JP2001259686A - 水処理方法、水処理剤及び好気的脱窒細菌 - Google Patents
水処理方法、水処理剤及び好気的脱窒細菌Info
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- JP2001259686A JP2001259686A JP2000078083A JP2000078083A JP2001259686A JP 2001259686 A JP2001259686 A JP 2001259686A JP 2000078083 A JP2000078083 A JP 2000078083A JP 2000078083 A JP2000078083 A JP 2000078083A JP 2001259686 A JP2001259686 A JP 2001259686A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】廃水処理で取らざるを得ない好気的条件でも、
Ｎ2 Ｏを発生せず、高い脱窒性能を有する脱窒システム
を用いることにより、地球環境を守る水処理方法を提供
する。 【解決手段】窒素化合物を含有する水１３を処理するに
あたり、水１３と、シュードモナス・スタッツェリ−Ｔ
Ｒ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラルストニア・ピ
ックティ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少なく
とも一種の脱窒細菌とを混合し、前記窒素化合物を分解
する。
Ｎ2 Ｏを発生せず、高い脱窒性能を有する脱窒システム
を用いることにより、地球環境を守る水処理方法を提供
する。 【解決手段】窒素化合物を含有する水１３を処理するに
あたり、水１３と、シュードモナス・スタッツェリ−Ｔ
Ｒ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラルストニア・ピ
ックティ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少なく
とも一種の脱窒細菌とを混合し、前記窒素化合物を分解
する。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は、水処理方法、水処
理剤及び脱窒細菌に関する。
理剤及び脱窒細菌に関する。
【０００２】現在、強力な温室効果を持つ、亜酸化窒素
ガス（Ｎ2 Ｏ）の大気中濃度が急上昇している。この亜
酸化窒素ガスの主要発生源の一つは、排水処理場である
と考えられている。
ガス（Ｎ2 Ｏ）の大気中濃度が急上昇している。この亜
酸化窒素ガスの主要発生源の一つは、排水処理場である
と考えられている。
【０００３】また、近年、河川・湖沼・沿岸海洋等の汚
染、富栄養化の原因となる排水中の窒素に関心が払われ
るようになり、排水の窒素濃度基準を条例で規制する自
治体が出始めている。
染、富栄養化の原因となる排水中の窒素に関心が払われ
るようになり、排水の窒素濃度基準を条例で規制する自
治体が出始めている。
【０００４】水に溶存する窒素を除去する最も有効な手
段は、生物的脱窒である。脱窒により、硝酸体及びアン
モニア体窒素は、窒素ガス（Ｎ2 ）や亜酸化窒素ガスに
変換され、大気中に放出される。
段は、生物的脱窒である。脱窒により、硝酸体及びアン
モニア体窒素は、窒素ガス（Ｎ2 ）や亜酸化窒素ガスに
変換され、大気中に放出される。
【０００５】しかし、Ｎ2 Ｏ発生が問題にされないま
ま、このような窒素除去法が世界的に普及することは、
２１世紀の地球環境にとって大問題である。
ま、このような窒素除去法が世界的に普及することは、
２１世紀の地球環境にとって大問題である。
【０００６】廃水処理では、処理水に激しく通気（曝
気）するだけの処理を行っている。現在でもそのような
処理場が多いが、曝気処理のみでは、処理水中のＢＯＤ
やＣＯＤで現される有機物は減少するものの、窒素やリ
ンが除けないという問題点がある。
気）するだけの処理を行っている。現在でもそのような
処理場が多いが、曝気処理のみでは、処理水中のＢＯＤ
やＣＯＤで現される有機物は減少するものの、窒素やリ
ンが除けないという問題点がある。
【０００７】この問題を解決するため、最新鋭の設備で
は、窒素の除去に間歇曝気、リンの除去に凝集剤添加に
よる不溶性リン酸塩形成、という方法が採られている。
間歇曝気法は、非通気時に脱窒菌を働かせて窒素除去す
る方法である。
は、窒素の除去に間歇曝気、リンの除去に凝集剤添加に
よる不溶性リン酸塩形成、という方法が採られている。
間歇曝気法は、非通気時に脱窒菌を働かせて窒素除去す
る方法である。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】しかし、本発明者が検
討したところ、間歇曝気法では、溶存酸素除去が不十分
な場合、Ｎ2 Ｏを発生させたり、脱窒活性が低下するこ
とがわかった。
討したところ、間歇曝気法では、溶存酸素除去が不十分
な場合、Ｎ2 Ｏを発生させたり、脱窒活性が低下するこ
とがわかった。
【０００９】地球環境にとっては、脱窒産物は、Ｎ2 が
望ましく、Ｎ2 Ｏが放出されてはならない。また、上記
の窒素濃度規制により、排水の脱窒処理が世界的規模で
急速に拡大することが予想されるが、脱窒産物（Ｎ2 か
Ｎ2 Ｏか）に対する配慮とともに、いかに効率的に脱窒
するかが重要である。
望ましく、Ｎ2 Ｏが放出されてはならない。また、上記
の窒素濃度規制により、排水の脱窒処理が世界的規模で
急速に拡大することが予想されるが、脱窒産物（Ｎ2 か
Ｎ2 Ｏか）に対する配慮とともに、いかに効率的に脱窒
するかが重要である。
【００１０】本発明は、一般的な廃水処理で取らざるを
得ない好気的条件でも、Ｎ2 Ｏを発生せず、高い脱窒性
能を有する脱窒システムを用いることにより、地球環境
を守る水処理方法を提供することを課題とする。
得ない好気的条件でも、Ｎ2 Ｏを発生せず、高い脱窒性
能を有する脱窒システムを用いることにより、地球環境
を守る水処理方法を提供することを課題とする。
【００１１】
【課題を解決するための手段】本発明は、窒素化合物を
含有する水を処理するにあたり、前記水と、シュードモ
ナス・スタッツェリ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｕ
ｔｚｅｒｉ）−ＴＲ２ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラ
ルストニア・ピックティ（Ｒａｌｓｔｏｎｉａ ｐｉｃ
ｋｔｔｉｉ）−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少
なくとも一種の脱窒細菌とを混合し、前記窒素化合物を
分解することを特徴とする、水処理方法に係るものであ
る。
含有する水を処理するにあたり、前記水と、シュードモ
ナス・スタッツェリ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｕ
ｔｚｅｒｉ）−ＴＲ２ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラ
ルストニア・ピックティ（Ｒａｌｓｔｏｎｉａ ｐｉｃ
ｋｔｔｉｉ）−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少
なくとも一種の脱窒細菌とを混合し、前記窒素化合物を
分解することを特徴とする、水処理方法に係るものであ
る。
【００１２】また、本発明は、窒素化合物を含有する水
を処理するにあたり、前記水と、活性汚泥と、フザリウ
ム・オキシスポラム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏ
ｒｕｍ）−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４と
を混合し、前記窒素化合物を分解することを特徴とす
る、水処理方法に係るものである。
を処理するにあたり、前記水と、活性汚泥と、フザリウ
ム・オキシスポラム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏ
ｒｕｍ）−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４と
を混合し、前記窒素化合物を分解することを特徴とす
る、水処理方法に係るものである。
【００１３】さらに、本発明は、窒素化合物を含有する
水を処理するにあたり、前記水と、シュードモナス・ス
タッツェリ−ＺｏＢｅｌｌと、フザリウム・オキシスポ
ラム−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４とを混
合し、前記窒素化合物を分解することを特徴とする、水
処理方法に係るものである。
水を処理するにあたり、前記水と、シュードモナス・ス
タッツェリ−ＺｏＢｅｌｌと、フザリウム・オキシスポ
ラム−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４とを混
合し、前記窒素化合物を分解することを特徴とする、水
処理方法に係るものである。
【００１４】本発明者は、効率的に水中の窒素化合物を
分解することができる脱窒システムを得るため、種々の
水処理方法を検討した。
分解することができる脱窒システムを得るため、種々の
水処理方法を検討した。
【００１５】様々な有機物で汚染された廃水を清浄化す
るためには、曝気（好気的）処理が必要である。
るためには、曝気（好気的）処理が必要である。
