HUT69935A - Vaccines containing non-ionic surfactant vesicles - Google Patents

Vaccines containing non-ionic surfactant vesicles Download PDF

Info

Publication number
HUT69935A
HUT69935A HU9402904A HU9402904A HUT69935A HU T69935 A HUT69935 A HU T69935A HU 9402904 A HU9402904 A HU 9402904A HU 9402904 A HU9402904 A HU 9402904A HU T69935 A HUT69935 A HU T69935A
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
antigen
vaccine
vesicles
vesicle
nisv
Prior art date
Application number
HU9402904A
Other languages
English (en)
Other versions
HU9402904D0 (en
Inventor
James Alexander
James Macdonald Brewer
Original Assignee
Proteus Molecular Design
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Proteus Molecular Design filed Critical Proteus Molecular Design
Publication of HU9402904D0 publication Critical patent/HU9402904D0/hu
Publication of HUT69935A publication Critical patent/HUT69935A/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/44Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from protozoa
    • C07K14/45Toxoplasma
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/39Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the immunostimulating additives, e.g. chemical adjuvants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Liposomes
    • A61K9/1271Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes, liposomes coated with polymers
    • A61K9/1272Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes, liposomes coated with polymers with substantial amounts of non-phosphatidyl, i.e. non-acylglycerophosphate, surfactants as bilayer-forming substances, e.g. cationic lipids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/04Linear peptides containing only normal peptide links
    • C07K7/23Luteinising hormone-releasing hormone [LHRH]; Related peptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/555Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
    • A61K2039/55511Organic adjuvants
    • A61K2039/55555Liposomes; Vesicles, e.g. nanoparticles; Spheres, e.g. nanospheres; Polymers
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/18011Paramyxoviridae
    • C12N2760/18411Morbillivirus, e.g. Measles virus, canine distemper
    • C12N2760/18422New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10TTECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T428/00Stock material or miscellaneous articles
    • Y10T428/29Coated or structually defined flake, particle, cell, strand, strand portion, rod, filament, macroscopic fiber or mass thereof
    • Y10T428/2982Particulate matter [e.g., sphere, flake, etc.]
    • Y10T428/2984Microcapsule with fluid core [includes liposome]

