ITTO20120570A1 - Anticorpo monoclonale diretto contro il virus jc - Google Patents
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Description
Descrizione
“Anticorpo monoclonale diretto contro il virus JCâ€
DESCRIZIONE
La presente invenzione rientra nel settore dell’immunologia ed in particolare nel settore degli anticorpi neutralizzanti diretti contro antigeni di patogeni virali.
Più specificamente, l’invenzione riguarda un anticorpo monoclonale diretto contro la proteina VP1 del virus JC (JCV).
Il virus JC (JCV) à ̈ un poliomavirus umano della famiglia Polyomaviridae ed à ̈ l’agente responsabile di una patologia demielinizzante estremamente grave, spesso fatale, chiamata leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML). Il virus JC ha un capside a struttura icosaedrica privo di envelope che racchiude un genoma di DNA circolare a doppio filamento. Il componente principale del capside à ̈ la proteina virale VP1. Studi strutturali effettuati sui virioni hanno rivelato che il capside di poliomavirus à ̈ costituito da 72 pentameri formati da monomeri di VP1 connessi mediante l’estremità C-terminale. VP1 si lega ai recettori presenti sulle cellule bersaglio ed in tal modo dà inizio all’infezione.
Il virus JC infetta più dell’85% degli esseri umani adulti. Dopo l’infezione primaria, il virus JC rimane quiescente nei reni e negli organi linfoidi. Negli individui sani questo virus si può replicare nelle cellule dei tubuli renali e viene escreto nell’urina, senza causare alcuna patologia. Tuttavia, nei casi di grave immunodepressione, nei soggetti che hanno ricevuto un trapianto d’organo, nei pazienti oncologici, nei pazienti trattati con le nuove terapie immunomodulatorie basate su anticorpi monoclonali, o nelle persone affette da AIDS, il virus JC si può diffondere nel sistema nervoso centrale e causare la leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML). Nell’epoca pre-cART (combination antiretroviral therapy), l’incidenza di PML nei pazienti HIV variava fra 0,3% e 8%, ma l’ampio uso di trattamenti antiretrovirali ne ha determinato una significativa riduzione. L’infezione da HIV à ̈ ancora la causa di immunodeficienza più frequentemente associata alla PML, con circa l’80% dei casi, seguita dai tumori ematologici (circa l’8%), dai tumori solidi (circa il 3%), dai trapianti d’organo e dalle malattie autoimmuni trattate con immunomodulatori.
Tuttavia, negli ultimi dieci anni à ̈ stato riportato un numero crescente di casi di PML non correlati ad HIV/AIDS. Molti di questi nuovi casi si verificano in individui sottoposti a immunoterapie con farmaci recentemente disponibili. Al 29 febbraio 2012 sono stati documentati 212 casi di PML correlati a trattamenti con natalizumab, a fronte di 99571 pazienti affetti da sclerosi multipla trattati in tutto il mondo con questo farmaco. La PML à ̈ anche stata correlata ad altre terapie immunomodulatorie, inclusi efalizumab, micofenolato mofetile e rituximab.
Per il trattamento della PML sono state tentate diverse strategie terapeutiche, dirette contro varie fasi del ciclo replicativo virale, come ad esempio l’ingresso nella cellula bersaglio e la replicazione del genoma; nessuna di esse ha però avuto effetti benefici significativi. Sulla base dell’associazione fra PML e gravi condizioni di immunodepressione, sono stati anche tentati approcci di tipo immunologico. Ad esempio, à ̈ stato dimostrato che i pazienti affetti da PML con prognosi più favorevole erano caratterizzati da una più forte risposta cellulo-mediata e umorale specifica per JCV. La potenziale importanza di una risposta specifica anti-JCV, in particolar modo diretta contro VP1, à ̈ stata confermata dalla potente attività neutralizzante di sieri di animali (conigli) immunizzati con la proteina VP1 di JCV (Goldmann C et al. Journal of Virology, maggio 1999, pagine 4465-4469).
Una terapia alternativa basata su anticorpi anti-JCV umani potrebbe quindi trovare applicazione nel trattamento di pazienti affetti da PML. In particolare, considerando il ruolo chiave della proteina VP1 nelle fasi iniziali dell’infezione da JCV, i migliori candidati potrebbero essere anticorpi diretti contro la proteina VP1 di JCV.