【００１６】しかし、脱窒菌による脱窒は、一般的に非
好気（嫌気）的条件を好み、有機物除去の条件とは相容
れない。
好気（嫌気）的条件を好み、有機物除去の条件とは相容
れない。
【００１７】本発明者が検討したところ、酸素除去が不
十分なまま、脱窒菌を働かせると、Ｎ2 Ｏを発生させる
場合が多く、ここに、有機物と窒素の両方を同時に取り
除く手法の困難性があることがわかった。
十分なまま、脱窒菌を働かせると、Ｎ2 Ｏを発生させる
場合が多く、ここに、有機物と窒素の両方を同時に取り
除く手法の困難性があることがわかった。
【００１８】かかる知見の下、本発明者は、Ｎ2 Ｏ抑止
型脱窒システムとしての水処理を詳細に検討した。
型脱窒システムとしての水処理を詳細に検討した。
【００１９】その結果、本発明者は、かかる脱窒システ
ムに理想的な脱窒菌を自然界より単離し、本発明に至っ
た。なお、本発明では、脱窒菌とは、脱窒細菌及び脱窒
真菌（酵母は真菌に含める）のいずれをも示す用語とし
て用いる。
ムに理想的な脱窒菌を自然界より単離し、本発明に至っ
た。なお、本発明では、脱窒菌とは、脱窒細菌及び脱窒
真菌（酵母は真菌に含める）のいずれをも示す用語とし
て用いる。
【００２０】また、本発明者は、かかる好気的脱窒菌を
利用することで、極めて効率的で安全に窒素化合物を分
解できることを突き止め、本発明を完成させた。
利用することで、極めて効率的で安全に窒素化合物を分
解できることを突き止め、本発明を完成させた。
【００２１】本発明は、シュードモナス・スタッツェリ
−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラルストニア
・ピックティ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少
なくとも一種の脱窒細菌の、優れた脱窒性能に基づくも
のである。
−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラルストニア
・ピックティ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少
なくとも一種の脱窒細菌の、優れた脱窒性能に基づくも
のである。
【００２２】本発明のこれらの脱窒細菌は、一般的な廃
水処理で取られる好気的条件でも、Ｎ2 Ｏの発生を抑制
し、高い脱窒性能を有する。
水処理で取られる好気的条件でも、Ｎ2 Ｏの発生を抑制
し、高い脱窒性能を有する。
【００２３】また、本発明は、フザリウム・オキシスポ
ラム−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４が、活
性汚泥やシュードモナス・スタッツェリ−ＺｏＢｅｌｌ
と混合した場合、優れた脱窒性能を示すことを見出した
ことに基づくものである。
ラム−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４が、活
性汚泥やシュードモナス・スタッツェリ−ＺｏＢｅｌｌ
と混合した場合、優れた脱窒性能を示すことを見出した
ことに基づくものである。
【００２４】フザリウム・オキシスポラム−ＭＴ−８１
１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４は、活性汚泥やシュード
モナス・スタッツェリ−ＺｏＢｅｌｌと混合した場合、
活性汚泥単独の場合に比べ、Ｎ2 Ｏの発生を抑制しなが
ら、効率的に窒素化合物を分解することができる。
１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４は、活性汚泥やシュード
モナス・スタッツェリ−ＺｏＢｅｌｌと混合した場合、
活性汚泥単独の場合に比べ、Ｎ2 Ｏの発生を抑制しなが
ら、効率的に窒素化合物を分解することができる。
【００２５】本発明の水処理方法では、かかる好気的脱
窒菌を用いることにより、好気的条件下に、Ｎ2 Ｏの発
生を抑制し、環境に与える負荷を抑えながら、効率的に
水中の窒素化合物を分解することができる。
窒菌を用いることにより、好気的条件下に、Ｎ2 Ｏの発
生を抑制し、環境に与える負荷を抑えながら、効率的に
水中の窒素化合物を分解することができる。
【００２６】
【発明の実施の形態】本発明を、実施の形態に基づい
て、より一層詳細に説明する。本発明の脱窒細菌であ
る、シュードモナス・スタッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ
Ｐ−１７７１３及びラルストニア・ピックティ−Ｋ５０
ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２は、自然界から単離するこ
とができる。
て、より一層詳細に説明する。本発明の脱窒細菌であ
る、シュードモナス・スタッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ
Ｐ−１７７１３及びラルストニア・ピックティ−Ｋ５０
ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２は、自然界から単離するこ
とができる。
【００２７】かかる脱窒細菌は、次の表１に示す一次ス
クリーニング用培地に、土壌等のサンプルを塗布し、３
０℃で１〜３日保温後、周囲が青色に呈色したコロニー
を取り出すことにより単離することができる。
クリーニング用培地に、土壌等のサンプルを塗布し、３
０℃で１〜３日保温後、周囲が青色に呈色したコロニー
を取り出すことにより単離することができる。
【００２８】
【表１】
【００２９】単離した脱窒細菌は、二次スクリーニング
として、本明細書の実施例に従い、次の表２に示すＭＭ
液体培地又は表４に示すＭＭＹＳ液体培地中で培養し、
経時的に気相中の窒素ガスを分析することによって、そ
れらの好気的脱窒能を検討することができる。なお、Ｍ
Ｍ液体培地等に添加する微量元素溶液Ａは、表３に示す
ものを用いることができる。
として、本明細書の実施例に従い、次の表２に示すＭＭ
液体培地又は表４に示すＭＭＹＳ液体培地中で培養し、
経時的に気相中の窒素ガスを分析することによって、そ
れらの好気的脱窒能を検討することができる。なお、Ｍ
Ｍ液体培地等に添加する微量元素溶液Ａは、表３に示す
ものを用いることができる。
【００３０】
【表２】
【００３１】
【表３】
【００３２】
【表４】
【００３３】本発明のシュードモナス・スタッツェリ−
ＴＲ２は、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３として平成１２年
２月３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所に寄
託してある。このシュードモナス・スタッツェリ−ＴＲ
２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３は、水田から分離したも
のであり、微生物学的性質として、グラム陰性の桿菌で
あり、硝酸還元能を有し、琥珀酸を炭素源として良好に
生育し、分類学上、細菌〔シュードモナス・スタッツェ
リ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｕｔｚｅｒｉ）〕に
属する新菌株である。同定結果を以下に示す。
ＴＲ２は、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３として平成１２年
２月３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所に寄
託してある。このシュードモナス・スタッツェリ−ＴＲ
２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３は、水田から分離したも
のであり、微生物学的性質として、グラム陰性の桿菌で
あり、硝酸還元能を有し、琥珀酸を炭素源として良好に
生育し、分類学上、細菌〔シュードモナス・スタッツェ
リ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｕｔｚｅｒｉ）〕に
属する新菌株である。同定結果を以下に示す。
【００３４】（同定第一段階；ＮＣＩＭＢジャパンの分
析結果より） 検体の採取場所：土壌 培養形式：斜面培地 培養温度：３０℃ 細胞形態：桿菌（０．８×１．５〜２μｍ） グラム染色：− 胞子：− 運動性：＋ コロニー形態：円形、全縁なめらか、低凸状、光沢、淡
黄色 生育温度℃：ＮＴ カタラーゼ：＋ オキシダーゼ：＋ Ｏ／Ｆ試験：− これらの結果から、分離株ＴＲ２は、運動性を有し、カ
タラーゼ、オキシダーゼ共に陽性を示すことから、Ｐｓ
ｅｕｄｏｍｏｎａｓグループのバクテリアであると推定
される。
析結果より） 検体の採取場所：土壌 培養形式：斜面培地 培養温度：３０℃ 細胞形態：桿菌（０．８×１．５〜２μｍ） グラム染色：− 胞子：− 運動性：＋ コロニー形態：円形、全縁なめらか、低凸状、光沢、淡
黄色 生育温度℃：ＮＴ カタラーゼ：＋ オキシダーゼ：＋ Ｏ／Ｆ試験：− これらの結果から、分離株ＴＲ２は、運動性を有し、カ
タラーゼ、オキシダーゼ共に陽性を示すことから、Ｐｓ
ｅｕｄｏｍｏｎａｓグループのバクテリアであると推定
される。
【００３５】（顕微鏡写真観察）図１に、分離株ＴＲ２
の顕微鏡写真（倍率：１５００）を示す。
の顕微鏡写真（倍率：１５００）を示す。
【００３６】（同定第二段階；ＮＣＩＭＢジャパンの分
