JP2001081098A - 紫外線照射による水不溶性ｄｎａ架橋体の製造方法と該架橋体の環境浄化材料としての利用 - Google Patents
紫外線照射による水不溶性ｄｎａ架橋体の製造方法と該架橋体の環境浄化材料としての利用Info
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Abstract
(57)【要約】
【課題】新規の水不溶性ＤＮＡ架橋体とその環境浄化材
料としての利用方法の提供 【解決手段】支持体上の水溶性ＤＮＡ（例えば、サケの
精巣由来のＤＮＡ）の水溶液もしくはその液膜、又は支
持体上の水溶性ＤＮＡの薄膜液波長が２５０〜２７０ｎ
ｍの範囲の紫外線を照射すると、該ＤＮＡは支持体上に
固定された水に不溶性の架橋体に変化する。同様にし
て、例えば、セルロース繊維不織布を浸漬した水溶性Ｄ
ＮＡの水溶液に波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲の紫外
線を照射することにより、該ＤＮＡの水不溶性架橋重合
体により被覆されたセルロース繊維不織布が形成され
る。この架橋体はＤＮＡへの挿入剤または環境ホルモン
を水中の極めて低い濃度の状態でも極めて収率高く吸着
する。同様に有毒金属例えばＨｇイオンも水に対して固
定的に吸着する。従って、この架橋体は環境浄化材料と
して有用である。
料としての利用方法の提供 【解決手段】支持体上の水溶性ＤＮＡ（例えば、サケの
精巣由来のＤＮＡ）の水溶液もしくはその液膜、又は支
持体上の水溶性ＤＮＡの薄膜液波長が２５０〜２７０ｎ
ｍの範囲の紫外線を照射すると、該ＤＮＡは支持体上に
固定された水に不溶性の架橋体に変化する。同様にし
て、例えば、セルロース繊維不織布を浸漬した水溶性Ｄ
ＮＡの水溶液に波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲の紫外
線を照射することにより、該ＤＮＡの水不溶性架橋重合
体により被覆されたセルロース繊維不織布が形成され
る。この架橋体はＤＮＡへの挿入剤または環境ホルモン
を水中の極めて低い濃度の状態でも極めて収率高く吸着
する。同様に有毒金属例えばＨｇイオンも水に対して固
定的に吸着する。従って、この架橋体は環境浄化材料と
して有用である。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本願発明は、支持体上の水溶
液中にあってもよい水溶性ＤＮＡに波長が２５０〜２７
０ｎｍの範囲の紫外線を照射することによる支持体に固
定された水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋体の製造方法、該
架橋体；該架橋体を含有する医薬、獣医薬又は食品；該
架橋体による、ＤＮＡへの挿入剤の集積及び除去；銀イ
オンを含有する該架橋体とその殺菌材料としての利用に
関する。
液中にあってもよい水溶性ＤＮＡに波長が２５０〜２７
０ｎｍの範囲の紫外線を照射することによる支持体に固
定された水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋体の製造方法、該
架橋体；該架橋体を含有する医薬、獣医薬又は食品；該
架橋体による、ＤＮＡへの挿入剤の集積及び除去；銀イ
オンを含有する該架橋体とその殺菌材料としての利用に
関する。
【０００２】
【従来の技術と発明が解決しようとする課題】紫外線照
射により、二本鎖ＤＮＡが、エタノール中で互いの二本
鎖ＤＮＡの間で架橋することは知られている（例えば、
Photochemistry and Photobiology, 1998, 67(4): 386-
390 を参照) 。しかし、水中又は無溶媒の条件下で二本
鎖ＤＮＡの間での架橋が起こることは知られていない。
又、一本鎖ＤＮＡ又はＲＮＡの紫外線照射による架橋化
は知られていない。
射により、二本鎖ＤＮＡが、エタノール中で互いの二本
鎖ＤＮＡの間で架橋することは知られている（例えば、
Photochemistry and Photobiology, 1998, 67(4): 386-
390 を参照) 。しかし、水中又は無溶媒の条件下で二本
鎖ＤＮＡの間での架橋が起こることは知られていない。
又、一本鎖ＤＮＡ又はＲＮＡの紫外線照射による架橋化
は知られていない。
【０００３】
【課題を解決するための手段】本発明者は、水中又は無
溶媒下での、水溶性二本鎖ＤＮＡ、水溶性一本鎖ＤＮＡ
又はＲＮＡの紫外線照射による影響を検討したところ、
意外にも該二本鎖ＤＮＡ間の水不溶性の架橋体、該一本
鎖ＤＮＡ間又はＲＮＡ間の水不溶性の架橋体が生成する
ことを発見し、この発見に基づき本発明を完成した。
溶媒下での、水溶性二本鎖ＤＮＡ、水溶性一本鎖ＤＮＡ
又はＲＮＡの紫外線照射による影響を検討したところ、
意外にも該二本鎖ＤＮＡ間の水不溶性の架橋体、該一本
鎖ＤＮＡ間又はＲＮＡ間の水不溶性の架橋体が生成する
ことを発見し、この発見に基づき本発明を完成した。
【０００４】即ち、本願発明は、支持体上の水溶性ＤＮ
Ａの水溶液もしくはその液膜、又は支持体上の水溶性Ｄ
ＮＡの薄層又は支持体上の水溶性ＤＮＡの溶液の液膜の
濃縮乃至乾涸により得られた薄層に、波長が２５０〜２
７０ｎｍの範囲の紫外線を照射することによる、支持体
に固定された水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体の製造
方法に関する。
Ａの水溶液もしくはその液膜、又は支持体上の水溶性Ｄ
ＮＡの薄層又は支持体上の水溶性ＤＮＡの溶液の液膜の
濃縮乃至乾涸により得られた薄層に、波長が２５０〜２
７０ｎｍの範囲の紫外線を照射することによる、支持体
に固定された水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体の製造
方法に関する。
【０００５】又、本願発明は、上記発明の一変形とし
て、支持体例えばセルロース繊維不織布を浸漬した水溶
性ＤＮＡの水溶液に波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲の
紫外線を照射することによる、水溶性ＤＮＡの水不溶性
架橋重合体により被覆された支持体又はセルロース繊維
不織布の製造方法にも関する。
て、支持体例えばセルロース繊維不織布を浸漬した水溶
