HU207227B - Process for producing pharmaceutical compositions containing acid-resistant fibroblast growth factor for treating gastrointestinal ulcers - Google Patents

Process for producing pharmaceutical compositions containing acid-resistant fibroblast growth factor for treating gastrointestinal ulcers Download PDF

Info

Publication number
HU207227B
HU207227B HU895785A HU578589A HU207227B HU 207227 B HU207227 B HU 207227B HU 895785 A HU895785 A HU 895785A HU 578589 A HU578589 A HU 578589A HU 207227 B HU207227 B HU 207227B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
acid
fgf
composition
resistant
ulcer
Prior art date
Application number
HU895785A
Other languages
English (en)
Other versions
HU895785D0 (en
HUT55638A (en
Inventor
Moses J Folkman
Koichi Kato
Original Assignee
Childrens Medical Center
Takeda Chemical Industries Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Childrens Medical Center, Takeda Chemical Industries Ltd filed Critical Childrens Medical Center
Publication of HU895785D0 publication Critical patent/HU895785D0/hu
Publication of HUT55638A publication Critical patent/HUT55638A/hu
Publication of HU207227B publication Critical patent/HU207227B/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/50Fibroblast growth factor [FGF]
    • C07K14/503Fibroblast growth factor [FGF] basic FGF [bFGF]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/18Growth factors; Growth regulators
    • A61K38/1825Fibroblast growth factor [FGF]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/30Macromolecular organic or inorganic compounds, e.g. inorganic polyphosphates
    • A61K47/36Polysaccharides; Derivatives thereof, e.g. gums, starch, alginate, dextrin, hyaluronic acid, chitosan, inulin, agar or pectin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/04Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for ulcers, gastritis or reflux esophagitis, e.g. antacids, inhibitors of acid secretion, mucosal protectants
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/50Fibroblast growth factor [FGF]
    • C07K14/501Fibroblast growth factor [FGF] acidic FGF [aFGF]

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)

Description

A találmány tárgya eljárás sav-rezisztens fibroblaszt növekedési faktort (FGF-et) tartalmazó kompozíciók és gyógyászati készítmények előállítására, amelyek emlősök gasztrointesztinális fekélyeinek kezelésére alkalmazhatók elsősorban, de használhatók más, fibroblaszt növekedési faktorra reagáló betegségek kezelésére is, különösen akkor, ha a sav- vagy hőérzékeny fibroblaszt növekedési faktor terápiás értéke viszonylag csekély.
A gasztrointesztinális rendszer fekélyei - amelyeket általában peptikus fekélynek neveznek - a gasztrointesztinális traktus hámsejtrétegének hiányosságából erednek. Ez a hiányosság rendszerint a sósav és a pepszin együttes hatásából ered. Definíció szerint, a peptikus fekélyek legalább a nyálkahártya alatti szövetig behatolnak, az ennél nagyobb mértékű felületi léziókat eróziónak nevezik. A peptikus fekélyek a gasztrointesztinális traktus több helyén létrejöhetnek, beleértve a gyomrot, duodenumot vagy nyelőcsövet, a Meckel-féle diverticulumban, sebészetileg kialakított összeszájadzásnál, és - ritkábban - a felső éhbélben (jejunumban).
Húsz évvel ezelőtt a peptikus Fekélyek kezelése ágynyugalomból, szigorú diétából, savközömbösítő szerekből és/vagy az érintett területek sebészeti úton történő eltávolításából állt. Napjainkban a peptikus fekélyek kezelésére H2-receptor antagonistákat használnak. A két leggyakrabban használt H2-receptor antagonista a ranitidin és a cimetidin, mindkettő gyógyászati hatása a gyomorsav-szekréció gátlásán alapul. A fenti két antagonista hatásosságát és nemkívánatos mellékhatásait sokan tanulmányozták, például Thomas és munkatársai [Clinics in Gastroenterology, /5(2), 501— 529 (1984)].
Noha a fenti antagonistákkal végzett kezelés igen elterjedten alkalmazott és viszonylag eredményes, sok peptikus fekély nem kezelhető' H2-receptor antagonista terápiával. így például - noha ennek okát még nem teljesen tisztázták - a duodenális fekélyek mintegy 20-30%-a nem gyógyul sem cimetidinnel, sem ranitidinnel 4-6 héten keresztül tartó kezelés hatására. Ezenkívül nem ritka H2-receptor antagonista terápia esetén a fekély kiújulása vagy súlyosbodása.
A fibroblaszt növekedési faktorról (FGF) kimutatták, hogy erős angiogén faktor, amely többek között a sebgyógyulásban új érhálózat kialakulásáért felelős. Az FGF-nek két típusa van, úgymint savas fibroblaszt növekedési faktor (aFGF), és bázikus fibroblaszt növekedési faktor (bFGF). Az aFGF sav-rezisztens, de hőre érzékeny, és a bFGF savra és hőre érzékeny. Ezért korábban az FGF alkalmazása savas és/vagy meleg környezetben, így például a peptikus fekélyek kezelésére, nem volt lehetséges.
A találmány tárgya eljárás gyógyászati kompozíciók előállítására, amely kompozíciók emlős szervezetekben az FGF-re reagáló betegségek kezelésére alkalmazhatók oly módon, hogy a kezelendő emlősnek gyógyászatilag hatásos mennyiségben adunk egy találmány szerinti eljárással előállított, sav-rezisztens FGF-kompozíciót vagy annak gyógyászatilag elfogadható sóját. A találmány szerinti eljárással előállított gyógyászati kompozíciók különösen emlősök gasztrointesztinális traktusában lévő fekélyek kezelésére alkalmasak úgy, hogy a kezelendő emlősnek gyógyászatilag hatásos mennyiségben adagoljuk a találmány szerinti eljárással előállított sav-rezisztens FGF-kompozíciót. Még közelebbről, a találmány szerinti eljárással előállított kompozíciók lehetővé teszik olyan peptikus fekélyek és egyéb betegségek kezelését, amelyek egyébként FGF-re érzékenyek, de a savas körülmények miatt a kezelés FGF-fel nem valósítható meg.
A találmány értelmében előállíthatunk olyan gyógyászati készítményeket is, amelyek alkalmasak emlősök FGF-re reagáló betegségeinek kezelésére, és amelyek egy sav-rezisztens FGF-kompozíciót tartalmaznak. Közelebbről a találmány szerinti eljárással előállított, sav-rezisztens FGF-kompozíciót tartalmazó gyógyászati készítmények emlősök gasztrointesztinális traktusában lévő fekélyek kezelésére alkalmasak. A fenti gyógyászati készítmények úgy állíthatók elő, hogy a sav-rezisztens FGF kompozíció gyógyászatilag hatásos mennyiségét győgyászatilag elfogadható hordozó-, vivő- vagy hígítóanyaggal elegyítjük.
A találmány szerinti eljárással előállított sav-rezisztens FGF-kompozíciót előnyösen gyógyászatilag elfogadható vivőanyaggal elegyítve adagoljuk, egy vagy több (a) stabilizálószerrel, (b) szekréciógátló anyaggal, például H2-receptor antagonistával, (c) citoprotektív anyaggal és (d) savközömbösítő anyaggal kombinálva.
Ha a találmány szerinti eljárással előállított, sav-rezisztens FGF-kompozícíókat gasztrointesztinális fekélyben szenvedő emlősöknek adagoljuk, a fekély láthatólag teljes mértékben gyógyul. A fent említett H2receptor antagonistákkal összehasonlítva, az antagonistákkal elért legjobb eredmény kisebb, vagy ugyanakkora, mint a sav-rezisztens FGF-kompozíció optimális mennyisége mintegy 10%-ának adagolásával elért eredmények.
