HUT70179A - Process for producing retroinverted tetrapeptides and pharmaceutical compositions containing them as active component - Google Patents

Process for producing retroinverted tetrapeptides and pharmaceutical compositions containing them as active component Download PDF

Info

Publication number
HUT70179A
HUT70179A HU9402952A HU9402952A HUT70179A HU T70179 A HUT70179 A HU T70179A HU 9402952 A HU9402952 A HU 9402952A HU 9402952 A HU9402952 A HU 9402952A HU T70179 A HUT70179 A HU T70179A
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
mmol
solution
pro
mixture
tetrapeptide
Prior art date
Application number
HU9402952A
Other languages
English (en)
Other versions
HU9402952D0 (en
Inventor
Antonio Silvio Verdini
Massimo Pinori
Flavio Cappelleoni
Original Assignee
Italfarmaco Spa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Italfarmaco Spa filed Critical Italfarmaco Spa
Publication of HU9402952D0 publication Critical patent/HU9402952D0/hu
Publication of HUT70179A publication Critical patent/HUT70179A/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/02Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing at least one abnormal peptide link
    • C07K5/0212Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing at least one abnormal peptide link containing the structure -N-C-N-C(=0)-, e.g. retro-inverso peptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system

Description

A találmány retroinvertált tetrapeptidekre, azokat hatóanyagként tartalmazó gyógyszerkészítményekre, valamint ezeknek a hatóanyagoknak és gyógyszerkészítményeknek az alkalmazására vonatkozik. A találmány szerinti hatóanyagok C-reaktiv proteinfragmentumok részben módosított és retroinvertált tetrapeptid analogonjai. A C-reaktiv proteinfragmentumok jelölésére a CK? rövidítést használjuk.
A CRP vérszintje általában nagyon alacsony, de gyulladásos folyamat következtében a CRP-koncentrációérték akár kétezerszeresére is emelkedhet [J.J. Morley és I. Kushner: Am. N.Y. Acad. Sci., 389. 406-418 (1989)]. A szakirodalom szerint [F.A. Robey és munkatársai: J. Bioi. Chem., 262. 15· 7055-7057 (19θ7)] három CRP-tetrapeptid-szekvencia nagyon hasonlít a tuftszinéra. A vegyi utón szintetizált tetrapeptidek a tapasztalatok szerint szuperoxidok termelésére serkentik a falósejtként működő leukocitákat, a monoéitákat pedig l-interleukin-termelésre ösztönzik a tuftszinhez minőségi és mennyiségi szempontból egyaránt hasonló módon· A proteázoknak a tuftszinhez hasonlóan a 3 CRP-tetrapeptidet is gyorsan asszimilálniuk kellene in vivő körülmények között, és igy olyan peptid anyagcseretermékeknek kellene keletkezniük, amelyek versenyképesen tudnák gátolni a parenterális peptidek biológiai hatását vagy hatásait.
Meglepetéssel tapasztaltuk, hogy az említett CRP-tetrapeptid-fragmentumok részben módosított és N-terminálisan retroinvertált analogonjai jelentős stabilitást mutatnak enzimes bontással szemben, ugyanakkor rendelkeznek a szakirodalom által (255 190· sz. európai közrebocsátási irat) a tuftszinnel kapcsolatban ismertetett immunrendszer-módosító aktivitással. Ezekkel az analogonokkal kapcsolatosan elsősorban mégis azt emeljük ki, hogy szerkezetüktől és az alkalmazott dózistól függően képesek meghatározni
- 5 - .....
* különböző biológiai hatásokat, elsősorban mérgezéses sokk kezelésekor·
A találmány tehát olyan retroinvertált tetrapeptidekre vonatkozik, amelyek (I) általános képletében
- R jelentése hidrogénatom vagy a treonin-oldalláncnak megfelelő csoport;
- Rj- jelentése az arginin-, a leucin- vagy a glutamin-olcLalláncnak megfelelő csoport; és
- R£ jelentése hidrogénatom vagy anyagcsere révén lebontható acilcsoport;
azzal a megkötéssel, hogy ha R^ az arginin-oldalláncnak megfelelő csoport, R nem lehet a treonin-oldalláncnak megfelelő csoport ·
A találmány tárgyát képezik továbbá a (I) általános képletíi retroinvertált tetrapeptidek diasztereoizomer formái, továbbá gyógyászati szempontból elfogadható sói, észterei és amidjai is·
Részletesebben kifejtve, a találmány a gGly-(R,S)mLys-Pro-Arg, a gThr-(R,S)mLys-Pro-Leu és a gThr-(R,S)mIys-Pro-Gln szekvenciája retroinvertált tetrapeptidekre, azok diasztereoizomer formáira, valamint gyógyászati szempontból elfogadható sóira, észtereire és amidjaira vonatkozik, (A g és az m betűjelzések arra utalnak, hogy az adott aminosavho» - az említés sorrendjében geminális diamin, illetve malőnilesöpört kapcsolódik.
A találmány szerinti retroinvertált tetrapeptideket ismert eljárásokkal elő lehet állítani. Az ezen a területen járatos szakemberek a retroinvertálásra kerülő aminosavak jellegétől függően ki tudják választani a megfelelő eljárást.
így például abban az esetben, ha a geminális diaminból leszármaztatható csoport 1,1-diamino-metán-csöpört (gGly), a retro invertált tetrapeptidet úgy lehet előállítani, hogy c-ml^s(Z) Meldrum-sav-származékot - azaz 5-(4-benzil-oxi-karbonil)-2,2-dimetil-l,3-dioxán-4,6-diont - H-Gly-NI^-vel reagáltatunk szilanizálószer, például N,O-bisz(trimetil-szilil)-acetamid (TSMAc), trimetil-szilil-klorid (TMS-G1) vagy trimetil-szilil-cianid (TMSCN) jelenlétében [M.J.O. Anteunis és Chr. Becu: Bull. Soc. Chim. Béig., 96. 119-159 (1986)]· Az igy keletkezett HO-(R,S)mLys(Z)-Gly-NH2 pszeudopeptid - Z jelentése benzil-oxi-karbonil-csoport - malonil-maradékának második csoportját ezt követően t-butil-prolináttal kondenzáltatjuk diciklohexil-karbodiimid (DOG) és l-hidroxi-benztriazol (HOBT) jelenlétében. Az igy létrejött [(R,S)mI<ys(Z)-Gly-NH2]-Pro-H pszeudopeptid prolinbeli karboxilcsoportját először DGC-vel és N-hidroxi-szukcinimiddel (HOSu) aktiváljuk, majd védőcsoporttal nem rendelkező argininnel reagáltatjuk [Gottlieb, P. és munkatársai: Ann. N.Y. Acad. Sci., 419. 12 (1983)]» hogy megkapjuk az [(R,S)mLys(Z)-Gly-NH2]-Pro-Arg-OH retroinvertált tetrapeptidet, amelyet ezután ismétléssel végrehajtott kiszoritásos kromatograf álással (RP-DG) lehet tisztítani. Ezzel a megoldással - amennyiben szükséges - a diasztereoizomereket is szét lehet választani. A tisztított terméket palládium jelenlétében hangyasavval katalitikusán hidrogénezzük a megmaradt védőcsoportok eltávolítása céljából, majd a hidrogénezett terméket [II-bisz(trifluor-acetoxi)-jód]-benzollal (TIB) kezeljük, hogy a glicinkarboxamid a gGly N-terminális maradékává alakuljon át. Végül ioncserélő kromatográfiás módszerrel végrehajtott tisztítással acetát formájában nyerjük ki a végterméket ·
Abban az esetben, ha a geminális diamin-maradék treoninból le származtatható csoport, a retroinvertált tetrapeptid szintézisének első műveleteként egy C-terminális dipeptidet reagáltatunk olyan, N-terminálisan retroinvertált dipeptiddel, amelyet például a 21349 A/90. sz. olasz szabadalmi bejelentés szerint lehet előállítani. (Az első művelethez kiindulási anyagként alkalmazott C-terminális dipeptidet Z-Pro-OH és H-Y-OtBu kondenzáltat ásával lehet előállítani, ahol Y jelentése Leu vagy Gin aminosav, a (I) általános képlet értelmezésével összhangban. A C-terminális dipeptid adott esetben megfelelően védett is lehet, amikor is a benzil-oxi-karbonil-csoport eltávolítása katalitikus hidrogénezéssel történik.)
Előzetesen szilanizált Η-Thr(tBu)-OH karboxilcsoport aktiválására alkalmas anyag jelenlétében MNP-COOH-val végrehajtott acilezésével kapott MNP-Thr(tBu)-OH bifenil-foszfor-azidos (DPPA) kezelésével azidot állítunk elő, amelyből melegítés hatására a megfelelő izocianát keletkezik. Ebből az izocianátból katalitikus mennyiségű amin, célszerűen valamilyen tercier amin - például trietil-amin - vagy diizopropil-amin jelenlétében tiofenollal fenil-tio-karbonil-származékot ^INP-gThr (tBu)-PTQ) képezünk, amelynek aminocsoportját ezt követőleg - például hig nátrium-hidroxid-oldattal végzett kezeléssel - védőcsoport-mentesitjük. Az igy létrejövő MNP-gThr(tBu)-H-t c-mlys(Boc)-cal kondenzáltatva MNP-gThr(tBu)-(R,S)mLys(Boc) N-terminális pszeudopeptidet kapunk, amelyet DCC/HOBT elegy jelenlétében H-Pro-Y-OtBu-val kondenzáltatunk (Y jelentése a már megadott). így (I) általános képletű védett retroinvertált tetrapeptidet kapunk, amely R helyén 1-hidroxi-etil-csoportot tartalmaz. Savas kezeléssel eltávolítjuk a geminális diamin-molekularészen levők kivételével az összes védőcsoportot. Ha szükséges, az RP-DC módszerrel végzett tisztítás során szét lehet választani a két diasztereoizomert.