性ＤＮＡの水溶液に波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲の
紫外線を照射することによる、水溶性ＤＮＡの水不溶性
架橋重合体により被覆された支持体又はセルロース繊維
不織布の製造方法にも関する。
【０００６】又、本願発明は、上記支持体に固定された
水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体、上記支持体に固定
された水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体から例えば剥
離により支持体を除いた水不溶性架橋重合体の利用法に
も関する。
水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体、上記支持体に固定
された水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体から例えば剥
離により支持体を除いた水不溶性架橋重合体の利用法に
も関する。
【０００７】
【発明の実施の形態】水溶性ＤＮＡの例としては、一本
鎖のＤＮＡ又は二本鎖ＤＮＡ例えば魚類の精巣又は動物
の胸腺から得られるＤＮＡが挙げられる。例えばサケ、
ニシン、タラの白子（精巣）から得られるものが好まし
い。又、哺乳動物もしくは鳥類、例えばウシ、ブタ、ニ
ワトリ等の胸腺から得られるものが好ましい。他の水溶
性ＤＮＡの例としては、合成ＤＮＡ特に（ｄＡ）−（ｄ
Ｔ）の塩基対を持つＤＮＡ配列、特に例えばｐｏｌｙ
（ｄＡ）−ｐｏｌｙ（ｄＴ）型の配列を持つＤＮＡであ
ってもよい。ＲＮＡの例としては、酵母から得られるＲ
ＮＡが好ましい。
鎖のＤＮＡ又は二本鎖ＤＮＡ例えば魚類の精巣又は動物
の胸腺から得られるＤＮＡが挙げられる。例えばサケ、
ニシン、タラの白子（精巣）から得られるものが好まし
い。又、哺乳動物もしくは鳥類、例えばウシ、ブタ、ニ
ワトリ等の胸腺から得られるものが好ましい。他の水溶
性ＤＮＡの例としては、合成ＤＮＡ特に（ｄＡ）−（ｄ
Ｔ）の塩基対を持つＤＮＡ配列、特に例えばｐｏｌｙ
（ｄＡ）−ｐｏｌｙ（ｄＴ）型の配列を持つＤＮＡであ
ってもよい。ＲＮＡの例としては、酵母から得られるＲ
ＮＡが好ましい。
【０００８】支持体は、生成した水溶性ＤＮＡの水不溶
性架橋体を膜状、線状又は点状に支持できる能力のある
ものであればよい。支持体の形状と材質は、多孔性であ
ってもよい、板状、球状例えば直径０．１ｍｍないし１
０ｍｍの球状又は繊維状の、合成樹脂、ガラス、セラミ
ックス又は金属；天然繊維例えばセルロース又はパル
プ；或いは天然繊維例えばセルロース又はパルプを化学
的に加工したものである。
性架橋体を膜状、線状又は点状に支持できる能力のある
ものであればよい。支持体の形状と材質は、多孔性であ
ってもよい、板状、球状例えば直径０．１ｍｍないし１
０ｍｍの球状又は繊維状の、合成樹脂、ガラス、セラミ
ックス又は金属；天然繊維例えばセルロース又はパル
プ；或いは天然繊維例えばセルロース又はパルプを化学
的に加工したものである。
【０００９】支持体の材質としては、ＤＮＡ架橋体との
結合力の乏しい材質例えばガラス、合成樹脂例えばポリ
エチレン又はポリプロピレン又は金属、乃至は、結合力
の強い表面を持つ、表面処理済のガラス、表面処理して
あってもよい合成樹脂又は表面処理してあってもよい金
属、又はセルロースであってもよい。何れの場合にも、
照射される紫外線により分解され難いものが好ましい。
そして上記水不溶性架橋体と結合力の弱い支持体は生成
したＤＮＡ架橋体例えばフィルムの該支持体からの剥離
が容易であってもよい。この場合の支持体は架橋体を剥
離しない場合は、該架橋体の物理的補強材料にもなり得
る。更に上記水不溶性架橋体と結合力の強い支持体は、
該架橋体、例えばフィルム状の架橋体の物理的補強材料
にもなり得る。
結合力の乏しい材質例えばガラス、合成樹脂例えばポリ
エチレン又はポリプロピレン又は金属、乃至は、結合力
の強い表面を持つ、表面処理済のガラス、表面処理して
あってもよい合成樹脂又は表面処理してあってもよい金
属、又はセルロースであってもよい。何れの場合にも、
照射される紫外線により分解され難いものが好ましい。
そして上記水不溶性架橋体と結合力の弱い支持体は生成
したＤＮＡ架橋体例えばフィルムの該支持体からの剥離
が容易であってもよい。この場合の支持体は架橋体を剥
離しない場合は、該架橋体の物理的補強材料にもなり得
る。更に上記水不溶性架橋体と結合力の強い支持体は、
該架橋体、例えばフィルム状の架橋体の物理的補強材料
にもなり得る。
【００１０】ガラスとセラミックスは表面を化学的処理
してあるものであってもよい。例えば、表面処理をして
ない市販のボーラスガラスビーズ（粒径＝約０．５〜
１．２ｍｍ、平均して約１ｍｍ）の場合は、１０ｍｇ／
ｍＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬する。表面処理の場合
は、例えばポーラスガラスビーズを約７０℃の濃Ｈ2Ｓ
Ｏ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2 ＝７：３の溶液に３０分間浸漬し
て、表面に水酸基を導入した後、１０ｍｇ／ｍＬのＤＮ
Ａ溶液に２時間浸漬する。同様にして、ポーラスガラス
ビーズを約７０℃の濃Ｈ2ＳＯ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2＝７：
３の溶液に３０分間浸漬、次いで密封容器内に３−アミ
ノプロピルニトリルトリエトキシシランと共に約２時間
放置して、ビーズの表面に有機アミノ基を導入した後、
１０ｍｇ／ｍＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬する。
してあるものであってもよい。例えば、表面処理をして
ない市販のボーラスガラスビーズ（粒径＝約０．５〜
１．２ｍｍ、平均して約１ｍｍ）の場合は、１０ｍｇ／
ｍＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬する。表面処理の場合
は、例えばポーラスガラスビーズを約７０℃の濃Ｈ2Ｓ
Ｏ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2 ＝７：３の溶液に３０分間浸漬し