A találmány szerinti eljárással előállított gyógyászati készítmények emlősök FGF-re reagáló betegségei megelőzésére és/vagy kezelésére alkalmazhatók. A kezelés legegyszerűbb módja az, hogy a kezelendő emlősnek hatásos mennyiségben adunk egy sav-rezisztens FGF-kompozíciót, vagy annak egy gyógyászatilag elfogadható sóját. A találmány szerinti eljárással előállíthatók bizonyos gyógyászati készítmények is, amelyek sav-rezisztens FGF-et vagy sóját tartalmazzák, valamint egy vagy több olyan szert, amely a sav-rezisztens FGF-et stabilizálják, gyógyászati hatékonyságát potencírozzák, vagy egyéb módon befolyásolják. Ezek a szerek többek között (i) stabilizálószerek, például glükózamino-glukán, mint heparin, glukán-szulfát, példái dextrán-szulfát, szulfátéit ciklodextrin, például β-ciklodextrin-tetradekaszulfát és $-í,3-glukán-szulfát;
HU 207 227 B (ii) szekréciót gátló szerek, például H2-receptor antagonisták (mint a cimetidin, renitidin, famotidin, roxatidin-acetát), muszkarin-receptor antagonisták (például pirenzepin);
(iii) citoprotektív szerek, például spizofuron és prosztaglandin-származékok; és (iv) savközömbösítőszerek, például alumínium-hidroxid-gél, nátrium-hidrogén-karbonát és szukralfat lehetnek. A fenti szerek vagy külön adhatók, vagy a kompozíció komponenseként,
A találmány értelmében a gasztrointesztinális traktus különféle fekélyei úgy kezelhetők, hogy az emlősnek a sav-rezisztens FGF-komopzíció hatásos mennyiségét adagoljuk. A fenti fekély például regionális csípőbélgyulladás, fekélyes kolitisz vagy peptikus (duodenális vagy gyomor-) fekély lehet.
A találmány szerinti eljárással előállított, sav-rezisztens FGF-kompozíciót emlősök egyéb betegségeinek kezelésére is használhatjuk, amelyek FGF-terápiával csak a savas környezet miatt nem kezelhetők. így például a hólyagok daganatellenes kezelése a szerv szövetében gyakran fekélyesedést okoz, amely FGF-fel kezelhető lenne, ha az FGF sav-rezisztens lenne. A kötözött sebek is savas környezetet jelenthetnek, amelyek sav-rezisztens FGF-fel végzett kezeléssel gyógyíthatók. Szakemberek előtt nem kétséges, melyek azok a további területek, amelyekben az FGF-terápia alkalmazható lenne, ha nem savas körülményekről lenne szó.
A találmány szerinti eljárással előállított sav-rezisztens FGF-kompozíció aFGF- vagy bFGF-kompozíció lehet. A találmány szerinti eljárásban használható aFGF és bFGF különféle forrásokból származhat, beleértve az emlősöket, így embert, marhát, majmot, sertést és lovat.
A találmány szerinti eljárással előállított sav-rezisztens FGF-kompozíció (i) sav-rezisztens természetes emlős FGF, például aFGF, (ii) stabilizálószerekkel stabilizált természetes emlős
FGF, (iii) módosítással sav-rezisztenssé tett FGF, vagy (ív) stabilizálószerekkel még stabilabbá tett módosított
FGF lehet.
A találmány szerinti eljárással előállított előnyös sav-rezisztens FGF-kompozíció főkomponense egy módosított FGF, így egy tisztított, rekombináns humán bázikus FGF (rhbFGF) protein lehet, amelyben az érett protein 25., 69., 87. és 92. aminosav-maradékát képviselő négy cisztein közül egy vagy több szerinre cserélésével mutációt indukálunk („mutein”).
A humán bFGF-et felépítő aminosavak számozásában az N-terminális Pro az első aminosav. A legelőnyösebb sav-rezisztens FGF és rhbFGF CS23 mutein, amelynek szerkezetét Senoo és munkatársai részletesen ismertették [Biochem. Biophys, Research Commun. 757(2), 701-708 (1988); és a 281822 sz. európai szabadalmi leírás]. A találmány szerinti eljárásban használható egyéb muteinek - amelyek a fenti irodalmi helyekről szintén ismertek - azok, amelyek egy vagy több további aminosavat tartalmaznak, vagy amelyekből egy vagy több aminosav hiányzik, vagy más aminosavval van szubsztituálva.
Noha elméletileg még nem teljesen tisztáztuk, de úgy véljük, hogy az FGF cisztein-maradékait semleges aminosavakkal - például szerinnel vagy alaninnal helyettesítve az FGF hővel, savval és bizonyos FGF-et bontó enzimekkel szemben stabillá válik. Az ilyen fajta helyettesítés véleményünk szerint csak csekély változást okoz a protein szerkezetében és aktivitásában, mert egy kénatom (cisztein) oxigénatomra való cseréje (szerin) megakadályozza a mutáció helyén a nemkívánatos intermolekuláris diszulfid-kötés kialakulását.
A találmány értelmében a sav-rezisztens FGF savas környezetben nagy stabilitást mutat, különösen akkor, ha egy vagy több, az alábbiakban részletesen ismertetett stabilizálószerrel együtt használjuk. A natív emlős FGF és a módosítással sav-rezisztenssé tett FGF toxicitása igen alacsony.
Az adagolás módja számos tényezőtől függ, többek között a kezelendő betegségtől, a beteg kényelmének szem előtt tartásával. Például a hólyag fekélyes sebeinek kezelése esetén - amelyet például besugárzásos terápia vagy kemoterápia okozott - a találmány szerinti eljárással előállított sav-rezisztens FGF-kompozíciót húgycső-katéterrel adagolhatjuk, A gasztrointesztinális traktus fekélyeinek kezelésére az adagolást előnyösen orálisan, például tabletta, kapszula, gyógycukor vagy rágógumi formájában végezhetjük. A gasztrointesztinális traktus betegségei esetén alkalmazható adagolási mód ezenkívül a rektális adagolás beöntéssel, vagy a parenterális adagolás.
A kezelésre használt sav-rezisztens FGF-et ismert eljárásokkal állíthatjuk elő. A tablettákat és kapszulákat például adalékanyagok, így gyógyászatilag elfogadható hordozóanyagok (például laktóz, kukoricakeményítő, könnyű szilícium-dioxid, mikrokristályos cellulóz, szacharóz), kötőanyagok (például alfa-formájú keményítő, metil-cellulóz, karboxi-metil-cellulóz, hidroxipröpil-cellulóz, hidroxi-propil-metil-cellulóz, poli(vinil-pirrolidon), dezintegrálószerek (például karboximetil-cellulóz-kalciumsó, keményítő, alacsonyan szubsztituált hidroxi-propil-cellulóz), felületaktív szerek [például Tween 80 (Kao-Atlas), Pluronic F68 (Asahi Denka, Japán), poli(oxi-etilén)-poli(oxi-propilén) kopolimer], antioxidánsok (például L-cisztein, nátrium-szulfit, nátrium-aszkorbát), csúsztatószerek (például magnézium-sztearát, talkum) és egyéb hasonló anyagok alkalmazásával állítjuk elő.
A rektális készítményeket is szokásos eljárásokkal állíthatjuk elő, például kenőcs-bázisokat, így hosszabb szénláncú zsírsav-glicerideket [például természetes eredetű kakaóvajat, Witepsolt (félszintetikus bázis, gyártja a Dynamite Nobel, NSZK)] közepes szénláncú zsírsav-glicerideket [például Miglyolokat (Dynamite Nobel)], vagy növényi eredetű olajokat (például szezámolajat, szójaolajat, kukoricaolajat, gyapotmagolajat, olívaolajat) alkalmazva.
Ha a kompozíciót injektálható vizes oldattá formáljuk, az oldatot szokásos módon állíthatjuk elő. Oldószert,
HU 207 227 B így például vizes oldószert (például desztillált vizet, fiziológiás sóoldatot, Ringer-oldatot) vagy olajos oldószert (például szezámolajat, olívaolajat) használva. Kívánt esetben egy vagy több adalékanyagot is használhatunk. A fenti adalékanyag például oldódást elősegítő segédanyag (például nátrium-szalicilát, nátrium-acetát), puffer (például nátrium-citrát, glicerin), izotonizálószer (például glükóz, invert cukor), stabilizálószer (például humán szérumalbumin, polietilénglikol), konzerválószer (például benzil-alkohol, fenol) vagy analgetikum (például benzalkónium-klorid, prokain-hidrogén-klorid) lehet.
Ha a kompozíciót injekciós szilárd készítménnyé formáljuk, a készítményt szokásos módon állíthatjuk elő, például hígítóanyagot (így desztillált vizet, fiziológiás sóoldatot, glükózt), adalékanyagot [például karboxi-metil-cellulózt (CMC), nátrium-arginátot], konzerválószert (például benzil-alkoholt, benzalkónium-kloridot, fenolt) vagy analgetikumot (például glükózt, kalcium-glükonátot, prokain-hidrogén-kloridot) használhatunk.
A szükséges sav-rezisztens FGF dózisa más hatóanyagokhoz - például H2-blokkolókhoz - viszonyítva figyelemreméltóan kicsi, és számos faktortól, például a kezelendő betegségtől, hogy önmagában, vagy stabilizálószerrel, szekréciógátló anyaggal, citoprotektív anyaggal és savközömbösítő szerekkel együtt használjuk-e, és a beteg táplálékfogyasztásának mennyiségétől függ.