析結果より） 硝酸塩還元：＋ インドール産生：− ブドウ糖酸化性：− アルギニンジヒドロラーゼ：− ウレアーゼ：− エスクリン加水分解：− ゼラチン加水分解：− β−ガラクトシダーゼ：− 基質資化能 ブドウ糖：＋ Ｌ−アラビノース：− Ｄ−マンノース：− Ｄ−マンニトール：− Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン：− マルトース：＋ グルコン酸カリウム：＋ ｎ−カプリン酸：＋ アジピン酸：− ｄｌ−リンゴ酸：＋ クエン酸ナトリウム：＋ 酢酸フェニル：− これらの生理性状試験結果から、分離株ＴＲ２は、Ｐｓ
ｅｕｄｏｍｏｎａｓｓｔｕｔｚｅｒｉであることが知見
される。
析結果より） 硝酸塩還元：＋ インドール産生：− ブドウ糖酸化性：− アルギニンジヒドロラーゼ：− ウレアーゼ：− エスクリン加水分解：− ゼラチン加水分解：− β−ガラクトシダーゼ：− 基質資化能 ブドウ糖：＋ Ｌ−アラビノース：− Ｄ−マンノース：− Ｄ−マンニトール：− Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン：− マルトース：＋ グルコン酸カリウム：＋ ｎ−カプリン酸：＋ アジピン酸：− ｄｌ−リンゴ酸：＋ クエン酸ナトリウム：＋ 酢酸フェニル：− これらの生理性状試験結果から、分離株ＴＲ２は、Ｐｓ
ｅｕｄｏｍｏｎａｓｓｔｕｔｚｅｒｉであることが知見
される。
【００３７】（１６Ｓ ＲＮＡ遺伝子の部分ＤＮＡ配
列）ＢＬＡＳＴＮ ２．０．１０（Ａｌｔｓｃｈｕｌ
等、１９９７年、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅ
ｓ．２５：３３８９−３４０２）の方法に従い、分離株
ＴＲ２の１６Ｓ ＲＮＡ遺伝子の部分ＤＮＡ配列を取り
出し、これと相同性の高いものを、データベース（Ｇｅ
ｎＢａｎｋ：６８６，０００ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ；
１，４０９，８３１．７０２ ｔｏｔａｌ ｌｅｔｔｅ
ｒｓ）の中から抽出した。以下に、ＴＲ２の１６Ｓ Ｒ
ＮＡ遺伝子の部分ＤＮＡ配列の相同性の解析結果を示
す。なお、分離株ＴＲ２の１６Ｓ ＲＮＡ遺伝子の部分
ＤＮＡ配列を配列番号１で示す。
列）ＢＬＡＳＴＮ ２．０．１０（Ａｌｔｓｃｈｕｌ
等、１９９７年、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅ
ｓ．２５：３３８９−３４０２）の方法に従い、分離株
ＴＲ２の１６Ｓ ＲＮＡ遺伝子の部分ＤＮＡ配列を取り
出し、これと相同性の高いものを、データベース（Ｇｅ
ｎＢａｎｋ：６８６，０００ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ；
１，４０９，８３１．７０２ ｔｏｔａｌ ｌｅｔｔｅ
ｒｓ）の中から抽出した。以下に、ＴＲ２の１６Ｓ Ｒ
ＮＡ遺伝子の部分ＤＮＡ配列の相同性の解析結果を示
す。なお、分離株ＴＲ２の１６Ｓ ＲＮＡ遺伝子の部分
ＤＮＡ配列を配列番号１で示す。
【００３８】
【化１】
【００３９】同定第一段階、同定第二段階、顕微鏡写真
観察及び１６Ｓ ＲＮＡ遺伝子の部分ＤＮＡ配列から、
分離株ＴＲ２は、シュードモナス・スタッツェリに属す
ることがわかる。なお、本発明のシュードモナス・スタ
ッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭＰ−１７７１３は、本発明
の実施例に示すように、既知のシュードモナス・スタッ
ツェリ−ＺｏＢｅｌｌ（ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２
７７、２０５−２０９、１９９１年等参照）とは異な
り、新菌株であることがわかる。
観察及び１６Ｓ ＲＮＡ遺伝子の部分ＤＮＡ配列から、
分離株ＴＲ２は、シュードモナス・スタッツェリに属す
ることがわかる。なお、本発明のシュードモナス・スタ
ッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭＰ−１７７１３は、本発明
の実施例に示すように、既知のシュードモナス・スタッ
ツェリ−ＺｏＢｅｌｌ（ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ ２
７７、２０５−２０９、１９９１年等参照）とは異な
り、新菌株であることがわかる。
【００４０】本発明のラルストニア・ピックティ−Ｋ５
０は、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２として平成１２年２月
３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託し
てある。このラルストニア・ピックティ−Ｋ５０ ＦＥ
ＲＭ Ｐ−１７７１２は、微生物学的性質として、グラ
ム陰性の桿菌であり、硝酸還元能を有し、琥珀酸、メタ
ノール及び蟻酸を炭素源として良好に生育し、分類学
上、細菌（ラルストニア・ピックティ（Ｒａｌｓｔｏｎ
ｉａ ｐｉｃｋｔｔｉｉ））に属する新菌株である。こ
の新菌株の同定結果を以下に示す。
０は、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２として平成１２年２月
３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託し
てある。このラルストニア・ピックティ−Ｋ５０ ＦＥ
ＲＭ Ｐ−１７７１２は、微生物学的性質として、グラ
ム陰性の桿菌であり、硝酸還元能を有し、琥珀酸、メタ
ノール及び蟻酸を炭素源として良好に生育し、分類学
上、細菌（ラルストニア・ピックティ（Ｒａｌｓｔｏｎ
ｉａ ｐｉｃｋｔｔｉｉ））に属する新菌株である。こ
の新菌株の同定結果を以下に示す。
【００４１】（同定第一段階；ＮＣＩＭＢジャパンの分
析結果より） 検体の採取場所：土壌 培養形式：スラント 細胞形態：桿菌（０．５×１．５〜２μｍ） グラム染色：− 胞子：ＮＴ 運動性：＋ コロニー形態：円形、周縁波状、低凸状、表面凹凸有
り、光沢有り、クリーム色 生育温度℃：ＮＴ カタラーゼ：＋ オキシダーゼ：＋ Ｏ／Ｆ試験：−
析結果より） 検体の採取場所：土壌 培養形式：スラント 細胞形態：桿菌（０．５×１．５〜２μｍ） グラム染色：− 胞子：ＮＴ 運動性：＋ コロニー形態：円形、周縁波状、低凸状、表面凹凸有
り、光沢有り、クリーム色 生育温度℃：ＮＴ カタラーゼ：＋ オキシダーゼ：＋ Ｏ／Ｆ試験：−
【００４２】（同定第二段階、迅速同定試験；ＮＣＩＭ
Ｂジャパンの分析結果より） 硝酸塩還元：− インドール産生：− ブドウ糖酸化性：− アルギニンジヒドロラーゼ：− ウレアーゼ：− エスクリン加水分解：− ゼラチン加水分解：− β−ガラクトシダーゼ：− 基質資化能 ブドウ糖：＋ Ｌ−アラビノース：− Ｄ−マンノース：− Ｄ−マンニトール：− Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン：− マルトース：− グルコン酸カリウム：＋ ｎ−カプリン酸：＋ アジピン酸：− ｄｌ−リンゴ酸：＋ クエン酸ナトリウム：＋ 酢酸フェニル：− 追加試験 ブドウ糖の酸化的分解：＋W Ｋｉｎｇ’ｓＢ寒天での蛍光色素産生：− ＰＨＢＡ蓄積：＋
Ｂジャパンの分析結果より） 硝酸塩還元：− インドール産生：− ブドウ糖酸化性：− アルギニンジヒドロラーゼ：− ウレアーゼ：− エスクリン加水分解：− ゼラチン加水分解：− β−ガラクトシダーゼ：− 基質資化能 ブドウ糖：＋ Ｌ−アラビノース：− Ｄ−マンノース：− Ｄ−マンニトール：− Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミン：− マルトース：− グルコン酸カリウム：＋ ｎ−カプリン酸：＋ アジピン酸：− ｄｌ−リンゴ酸：＋ クエン酸ナトリウム：＋ 酢酸フェニル：− 追加試験 ブドウ糖の酸化的分解：＋W Ｋｉｎｇ’ｓＢ寒天での蛍光色素産生：− ＰＨＢＡ蓄積：＋
【００４３】（顕微鏡写真観察）図２に、分離株Ｋ５０
の顕微鏡写真（倍率：１５００）を示す。
の顕微鏡写真（倍率：１５００）を示す。
【００４４】これらの結果から、分離株Ｋ５０は、運動
性を有するグラム陰性桿菌で、カタラーゼ及びオキシダ
ーゼ共に陽性を示し、弱いながらも、ブドウ糖を酸化的
に分解するとの知見から、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓグル
ープのバクテリアであると考えられる。生理性状試験か
らは、分離株Ｋ５０は、Ｒａｌｓｔｏｎｉａ ｐｉｃｋ
ｅｔｔｉｉ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｐｕｔｉｄａが
示唆れるが、Ｋｉｎｇ’ｓＢ寒天での蛍光色素産生が認
められず、アルギニンジヒドロラーゼ陰性、ポリ−β−
ヒドロキシ酪酸（ＰＨＢＡ）の蓄積陽性を示すことか
ら、Ｋ５０株は、Ｒａｌｓｔｏｎｉａ ｐｉｃｋｔｔｉ
ｉがより妥当性の高い菌群である。
性を有するグラム陰性桿菌で、カタラーゼ及びオキシダ
ーゼ共に陽性を示し、弱いながらも、ブドウ糖を酸化的
に分解するとの知見から、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓグル
ープのバクテリアであると考えられる。生理性状試験か
らは、分離株Ｋ５０は、Ｒａｌｓｔｏｎｉａ ｐｉｃｋ
ｅｔｔｉｉ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｐｕｔｉｄａが
示唆れるが、Ｋｉｎｇ’ｓＢ寒天での蛍光色素産生が認
められず、アルギニンジヒドロラーゼ陰性、ポリ−β−
ヒドロキシ酪酸（ＰＨＢＡ）の蓄積陽性を示すことか