- 6 Az MNP-csöpörtót el lehet távolítani katalitikus hidrogénezéssel, amelyet például palládiumszivacson hajtunk végre ammóniumr-fcrmiát alkalmazásával. A retroinvertált tetrapeptidet végül erre a célra megfelelő kromatográfiás módszerekkel tisztítjuk·
A következőkben előállítási példákat közlünk néhány, a találmány tárgyát képező retroinvertált tetrapeptidre anélkül, hogy az o]talmi kört bármilyen vonatkozásban korlátoznánk.
A védett fragmentumokból és a retroinvertált tetrapeptidből származó aminosavak nagyteljesítményű folyadékkromatográfiás módszerrel végzett elemzését (HPLC-elemzését) a következő kísérleti körülmények között hajtottuk végre:
- az oszlop töltete: Lichrosorb RP-18;
- térfogatsebesség: 1,5 ml/min;
- detektor: Merek L-4200 UV-VIS (250 vagy 254 nm);
- az A) eluálószer összetétele: 90 v% viz, 9,9 v% metil-cianid és 0,1 v% trifluor-ecetsav (TFA);
- a B) eluálószer összetétele: 0,1 v% trifluor-ecetsavat tartalmazó metil-cianid;
- a C) eluálószer összetétele: 0,1 v% trifluor-ecetsavat tartalmazó viz;
- gradiensek:
— (I): 20 percig 0-40 B) eluálószert tartalmazó
A) eluálószer, majd 10 percig 80 v% B) eluálószert tartalmazó A) eluálószer;
— (II): 20 percig 37-&O vfc B) eluálószert tartalmazó A) eluálószer;
— (III): 20 percig 0-50 v% A) eluálószert tartalmazó C) eluálószer, 5 percig C) eluálószer mellett 50-100 v% A) eluálószert tartalmazó elegy, majd • · · · · percig 0-40 v% B) eluálószert tartalmazó A) eluálószer;
— (IV): 8 percig 10-40 v% A) eluálószert tartalmazó C) eluálószer, 2 percig C) eluálószer mellett 40-100 v%
A) eluálószert tartalmazó elegy, majd 20 percig 0-40 v% B) eluálószert tartalmazó A) eluálószer.
Az ioncseréléses tisztításokhoz IKB UVICORD S II tipusu detektorral, 226 nm-es szűrővel, 0,1 cm/min papirtovábbitási sebességgel működő Pharmacia regisztrálószerkezettel és Pharmacia 200 tipusu frakciógyüjtő szedővel felszerelt FPLC-be rende zést (Pharmacia) használtunk.
A különböző retroinvertált peptidekre vonatkozóan az aminosavakat, az ammmónium-vegyületeket, valamint ezek mennyiségi arányait - mint a geminális diamin-maradékra jellemző adatokat - a Beckman cég SYSTEM GOLD tipusu automatikus aminosavelemző készülékével határoztuk meg, miután az egyes peptideket 6 M sósavoldattal 110 °C-on 22 óra hosszat hidrolizáltuk.
A példákban az egyes vegyületek elnevezése mellett zárójelben feltüntetett betűje les kódszámok belföldi azonosítási kódok.
1. PÉLDA
H-gGly-(P,S)mhy3-Pro-Arg-OH-2AcOH (ITF 1127) előállítása
A) 200 ml tetrahidrofuránban szuszpendáltunk 3,52 g (30 mmol) H-Gly-NI^HCl-t, majd az így keletkezett szuszpenziót először 19,6 ml (80 mmol) TMSAc-dal, utána 2,54 ml (20 mmol) TMS-C1dal adalékoltuk. Fél óra eltelte után beadagoltunk 6,98 g (20 mmol) c-mLys-t, és az így kapott reakcióelegyet a környezet hőmérsékletén 3 óra hosszat kevertettük. Az oldószert vákuumban elpárologtattuk, a maradékot felvettük 200 ml vízzel, majd a vizes elegy pH-ját 0,1 N sósavoldattal beállítottuk 3-ra· A beállított • · · pH-ju elegyet a környezet hőmérsékletén 1 órán keresztül kevertettük, majd a keletkezett csapadékot kiszűrtük, vízzel mostuk és forró etanolban feloldottuk. Az oldat lehűlése után kivált csapadékot kiszűrtük, clietil-éterrel mostuk és megszáritottuk. Ilyen módon 51 %-os hozammal 5,8 g (R,S)mLys(Z)-Gly-NH2~t kaptunk.
- HPLC [(I) gradiens, 254 nm]: a retenciós idő 15,5 min;
- tisztaság: 98 m%; és
- olvadáspont: 161 °C (bomlás közben olvad).
Az ^H-NMR-spektrum adatai megerősítették, hogy a kívánt szerkezetű vegyületet állítottuk elő.
B) 15 ml dimetil-formamidban feloldottunk 5,65 g (10 mmol)
A) pont szerinti terméket, a keletkezett oldatot jeges fürdőben lehatottuk, majd egymás után hozzáadtunk 1,45 g (10,5 mmol) 1-hidroxi-benztriazolt és 1,96 g (9,5 mmol) diciklohexil-karbodiimidet. Az igy kapott elegyet 50 percig kevertettük, majd szűrtük, és a szürletet hozzáadtuk 10 ml dimetil-formamidos oldathoz, amely 2,49 g (12 mmol) HC1 ’H-Pro-OtBu-t és 1,67 ml (12 mmol) trietil-amint tartalmazott. Az elegyet 5 órán át kevertettük, majd az oldószert csökkentett nyomáson elpárologtattuk. A maradékot felvettük 50 ml etil-acetattal, és a szerves fázist először 2 m%-os kálium-hidrogén-szulfát-oldattal, majd 5 m%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, végül vízzel semlegesre mostuk, ezután nátrium-szulfáton megszáritottuk. így 82 %-os hozammal 4,2 g hig, olajszerű anyagot kaptunk, amelyet feloldottunk 16 ml mennyiségű, dimetil-kloridot és trifluor-ecetsavat 1:1 térfogatarányban tartalmazó elegyben, és az igy keletkezett elegyet 1 órán keresztül kevertettük. Az oldószert vákuumban elpárologtattuk, és a maradékot etil-acetáttal és dietil-éterrel eldörzsöltük. Ilyen módon 79 %os hozammal, 5»6 g mennyiségben, fehér szinü szilárd anyag forrná jában állítottunk ölő [(R,S)mI<ys(Z)-Gly-NH2]-Pro-0H-t.
- HPLO [(I) gradiens, 254 nm]: a retenciós idő 14,6 és 15,7 min (két diasztereoizomer); és
- tisztaság: 97 m%.
Az ^I-NMR-spektrum adatai megerősítették, hogy a kívánt szerkezetű vegyületet állítottuk elő.
C) 50 ml tetrahidrofuránban feloldottunk 3,56 g-ot (7,5 mmolt) a B) szerint előállított termékből, majd az igy keletkezett oldathoz hozzáadtunk 0,95 g (3,25 mmol) N-hidroxi-szukcinimidet, majd - -10 °C-ra való lehűtés után - 1,54 g (7,5 mmol) diciklohexil-karbodiimidet· A reakcióelegyet 4 óra hosszat kevertettük a környezet hőmérsékletén, majd szűrtük, és a szürletet hozzáadtuk egy olyan oldathoz, amely 125 ml mennyiségű, dimetil-formamidot és vizet 7:5 térfogatarányban tartalmazó elegyet, továbbá 1,74 g (10 mmol) H-Arg-OH-t és 0,74 g (10 mmol) kálium-kloridot tartalmazott. A reakcióelegyet 90 percen át a környezet hőmérsékletén kevertettük, majd az oldószert vákuumban ledesztilláltuk. A maradékot dietil-éterrel néhányszor mostuk, majd megszáritottűk. A visszamaradt anyagot 30 ml 0,16 v%-os vizes trifluor-ecetsav-oldatban feloldottuk, és az igy kapott oldatot RP-DC módszerrel három részletben tisztítottuk. Kíinden tisztítási lépésben 10 ml oldatot töltöttünk 2,7 ml/min térfogat sebességgel egy olyan 21,4 χ 500 mm-es Dynamax (3000 χ 10~^θ m, C^q) oszlopra, amelyet előzőleg 0,1 v% trifluor-ecetsavat tartalmazó vizes oldattal kiegyensúlyoztunk. A tisztítandó oldat beadagolásának befejezése után az oszlopot 0,1 v% trifluor-ecetsavat tartalmazó, ugyancsak 2,7 ml/min tériogatsebességgel bevezetett 50 mM vizes benzil-dimetil-hexadecil-ammónium-kloriddal eluál-
tűk. Mintegy egyórás eluálást követően 2,7 ml-es frakciókat gyűjtöttünk össze, amelyeket HPLC módszerrel [(I) gradiens] elemeztünk. A szennyezéseket tartalmazó frakciókat eltávolitottuk, mig a többi frakcióból három csoportot alkottunk: az (mLys(Z)-Gly-NH2]-Pro-Arg-0H A- és B-izomerét külön-külön tartalmazó két csoportot, valamint az A- és a B-izomert együttesen tartalmazó csoportot. A három kromatográfálás befejeztével a frakciókat három csoportban liofilizálva 1,9 g A-izomert, 0,45 g izomerelegyet és 1,8 g B-izomert kaptunk összesen 89 %-os hozammal:
- HPLC [(I) gradiens, 220 nm]: a retenciós idő 15,6 min (A-izomer, 96 m%-os tisztaság); 14,7 min (B-izomer, 93 m%os tisztaság), 4 m% A-izomer; és
- FAB-MS: m/z = 619 atomi tömegegység, [M+H]+; m/z = 485 atomi tömegegység, [M-Z+H]+ (a két izomer spektruma azonos ).