Ha felnőtt ember gasztrointesztinális traktusában lévő fekélyek kezelésére használjuk, a sav-rezisztens FGF protein-komponensének mennyisége orális adagolás esetén általában 0,1 pg-30 mg naponta, előnyösen mintegy 0,1 gg-10 mg, még előnyösebben mintegy 1,0-3 mg naponta, és legelőnyösebben mintegy 10 pg-300 pg a napi dózis. Orális adagolásra 10150 pg rhbFGF CS23 muteint vagy annak sóját gyógyászatilag elfogadható hordozó-, hígító vagy egyéb megfelelő segédanyaggal tablettává vagy kapszulává formálhatunk. Az ilyen készítményt előnyösen napi 1-4 alkalommal adagolva biztosítjuk a fent említett előnyös dózist.
Az alsó gasztrointesztinális traktus bizonyos betegségei, például peptikus fekélyek és fekélyes kolitisz esetén előnyös, ha a sav-rezisztens FGF-kompozíciót valamely enterális kopolimerrel - például hidroxí-propil-metil-cellulóz-ftaláttal, cellulóz-acetát-ftaláttal vagy metakrilsav kopolimerrel - bevonjuk, ezáltal a sav-rezisztens FGF-et még inkább védjük savtól és emésztő enzimektől, például pepszintől. Ez a bevonatos kompozíció így bejut a gasztrointesztinális traktusba, azaz az emésztő traktusba és az emésztőcsatornába, ahol terápiás hatása optimálisan megnyilvánulhat.
Azt is felismertük, hogy a sav-rezisztens FGF-et bizonyos anyagok tovább stabilizálják és/vagy aktivitását potencírozzák. Ilyen anyagok a szekréciógátló szerek, savközömbösítő szerek, citoprotektív anyagok és stabilizálószerek, mint például a glükózamino-glukánok és a glukán-szulfátok néven ismert vegyületcsoport. Szakemberek számára magától értetődő, hogy az ilyen stabilizáló/potencírozó szerek FGF-hez viszonyított mennyisége számos faktortól függően változhat, többek között az alkalmazott szertől, a beteg állapotától és az adagolás módjától függhet. A fenti stabilizálószerek mennyiségének tömegaránya az FGF-hez viszonyítva általában 0,1-100, előnyösen 0,2-20, még előnyösebben mintegy 0,5-4 lehet.
Előnyös szekréciógátló szerek a renitidin és a cimetidin. Az alkalmazott szekréciógátló szer mennyisége a fenti faktoroktól függően változik. így például peptikus fekélyek kezelésére egy előnyös kompozíció mintegy 10-300 pg, előnyösen mintegy 100 pg rhbFGF CS23 muteint és mintegy 20-600 mg, előnyösen mintegy 200 mg szekréciógátló szert tartalmaz.
Előnyös savközömbösítő szerek például az alumínium-hidroxid gél, nátrium-hidrogén-karbonát és szukralfat. A savközömbösítő szert a sav-rezisztens FGF mellett adhatjuk a betegnek, vagy a sav-rezisztens FGF-kompozíció egy komponenseként beépíthetjük a kompozícióba. A savközömbösítő szer mennyisége általában 0,5-5 g/kezelés.
A citoprotektív anyag mennyisége számos tényezőtől, többek között az adott citoprotektív anyagtól függ. Prosztaglandin-származékok esetén ez a mennyiség általában 2,5-5 pg/felnőtt ember, spizofuron esetén mintegy 80 mg/felnőtt ember.
A találmány szerinti kompozícióban használt stabilizálószerek glükóz-amino-glukánok, így heparin, heparin-fragmentumok, glukán-szulfátok, így dextránszulfát, ciklodextrin-szulfát és P-l,3-glukán-szulfát lehetnek. A fenti glukán-szulfát kéntartalma előnyösen legalább 3 tömeg%, még előnyösebben mintegy 1220 tömeg%, legelőnyösebben mintegy 16-20 tömeg%. Előnyös stabilizálószerek a glukán-szulfátok, különösen a dextrán-szulfát.
A glükóz-amino-glukánok ismert vegyületek (lásd például Molecular Biology of the Cell, Gerland Publishing Inc., New York, London, 1983). A találmány szerinti eljárásban használt glükóz-amino-glukánok mintegy 0,1-3,0 szulfátcsoportot tartalmaznak diszacharid-egységenként, és móltömegük mintegy 1000100000, előnyösen 2000-50000. A fenti glükóz-amino-glukánokra példaként a heparint, heparin-szulfátot és dermatan-szulfátot említjük.
A heparin ismert (például Merck Index, 8. kiadás, 1983). A heparin móltömege mintegy 5000-40000.
A ciklodextrinek természetes gyűrűs vegyületek, amelyek hat (alfa), hét (béta) vagy nyolc (gamma) D-glükóz-egységből állnak, amelyek egymáshoz alfa( 1 —->4) kötéssel kapcsolódnak. Mogyoró alakú molekulaszerkezetük üreget képez, és így megfelelő méretű vendég-molekulákkal zárványkomplexet képeznek.
A ciklodextrin-szulfát a fenti ciklodextrinek szulfonálásával előállított észter. A szulfonálást ismert módon végezhetjük. Előnyös szulfonálási eljárást ismertetnek a 2923 704 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírásban és a 36422/1975 számon közzétett japán szabadalmi leírásban.
A ciklodextrin-szulfát kéntartalma rendszerint több mint 3 tomeg%, előnyösen 12-24 tömeg%. A fenti ciklodextrin-szulfátok is jól oldódnak vízben.
HU 207 227 Β
A találmány szerinti eljárásban használható ciklodextrin-szulfát szulfonálási foka tetszőleges, de 12 tömeg%-ot meghaladó mértékű lehet, a kéntartalomra számítva. Különösen előnyös a mintegy 16—21 tömeg% ként tartalmazó ciklodextrin-szulfát.
A találmány értelmében az FGF protein-komponens stabilizálására használhatók az alfa-, béta- és gamma-ciklodextrin-szulfát-sók is. Előnyösek a bétaciklodextrin-sók, például a béta-ciklodextrin-tetradekaszulfát.
A találmány szerinti eljárásban használható β-1,3glukán-szulfátot a P-l,3-glukán szulfonálásával állíthatjuk elő. A P-l,3-glukán - amelyet az Alcaligenes vagy Agrobacterium nemzetségbe tartozó mikroorganizmusok termelnek - egyenes szénláncú, vízoldható és hőre gélesedő. A különféle glukánok tisztítására alkalmas eljárásokat Ebisu és munkatársai ismertetik (Journal of Bacteriol.ogy, 1489-1501. oldal, 1975).
A hőre zselatinálódó PS poliszacharidként is ismert curdlan (beszerezhető a Wako Pure Chemical Industries, Ltd.-től, Japán) vízben oldhatatlan, hőre zselatinálódó, egyenes szénláncú glukán, amely egyedül β(1—>3) kötéssel rendelkezik, és amelyet az Alcaligenes vagy Agrobacterium nemzetségbe tartozó mikroorganizmusok termelnek (lásd például 7000/1968, 32673/1973 és 32 674/1973 számon közzétett japán és 1352938 számú nagy-birtanniai szabadalmi leírás). A curdlan-termelő Alcaligenes faecalis var. myxogenes NTK-u törzs, Agrobacterium radiobacter törzs és Agrobacterium radiobacter U-19 törzs az amerikai törzsgyűjtemény-katalógusban (ATCC Cataloguse of Strains, I, 15. kiadás, 1982) ATCC-21680, ATCC-6466, illetve ATCC-21679 számon vannak nyilvántartva.
A curdlan kis móltömegű hidrolízis-termékei is használhatók. Ezek előállítását részletesen a 83798/1980 számon közrebocsátott japán és a 4454 315 számú amerikai egyesült államokbeli szabadalmi leírások ismertetik.
A β-1,3^1υ1<Αη átlagos polimerizációs foka (DP) kisebb mint 1000. Közelebbről, a kb. 6-300 polimerizációs fokú hidrolízistermékét, előnyösen 15-200 polimerizációs fokú hidrolízistermékét használhatjuk a találmány szerinti eljárásban.
Az egyenes szénláncú β-1,3^Ηύίάη szulfátja amely a találmány szerinti eljárásban használható - a β-13-glukán vagy kisebb polimerizációs fokú polimerjei hidroxilcsoportjainak szulfonálásával előállított észter; a 0,8-3 átlagos szubsztitúciós fokú (DS) észterek, előnyösen az 1-2 átlagos szubsztitúciós fokú észterek használhatók a találmány szerinti eljárásban.