ら、Ｋ５０株は、Ｒａｌｓｔｏｎｉａ ｐｉｃｋｔｔｉ
ｉがより妥当性の高い菌群である。
【００４５】本発明のフザリウム・オキシスポラム−Ｍ
Ｔ−８１１は、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４として平成１
２年２月３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所
に寄託してある。このフザリウム・オキシスポラム−Ｍ
Ｔ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４は、微生物学的
性質として、菌糸状で、無性胞子を形成し、ポテトデキ
ストロース培地上で発育良好で、気菌糸上に白色の胞子
を形成し、分類学上、かび〔フザリウム・オキシスポラ
ム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ）〕に属す
る菌株である。
Ｔ−８１１は、ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４として平成１
２年２月３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所
に寄託してある。このフザリウム・オキシスポラム−Ｍ
Ｔ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４は、微生物学的
性質として、菌糸状で、無性胞子を形成し、ポテトデキ
ストロース培地上で発育良好で、気菌糸上に白色の胞子
を形成し、分類学上、かび〔フザリウム・オキシスポラ
ム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ）〕に属す
る菌株である。
【００４６】この真菌株自体は、リポキシゲナーゼ生産
菌として単離され報告されている（Ｓａｔｏ，Ｔ．，Ｍ
ａｔｓｕｄａ，Ｙ．，Ｔａｋａｓｈｉｏ，Ｍ．，Ｓａｔ
ｏ，Ｋ．，Ｂｅｐｐｕ，Ｔ．，ａｎｄ Ａｒｉｍａ，
Ｋ．：Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．４０，９３５
−９６１（１９７６））。また、本発明にかかる発明者
は、この真菌株自体が脱窒することを見出し、既に報告
している（Ｓｈｏｕｎ，Ｈ．，ａｎｄ Ｔａｎｉｍｏｔ
ｏ， Ｔ．，Ｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｂｙ ｆ
ｕｎｇｕｓ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ
ａｎｄ ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｃｙｔｏｃｈ
ｒｏｍｅ Ｐ−４５０ ｉｎ ｔｈｅｒｅｓｐｉｒａｔ
ｏｒｙ ｎｉｔｒｉｔｅ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ．Ｊ．
Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６６，１１０７８−１１０８２
（１９９１））。
菌として単離され報告されている（Ｓａｔｏ，Ｔ．，Ｍ
ａｔｓｕｄａ，Ｙ．，Ｔａｋａｓｈｉｏ，Ｍ．，Ｓａｔ
ｏ，Ｋ．，Ｂｅｐｐｕ，Ｔ．，ａｎｄ Ａｒｉｍａ，
Ｋ．：Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．４０，９３５
−９６１（１９７６））。また、本発明にかかる発明者
は、この真菌株自体が脱窒することを見出し、既に報告
している（Ｓｈｏｕｎ，Ｈ．，ａｎｄ Ｔａｎｉｍｏｔ
ｏ， Ｔ．，Ｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｂｙ ｆ
ｕｎｇｕｓ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ
ａｎｄ ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｃｙｔｏｃｈ
ｒｏｍｅ Ｐ−４５０ ｉｎ ｔｈｅｒｅｓｐｉｒａｔ
ｏｒｙ ｎｉｔｒｉｔｅ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ．Ｊ．
Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６６，１１０７８−１１０８２
（１９９１））。
【００４７】本発明にかかる好気的脱窒菌は、有機物を
取り除く好気的な条件下でも、脱窒菌として有効に働
き、処理すべき有機物と窒素化合物の両方を含有する水
から、有機物と窒素化合物を同時に取り除くのに役立
つ。また、かかる好気的脱窒菌を水処理に用いると、従
来の脱窒システムに比べ、より一層好気的な条件で、Ｎ
2Ｏの発生を抑制する脱窒システムとして働き、温室効
果ガスの発生を抑止することができる。
取り除く好気的な条件下でも、脱窒菌として有効に働
き、処理すべき有機物と窒素化合物の両方を含有する水
から、有機物と窒素化合物を同時に取り除くのに役立
つ。また、かかる好気的脱窒菌を水処理に用いると、従
来の脱窒システムに比べ、より一層好気的な条件で、Ｎ
2Ｏの発生を抑制する脱窒システムとして働き、温室効
果ガスの発生を抑止することができる。
【００４８】本発明のシュードモナス・スタッツェリ−
ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３は、好気的な条件下
でも、Ｎ2 Ｏを発生させず、Ｎ2 を生成する理想的な好
気的脱窒菌である。
ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３は、好気的な条件下
でも、Ｎ2 Ｏを発生させず、Ｎ2 を生成する理想的な好
気的脱窒菌である。
【００４９】かかる好気的脱窒細菌は、水処理中にＮ2
Ｏを発生させることがないので、有機物を取り除く好気
的な条件下でも、環境に悪影響を与えず、脱窒細菌とし
て有効に働き、処理水から有機物と窒素の両方を同時に
取り除くのに役立つ。
Ｏを発生させることがないので、有機物を取り除く好気
的な条件下でも、環境に悪影響を与えず、脱窒細菌とし
て有効に働き、処理水から有機物と窒素の両方を同時に
取り除くのに役立つ。
【００５０】また、本発明のシュードモナス・スタッツ
ェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３は、メタノー
ル、蟻酸等のＣ１化合物を唯一の炭素源として資化して
良好に増殖する。かかる脱窒細菌は、安価なＣ１化合物
をエネルギー源にして増殖できるので、維持、培養、排
水処理等が安価になる。
ェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３は、メタノー
ル、蟻酸等のＣ１化合物を唯一の炭素源として資化して
良好に増殖する。かかる脱窒細菌は、安価なＣ１化合物
をエネルギー源にして増殖できるので、維持、培養、排
水処理等が安価になる。
【００５１】本発明にかかるフザリウム・オキシスポラ
ム−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４は、真菌
（カビ）に属し、菌糸状形態をとるため、処理水からの
分離が容易である。また、かかる脱窒真菌は、好気的条
件下でも、Ｎ2 Ｏ発生を抑制しつつ脱窒真菌として有効
に働き、処理水から有機物と窒素の両方を同時に取り除
くのに役立つ。
ム−ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４は、真菌
（カビ）に属し、菌糸状形態をとるため、処理水からの
分離が容易である。また、かかる脱窒真菌は、好気的条
件下でも、Ｎ2 Ｏ発生を抑制しつつ脱窒真菌として有効
に働き、処理水から有機物と窒素の両方を同時に取り除
くのに役立つ。
【００５２】本発明にかかる好気的脱窒菌は、窒素化合
物を含有する水を処理するものであれば、水処理全般
（一般排水、農・畜産業排水、工業廃水等の処理、河川
・地下水等の浄水等）に用いることができる。
物を含有する水を処理するものであれば、水処理全般
（一般排水、農・畜産業排水、工業廃水等の処理、河川
・地下水等の浄水等）に用いることができる。
【００５３】本発明では、窒素化合物については、特に
限定されない。種々の窒素化合物の処理に、本発明の好
気的脱窒菌又は本発明に係る好気的脱窒菌を用いること
ができる。窒素化合物としては、例えば、硝酸、亜硝酸
等の窒素酸化物等が挙げられる。本発明の方法及び好気
的脱窒菌は、これらの窒素化合物を含有する水の処理に
好適である。
限定されない。種々の窒素化合物の処理に、本発明の好
気的脱窒菌又は本発明に係る好気的脱窒菌を用いること
ができる。窒素化合物としては、例えば、硝酸、亜硝酸
等の窒素酸化物等が挙げられる。本発明の方法及び好気
的脱窒菌は、これらの窒素化合物を含有する水の処理に
好適である。
【００５４】本発明では、処理すべき水とシュードモナ
ス・スタッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１
３、フザリウム・オキシスポラム−ＭＴ−８１１ ＦＥ
ＲＭＰ−１７７１４及びラルストニア・ピックティ−Ｋ
５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２からなる群より選ばれ
た少なくとも一種の好気的脱窒菌とを混合すると共に、
活性汚泥をこの水に混合することによって、水に含まれ
る窒素化合物を分解することができる。