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Description

A találmány tárgya vakcinákkal kapcsolatos fejlesztések, közelebbről, új adjuváns, például szintetikus antigéneket tartalmazó vakcinákban való alkalmazásra.
Sok hatásos humán és emlős vakcinában alkalmaznak legyengített kórokozókat. A patogének okozta fertőzések teljes skálájával végzett újabb kutatásokkal megfelelően védő hatású, fajspecifikus antigéneket azonosítottak, melyek rekombináns
DNS-technikákkal és tökéletesített tenyésztési, begyűjtési és tisztítási technikákkal nagy tömegben állíthatók elő. Napjainkban teljesen szintetikus peptid antigének is előállíthatok, amelyek a természetes antigén lényeges epitópjait utánozzák. Az alegység vakcinák olyan vakcinák, amelyek a kórokozó csak bizonyos alegységeit tartalmazzák, vagyis antigén tulajdonságú proteineket vagy egyedi peptid epitőpokat foglalnak magukban. A megfelelő peptidek számítógépes modellező technikákkal tervezhetők meg. Az ilyen szintetikus antigéneknek számos előnyük van, beleértve a tisztaságot, a stabilitást, a nagyfokú védettség elérhetőségét, a specifitást és a kórokozó tulajdonságok (melyek a legyengített kórokozókat tartalmazó vakcinák esetén időnként tapasztalhatók) garantált hiányát.
A kis molekulátömegű antigének, akár kémiai szintézissel, akár rekombináns technikákkal állították elő, önmagukban alacsony antigén hatást mutatnak; általában gyenge immunreakció stimulátorok. Immunogén hatásuk gyakran még hordozó proteinnel — mint pl. a tuberkulin tisztított protein származékával (PPD) — összekapcsolva is elégtelen az adekvát reakció kiváltásához.
Ez a probléma adjuvánsok alkalmazásával megoldható, az ilyen adjuvánsok azonban további nehézségeket vetnek fel. Emberek esetében jelenleg az alumínium-hidroxid az egyetlen alkalmazásra engedélyezett adjuváns. Az alumínium-hidroxid azonban nem mindegyik antigén esetében megfelelő, mivel nem fokozza a sejt-közvetített (sejtes) immunitást (CMI), amely ahhoz, hogy egy vakcina az intracelluláris patogének (mint a Leishmania és a Toxoplasma) ellen hatásos legyen, kulcsfontosságú Jellemző. A Freund-féle komplett adjuváns (FCA) stimulálja a sejtes immunitást, de humán vagy emlős alkalmazáshoz nem megfelelő, mivel granulómák, adhéziók és más toxikus mellékhatások kialakulását okozza. Az FCA helyi gyulladásos reakciót is okoz, amely hónapokig eltarthat. Sürgősen szükség van új, nem toxikus adjuvánsokra, melyek elősegítik a sejtes immunitást (CMI), lehetőleg olyan szinten, mint amilyen az FCA-val tapasztalható. Az ilyen adjuvánsok valójában akkor kulcsfontosságúak, ha az alegység vakcinák teljes hatására szükség van.
Felfedeztük, hogy az antigént magukba záró, nem ionos felületakt ív anyagból álló vezikulák (NISV) hatásos immunológiai adjuvánsokként működnek, még olyan, rövidebb peptid antigénekkel is, amelyek önmagukban gyenge immunreakciót váltanak ki. A nem ionos felületaktív anyagból álló vezikulákat gyógyszerek, például daganat a · ellenes szerek (mint a metotrexát és a doxorubicin) vivőanyagaiként Javasolták. Nincs tudomásunk arról, hogy elismerték volna a NISV antigénekre adott immunreakciót nagymértékben elősegítő hatását (még olyan esetben is, amikor az antigén önmagában minimális reakciót vált ki, mint pl. a peptid antigének esetében).
Ilyenformán, a találmány egyik tárgya legalább egy antigént, elsősorban szintetikus vagy rekombináns eredetű peptidet nem ionos felületaktív anyagból álló vezikulába (NISV) zárva tartalmazó vakcina.
A találmány másik adott immunreakciö tárgya eljárás legalább egy antigénre elősegítésére emlősben vagy nem emlős állatban, melynek során az említett NISV-be zárt, legalább egy antigént adjuk be a páciensnek.
A találmány további tárgya eljárás vakcina előállítására, melynek során NISV-be legalább egy antigént, például szintetikus vagy rekombináns eredetű peptid antigént zárunk.
A NISV kialakításához alkalmazott nem ionos felületaktív anyag bármely, megfelelő felületaktív tulajdonsággal rendelkező, gyógyszerészetilég megfelelő anyag lehet. Ezen anyagok előnyben részesített példái a glicerin-észterek. A glicerin-észterek tartalmazhatnak egy vagy két hosszabb alifás acilcsoportot, például minden egyes acilcsoportban legalább 10 szénatomot tartalmazva. A glicerin-monoészterek az előnyben részesítettek, különösen azok, amelyek 12-20 szénatomos alkanoil vagy alkenoil csoportot, például kaproil-, lauroil-, mirisztoil-, palmitoil-, öleli- vagy sztearoilcsoportot tartalmaznak. Különösen előnyben részesített felületaktív anyag az 1-monopalmitoll-gllcerin.
Az éter kötésű felületaktív anyagok szintén alkalmazhatók a találmány szerinti NISV kialakításához való, nem ionos felületaktív anyagokként. Az ilyen anyagok előnyben részesített példái a glicerinen vagy glikolon, lehetőleg maximálisan négy szénatomot tartalmazó, kis szénatomszámú alifás glikolon, leginkább az etilén-glikolon alapuló éter kötésű felületaktív anyagok. Az ilyen glikolokon alapuló felületaktív anyagok tartalmazhatnak egynél több glikol egységet, előnyösen maximum ötöt, leginkább kettőt-hármat, például a diglikol-cetil-éter vagy a polioxi-etilén-3lauril-éter. ELőnyben részesítettek a glikol- vagy glicerinmonoéterek, különösen a 12-20 szénatomos alkanil- vagy alkenilcsoportot, például kapril-, lauril-, mirisztil-, oleil- vagy sztearilcsoportot tartalmazók.
A találmányban alkalmazható etilén-oxid kondenzációs termékek közé tartoznak a W088/06882 számú nemzetközi közrebocsátási iratban leírtak, vagyis a polioxi-etilén nagy szénatomszámú alifás éter és amin felületaktív anyagok. A különösen előnyben részesített éter kötésű felületaktív anyagok az 1-monocetil-glicerin-éter és a diglikol-cetiléter. A találmányban való alkalmazhatóság szempontjából gyógyszerészetileg megfelelő anyagok kiválasztása szükséges.
elsősorban olyanoké, amelyek az amlős szervezetben könnyen
lebonthatók. Emiatt az injektálással (akár szubkután,
intramuszkulárisan, intradermálisan vagy intra-
peritoneálisan), illetve a nyálkahártyán keresztül (pl. orálisan, nazálisán, bronchiálisan, urogenitálisan vagy rektálisan) beadandó vezikulák kialakításához az említett glicerin-észtereket részesítjük előnyben. A beadási módok közül az orális alkalmazás a különösen előnyben részesített.
A hatékony vezikula képződéshez a nem ionos felületaktív anyagot megfelelő, nagyobb molekulatömegű hidrofób anyaggal kell keverni, amely kettősréteg kialakítására képes; elsősorban szteroiddal, pl. szterollal, mint a koleszterin. A szteroid Jelenléte elősegíti a kettősréteg kialakulását, amelytől a vezikula fizikai tulajdonságai függenek.
A NISV töltést kialakító amfifil molekulát is magában foglalhat, ami a NISV negatív töltését okozza. Ebből a célból savas anyagok, mint a nagy szénatomszámú alkar. vagy alkén savak (pl. palmitinsav, olajsav), illetve egyéb, savas csoportokat tartalmazó vegyületek, például a foszfátok, mint például a dialkil-foszfátok, előnyösen a nagy szénatcmszámú alkilcsoportokat tartalmazó dialkil-foszfátok (pl. a dicetil-foszfát, a foszfatidsav vagy a foszfatidil-szerin), valamint szolfát-monoészterek, mint a nagy szénatomszámú alkilcsoportot tartalmazó alkil-szulfátok (pl. cetilszulfát) alkalmazhatók.
A szteroid a nem ionos felületaktív anyag például 20-120 tömegszázalékát teheti ki, előnyösen 60-100 %-át. A negatív töltést eredményező amfifil anyag a nem ionos felületaktív anyag például 1-30 tömegszázalékát teheti ki.
'Λ*. yF
A töltést kialakító amfifil tulajdonságú anyag stabilizálja a vezikulák szerkezetét, és hatásos diszpergálódást biztosít.
A nem ionos felületaktív anyag és a membránképző hidrofób anyag nyiróerök alkalmazásával hidratációval alakítható nem ionos felületaktív vezikulákká. Az ilyen nyíróerők alkalmazásához való készülékek Jól ismertek, mint például a W088/06882 számú nemzetközi közrebocsátási iratban megemlített berendezés. A NISV kialakításához vagy részecskeméretének megváltoztatásához a hang- és ultrahangkezelés is hatásos módszer.
A NISV előállításának hatékony módszerét Collins és mtsi. írták le (J. Pharm. Pharmacol., 42, 53, 1990). Ez a NIS, a szteroid és (ha van) az amfifil anyag elegyének olvasztását, és vizes puffer Jelenlétében élénk keveréssel végzett hidratálását foglalja magában. A szuszpenzió ezután az olvadt állapot fenntartásához szükséges, magasabb hőmérsékleten mikropórusos polikarbonát membránon többször átpréselhető.