Az egyenes szénláncú β-13-glukán vagy kisebb móltömegű polimerje szulfonálását ismert módon végezhetjük [Journal of Biological Chemistry, 239, 2986 (1964)]. A β-1,3^1υϊ<ύη-5ζυ1ίύΐ kéntartalma rendszerint nagyobb, mint 5 tömeg%, előnyösen mintegy 1021 tömeg%, és vízben igen jól oldódik.
A találmány szerinti eljárásban előnyösen használható glukán-szulfát a dextrán szulfátja, a dextrán a szacharózból keletkezik mikroorganizmusok, például Leuconostoc mesenteroides hatására.
A dextrán-szulfát a dextrán részleges szulfátja, a dextrán alapszerkezete a glükóz alfa(l—6) kötés, és kéntartalma rendszerint legalább 12 tömeg%, előnyösen mintegy 16-20 tömeg%. Átlagos móltömege mintegy 1000-40000000, előnyösen kb. 3000-1000000. A dextrán-szulfát vízben nagyon jól oldódik.
A találmány szerinti eljárásban alkalmazható glukán-szulfát só formában is lehet. A só valamely gyógyászatilag elfogadható kationnal képzett só, például nátrium-, kálium-, trimetil-ammónium-, ammóniumsó, vagy más hasonló só lehet.
Ha a glukán-szulfátot az FGF-proteinnel vizes közegben hozzuk érintkezésbe, ezt úgy végezhetjük, hogy először beadagoljuk a glukán-szulfátot szabad állapotban, majd meghatározott mennyiségű lúgot vagy savat adagolunk, a pH kívánt értékre állítására. Lúg hozzáadására a glukán-szulfát vizes közegben sóvá alakulhat, vagy a szabad glukán-szulfátból és só formában lévő glukán-szulfátból álló elegyet kapunk.
Ha a találmány szerinti FGF-protein-komponenst vizes közegben glukán-szulfáttal hozzuk érintkezésbe, ezt előnyösen két- vagy hárombázisú karbonsav jelenlétében végezzük, így még stabilabb FGF-et kapunk. Kétbázisú karbonsavként például borkősavat, maleinsavat, almasavat, fumársavat, vagy hasonló savat használhatunk. Hárombázisú karbonsavra példaként a citromsavat, izocitromsavat stb. említhetjük.
A fent említett karbonsavak is lehetnek só formában. Úgy is eljárhatunk, hogy a vizes közeghez először hozzáadjuk a szabad karbonsavat, majd megfelelő mennyiségű lúg vagy sav hozzáadásával beállítjuk a kívánt pH-értéket. Lúg hozzáadására a glukán-szulfát sóvá alakulhat vizes közegben, vagy együtt lesz jelen a szabad glukán-szulfát és a só formájú glukán-szulfát.
Ha az FGF-protein-komponenst vizes közegben hozzuk érintkezésbe a glukán-szulfáttal, a glukán-szulfát FGF-protein-komponenshez viszonyított tömegaránya 0,1-100, előnyösen 0,2-20, legelőnyösebben 0,54 lehet.
A glukán-szulfát koncentrációja vizes közegben előnyösen 0,0005-5 vegyes%, még előnyösebben mintegy 0,01—1 vegyes% lehet. A karbonsav mennyisége vizes közegben előnyösen 1 mmól/1-1 mól/1, még előnyösebben mintegy 10 mól/I-500 mól/1 lehet.
Az FGF-protein-komponens glukán-szulfáttal, továbbá karbonsavval való érintkeztetésére elegendő, ha a fenti anyagokat vizes közegben egyszerűen összekeverjük.
Vizes közegként előnyösen desztillált vizet, fiziológiás sóoldatot, glükóz-oldatot, puffereket, például foszfát- vagy trisz(hidroxi-metil)-amino-metán-HCl puffért (Tris-HCl-t) használunk.
Vagy az FGF-protein-komponens vizes oldatát, a glukán-szulfát vizes oldatát és a karbonsav vizes oldatát elegyítjük, vagy a szilárd formában lévő fenti anyagok elegyét oldjuk vízben. A fenti anyagok elegyítését 0 és 40 °C közötti hőmérsékleten, előnyösen 3 és 10 közötti pH-értéken, még előnyösebben pH 4-9 értéken hajtjuk végre. Az elegyítéshez szükséges idő mintegy 1 és 30 perc között változtatható. A kapott kompozíciót
HU 207 227 Β liofiiizálhatjuk, ezalatt komplex képződhet, és azt kinyerhetjük.
Az így kapott stabilizált FGF-kompozíció elválasztására és kinyerésére Sephadex gélen gélszűrést, vagy DEAE- vagy CM-gyantán ioncserélős kromatográfiát végezhetünk. A stabilizált FGF-kompozíciót azonban mint olyant, elválasztás és kinyerés nélkül is alkalmazhatjuk.
A fent ismertetett eljárásokkal nagystabilitású FGFkompozíció állítható elő, amelyet nagy biztonsággal alkalmazhatunk különféle emlősök, például ember, patkány, tengerimalac, kutya, egér stb. kezelésére.
A találmányt közelebbről az alábbi példákkal kívánjuk megvilágítani, a korlátozás szándéka nélkül.
Az 5., 6. és 7. példákban használt humán bázikus FGF-et a 237968 számú európai szabadalmi leírás 1., 3., 6. vagy 8. példájában ismertetett módon állítjuk elő, Escherichia coli K12 MM294/pTB669 transzformánst használva [amely az Institute fór Fermentation, Osaka (EFC) törzsgyűjteményében 1986. 08. 11-én IFO 14532 számon, és a Fermentation Research Institute (FRI) Japán törzsgyűjteményében 1986. 08. 21-én FERM P-8918 számon lett letétbe helyezve, amely azóta a Budapesti Egyezménynek megfelelő letétté lett átalakítva BP-1281 számon].
Az alábbi 1-3. és 5-8. példákban használt rhbFGF CS23 mutein proteint a fent idézett Biochemical and Biophysical Research Communication 151, 701-708 (1988) irodalmi helyen és a 281822 számú európai szabadalmi leírás 1. és 2. referenciapéldájában és 1., 6., 7. és 24. példájában ismertetett módon állítjuk elő, Escherichia coli MM294/pTB762 transzformáns alkalmazásával (amely az Instituts fór Fermentation, Osaka, Japán törzsgyűjteményében IFO 14613 számon 1987. 05. 27-én, és a Fermentation Research Institute, Japán törzsgyűjteményében FERM P-9409 számon 1987. 06. 11-én lett letétbe helyezve, és azóta a Budapesti Egyezménynek megfelelő letétté lett alakítva BP-1645 számon).
A 6. példában használt rekombináns humán savas FGF proteint (rhaFGF-et) az alábbi 4. példában ismertetett eljárással állítjuk elő. Az ábrákat az alábbiakban ismertetjük:
- 1. ábra: a humán savas FGF-et (haFGF) kódoló cDNS-szekvencia
- 2. ábra: a pTB975 plazmid megszerkesztése
- 3-5. ábra: haFGF tisztítása.
1. példa
Az alábbi kísérletekben a duodenális fekélyt normális patkányokban S. Szabó módszerével [American Joumai of Pathology, 273-276. oldal (1978)] indukáljuk. Közelebbről, az állatoknak gyomor-szondán keresztül orálisan, ugyanazon a napon háromszor, 25 mg/testtömeg-kg dózisban ciszteamint adunk. 24 óra múlva az állatok mintegy 10%-a elpusztul perforált fekély következtében. A 3. napon mindegyik patkányon kis has-bemetszést ejtünk, és megvizsgáljuk, hogy kialakult-e a duodenális fekély. Azokat a patkányokat, amelyeknél nem látható a duodenális fekély kialakulása (a túlélő állatok mintegy 1-2%-a) a vizsgálatból kizárjuk. így minden egyes vizsgálatban résztvevő állat fekélyes, és a torzítások megelőzésére az állatokat véletlenszerűen osztjuk csoportokba.
A vizsgálatban résztvevő állatok testtömege a vizsgálatok megkezdésekor mintegy 160 g. Az alábbi eredményeket négy csoport állattal kaptuk, amelyeket 21 napon keresztül kezeltünk, majd leöltünk. Az összes mérést a 21 napos kezelés befejezése után, az állatok elpusztításakor végeztük.
I. csoport: FGF-kezelés nélkül
Négy fekélyes állatot nem kezeltünk FGF-fel. A fekély mértéke, mélysége és területe statisztikusan azonos a korábban vizsgált 50 másik kezeletlen állat esetén tapasztaltakkal.