ス・スタッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１
３、フザリウム・オキシスポラム−ＭＴ−８１１ ＦＥ
ＲＭＰ−１７７１４及びラルストニア・ピックティ−Ｋ
５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２からなる群より選ばれ
た少なくとも一種の好気的脱窒菌とを混合すると共に、
活性汚泥をこの水に混合することによって、水に含まれ
る窒素化合物を分解することができる。
【００５５】かかる水処理方法では、好気的条件下で
も、脱窒が起こり、亜酸化窒素ガスの発生を著しく抑え
ることができる。
も、脱窒が起こり、亜酸化窒素ガスの発生を著しく抑え
ることができる。
【００５６】活性汚泥としては、亜酸化窒素ガスの発生
を抑えることができれば、特に制限されることはない。
例えば、通常の脱窒用の活性汚泥や有機物処理用の活性
汚泥を用いることができる。通常の脱窒用の活性汚泥を
用いれば、嫌気的な状態での脱窒を効率よく行うことが
できる。また、有機物処理用の活性汚泥を用いれば、好
気的な水処理における脱窒を促進することができる。
を抑えることができれば、特に制限されることはない。
例えば、通常の脱窒用の活性汚泥や有機物処理用の活性
汚泥を用いることができる。通常の脱窒用の活性汚泥を
用いれば、嫌気的な状態での脱窒を効率よく行うことが
できる。また、有機物処理用の活性汚泥を用いれば、好
気的な水処理における脱窒を促進することができる。
【００５７】また、本発明では、窒素化合物を含有する
水と、本発明にかかる好気的脱窒菌と、嫌気的脱窒菌と
を混合することによって、亜酸化窒素ガスの発生を著し
く抑えながら、水中の窒素化合物を効率よく分解するこ
とができる。
水と、本発明にかかる好気的脱窒菌と、嫌気的脱窒菌と
を混合することによって、亜酸化窒素ガスの発生を著し
く抑えながら、水中の窒素化合物を効率よく分解するこ
とができる。
【００５８】かかる嫌気的脱窒菌としては、既知の嫌気
的脱窒細菌として有名な、シュードモナス・スタッツェ
リ−ＺｏＢｅｌｌ等を用いることができる。
的脱窒細菌として有名な、シュードモナス・スタッツェ
リ−ＺｏＢｅｌｌ等を用いることができる。
【００５９】さらに、本発明では、本発明の好気的脱窒
菌を、適切な担体への固定化等によって担体に含有させ
ることで、亜酸化窒素ガスの発生を抑える水処理剤とす
ることができる。
菌を、適切な担体への固定化等によって担体に含有させ
ることで、亜酸化窒素ガスの発生を抑える水処理剤とす
ることができる。
【００６０】本発明の好気的脱窒菌は、かかる担体によ
って、その増殖を促進させることができる。また、本発
明の好気的脱窒菌は、かかる担体によって、脱窒後の処
理水からの分離や回収が容易になる。かかる担体として
は、多孔質体等を用いることができる。
って、その増殖を促進させることができる。また、本発
明の好気的脱窒菌は、かかる担体によって、脱窒後の処
理水からの分離や回収が容易になる。かかる担体として
は、多孔質体等を用いることができる。
【００６１】本発明によれば、好気的条件下でもＮ2 Ｏ
を発生しない新規な脱窒細菌、好気的条件下でもＮ2 Ｏ
の発生を著しく抑制する新規な脱窒細菌、及び活性汚泥
や嫌気的脱窒菌との混合により効率的な脱窒性能を示す
脱窒真菌を用いる複合培養系好気脱窒システムにより、
Ｎ2 Ｏの発生を抑制した、環境に対する負荷を軽減した
水処理方法が提供できる。
を発生しない新規な脱窒細菌、好気的条件下でもＮ2 Ｏ
の発生を著しく抑制する新規な脱窒細菌、及び活性汚泥
や嫌気的脱窒菌との混合により効率的な脱窒性能を示す
脱窒真菌を用いる複合培養系好気脱窒システムにより、
Ｎ2 Ｏの発生を抑制した、環境に対する負荷を軽減した
水処理方法が提供できる。
【００６２】また、本発明によれば、これら脱窒菌をそ
のまま用いるか、又はこれらの脱窒菌の適切な担体への
固定化等により、水処理剤が提供され、水処理現場での
応用が可能となる。
のまま用いるか、又はこれらの脱窒菌の適切な担体への
固定化等により、水処理剤が提供され、水処理現場での
応用が可能となる。
【００６３】本発明の水処理方法は、適切な手段によ
り、電気的及び機械的に制御して自動化し、連続した水
処理装置として用いることができる。図３は、かかる水
処理装置の代表的な流れ図である。
り、電気的及び機械的に制御して自動化し、連続した水
処理装置として用いることができる。図３は、かかる水
処理装置の代表的な流れ図である。
【００６４】連続水処理装置１は、反応器２、未処理液
容器３、処理液容器４、酸素及びアルゴン流量制御機
５，６、ｐＨ調整液容器７、コンデンサ８、ガス採取管
９、Ｏ 2 コンバータ１０、ｐＨコンバータ１１及びチャ
ート記録機１２を備える。
容器３、処理液容器４、酸素及びアルゴン流量制御機
５，６、ｐＨ調整液容器７、コンデンサ８、ガス採取管
９、Ｏ 2 コンバータ１０、ｐＨコンバータ１１及びチャ
ート記録機１２を備える。
【００６５】反応器２には、未処理液（新鮮培地等）１
３が、未処理液容器３からポンプ１４を介して逐次供給
され、反応器２内で、脱窒菌による脱窒が行われる。
３が、未処理液容器３からポンプ１４を介して逐次供給
され、反応器２内で、脱窒菌による脱窒が行われる。
【００６６】反応器２内の酸素及びアルゴンの量は、Ｏ
2 コンバータ１０によってチャート記録機１２で監視さ
れ、酸素及びアルゴン流量制御機５，６によって、それ
ぞれ制御される。
2 コンバータ１０によってチャート記録機１２で監視さ
れ、酸素及びアルゴン流量制御機５，６によって、それ
ぞれ制御される。
【００６７】反応器２内のｐＨは、ｐＨコンバータ１１
によってチャート記録機１２で監視され、ｐＨ調整液容
器７から供給されるｐＨ調整液１５で調節される。
によってチャート記録機１２で監視され、ｐＨ調整液容
器７から供給されるｐＨ調整液１５で調節される。
【００６８】反応器２内の脱窒産物である窒素等は、コ
ンデンサ８で凝縮され、ガス採取管９を介して分析機に
送られる。
ンデンサ８で凝縮され、ガス採取管９を介して分析機に
送られる。
【００６９】脱窒菌によって処理された処理液１６は、
ポンプ１７を介して処理液容器４に逐次排出され、反応
器２内が定常状態に保たれる。
ポンプ１７を介して処理液容器４に逐次排出され、反応
器２内が定常状態に保たれる。
【００７０】
【実施例】本発明を、図面を参照して、実験例に基づい
て、より一層詳細に説明する。 実験例１ フラスコ培養において、本発明の一例の好気的脱窒細菌
による脱窒経過を、既知の脱窒細菌と比較した。
て、より一層詳細に説明する。 実験例１ フラスコ培養において、本発明の一例の好気的脱窒細菌
による脱窒経過を、既知の脱窒細菌と比較した。
【００７１】本例の好気的脱窒細菌としては、シュード
モナス・スタッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７
１３（以下、「ＴＲ２細菌株」と称する。）を用いた。
既知の脱窒細菌としては、好気的脱窒細菌として知られ
るチオスフェラ・パントトロファ（Ｔｈｉｏｓｐｈｅｒ
ａ ｐａｎｔｏｔｒｏｐｈａ）〔以下、「ＴＰ細菌」と
称する。なお、この細菌は、現在学名が変更され、パラ
コッカス・デニトリフィカンス（Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ
ｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｎｓ）となったが、この学名
は以前から好気的でない脱窒菌として有名な別の細菌と
同じであるため、本明細書では、「ＴＰ細菌」と称す
る。〕、及び既知の嫌気的脱窒細菌として有名な、シュ
ードモナス・スタッツェリ−ＺｏＢｅｌｌ（Ａｍｅｒｉ
ｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉ
ｏｎに、登録番号ＡＴＣＣ １４４０５として保存され
ている。以下、「ＰＳ細菌株」と称する。なお、この細
菌は、菌名Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｐｅｒｆｅｃｔｏ
ｍａｒｉｎａで保存されているが、現在、この細菌の分
類学的名前が変わり、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｕ
ｔｚｅｒｉとなっている。）を用いた。
モナス・スタッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７
１３（以下、「ＴＲ２細菌株」と称する。）を用いた。
既知の脱窒細菌としては、好気的脱窒細菌として知られ
るチオスフェラ・パントトロファ（Ｔｈｉｏｓｐｈｅｒ
ａ ｐａｎｔｏｔｒｏｐｈａ）〔以下、「ＴＰ細菌」と
称する。なお、この細菌は、現在学名が変更され、パラ
コッカス・デニトリフィカンス（Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ
ｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｎｓ）となったが、この学名
は以前から好気的でない脱窒菌として有名な別の細菌と
同じであるため、本明細書では、「ＴＰ細菌」と称す
る。〕、及び既知の嫌気的脱窒細菌として有名な、シュ
ードモナス・スタッツェリ−ＺｏＢｅｌｌ（Ａｍｅｒｉ
ｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉ
ｏｎに、登録番号ＡＴＣＣ １４４０５として保存され
ている。以下、「ＰＳ細菌株」と称する。なお、この細