D) 5 ml 85 m%-os hangyasavban feloldottunk 0,51 g-ot (0,5 mmolt) a C) szerinti izomerelégyből, majd az igy keletkezett oldathoz hozzáadtunk mintegy 0,1 g mennyiségű, frissen készített palládiumszivacsot. Az igy kapott elegyet 90 percen át kevertettük lassú ütemben a környezet hőmérsékletén, majd kiszűrtük a katalizátort. A szürletből az oldószert vákuumban ledesztilláltuk, a maradékot vízzel felvettük és liofilizáltuk. Az igy kapott szilárd anyagot feloldottuk 5 ml mennyiségű, dimetil-formamidot és vizet 5:1 térfogatarányban tartalmazó elegyben, és a keletkezett oldathoz hozzáadtunk 0,45 g (1 mmol) TIB-et. A reakcióelegyet sötétben, a környezet hőmérsékletén 16 órán át kevertettük, majd az oldószert vákuumban ledesztilláltuk. A maradékot feloldottuk vízben, a keletkezett vizes elegyet dietil-éterrel mostuk, majd liofilizáltuk. Az igy kapott szilárd anyagot feloldottuk 6-os pH-ju • · • « · ·
-11- .........— vízben, majd a keletkezett oldatot 1 ml/min tériogatsebességgel bevezettük egy olyan, 6 x 200 mm-es oszlopba, amelynek CM-52-es karboxi-metil-cellulóz töltetét előzőleg 6-os pH-ju 15 ammónium-acetát-oldattal hoztunk egyensúlyba. Az oszlop terhelésének befejezése után 0,15 mM-150 mM ammónium-acetát-oldattal 6 órán keresztül lineáris gradiens szerint eluáltunk, miközben a térfogatsebességet 1 ml/min, a pH-t pedig 6-os értéken tartottuk. Ezt követően 3 ml-es frakciókat gyűjtöttünk össze, amelyeket HPLC módszerrel [(III) gradiens] elemeztünk. A cim szerinti terméket (ITF 1127) tartalmazó frakciókat liofilizáltuk. A kapott szilárd anyagot abszolút etanolban feloldottuk, majd a keletkezett oldatból dietil-éter beadagolásával 0,085 g (30 %) terméket csaptunk ki :
- HPLC [(III) gradiens]: a retenciós idő 8,8 min (A-izomer) és 10,2 min (B-izomer); a tisztaság 99 m%-os; és
- FAB-MS: m/z = 457 atomi tömegegység, [M+H]+.
Hasonló módon eljárva 3θ %-os hozammal 0,425 g-ot állítottunk elő az A-izomerből (ITF 1357)· ^H-NMR (200 MHz; dimetil-szulfoxid):
t (1H; NHG) 8,25; cL (1H; NH-R) 7,20; m (1H; CKP) 4,30; m (4H; *G;<<R; ξ^Ρ) 3,93 + 3,64; m (JH; Γκ) 3,61 + 3,37; t (2H; ÍR) 3,04; t (2H; εΚ) 2,74; m (6H; £P; TP; £K) 2,09 + 1,79; s (6H; CH^COOH) 1,75; m (8H; ÍK; TK; pR; TR) 1,70 + 1,18.
Az A-izomer előállításakor alkalmazott módszert követve 32 %-os hozammal 0,45 g B-izomert (ITF 1358), továbbá 0,1 g izomerelegyet (ITF 1127) állítottunk elő í
- HPLC [(III) gradiens]: a retenciós idő 10,2 min; 96 m%- os tisztaság A-izomer-tartalom mellett;
- FAB-MS: m/z = 457 atomi tömegegység, [M+H]+; és
- Sl-NMR (200 MHz; dimetil-szulfoxid):
t (1H; NGH) 8,30; d (0,4 H; NHR) 7,57; d (0,6 H; NHR) 7,47; m (1H; CJ») 4,4?; m (3H;kG;kR) 3,97 + 5,82; m (4H; <fP; ΓΚ) 3,65 + 5,55; m (2H; TR) 3,06; m (2H; gK) 2,72; s (6H; CH^COO) 1,76; m (14 Η; /8,TP; £,Γ, <ΓΚ; ^3,VR) 1,21 + 1,15.
2. PÉLDA
H-gThr-(R,S)mLys-Pro-Leu-OH*AcOH (ITF 1192) előállítása
A) 125 ml metilén-kloridot és 3,71 g (12,3 mmol) bisz(triklór-metil)-karbonátot tartalmazó oldatot 0 °C-ra hütöttünk, majd hozzádtunk 80 ml metilén-kloridban feloldva 5,96 ml (75 mmol) l-metil-imidazolt. Öt perc elteltével 80 ml metilén-kloridban feloldva 5,63 g (25 mmol) MNP-OH-t, újabb öt perc elmúltával pedig előzőleg 11,3 (50 mmol) trimetil-szilil-cianiddal szilanizált, 5,26 g (30 mmol) mennyiségű Η-Thr(tBu)-OH-t, valamint 200 ml metilén-kloridot adagoltunk be. Tiz perccel később a reakcióelegyet pH = 3,5-re savanyított vizes pufferoldattal mostuk, majd megszáritottuk, ezután pedig szárazra pároltuk. A maradékot felvettük 300 ml 5 m%-os nátrium-karbonát-oldattal, és az igy keletkezett elegyet metilén-kloriddal mostuk. A vizes fázishoz a továbbiakban 200 ml etil-acetátot öntöttünk, és a pHértéket 5,7-re állítottuk be. A szerves fázist elkülönítettük és megszáritottuk, majd az oldószert ledesztilláltuk. Ilyen módon 68 %-os hozammal 6,5 g mennyiségű, olajszerü anyagot kaptunk, amelyre vonatkozóan a következőket állapítottuk meg:
- HPLC [(I) gradiens, 254 nm]: a retenciós idő 25,1 min; és
- a tisztaság 88 %-os.
• ·· 'ί ·*’. .*· ··· ··· • · · •· ·♦
Β) 50 ml vízmentes toluolban feloldottunk 5,2 g-ot (13,6 mmolt) az A) pont szerint előállított vegyületből, majd az igy keletkezett oldathoz 0 °C-on hozzáadtunk 3,22 ml (14,9 mmol) DPPA-t és 2,09 ml (14,9 mmol) TEA-t. A reakcióelegyet 4 óra elteltével előzőleg 0 °C-ra hütött telitett nátrium-hidrogén-karbonáttal háromszor, majd ugyancsak előzőleg 0 °C-ra hütött telitett nátrium-klorid-oldattal egyszer mostuk, majd megszáritottuk. Az azidot tartalmazó oldatot 80 °C-ra melegítettük és ezen a hőmérsékleten tartottuk 40 percen keresztül. A keletkezett izocianáthoz a környezet hőmérsékletén 1,39 ml (13,6 mmol) tiofenolt és katalitikus mennyiségű (191 /Ul, 1,36 mmol) TEA-t adtunk. Az elegyet egy éjszakán át állni hagytuk, majd etil-acetáttal és vízzel kezeltük. A szerves fázist először 2 m%-os kálium-hidrogén-szulfát-oldattal, majd 5 m%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, végül vízzel semlegesre mostuk, nátrium-szulfáttal megszáritottuk és szárazra pároltuk. A visszamaradt olaj szerű anyagot petroléterrel eldörzsöltük. Ilyen módon 71,2 %-os hozammal 4,7 g MNP-gThr(tBu)-PCT-t állítottunk elő, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(II) gradiens, 254 nm]: a retenciós idő 14,9 min? és
- tisztaság: 95 m%.
C) 26 ml 1 M nátrium-hidroxid-oldat és 877 ml viz 0 °C-on tartott elegyéhez lassú ütemben hozzáadtunk egy olyan oldatot, amely 64 ml tetrahidrofuránban feloldva 4,7 g (9,6 mmol) B) pont szerinti vegyületet tartalmazott. Az adagolás befejezésétől számított 5 perc elteltével a reakcióelegyet 26 ml 1 M sósavoldattal semlegesítettük, majd a tetrahidrofuránt ledesztilláltuk. Ezután beadagoltunk 80 ml kloroformot, és a kapott kétfázisú elegy pH-ját 1 M nátrium-hidroxid-oldattal beállítottuk 9,0-re. A szerves fá- 14 ’*·· ·· ·· • · * · · ·. ·♦· ··· ♦· ·.· · • · ··
zist elkülönítettük, majd a vizes fázist kloroformmal háromszor extraháltuk, miközben a pH-értéket minden extrahálás után beállítottuk 9,0-re. A szerves fázisokat összegyűjtöttük, majd az egyesített szerves fázist szárazra pároltuk. A maradékot dietil-éterben újra szuszpendáltuk. A keletkezett szuszpenzióhoz 50 ml vizet adtunk, és az igy keletkezett elegy pH-ját 1 M sósavoldattal beállítottuk 5,5-re. (A sósavadagolást addig folytattuk, amíg a pH-érték nem stabilizálódott.) A vizes fázist elválasztottuk és a kezelést kétszer megismételtük. Az összegyűjtött vizes fázisok liofilizálásával 85 %-os hozammal 2,8 g MNP-gThr(tBu)-H»HCl-t kaptunk, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(I) gradiens, 254- nm)]: a retenciós idő 16,45 min? és
- tisztaság: 99,9 n%.
D) 120 ml tetrahidrofuránban feloldottunk 2,4 g (8 mmol) c-mLys(Boc)-ot, valamint 2,6 g-ot (6,6 mmolt) a C) pont szerint előállított vegyületből. A keletkezett oldathoz lassú ütemben hozzáadtunk 4,6 ml (20 mmol) N,O-bisz(trimetil-szilil)-acetamidot. Húsz óra elteltével a reakcióelegyet bepároltuk, és a bepárlási maradékot felvettük vízzel. A vizes elegy pH-ját etil-acetát jelenlétében 1 M sósavoldattal 5,5-re állítottuk be. A vizes fázist etil-acetáttal háromszor extraháltuk, a szerves fázisokat összegyűjtésük után megszorítottuk, majd kis térfogatra bepároltuk. Diizopropil-éter hozzáadása után 85 %-os hozammal, 5,4 g mennyiségben nyertük ki az MNP-gThr(tBu)-(R,S)mLys(Boc)-OH-t, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(II) gradiens, 25O nm]: a retenciós idő 9»9 min és
10,2 min (két diasztereoizomer); és
- tisztaság: 93 m%.
»·«