Fekély átlagos mélysége* = 1,625 (S.D. = 1,302;
S.E.M. = 0,460)
Fekély átlagos területe = 8,83 mm2 (S.D. = 9,75;
S.E.M. = 3,45)
Testtömeg 189 g
176 g
177 g 180 g x = 182 g fekély átlagos mélysége az alábbiakat jelenti:
= néhány sejt mélyen az epiléliumban = a nyálkahártya alatt és az izomsejtekben
- az izomrétegen keresztül
- áthatolt (majdnem perforált)
II. csoport: 10 ng rhbFGF CS23 mutein kezelés
A második csoportba tartozó négy patkányt ng/100 g testtömeg dózisban naponta két alkalommal kezeljük rhbFGF CS23 muteinnel. A fenti dózist hetente kétszer az állat testtömegéhez igazítjuk.
Fekély átlagos mélysége = 1,00 (S.D. = 1,414; S.E.M.
= 0,707)
Fekély átlagos területe = 3,14 mm2
Testtömeg 232 g
212 g
204 g
216g x = 216 g
III. csoport: 100 ng rhbFGF CS23 mutein kezelés
A patkányok harmadik csoportjában négy állatot 100 ng/100 g testtömeg dózisban kezelünk rhbFGF CS23 muteinnel, naponta két alkalommal. A dózist ebben az esetben is hetente kétszer minden egyes állat esetén testtömegéhez igazítjuk.
Fekély átlagos mélysége = 0,25 (S.D. = 0,5; S.E.M. =
0,25)
Fekély átlagos területe: 0,392 mm2 (az összes fekély teljesen gyógyult, kivéve egy kis fekélyt, ami egy állatban még gyógyulóban van)
Testtömeg 198 g
205 g 254 g _ 215 g x = 218g
HU 207 227 B
IV. csoport: 500 ng rhbFGF CS23 mutein kezelés Az öt patkányból álló negyedik csoportot
500 ng/100 g testtömeg dózisban kezeljük rhbFGF CS23 muteinnel, naponta kétszer. A dózist minden egyes állat esetén hetente kétszer a testtömeghez igazítjuk.
Fekély átlagos mélysége: 0,6 (S.D. 1,342; S.E.M. = 0,6)
Fekély átlagos területe = 1,88 mm2
Testtömeg 207 g
217 g
295 g
196 g
216 g x = 208 g
A fenti adatokból látható, hogy az orálisan adagolt sav-rezisztens rhbFGF CS23 mutein igen gyorsan gyógyítja a ciszteaminnal indukált fekélyeket. Még a legjobb Hj-blokkolókkal is kisebb, vagy legfeljbb azonos eredményeket érhetünk el, mint a 10 ng/100 g testtömeg rhbFGF CS23 muteinnel kezelt csoportban.
2. példa
10% magzati borjúszérumot tartalmazó Dulbeccoféle MÉM tápközeghez 10 μg/ml koncentrációban rhbFGF CS23 muteint adunk, majd 25 pg/ml végkoncentrációban dextrán-szulfát-só (Seikagagu Kogyo, Japán) adunk az elegyhez. A kapott elegyet 37 °C-on 24 órán keresztül inkubáljuk. A használt dextrán-szulfát-sók 5000, 7500, illetve 500000 átlagos móltömegű nátriumsók. Kontrollként azonos, de dextrán-szulfátnátriumsót nem tartalmazó tápközeget használunk. A 24 óra múlva megmaradt aktivitások az 1. táblázatban láthatók. A kontroliban nem találunk mérhető CS23 mutein aktivitást, míg a többi csoportban az FGF aktivitás stabilan megmarad.
1. táblázat
Adalékanyag FGF maradék aktivitása (%)
dextrán-szulfát-nátriumsó (átlagos móltömeg 5000) 93
dextrán-szulfát-nátriumsó (átlagos móltömeg 7500) 100
dextrán-szulfát-nátriumsó (átlagos móltömeg 500000) 100
kontroll 6
A fenti eredmények azt mutatják, hogy a dextránszulfát védőhatást fejt ki az rhbFGF CS23 muteinre azon hőmérséklettel szemben, amelynek a protein az állatok kezelésekor ki van téve. Más szavakkal, ha a dextrán-szulfátot vizes közegben FGF-fel hozzuk érintkezésbe, stabilizált FGF-et kapunk. Ezt a stabilizált FGF-et gyógyászati készítményekké alakíthatjuk, amelyek a gasztrointesztinális traktusban lévő hővel, savval és enzimreakciókkal szemben stabil.
3. példa
Milliliterenként 0,5 mg rhbFGF CS23 muteint, 0,23 mg dextrán-szulfát-nátriumsót (átlagos móltömege 7500) és 15 mg nátrium-citrátot tartalmazó vizes oldatot (pH 7,4) készítünk.
4. példa
Savas FGF előállítása
A humán savas FGF-et az alábbiakban ismertetett módon állítjuk elő, az alábbi irodalmi helyeken ismertetett módszerek alkalmazásával: Biotechnology 5, 960 (1987); Journal of Biological Chemistry 263, 16471 (1988); és ICSU Short Report 8. kötet, Advances in Gene Technology: Protein Engineering and Production, Proceedings of the 1988 Miami Bio/Technology Winter Symposium, IRL press, 110. oldal.
(i) Expressziós plazmid szerkesztése
A humán savas FGF-et kódoló cDNS-t (1. ábra) kémiai úton szintetizáljuk, és pUC18 plazmidba illesztjük [Methods in Enzymology 101, 20-78 (1983)], így pTB917 plazmidot kapunk. A pTB917 plazmidot BspMI-gyel hasítjuk, és a végeket E. coli DNS-polimeráz I nagy fragmentum segítségével kitöltjük. Ezután a DNS-t BamHI-gyel emésztjük, így 0,45 kb hosszúságú DNS-fragmentumot kapunk. Vektor DNS-ként a T7 fág 010 promoterét hordozó pET3c-t [Studier F. W. és munkatársai, Journal of Molecular Biology, 189, 113-130 (1986)] használunk. A pET3c-t Ndel-gyel hasítjuk, és a végeket E. coli DNS-polimeráz I nagy fragmentumot használva kitöltjük. Ezután a kapott DNS-hez T4 DNS-ligázzal hozzákötjük az 5’-CCATGG-3’ Ncol linkért (kötőszekvenciát). A kapott plazmidot Ncol-gyel hasítjuk, E. coli DNS-polimeráz I nagy fragmentummal kitöltjük a végeket, majd az S10 szekvenciát BamHI-gyel hasítva eltávolítjuk. Erre a helyre beillesztjük a 0,45 kb hosszúságú BspMI-BamHI tompavégű fragmentumot, T4 DNS-ligázzal végzett ligálással, így pTB plazmidot kapunk (2. ábra).
(ii) haFGF cDNS expressziója E. coliban
Escherichia coli MM294-et DE3 lambda fággal lizálunk (Studier és munkatársai fent idézett munkája), amelyben a T4 fág RNS-polimeráz génjét rekombináltuk. Ezután a pLysS plazmidot bevisszük az E. coli MM294 (DE 3) törzsbe, ezáltal E. coli MM294 (DE 3)/pLysS-t kapunk. A fenti törzsbe pTB975 plazmidot bevive kapjuk az E. coli MM294 (DE 3)/pLysS, pTB975-öt. A fenti transzformánst 35 gg/ml ampicillint és 10 gg/ml kloramfenikolt tartalmazó L-tápközegben 37 °C-on tenyésztjük. Amikor a Klett-érték kb. 170, a tápközeghez 0,5 mmól/1 végkoncentrációban izopropil^-D-tiogalaktozidázt (IPTG) adunk, és a tenyésztést még 3 órán keresztül folytatjuk. A sejteket centrifugálással összegyűjtjük, PBS-sel mossuk, újra lecentrifugáljuk és -20 °C-on tároljuk.