Tale necessità à ̈ stata ora soddisfatta dai presenti inventori i quali, per la prima volta, sono riusciti ad ottenere anticorpi monoclonali totalmente umani diretti contro la proteina VP1 di JCV e per di più dotati di attività neutralizzante nei confronti del virus, il che li rende potenzialmente idonei all’impiego nel trattamento terapeutico della PML.
Tali risultati sono da considerarsi originali e sorprendenti alla luce dello stato della tecnica, poiché non era stato finora descritto alcun anticorpo monoclonale umano anti-VP1 di JCV, né tantomeno un anticorpo monoclonale umano neutralizzante anti-VP1 di JCV.
Goldmann C et al. cit., avevano infatti descritto sieri iperimmuni con anticorpi anti-VP1 di coniglio suscitati con virus like particles dotati di proprietà neutralizzanti nei confronti di JCV.
La domanda di brevetto giapponese JP9067397A aveva menzionato un procedimento per ottenere un anticorpo neutralizzante anti-JCV, che comprende l’immunizzazione di ratti con un peptide sintetico corrispondente a una porzione della proteina VP1, la raccolta del siero immune dai ratti e la separazione di una frazione di gamma-globuline. In tale brevetto non era quindi menzionata la selezione di un anticorpo monoclonale, tantomeno di origine umana.
L’anticorpo monoclonale anti-VP1 di JCV denominato ab34756, distribuito commercialmente da A-bcam<®>, Regno Unito, à ̈ un anticorpo murino utilizzato per la rivelazione del virus in ELISA e Western Blot, chiaramente non idoneo per applicazioni terapeutiche, tantomeno nell’essere umano.
Pertanto, nessuno degli anticorpi anti-JCV della tecnica anteriore sarebbe potenzialmente atto ad essere impiegato in applicazioni terapeutiche o profilattiche per infezioni da JCV o patologie ad esse correlate in pazienti umani.
Un primo oggetto della presente invenzione à ̈ quindi un anticorpo monoclonale umano contro la proteina VP1 del virus JC.
Nell’ambito della presente descrizione il termine “anticorpo monoclonale†indica qualsiasi struttura peptidica atta a legare l’antigene, in questo caso la proteina VP1 di JCV. Tale termine include quindi sia immunoglobuline intere sia frammenti immunoglobulinici funzionali, che generalmente comprendono un dominio variabile di catena pesante e un dominio variabile di catena leggera, ma possono anche comprendere un singolo dominio variabile. Esempi specifici, ma non limitativi, di frammenti immunoglobulinici funzionali sono i frammenti Fab, Fab’, F(ab’)2, Fv, gli anticorpi a catena singola (scFv) e gli anticorpi a singolo dominio. Anticorpi a catena singola (single chain antibodies) sono ad esempio costruiti secondo il procedimento descritto nel brevetto US 4,946,778 di Ladner et al. Gli anticorpi a catena singola comprendono le regioni variabili delle catene leggera e pesante unite da una porzione legante flessibile (linker). Il frammento anticorpale chiamato anticorpo a singolo dominio (single domain antibody) à ̈ ancora più piccolo dell’anticorpo a catena singola, in quanto comprende un singolo dominio VH isolato. Le tecniche per ottenere anticorpi a singolo dominio aventi almeno in parte la stessa capacità di legame dell’anticorpo intatto, sono descritte nella tecnica anteriore e rientrano nelle conoscenze del tecnico medio del settore. Ward, et al., in "Binding Activities of a Repertoire of Single Immunoglobulin Variable Domains Secreted from Escherichia coli, Nature 341: 544-6), descrive un procedimento di screening per ottenere la regione variabile della catena pesante di un anticorpo (VH single domain antibody) con sufficiente affinità per l’epitopo bersaglio da legarsi ad esso in forma isolata.
Il termine “immunoglobulina†come impiegato nella presente descrizione comprende IgG (incluse IgG1, IgG2, IgG3, IgG4), IgA, IgM, IgD e IgE, sia in forma monometrica sia polimerica.