- 15 Ε) 5θ ml metilén-kloridban feloldottunk 2,4 g (10 mmol) Z-Pro-OH-t és 2,7 g (12 mmol) H-Leu-OtBu«HCl-t. A keletkezett oldathoz hozzáadtunk először 3 ml (22 mmol) TEA-t, majd 4,4 g (10 mmol) BOP-ot és 1,35 g (10 mmol) 1-hidroxi-benztriazolt. Öt óra elteltével a reakcióelegyet telitett nátrium-klorid-oldattal egyszer mostuk, majd szárazra pároltuk. A bepárlási maradékot megosztottuk etil-acetát és viz között. A szerves fázist 2 m%-os kálium-hidrogén-szulf át-oldattal, 5 m%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, majd vízzel semlegesre mostuk, nátrium-szulfáton megszáritottuk és szárazra pároltuk. A bepárlási maradékot feloldottuk diizopropil-éterben» és a keletkezett oldatból petroléterrel 92,7 %-os hozammal 3*8 g mennyiségű Z-Pro-Leu-OtBu-t nyertünk ki, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(I) gradiens, 23O nm]: a retenciós idő 28,6 min; és
- a tisztaság: 100 %-os.
F) 70 ml metanolban feloldottunk 1,5 g-ot (3»5 mmolt) az
E) pont szerint előállított dipeptidből. A keletkezett oldathoz nitrogénatmoszférában hozzáadtunk 100 mg szénhordozós palládiumkatalizátort, majd - igen lassú ütemben - 2,9 ml (18 mmol) trietil-szilánt. Három óra elteltével a reakcióelegyet szűrtük, és a szürletet bepároltuk. Ilyen módon 100 %-os hozammal 1 g H-Pro-Leu-OtBu-t kaptunk, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(I) gradiens, 23O nm]: a retenciós idő 15»9 min; és
- a tisztaság 93 m%-os.
G) 15 ml metilén-kloridban feloldottunk 1,1 g-ot (1,9 mmolt) a D) pont szerint előállított pszeudopeptidből, majd a keletkezett oldathoz hozzáadtunk 200 ml dimetil-for mamidban feloldott, 320 mg (2,3 mmol) mennyiségű 1-hidroxi-benztriazolt. A keletkezett elegyet 0 °C-ra hütöttük, majd beadagoltunk 392 mg (1,9 mmol) * «
DCCI-t. Negyed óra elteltével az elegyet beleszürtük egy lombikba, amely 5^0 mg-ot (1,9 mmolt) tartalmazott az E) pont szerint előállított C-terminális dipeptidből. A keletkezett elegyet egy éjszakán keresztül állni hagytuk, majd ledesztilláltuk az oldószert, A maradékot megosztottuk etil-acetát és viz között. A szerves fázist 2 m%-os kálium-hidrogén-szulfát-oldattal, majd 5 m%os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, végül vízzel semlegesre mostuk, ezután nátrium-szulfáttal megszáritottuk. A szerves fázist ezután bepároltuk, és a bepárlási maradékot diizopropil-éterrel eldörzsöltük. Ilyen módon 77 %-os hozammal 12,3 g MNP-gThr(tBu)-(B,S)mIys(Boc)-Pro-Leu-OtBu-t állítottunk elő, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [izokratikus, 65 v% B) eluálószer, 230 nm és 254 nm]í a retenciós idő 8,2 és 8,6 min; és
- a tisztaság 100 %-os.
H) A G) pont szerint előállított vegyület 1,4 g-ját (1,3 mmol-ját) jeges fürdőben 8 percig kezeltük 5 ml koncentrált sósavval, majd a reakcióelegyet szárazra pároltuk. A maradékot felvettük vízzel, és a vizes elegyet liofilizáltuk. Ilyen módon 910 mg nyersterméket kaptunk, amelyet BP-DC módszerrel Dynamax-oszlopon (3000 x 10”^θ m, C18, 12 ^um, 21 x 250 mm) tisztítottunk. A kiszorításhoz 2,7 ml/min térfogatsebességgel olyan, 50 jnM benzil-dimetil-dodecil-ammónium-bromid-oldatot (BDDA-Br-oldatot) alkalmaztunk, amelynek elkészítéséhez oldószerként 90 v% vizet, 9,9 v% acetonitrilt és 0,1 v% trifluor-ecetsavat tartalmazó elegyet használtunk fel. így három MNP-gThr-mLys-Pro-Leu-OH-frakciót kaptunk: 320 mg A-izomert, 320 mg B-izomert és 160 mg diasztereoizomer elegyet. Az elemzési adatok a következők:
- HPLC [(I) gradiens, 250 nm]: a retenciós idő 16,1 min és min; és
- a tisztaság 99,9 m%-os·
I) A H) pont szerint előállított A-izomerből 515 mg-ot (0,4 mmolt) feloldottunk 15 ml metanolban. A keletkezett oldathoz hozzáadtunk hangyasawal aktivált palládiumszivacsot, valamint 5 ml mennyiségű hangyasavban feloldva 120 mg ammónium-formiátot · Két óra elteltével a katalizátort kiszűrtük, és az oldószer ledesztillálása után a maradékot felvettük vízzel. A vizes fázist dietil-éterrel mostuk, majd liofilizáltuk. Az igy kapott nyersterméket ioncseréléssel tisztítottuk 16 x 200 mm-es Pharmacia XK16-os oszlopon (S-Sepharose Fást Flow) A) eluálószerként 6,0-os pH-értékü, 0,015 M ammónium-acetát-oldatot, B) eluálószerként pedig ugyancsak 6,0-os pH-értékü, 0,5 M ammónium-acetát-oldatot használva· Az eluálást 5 ml/min térfogatsebességgel hajtottuk végre lineáris gradiens alkalmazása mellett - miközben a B) eluálószer koncentrációját az A) eluálószerben a 0-25 v% tartományban változtattuk 30 percig, majd izokratikusan 40 percig.
Az összegyűjtött frakciókat két percenként elemeztük, és a cím szerinti vegyületet tartalmazókat liofilizáltuk. A liofilizált anyag elemzési adatai a következők voltak:
- HPLC [(III) gradiens, 250 nm]: a retenciós idő 12,8 min;
- a tisztaság 97 m%;
- aminosav-összetétel: Pro(l) 1,0; Leu(l) 1,0; NH^(2) 1,9;
- ’hl-NMR (200 MHz; ^-DMSO; 50 °C) az A-izomerre (ITF 1452): d (1H; NH- T) 7,79; d (1H; NH-L) 6,93; π (2H; Coí-P, o
Cx- T) 4,51 + 4,21; q (1H; C ^-L) 5,84; m (1H; C<T-P) o
5,74; m (5H; C <T2P; C/3-gT; C<K-mK) 5,65 + 5,37í m (2H;
• * — ΛΟ C8-mK) 2,75; m (4H; Οβ ,CT-P) 2,19 + 1,74; m (9Η;
C£, CT , C<T-mK; C/3,Cr-L) 1,73 + 1,13; d (JH; Cr_gT) 1,06; d (3H; θΛ) 0,88; d (JH; C cT2L) 0,87.
Az A-izomer előállításához alkalmazott eljárással előállítottuk a B-izomert (ITF 1443) is, amelyre vonatkozóan a következő elemzési adatokat közöljük:
^H-NMR (200 MHz; ^-DMSO; 30 °C)s d (O,9H; NAH-gT) 8,13; d (0,lfi; Λ-gT) 8,03; d (O,1H;
N®H-L) 7,45; d (0,9H; N^H-L) 7,36’, m (2H; C^-P, Cy-T) 4,37 + o
+ 4,24; m (1H; Cx-L) 3,86; m (JH; C Γ-P; C2-T) 3,56 + 3,38; o m (1H; 3,16; m (2H; Cé-mK) 2,76; m (13H; C£ ,ΟΤ'-Ρ;
C β ,CT ,C<T-mK; C/3 ,0Γ-1) 2,23 + 1,15; d (3H; CT-gT) 1,03; d (6H; Cf-L) 0,88.
3. PÉLDA
H-gThr-(R,S)mLys-Pro-Gln-OH.AoOH (ITP 1193) előállítása
A) 5,6 g (20 mmol) Z-Gln-OH-t feloldottunk 60 ml jégecetben, majd az igy keletkezett oldathoz hozzáadtunk 10,4 g (40 mmol) Trt-OH-t (a Trt jelentése: tritil) , 3,77 ml (40 mmol) ecetsavanhidridet, továbbá kénsavat. A reakcióelegyet felmelegitettük 50 °C-ra és ezen a hőmérsékleten tartottuk másfél óra hosszat, majd lehütöttük a környezet hőmérsékletére és vízzel kezeltük. A keletkezett csapadékot kiszűrtük, vízben szuszpendáltuk, és a vizes szuszpenziót etil-acetattal háromszor extraháltuk. A szerves fázisokat összegyűjtöttük, majd megszorítottuk. Bepárlást követően n-hexán beadagolásával 77 %-os hozammal 8,12 g Z-Gln(Trt)-OH-t csaptunk ki, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(II) gradiens, 23O nm]: a retenciós idő 11,3 min; és
- 19 - a tisztaság: 100 %-os·
B) 50 ml metilén-kloridban feloldottunk 4 g-ot (7,6 mmolt) az A) pont szerint előállított termékből, majd az igy keletkezett oldathoz hozzáadtunk 153 /Ul bór-trifluor-éterátot és 4,2 g (15»5 mmol) t-butil-2,2,2-triklór-acetimidátot (TBTA). Tiz perc eltelte után a reakcióelegyet először telített vizes nátrium-hidrogén-karbonát-oldattál, majd vízzel mostuk, megszáritottuk, ezt követően szárazra pároltuk. A bepárlási maradékot feloldottuk 60 ml metanolban, majd viz beadagolásával 81 %-os hozammal 5,5 g Z-Gln(Trt)-OtBu-t csaptunk ki, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(II) gradiens, 25O nm]: a retenciós idő 17,7 min; és
- a tisztaság 100 %-os.
C) 200 ml metanolban feloldottunk 2,5 g-ot (4,5 mmolt) a B) pont szerint előállított vegyületből, a keletkezett oldatot nitrogénnel telítettük, majd hozzáadtunk hangyasavval aktivált palládiumszivacsot és ammónium-formiát-oldatot (200 mg-ot 5 ml-ben). A katalizátort 5 óra elteltével kiszűrtük, és a metanolos oldatot szárazra pároltuk. A bepárlási maradékot felvettük etil-acetáttal, és az etil-acetátos elegyet egyszer mostuk 5 m%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, majd a mosást addig folytattuk vízzel, amíg az elegy kémhatása semleges nem lett. A szerves oldatot megszáritottuk és kis térfogatra bepároltuk. A töményitett oldatot 0 °C-ra hütöttük és 1 ekvivalens mennyiségű (1,08 ml) 4 M etil-acetátos sósavoldattal kezeltük. Ezt követőleg petroléter beadagolásával 100 %-os hozammal 2 g HC1»H-Gln(Trt)-OtBu-t csaptunk ki, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(II) gradiens, 250 nm]: a retenciós idő 7,4 min; és
- a tisztaság 100 %-os.
··· «te