て、表面に水酸基を導入した後、１０ｍｇ／ｍＬのＤＮ
Ａ溶液に２時間浸漬する。同様にして、ポーラスガラス
ビーズを約７０℃の濃Ｈ2ＳＯ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2＝７：
３の溶液に３０分間浸漬、次いで密封容器内に３−アミ
ノプロピルニトリルトリエトキシシランと共に約２時間
放置して、ビーズの表面に有機アミノ基を導入した後、
１０ｍｇ／ｍＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬する。
【００１１】支持体上の水溶性ＤＮＡの薄層は通常は、
支持体上の水溶性ＤＮＡの溶液の液膜を濃縮乃至乾涸す
ることにより生成する。この際に使用される溶液の溶媒
は、水、水性メタノール又は水性エタノールであり、風
乾の容易なものが好ましい。特に水が好ましい。水溶性
ＤＮＡの薄層の厚みは通常０．０１〜１ｍｍであるが、
この範囲外の厚みであってもよい。
支持体上の水溶性ＤＮＡの溶液の液膜を濃縮乃至乾涸す
ることにより生成する。この際に使用される溶液の溶媒
は、水、水性メタノール又は水性エタノールであり、風
乾の容易なものが好ましい。特に水が好ましい。水溶性
ＤＮＡの薄層の厚みは通常０．０１〜１ｍｍであるが、
この範囲外の厚みであってもよい。
【００１２】水溶性ＤＮＡの水溶液の濃度は、該水溶液
ＤＮＡの飽和溶液の濃度以下であればよい。例えば、溶
解処理のし易い濃度であるＤＮＡ１０ｍｇ／水１ｍＬ程
度である。水溶性ＤＮＡの水溶液の液膜の厚みは通常
０．１〜２０ｍｍ、好ましくは０．１〜１０ｍｍである
が、この範囲外の厚みであってもよい。
ＤＮＡの飽和溶液の濃度以下であればよい。例えば、溶
解処理のし易い濃度であるＤＮＡ１０ｍｇ／水１ｍＬ程
度である。水溶性ＤＮＡの水溶液の液膜の厚みは通常
０．１〜２０ｍｍ、好ましくは０．１〜１０ｍｍである
が、この範囲外の厚みであってもよい。
【００１３】照射する紫外線の波長は２５０〜２７０ｎ
ｍの範囲にあるものが好ましい。必要な照射時間は、照
射される紫外線の照射強度に反比例する。５６００μＷ
／ｃｍ2 （照射距離は約７．５ｃｍである）の場合は、
概ね１２時間以上の照射時間である。照射時間が不十分
な場合は、水不溶性ＤＮＡの収率が低下する。従って、
生成したフィルム中の水溶液ＤＮＡ量又は水不溶性ＤＮ
Ａ量を追跡して、収率の高い照射強度と照射時間を選択
するのが好ましい。例えばサケの精巣から得られたＤＮ
Ａ膜（ＤＮＡ１０ｍｇと水２０ｍＬからの溶液を乾涸し
た。膜面積は約１０ｃｍ2 ）を強度５６００μＷ／ｃｍ
2 （照射距離は約７．５ｃｍである）の２６０ｎｍ紫外
線で照射すると、１時間照射後に生成したフィルム水に
より約５０％のＤＮＡが溶質するが、１２時間照射後に
は約２５％のＤＮＡが溶出する。又、薄膜の厚みは、照
射された紫外線がＤＮＡ膜の深部に到達できる程度の厚
みであることが好ましい。普通は、薄膜の厚みは、０．
０１〜１ｍｍ程度である。 紫外線の照射温度は、普通
は０〜５０℃以下、室温例えば１０〜３５℃が好まし
い。
ｍの範囲にあるものが好ましい。必要な照射時間は、照
射される紫外線の照射強度に反比例する。５６００μＷ
／ｃｍ2 （照射距離は約７．５ｃｍである）の場合は、
概ね１２時間以上の照射時間である。照射時間が不十分
な場合は、水不溶性ＤＮＡの収率が低下する。従って、
生成したフィルム中の水溶液ＤＮＡ量又は水不溶性ＤＮ
Ａ量を追跡して、収率の高い照射強度と照射時間を選択
するのが好ましい。例えばサケの精巣から得られたＤＮ
Ａ膜（ＤＮＡ１０ｍｇと水２０ｍＬからの溶液を乾涸し
た。膜面積は約１０ｃｍ2 ）を強度５６００μＷ／ｃｍ
2 （照射距離は約７．５ｃｍである）の２６０ｎｍ紫外
線で照射すると、１時間照射後に生成したフィルム水に
より約５０％のＤＮＡが溶質するが、１２時間照射後に
は約２５％のＤＮＡが溶出する。又、薄膜の厚みは、照
射された紫外線がＤＮＡ膜の深部に到達できる程度の厚
みであることが好ましい。普通は、薄膜の厚みは、０．
０１〜１ｍｍ程度である。 紫外線の照射温度は、普通
は０〜５０℃以下、室温例えば１０〜３５℃が好まし
い。
【００１４】紫外線照射後、得られたフィルムから水可
溶性のＤＮＡを水により溶出した後得れた水不溶性ＤＮ
Ａフィルムは、例えば５０日の長期にわたって常温の水
中に浸漬しても水に不溶性であるので、常温の水中では
安定且つ不溶性である。水不溶性とは、８０℃以下の水
に容易に溶解しないと定義する。上記水不溶性架橋体
は、１００℃の沸騰水中では１５分間で溶解した。この
溶解物は冷却しても水中への析出を認めることは出来な
かった。この溶解した試料を水に希釈して、濃度０．１
μｇ／１０μＬの溶液にした後、アガロースゲル電気泳
動法（和科盛（製）、移動相 ＴＡＥ ｂｕｆｆｅｒ，
分析温度３０℃、移動距離 １２ｃｍ）で分析すると非
常に分子量の高い超巨大ＤＮＡ化合物であることを示し
ていた。
溶性のＤＮＡを水により溶出した後得れた水不溶性ＤＮ
Ａフィルムは、例えば５０日の長期にわたって常温の水
中に浸漬しても水に不溶性であるので、常温の水中では
安定且つ不溶性である。水不溶性とは、８０℃以下の水
に容易に溶解しないと定義する。上記水不溶性架橋体
は、１００℃の沸騰水中では１５分間で溶解した。この
溶解物は冷却しても水中への析出を認めることは出来な
かった。この溶解した試料を水に希釈して、濃度０．１
μｇ／１０μＬの溶液にした後、アガロースゲル電気泳
動法（和科盛（製）、移動相 ＴＡＥ ｂｕｆｆｅｒ，
分析温度３０℃、移動距離 １２ｃｍ）で分析すると非
常に分子量の高い超巨大ＤＮＡ化合物であることを示し
ていた。
【００１５】常温（２５℃）における水不溶性と測定で
きない程度の高い分子量を合わせて考察するとこの水不
溶性ＤＮＡは、多数の二本鎖ＤＮＡ間の架橋反応により
生成したＤＮＡ架橋重合体であると推定される。
きない程度の高い分子量を合わせて考察するとこの水不
溶性ＤＮＡは、多数の二本鎖ＤＮＡ間の架橋反応により
生成したＤＮＡ架橋重合体であると推定される。
【００１６】得られた（水溶性ＤＮＡの）水不溶性架橋
体のフィルムは、水溶性ＤＮＡがサケの精巣由来の場合
は、ＩＲ（ＫＢｒ錠剤法）スペクトルとＵＶ−ＶＳ領域
の吸光スペクトルにおいて、使用された原料の水溶性Ｄ
ＮＡのそれと問題にできる程度顕著な差異を認めること
