記載の動物。２０．Ａｐａｆ-１タンパク質をコードする変更遺伝子を有する細胞を含む、非ヒト、ノックアウト動物。２１．マウス又はラットである請求項２０に記載の動物。２２．容器と該容器に入れられる組成物を含んでなり、組成物がＡｐａｆ-１タンパク質又は抗Ａｐａｆ-１抗体を含む製造品。２３．インビボ又はエキソビボにおいてＡｐａｆ-１タンパク質又は抗Ａｐａｆ-１抗体を使用するための使用説明書をさらに含んでなる請求項２２に記載の製造品。２４．アポトーシスを変調する薬剤に対する化合物をスクリーニングする方法において、Ａｐａｆ-１タンパク質に結合するチトクロムＣを競合的に置換する候補化合物の置換能を分析し；候補化合物による前記Ａｐａｆ-１タンパク質に結合するチトクロムＣの競合的置換を、候補化合物のアポトーシス変調能と相関付ける；ことを含んでなる方法。２５．アポトーシスを変調する化合物を同定する方法において、Ａｐａｆ-１タンパク質、Ａｄａｆ-３タンパク質、ｄＡＴＰ、及びチトクロムＣを含む混合物中で候補化合物をインキュベートし；インキュベート混合物にカスパーゼ前駆体を添加し；候補化合物の不在下での切断と比較した候補化合物の存在下でのカスパーゼ前駆体の切断変化を、候補化合物のアポトーシス変調能と相関付ける；ことを含んでなる方法。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｐ 35/00 Ａ６１Ｐ 37/00 37/00 43/00 １０５ 43/00 １０５Ｃ０７Ｋ 14/47 Ｃ０７Ｋ 14/47 16/18 16/18 19/00 19/00 Ｃ１２Ｎ 1/15 Ｃ１２Ｎ 1/15 1/19 1/19 1/21 1/21 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 5/10 21/08 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｇ０１Ｎ 33/15 Ｚ 21/08 33/50 ＺＧ０１Ｎ 33/15 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ 33/50 5/00 Ａ (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＧＷ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ (72)発明者ヘンゼル，ウィリアムジェー. アメリカ合衆国カリフォルニア州 94403，サンマテオ，サウスウッドアヴェニュー 3724番地 (72)発明者ワン，ジアオドンアメリカ合衆国テキサス州 75287，ダラス，ストーンホローウェイ 4063番地

Claims

【特許請求の範囲】１．配列番号：２の配列又は配列番号：１６の配列と、少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性を有する単離Ａｐａｆ-１タンパク質。２．配列番号：２の配列又は配列番号：１６の配列と、少なくとも約９０％のアミノ酸配列同一性を有する請求項１に記載のＡｐａｆ-１タンパク質。３．配列番号：２の配列又は配列番号：１６の配列と、少なくとも約９５％のアミノ酸配列同一性を有する請求項２に記載のＡｐａｆ-１タンパク質。４．配列番号：２又は配列番号：１６のアミノ酸残基を含んでなる単離Ａｐａｆ-１タンパク質。５．異種性アミノ酸配列に融合した請求項１に記載のＡｐａｆ-１タンパク質を含んでなるキメラ分子。６．前記異種性アミノ酸配列がエピトープタグ配列である請求項５に記載のキメラ分子。７．前記異種性アミノ酸配列が免疫グロブリン配列である請求項５に記載のキメラ分子。８．前記免疫グロブリン配列がＩｇＧである請求項７に記載のキメラ分子。９．請求項１に記載のＡｐａｆ-１タンパク質に結合する抗体。１０．前記抗体がモノクローナル抗体である請求項９に記載の抗体。１１．アゴニスト抗体である請求項９に記載の抗体。１２．請求項１に記載のＡｐａｆ-１をコードする核酸配列を含んでなる単離核酸。１３．配列番号：１又は配列番号：１５の核酸配列を含んでなる請求項１２に記載の単離核酸。１４．前記核酸配列が、配列番号：２又は配列番号：１６のアミノ酸配列のアミノ酸配列をコードしている請求項１２に記載の核酸。１５．配列番号：１又は配列番号：１５の核酸配列に高厳密性条件下でハイブリダイズする核酸配列を含んでなる単離核酸。１６．請求項１２に記載の核酸を含んでなるベクター。１７．ベクターで形質転換した宿主細胞により認識される対照配列に作用可能に結合した請求項１６に記載のベクター。１８．請求項１６に記載のベクターを含んでなる宿主細胞。１９．請求項１８に記載の宿主細胞を培養して、宿主細胞中にＡｐａｆ-１タンパク質を発現させることを含んでなるＡｐａｆ-１タンパク質の生成方法。２０．Ａｐａｆ-１タンパク質をコードする挿入核酸配列を発現する細胞を含む非ヒト・トランスジェニック動物。２１．マウス又はラットである請求項２０に記載の動物。２２．Ａｐａｆ-１タンパク質をコードする変更遺伝子を有する細胞を含む、非ヒト、ノックアウト動物。２３．マウス又はラットである請求項２２に記載の動物。２４．容器と該容器に入れられる組成物を含んでなり、組成物がＡｐａｆ-１タンパク質又は抗Ａｐａｆ-１抗体を含む製造品。２５．インビボ又はエキソビボにおいてＡｐａｆ-１タンパク質又は抗Ａｐａｆ-１抗体を使用するための使用説明書をさらに含んでなる請求項２４に記載の製造品。２６．アポトーシスを変調する薬剤に対する化合物をスクリーニングする方法において、Ａｐａｆ-１タンパク質に結合するチトクロムＣを競合的に置換する候補化合物の置換能を分析し；候補化合物による前記Ａｐａｆ-１タンパク質に結合するチトクロムＣの競合的置換を、候補化合物のアポトーシス変調能と相関付ける；ことを含んでなる方法。２７．アポトーシスを変調する化合物を同定する方法において、Ａｐａｆ-１タンパク質、Ａｄａｆ-３タンパク質、ｄＡＴＰ、及びチトクロムＣを含む混合物中で候補化合物をインキュベートし；インキュベート混合物にカスパーゼ前駆体を添加し；候補化合物の不在下での切断と比較した候補化合物の存在下でのカスパーゼ前駆体の切断変化を、候補化合物のアポトーシス変調能と相関付ける；ことを含んでなる方法。