菌は、菌名Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｐｅｒｆｅｃｔｏ
ｍａｒｉｎａで保存されているが、現在、この細菌の分
類学的名前が変わり、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｕ
ｔｚｅｒｉとなっている。）を用いた。
【００７２】これらの脱窒細菌を脱窒条件（窒素源：硝
酸ナトリウム、３０℃、１２０ｒｐｍ）で予め培養し、
その後、集菌し、洗浄（０．９％ＮａＣｌ）した。
酸ナトリウム、３０℃、１２０ｒｐｍ）で予め培養し、
その後、集菌し、洗浄（０．９％ＮａＣｌ）した。
【００７３】これらの脱窒細菌を、表２に示すＭＭ液体
培地１００ｍＬ（５００ｍＬ容量の三角フラスコ）に植
菌し、これを本培養（３０℃、１２０ｒｐｍ）し、気相
中のＮ2 、Ｎ2 Ｏ及びＯ2 を、ＧＣにより分析した。ま
た、Ｎ2 の同位体比を、ＧＣ／ＭＳにより分析した。
培地１００ｍＬ（５００ｍＬ容量の三角フラスコ）に植
菌し、これを本培養（３０℃、１２０ｒｐｍ）し、気相
中のＮ2 、Ｎ2 Ｏ及びＯ2 を、ＧＣにより分析した。ま
た、Ｎ2 の同位体比を、ＧＣ／ＭＳにより分析した。
【００７４】図４は、本発明のＴＲ２細菌株の脱窒経過
を示すグラフである。図５は、好気的脱窒細菌として知
られるＴＰ細菌の脱窒経過を示すグラフである。図６
は、既知の嫌気的脱窒細菌として有名なＰＳ細菌株の脱
窒経過を示すグラフである。
を示すグラフである。図５は、好気的脱窒細菌として知
られるＴＰ細菌の脱窒経過を示すグラフである。図６
は、既知の嫌気的脱窒細菌として有名なＰＳ細菌株の脱
窒経過を示すグラフである。
【００７５】図４に示すように、ＴＲ２細菌株の純粋培
養経過では、酸素（Ｏ2 ）が減少する前から脱窒（硝酸
ナトリウムからのＮ2 の発生）が始まった。図５及び図
６に示すような他の細菌では、酸素がより少なくなって
からでないと、脱窒が始まらなかった。また、図５の細
菌では、Ｎ2 Ｏも発生した。
養経過では、酸素（Ｏ2 ）が減少する前から脱窒（硝酸
ナトリウムからのＮ2 の発生）が始まった。図５及び図
６に示すような他の細菌では、酸素がより少なくなって
からでないと、脱窒が始まらなかった。また、図５の細
菌では、Ｎ2 Ｏも発生した。
【００７６】本発明のＴＲ２細菌株は、既知の有名な嫌
気的脱窒細菌（ＰＳ細菌株）や既知の好気的脱窒細菌
（ＴＰ細菌）と比べて、より一層好気的な条件下で、Ｎ
2 を生成する活性が高く、更にＮ2 Ｏを発生しないこと
が分かった。
気的脱窒細菌（ＰＳ細菌株）や既知の好気的脱窒細菌
（ＴＰ細菌）と比べて、より一層好気的な条件下で、Ｎ
2 を生成する活性が高く、更にＮ2 Ｏを発生しないこと
が分かった。
【００７７】実験例２ 本発明にかかる一例の好気的脱窒真菌、フザリウム・オ
キシスポラムによる脱窒経過、及びこの好気的脱窒真菌
と、水処理場の浮遊汚泥（活性汚泥）とを混合すること
によって生じる、活性汚泥の脱窒活性に対する添加効果
を確かめた。
キシスポラムによる脱窒経過、及びこの好気的脱窒真菌
と、水処理場の浮遊汚泥（活性汚泥）とを混合すること
によって生じる、活性汚泥の脱窒活性に対する添加効果
を確かめた。
【００７８】本例の好気的脱窒真菌としては、フザリウ
ム・オキシスポラム−ＭＴ−８１１ＦＥＲＭ Ｐ−１７
７１４（以下、「ＭＴ−８１１真菌株」と称する。）を
用いた。この例の浮遊汚泥としては、廃水処理工場から
採取した活性汚泥（浮遊汚泥）を用いた。
ム・オキシスポラム−ＭＴ−８１１ＦＥＲＭ Ｐ−１７
７１４（以下、「ＭＴ−８１１真菌株」と称する。）を
用いた。この例の浮遊汚泥としては、廃水処理工場から
採取した活性汚泥（浮遊汚泥）を用いた。
【００７９】実験例１と同様にして、脱窒真菌（ＭＴ−
８１１真菌株）等を用いて、脱窒過程を試験した。な
お、この実験例では、培地の容器を開放し、新たに発生
するＮ 2 Ｏを測定した。
８１１真菌株）等を用いて、脱窒過程を試験した。な
お、この実験例では、培地の容器を開放し、新たに発生
するＮ 2 Ｏを測定した。
【００８０】図７は、本発明のＭＴ−８１１真菌株によ
る脱窒経過を示すグラフである。図８は、活性汚泥によ
る脱窒過程を示すグラフである。図９は、活性汚泥と本
発明のＭＴ−８１１真菌株との混合物による脱窒経過を
示すグラフである。図１０は、図７〜図９をプロットし
直したものであり、硝酸イオンの減少を示すグラフであ
る。図１１は、図７〜図９をプロットし直したものであ
り、Ｎ2 Ｏの生成を示すグラフである。
る脱窒経過を示すグラフである。図８は、活性汚泥によ
る脱窒過程を示すグラフである。図９は、活性汚泥と本
発明のＭＴ−８１１真菌株との混合物による脱窒経過を
示すグラフである。図１０は、図７〜図９をプロットし
直したものであり、硝酸イオンの減少を示すグラフであ
る。図１１は、図７〜図９をプロットし直したものであ
り、Ｎ2 Ｏの生成を示すグラフである。
【００８１】図７に示すように、本発明のＭＴ−８１１
真菌株は、図８に示す活性汚泥単独の場合よりも、硝酸
イオンの減少能に優れ、Ｎ2 Ｏ生成も著しく少なかっ
た。また、図９〜図１１に示すように、本発明のＭＴ−
８１１真菌株と活性汚泥との混合物（複合系）を用いる
ことによって、時間経過とともに、硝酸イオンの減少が
ほぼ完全となり、Ｎ2 Ｏ生成の減少も完全となった。
真菌株は、図８に示す活性汚泥単独の場合よりも、硝酸
イオンの減少能に優れ、Ｎ2 Ｏ生成も著しく少なかっ
た。また、図９〜図１１に示すように、本発明のＭＴ−
８１１真菌株と活性汚泥との混合物（複合系）を用いる
ことによって、時間経過とともに、硝酸イオンの減少が
ほぼ完全となり、Ｎ2 Ｏ生成の減少も完全となった。
【００８２】このように、本発明のもう一つの工夫とし
て、我々が発見したＭＴ−８１１真菌株（カビ）と、廃
水処理現場から採取した活性汚泥（浮遊汚泥）との複合
培養により、処理水からのＮ2 Ｏ生成を抑え、効率よく
窒素（硝酸）を除くことができた。
て、我々が発見したＭＴ−８１１真菌株（カビ）と、廃
水処理現場から採取した活性汚泥（浮遊汚泥）との複合
培養により、処理水からのＮ2 Ｏ生成を抑え、効率よく
窒素（硝酸）を除くことができた。
【００８３】また、この例から、本発明の好気的脱窒菌
の担体への固定化等により、水処理現場での応用が可能
であることが分かった。さらに、本発明のＭＴ−８１１
真菌株は、菌糸状形態をとっており、処理水からの分離
が容易であった。
の担体への固定化等により、水処理現場での応用が可能
であることが分かった。さらに、本発明のＭＴ−８１１
真菌株は、菌糸状形態をとっており、処理水からの分離
が容易であった。
【００８４】実験例３ 本発明のＭＴ−８１１真菌株と既知の嫌気的脱窒細菌と
の混合系による脱窒過程を研究した。
の混合系による脱窒過程を研究した。
【００８５】本例では、既知の嫌気的脱窒細菌として、
実験例１と同様のＰＳ細菌株を用いた。
実験例１と同様のＰＳ細菌株を用いた。
【００８６】処理は、ＭＭ−グリセロール培地又はＭＭ
−メタノール及び蟻酸塩培地を用いた以外、実験例２と
同様の条件とした。なお、ＭＭ−グリセロール培地の組
成を表５に示す。このＭＭ−グリセロール培地には、表
６に示す微量元素溶液Ｂを添加した。また、ＭＭ−メタ
ノール及び蟻酸塩培地は、表５中のグリセロールの代わ
りに、５ミリモルずつのメタノール及び蟻酸を添加した
以外は、ＭＭ−グリセロール培地と同様のものを用い
た。
−メタノール及び蟻酸塩培地を用いた以外、実験例２と
同様の条件とした。なお、ＭＭ−グリセロール培地の組
成を表５に示す。このＭＭ−グリセロール培地には、表
６に示す微量元素溶液Ｂを添加した。また、ＭＭ−メタ
ノール及び蟻酸塩培地は、表５中のグリセロールの代わ
りに、５ミリモルずつのメタノール及び蟻酸を添加した
以外は、ＭＭ−グリセロール培地と同様のものを用い
た。
【００８７】
【表５】
【００８８】
【表６】
【００８９】図１２は、既知のＰＳ細菌株と本発明のＭ
Ｔ−８１１真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系によ
る場合とを、ＭＭ−グリセロール培地で試験したもの
の、脱窒過程を示すグラフである。図１３は、既知のＰ
Ｓ細菌株と本発明のＭＴ−８１１真菌株のそれぞれ単独
の場合と、混合系による場合とを、ＭＭ−グリセロール
培地で試験したものの、Ｎ2 生成とＯ2 減少を示すグラ
フである。図１４は、既知のＰＳ細菌株と本発明のＭＴ
−８１１真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による
場合とを、ＭＭ−メタノール及び蟻酸塩培地で試験した
ものの、Ｎ2 及びＮ2 Ｏ生成を示すグラフである。
Ｔ−８１１真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系によ
る場合とを、ＭＭ−グリセロール培地で試験したもの
の、脱窒過程を示すグラフである。図１３は、既知のＰ
Ｓ細菌株と本発明のＭＴ−８１１真菌株のそれぞれ単独
の場合と、混合系による場合とを、ＭＭ−グリセロール
培地で試験したものの、Ｎ2 生成とＯ2 減少を示すグラ
フである。図１４は、既知のＰＳ細菌株と本発明のＭＴ
−８１１真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による
場合とを、ＭＭ−メタノール及び蟻酸塩培地で試験した
ものの、Ｎ2 及びＮ2 Ｏ生成を示すグラフである。
【００９０】図１２に示すように、培地にＭＭ−グリセ
ロールを用いたところ、本発明のＭＴ−８１１真菌株