In una forma di realizzazione preferita, l’anticorpo monoclonale dell’invenzione à ̈ un anticorpo monoclonale atto a neutralizzare il virus JC, cioà ̈ a bloccarne il ciclo replicativo in una delle sue fasi, interferendone così con l’attività biologica e con almeno una delle patologie ad essa correlata.
In una forma di realizzazione maggiormente preferita, l’anticorpo monoclonale dell’invenzione comprende almeno un dominio variabile di catena pesante e un dominio variabile di catena leggera, in cui il dominio variabile di catena pesante ha la sequenza SEQ ID NO:1 (oppure à ̈ codificato dalla sequenza SEQ ID NO:3) e il dominio variabile di catena leggera ha la sequenza SEQ ID NO:2 (oppure à ̈ codificato dalla sequenza SEQ ID NO:4). Tale specifico anticorpo à ̈ anche chiamato GRE1.
Un ulteriore aspetto della presente invenzione à ̈ un anticorpo monoclonale umano diretto contro la proteina VP1 del virus JC come definito in precedenza e dotato attività neutralizzante contro il virus JC, per l’uso nel trattamento terapeutico o profilattico di un’infezione da JCV o di una patologia correlata con un’infezione da JCV, preferibilmente la leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML).
Il tecnico medio del settore à ̈ in grado di identificare la dose efficace e formulare l’anticorpo monoclonale dell’invenzione in una composizione farmaceutica idonea all’impiego nell’ambito della presente invenzione, senza dover compiere un eccessivo sforzo inventivo.
L’anticorpo monoclonale della presente invenzione à ̈ altresì idoneo ad essere impiegato in campo diagnostico, essendo caratterizzato da elevate sensibilità e specificità . Tale anticorpo monoclonale ha mostrato un’elevata affinità (circa 1nM) verso la VP1 ricombinante del ceppo Mad1 e ad una uguale concentrazione di anticorpo murino commerciale (A-bcam<®>) mostra un segnale molto migliore in ELISA. Anche quando à ̈ stato valutato in saggio di immunofluorescenza condotto su cellule COS-7 infettate da JCV (ceppo Mad4), l’anticorpo ha mostrato maggiore sensibilità e specificità rispetto all’anticorpo commerciale Abcam<®>. Inoltre, à ̈ importante sottolineare che l’anticorpo monoclonale della presente invenzione non ha mostrato alcuna reattività nei confronti della VP1 ricombinante di BKV (virus appartenente alla famiglia Polyomaviridae come JCV; le VP1 di JCV e BKV presentano un’omologia della sequenza nucleotidica di circa il 75%) in ELISA, indicando quindi la sua elevata specificità nei confronti della sola VP1 di JCV.
Nell’ambito della presente invenzione rientrano quindi anche un procedimento diagnostico in vitro e il relativo kit per la diagnosi di infezione da JCV, in cui l’anticorpo monoclonale della presente invenzione à ̈ impiegato come reagente diagnostico specifico per JCV.
Il procedimento immunodiagnostico in vitro comprende il passaggio di porre a contatto un campione biologico di un soggetto, ad esempio un paziente, sospettato di essere infettato da JCV con l’anticorpo monoclonale dell’invenzione, in condizioni adatte affinché l’anticorpo monoclonale dell’invenzione si leghi all’antigene VP1 di JCV, se presente nel campione, ed il passaggio di rilevare qualitativamente o quantitativamente il legame fra l’anticorpo monoclonale dell’invenzione e l’antigene VP1 di JCV.
Il procedimento immunodiagnostico dell’invenzione à ̈ ad esempio realizzato come saggio immunoenzimatico ELISA oppure come saggio in immunofluorescenza o come saggio in immunoistochimica. Il campione sul quale à ̈ eseguito il saggio à ̈ ad esempio un campione di sangue, plasma, siero, urina, oppure un campione bioptico.