HU 207 227 B (iii) haFGF tisztítása liter tenyészetből nyert sejttömeget 100 ml, 10 mmól/I Tris-HCl-t (pH 7,4), 10 mmól/1 EDTA-t, 0,6 mól/l NaCl-t, 10% szacharózt és 0,25 mmól/1 PMSFet tartalmazó pufferben szuszpendálunk, majd 0,5 mg/ml koncentrációban tojásfehérje-lizozimet adunk a szuszpenzióhoz. Az elegyet 1 órán keresztül jeges fürdőn tartjuk, majd 37 °C-on 5 percen keresztül inkubáljuk, 20 másodpercen keresztül kétszer ultrahanggal kezeljük, és SORVALL centrifugával 18000 fordulat/perccel 30 percen keresztül 4 °C-on centrifugáljuk. A kapott felülúszót jeges hűtés mellett 20 mmól/1 Tris-HCl-t (pH
7.4) és 1 mmól/1 EDTA-t tartalmazó pufferrel elegyítjük. A kapott elegyet heparin-Sepharose oszlopon (átmérője 2,5x4 cm) folyatjuk keresztül, amelyet 20 mmól/1 TrisHCl-t (pH 7,4), 1 mmól/1 EDTA-t és 0,2 mól/l NaCl-t tartalmazó pufferrel ekvilibráltuk. Az oszlopot 150 ml, 20 mmól/1 Tris-HCl-t (pH 7,4), 1 mmól/1 EDTA-t és 0,5 mól/l NaCl-t tartalmazó pufferrel mossuk, majd 20 mmól/1 Tris-HCl-t (pH 7,4), 1 mmól/1 EDTA-t és 1,5 mól/l NaCl-t tartalmazó pufferrel eluáljuk. 6 ml-es frakciókat szedünk, és a második csúcsként megjelenő frakciókat (8-11., összesen 24 ml) összegyűjtjük, az OD2S0 érték folyamatos mérése segítségével (3. ábra).
A fenti frakciókhoz azonos térfogatban (22 ml) 20 mmól/1 Tris-HCl-t (pH 7,4), 1 mmól/1 EDTA-t és 2 mól/l (NH4)2SO4-ot tartalmazó puffért adunk. Az elegyet fenil-Sepharose oszlopon (átmérője 2,5x8 cm) folyatjuk keresztül, amelyet 20 mmól/1 Tris-HCl-t (pH
7.4) , 1 mmól/1 EDTA-t és 1 mól/l (NH4)2SO4-ot tartalmazó pufferrel ekvilibráltunk. Az átfolyási sebesség 0,5 ml/perc. Az oszlopot az ekvilibrálásra használt pufferrel azonos összetételű pufferrel mossuk, majd 1 mól/l —> 0 mól/l lineáris (NH4)2SO4 gradienssel eluáljuk (átfolyási sebesség 0,5 ml/perc, a gradiens-idő 200 perc). A 40-55. frakciókat összegyűjtve (4. ábra) kapjuk a tisztított humán savas FGF-et.
(iv) Fordított fázisú C,r-IÍPLC
A (iii) lépésben kapott humán savas FGF-et 1,2 mg/ml koncentrációban tartalmazó oldatból 0,25 ml-t 0,1% trifluor-ecetsavval (TFA) elegyítünk, és az elegyet fordított fázisú C4 oszlopra (VYDAC, USA) visszük. Az eluálást 0,1% TFA jelenlétében. 0% —> 90% acetonitril lineáris gradienssel végezzük, az átfolyási sebesség 1 ml/perc. A gradiens-idő 60 perc. Az eredményeket az 5. ábrán ismertetjük.
(v) Biológiai aktivitás
A (iv) lépésben kapott, tisztított haFGF biológiai aktivitását Sasada és munkatársai módszerével határozzuk meg [Mól. Cell Bioi. 5, 588-594 (1988)], mégpedig úgy, hogy mérjük a (3H)-timidin beépülést a DNS-be, BALB/c3T3 sejtben. Amikor a mintát hozzáadjuk, herparinoldatot (SIGMA, I tisztaságú) keverünk a tápfolyadékhoz és a mintához, amennyiben szükséges.
5. példa
A gyomor-, duodenális vagy vastagbél-fekélyt K. Tagaki és munkatársai módszere szerint indukáljuk normál patkányokban [Jpn. J. Pharmacol. 19, 418-426 (1969)].
A vizsgálatokban héthetes, mintegy 250 g tömegű hím Jel: Spargue-Dawley patkányokat használunk. A patkányokat éterrel altatjuk, és a hason bemetszést teszünk. 6 mm átmérőjű, kerek fémformát helyezünk a savóshártya-felülettel szoros érintkezésben az üreg és a szerv elülső falának találkozásánál a gyomorba; a nyombélfalra, kb. 7 mm-re a pylorustól, illetve a vastagbélfalra, kb. 5 cm-re az ileocecális találkozástól. A fémformára 50 pl jégecetet öntünk, és 20 másodpercen keresztül rajtahagyjuk. Az ecetsav eltávolítása után a kezelt területet 100 μΐ sóoldattal leöblítjük, és a hasat összezárjuk.
Az 5%-os gumiarábikumoldatban szuszpendált FGF-kompozíciót naponta kétszer adjuk orálisan (de. 9-kor és du. 4-kor), 6 egymást követő napon keresztül, az operációt követő naptól kezdve. Az operáció utáni 7. napon az állatokat CO2-dal előidézett fulladással leöljük. A fekélyes terület nagyságát (mm2) és mélységét (O-tól 3-ig terjedő skála szerint, 0: nincs lézió, 1: nyálkahártya-erózió, 2: enyhe fekély, 3: mély fekély vagy perforáció) boncoló-mikroszkóp alatt, 1 mm-es négyzethálós beosztású nézőkével (10-szeres nagyítás) mérjük. A fekélyindexet a területből és a mélységből számítjuk ki.
Az ecetsav a gyomor, a duodénum és a vastagbél savóshártya-felületén kerek fekélyt okoz. A 2-4. táblázat eredményeiből látható, hogy a kontroll csoport fekélyindexei az egyes fekély-fajtáknál az operációt követő 7. napon 6,7 ± 1,1; 5,7 ± 1,1, illetve 14,2 ± 1,6. A kontroll csoportnak csak 150 mmól/1 NaCl-t tartalmazó citrát-pufferből (pH 7,0) álló hordozóanyagot adunk; az rhbFGF csoportot orálisan 30 pg/testtömeg-kg dózisban rhbFGF-fel kezeljük; a CS23 csoport orálisan 30 pg/testtömeg-kg dózisban rhbFGF CS23 muteint kap; és a CS23-DS csoportot 30 pg/testtömeg-kg rhbFGF CS23 mutein és 13,8 pg/testtömeg-kg dextránszulfát (átlagos móltömege 7500) elegyével kezeljük.
A CS23 és CS23-DS csoportban a gyomor-, duodenális és vastagbél-fekély gyógyulása felgyorsul; a doudenális és vastagbél-fekélyre kifejtett hatás statisztikusan szignifikáns (2-4. táblázat). Az rhbFGF fekélygyógyulást előidéző hatása kevésbé jelentős, mint a CS23 és CS23-DS hatása.
2. táblázat:
rhbFGF, CS23 és CS23-DS hatása esetsavval indukált gyomorfekély gyógyulására, patkányban
Kezelés Dózis Rkg, p. 0.) Patkányok száma Fekélyindex Fekélyindex javulása (%)
kontroll 8 6,7 ± 1,1 -
rhbFGF 30 8 5,8 ±0,9 13
CS23 30 8 4,3 ±0,9 36
CS23-DS 30 ·. 8 3,8 ±0,9 46
az eredményeket átlagérték + s.e.-ként adjuk meg
HU 207 227 Β
3. táblázat rhbFGF, CS23 és CS23-DS hatása esetsavval indukált duodenális fekély gyógyulására, patkányban
Kezelés Dózis (μ/kg, p. 0.) Patká- nyok száma Fekélyindex Fekélyindex javulása (%)
kontroll 8 5,7 ±1,1 -
rhbFGF 30 8 5,9 ±1,4 -4
CS23 30 8 2,5 ±0,5* 56
CS23-DS 30 8 1,7 ±0,4** 70
az eredményeket átlagérték ± s.e.-ként adjuk meg *: p<0,05, **: p<0,01 a kontrollal szemben (Student-féle t-teszt)
4. táblázat rhbFGF, CS23 és CS23-DS hatása esetsavval indukált vastagbél-fekély gyógyulására, patkányban
Kezelés Dózis (μ/kg. p. 0.) Patká- nyok száma Fekélyindex Fekélyindex javulása (%)
kontroll 8 14,2 ±1,6 -
rhbFGF 30 8 14,0 ±1,5 1
CS23 30 8 8,0 ±1,9* 44
CS23-DS 30 8 7,3 ±2,1 49
az eredményeket átlagérték ± s.e.-ként adjuk meg *: p<0,05 a kontrollal szemben (Student-féle t-teszt)
6. példa
Az alábbi kísérletekben a vastagbél-fekélyt úgy indukáljuk, hogy a vastagbél nyálkahártyájának felületére helyileg N-etil-maleimidet (NEM) viszünk. A kísérletekben héthetes, kb. 250 g-os hím Jel: Spargue-Dawley patkányokat használunk. A patkányok vastagbelébe, az anusztól 6 cm-re, Nelaton-katéterrel adagolunk 50 pl, 1%-os metil-cellulózzal készült 3%-os NEM-oldatot. A 150 mmól/1 NaCl-t tartalmazó 50 mmól/1 koncentrációjú nitrát-pufferben (pH 7,0) vagy 20 mmól/1 koncentrációjú Tris-HCl pufferben (pH 7,0) oldott FGF-kompozíciókat 0,2 ml/patkány dózistérfogatban adjuk a vastagbélbe, 7 cm-re az anusztól, Nelaton-katéterrel, naponta két alkalommal (de. 9-kor és du. 4-kor) a fekély NEM-kezeléssel történt indukálását követő naptól kezdve, 10 egymást követő napon keresztül. A NEM-kezelést követő 11. napon az állatokat szén-dioxiddal kiváltott fulladással elpusztítjuk, és boncoló mikroszkóp alatt, 1 mm-es négyzethálós nézőkét (10-szeres nagyítás) használva mérjük a fekélyes terület nagyságát (mm2) és a fekély mélységét (O-tól 3-ig terjedő skála: 0: nincs lézió, 1: nyálkahártya-erózió, 2: enyhe fekély, 3: mély fekély vagy perforáció). A fekély indexet a területből és a mélységből számítjuk ki.