A NISV kialakításának másik lehetséges módja a szerves oldószerből, például szénhidrogén vagy klórozott szénhidrogén oldószerből (pl. kloroformból) történő rotációs filmlepárlás. A kapott vékony film az antigén - és tetszés szerint egy másik felületaktív anyag jelenlétében - foszfátpuff ereit sóoldatban hidratálható (Russel és Alexander, J, Immunoi., 14Q, 1274, 1988). Abban az esetben, ha az antigént a vezikulák kialakulásával egyidejűleg zárjuk a NISV-be, az extravezikuláris antigén a vezikulák szuszpenziójából ismert elválasztási technikákkal végzett mosással távolítható el, például gélfiltrálással vagy centrifugálással (ultracentrifugálással).
Az antigének az előre elkészített NISV-be a dehidratálásrehidratálás módszerrel (Kirby és Gregoriadis, Biotechnology, 2, 979, 1984) zárhatók be, melynek során a vizes fázisban lévő antigént az előre elkészített vezikulákba gyors fagyasztással, és az azt követő liofilizálással, illetve a fagyasztás-felolvasztás technikával zárják be (Pick,
Arch. Biophys., 212. 195,
1981). Ez utóbbi módszer során a vezikulákat összekeverik az antigénnel, és folyékony nitrogénben ismételten gyorsan lefagyasztják, majd 60 °C körüli hőmérsékletre melegítik (vagyis a megfelelő felületaktív anyag átmeneti hőmérséklete fölé).
A vezikulák a be nem zárt antigének eltávolítása érdekében például mosással és centrifugálással tovább kezelhetők. Meg kell jegyeznünk, eredményeink világosan mutatják, hogy a nem ionos felületaktív anyagok önmagukban nem hatásos adjuvánsok, vagyis a vezikuláris kialakítás kulcsfontosságú a kívánt hatás eléréséhez. Ha a kívánt adjuváns hatást akarjuk elérni, az antigént a NISV-be kell zárni.
Az alkalmazott antigén előnyösen szintetikus vagy rekombináns eredetű peptid, amely 8-50, lehetőleg 10-20 aminosavat tartalmaz. Az antigén például egy kórokozó organizmus egy vagy több B-seJt vagy B- és T-seJt epitópját utánozza, miáltal a vakcina a szóban forgó organizmus elleni antitestek semlegesítését váltja ki (ld. pl., a HÍV vírus szintetikus antigénjeinek leírását a W088/10267 és W091/13909 számú nemzetközi közrebocsátási iratainkban).
Más lehetőség szerint, a peptid immunreakciót válthat ki egy másik biológiailag aktív, elsősorban hormonális aktivitással rendelkező anyag ellen. Ez utóbbi kategória példája lehet az endogén luteinizáló hormont felszabadító hormon (LHRH; luteinising hormone-releasing hormoné) elleni immunreakció indukálása.
Az ilyen kezelés felhasználható például haszonállatok androgén szuppressziójához vagy immunkasztrálásához , és az androgén-érzékeny vagy ösztrogén érzékeny karcinoma kezeléséhez (ld. GB-B-2196969 számú nagybritanniai szabadalmi leírásunk). A peptid antigén NISV-be zárva gyakran önmagában elégséges immunogenitást mutat a vakcinaként való felhasználáshoz; ez főleg akkor fordul elő, ha a peptid Jól felismerhető epitópokat tartalmaz, s legalább kb. 12, előnyösen legalább 15 aminosavból áll.
Bizonyos esetekben az immunogenitás fokozása érdekében kívánatos lehet a peptidet valamilyen hordozóhoz kapcsolni. A megfelelő hordozók a tudományban jól ismertek, például a protein hordozók, mint a tuberkulin tisztított protein származéka (PPD), a tetanusz toxoid, a kolera toxin és B alegysége, az ovalbumin, a szarvasmarha szérum albumin, a szójabab tripezin inhibitor, a murami1-dipeptid és analógjai, valamint a Braun-féle lipoprotein. Hordozóként PPD-t alkalmazva magasabb antitest titer érhető el, ha az adott vakcinával kezelni kívánt páciens már tuberkulinérzékeny, például egy korábbi BCG oltás miatt.
NISV-be zárt antigén(ek) hagyományos gyógyszerészeti eljárásokkal alakítható(k) vakcinává, például steril, parenterálisan alkalmazható vizes vivőanyagban végzett szuszpendálással.
Bár a találmányban való alkalmazás szempontjából a szintetikus vagy rekombináns peptidek az előnyben részesített antigének, erős adjuváns hatás tapasztalható akkor is, ha protein antigéneket zárunk a NISV-be.
Antigénként szarvasmarha szérum albumin (BSA) alkalmazásával erősen pozitív eredményeket kaptunk, s még jelentősebb, hogy a toxoplazmózis ellen hatásos védettséget értünk el a Toxoplasma gondii feltárt sejtjeinek felülúszójával, NISV adjuváns felhasználásával végzett immunizálással.
Azt találtuk, hogy az injektálásos beadás gyakran leghatékonyabb módja a szubkután oltás, b főleg, hogy gyakran hatékonyabb lehet, mint az intraperitoneális beadás. Az intramuszkuláris és intradermális injektálás hatásos, talán azért, mert az injektálás helyén antigén raktár kialakulását eredményezi. Az injektálás helyén azonban nem tapasztalható gyulladásos reakció, ami az FCA alkalmazásával állandóan előfordul. Az injektálással történő beadás az egész szervezetre kiterjedő immunreakciót indukál, vagyis humorális és sejtes immunitást egyaránt. Az egy nyálkahártya felületen elvárható, (pl. orrnyálkahártyán) végzett immunizálástól hogy más nyálkahártya felületen (pl. a hörgők nyálkahártyáj án) okozzon nyálkahártya immunreakciót. A találmány szerinti vakcina nyálkahártyán keresztül is beadható.
A találmány egy másik meglepő és értékes jellegzetessége értelmében a NISV-be zárt antigének orálisan beadva gyakran eredményeznek megfelelő szintű immunreakciót, ögy tűnik, a NISV a béltraktusban képes megvédeni az antigént a megemésztéstől, legalábbis bizonyos mértékben, s képes azt változatlan formában átjuttatni a belek falán, miáltal olyan eredményeket biztosit, amilyenek korábban csak parenterális beadással voltak elérhetők.
A találmány tárgya ilyenformán eljárás antigén orális beadással aktív vakcinaként való kialakítására, melynek során az említett antigént NISV-be zárjuk.
A találmány szerinti vakcinák különösen előnyös tulajdonsága az a képesség, hogy pl. szintetikus peptid orális beadásával adjuváns hatás valósítható meg. Korábban a tudományban ezzel a Jellemzővel nem foglalkoztak. Az orális beadási mód a korábbi, injektálásos beadási módokhoz képest számos előnyökkel rendelkezik.
Elkerülhetők az injekciót kísérő fertőzések veszélyei, melyek például nem steril tűk használatából származnak. Azonkívül, hogy az egész szervezetre kiterjedő immunreakciót indukál, az orális alkalmazás nyálkahártya immunreakciót is indukálhat. Az nyálkahártya immunreakcióról úgy tartjuk, hogy sok kórokozó (pl. HÍV, Toxoplasma) elleni immunológiai védettség kialakításában Játszik fontos szerepet. Az orális alkalmazáshoz való készítmények alkalmazhatósága (a páciensek szempontjából) is nagyobb.
A specifikusan orális alkalmazáshoz való vakcinákként felhasznált vezikulák kialakításához az észter kötésű felületaktív anyagok az előnyben részesítettek, bár az éter kötésű felületaktív anyagok, különösen az 1-monocetilglicerin-éter és a diglikol-cetil-éter is alkalmazhatók. Az éterkötések savállóbbnak bizonyultak, mint a megfelelő észterkötések, s úgy tartjuk, hogy Jobban ellenállnak az emlősök gyomrában uralkodó savas környezetben történő lebomlásnak.
A találmány szerinti új vakcina által kiváltott immunreakció további vizsgálata meglepő módon azt mutatta, hogy az antitestek nagy hányada az IgG2a típusba tartozik, s IL-2 és IFN-gamma felszabadulásával kapcsolatos. Ezeket a citokineket a CD4+ T limfociták Thl alegysége ezekretálja. Úgy tartjuk, a magas IgG2a szint sejtes immunitás (CMI) kialakulásával áll kapcsolatban. Az alumínium-hidroxid elsősorban a Th2 sejteket serkenti, ami IgGl antitestek termelését eredményezi, a Freund-féle komplett adjuváns pedig - bár általában emelt szintű sejtes immunitással áll kapcsolatban - szintén magas és hosszan tartó IgGl titereket biztosít. A Th2 sejtek (IL-4 szekréció útján) nemcsak az IgGl, de az IgE szintézisének is primer szabályozói. Ilyenformán, a magas szintű, folyamatos IgGl termelés nem kívánatos a plazmában, mivel ez az IgE túltermelését is jelentheti. Újabb in vitro vizsgálatokkal megállapították, hogy a Thl és Th2 sejtek különböző antigén feldolgozási feltételekkel rendelkeznek. A Thl sejtek makrofágok által történő antigén prezentációt igényelnek, míg a Th2 sejteket a B-sejtek antigén prezentálása serkenti optimálisan (Gajewski és mtsi., Immunoi. Rév., III. 79, 1989; és Gajewski és mtsi., J. Immunoi., 146, 1750, 1991). Ögy tűnik, a makrofágok képesek elfogyasztani a liposzómákat, így ha a vezikula belsejébe antigént zárunk, az a Thl aktiválást és az IgG2a antitestek szintézisét fogja elősegíteni, miközben a CMI magas szintjét eredményezi.
Eredményeink azt mutatják, hogy a találmány szerinti új vakcinák képesek IgG2a titerek indukálására, melyek kezdetben magasabbak az FCA-val indukáltnál, de bizonyos
.... ... ...J • ·♦ · * · · · · · ·· w ··