ができなかった。現在時点ては、どの部分で架橋化して
いるのか不明である。
体のフィルムは、水溶性ＤＮＡがサケの精巣由来の場合
は、ＩＲ（ＫＢｒ錠剤法）スペクトルとＵＶ−ＶＳ領域
の吸光スペクトルにおいて、使用された原料の水溶性Ｄ
ＮＡのそれと問題にできる程度顕著な差異を認めること
ができなかった。現在時点ては、どの部分で架橋化して
いるのか不明である。
【００１７】しかるに、Ｐｏｌｙ（ｄＡ）−Ｐｏｌｙ
（ｄＴ）( １％アガロースゲルを用いる電気泳動を行っ
た。その結果、２．７，４．３，５．０と６．０（ｋｂ
ｐ）付近にバンドを示した）の薄膜に２５４ｎｍの紫外
線を３０分間照射したところ、水不溶性のフィルム（上
記の１％アガロースゲルを用いる電気泳動による分析で
は、水に不溶性のためなのだろう、バンドを示さなかっ
た）を生じた。この水不溶性フィルムのＩＲスペクトル
（フィルム２０μｇ＋ＫＢｒ数百ｇから錠剤を測定）
は、下記の波長領域において、紫外線照射前の原料との
吸収の違いを示した。 (1)1680 cm-1近傍のチミンの二重結合に由来するνCHの
吸収(ν：伸縮振動)が消えた。 (2)1450 cm -1 付近に大きな変化を示した。 (3)968 cm-1: デオキシリボースのνC-C の消失 (4)800 cm-1: νP-O の変化 (5)1230,1090 cm-1: 非対象νPO2 結論：1680 cm -1近傍吸収の消失はチミンダイマーの形
成を示している。
（ｄＴ）( １％アガロースゲルを用いる電気泳動を行っ
た。その結果、２．７，４．３，５．０と６．０（ｋｂ
ｐ）付近にバンドを示した）の薄膜に２５４ｎｍの紫外
線を３０分間照射したところ、水不溶性のフィルム（上
記の１％アガロースゲルを用いる電気泳動による分析で
は、水に不溶性のためなのだろう、バンドを示さなかっ
た）を生じた。この水不溶性フィルムのＩＲスペクトル
（フィルム２０μｇ＋ＫＢｒ数百ｇから錠剤を測定）
は、下記の波長領域において、紫外線照射前の原料との
吸収の違いを示した。 (1)1680 cm-1近傍のチミンの二重結合に由来するνCHの
吸収(ν：伸縮振動)が消えた。 (2)1450 cm -1 付近に大きな変化を示した。 (3)968 cm-1: デオキシリボースのνC-C の消失 (4)800 cm-1: νP-O の変化 (5)1230,1090 cm-1: 非対象νPO2 結論：1680 cm -1近傍吸収の消失はチミンダイマーの形
成を示している。
【００１８】上記のＰｏｌｙ（ｄＡ）−Ｐｏｌｙ（ｄ
Ｔ）の分析結果から考察すると、サケ由来のＤＮＡにお
いては（ｄＡ）−（ｄＴ）対がランダムに存在している
ため、架橋のチャンスは少なく、水不溶化してもＩＲス
ペクトルでは顕著な差が観察されなかったことによると
思われる。なお、現時点で得られたデータのみからは、
チミンダイマーの形成だけが不溶化の原因であるとは断
定できない。
Ｔ）の分析結果から考察すると、サケ由来のＤＮＡにお
いては（ｄＡ）−（ｄＴ）対がランダムに存在している
ため、架橋のチャンスは少なく、水不溶化してもＩＲス
ペクトルでは顕著な差が観察されなかったことによると
思われる。なお、現時点で得られたデータのみからは、
チミンダイマーの形成だけが不溶化の原因であるとは断
定できない。
【００１９】本発明者は、このようにして得られた水不
溶性架橋体のフィルムは、ＤＮＡへの挿入剤(intercala
ting agent) である環境ホルモン等の化合物、例えば臭
化エチジウム（４ｐｐｍ）；ベンゾ［ａ］ピレン（１０
ｐｐｂ）；ジベンゾ−ｐ−ジオキサン（１０ｐｐｂ）；
ジベンゾフラン（１０ｐｐｂ）及びビフェニル（１０ｐ
ｐｂ）の極めて低い濃度〔各化合物の後に記述した（）
中の数値〕の水溶液からこれら挿入剤を極めて高い収率
で吸着、これらの水溶液から除去することを見出した。
この効果により、生体内外の又は食用の液体又は固体又
は環境内の液体又は気体中に存在する極めて低い濃度の
ＤＮＡへの挿入剤を除去することが可能になる。
溶性架橋体のフィルムは、ＤＮＡへの挿入剤(intercala
ting agent) である環境ホルモン等の化合物、例えば臭
化エチジウム（４ｐｐｍ）；ベンゾ［ａ］ピレン（１０
ｐｐｂ）；ジベンゾ−ｐ−ジオキサン（１０ｐｐｂ）；
ジベンゾフラン（１０ｐｐｂ）及びビフェニル（１０ｐ
ｐｂ）の極めて低い濃度〔各化合物の後に記述した（）
中の数値〕の水溶液からこれら挿入剤を極めて高い収率
で吸着、これらの水溶液から除去することを見出した。
この効果により、生体内外の又は食用の液体又は固体又
は環境内の液体又は気体中に存在する極めて低い濃度の
ＤＮＡへの挿入剤を除去することが可能になる。
【００２０】従って、支持体の材質と形状を適宜選択す
ることにより、挿入剤の除去をするのに有用である。挿
入剤を集積及び除去するための濾過材又は吸着剤、例え
ば、タバコのフィルター、空気浄化器の気体濾過材、飲
料水、食用水、飲料食品例えば牛乳、母乳の液体濾過
材、動物特にヒトを含む哺乳動物の消化管内の挿入剤例
えばの吸着・清浄剤として有用である。
ることにより、挿入剤の除去をするのに有用である。挿
入剤を集積及び除去するための濾過材又は吸着剤、例え
ば、タバコのフィルター、空気浄化器の気体濾過材、飲
料水、食用水、飲料食品例えば牛乳、母乳の液体濾過
材、動物特にヒトを含む哺乳動物の消化管内の挿入剤例
えばの吸着・清浄剤として有用である。
【００２１】上述のように、支持体はガラスとセラミッ
クスは表面を化学的処理してあるものであってもよい。
例えば、表面処理をしてない市販のボーラスガラスビー
ズ（粒径＝約０．５〜１．２ｍｍ、平均して約１ｍｍ）
の場合は、１０ｍｇ／ｍＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬、
乾燥後、紫外線を２時間照射する。紫外線照射に際して
は、１５分毎に、ポーラスガラスをかき混ぜた。表面処
理の場合は、例えばポーラスガラスビーズを約７０℃の
濃Ｈ2ＳＯ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2 ＝７：３の溶液に３０分間
浸漬して、表面に水酸基を導入した後、１０ｍｇ／ｍＬ
のＤＮＡ溶液に２時間浸漬、乾燥後、上記と同様に紫外
線照射する。同様にして、ポーラスガラスビーズを約７