Az 1. kísérletben a kontroll csoport csak hordozóanyagot kap, amely 150 mmól/1 NaCl-t tartalmazó mmól/1 koncentrációjú citrát-puffer (pH 7,0). Az rhbFGF csoportot rhbFGF-fel kezeljük, 2 pg/patkány dózisban, a CS23 csoportot rhbFGF CS23 muteinnel kezeljük, 2 pg/patkány dózisban, és a CS23-DS csoportot 2 pg/patkány rhbFGF CS23 mutein és 0,92 pg/patkány 7500 átlagos móltömegű dextránszulfát elegyével kezeljük.
A 2. kísérletben a kontroll csoport csak 20 mmól/1 koncentrációjú Tris-HCl-puffert (pH 7,0) kap, az rhaFGF csoport 2 pg/patkány dózisban 4. példa szerint előállított rhaFGF-et kap.
Az 5. táblázat eredményeiből látható, hogy a vastagbél nyálkahártyájára felvitt NEM súlyos, mély fekélyt indukál. A kontroll csoport fekélyindexe a NEM adagolásától számított 11. napon 231,6 ± 51,1 az 1. kísérletben, és 191,6 + 84,5 a 2. kísérletben. Az rhbFGF, CS23, CS23-DS és rhaFGF mind gyorsította a vastagbél-fekély gyógyulását.
5. táblázat rhbFGF, CS23 és CS23-DS és rhaFGF hatása NEM indukálta vastagbél-fekély gyógyulására, patkányban
Kezelés Dózis (μ/kg, p. 0.) Patká- nyok száma Fekélyindex Fekélyindex javulása (%)
1. kísérlet
kontroll 8 23l,6±51,l -
rhbFGF 2 9 167,6 ±37,3 28
CS23 2 9 108,4 ±26,3* 53
CS23-DS 2 9 79,4 ± 14,9* 66
2. kísérlet
kontroll 10 191,6 ±84,5 -
rhaFGF 2 9 99,4 ±25,2 48
az eredményeket átlagérték + s.e.-ként adjuk meg ♦: p<0,05 kontrollal szemben (Student-féle t-teszt)
7. példa
Az alábbi kísérletekben az 1. példában ismertetett állat-modellt használjuk duodenális fekély indukálására normál patkányban. Nőstény patkányoknak három alkalommal adunk 25 mg/100 g dózisban orálisan ciszteamin-HCl-t. Három nap múlva az áthatoló duodenális fekélyes állatokat (megállapítása hasfelmetszéssel) véletlenszerűen kontroll és kezelt csoportokba osztjuk.
A csoportonként 6-8 patkány (1) csak hordozóanyagot (2) rhbFGF-et (vad) (vad típusú rekombináns humán bFGF) vagy (3) CS23-at (sav-rezisztens rhbFGF CS23 mutein) kap, 100 ng/100 g dózisban, gyomorszondán keresztül, naponta 2 alkalommal, a 21. napon végzett boncolásig, amikor a fekélyeket mérjük és szövettani metszeteket készítünk. A kísérletet háromszor megismételjük, az eredményeket a 6. táblázatban foglaljuk össze.
HU 207 227 Β
6. táblázat
Kezelés Fekélyes patkányok aránya Fekélyes terület
kontroll 89% 9,8 ± 4,6 mm2
rhbFGF (vad) 80% 2,1 ± 1,3 mm2 (p- 0,073)
CS23 33% 1,7 ±1,1 mm2 (p- 0.063)
A boncolás során készített szövettani metszeteket is kiértékeltük. A megfigyeléseket az alábbiakban összegezzük: jelentős eresedés, enyhe egymagvú sejt beszűrődés, és sűrűn sarjadzó szövet a fekély-ágyban; gyógyult fekélyek, amelyek teljesen hámosodnak; hipertrófiás normális gyomor- és duodenális nyálkahártya. Ezeket a szövettani eredményeket nem észleljük a csak hordozóanyaggal kezelt patkányok esetén,
8. példa
Az alábbi kísérletekben normális «patkányokban az
1. és 7. példában ismertetett módon indukálunk duodenális fekélyt. Nőstény patkányoknak háromszor adunk orálisan 25 mg/100 g dózisban ciszteamin-HCl-t. Három nap múlva az áthatoló duodenális fekéllyel rendelkező állatokat (hasfelmetszéssel megállapítva) kontroll és kezelt csoportokra osztjuk véletlenszerűen. Csoportonként 3-4 patkány (1) csak hordozóanyagot (2) 100 ng/100 g dózisban CS23-at (sav-rezisztens rhbFGF CS23 muteint) és (3) 10 mg/100 g dózisban cimetidint kap, gyomorszondán keresztül, naponta két alkalommal, a 21. napon végzett boncolásig, amikor mérjük a fekély nagyságát és szövettani metszeteket is készítünk. Az eredményeket a 7. táblázatban ismertetjük.
7. táblázat
Kezelés Fekélyes patkányok aránya Fekélyes terület
kontroll 100% 10,6 ± 9,0 mm2
cimetidin 50% 6,7 ± 2,9 mm2
CS23 75% 2,8 ± 1,9 mm2
A 7. táblázat eredményeiből látható, hogy a találmány szerinti eljárással előállított sav-rezisztens FGFkompozíció használata fekélyek kezelésében jelentős javulást eredményez, a standard cimetidin terápiával összehasonlítva.
A találmány oltalmi körét természetesen nem kívánjuk a fenti példákra korlátozni. Szakemberek számára kézenfekvő változtatások ugyanúgy a találmány oltalmi körébe tartoznak.
9. példa
Ebben a példában az 1. és 7. példákban ismertetett módszert alkalmazzuk duodenális fekély redukálására normális patkányokban. Nőstény patkányoknak háromszor adunk orálisan ciszteamin-HCl-t 25 mg/100 g dózisban. Három nap múlva a hasfelmetszéses vizsgálat szerint áthatoló duodenális fekéllyel rendelkező állatokat véletlenszerűen kontroll és kezelt csoportokba osztjuk. Csoportonként 3-4 patkánynak (1) csak hordozóanyagot (2) 100 ng/100 g dózisban CS23-at (sav-rezisztens rhbFGF CS23 muteint), (3) 10 ng/100 g dózisban cimetidint és (4) 100 ng/100 g CS23-at + 10 mg/100 g cimetidint adunk, naponta két alkalommal gyomorszondán keresztül, a 21. napon végzett boncolásig, amikor is mérjük a fekély nagyságát és szövettani metszeteket is készítünk. Az eredményeket a 8. táblázatban ismertetjük.
8. táblázat
Kezelés Fckclyes patkányok aránya Fekélyes terület
kontroll 100% 10,2 ± 8,0 mm2
CS23 75% 2,7 ± 1,8 mm2
cimetidin 50% 7,9 ± 2,8 mm2
CS23 + cimetidin 50% 2,0 ± 1,3 mm2
10. példa
Az alábbi példában K. Takagi és munkatársai [Jpn. J. Pharmacol., 19, 418-426 (1969)] módszere szerint indukálunk gyomorfekélyt normális patkányokban.