Il kit immunodiagnostico per l’attuazione del procedimento comprende l’anticorpo monoclonale dell’invenzione quale reagente specifico ed istruzioni per l’esecuzione del saggio, nonché opzionalmente ulteriori componenti che varieranno a seconda della tipologia del saggio e che sono di per sé noti alla persona esperta del settore. Esempi di componenti aggiuntivi che possono opzionalmente essere contenuti nel kit sono mezzi per la rivelazione qualitativa e/o quantitativa dell’avvenuto legame fra l’anticorpo e l’antigene, uno o più supporti solidi (come ad esempio piastre da microtitolazione), una soluzione bianco, una o più soluzioni standard contenenti quantità note dell’antigene di interesse, soluzioni di controllo, soluzioni di diluizione del campione da analizzare, un anticorpo di rilevazione coniugato con un marcatore rilevabile (ad esempio una molecola fluorescente) o con un enzima capace di reagire con un substrato formando un prodotto rilevabile, soluzioni tampone di lavaggio, soluzioni contenenti il substrato dell’enzima, soluzioni di stop, etc.
La parte sperimentale che segue illustra l’identificazione e la caratterizzazione di un anticorpo monoclonale umano rientrante nell’ambito della presente invenzione. Tale parte sperimentale à ̈ fornita puramente a scopo illustrativo e senza alcun intento limitativo della portata dell’invenzione come definita nelle annesse rivendicazioni.
Parte sperimentale
Una libreria combinatoriale di espressione fagica (phage display) di frammenti anticorpali umani (Fab monovalenti), di isotipo IgG1/k e con dimensioni stimate di 2x10<7>elementi, à ̈ stata costruita nel vettore fagemidico pPD con metodi simili a quelli precedentemente descritti (Plaisant, P., et al., Human monoclonal recombinant Fabs specific for HCV antigens obtained by repertoire cloning in phage display combinatorial vectors. Res Virol, 1997. 148(2): p. 165-9). Previo ottenimento del consenso informato, il midollo osseo di un uomo di 60 anni il cui siero era risultato positivo per la presenza di anticorpi anti-VP1/JCV in ELISA à ̈ stato utilizzato per generare la libreria. L’ELISA à ̈ stato effettuato rivestendo una piastra da 96 pozzetti con 100 ng/pozzetto di proteina VP1 di JCV ricombinante (Mad1, Abcam<®>) in tampone fosfato salino (PBS). Differenti diluizioni del siero sono state aggiunte in duplicato su una piastra rivestita con VP1. La piastra à ̈ stata incubata a 37°C per 1 ora e poi lavata con PBS/ TWEEN 20 0,1%. Gli anticorpi legati sono stati rilevati con anticorpo anti-IgG1 umane coniugato con perossidasi (HRP) (Sigma-Aldrich<®>).
Il biopanning della libreria anticorpale combinatoriale di espressione fagica per la selezione dell’anticorpo anti-VP1 à ̈ stato effettuato come descritto in precedenza (Williamson, R.A., et al., Human monoclonal antibodies against a plethora of viral pathogens from single combinatorial libraries. Proc Natl Acad Sci U S A, 1993. 90(9): p. 4141-5). In breve, una preparazione di fagi (0,1 mL/pozzetto) ad una concentrazione di 10<12>fagi per millilitro à ̈ stata usata in ciascun ciclo di biopanning per la selezione dell’anticorpo su piastre ELISA high-binding (Costar<®>) rivestite con VP1 del ceppo Mad1. E’ stato realizzato un totale di 5 cicli di biopanning ed i fagi ottenuti dagli ultimi 3 cicli sono stati convertiti in un sistema fagemidico esprimente Fab solubili.
Cellule di Escherichia coli del ceppo XL-1-blue (Agilent Technologies<®>), trasformate con un vettore di espressione dei Fab, sono state impiegate per produrre le molecole Fab selezionate per ulteriore caratterizzazione. In breve, preparazioni di Fab sono state ottenute con procedure di congelamentoscongelamento da una coltura. Cinque mL di SB(super broth) contenente ampicillina (50 ug/mL; Sigma-Aldrich<®>) sono stati inoculati con i batteri trasformati e sono stati fatti crescere per 7 ore a 37°C in un agitatore rotante. Isopropil-β-D-tiogalattopiranoside (IPTG, 1mmol/L; Sigma-Aldrich<®>) à ̈ stato aggiunto ai batteri in crescita, che sono stati ulteriormente incubati overnight a 30°C. Poi le cellule sono state centrifugate, risospese in 1 mL di PBS/1% sieroalbumina bovina (BSA), e sottoposte a una procedura di congelamentoscongelamento (3 cicli). I detriti cellulari sono stati ridotti in pellet mediante centrifugazione a 13000 g a temperatura ambiente in una micro centrifuga, e il sovranatante à ̈ stato usato in un saggio ELISA senza ulteriore processamento. L’ELISA à ̈ stato effettuato come descritto in precedenza.