０℃の濃Ｈ2ＳＯ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2＝７：３の溶液に３
０分間浸漬、次いで密封容器内に３−アミノプロピルニ
トリルトリエトキシシランと共に約２時間放置して、ビ
ーズの表面に有機アミノ基を導入した後、１０ｍｇ／ｍ
ＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬、乾燥後、上記と同様に紫
外線照射する。これらのポーラスガラスビーズの表面へ
のＤＮＡ固定量は、下記の通りであった。市販されてい
るポーラスガラスビーズ：４−６ｍｇ／ビーズ１ｇ；表
面に水酸基があるポーラスガラスビーズ：約３ｍｇ／ビ
ーズ１ｇ；表面に有機アミノ基があるポーラスガラスビ
ーズ：５−７ｍｇ／ビーズ１ｇ。このように固定された
ＤＮＡ架橋体は、上記の水不溶性架橋体のフィルムと同
様の作用を、ＤＮＡへの挿入剤に対して持つ。
クスは表面を化学的処理してあるものであってもよい。
例えば、表面処理をしてない市販のボーラスガラスビー
ズ（粒径＝約０．５〜１．２ｍｍ、平均して約１ｍｍ）
の場合は、１０ｍｇ／ｍＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬、
乾燥後、紫外線を２時間照射する。紫外線照射に際して
は、１５分毎に、ポーラスガラスをかき混ぜた。表面処
理の場合は、例えばポーラスガラスビーズを約７０℃の
濃Ｈ2ＳＯ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2 ＝７：３の溶液に３０分間
浸漬して、表面に水酸基を導入した後、１０ｍｇ／ｍＬ
のＤＮＡ溶液に２時間浸漬、乾燥後、上記と同様に紫外
線照射する。同様にして、ポーラスガラスビーズを約７
０℃の濃Ｈ2ＳＯ4 ：３０％Ｈ2Ｏ2＝７：３の溶液に３
０分間浸漬、次いで密封容器内に３−アミノプロピルニ
トリルトリエトキシシランと共に約２時間放置して、ビ
ーズの表面に有機アミノ基を導入した後、１０ｍｇ／ｍ
ＬのＤＮＡ溶液に２時間浸漬、乾燥後、上記と同様に紫
外線照射する。これらのポーラスガラスビーズの表面へ
のＤＮＡ固定量は、下記の通りであった。市販されてい
るポーラスガラスビーズ：４−６ｍｇ／ビーズ１ｇ；表
面に水酸基があるポーラスガラスビーズ：約３ｍｇ／ビ
ーズ１ｇ；表面に有機アミノ基があるポーラスガラスビ
ーズ：５−７ｍｇ／ビーズ１ｇ。このように固定された
ＤＮＡ架橋体は、上記の水不溶性架橋体のフィルムと同
様の作用を、ＤＮＡへの挿入剤に対して持つ。
【００２２】本発明の製造方法を、水溶液ＤＮＡを含有
する水溶液に浸漬したセルロース繊維不織布に応用し
た。即ち、上記浸漬液へ、２５０〜２７０ｎｍの範囲の
紫外線を照射した結果、ＤＮＡの水不溶性架橋体がセル
ロース上に固定化されることを見出した。このセルロー
ス繊維不織布は、水不溶性架橋体の物理的補強剤として
機能している。このものは、上記の挿入剤又は環境ホル
モン型化合物を吸着できる。また、セルロース繊維不織
布は、硫酸銀、硝酸銀のような水溶性銀塩例えば硝酸銀
の水溶液からＡｇ+ イオンを水で洗浄除去できない程度
に固定的に吸着した。そして、その含Ａｇ+ 不織布がEs
chｅrichia coli とStaphylococcus aureus 等の細菌に
顕著な生育抑制作用を示している。この結果は、殺生物
作用のある金属イオン例えばＡｇ+ の他に、Ｈｇ+ 、Ｈ
ｇ2+、Ｃｕ+ 、Ｃｕ2+等の金属イオンでも同様に使用で
きる可能性を示している。
する水溶液に浸漬したセルロース繊維不織布に応用し
た。即ち、上記浸漬液へ、２５０〜２７０ｎｍの範囲の
紫外線を照射した結果、ＤＮＡの水不溶性架橋体がセル
ロース上に固定化されることを見出した。このセルロー
ス繊維不織布は、水不溶性架橋体の物理的補強剤として
機能している。このものは、上記の挿入剤又は環境ホル
モン型化合物を吸着できる。また、セルロース繊維不織
布は、硫酸銀、硝酸銀のような水溶性銀塩例えば硝酸銀
の水溶液からＡｇ+ イオンを水で洗浄除去できない程度
に固定的に吸着した。そして、その含Ａｇ+ 不織布がEs
chｅrichia coli とStaphylococcus aureus 等の細菌に
顕著な生育抑制作用を示している。この結果は、殺生物
作用のある金属イオン例えばＡｇ+ の他に、Ｈｇ+ 、Ｈ
ｇ2+、Ｃｕ+ 、Ｃｕ2+等の金属イオンでも同様に使用で
きる可能性を示している。
【００２３】上記のセルロース繊維不織布に換えて、通
常のセルロース繊維織物、例えばガーゼのような形態の
ものも使用できる。セルロース繊維間の間隔を調節する
ことにより不織布又は織物の目の大きさを通液又は通気
のために自由に調節することができる。同様にして上記
のセルロース繊維不織布をセルロース紙に換えることも
可能である。この場合は、所望の大きさの孔径を持つセ
ルロース紙であってもよい。又、上記セルロースはセル
ロース誘導体、例えばメチルセルロース、エチルセルロ
ース、２−ヒドロキシエチルセルロース又はヒドロキシ
プロピルセルロースであってもよい。
常のセルロース繊維織物、例えばガーゼのような形態の
ものも使用できる。セルロース繊維間の間隔を調節する
ことにより不織布又は織物の目の大きさを通液又は通気
のために自由に調節することができる。同様にして上記
のセルロース繊維不織布をセルロース紙に換えることも
可能である。この場合は、所望の大きさの孔径を持つセ
ルロース紙であってもよい。又、上記セルロースはセル
ロース誘導体、例えばメチルセルロース、エチルセルロ
ース、２−ヒドロキシエチルセルロース又はヒドロキシ
プロピルセルロースであってもよい。
【００２４】又、上記の水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋体
は、ＤＮＡ構造を維持したＤＮＡの架橋体であるので、
ＤＮＡと同様の金属との結合力を持つ。従って、Ｃ
ｄ2+、クロムイオン例えばＣｒ3+、Ｈｇ2+、マンガンイ
オン例えばＭｎ2+等の金属イオンを吸着できる環境浄化
材料としての機能もある。これは、上記の水溶性ＤＮＡ
の水不溶性架橋体のフィルムと該架橋体により被覆され
た支持体例えばセルロース繊維不織布についても言え
る。
は、ＤＮＡ構造を維持したＤＮＡの架橋体であるので、
ＤＮＡと同様の金属との結合力を持つ。従って、Ｃ
ｄ2+、クロムイオン例えばＣｒ3+、Ｈｇ2+、マンガンイ