は、既知のＰＳ細菌株と比べ、硝酸イオンからのＮ2 と
Ｎ2 Ｏの生成能がいずれも著しく低かったにもかかわら
ず、本発明のＭＴ−８１１真菌株と既知のＰＳ細菌株と
を混合した混合系では、Ｎ2 生成能が、既知のＰＳ細菌
株単独よりも著しく高くなり、Ｎ2 Ｏ生成能がほぼ完全
に抑えられた。
ロールを用いたところ、本発明のＭＴ−８１１真菌株
は、既知のＰＳ細菌株と比べ、硝酸イオンからのＮ2 と
Ｎ2 Ｏの生成能がいずれも著しく低かったにもかかわら
ず、本発明のＭＴ−８１１真菌株と既知のＰＳ細菌株と
を混合した混合系では、Ｎ2 生成能が、既知のＰＳ細菌
株単独よりも著しく高くなり、Ｎ2 Ｏ生成能がほぼ完全
に抑えられた。
【００９１】また、図１３に示すように、本発明のＭＴ
−８１１真菌株と既知のＰＳ細菌株との混合系では、Ｏ
2 の減少が著しくなり、Ｎ2 生成能が著しく高くなっ
た。
−８１１真菌株と既知のＰＳ細菌株との混合系では、Ｏ
2 の減少が著しくなり、Ｎ2 生成能が著しく高くなっ
た。
【００９２】図１４に示すように、培地にＭＭ−メタノ
ール及び蟻酸塩を用いたところ、本発明のＭＴ−８１１
真菌株と既知のＰＳ細菌株との混合系では、Ｎ2 生成能
が、既知のＰＳ細菌株単独よりも著しく高くなり、Ｎ2
Ｏ生成能が著しく抑えられた。
ール及び蟻酸塩を用いたところ、本発明のＭＴ−８１１
真菌株と既知のＰＳ細菌株との混合系では、Ｎ2 生成能
が、既知のＰＳ細菌株単独よりも著しく高くなり、Ｎ2
Ｏ生成能が著しく抑えられた。
【００９３】このように、本発明の好気的脱窒真菌（Ｍ
Ｔ−８１１真菌株）と既知の嫌気的脱窒細菌（ＰＳ細菌
株）との複合培養により、効率よく窒素（硝酸体等）を
除けることが分かった。また、本発明の好気的脱窒真菌
（ＭＴ−８１１真菌株）は、菌糸状形態をとるため、処
理水からの分離が容易であった。
Ｔ−８１１真菌株）と既知の嫌気的脱窒細菌（ＰＳ細菌
株）との複合培養により、効率よく窒素（硝酸体等）を
除けることが分かった。また、本発明の好気的脱窒真菌
（ＭＴ−８１１真菌株）は、菌糸状形態をとるため、処
理水からの分離が容易であった。
【００９４】実験例４ 本発明のＴＲ２細菌株について、Ｃ１化合物としての蟻
酸又はメタノールのいずれかを唯一の炭素源とし、脱窒
過程を研究した。
酸又はメタノールのいずれかを唯一の炭素源とし、脱窒
過程を研究した。
【００９５】蟻酸を炭素源とした処理は、次の表７に示
す組成の培地を用いた以外、実験例１と同様にした。ま
た、メタノールを炭素源とした処理は、表７の培地中、
蟻酸の代わりに、等モルのメタノールを添加した培地を
用いた以外、蟻酸の場合の処理と同様にした。なお、Ｃ
／Ｎ＝６、Ｃ／Ｎ＝１２、Ｃ／Ｎ＝３６は、蟻酸又はメ
タノールと硝酸のモル比が、６、１２、３６であること
を示す。結果を、図１５〜図１８に示す。
す組成の培地を用いた以外、実験例１と同様にした。ま
た、メタノールを炭素源とした処理は、表７の培地中、
蟻酸の代わりに、等モルのメタノールを添加した培地を
用いた以外、蟻酸の場合の処理と同様にした。なお、Ｃ
／Ｎ＝６、Ｃ／Ｎ＝１２、Ｃ／Ｎ＝３６は、蟻酸又はメ
タノールと硝酸のモル比が、６、１２、３６であること
を示す。結果を、図１５〜図１８に示す。
【００９６】
【表７】
【００９７】図１５は、蟻酸を用いたＴＲ２のＮ2 及び
Ｎ2 Ｏ生成を示すグラフである。図１６は、蟻酸を用い
たＴＲ２のＯ2 減少を示すグラフである。図１７は、メ
タノールを用いたＴＲ２のＮ2 及びＮ2 Ｏ生成を示すグ
ラフである。図１８は、メタノールを用いたＴＲ２のＯ
2 減少を示すグラフである。
Ｎ2 Ｏ生成を示すグラフである。図１６は、蟻酸を用い
たＴＲ２のＯ2 減少を示すグラフである。図１７は、メ
タノールを用いたＴＲ２のＮ2 及びＮ2 Ｏ生成を示すグ
ラフである。図１８は、メタノールを用いたＴＲ２のＯ
2 減少を示すグラフである。
【００９８】図１５及び図１６に示すように、本発明の
ＴＲ２細菌株は、蟻酸を唯一の炭素源としても、好気的
条件下でＮ2 Ｏを産生することなく、Ｃ／Ｎ＝３２を除
き、良好なＮ2 産生を示し、脱窒性能に優れていること
がわかった。
ＴＲ２細菌株は、蟻酸を唯一の炭素源としても、好気的
条件下でＮ2 Ｏを産生することなく、Ｃ／Ｎ＝３２を除
き、良好なＮ2 産生を示し、脱窒性能に優れていること
がわかった。
【００９９】図１７及び図１８に示すように、本発明の
ＴＲ２細菌株は、メタノールを唯一の炭素源としても、
好気的条件下でＮ2 Ｏを産生することなく、良好なＮ2
産生を示し、脱窒性能に優れていることがわかった。
ＴＲ２細菌株は、メタノールを唯一の炭素源としても、
好気的条件下でＮ2 Ｏを産生することなく、良好なＮ2
産生を示し、脱窒性能に優れていることがわかった。
【０１００】実験例５ 脱窒菌を定常状態で連続培養し、脱窒菌の脱窒過程を研
究した。
究した。
【０１０１】この処理では、本発明に係る脱窒菌とし
て、本発明のＴＲ２細菌株及びラルストニア・ピックテ
ィ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２（以下、「Ｋ５
０細菌株」と称する。）を用い、既知の脱窒菌として、
ＴＰ細菌及びＰＳ細菌株を用いた。
て、本発明のＴＲ２細菌株及びラルストニア・ピックテ
ィ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２（以下、「Ｋ５
０細菌株」と称する。）を用い、既知の脱窒菌として、
ＴＰ細菌及びＰＳ細菌株を用いた。
【０１０２】これらの脱窒菌の脱窒過程は、表８に示す
基本組成の培地に、表３に示す微量元素溶液を２ｍＬ／
Ｌの割合で添加して調製した培地と、図３に示すよう
な、電気的及び機械的に制御された連続培養装置とを用
いて検討した。
基本組成の培地に、表３に示す微量元素溶液を２ｍＬ／
Ｌの割合で添加して調製した培地と、図３に示すよう
な、電気的及び機械的に制御された連続培養装置とを用
いて検討した。
【０１０３】
【表８】
【０１０４】表９〜表１２には、本発明のＴＲ２細菌
株、本発明のＫ５０細菌株、既知のＴＰ細菌及び既知の
ＰＳ細菌株の脱窒状態のそれぞれを示す。これらの脱窒
菌は、それぞれ、表９〜表１２に示す異なる攪拌速度と
酸素供給量の条件の下に、定常状態を保った。
株、本発明のＫ５０細菌株、既知のＴＰ細菌及び既知の
ＰＳ細菌株の脱窒状態のそれぞれを示す。これらの脱窒
菌は、それぞれ、表９〜表１２に示す異なる攪拌速度と
酸素供給量の条件の下に、定常状態を保った。
【０１０５】
【表９】
【０１０６】
【表１０】
【０１０７】
【表１１】
【０１０８】
【表１２】
【０１０９】表９に示すように、本発明のＴＲ２細菌株
は、表１１に示すＴＰ細菌と比べ、無酸素状態又は溶存
酸素濃度（ＤＯ）が低い状態で、光学的密度（ＯＤ540)
が高く、良好に増殖してＮ2 を産生する一方、Ｎ2 Ｏの
産生が著しく少ない。
は、表１１に示すＴＰ細菌と比べ、無酸素状態又は溶存
酸素濃度（ＤＯ）が低い状態で、光学的密度（ＯＤ540)
が高く、良好に増殖してＮ2 を産生する一方、Ｎ2 Ｏの
産生が著しく少ない。
【０１１０】また、本発明のＴＲ２細菌株は、ＴＰ細菌
と比べ、溶存酸素濃度が高い状態でも、Ｎ2 Ｏの産生量
を増やすことなく、良好に増殖してＮ2 を産生する。
と比べ、溶存酸素濃度が高い状態でも、Ｎ2 Ｏの産生量
を増やすことなく、良好に増殖してＮ2 を産生する。
【０１１１】さらに、本発明のＴＲ２細菌株は、表１２
に示すＰＳ細菌株と比べ、低溶存酸素濃度でＮ2 を良好
に産生し、Ｎ2 Ｏの産生量が著しく少なく、高溶存酸素
濃度でも、良好に増殖し、Ｎ2 Ｏの産生量が著しく少な
い。
に示すＰＳ細菌株と比べ、低溶存酸素濃度でＮ2 を良好
に産生し、Ｎ2 Ｏの産生量が著しく少なく、高溶存酸素
濃度でも、良好に増殖し、Ｎ2 Ｏの産生量が著しく少な
い。
【０１１２】表９に示すように、本発明のＫ５０細菌株
は、ＴＲ２細菌株と同様に、ＴＰ細菌と比べ、低溶存酸
素濃度で良好に増殖し、Ｎ2 Ｏ産生を抑えてＮ2 を産生
し、高溶存酸素濃度でも、Ｎ2 Ｏの産生量を増やすこと
がない。
は、ＴＲ２細菌株と同様に、ＴＰ細菌と比べ、低溶存酸
素濃度で良好に増殖し、Ｎ2 Ｏ産生を抑えてＮ2 を産生
し、高溶存酸素濃度でも、Ｎ2 Ｏの産生量を増やすこと
がない。
【０１１３】また、本発明のＫ５０細菌株は、ＴＲ２細
菌株と同様に、ＰＳ細菌株と比べ、低溶存酸素濃度でＮ
2 Ｏ産生を抑えて、Ｎ2 を産生し、高溶存酸素濃度でも
著しく増殖して、Ｎ2 Ｏ産生を抑えて、Ｎ2 を産生す
る。
菌株と同様に、ＰＳ細菌株と比べ、低溶存酸素濃度でＮ
2 Ｏ産生を抑えて、Ｎ2 を産生し、高溶存酸素濃度でも
著しく増殖して、Ｎ2 Ｏ産生を抑えて、Ｎ2 を産生す
る。
【０１１４】
【発明の効果】本発明の水処理方法、水処理剤及び水処
理装置によれば、所定の好気的脱窒菌を用いることによ
り、好気的条件下に、Ｎ2 Ｏの発生を抑制し、環境に与
える負荷を抑えながら、効率的に水中の窒素化合物を分
解することができる。
理装置によれば、所定の好気的脱窒菌を用いることによ
り、好気的条件下に、Ｎ2 Ｏの発生を抑制し、環境に与
える負荷を抑えながら、効率的に水中の窒素化合物を分
解することができる。
【０１１５】