D) 15 ml metilén-kloridban feloldottunk 1,15 g (4,6 mmol) Z-Pro-OH-t, majd az igy keletkezett oldathoz hozzáadtunk 250 /U1 dimetil-formamidban feloldva 0,7 g (5,5 mmol) l-hidroxi-benztriazolt. Az igy kapott oldatot jeges fürdőbe helyeztük, majd beadagoltunk 0,95 g (4,6 mmol) DCCI-t. A reakcióelegyet 15 perc elteltével beleszürtük egy olyan lombikba, amely 2 g-ot (4,1 mmolt) tartalmazott a C) pont szerint előállított termékből, majd 5θ /U1 (4,1 mmol) ΤΞΑ-val semlegesítettük. Az oldószert 18 óra elteltével ledesztilláltuk, és a maradékot megosztottuk etil-acetát és viz között. A szerves fázist először 2 n$-os kálium-hidrogén-szulfát-oldattal, majd 5 m%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, végül vízzel semlegesre mostuk, ezt követően nátrium-szulfáttal megszáritottuk. A szerves oldatot bepároltuk kis térfogatra, majd a töményitett oldatból 95 %-os hozammal 2,6 g Z-Pro-Gln(Trt)-0tBu-t csaptunk ki n-hexánnal. Az elemzési adatok a következők:
- HPLC [(II) gradiens, 23O nm]: a retenciós idő 16,8 min; és
- a tisztaság 100 %-os.
E) A C) pontban leirt módon hidrogéneztünk hangyasavval palládiumszivacs jelenlétében 100 ml metanolban 2,4 g -ot (5,5 mmolt) a D) pont szerint előállított termékből. A reakcióelegyből kiszűrtük a katalizátort, majd a szűrlétből ledesztilláltuk a metanolt. A visszamaradt anyagot etil-acetáttal felvettük, és az etil-acetátos elegyet 5 m%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal egyszer mostuk, megszáritottuk, majd bepároltuk. A koncentrált szerves fázist 0 °C-on 875 /hl 4 M etil-acetátos sósavoldattal kezeltük, majd petroléter beadagolásával 100 %-o® hozammal 2 g mennyiségű HCl*H-Pro-Gln(Trt)-0tBu-t nyertünk ki. Az elemzési adatok a következők:
····
- HPLC [(II) gradiens, 230 nm]: a retenciós idő 7,8 minj és
- a tisztaság 100 %-os.
F) 15 ml metilén-kloridban feloldottunk 1,58 g-ot (2,26 mmolt) a 2· példa D) pontja szerinti pszeudopeptidből, ég az igy keletkezett oldathoz 200 ,ul dimetil-formamidban feloldva hozzáad· tünk J82 mg (2,82 mmol) l-hidroxi-benztriazolt· Az elegyet 0 °Cra hütöttük, majd beadagoltunk 466 mg (2,26 mmol) DCCI-t. Negyed óra elteltével az előzőek szerint elkészített elegyet közvetlenül be leszűrtük egy olyan lombikba, amely 1,31 g-ot (2,26 mmolt) tartalmazott az E) pont szerint előállított dipeptidből. A kapott elegyet semlegesítettük 318 /U1 (2,26 mmol) TEA-val, és egy éjszakán keresztül állni hagytuk. Az oldószer ledesztillálása után visszamaradt anyagot etil-acetát és viz között megosztottuk. A szerves fázist először 2 m%-os kálium-hidrogén-szulfát-oldattal, majd 5 m^-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldattal, végül vízzel semlegesre mostuk, majd nátrium-szulfáttal megszakítottuk. A szerves fázist szárazra pároltuk, és a bepárlási maradékot felvettük 15 ml mennyiségű, etil-acetátot és n-hexánt 1:1 térfogatarányban tartalmazó eleggyel, majd n-hexán beadagolásával 92 %-os hozammal 2,3 g MNP-gThr(tBu)-(R,S)mLys(Boc)-Pro-Gln(Trt)-OtBu-rt csaptunk ki, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(II) gradiens, 23O nm]: a retenciós idő 21,5 min és 22,0 min (két diasztereoizomer); és
- a tisztaság 92,5 m%-os.
G) Az F) pont szerint előállított, retroinvertált tetrapeptidből 2,13 g-ot (1,87 mmolt) a környezet hőmérsékletén feloldottunk 40 ml mennyiségű, metilén-kloridot és trifluor-ecetsavat 1:1 térfogatarányban tartalmazó elegyben. Az oldószert másfél óra ···· • .·· ···. .· • *· ··: :··. ··· ’ ·* ·· ··
- 22 elteltével ledesztilláltuk, és dietil-éter beadagolásával nyersterméket csaptunk ki 1,416 g (95 %) mennyiségben. Az elemzési adatok a következők:
- HPLC [(I) gradiens, 2J0 nm]: a retenciós idő 12,4 min;
- a tisztaság 91,5 m%-os|
- az aminosav-összetétel: Pro(l) 1,0; Gln(l) 1,0; NH^(3) 2,9í és
- a peptidtartalom: 92,7 m%.
A védett, retroinvert ált tetrapeptidet KP-DC módszerrel Dynamax-oszlopon (5θΟΟ x 10 m, C 18, 12 /Um, 21,4 x J00 mm) tisztítottuk. Kiszoritóközegként 2,7 ml/min térfogatsebességgel 0,1 m% trifluor-ecetsavat tartalmazó 50 mM vizes BDDA-Br-oldatot használtunk fel. így 81 %-os hozammal 1,04 g terméket állítottunk elő, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(I) gradiens, 250 nm]: a retenciós idő 12,4 min; és
- a tisztaság 100 %-os.
Abban az esetben, ha a B) eluálószer mennyiségét az A) eluálószerben 20 perc alatt 0 v%-ról fokozatosan 20 v%-ra növeltük, a két diasztereoizomerre 17,5 min és 17,8 min retenciós időket határoztunk meg 100 %-os tisztaság mellett.
H) 15 ml 5-as pH-ju 0,25 M vizes ammónium-f ormiát-oldatban feloldottunk 875 mg-ot (1,1 mmolt) a G) pont szerint előállított védett, retroinvertált tetrapeptidből, majd az igy keletkezett oldatot hozzáadtuk 5,0-as pH-ju, 0,5 M ammónium-f ormi át-oldattal aktivált palládiumszivacshoz. Az igy keletkezett reakcióelegyet 60 °C-on negyed órán át állni hagytuk, hogy a reakció lejátszódjék. Ezt a kezelést a reakcióhőmérséklet 70 °C-ra emelésével négyszer megismételtük, amikor is a HPLC-elemzés szerint eltűnt a kiindulási anyag. Ezt követőleg a katalizátort kiszűrtük, a vi-
- 25 zes fázist etil-acetáttal mostuk, majd liofilizáltuk. A nyersterméket ioncseréléses módszerrel tisztítottuk CM-Sephadex C-25tel töltött, 26 x 500 mm-es Pharmacia XK26-OS oszlopon. Eluálószerként A) 6,0 pH-ju, 0,015 M ammónium-acetát-oldatot és B) 6,0 pH-ju, 0,5 M ammónium-acetát-oldatot használtunk fel. Az eluálást úgy végeztük, hogy a 4 ml/min térfogatsebességgel oszlopra vezetett eluálófoly adókban a B) eluálószer mennyiségét a 560 perces eluálási idő alatt lineáris gradiens szerint 0 vígról 100 v%-ra növeltük. A 5,7 ml-ként összegyűjtött frakciók közül azokat liofilizáltuk, amelyek a cim szerinti vegyületet tartalmazták, amelynek elemzési adatai a következők:
- HPLC [(IV) gradiens, 25O nm]: a retenciós idő 6,5 min és
7,7 min (két diasztereoizomer 1:1 arányú elegye);
- tisztaság: 99 m%;
- aminosav-összetétel: Pro(l) 1,0; Gln(l) 1,0; NH^(5) 2,9;
peptidtartalom: 966 /Umol (515 mg);
- hozam: 88 %; és
- ^H-NMR (200 MHz; dimeti 1-szulf oxid):
d (0,5H; ΝΉΤ) 8,26; d (0,5H; NHT) 7,99; d (0,5H; NHQ) 7,49; s (1H; N Q) 7,51; d (0,5H; NxQ) 7,04; s (1H; N<*Q) 6,67; m (1H; T) 4,51; m (1H; C^P) 4,22; m (2H; Co<Q;
C^P) 5,θ5 + 5,70; m (5H; C£T; C<xK; C í’p) 5,64 + 5,54;
m (2H; CgK) 2,74; m (8H; C£>P; C/3K; CP θ C € Q) 2,17 + + 1,66; s (6H CH^COOH) 1,85; m (6H; C^P; C Γ e C 5κ)
1,64 + 1,12; t (5H; C^T) 1,04.
A találmány szerinti vegyületek közül néhányat kiválasztottunk biológiai aktivitásuk vizsgálata céljából. A következőkben ezeket a biológiai vizsgálatokat ismertetjük.
• · · · • · • · · « • ·
- 24 Rágcsáló-lépsejtek serkentése in vitro IFN-T -termelésre
BALB/C egerek lépéből lépsejteket nyertünk ki egysejszuszpenzió formájában. Az igy kapott szplenocitákból 5 borjumagzatszérumot (FOS) (HyClone, ST, Utah, Amerikai Egyesült Államok) tartalmazó RPMI 1640-es tápközeg (Flow Láb., Hertz, Egyesült Királyság) ismét szuszpenziót készítettünk, amelyben a sejtek vég7 koncentrációja 10 /ml volt. Az igy kapott szuszpenziót a megadott koncentrációban alkalmazott tesztvegyületek jelenlétében 96-lyuku lemezeken inkubáltuk 37 °C-on 24 óra hosszat. Az inkubálás befejezése után a felüluszó oldatot összegyűjtöttük, 22 /um-es szűrőn átszűrtük, majd addig tartottuk -80 °C-on, amíg kereskedelmi forgalomban levő ELISA-készlettel (Genzyme, Boston, MA, Amerikai Egyesült Államok) el nem végeztük a vizsgálatot.
Az eredményeket az 1. táblázat tartalmazza.
1. táblázat
Dózis (/Ug/ml)
Egység/ml (stimulációs index)
1. kísérlet 2. kísérlet 3, kísérlet
0 (kontroll) 51 51 41
0,1 55 (1,1) 57 (1,8) 60 (1,5)
1,0 60 (1,9) 52 (1,7) 60 (1,5)
10,0 49 (1,6) 60 (1,9) 68 (1,7)
Ha a kontrollal - vagyis a kezeletlen sejtekkel - kapott eredményeket (egység/ml és stimulációs index) összehasonlítjuk a többi hasonló eredménnyel, megállapíthatjuk, hogy a találmány szerinti vegyületek dózisfüggően képesek serkenteni a rágcsálók lépsejtjeinek (szplenocitáinak) IFN-T-termelését. A találmány