- 14 idő elteltével végül összehasonlítható mértékűek az FCA-val indukálttal. Ogy tűnik, a találmány szerinti vakcinára adott kezdeti reakció - az FCA hatásával összehasonlítva - a Thl limfociták (Th2 limfocitákhoz képest) elsődleges serkentése. Eredményeink továbbá azt mutatják, hogy a találmány szerinti vakcinák alkalmazásával indukált IgGl titerek az FCA alkalmazásával elért titerekkel azonos nagyságrendűek, s ennek megfelelően, a találmány szerinti vakcinák a humorális immunitás közvetítésében is hatásosak.
Ilyenformán, a találmány további tárgya eljárás legalább egy antigént tartalmazó készítmény előállítására a Thl Tlimfocita úton keresztül történő antitest termelés serkentéséhez, melynek során az említett, legalább egy antigént NISV-be zárjuk.
A találmány szerinti antigénkészítmények a Th2 T-limfocita úton keresztül is serkentik az antitest termelést. Az antigénkészítmények kialakíthatók úgy, hogy elsősorban a Thl T-limfocita úton, s ne a Th2 T-limfocita úton keresztül serkentsék az antitestek termelését, különösen az FCA adjuváns alkalmazásával előállított antitest szintekkel összehasonlítva.
A NISV-be zárt antigénekkel végzett immunizálással kiváltott antitest titerek bizonyos esetekben magasabbak lehetnek, mint az FCA alkalmazásával elérhetők, miközben az FCA erősen toxikus mellékhatásai teljes mértékben kiküszöbölhetők.
Ilyenformán, a találmány további tárgya eljárás legalább egy antigén immunogenitásának legalább a Freund-féle komplett adjuváns alkalmazásával elérhető szintre történő fokozására, melynek során az említett, legalább egy antigént NISV-be zárjuk.
Ogy tűnik, a NISV ideális adjuváns a sejtes vagy humorális immunitást igénylő betegségek elleni vakcinákban való felhasználásban. A — különösen az éter kötésű felületaktív anyagokat tartalmazó — NISV adjuvánsként való felhasználásának másik nagy előnye az általános környezeti feltételek közötti stabilitása, nevezetesen, hogy nem bomlanak le autooxidációs reakciókkal, mint a tojás lecitinen alapuló liposzómák.
A korábbi adjuvánsokkal szemben a NISV, mint vakcinákban alkalmazható adjuváns, további fontos előnye, hogy gyakorlatilag nem toxikus. Azt találtuk, hogy az 1-monopalmitoil-glicerin-észtert tartalmazó vezikulákba zárt LHRH analóg, az LHRH-Gly-Gly (ld. EP-A-0293530 számú európai közrebocsátási iratunk) patkányokba történő intraperitoneális injektálása semmilyen toxikus mellékhatást nem okoz, s különösen olyanokat nem, mint amilyenek a Freund-féle komplett adjuváns, vagy méginkább, az alumínium gélek alkalmazása esetén gyakran előfordulnak. A tesztelt állatokban semmilyen kimutatható kóros elváltozást nem figyeltünk meg.
A fentebb említett EP-A-0293530 számú európai közrebocsátást iratban a pGlu-His-Trp-Ser-Tyr-X-Leu-Arg-Pro-Gly-Y-Z képlet (melyben X vagy több jelentése Gly vagy D-aminosav, Y jelentése egy aminosav, melyek lehetnek egyformák vagy különbözők, és
Z jelentése Cys vagy Tyr) szerinti LHRH analógot írtunk azonos a natív azonosítási számú le, melynek oldat-szerkezete lényegében
LHRH-éval. Az LHRH-Gly-Cys analógot a 2.
szekvenciaként tüntetjük fel.
A találmány tárgyát képező vakcinák elsősorban emlősök számára alkalmazhatók, s így a humán és állatgyógyászat terén használhatók fel. A NISV hatásos adjuváns lehet bizonyos nem emlős vakcinák esetében is, mint például halak és szárnyasok vakcinálása esetén.
Az alábbi példákkal a NISV adjuváns tulajdonságait jellemezzük.
1. példa: Patkányok immunizálása IHRH-Gly-Cys-PPD NISV ké sz ítmennye1
A vezikulákat a nem ionos felületaktív anyag, koleszterin és dicetil-foszfát (Sigma, Poole, Dorset, UK) 5:4:1 moláris arányú elegyéből készítettük. Az összetevők anyagmennyiségét (Lanol) és tömegét (mg) az alábbi táblázatban mutatjuk be.
• · · · · • ·· · · • · · ·· · <* «
1. táblázat
NISV Ö88Z8etétel Mólarány Anyagmenny. (tano 1) Tömeg (mg)
1-monopalmitoil- 5 10 3,32
glicerin
Koleszterin 4 8 3,09
Dicetil-foszfát 1 2 1,09
Összesen 10 20 7,5
A vezikulákat Collins és mtsi. (ld. fentebb) technikájával alakítottuk ki, majd a vezikula készítményeket 5 percig 20’-on Mettler Electronics vízfürdős szonikátorban hangkezeltük (50 Hz, Pasadena, CA). Az antigént, a luteinizáló hormont felszabadító hormon (LHRH) analógját EP-A-0293530 számú európai közrebocsátási iratunkban írtuk le. Az antigén előre kialakított vezikulákba történő becsapdázását a Kirby és Georgiadis (Biotechnology, 2, 979, 1984) által leírt dehidratálás-rehidratálás technikával hajtottuk végre. Röviden; a vezikulák oldatának 5 ml-ét (150 umol) 1 ml, PBS-ben oldott antigénnel (0,5 mg/ml) polipropilén centrifugáló csövekben (Elkay Products Inc., Shreásbury, MA) elegyítettük, s folyékony nitrogénben keverve vékony héj formájában gyorsan lefagyasztottuk. A készítményeket ezután fagyasztva szárító berendezésben, 0,1 Hgmm nyomáson, egy éjszakán át liofilizáltuk, majd 0,5 ml desztillált vízben rehidratáltuk. A mintákat 30 percen
V.
keresztül állni hagytuk, majd desztillált vízzel 6 ml-re egészítettük ki.
a) Immunizálás LHRH-Glv-Cvs-PPD-vel. BCG immunmozgősítás és ad.iuvánsok .jelenlétében és anélkül
Hím Copenhagen Fisher Fi hibrid patkányokat intraperitoneálisan 0,2 ml, foszfát puffereit sóoldatban oldott LHRH-Gly-Cys-PPD-vel, NISV-be zárt LHRH-Gly-Cys-PPDvel, LHRH-Gly-Cys-PPD FCA-val készített emulziójával, és alumínium-hidroxidon abszorbeált LHRH-Gly-Cys-PPD-vel injekcióztunk. Az LHRH-Gly-Cys mennyisége valamennyi injekcióban, a sóoldat, az FCA/FIA és az alumínium-hidroxid esetében 50 gg, a NISV esetében pedig 5 ug volt.
Az LHRH-Gly-Cys-PPD konjugátummal végzett oltás előtt négy héttel a patkányok négy csoportjának BCG oltást adtunk. A konjugátummal két hetes időközönként összesen négy injekciót adtunk.
Anti-LHRH antitest meghatározás
A két hetes időközönként vett vérplazma mintákat ELISA módszerrel vizsgáltuk az anti-LHRH antitestekre. A 96 üregű, szövettenyészeti minőségű mikrotiter lemezeket 0,1 pg/üreg mennyiségben LHRH-Gly-Cys-BSA-val (PBS-ben; pH = 7,2) fedtük be, és 37 “C-on egy órán keresztül inkubáltuk. Az üregeket háromszor PBS/0,1 % Tween pufferrel mostuk, majd 37 ’C-on
egy órán keresztül 200 pl %-os
Marve1/Tween eléggyel rögzítettük. Az üregeket a fentiek szerint mostuk, és
PBS-ben hígított pl-es mintákat adtunk hozzájuk (két példányban). A mintákat 37 ’C-on egy órán keresztül inkubáltuk, majd az üregeket a fentiek szerint mostuk.
·*' '«A-.··
Minden üregbe PBS-ben 1:5000 arányban hígított, 50 μΐ torma peroxidáz/kecske anti-patkány IgG konjugátum alikvotot adtunk, 37 °C-on 45 percig inkubáltuk, majd ismét a fentiek szerint mostuk. A szubsztrát oldatot úgy készítettük, hogy 25 ml 0,1 M acetát-citrát pufferhez (pH = 5,5) 4 pl hidrogén-peroxidot, és 250 pl, dimetil-szulfoxidban készített tetrametil-benzidin törzsoldatot (6 mg/ml) adtunk.
Minden üregbe 100 pl szubsztrátot adtunk, majd szobahőmérsékleten, sötétben 5 percig inkubáltuk. A reakciót 10 V/V %-os kénsav hozzáadásával állítottuk le, s 450 nm-nél mértük az abszorbanciát. Az ELISA vizsgálat eredményeit a pozitív kontoll százalékaként fejezzük ki. A vizsgálatok alatt konstans standardot használtunk, hogy lehetővé tegyük a minták közötti és mintákon belüli összehasonlításokat. A konstans standardot számos, FCA-ban LHRH-Gly-Cys-PPD-vel immunizált patkányból származó összegyűjtött szérum alkotja.
A pozitív kontroll értékét önkényesen 100 %-nak választottuk.
Eredmények
Az ELISA vizsgálat eredményeit az 1. és 2. ábrán mutatjuk ···: .··, ···: *··; ·«·*· ♦
be. Az 1. ábrán a sóoldatban (A), nioszómákban (B), Freund-féle komplett és inkomplett adjuvánsban (C), illetve alumínium-hidroxidban (D) adott LHRH-Gly-Cys-PPD konjugátummal immunizált Copenhagen Fisher hím patkányok antitest reakcióit mutatjuk be. Bár az LHRH-Gly-Cys-re adott antitest reakciók az FCA/FIA vagy az alumínium-hidroxid alkalmazása esetén nagyobbnak tűnnek, az ezen adjuvánsokkal beadott peptid mennyisége a NISV-be zártnak tízszerese, ilyenformán, úgy látszik, a NISV kisebb mennyiségű peptid konjugátum hatásfokozásában hatékonyabb, mint akár az alumínium-hidroxid, akár az Freund-féle komplett adjuváns. A
2. ábrán a BCG immunmozgósítás LHRH-Gly-Cys-PPD konjugátumra adott antitest reakcióra gyakorolt hatását mutatjuk be.
Immunmozgósítással és anélkül hasonló nagyságú immunreakció tapasztalható. Az FCA és az alumínium-hidroxid alkalmazása esetén ismét magasabb antitest szintek láthatók, az ezen adjuvánsokkal beadott immunogén mennyisége azonban ebben a vizsgálatban is tízszerese a NISV-vel beadottnak.