オン例えばＭｎ2+等の金属イオンを吸着できる環境浄化
材料としての機能もある。これは、上記の水溶性ＤＮＡ
の水不溶性架橋体のフィルムと該架橋体により被覆され
た支持体例えばセルロース繊維不織布についても言え
る。
【００２５】又、本発明の水不溶性架橋体は、初期的試
験では或る種（マイクロコッカル・ヌクレアーゼ（Ｓｉ
ｇｍａ））のヌクレアーゼにより加水分解されないこと
が証明されている。これはこのものが普通のＤＮＡと異
なり、ヒトを含む哺乳動物、鳥類の消化器管内で分解さ
れないことを示唆しているので、消化管内にある上記の
挿入剤又は金属イオン類を集積・除去する毒物除去即ち
解毒の作用を持つ医薬又は獣医薬又は食品として機能す
る。
験では或る種（マイクロコッカル・ヌクレアーゼ（Ｓｉ
ｇｍａ））のヌクレアーゼにより加水分解されないこと
が証明されている。これはこのものが普通のＤＮＡと異
なり、ヒトを含む哺乳動物、鳥類の消化器管内で分解さ
れないことを示唆しているので、消化管内にある上記の
挿入剤又は金属イオン類を集積・除去する毒物除去即ち
解毒の作用を持つ医薬又は獣医薬又は食品として機能す
る。
【００２６】なお、水溶性二本鎖ＤＮＡを水溶性一本鎖
ＤＮＡ又はＲＮＡに換えても、２５０〜２７０ｎｍの範
囲の紫外線を照射の結果、水不溶性架橋体が形成される
ことを確認している。この一本鎖ＤＮＡ又はＲＮＡの水
不溶性架橋体も、上記の金属に対して二本鎖ＤＮＡ架橋
体と同様の作用を持つ。又、支持体上の一本鎖と二本鎖
のＤＮＡの混合物に２５０〜２７０ｎｍの範囲の紫外線
を照射して架橋体を形成することも、本願発明の対象で
ある。
ＤＮＡ又はＲＮＡに換えても、２５０〜２７０ｎｍの範
囲の紫外線を照射の結果、水不溶性架橋体が形成される
ことを確認している。この一本鎖ＤＮＡ又はＲＮＡの水
不溶性架橋体も、上記の金属に対して二本鎖ＤＮＡ架橋
体と同様の作用を持つ。又、支持体上の一本鎖と二本鎖
のＤＮＡの混合物に２５０〜２７０ｎｍの範囲の紫外線
を照射して架橋体を形成することも、本願発明の対象で
ある。
【００２７】
【実施例】本願発明を下記の実施例により更に具体的に
説明する。実施例１．水溶性ＤＮＡの架橋重合体の合成 サケの白子から得られた二本鎖ＤＮＡ（分子量，５×１
０6 ）１０ｍｇを水１ｍＬに溶解し、得られたＤＮＡ溶
液を直径３ｃｍのシャーレに注入し、室温で風乾した。
次いで、紫外線ランプ（Ｒ−５２Ｇ型、５６００μＷ／
ｃｍ2 、ウルトラ・バイオレット社製 ）を使用して２
５４ｎｍの紫外線（照射距離は約７．５ｃｍであっ
た。）を１〜１２時間照射した。シャーレに水を注入し
て、シャーレ底部に生成した水不溶性のＤＮＡフィルム
をシャーレ底部から剥離した。
説明する。実施例１．水溶性ＤＮＡの架橋重合体の合成 サケの白子から得られた二本鎖ＤＮＡ（分子量，５×１
０6 ）１０ｍｇを水１ｍＬに溶解し、得られたＤＮＡ溶
液を直径３ｃｍのシャーレに注入し、室温で風乾した。
次いで、紫外線ランプ（Ｒ−５２Ｇ型、５６００μＷ／
ｃｍ2 、ウルトラ・バイオレット社製 ）を使用して２
５４ｎｍの紫外線（照射距離は約７．５ｃｍであっ
た。）を１〜１２時間照射した。シャーレに水を注入し
て、シャーレ底部に生成した水不溶性のＤＮＡフィルム
をシャーレ底部から剥離した。
【００２８】この水不溶性ＤＮＡフィルムは、５０日の
長期にわたって水中に浸漬しても水に不溶性であるの
で、水中では安定であった。この紫外線照射により得ら
れた水不溶性のＤＮＡは、１００℃の沸騰水中では約１
５分間で溶解した。この溶解した試料を水に希釈して、
濃度０．１μｇ／１０μＬの溶液にした後、アガロース
ゲル電気泳動法（和科盛（製）、移動相 ＴＡＥ ｂｕ
ｆｆｅｒ，分析温度３０℃、移動距離 １２ｃｍ）で分
析すると、移動が認められず、非常に分子量の高い超巨
大化合物であることを示していた。なお、水不溶性ＤＮ
Ａの常温における水抽出液（反応ろ液）中にも、アガロ
ースゲル電気泳動法で移動が認められない非常に分子量
の高い化合物を混在を確認している。
長期にわたって水中に浸漬しても水に不溶性であるの
で、水中では安定であった。この紫外線照射により得ら
れた水不溶性のＤＮＡは、１００℃の沸騰水中では約１
５分間で溶解した。この溶解した試料を水に希釈して、
濃度０．１μｇ／１０μＬの溶液にした後、アガロース
ゲル電気泳動法（和科盛（製）、移動相 ＴＡＥ ｂｕ
ｆｆｅｒ，分析温度３０℃、移動距離 １２ｃｍ）で分
析すると、移動が認められず、非常に分子量の高い超巨
大化合物であることを示していた。なお、水不溶性ＤＮ
Ａの常温における水抽出液（反応ろ液）中にも、アガロ
ースゲル電気泳動法で移動が認められない非常に分子量
の高い化合物を混在を確認している。
【００２９】常温（２５℃）における水不溶性と測定で
きない程度の高い分子量を合わせて考察するとこの水不
溶性ＤＮＡは、多数のＤＮＡの架橋反応により生成した
ＤＮＡ架橋重合体である。
きない程度の高い分子量を合わせて考察するとこの水不
溶性ＤＮＡは、多数のＤＮＡの架橋反応により生成した
ＤＮＡ架橋重合体である。
【００３０】実施例２．上記の水不溶性ＤＮＡフィルム
(フィルム状のＤＮＡ架橋重合体) による挿入剤（inter
calating agent)の集積及び除去 実施例１で得られた水不溶性ＤＮＡフィルム１ｍｇ（面
積約１ｃｍ2 ）を、下記の挿入剤を下記の濃度で含有す
る水１０ｍＬに浸漬し、水中の濃度をＵＶ−ＶＳ分光吸
光度により所定の経過時間に測定して、追跡した：臭化
エチジウム、４ｐｐｍ；ベンゾ［ａ］ピレン、１０ｐｐ
ｂ；ジベンゾ−ｐ−ジオキサン、１０ｐｐｂ；ジベンゾ
フラン、１０ｐｐｂ；ビフェニル、１０ｐｐｂ。例えば
臭化エチジウムの場合は、該化合物の極大吸光波長４８
０ｎｍにおける吸光度が時間経過と共に減少し、２４時
間で完全に消失した。同様のことが、他の挿入剤につい
ても観察された。
(フィルム状のＤＮＡ架橋重合体) による挿入剤（inter
calating agent)の集積及び除去 実施例１で得られた水不溶性ＤＮＡフィルム１ｍｇ（面
積約１ｃｍ2 ）を、下記の挿入剤を下記の濃度で含有す
る水１０ｍＬに浸漬し、水中の濃度をＵＶ−ＶＳ分光吸
光度により所定の経過時間に測定して、追跡した：臭化
エチジウム、４ｐｐｍ；ベンゾ［ａ］ピレン、１０ｐｐ
ｂ；ジベンゾ−ｐ−ジオキサン、１０ｐｐｂ；ジベンゾ
フラン、１０ｐｐｂ；ビフェニル、１０ｐｐｂ。例えば