I cloni che hanno dato una OD450> 0,8 in ELISA contro la VP1 di JCV sono stati considerati positivi e sono stati ulteriormente caratterizzati.
Sono stati analizzati 105 cloni, 11 cloni sono risultati positivi (10,5%). Non à ̈ stata dimostrata alcuna reattività contro BSA.
Per confermare la specificità dei cloni positivi in ELISA, questi sono stati testati in un saggio in immunofluorescenza su cellule COS-7 (Transformed African Green Monkey Kidney Fibroblast Cells) infettate con il ceppo Mad4 di JCV (nell’ELISA à ̈ stata usata la proteina VP1 ricombinante del ceppo Mad1). Come anticorpo secondario à ̈ stato usato un antisiero anti-Fab umano di capra coniugato con fluoresceina isotiocianato (Sigma-Aldrich<®>). E’ stato confermato che tutti i cloni positivi in ELI-SA erano capaci di legarsi alle cellule infettate, mentre non à ̈ stata osservata alcuna reattività con le cellule non infettate. I cloni negativi in ELISA non erano capaci di legarsi alle cellule infettate.
L’acido nucleico dei cloni positivi in ELISA à ̈ stato ottenuto con il kit Spin Miniprep (Qiagen<®>) ed à ̈ stato sequenziato su un sequenziatore 373A (PerkinElmer<®>). Per il sequenziamento della catena pesante à ̈ stato usato il primer SEQGz (5’-GTCGTTGACCAGGCAGCCCAG-3’) (SEQ ID NO:5) che si ibrida al filamento (+). Per la catena leggera à ̈ stato usato il primer SEQKb (5’-ATAGAAGTTGTTCAGCAGGCA-3’) (SEQ ID NO:6) che si lega al filamento (+). L’analisi della sequenza à ̈ stata effettuata con gli strumenti BLAST e IMGT ed ha mo strato che tutti i cloni derivano dalla stessa sottofamiglia di geni VH per la catena pesante, e Vk per la catena leggera e condividono la stessa sequenza. Inoltre, la sequenza di DNA dell’anticorpo à ̈ originale. E’ anche importante sottolineare che in letteratura non à ̈ stato finora descritto nessun anticorpo umano diretto contro la proteina VP1 di JCV. Pertanto, questo à ̈ il primo anticorpo monoclonale umano anti-VP1 di JCV descritto. Tale anticorpo à ̈ stato identificato con il nome GRE1.
Per poter testare l’attività neutralizzante dell’anticorpo umano anti-VP1 GRE1, in una piastra da 24 pozzetti (Corning<®>), sono state seminate 5x10<4>cellule COS-7 per pozzetto in terreno DMEM completo. COS-7 sono cellule permissive all’infezione da parte di JCV.
Il giorno successivo circa 100 unità formanti foci di JCV (ceppo Mad4) sono stati aggiunti a 100 µL di diluizioni progressive di GRE1 (diluizioni in base 2, da circa 20 µg/mL a 0,3 µg/mL). La miscela à ̈ stata incubata per 1 ora a 37°C ed à ̈ poi stata aggiunta alle cellule COS-7. In seguito, esse sono state incubate per 2 ore a 37°C. Dopo un lavaggio con PBS, sono stati aggiunti 500 µL di terreno fresco ad ogni pozzetto e le cellule sono state incubate per 6 giorni a 37°C.
Valutazione dell’attività neutralizzante L’attività neutralizzante degli anticorpi à ̈ stata valutata tramite immunofluorescenza. Brevemente, l’immunofluorescenza à ̈ stata eseguita a 6 giorni dall’infezione. I vetrini sono stati preparati fissando le cellule per 15’ con una miscela di Metanolo/Acetone (rapporto 1:1) a temperatura ambiente e utilizzando come anticorpo primario l’anticorpo commerciale murino anti-VP1 dell’Abcam<®>(10 µg/mL), e come secondario l’anti-Fab murino coniugato FITC (Sigma-Aldrich<®>), seguendo le linee guida del produttore.