b) A NISV adjuváns hatásának pontosabb bizonyítása érdekében FCA-ban és a fentiek szerint előállított vezikulákba zárva LHRH-Gly-Cys-PPD-vei injekciózott BALB/c egerekben az azonos mennyiségű antigénre adott antitest reakciót mértük.
LHRH--Gig-Cya-PPD-vel végze.tt immunizálás
Három nőstény BALB/c egeret FCA-ban 0,2 ml LHRH-Gly-Cys-PPDvel (1:1 térfogat arányú konjugátum PBS:FCA-ban) szubkután injekcióztunk. Az egereknek két hét múlva FCA-ban 0,2 ml LHRH-Gly-Cys-PPD-vel (1:1 térfogat arányú konjugátum PBS:FIA-ban) szubkután emlékeztető oltást adtunk.
öt nőstény BALB/c egeret 0,2 ml, NISV-be zárt LHRH-Gly-CysPPD-vel hasonlóan szubkután oltottunk, majd ezeknek két hét múlva további 0,2 ml-rel emlékezetető oltást adtunk. BCG immunmozgósítást nem alkalmaztunk. Valamennyi injekcióban 100 yg LHRH-Gly-Cys-PPD ekvivalensét adtuk be.
Anti-LHRH antitest meghatározás
Az egerek farki vénájából a második immunizálás után egy héttel vért vettünk, szérummmintákat gyűjtöttünk, s a teljes antitest reakciót lényegében a fenti módon, ELISA vizsgálattal mértük, a végpont antitest titer megállapításához azonban sorozathigítást alkalmaztunk.
Eredmények
Az eredményeket a 3. ábrán mutatjuk be. Jól látható, hogy azonos immunológiai inger esetén a NISV hatásos adjuváns, és képes az FCA alkalmazása esetén elértnél nagyobb LHRHspecifikus antitest szintet indukálni.
Az 1. és 2. ábrán használt rövidítések jelentése a következő:
A: adjuváns nélkül (sóoldat);
···* '« ·*·· • 9 · · • ♦ ·*··
Β: nioszómák;
C: FCA és FIA;
D: alumínium-hidroxid.
A nyilak az immunizálás idejét jelzik.
1. ábra: LHRH-Gly-Cys-PPD
2. ábra: BCG + LHRH-Gly-Cys-PPD
3. ábra: LHRH-Gly-Cys-PPD
2. példa: Az egerek immunizálása szarvasmarha szérum albuminnal (BSA)
A vezikulákat az 1. példában leírt összetevőkkel és módszerekkel, vagy más módon, kloroformból történő rotációs filmlepárlással állítottuk elő. A kapott filmet PBS és antigén elegyében (5 mg/ml), vagy (a liposzómák esetében Russell és Alexander [ld. fentebb] által leírtak Bzerint PBS-ben detergenssel (1 % n-oktil-G-D-glükopiranozid; Sigma) és antigénnel hidratáltuk. A detergens (amennyiben használtuk) és a be nem zárt antigén eltávolítása érdekében a készítményeket 84000 x g-vel 40-45 percig centrifugáltuk, s a pelletet PBS-ben reszuszpendáltuk. A mosást kétszer ismételtük.
Minden csoportban négy-öt, 8-10 hetes BALB/c egeret alkalmaztunk. Az első napon az egereket szubkután vagy intraperitoneálisan NISV-be zárt BSA-val (NISV/BSA) vagy FCA-ban emulgeált BSA-val (FCA + BSA; Sigma) oltottuk be.
Valamennyi injekcióban a BSA végkoncentráciőja 0,5 mg/ml volt, s mindegyik egérnek 100 jug BSA dózist adtunk. Az első injektálás után 14 nappal az egereket másodlagosan immunizáltuk. A 4. ábrán a hisztogramokon feltüntetett napok (14., 28., stb.) a második immunizálás után eltelt időre vonatkoznak.
Az anti-BSA antitestek szintjét ELISA módszerrel határoztuk meg. A 4/A ábrán az IgGl antitest titerek, a 4/B ábrán az IgG2 titerek láthatók. A ferdén csíkozott oszlopok a NISV/BSA-val, a sötét oszlopok a BSA + FCA-val immunizált egerekkel kapott eredményeket jelzik. Mind az A, mind a B ábra esetében, a hisztogram bal oldalán az intraperitoneális injektálással, míg a jobb oldalán a szubkután injektálással nyert eredmények láthatók.
Látható, hogy intraperitoneális oltással az FCA + BSA nagyon magas IgGl titer kialakulását eredményezte, amely egészen a 70. napig fennmaradt; NISV/BSA-val végzett oltás esetén a titerek időfüggő csökkenését tapasztaltuk. Szubkután oltással a NISV/BSA immunizálás kezdetben magasabb antitest titereket eredményezett, mint az FCA, de a 70. napra ez a szint jóval az FCA + BSA-val nyert szint alá csökkent.
Ezzel szemben, a 4/B ábrán az IgG2a kimutatási vizsgálatának eredményei azt mutatják, hogy a NISV/BSA-val végzett intraperitoneális és szubkután immunizálás egyaránt jóval az
V
- 24 FCA + BSA alkalmazásával kapottnál magasabb kezdeti antitest ti tért eredményez, de a 70. napra - az FCA + BSA által kialakított IgG2a szint időfüggő növekedésének köszönhetően a két adjuváns-készítmény alkalmazásával kapott antitest titer hasonló volt.
Figyelemre méltó, hogy az FCA-val végzett szubkután injektálás után tapasztalt granuloma képződés az NISV-el végzett injektálás után teljes mértékben hiányzik.
3. példa: Különböző felületaktív anyagokból készített NISV adjuvánsként való működése
A NISV-t az 1. és 2. példához hasonlóan, (a)
1-monopalmitoil-glicerinből (MPG), illetve (b) polioxietilén-3-lauril-éterből (POE) készítettük, felületaktív anyag koleszterin dicetil-foszfát
5:4:1 arányú alkalmazásával, amint azt az
1. példában leírtuk.
A 8-10
BALB/c egerekből álló csoportokat a 2.
példában leírt módon
NISV-be zárt, illetve PBS-ben oldott
BSA-val oltottuk be.
Az összes lg, az IgGl és az IgG2a szintjét a másodlagos immunizálás után 14, 35 és 70 nappal
ELISA módszerrel mutattuk ki. A vérplazmát a teljes antitest titer kimutatásához 1/8000-re, az IgGl titer kimutatásához
1/15000-re, az IgG2a kimutatásához pedig 1/1000-re hígítottuk, s az egyes egerek vérplazmájában található antitest titereket ELISA vizsgálattal kimutatott abszobanciáként fejeztük ki. A kapott eredmények az 5. ábrán láthatók; az 5/A ábrán a másodlagos oltás után különböző idővel kimutatott összes immunglobulin mennyiségét, az 5/B és 5/C ábrán pedig az IgGl, illetve az IgG2a szintjét mutatjuk be.
Látható, hogy az adjuváns nélkül alkalmazott BSA-hoz viszonyítva mindkét felületaktív anyagból készített NISV fokozta a bezárt BSA hatására kialakuló antitest titert. A vizsgált antitest alosztályok esetében az MPG alapú vezikulákba zárt BSA a másodlagos immunizálás után magasabb antitest titereket eredményezett, mint a POE alapú vezikulákba zárt BSA. A második injektálás utáni 35. napon az lg és IgGl titerek az MPG esetében magasabbak voltak, mint a POE esetén, miközben az IgG2a szintek hasonlóak voltak. A 70. napon sem az összes antitest, sem a vizsgált immunglobulin alosztályok esetében nem volt Jelentős különbség a kétféle vezikula készítménnyel elért antitest titerek között.
A fentiek értelmében érthető, hogy a NISV adjuvánsként való működése széles körben alkalmazható, 8 ezen működése nem függ egy bizonyos felületaktív anyagtól.
4. példa: A NISV adjuvánsként való működése azonos genetikai hátterű egértörzsekben
Bizonyos korábbi adjuvánsokról ismert, hogy az egyes egyedekben az immunreakció genetikailag meghatározott különbségeit illetően korlátozott alkalmazhatósággal rendelkeznek. Annak bizonyítása érdekében, hogy a NISV adjuvánsként való működése genetikailag nem korlátozott, három BALB egértörzsben (BALB/c, BALB/B és BALB/K) vizsgáltuk az önmagában alkalmazott (vagyis PBS-ben oldott), NISV-be zárt, illetve Freund — féle komplett adjuvánsban emulgeált BSA-ra adott antitest reakciót. A NISV-t az 1. és 2. példában leírtak szerint készítettük, illetve injektáltuk (szubkután) az egerekbe. Az antitest szintet ELISA vizsgálattal mértük, s az eredményeket a 6/A, 6/B és 6/C ábrán mutatjuk be. A 6/A ábrán a második beoltás után 14 nappal (a); 35 nappal (b) és 70 nappal (c) vett vérből készített plazmában kimutatott összes, BSA-ra specifikus antitest szintje látható, ahol az eredményeket a 450 nm-en mért átlagos abszorbancia (+ standard hiba) értékekként fejezzük ki. Hasonló adatokat mutatunk be az IgGl (6/B ábra) és az IgG2a (6/C ábra) esetében. Az ELISA vizsgálatokhoz a vérplazma mintát, illetve a konjugátumot a 6/A ábrán bemutatott kísérletben 1/15000, illetve 1/1000 hígításban, a 6/B ábrán bemutatott kísérletben 1/30000, illetve 1/8000, a 6/C ábrán bemutatott kísérletben pedig 1/1000, illetve 1/800 hígításban alkalmaztuk.
Látható, hogy a NISV/BSA valamennyi egértörzs esetében magas antitest titer termelődését eredményezte, mind az összes
antitestet, mind a
illetően. Bár a BSA
antitest titerek a i
specifikus IgGl és IgG2a izotípusokat + FCA-val összehasonlítva a relatív második immunizálás után eltelt idővel és a különböző törzsekkel változnak, a NISV mindhárom tesztelt törzsben képes adjuváns hatást kifejteni, miközben a BSA + FCA-val elértnél nagyobb szintű, vagy legalább azzal összehasonlítható nagyságú antitest reakciót eredményez.
5. példa: Öröklött toxoplasmosis elleni vakcina előállítása