臭化エチジウムの場合は、該化合物の極大吸光波長４８
０ｎｍにおける吸光度が時間経過と共に減少し、２４時
間で完全に消失した。同様のことが、他の挿入剤につい
ても観察された。
【００３１】実施例３．紫外線照射によるセルロース繊
維不織繊維上へのＤＮＡの固定化 １００ｍｇのセルロース繊維不織布（布の厚み０．１５
ｍｍ）を、実施例１で使用したＤＮＡ３ｍｇを水１ｍＬ
に溶解した溶液に含浸した。含浸した上記不織セルロー
ス繊維を風乾し、実施例１と同様にして所定時間にわた
り紫外線照射した。その後、約２０℃の水で十分に洗浄
して固定されていないＤＮＡを除去し、乾燥した。不織
セルロース繊維上に固定化されたＤＮＡの量は紫外線照
射の時間と共に概ね増加し、照射１５分後には一定値に
到達していた。不織セルロース繊維１ｇへ固定化された
ＤＮＡの最大量は約２０ｍｇであった（最大量の測定
法：１００℃、１Ｎ ＨＣｌで１ｈｒ加熱、室温に冷
後、２６０ｎｍの吸光度で測定した）。
維不織繊維上へのＤＮＡの固定化 １００ｍｇのセルロース繊維不織布（布の厚み０．１５
ｍｍ）を、実施例１で使用したＤＮＡ３ｍｇを水１ｍＬ
に溶解した溶液に含浸した。含浸した上記不織セルロー
ス繊維を風乾し、実施例１と同様にして所定時間にわた
り紫外線照射した。その後、約２０℃の水で十分に洗浄
して固定されていないＤＮＡを除去し、乾燥した。不織
セルロース繊維上に固定化されたＤＮＡの量は紫外線照
射の時間と共に概ね増加し、照射１５分後には一定値に
到達していた。不織セルロース繊維１ｇへ固定化された
ＤＮＡの最大量は約２０ｍｇであった（最大量の測定
法：１００℃、１Ｎ ＨＣｌで１ｈｒ加熱、室温に冷
後、２６０ｎｍの吸光度で測定した）。
【００３２】実施例４．実施例３で得られたＤＮＡ固定
セルロース繊維不織布へのＡｇ+ の吸着とＡｇ+ 吸着不
織布の殺菌活性 実施例３で得られたＤＮＡ固定セルロース繊維不織布３
０ｍｇ（ＤＮＡ含有量２０ｍｇ／布１ｇ）を、１０ｍＭ
の硝酸銀を含有する水溶液に１時間浸漬する。次いで、
硝酸銀水溶液からＤＮＡ固定不織布を取り出し、水で洗
浄した後、室温で乾燥する。十分に洗浄した後のＤＮＡ
固定不織布に吸着されたＡｇ+ の量は、使用される硝酸
銀の量に依存し、硝酸銀の量の量が多いと吸着量も概ね
多くなる。ＤＮＡ固定不織布１ｇへ吸着されたＡｇ+ の
量は最大量は５ｍｇであった。
セルロース繊維不織布へのＡｇ+ の吸着とＡｇ+ 吸着不
織布の殺菌活性 実施例３で得られたＤＮＡ固定セルロース繊維不織布３
０ｍｇ（ＤＮＡ含有量２０ｍｇ／布１ｇ）を、１０ｍＭ
の硝酸銀を含有する水溶液に１時間浸漬する。次いで、
硝酸銀水溶液からＤＮＡ固定不織布を取り出し、水で洗
浄した後、室温で乾燥する。十分に洗浄した後のＤＮＡ
固定不織布に吸着されたＡｇ+ の量は、使用される硝酸
銀の量に依存し、硝酸銀の量の量が多いと吸着量も概ね
多くなる。ＤＮＡ固定不織布１ｇへ吸着されたＡｇ+ の
量は最大量は５ｍｇであった。
【００３３】Ａｇ+ 含有−ＤＮＡ固定不織布は、Eschｅ
richia coli とStaphylococcus aureus 等の細菌に対し
て顕著な生長阻害性を示した。この布は、抗菌材料とし
て広く使用され得る。
richia coli とStaphylococcus aureus 等の細菌に対し
て顕著な生長阻害性を示した。この布は、抗菌材料とし
て広く使用され得る。
【００３４】
【発明の効果】支持体上の水溶性ＤＮＡもしくは水溶性
ＲＮＡの薄層又は水溶性ＤＮＡもしく水溶性ＲＮＡの水
溶液又はその液膜に、波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲
の紫外線を照射すると、該ＤＮＡもしくはＲＮＡは水に
不溶性の超巨大分子の架橋体に変化する。同様にして、
例えばセルロース繊維不織布を浸漬した水溶性ＤＮＡの
水溶液に波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲の紫外線を照
射することによる、該ＤＮＡの水不溶性架橋重合体によ
り被覆されたセルロース繊維不織布が形成される。更
に、同様にして、水溶性ＤＮＡにより被覆されたガラス
ピーズに同様の紫外線を照射すると水不溶性のＤＮＡ架
橋重合体が表面に固定された。このＤＮＡが二本鎖ＤＮ
Ａである場合の架橋体はＤＮＡへの挿入剤またはＤＮＡ
への挿入剤である環境ホルモン類を水中又は気体中の極
めて低い濃度の状態でも極めて収率高く吸着する。同様
に有毒金属例えばＨｇイオンも水に対して固定的に吸着
する。従って、この架橋体は、環境ホルモンと有害金属
を集積・除去する環境浄化材料として有用である。具体
的には、生物体内外の挿入剤を集積・除去するための、
空気、水、飲料水、飲料食品の濾過材、又はヒトを含む
哺乳動物の消化管内の清浄剤即ち医薬、獣医薬または食
品に含まれる有効成分として使用することが可能であ
る。一本鎖のＤＮＡ又はＲＮＡの架橋体は、有害金属を
固定するので環境浄化材として有用である。
ＲＮＡの薄層又は水溶性ＤＮＡもしく水溶性ＲＮＡの水
溶液又はその液膜に、波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲
の紫外線を照射すると、該ＤＮＡもしくはＲＮＡは水に
不溶性の超巨大分子の架橋体に変化する。同様にして、
例えばセルロース繊維不織布を浸漬した水溶性ＤＮＡの
水溶液に波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲の紫外線を照
射することによる、該ＤＮＡの水不溶性架橋重合体によ
り被覆されたセルロース繊維不織布が形成される。更
に、同様にして、水溶性ＤＮＡにより被覆されたガラス
ピーズに同様の紫外線を照射すると水不溶性のＤＮＡ架
橋重合体が表面に固定された。このＤＮＡが二本鎖ＤＮ
Ａである場合の架橋体はＤＮＡへの挿入剤またはＤＮＡ
への挿入剤である環境ホルモン類を水中又は気体中の極
めて低い濃度の状態でも極めて収率高く吸着する。同様
に有毒金属例えばＨｇイオンも水に対して固定的に吸着
する。従って、この架橋体は、環境ホルモンと有害金属
を集積・除去する環境浄化材料として有用である。具体
的には、生物体内外の挿入剤を集積・除去するための、
空気、水、飲料水、飲料食品の濾過材、又はヒトを含む
哺乳動物の消化管内の清浄剤即ち医薬、獣医薬または食