【配列表】 配列番号：１ 配列の長さ：８６０ 配列の型：核酸 起源 生物名：シュードモナス・スタッツェリ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｔｕｔｚｅｒｉ） 株名：ＴＲ２（ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３） 配列 gtcaattcat ttgagtttta accttgcggc cgtactcccc aggcggtcga cttaatgcgt tacgtgcgcc actaagatct caaggatccc aacggctagt cgacatcgtt tacggcgtgg actaccaggg tatctaatcc tgtttgctcc ccacgctttc gcacctcagt gtcagtatta gcccaggtgg tcgccttcgc cactggtgtt ccttcctata tctacgcatt tcaccgctac acaggaaatt ccaccaccct ctgccatact ctagcttgcc agttttggat gcagttccca ggttgagccc ggggctttca cattcaactt aacaaaccac ctacgcgcgc tttacgccca gtaattccga ttaacgcttg cacccttcgt attaccgcgg ctgctggcac gaagttagcc ggtgcttatt ctgtcggtaa cgtcaaaaca ctaacgtatt aggttaatgc ccttcctccc aacttaaagt gctttacaat ccgaagacct tcttcacaca cgcggcatgg ctggatcagg ctttcgccca ttgtccaata ttccccactg ctgcctcccg tagagtctgg accgtgtctc agttccagtg tgacctcacc aactagctaa tccgacctag actcatctga tagcgcaagg cccgaagtcc cctgctttct cccgtaggac gtatgcggta ttagcgttcc tttcgaaacg ttgtccccca ctatcaggca gattcctagg cattactcac ccgtccgccg ctgaatcaga gagcaagctc tcttcatccg ctcgacttgc atgtgttagg cctgccgcca gcgttcaatc tgagccagga tcaaactcta
【図１】 本発明のＴＲ２細菌株の図面代用写真であ
る。
る。
【図２】 本発明のＫ５０細菌株の図面代用写真であ
る。
る。
【図３】 本発明の一例の水処理装置を示す図である。
【図４】 本発明のＴＲ２細菌株の脱窒経過を示すグラ
フである。
フである。
【図５】 既知のＴＰ細菌の脱窒経過を示すグラフであ
る。
る。
【図６】 他の既知のＰＳ細菌株の脱窒経過を示すグラ
フである。
フである。
【図７】 本発明のＭＴ−８１１真菌株の脱窒経過を示
すグラフである。
すグラフである。
【図８】 活性汚泥のみによる脱窒過程を示すグラフで
ある。
ある。
【図９】 活性汚泥とＭＴ−８１１真菌株との混合培養
による脱窒経過を示すグラフである。
による脱窒経過を示すグラフである。
【図１０】 図５及び図６をプロットし直し、硝酸イオ
ンの減少を示したグラフである。
ンの減少を示したグラフである。
【図１１】 図５及び図６をプロットし直し、Ｎ2 Ｏの
生成を示したグラフである。
生成を示したグラフである。
【図１２】 既知のＰＳ細菌株と本発明のＭＴ−８１１
真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による場合と
を、ＭＭ−グリセロール培地で試験したものの、脱窒過
程を示すグラフである。
真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による場合と
を、ＭＭ−グリセロール培地で試験したものの、脱窒過
程を示すグラフである。
【図１３】 既知のＰＳ細菌株と本発明のＭＴ−８１１
真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による場合と
を、ＭＭ−グリセロール培地で試験したものの、Ｎ 2 生
成とＯ2 減少を示すグラフである。
真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による場合と
を、ＭＭ−グリセロール培地で試験したものの、Ｎ 2 生
成とＯ2 減少を示すグラフである。
【図１４】 既知のＰＳ細菌株と本発明のＭＴ−８１１
真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による場合と
を、ＭＭ−メタノール及び蟻酸塩培地で試験したもの
の、Ｎ2 及びＮ2 Ｏ生成を示すグラフである。
真菌株のそれぞれ単独の場合と、混合系による場合と
を、ＭＭ−メタノール及び蟻酸塩培地で試験したもの
の、Ｎ2 及びＮ2 Ｏ生成を示すグラフである。
【図１５】 蟻酸を用いたＴＲ２のＮ2 及びＮ2 Ｏ生成
を示すグラフである。
を示すグラフである。
【図１６】 蟻酸を用いたＴＲ２のＯ2 減少を示すグラ
フである。
フである。
【図１７】 メタノールを用いたＴＲ２のＮ2 及びＮ2
Ｏ生成を示すグラフである。
Ｏ生成を示すグラフである。
【図１８】 メタノールを用いたＴＲ２のＯ2 減少を示
すグラフである。
すグラフである。
１ 連続水処理装置 ２ 反応器 ３ 未処理液容器 ４ 処理液容器 ５ 酸素流量制御機 ６ アルゴン流量制御機 ７ ｐＨ調整液容器 ８ コンデンサ ９ ガス採取管 １０ Ｏ2 コンバータ １１ ｐＨコンバータ １２ チャート記録機 １３ 未処理液（新鮮培地等） １４，１７ ポンプ １５ ｐＨ調整液 １６ 処理液
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｃ１２Ｎ 1/20 ＺＮＡ Ｃ１２Ｎ 1/20 ＺＮＡＡ //(Ｃ１２Ｎ 1/14 (Ｃ１２Ｎ 1/14 Ｃ１２Ｒ 1:77） Ｃ１２Ｒ 1:77） (Ｃ１２Ｎ 1/20 (Ｃ１２Ｎ 1/20 Ａ Ｃ１２Ｒ 1:38） Ｃ１２Ｒ 1:38） Ｆターム(参考） 4B065 AA01X AA41X AA65X AC20 BB12 BB40 CA54 4D040 BB42 DD03 DD07 DD14 DD31
Claims (8)
- 【請求項１】 窒素化合物を含有する水を処理するにあ
たり、 前記水と、シュードモナス・スタッツェリ−ＴＲ２ Ｆ
ＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラルストニア・ピックティ
−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少なくとも一種
の脱窒細菌とを混合し、前記窒素化合物を分解すること
を特徴とする、水処理方法。 - 【請求項２】 前記脱窒細菌が、シュードモナス・スタ
ッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３であるこ
とを特徴とする、請求項１記載の水処理方法。 - 【請求項３】 窒素化合物を含有する水を処理するにあ
たり、 前記水と、活性汚泥と、フザリウム・オキシスポラム−
ＭＴ−８１１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４とを混合し、
前記窒素化合物を分解することを特徴とする、水処理方
法。 - 【請求項４】 窒素化合物を含有する水を処理するにあ
たり、 前記水と、シュードモナス・スタッツェリ−ＺｏＢｅｌ
ｌと、フザリウム・オキシスポラム−ＭＴ−８１１ Ｆ
ＥＲＭ Ｐ−１７７１４とを混合し、前記窒素化合物を
分解することを特徴とする、水処理方法。 - 【請求項５】 水中の窒素化合物を分解するための水処
理剤であって、 前記水処理剤が、シュードモナス・スタッツェリ−ＴＲ
２ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１３及びラルストニア・ピッ
クティ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１２の少なくと
も一種の脱窒細菌を含んでいることを特徴とする、水処
理剤。 - 【請求項６】 水中の窒素化合物を分解するための水処
理剤であって、 前記水処理剤が、シュードモナス・スタッツェリ−Ｚｏ
Ｂｅｌｌと、フザリウム・オキシスポラム−ＭＴ−８１
１ ＦＥＲＭ Ｐ−１７７１４とを含んでいることを特
徴とする、水処理剤。 - 【請求項７】 窒素化合物を分解する脱窒細菌であっ
て、シュードモナス・スタッツェリ−ＴＲ２ ＦＥＲＭ
Ｐ−１７７１３で示されることを特徴とする、脱窒細
菌。 - 【請求項８】 窒素化合物を分解する脱窒細菌であっ
て、ラルストニア・ピックティ−Ｋ５０ ＦＥＲＭ Ｐ
−１７７１２で示されることを特徴とする、脱窒細菌。
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|---|---|---|---|
| JP2000078083A JP3398760B2 (ja) | 2000-03-21 | 2000-03-21 | 水処理方法、水処理剤及び好気的脱窒細菌 |
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|---|---|
| JP2001259686A true JP2001259686A (ja) | 2001-09-25 |
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- 2000-03-21 JP JP2000078083A patent/JP3398760B2/ja not_active Expired - Lifetime
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