A toxoplasmosis madarak és emlősök betegsége, melyet a Toxoplasma gondii protozoa okoz. Nem védett állatok esetén ez a betegség képes az anyáról magzatára öröklődni, ami a magzat elpusztulását okozhatja. Megelőző fertőzéssel, és bizonyos mértékben vakcinálással azonban védő immunitás alakítható ki. Ögy tartják, hogy ez a CDS* T-sejtek és a Thl CD4* alcsoport közötti szinergia eredménye. A NISV-be zárt antigének vakcina tulajdonságait, különösen az említett T-sejt alcsoportok aktiválását illetően - laboratóriumi modellként - BALB/c és BALB/K egértörzsekben vizsgáltuk.
Egerek
Beltenyésztett BALB/c és BALB/K egereket, valamint Stathclyde A törzsbe tartozó, nem beltenyésztett egereket hagyományos körülmények között tartottunk. Az egereket 8-10 hetes korukban használtuk a kísérletekhez (minden kísérleti csoport 5-10 állatból állt).
Megfertőzés héttel korábban RRA törzsbe (Beverly) tartozó T. gondiival fertőzött, A törzsbe tartozó egerek agyát használtuk szöveti ciszták forrásaként, amelyeket egy korábbi leírás (Roberts és Alexander, Párásítói, 104. 19-23, 1992) szerint gyűjtöttünk és értékeltünk. A kísérleti fertőzéseket szájon keresztül, illetve az öröklött fertőzés modell (Roberts és Alexander, 1992) szerint végeztük. Röviden; BALB/c egereket vemhességük 11-12. napján 20 szöveti cisztával fertőztünk. A túlélő utódokat fertőzött nevelőanyákkal tartottuk, s az örökölt fertőzés gyakoriságát a születés után 8-9 héttel ELISA módszerrel vizsgáltuk. A fertőzés súlyosságát, alkalmas módon, a mortalitás szintje, illetve az agyban az összes ciszták száma alapján értékeltük.
Antigén készítmények
A vakcinálási vizsgálatokhoz fagyasztással/olvasztással elölt tachizoitokat (kp), tachizoit kiválasztó/elválasztó antigéneket (ESAg), membrán antigéneket és szolubilis antigéneket (STAg) használtunk. Az RH törzsbe tartozó
T. gondii tachizoitokat fertőzött patkányok hasüregi váladékából nyertük, és sóoldatban háromszor mostuk. Az
ESAg-t úgy kaptuk, hogy 5 x 1010 tachizoitot egy éjszakán keresztül 40 ml
PBS-ben inkubáltunk. A tachizoitokat 1000 gvei végzett centrifugálással távoolítottuk el, s a felülúszót összegyűj töttük.
Valamennyi protein koncentrációját a Bradford módszerrel határoztuk meg (Bradford, Analyt. Biochem., 72. 248-254, 1976). A szolubilis és membrán trachizoit antigén frakciókat 5 x 1010 parazita hipotőniás pufferben (40 ml 10 mM Tris-HCl, 2 mM EDTA, pH =7,8) Braun homogenizátor alkalmazásával végzett feltárásával, majd 4 °C-on 30 percig 10000 x g-vel végzett centrifugálásával nyertük. A felülúszó a STAg-t, a pellet a membrán frakciót tartalmazta. A membrán antigéneket 1 %-os oktil-glükozid alkalmazásával, majd 100000 g-vel végzett centrifugálással tovább tisztítottuk. A felülúszót összegyűjtöttük, és a detergens eltávolítása érdekében egy éjszakán keresztül, 4 ’C-on PBS-sel szemben dializáltuk.
Vakcina készítmények
A vakcina készítmények beadásához a megfertőzés előtt 2 és 4 héttel valamennyi állatot 50 pg tachizoit antigénnel szubkután oltottuk. A védőoltáshoz való antigént szabad formában, Freund-féle komplett adjuvánsban emulgeálva vagy nem ionos felületaktív anyagból álló vezikulákba zárva alkalmaztuk.
A vezikulák kialakítása
A STAg 1-monopalmitol-glicerin alapú NISV-be történő becsapdázását az 1·. példában leírt eljárásokkal végeztük.
Eredmények
A kapott eredményeket a 7/A-7/D ábrákon mutatjuk be. A 7/A ábrán a BALB/K egerek agyában a 20 cisztával végzett orális fertőzés (amely előtt 2 és 4 héttel NISV-be zárt STAg-vel, STAg-vel önmagában vagy NISV-vel keverve, szubkután oltást végeztünk) után 4 héttel a ciszták átlagos számát (+ standard hiba) ábrázoljuk. Amint látható, a NISV-be zárt STAg a többi csoporthoz képest jelentősen csökkent mennyiségű cisztát eredményezett.
A 7/B ábrán a 20 cisztával végzett orális fertőzés után Θ héttel a BALB,zc anyaegerek átlagos szérum antitest szintjét, a 7/C ábrán pedig az agyban található ciszták átlagos számát mutatjuk be. Az egereket vemhességük 11-12. napján fertőztük meg. A vakcinával kezelt csoportot a fertőzés előtt 2 és 4 héttel NISV-be zárt STAg-vel (50 £?g) szubkután oltottuk be. Amint látható, a NISV-be zárt antigénnel végzett védőoltás a kontrolihoz képest .jelentősen csökkentette mind az agyban lévő ciszták számát, mind az antitestek szintjét.
A 7/D ábrán a vakcinával oltott, illetve nem oltott egerek utódainak fertőzöttségét és életbenmaradását mutatjuk be. Amint látható, a vakcinával oltott egerek utódai közül magzati korban egy sem pusztult el, míg a vakcinával nem oltott egerek utódainak több, mint a fele elpusztult a születéskor (vagy azt követően 24 órán belül), annak ellenére, hogy a vakcinával kezelt egerek utódainak több, • · · · · • ·· « · mint 50 %-a fertőzött volt.
Ilyenformán, bebizonyítottuk, hogy a NISV-be zárt szolubilis antigén adjuváns hatást fejt ki, amely fokozza a kifejlett egerek antigénre vonatkozó védettségét, s teljesen megszünteti a magzati elhullást.
6. ábra: A NISV szintetikus T-seJt epitópok adjuvánsaként való működésének képessége
A pepiid előállítása
A Giles peptidet, amelyet a kanyaró F protein 258-277.
aminosavai alkotnak, hagyományos Fmoc védőcsoportos eljárással szintetizáltuk. A peptid szekvenciája a következő:
GILESRGIKARITHVDTESY (1. azonosítási számú szekvencia), és T- és B-seJt epitópokat egyaránt tartalmaz.
NISV-t
Collins eljárása szerint (ld.
fentebb)
1-monopalmitol-glicerin-észterből állítottuk antigéneket pedig
Pick fagyasztásos-olvasztásos technikájával be a vezikulákba.
Immunizálás
A négy 8-10 hetes nőstény egérből álló csoportokat 25 pg pepiiddel (PBS-ben, NISV-be zárva vagy FCA-ban emulgeálva) szubkután immunizáltuk. Egy hét múlva az egerek lépét eltávolítottuk, és a peptid-specifikus T-sejt proliferatív reakciót timidin beépüléses vizsgálattal (Corradin és mtsi, J. Immunoi., 119. 1048-1053, 1977) mértük.
Eredmények
Az eredményeket a 8. és 9. ábrán mutatjuk be. A kísérlet során valamennyi vizsgált peptid-koncentrációnál a NISV-be zárt antigénnel immunizált egerekből származó lépsejtek a PBS-ben vagy FCA-ban adott pepiiddel immunizált egerekből származó sejtekhez képest nagyobb mértékű proliferációt mutatott (8. ábra).
Az 50 Ltg/ml GILES peptiddel stimulált tenyészetek felülúszóit a stimulálás után 48 órával eltávolítottuk, s ELISA módszerrel IFN-gamma Jelenlétére vizsgáltuk. Amint a 9. ábrán látható, a valamilyen adjuvánssal együtt adott GILES peptiddel oltott egerekből származó lépsejtek lényegesen több IFN-gammát termeltek, mint a PBS-ben adott GILES peptiddel oltott egerekből származó sejtek, és a NISVbe zárt antigén több IFN-gamma termelődését eredményezte, mint az FCA-ban adott antigén. A NISV tehát képes adjuvánsként működni nagyobb virális proteineknek megfelelő peptidek, illetve hormonok esetén.
Sőt, a NISV nagyobb mértékben mozgósítja az egerek antigén-specifikus T-seJt proliferációját. mint az FCA. A tenyészet felülúszókban az IFN-gamma jelenléte a CD4+ Thl és,''vagy CD8+ T-sejtek aktiválását vonja maga után.
7. példa: Orális beadási kísérlet
NISV-be zárt BSA orális beadása egerekbe
A vezikulákat diglikol-cetil-éterből (DGCE) vagy 1monopalmitoil-glicerin-észterből (MPG), felületaktív anyag : koleszterin : dicetil-foszfát 5:4:1 arányban való alkalmazásával az 1. példában leírt módon állítottuk elő. A vezikulákat kloroformból végzett rotációs filmlepárlással készítettük, Russel és Alexander (ld. fentebb) leírása szerint. A vékony filmmé alakított 150 jjmól felületaktív anyagot 100 mg BSA-t tartalmazó 5 ml karbonát pufferben hidratáltuk. Az elegyet 60 ’C-on 2 óráig ráztuk, majd 5 percig, szintén 60 °C-on vízfürdős szonikátorban hangkezeltük.
Minden vizsgálati csoportban öt 8-10 hetes, nőstény BALB/c egeret alkalmaztunk. Valamennyi csoportot a következőkkel kezeltük:
a) BSA, karbonát pufferben;
b) BSA, DGCE alapú NISV-ben;
c) BSA, MPG alapú NISV-ben.
Az egereknek az 1. napon gyomorszondán keresztül első, 0.1 ml orális dózist (egerenként 240 ug BSA), majd a 12. napon
egy második orális dózist (egerenként 500 pg) adtunk. A vérmintákat a 20. és 24. napon gyűjtöttük össze, és vizsgáltuk a minták IgG titerét.
♦ · 4 · * • ·· 4 ·
SZEKVENCIALISTA
Szekvenciák száma: 2 (1) Tudnivalók az 1. számú szekvenciához (i) SZEKVENCIA JELLEMZŐK (A) HOSSZÚSÁG: 20 aminosav (B) TÍPUS: aminosav (D) ALAK: lineáris (ii) MOLEKULA TÍPUSA: peptid (v) FRAGMENS TÍPUSA: belső (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: 1. számú szekvencia
Gly Ile Leu Glu Ser Arg Gly Ile Lys Alá Arg Ile Thr His Val
10 15
Asp Thr Glu Ser Tyr (1) Tudnivalók az 2. számú szekvenciához (i) SZEKVENCIA JELLEMZŐK (A) HOSSZÚSÁG: 20 aminosav (B) TÍPUS: aminosav (D) ALAK: lineáris (ii) MOLEKULA TÍPUSA: peptid (xi) SZEKVENCIA LEÍRÁS: 2. számú szekvencia pGlu His Trp Ser Tyr Gly Leu Arg Pro Gly Gly Cys