品に含まれる有効成分として使用することが可能であ
る。一本鎖のＤＮＡ又はＲＮＡの架橋体は、有害金属を
固定するので環境浄化材として有用である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｂ０１Ｄ 39/14 Ｂ０１Ｄ 39/14 Ｂ Ｃ０８Ｈ 5/00 Ｃ０８Ｈ 5/00 Ｆターム(参考） 4B018 MD44 ME08 ME14 MF10 4B021 MC01 MK01 MK08 MK28 MP02 MP10 4C057 BB02 BB05 DD01 MM04 4C086 AA01 AA04 EA16 FA10 MA01 NA14 ZA66 4D019 AA01 AA03 BA02 BA04 BA05 BA12 BA13 BB01 BB03 BC05 BC06 CB06
Claims (10)
- 【請求項１】支持体上の水溶性ＤＮＡの水溶液もしくは
その液膜、又は支持体上の水溶性ＤＮＡの薄層又は支持
体上の水溶性ＤＮＡの溶液の液膜の濃縮乃至乾涸により
得られた薄層に、波長が２５０〜２７０ｎｍの範囲の紫
外線を照射することによる、支持体に固定された水溶性
ＤＮＡの水不溶性架橋重合体の製造方法。 - 【請求項２】該ＤＮＡの水溶液の液膜の厚みが０．０１
ｍｍ〜１０ｍｍであるか又は該ＤＮＡの薄層の厚みが
０．１〜１ｍｍである請求項１記載の支持体に固定され
た水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体の製造方法。 - 【請求項３】該ＤＮＡが魚類の白子（精巣）又は哺乳動
物もしくは鳥類の胸腺から得られるＤＮＡである請求項
１又は２の何れかに記載の支持体に固定された水溶性Ｄ
ＮＡの水不溶性架橋重合体の製造方法。 - 【請求項４】支持体が、多孔性であっても良い板状、球
状又は繊維状の合成樹脂、ガラス、セラミックスもしく
は金属、又は化学的加工がしてあってもよい天然繊維で
ある請求項１ないし３の何れかに記載の支持体に固定さ
れた水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体の製造方法。 - 【請求項５】請求項１ないし４の何れかに記載の製造方
法により得られる支持体に固定された該ＤＮＡの水不溶
性架橋重合体。 - 【請求項６】請求項５記載の支持体に固定された水溶性
ＤＮＡの水不溶性架橋重合体又は該支持体から剥離した
水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体を含有する、食品、
獣医薬品又は医薬品。 - 【請求項７】請求項５記載の支持体に固定された水溶性
ＤＮＡの水不溶性架橋重合体又は該支持体から剥離した
水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体に、ＤＮＡへの挿入
剤を含む液体又は気体を接触させることによる、該液体
又は気体中の該ＤＮＡへの挿入剤を除去する方法。 - 【請求項８】請求項５記載の支持体に固定された水溶性
ＤＮＡの水不溶性架橋重合体又は該重合体の支持体から
剥離した水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重合体に、銀水溶
液を接触させることによる支持体に固定された水溶性Ｄ
ＮＡの殺菌性のある含銀水不溶性架橋重合体又は水溶性
ＤＮＡの殺菌性のある含銀水不溶性架橋重合体。 - 【請求項９】支持体上の水溶性ＤＮＡの水溶液が、支持
体を浸漬した水溶性ＤＮＡの水溶液である請求項１ない
し４の何れかに記載の支持体に固定された水溶性ＤＮＡ
の水不溶性架橋重合体の製造方法。 - 【請求項１０】請求項９に記載の製造方法により製造さ
れた支持体に固定された水溶性ＤＮＡの水不溶性架橋重
合体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25573399A JP4206456B2 (ja) | 1999-09-09 | 1999-09-09 | 紫外線照射による水不溶性ｄｎａ架橋体の製造方法と該架橋体の環境浄化材料としての利用 |
Applications Claiming Priority (1)
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|---|---|---|---|
| JP25573399A JP4206456B2 (ja) | 1999-09-09 | 1999-09-09 | 紫外線照射による水不溶性ｄｎａ架橋体の製造方法と該架橋体の環境浄化材料としての利用 |
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| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2008000793A Division JP2008169210A (ja) | 2008-01-07 | 2008-01-07 | 紫外線照射による水不溶性ｄｎａ架橋体の製造方法とその利用 |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2001081098A true JP2001081098A (ja) | 2001-03-27 |
| JP4206456B2 JP4206456B2 (ja) | 2009-01-14 |
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Cited By (15)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2001181295A (ja) * | 1999-12-24 | 2001-07-03 | Asahi Denka Kogyo Kk | 成型体の製造方法 |
| WO2004091753A1 (ja) * | 2003-04-16 | 2004-10-28 | Nissei Bio Co., Ltd. | 有害物質の除去方法及び有害物質除去フィルター |
| JP2005213238A (ja) * | 2004-02-02 | 2005-08-11 | Nissei Bio Kk | 食用有害物質吸着材 |
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