- 25 szerinti vegyületek közül az egyik leghatásosabb vegyület az 1. példa szerinti: már 1,0 /Ug/ml dózisban alkalmazva is ténylegesen megduplázza a szóban forgó citokin mennyiségét.
Rágcsálók hasüregi falósejtjeinek (makrof ág jajnak) serkentése IL-1-termelésre
Hasüreg! rágcsáló-falósejteket nyertünk ki olyan módon, hogy BALB/O egerek hasüregébe hidrolizált keményitőoldatot (BDH Chemicals, Poole, Dorset, Egyesült Királyság) fecskendeztünk három nappal az állatok megölése előtt. Ezt követően a hasüregi sejteket összegyűjtöttük olyan módon, hogy a hasüreget kimostuk 10 m% FCS-t tartalmazó RPMI 1640-es oldattal. A kinyert sejteket ugyang abban az oldatban ujraszuszpendálva 10 sejt/ml koncentrációjú szuszpenziót állítottunk elő, amelyet 96-lyuku lemezeken inkubáltunk 57 °C-on 96 órán keresztül a vizsgált vegyületek jelenlétében. Az inkubálás befejezése után a felüluszó oldatokat összegyűjtöttük és citokinadagoláshoz használtuk őket erre a célra megfelelő, kereskedelmi forgalomban levő ELISA-készlet (Genzyme, Boston, MA, Amerikai Egyesült Államok) segítségével.
Az eredményeket a 2. táblázat tartalmazza.
2. táblázat
Dózis (/Ug/ml) Egység/ml (stimulációs index)
1. kísérlet 2. kísérlet 5. kísérlet
0 (kontroll) 15 15 15
0,01 6 (0,4) 90 (6,0) 150 (10,0)
0,1 2 (0,1) 60 (4,0) 160 (10,7)
1,0 2 (0,1) 47 (5,1) 155 (10,5)
10,0 2 (0,1) 50 (3,?) 140 ( 9,3)
- 26 • ·
Ha az egység/ml-ben, valamint a stimulációs indexre vonatkozóan kapott eredményeket összehasonlítjuk a kontroli-eredményekkel, megállapíthatjuk, hogy a vizsgált vegyületek serkentő hatása figyelemre méltó; mindenekelőtt a 3· példa szerinti vegyületé, amely valamennyi alkalmazott dózisban mintegy tízszeresére növelje (9,3 4 IS< 10,7) az IL-1-termelést.
Rágcsálók hasüregi sejtjeinek serkentése nitrogén(II)-oxid termelésére
A hasüreg! sejteket az előző vizsgálatnál ismertetett módon nyertük ki, majd a vizsgált vegyületek és 30 /Ug/ml lipopoliszacharid jelenlétében 37 °C-on 96 óra hosszat inkubáltuk őket. Az inkubálás befejezése után a felüluszó oldatokat összegyűjtöttük, majd Palmer R.M.J. és munkatársai módszerével [Natúré, 327» 524 (1987)] kemilumineszcenciás méréssel meghatároztuk a nitrogén (II )-oxid-tartalmat .
Az eredményeket a 3» táblázat tartalmazza,
3. táblázat nmol/ml (stimulációs index)
Dózis (/Ug/ml) 1. kísérlet 2. kísérlet 3» kísérlet
0 (kontroll) 20 20 20
0,01 43 (2,2) 85 (4,3) 50 (2,5)
0,1 59 (3,0) 61 (3,1) 60 (3,0)
1,0 77 (3,9) 66 (5,3) 66 (3,3)
10,0 57 (2,9) 79 (4,0) 85 (4,4)
• · ·
- 27 Ha a nmol/ml-ben, valamint a stimulációs indexre vonatkozóan kapott eredményeket összehasonlítjuk a kontroli-eredményekkel, azt tapasztaljuk, hogy a találmány szerinti vegyületek valamenynyi alkalmazott dózisban serkentik a nitrogén(II)-oxid-termelést. Kiemelkedően nagy stimulációs csúcs jelentkezik a 2. példa szerinti vegyület esetében már 0,01 /Ug/ml koncentráció alkalmazása esetén is (IS = 4,3).
A találmány szerinti vegyületek hatásának vizsgálata a rágcsálók hasüregi falósejtjeinek leishmanicid aktivitására
A már leirt módon összegyűjtött hasüregi falósejteket 96lyuku, lapos fenéklemezekre (Nunc, Roskiled, Dánia) helyeztük.
A sejtek koncentrációja a lemezen 10/100 /U1 volt. A sejteket 24 óra hosszat inkubáltuk 37 °C-on. Az inkubálás befejezése után a lyukakra nem tapadt sejteket elkülönítésük után kidobtuk, míg a lyukakra tapadó sejteket a tápközeggel háromszor mostuk, és 24 órán át a vizsgált vegyületekkel együtt inkubáltuk. A sejteket ezt követően 24 órás inkubálás alatt Leishmania major promasztigótákkal fertőztük. (A Leishmania major PVL49 törzset Dr. Neal R.A. - London School of Hygiene and Tropical Medicina, London, Egyesült Királyság - küldte.) A fertőzés befejezése után minden egyes lyukba beleöntöttünk 100 /U1 0,01 m%-os RPMI 1640es nátrium-dodecil-szulfát-oldatot, és a lemezeken levő anyagot 30 percen keresztül inkubáltuk 37 °C-on. Ezután beadagoltunk 3θ m^ FCS-t tartalmazó Schneider-tápközeget (Schneider Drosophila médium, Gibco Láb., Grand Island, New York, Amerikai Egyesült Államok). Ezt követően minden lyukba beadagoltunk /UCi-nek megfelelő mennyiségű Aí-timidint, majd az inkubálast 37 °C-on 72 óra hosszat tovább folytattuk. Az élő paraziták ál• · · · • · • · · · • · · ί
tál a hasüregi falósejtekbe beépített radioaktív anyag mennyiségét - amely összefüggésben van a fertőzöttség fokával, következésképpen a sejtek leishmanicid aktivitásával - úgy határoztuk meg, hogy sejtgyüjtő készülékkel összegyűjtöttük a sejteket, majd folyadékszcintillációe β-beütésszámláló berendezéssel mértük a radioaktivitást.
Az eredményeket a 4. táblázat tartalmazza.
4. táblázat
Dózis (/g/ml) X XX cpm (a fertőzöttség %-os csökkenése)
1. kísérlet 2. kísérlet 3. kísérlet
0 (kontroll) 18 273 18 273 18 273
0,1 5 096 (72) 17 568 (4) 18 826 (-3)
1,0 3 783 (79) 11 991 (34) 8 377 (54)
10,0 4 292 (77) 10 582 (42) 7 842 (57)
a beütesek szama percenként
XX
a kezelt ; sejtekre mért beütésszám
100 - -------- ------------- x 100
a kontroli-sejtekre mért beütésszám
A 4. táblázatban látható eredmények azt mutatják, hogy a találmány szerinti vegyületek képesek a fertőzöttség mértékének csökkentésére. Leghatásosabbnak az 1. példa szerinti vegyület bizonyult, amely a vizsgálat során alkalmazott legkisebb dózisban is képes volt 70 ?5-nál nagyobb mértékben csökkenteni a fertőzöttséget.
A mérgezéses sokk elleni in vivő védőhatás vizsgálata
Csoportonként hat 20-25 g-os BALB/C egér hasüregébe LPS-t • · · · · « • ·
- 29 (SIGMA-lipopoliszacharidőt) juttattunk 50 mg/kg testtömeg mennyiségben· A kontroli-csoportba tartozók kivételével minden egér szervezetébe juttattunk egy találmány szerinti vegyületet fiziológiás oldatban feloldva, növekvő dózisokban, 0,5 ml végtérfogattal a 0, percben (vagyis az LPS-sel együtt) vagy 50 perccel az LPS beadagolását követően. Az egereket nyolc napon át figyeltük, hogy megállapítsuk a kísérletet túlélő egerek százalékos arányát. Az egerenként 6,2 /Ug, valamint 0,62 ^ug mennyiségben alkalmazott, 1. példa szerinti vegyület mintegy 65 %-os túlélési arányt biztosított, míg abban az esetben, ha az 1. példa szerinti vegyület B-izomerét alkalmaztuk, 6,25 /Ug/egér dózis mellett mintegy 80 %, 62,5 /Ug/egér dózis mellett pedig 75 % volt a túlélő egerek aránya.
Amint már említettük, a találmány szerinti vegyületek eredményesen alkalmazhatók gyógyításra és megelőzésére minden olyan kóros és nemkóros állapot fennállása esetén, amelynél kívánatos az immunválasz erősítése vagy helyre állítása. Ebből következik, hogy a találmány szerinti vegyűleteket alkalmazni lehet például baktériumos fertőzések - főleg mérgezéses sokk - esetén, vírusos fertőzések - például herpesz - esetén, parazita-fertőzöttség esetén, az AIDS-nek tulajdonítható fertőzések esetén, kórmegelőzés céljából fiataloknál és idősebbeknél egyaránt, súlyos égési sérülést szenvedettek kezelésére, dialíziskor, daganatos betegek kezelésére és szervátültetésnél. Mindezeken túlmenően a találmány szerinti vegyűleteket hatásjavító adalékként is lehet használni vakcinákban.
A találmány tárgyát képezi az uj vegyületeknek mint immunrendszer-serkentő szereknek az alkalmazása is, valamint ennek az alkalmazásnak valamennyi ipari vonatkozása, beleértve a talál« ♦ • · · V · • · ·« · « *
- 30 mány szerinti vegyületeket hatóanyagként tartalmazó gyógyszerkészítményeket is.
A tervezett gyógykezelésekhez a (I) általános képletű vegyületeket megfelelően formált gyógyszerkészítmények alakjában lehet bejuttatni a beteg szervezetébe, a szakirodalmi ismeretekkel összhangban [v.ö. például: Eemington’s Pharmaceutical Sciences Handbook, Mack Pub. Co., XVII. kiadás, N.Y. Amerikai Egyesült Államok]. Az adagolás természetesen több tényezőtől függ, igy a kezelendő betegség súlyosságától és a kezelt beteg állapotától, például a súlyától, a korától és a nemétől.