Claims (42)

  1. Szabadalmi igénypontok
    1. Vakcina, azzal jellemezve, hogy nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárva legalább egy, önmagában gyenge immunválaszt kiváltó antigént tartalmaz.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy antigénként egy peptidet tartalmaz.
  3. 3. A 2. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy szintetikus vagy rekombináns eredetű peptidet taralmaz.
  4. 4. A 3. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy 8-50 aminosav-egységböl álló peptidet taralmaz.
  5. 5. A 4. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy 10-20 aminosav-egységből álló peptidet taralmaz.
  6. 6. A 3-5. igénypontok bármelyike szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a peptidet hordozóhoz kapcsolt formában tartalmazza.
  7. 7. Az 1. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy antigénként Toxoplasma gondii protozoa antigént vagy luteinizáló hormon felszabadító hormont vagy ennek analógját tartalmazza, melynek képlete pGlu-His-T rp- Ser-Tyr-X-Leu-Arg-Pro-GIy-Y-Z ahol X jelentése Gly vagy D-aminosav-maradék, Y jelentése egy vagy több azonos vagy eltérő aminosav-maradék, és Z jelentése Cys vagy Tyr, és az analóg oldatbeli konformációja lényegében véve hasonló a natív LHRH konformációjához.
  8. 8. Az 1-7. igénypontok bármelyike szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy nemionos felületaktív anyagként egy glicerin-észtert tartalmaz.
  9. 9. A 8. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy glicerin-észterként egy 12-20 szénatomos alkanoil- vagy alkenoilcsoportot tartalmazó glicerin-monoésztert tartalmaz.
  10. 10. A 9. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy glicerin-észterként glicerin-1-monopalmitátot tartalmaz.
  11. 11. az 1-7. igénypontok bármelyike szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a vezikulumok glicerin- vagy (rövidszénláncú alifás glikol)-éterekből állnak.
  12. 12. A 11. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy éterekként glicerin- vagy (rövidszénláncú alifás glikol)-( 12-20 szénatomos alkil- vagy alkenil)-monoétereket tartalmaz.
  13. 13. A 12. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy legfeljebb 5 glikolegységet tartalmazó monoétereket tartalmaz.
  14. 14. A 12. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy glicerin-éterként 1-monocetil-glicerin-étert, illetve (rövidszénláncú alifás glikolj-éterként diglikol-cetil-étert tartalmaz
  15. 15. Az 1-14. igénypontok bármelyike szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy a vezikulumok töltésképző amfifil molekulákból állnak.
  16. 16. A 15. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy töltésképző amfifil molekulaként karboxilát-, foszfát vagy szulfátcsoportot tartalmazó molekulát tartalmaz.
  17. 17. Az 1-16. igénypontok bármelyike szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy szubkután, intramuszkuláris vagy intradermális adagolásra alkalmas formában van elkészítve.
  18. 18. Az 1-16. igénypontok bármelyike szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy nyálkahártyán át történő adagolásra alkalmas formában van elkészítve.
    X
  19. 19. Az 1-16. igénypontok bármelyike szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy orális adagolásra alkalmas formában van elkészítve.
  20. 20. Orális adagolásra alkalmas vakcina, azzal jellemezve, hogy nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárva legalább egy antigént tartalmaz.
  21. 21. A 20. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy antigénként valamely az 1-7. igénypontok bármelyikében meghatározott antigént tartalmaz.
  22. 22. A 20. vagy 21. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy vezikulumként valamely a 8-16. igénypontok bármelyikében meghatározott vezikulumot tartalmaz.
  23. 23. Nyálkahártyán át történő adagolásra alkalmas vakcina, azzal jellemezve, hogy nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárva legalább egy antigént tartalmaz.
  24. 24. A 23. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy antigénként valamely az 1-7. igénypontok bármelyikében meghatározott antigént tartalmaz.
  25. 25. A 23. vagy 24. igénypont szerinti vakcina, azzal jellemezve, hogy vezikulumként valamely a 8-16. igénypontok bármelyikében meghatározott vezikulumot tartalmaz.
  26. 26. Eljárás vakcina előállítására, azzal jellemezve, hogy legalább egy, önmagában gyenge immunválaszt kiváltó antigént nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárunk.
  27. 27. Eljárás antigén formálására orálisan aktív vakcina formájában, azzal jellemezve, hogy az antigént nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárjuk.
  28. 28. A 26. vagy 27. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az 1-25. igénypontok bármelyike szerinti vakcinát állítunk elő.
    β • · · · * • ·· « · • · · · * · « • ·· ·» ··
  29. 29. Eljárás legalább egy antigén formálására a Thl T limfocita útvonalon történő antitesttermelés stimulálására, azzal jellemezve, hogy legalább egy antigént nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárunk.
  30. 30. Eljárás legalább egy antigén immunogenitásának a Freund-féle komplett adjuváns használatával legalább megegyező szintre történő potencírozására, azzal jellemezve, hogy az antigént nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárjuk.
  31. 31. A 29. vagy 30. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy antigénként valamely az 1-7. igénypontok bármelyikében meghatározott antigént és vezikulumként valamely a 8-16. igénypontok bármelyikében meghatározott vezikulumot alkalmazunk.
  32. 32. A 26-31. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az antigént előre elkészített vezikulumokba zárjuk.
  33. 33. Nemionos felületaktív anyag vezikulumok alkalmazása - az azokba zárt legalább egy antigénnel együtt - sejtközvetítette vagy humorális immunitás stimulálására.
  34. 34. A 33. igénypont szerinti alkalmazás orálisan adagolható immunológiai adjuvánsként.
  35. 35. A 33. vagy 34. igénypont szerinti alkalmazás, melyben az antigén valamely az 1-7. igénypontok bármelyike szerinti antigén.
  36. 36. A 34. vagy 35. igénypont szerinti alkalmazás, ahol a vezikulumok észterrel kapcsolt felületaktív molekulák.
  37. 37. Nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárt legalább egy antigén alkalmazása emlősöknek vagy nem-emlősöknek az antigénre adott immunválasza potencírozására szolgáló készítmény előállítására.
  38. 38. A 37. igénypont szerinti alkalmazás, ahol a termék az antigénre adott sejtközvetítette és humorális immunválasz stimulálására szolgál emlősök vagy nem-emlősök esetén.
  39. 39. A 37. vagy 38. igénypont szerinti alkalmazás, ahol a termék az antigénre adott válaszként az antitesttermelés Thl T limfocita útvonalon végbemenő stimulálására szolgál emlősök vagy nem-emlősök esetén.
  40. 40. A 37-39. igénypontok bármelyike szerinti alkalmazás emlősök esetén.
  41. 41. A 37-40. igénypontok bármelyike szerinti alkalmazás, ahol az antigén valamely az 1-7. igénypontok bármelyikében meghatározott antigén és a vezikulum valamely a 8-16. igénypontok bármelyikében meghatározott vezikulum.
  42. 42. Legalább egy antigént nemionos felületaktív anyag vezikulumokba zárva tartalmazó termék por, tabletta, szirup, kapszula vagy granulátum formájában.
HU9402904A 1992-04-07 1993-04-06 Vaccines containing non-ionic surfactant vesicles HUT69935A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB929207731A GB9207731D0 (en) 1992-04-07 1992-04-07 Improvements in or relating to vaccines