La valutazione à ̈ effettuata confrontando il numero di cellule positive presenti nei pozzetti in cui il virus à ̈ stato addizionato a GRE1, con le cellule infettate in assenza dell’anticorpo (100% d’infezione).
Il dato osservato tramite microscopio a fluorescenza à ̈ stato confermato anche tramite un sistema di lettura di fluorescenza robotizzato (IN Cell Analizer Sistem 1000, GE Healthcare), in grado di distinguere automaticamente le cellule positive dal background, che ha indicato come l’anticorpo come frammento Fab à ̈ in grado di inibire l’infezione da JCV di oltre il 50% ad una concentrazione di 1 ng/µL.
Immunofluorescenza e immunoistochimica su campioni bioptici
Utilizzando l’anticorpo anti-VP1 di JCV GRE1 della presente invenzione in saggio di immunofluorescenza e immunoistochimica si può determinare la presenza di JCV in campioni bioptici. Questo anticorpo ha mostrato infatti una elevata sensibilità e specificità per la proteina VP1 di JCV, mentre al contrario non ha mostrato alcuna reattività nei confronti della VP1 di BKV.
I campioni bioptici possono essere freschi o fissati e paraffinati. Nel caso di campioni fissati e paraffinati, si procede se necessario con la deparafinizzazione del campione e ripristino dell’antigenicità secondo le procedure standard. Il campione viene successivamente incubato a 37°C per 30’ con GRE1 (10 µg/mL in PBS). Dopo il periodo di incubazione, il campione viene lavato 5 volte in PBS e poi incubato per 30’ a 37°C con l’anti-Fab umano coniugato FITC o coniugato con perossidasi di rafano (Sigma-Aldrich<®>), seguendo le linee guida del produttore. Nel caso in cui si utilizzi l’anticorpo coniugato con perossidasi di rafano à ̈ necessario aggiungere il substrato (diaminobenzidine, DAB substrate kit, Thermo Scientific), che in presenza di perossidasi produce un precipitato marrone che permette di visualizzare l’eventuale legame dell’anticorpo.
La valutazione del saggio viene eseguita osservando il campione ad un microscopio a fluorescenza o ad un sistema automatizzato di rilevazione della fluorescenza nel caso in cui venga utilizzato l’anticorpo coniugato FITC, oppure tramite microscopio ottico o sistema automatizzato di rilevazione di immagine nel caso in cui venga utilizzato l’anticorpo coniugato con perossidasi di rafano.
Capture ELISA per la rilevazione di JCV in campioni biologici
Per l’esecuzione di un saggio ELISA con l’anticorpo umano anti–VP1 di JCV, GRE1, della presente invenzione, una piastra per ELISA (Costar<®>) viene ricoperta con 25 µL per pozzetto di una soluzione contenente 40 ng dell’ anticorpo di pecora anti-Fd umano in PBS (concentrazione finale 1,6 µg/mL) ed incubata a 4°C per tutta la notte. Il giorno successivo la piastra viene lavata con acqua e bloccata con PBS-BSA 1% (w/v) per 1 ora a 37°C.