Claims (6)

  1. Szabadalmi igénypontok
    1. Retroinvertált tetrapeptidek - szabad sav, valamint farmakológia! szempontból elfogadható sók, észterek és amidok formájában, továbbá mindezek minden lehetséges diasztereoizomer alakjában amelyek (I) általános képletében
    - R jelentése hidrogénatom vagy a treonin-oldalláncnak megfelelő csoport;
    - R^ jelentése az arginin-, a leucin- vagy a glutamin-oldalláncnak megfelelő csoport; és
    - Rg jelentése hidrogénatom vagy anyagcsere révén lebontható acilcsoport;
    azzal a megkötéssel, hogy ha R^ az arginin-oldalláncnak megfelelő csoport, R nem lehet a treonin-oldalláncnak megfelelő csoport.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti retroinvertált tetrapeptidek közül a gGly-(R,S)mLys-Pro-Arg és annak valamennyi tiszta diasztereoizomer formája.
  3. 3. Az 1. igénypont szerinti retroinvertált tetrapeptidek közül a gThr-(R,S)mLys-Pro-Leu és annak valamennyi tiszta diasztereoizomer formája.
  4. 4. Az 1. igénypont szerinti retroinvertált tetrapeptidek közül a gThr-(R,S)mLys-Pro-Gln és annak valamennyi tiszta diasztereoizomer formája.
  5. 5. Az 1. igénypont szerinti retroinvertált tetrapeptidek alkalmazása hatóanyagként az immunrendszer működésének módosítására, valamint a mérgezéses sokk megelőzésére és kezelésére.
    • · · * • · · · · • < 4 « · · ·
  6. 6. Gyógyszerkészítmények, azzal jellemezve, hogy az immunrendszer működésének módosításához, valamint a mérgezéses sokk megelőzéséhez és kezeléséhez elegendő mennyiséget tartalmaznak - adott esetben farmakológiai szempontból elfogadható segédanyagok) mellett - legalább egy 1. igénypont szerinti retroinvertált tetrapeptidből.
HU9402952A 1992-04-16 1993-04-02 Process for producing retroinverted tetrapeptides and pharmaceutical compositions containing them as active component HUT70179A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ITMI920939A IT1254883B (it) 1992-04-16 1992-04-16 Tetrapeptidi parzialmente modificati e retroinvertiti, analoghi di frammenti della proteina c-reattiva.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HU9402952D0 HU9402952D0 (en) 1995-02-28
HUT70179A true HUT70179A (en) 1995-09-28