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HU9402904D0 HU9402904D0 (en) 1995-01-30
HUT69935A true HUT69935A (en) 1995-09-28

Family

ID=10713695

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9402904A HUT69935A (en) 1992-04-07 1993-04-06 Vaccines containing non-ionic surfactant vesicles

Country Status (16)

Country Link
US (1) US5679355A (hu)
EP (1) EP0634937B1 (hu)
JP (1) JP2690620B2 (hu)
KR (1) KR950700758A (hu)
CN (1) CN1085449A (hu)
AT (1) ATE158185T1 (hu)
AU (1) AU3899793A (hu)
CA (1) CA2132547C (hu)
DE (1) DE69314020T2 (hu)
FI (1) FI944676A0 (hu)
GB (1) GB9207731D0 (hu)
HU (1) HUT69935A (hu)
NO (1) NO943739D0 (hu)
NZ (1) NZ251402A (hu)
WO (1) WO1993019781A1 (hu)
ZA (1) ZA932491B (hu)

Families Citing this family (41)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1995003035A1 (en) * 1993-07-23 1995-02-02 Massachusetts Institute Of Technology Polymerized liposomes with enhanced stability for oral delivery
US5919466A (en) * 1993-10-01 1999-07-06 Gerbu Biotechnik Gmbh Method for improving the yield of immunoantibodies in the vaccination of animals and humans
GB9320597D0 (en) * 1993-10-06 1993-11-24 Proteus Molecular Design Improvements in and realting to vaccines
EP0734251B1 (en) * 1993-12-17 2009-10-14 Novavax, Inc. Method of transmitting a biologically active material to a cell
US5688506A (en) 1994-01-27 1997-11-18 Aphton Corp. Immunogens against gonadotropin releasing hormone
GB9515868D0 (en) * 1995-08-02 1995-10-04 Proteus Molecular Design Therapeutic method
GB9600471D0 (en) * 1996-01-10 1996-03-13 Univ London Pharmacy Drug delivery system
HUP0101619A3 (en) * 1998-04-09 2003-11-28 Smithkline Beecham Biolog Adjuvant compositions
US6494865B1 (en) * 1999-10-14 2002-12-17 Becton Dickinson And Company Intradermal delivery device including a needle assembly
FR2802422B1 (fr) * 1999-12-21 2002-08-09 Capsulis Structures mixtes resultant de l'incorporation d'une macromolecule biologique, en particulier d'adn, dans une phase structuree d'amphiphiles et vesicules obtenues a partir de ces structures
GB9930591D0 (en) * 1999-12-23 2000-02-16 Univ London Component for vaccine
FI112825B (fi) * 2001-07-11 2004-01-15 Antti Nissinen Menetelmä alkoholinkulutuksen osoittamiseksi, menetelmässä käytettäviä välineitä sekä niiden valmistus
EP1528915A2 (en) * 2002-07-03 2005-05-11 Aphton Corporation Liposomal vaccine
CN1711074B (zh) * 2002-11-15 2010-10-06 尼普洛株式会社 脂质体
FR2850872A1 (fr) * 2003-02-12 2004-08-13 Ethypharm Sa Composition vaccinale destinee a induire une reponse immunitaire contre le virus responsable du sida
BRPI0414021B1 (pt) 2003-08-28 2023-09-26 Becton, Dickinson And Company Dispositivo de injeção intradérmica
CA2623197A1 (en) * 2005-09-22 2007-03-29 Prosci Incorporated Glycosylated polypeptides produced in yeast mutants and methods of use thereof
BRPI0914224A2 (pt) 2008-06-19 2019-09-24 Variation Biotechnologies Inc composições e métodos para tratar a gripe
WO2010014686A1 (en) 2008-07-30 2010-02-04 Aleva Neurotherapeutics, S.A. Apparatus and method for optimized stimulation of a neurological target
EP2783727B1 (en) 2008-11-12 2016-11-09 Ecole Polytechnique Fédérale de Lausanne Microfabricated neurostimulation device
US9907746B2 (en) 2009-07-06 2018-03-06 Variation Biotechnologies, Inc. Methods for preparing vesicles and formulations produced therefrom
CA2767392C (en) 2009-07-06 2017-03-14 Variation Biotechnologies, Inc. Methods for preparing vesicles and formulations produced therefrom
WO2011067297A1 (en) 2009-12-01 2011-06-09 ECOLE POLYTECHNIQUE FéDéRALE DE LAUSANNE Microfabricated neurostimulation device and methods of making and using the same
EP2552536B1 (en) 2010-04-01 2016-06-08 Ecole Polytechnique Fédérale de Lausanne (EPFL) Device for interacting with neurological tissue
US9238796B2 (en) 2010-06-04 2016-01-19 Toagosei Co. Ltd. Cell growth-promoting peptide and use thereof
CA2840079C (en) 2010-07-06 2018-07-03 Variation Biotechnologies Inc. Compositions and methods for treating influenza
WO2012093706A1 (ja) * 2011-01-07 2012-07-12 東亞合成株式会社 抗疎水性ペプチド抗体を得るための抗原調製方法
JP5855583B2 (ja) * 2011-01-07 2016-02-09 セイコーエプソン株式会社 抗シグナルペプチド抗体の製造方法
US20130323280A1 (en) 2011-01-13 2013-12-05 Variation Biotechnologies, Inc. Methods for preparing vesicles and formulations produced therefrom
MX359103B (es) 2011-01-13 2018-09-14 Variation Biotechnologies Inc Composiciones y sus usos en el tratamiento de infecciones virales.
WO2013104995A2 (en) 2012-01-12 2013-07-18 Variation Biotechnologies, Inc. Compositions and methods for treating viral infections
WO2013111012A2 (en) * 2012-01-27 2013-08-01 Variation Biotechnologies, Inc. Methods and compositions for therapeutic agents
JP6066222B2 (ja) 2012-05-28 2017-01-25 東亞合成株式会社 抗菌ペプチド及びその利用
WO2014061749A1 (ja) 2012-10-18 2014-04-24 東亞合成株式会社 2型tnf受容体の発現を抑制する合成ペプチド及びその利用
US11311718B2 (en) 2014-05-16 2022-04-26 Aleva Neurotherapeutics Sa Device for interacting with neurological tissue and methods of making and using the same
CN110585588A (zh) 2014-05-16 2019-12-20 阿莱瓦神经治疗股份有限公司 可植入式微电极装置
US9403011B2 (en) 2014-08-27 2016-08-02 Aleva Neurotherapeutics Leadless neurostimulator
US9474894B2 (en) 2014-08-27 2016-10-25 Aleva Neurotherapeutics Deep brain stimulation lead
EP3411111A1 (en) 2016-02-02 2018-12-12 Aleva Neurotherapeutics SA Treatment of autoimmune diseases with deep brain stimulation
GB201612108D0 (en) * 2016-07-12 2016-08-24 Univ Strathclyde Preperation of non-ionic surfactant vesicles and variants
US10702692B2 (en) 2018-03-02 2020-07-07 Aleva Neurotherapeutics Neurostimulation device

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2408387A2 (fr) * 1975-06-30 1979-06-08 Oreal Compositions a base de dispersions aqueuses de spherules lipidiques
FR2571963B1 (fr) * 1984-10-24 1987-07-10 Oreal Composition a usage cosmetique ou pharmaceutique contenant des niosomes et au moins un polyamide hydrosoluble et procede de preparation de cette composition.
SE8405493D0 (sv) * 1984-11-01 1984-11-01 Bror Morein Immunogent komplex samt sett for framstellning derav och anvendning derav som immunstimulerande medel
FR2597346B1 (fr) * 1986-04-22 1989-08-18 Oreal Procede pour faciliter la formation de niosomes en dispersion dans une phase aqueuse et pour ameliorer leur stabilite et leur taux d'encapsulation, et dispersions correspondantes.
US4855090A (en) * 1987-03-13 1989-08-08 Micro-Pak, Inc. Method of producing high aqueous volume multilamellar vesicles
AU603659B2 (en) * 1987-03-13 1990-11-22 Micro Vesicular Systems, Inc. Lipid vesicles formed of surfactants and steroids
GB8713240D0 (en) * 1987-06-05 1987-07-08 Proteus Biotech Ltd Hormones
LU87449A1 (fr) * 1989-02-09 1990-09-19 Oreal Procede de fabrication de mousses utilisables dans les domaines cosmetique et pharmaceutique et mousses obtenues par ce procede
IT1238343B (it) * 1989-10-16 1993-07-13 Cesalpino Andrea Fond Procedimento per la preparazione di vaccini capaci di generare non solo la risposta immune dei linfociti t helper,ma anche un'efficace risposta di linfociti t citotossici,e vaccini con queste caratteristiche
AU654858B2 (en) * 1991-03-28 1994-11-24 Novavax, Inc. Lipid vesicle containing water-in-oil emulsions

Also Published As

Publication number Publication date
EP0634937A1 (en) 1995-01-25
CA2132547C (en) 2000-06-06
AU3899793A (en) 1993-11-08
KR950700758A (ko) 1995-02-20
CN1085449A (zh) 1994-04-20
NO943739L (no) 1994-10-05
ATE158185T1 (de) 1997-10-15
JP2690620B2 (ja) 1997-12-10
US5679355A (en) 1997-10-21
CA2132547A1 (en) 1993-10-14
EP0634937B1 (en) 1997-09-17
ZA932491B (en) 1993-11-02
GB9207731D0 (en) 1992-05-27
FI944676A (fi) 1994-10-06
NZ251402A (en) 1996-10-28
WO1993019781A1 (en) 1993-10-14
HU9402904D0 (en) 1995-01-30
DE69314020T2 (de) 1998-08-06
DE69314020D1 (de) 1997-10-23
JPH07505389A (ja) 1995-06-15
NO943739D0 (no) 1994-10-05
FI944676A0 (fi) 1994-10-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HUT69935A (en) Vaccines containing non-ionic surfactant vesicles
US5876721A (en) Vaccines
JP7095053B2 (ja) 免疫原性化合物
JP5775451B2 (ja) インフルエンザを処置するための組成物および方法
Altman et al. Immunomodifiers in vaccines
US8653049B2 (en) Normuramyl glycopeptide compounds
JP2502234B2 (ja) リポソ―ム含有ワクチン組成物
IL175573A (en) Pharmaceutical compositions comprising vaccine antigen(s) other than a coding dna and phosphoric ester derivative(s) of phosphatidylcholine and their use for preparing a vaccine adjuvant
US8758763B2 (en) Archaeal polar lipid aggregates for administration to animals
WO2010033812A1 (en) Compositions and methods for treating hepatitis a.
PL206260B1 (pl) Immunogenna kompozycja liposomowa, jej zastosowanie, sposoby jej wytwarzania i kompozycja szczepionki
KR100326938B1 (ko) 지방산이 결합된 합성 펩타이드를 인지질 막에 재조합하여 제조한 조합물 및 그 제조방법
Alving Theoretical basis for development of liposomes as carriers of vaccines
De Haan et al. Liposomes and antiviral mucosal immunity
US20110097418A1 (en) Compositions and methods for treating influenza
Pietrobon et al. Lipopeptides and Their Effects on the Immune System Use as Vaccine Components
Stewart-Tull The choice and mechanism of action of adjuvants

Legal Events

Date Code Title Description
DFD9 Temporary protection cancelled due to non-payment of fee