In seguito, vengono aggiunti 40 µL per pozzetto di GRE1 (concentrazione finale di circa 4 ng/uL in PBS/BSA1%) e la piastra à ̈ poi incubata per 1 ora a 37°C. Dopo aver effettuato, mediante lavatore automatico per micropiastre ELISA (ETI-System Kasher, DiaSorin), 5 lavaggi con PBS-Tween20 0,1% (Sigma-Aldrich<®>), si aggiungono 40 µL per pozzetto di diverse diluizioni del campione biologico da saggiare (diluizioni partendo dal toto fino a diluzioni di 1:1000, seriali in base 10). La piastra viene quindi incubata 1 ora a 37°C. Dopo aver effettuato dei lavaggi, come precedentemente descritto, vengono aggiunti 40 uL per pozzetto di una diluizione 1:1000 di un anticorpo commerciale murino anti-VP1 (Abcam<®>diluito in PBS/BSA). La piastra viene lasciata 1 ora a 37°C. Dopo ulteriori lavaggi, vengono aggiunti 40 uL per pozzetto di una preparazione policlonale di anticorpi di capra che legano la porzione Fc di IgG murino, coniugati con perossidasi di rafano (Anti-Human IgG (Fc specific)-Peroxidase antibody produced in goat, Sigma-Aldrich<®>). La piastra viene incubata per 45 minuti a 37°C. Dopo 5 lavaggi con PBS-Tween20 effettuati come precedentemente descritto, ad ogni pozzetto vengono aggiunti 40 µL di substrato (soluzione 1:1 di H2O2e di 3,3',5,5'-tetrametilbenzidina, TMB substrate kit, Thermo Scientific) affinché avvenga la reazione enzimatica. Dopo circa 15 minuti, l’attività enzimatica viene bloccata mediante l’aggiunta di 40 µL per pozzetto di H2SO41N (Carlo Erba) e la reazione colorimetrica viene misurata con lo spettrofotometro (Model 680 Microplate Reader, Bio-Rad) ad una lunghezza d’onda di 450 nm.
Per ogni esperimento viene introdotto l’antigene BSA o un altro appropriato antigene come controllo negativo, la cui OD450viene utilizzata per rilevare un’eventuale reattività aspecifica.
Claims (10)
- RIVENDICAZIONI 1. Anticorpo monoclonale umano contro la proteina VP1 del virus JC.
- 2. Anticorpo monoclonale secondo la rivendicazione 1, che à ̈ un anticorpo neutralizzante il virus JC.
- 3. Anticorpo monoclonale secondo la rivendicazione 1 o 2, che à ̈ una immunoglobulina intera oppure un frammento immunoglobulinico funzionale, il frammento immunoglobulinico funzionale essendo preferibilmente scelto nel gruppo che consiste di Fab, Fab’, F(ab’)2, Fv, anticorpi a catena singola (scFv) e anticorpi a singolo dominio.
- 4. Anticorpo monoclonale secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 3, comprendente almeno una regione variabile di catena pesante e una regione variabile di catena leggera, in cui la regione variabile di catena pesante ha la sequenza SEQ ID NO:1 e la regione variabile di catena leggera ha la sequenza SEQ ID NO:2, oppure la regione variabile di catena pesante à ̈ codificata dalla sequenza SEQ ID NO:3 e la regione variabile di catena leggera à ̈ codificata dalla sequenza SEQ ID NO:4.
- 5. Anticorpo monoclonale secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 4, per l’uso nel trattamento terapeutico o profilattico di un’infezione da JCV o di una patologia correlata con un’infezione da JCV, preferibilmente della leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML).
- 6. Composizione farmaceutica comprendente una quantità efficace di un anticorpo monoclonale secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 4.
- 7. Composizione farmaceutica secondo la rivendicazione 6, per l’uso nel trattamento terapeutico o profilattico di un’infezione da JCV o di una patologia correlata con un’infezione da JCV, preferibilmente della leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML).
- 8. Procedimento in vitro per la diagnosi di una infezione da JCV o di una patologia correlata a infezione da JCV, preferibilmente della leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML), il procedimento comprendendo il passaggio di porre a contatto un campione biologico di un soggetto sospettato di essere infettato da JCV con l’anticorpo monoclonale secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 4, in condizioni adatte affinché l’anticorpo monoclonale leghi l’antigene VP1 di JCV, se presente nel campione, ed il passaggio di rilevare qualitativamente o quantitativamente il legame dell’anticorpo monoclonale all’antigene VP1 di JCV, tale legame essendo indicativo di infezione da JCV o patologia correlata a infezione da JCV, preferibilmente leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML).
- 9. Procedimento secondo la rivendicazione 8, che à ̈ un saggio immunologico ELISA o un saggio immunologico in fluorescenza o un saggio immunoistochimico.
- 10. Kit immunodiagnostico per la diagnosi di una infezione da JCV o di una patologia correlata a infezione da JCV, preferibilmente della leucoencefalopatia multifocale progressiva (PML), il kit comprendendo un anticorpo monoclonale secondo una qualsiasi delle rivendicazioni 1 a 4 ed istruzioni per l’esecuzione di un procedimento secondo la rivendicazione 8 o 9.
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