Family

ID=11362983

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9402952A HUT70179A (en) 1992-04-16 1993-04-02 Process for producing retroinverted tetrapeptides and pharmaceutical compositions containing them as active component

Country Status (18)

Country Link
US (2) US5521159A (hu)
EP (1) EP0636140B1 (hu)
JP (1) JP3036844B2 (hu)
KR (1) KR100255526B1 (hu)
CN (1) CN1039124C (hu)
AT (1) ATE157987T1 (hu)
AU (1) AU667096B2 (hu)
CA (1) CA2118136C (hu)
DE (1) DE69313842T2 (hu)
ES (1) ES2109487T3 (hu)
FI (1) FI944224A0 (hu)
HU (1) HUT70179A (hu)
IT (1) IT1254883B (hu)
NO (1) NO943903L (hu)
NZ (1) NZ251697A (hu)
TW (1) TW242145B (hu)
WO (1) WO1993021208A1 (hu)
ZA (1) ZA932614B (hu)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IT1254883B (it) * 1992-04-16 1995-10-11 Italfarmaco Spa Tetrapeptidi parzialmente modificati e retroinvertiti, analoghi di frammenti della proteina c-reattiva.
IT1271486B (it) * 1993-10-12 1997-05-28 Italfarmaco Spa Oligopeptidi immunomodulatori derivati di frammenti della proteina c- reattiva
ID29979A (id) 1999-01-02 2001-10-25 Aventis Pharma Gmbh Turunan asam malonat baru, proses pembuatannya, penggunaannya dan komposisi sediaan farmasi yang mengandung bahan tersebut (penghambatan aktivitas faktor xa)

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2052517T3 (es) * 1986-07-16 1994-07-16 Eniricerche Spa Analogos de tuftsina parcialmente retroinversos, metodo de preparacion de los mismos y composiciones farmaceuticas que los contienen.
IT1254883B (it) * 1992-04-16 1995-10-11 Italfarmaco Spa Tetrapeptidi parzialmente modificati e retroinvertiti, analoghi di frammenti della proteina c-reattiva.

Also Published As

Publication number Publication date
EP0636140B1 (en) 1997-09-10
CN1078476A (zh) 1993-11-17
US5578575A (en) 1996-11-26
FI944224A (fi) 1994-09-13
DE69313842D1 (de) 1997-10-16
FI944224A0 (fi) 1994-09-13
NZ251697A (en) 1995-10-26
AU667096B2 (en) 1996-03-07
EP0636140A1 (en) 1995-02-01
WO1993021208A1 (en) 1993-10-28
AU3951493A (en) 1993-11-18
ZA932614B (en) 1993-10-26
ITMI920939A0 (it) 1992-04-16
ES2109487T3 (es) 1998-01-16
CA2118136A1 (en) 1993-10-28
DE69313842T2 (de) 1998-04-09
JPH07505640A (ja) 1995-06-22
CN1039124C (zh) 1998-07-15
HU9402952D0 (en) 1995-02-28
KR100255526B1 (ko) 2000-05-01
NO943903D0 (no) 1994-10-14
IT1254883B (it) 1995-10-11
CA2118136C (en) 2002-03-26
TW242145B (hu) 1995-03-01
NO943903L (no) 1994-12-15
ATE157987T1 (de) 1997-09-15
ITMI920939A1 (it) 1993-10-16
JP3036844B2 (ja) 2000-04-24
US5521159A (en) 1996-05-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3266311B2 (ja) 新規ポリペプチドおよびこれを用いる抗hiv剤
FI94350B (fi) Menetelmä T-soluavustaja-aktiivisuutta omaavien peptidien valmistamiseksi
JPH10330397A (ja) サイトカイン調節剤およびサイトカインレベルの変化に関連する病状および状態における使用方法
JP2000256397A (ja) 新規な環状テトラペプチド誘導体とその医薬用途
US7220725B2 (en) Pharmaceutical composition comprising an analgesic peptide and method for treating pain
CH637111A5 (fr) Composes polypeptidiques a activite thymique ou antagoniste et leurs procedes de synthese.
AU2001280052A1 (en) Pharmaceutical composition comprising an analgesic peptide
EP2046813A2 (de) Proteinbindende methotrexat-derivate und diese enthaltende arzneimittel
HUT70179A (en) Process for producing retroinverted tetrapeptides and pharmaceutical compositions containing them as active component
HUT75538A (en) Oligopeptides derived from c-reactive protein fragments
EP0382251B1 (en) New adamantyl comprising tripeptides, derivatives and hydrochlorides thereof, their preparation and use
AU639595B2 (en) Novel oligopeptides exhibiting selective inhibiting effect upon the proliferation of hemopoietic cells, pharmaceutical composition comprising the same and process for the preparation of the novel oligopeptides and compositions
AU671118B2 (en) Tachykinin antagonist tricyclic compounds, preparation of same and pharmaceutical compositions containing such compounds
US4018754A (en) Novel polypeptides having ACTH-like action
WO2024037263A1 (zh) 一种体内低毒性的抑制金葡菌毒素产生的合成肽及其应用
US6342481B1 (en) Oligopeptides derived from C-reactive protein fragments
CA2127553C (en) Peptides with organo-protective activity, process for their preparation and their use in the therapy
JPH0672152B2 (ja) チモシンα1―フラグメント及び該化合物を含有する免疫調節剤
JP3117985B2 (ja) 細菌性ショック治療剤
DE4340111A1 (de) Tumor-Nekrose-Faktor-alpha inaktivierende Peptide
JPH03271300A (ja) 新規ペプチド

Legal Events

Date Code Title Description
DFC4 Cancellation of temporary protection due to refusal