A vizsgálatokban héthetes, legfeljebb 250 g-os hím Jel: Spargue-Dawley patkányokat használunk. A patkányokat éténél altatjuk, és a hason bemetszést teszünk, 20 pl 20%-os ecetsavat injektálunk a savóhártya alatti rétegbe az üreg és a szerv elülső falának érintkezésénél a gyomorban. A vízben vagy 1%-os nátrium-hidrogén-karbonát-oldatban oldott hatóanyagokat orálisan adjuk 1 ml/100 g testtömeg dózistérfogatban naponta kétszer (reggel 9-kor és délután 4-kor) 14 egymást követő napon keresztül, az operáció utáni 2. naptól kezdve. A fekélyes terület nagyságát (mm2) és a fekély súlyosságát (O-tól 3-ig terjedő skála szerint, 0: teljesen gyógyult, 1: sebhely vagy szinte teljesen gyógyult, 2: enyhe fekély, 3: mély fekély vagy perforáció) 1 mm-es négyzethálós beosztású nézőkével (10-szeres nagyítás) ellátott boncolómikroszkóp segítségével határozzuk meg. A fekélyindexet a területből és a fekély súlyosságából kapjuk.
A gyomor savóhártyájába injektált ecetsav kerek fekélyt okoz. A vízzel kezelt kontroll csoport fekélyindexe 8,5 ± 2,4 volt. A CS23 vízben oldva 100 pg/kg dózisban mérsékelten gyorsította a fekély gyógyulását, és az 1%-os NaHCO3 maga nem befolyásolta a fekély gyógyulását (lásd 10. táblázat). Azonban 100 pg/kg CS23 1%-os NaHCO3-ban oldva jelentősen gyorsította a fekély gyógyulását (10. táblázat).
HU 207 227 B
10. táblázat
CS23 és 1%-os NaHCO3 hatása patkányban ecetsavval indukált gyomorfekély gyógyulására
Kezelés Dózis (μ/kg, p.o.) Patkányok száma Fekélyindex Fekélyindex javulása (%)
H2O 11 8,5 + 2,4 -
CS23 (H2O) 100 11 6,4 ±2,2 25
l%NaHCO3 13 10,1 ±3,3 -19
CS23 (1% NaHCO3) 100 10 2,1 ±0,7* 75
az eredményeket átlagérték + s.e.-ként adjuk meg * p<0,05 H2O-val szemben
11. példa rhbFGF CS23 és spizofurán orális adagolására alkalmas gyógyászati készítményt állítunk elő az alábbiak szerint.
Az egyenként 1 mg rhbFGF CS23-at, 80 mg spizofuránt, 75 mg laktózt, 29,9 mg kukoricakeményítőt, 6,5 mg hidroxi-propil-cellulózt, 7,0 mg mikrokristályos cellulózt, 0,6 mg magnézium-sztearátot tartalmazó tabletta-magokat 7,5 mg hidroxi-propil-metil-cellulózból, 1,5 mg polietilénglikol 6000-ből és 1,0 mg titán-oxidból álló bevonattal látjuk el.
72. példa rhbFGF és prosztaglandin El orális adagolására alkalmas gyógyászati készítményt állítunk elő az alábbiak szerint.
mg rhbFGF CS23-at, 2,5 gg prosztaglandin Elet, 19 mg ciklodextrint és 380 mg laktózt 1-es számú zselatin kapszulába töltünk.

Claims (14)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Eljárás emlősök gasztrointesztinális traktusában lévő fekélyek kezelésére alkalmas gyógyászati készítmények előállítására, azzal jellemezve, hogy egy savrezisztens FGF-kompozíciót gyógyászatilag elfogadható hordozóanyaggal és/vagy egyéb segédanyaggal és kívánt esetben egy szekréciógátló szerrel, savközömbösítő szerrel vagy citoprotektív szerrel összekeverünk és a keveréket gyógyászati készítménnyé alakítjuk.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy sav-rezisztens FGF-kompozícióként (a) natív FGF-et 1:0,1 - 1:100 tömegarányban stabilizálószerrel kombinálva, vagy (b) sav-rezisztens FGF-et, vagy (c) sav-rezisztens FGF-et 1:0,1 - 1:100 tömegarányban stabilizálószerrel kombinálva alkalmazunk.
  3. 3. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy sav-rezisztens FGF-ként rhbFGF CS23 muteint alkalmazunk.
  4. 4. Az 1. igénypont szerinti eljárás regionális csípőbélgyulladás kezelésére alkalmas gyógyászati készítmények előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő FGF-kompozíciót a megfelelő segédanyagokkal keverjük össze.
  5. 5. Az 1. igénypont szerinti eljárás fekélyes kolitisz kezelésére alkalmas gyógyászati készítmények előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő FGF-kompozíciót a megfelelő segédanyagokkal keverjük össze.
  6. 6. Az 1. igénypont szerinti eljárás peptikus fekélyek kezelésére alkalmas gyógyászati készítmények előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő FGF-kompozíciót a megfelelő segédanyagokkal keverjük össze.
  7. 7. A 6. igénypont szerinti eljárás duodenális peptikus fekélyek kezelésére alkalmas gyógyászati készítmények előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő FGF-kompozíciót a megfelelő segédanyagokkal keverjük össze.
  8. 8. A 6. igénypont szerinti eljárás peptikus gyomorfekélyek kezelésére alkalmas gyógyászati készítmények előállítására, azzal jellemezve, hogy a megfelelő FGF-kompozíciót a megfelelő segédanyagokkal keverjük össze.
  9. 9. A 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy stabilizálószerként glükózamino-glukánt vagy glukán-szulfátot alkalmazunk.
  10. 10. A 9. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy glukán-szulfátként dextrán-szulfátot, ciklodextrán-szulfátot vagy p-l,3-glukán-szulfátot alkalmazunk.
  11. 11. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy szekréciógátló szert is keverünk a sav-rezisztens FGF-kompozícióhoz.
  12. 12. All. igénypont szerinti eljárás, azzaljellemezve, hogy szekréciógátló szerként cimetidint vagy ranitidint alkalmazunk.
  13. 13. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy savközömbösítő szert is keverünk a sav-rezisztens FGF-kompozícióhoz.
  14. 14. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy citoprotektív szert is keverünk a sav-rezisztens FGF-kompozícióhoz.
HU895785A 1988-08-19 1989-08-11 Process for producing pharmaceutical compositions containing acid-resistant fibroblast growth factor for treating gastrointestinal ulcers HU207227B (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US23496688A 1988-08-19 1988-08-19
US07/382,263 US5175147A (en) 1988-08-19 1989-07-20 Acid-resistant fgf composition and method of treating ulcerating diseases of the gastrointestinal tract

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HU895785D0 HU895785D0 (en) 1990-12-28
HUT55638A HUT55638A (en) 1991-06-28
HU207227B true HU207227B (en) 1993-03-29

Family

ID=26928432

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU895785A HU207227B (en) 1988-08-19 1989-08-11 Process for producing pharmaceutical compositions containing acid-resistant fibroblast growth factor for treating gastrointestinal ulcers

Country Status (16)

Country Link
US (2) US5175147A (hu)
EP (1) EP0360006B1 (hu)
JP (1) JP2501480B2 (hu)
KR (1) KR920700040A (hu)
CN (1) CN1040741A (hu)
AT (1) ATE91628T1 (hu)
CA (1) CA1330757C (hu)
DE (1) DE68907679T2 (hu)
DK (1) DK93890D0 (hu)
ES (1) ES2058423T3 (hu)
FI (2) FI901949A0 (hu)
HU (1) HU207227B (hu)
IE (1) IE63046B1 (hu)
IL (1) IL91322A (hu)
NO (1) NO901710D0 (hu)
WO (1) WO1990001941A1 (hu)

Families Citing this family (23)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5202311A (en) * 1988-08-19 1993-04-13 Children's Medical Center Corporation Stabilized fgf composition
EP0406738A3 (en) * 1989-07-03 1991-08-14 Takeda Chemical Industries, Ltd. Production of acidic fgf protein
JPH0343088A (ja) * 1989-09-29 1991-02-25 Takeda Chem Ind Ltd aFGF蛋白質の製造法
CA2020720A1 (en) * 1989-07-13 1991-01-14 Shigeko Yamazaki Method for the purification of therapeutically active recombinant acidic fibroblast growth factor
AUPN271295A0 (en) * 1995-05-02 1995-05-25 Gropep Pty Ltd Method of treatment
US6399569B1 (en) 1991-03-11 2002-06-04 Curis, Inc. Morphogen treatments for limiting proliferation of epithelial cells
US5972884A (en) * 1991-03-11 1999-10-26 Creative Biomolecules, Inc. Morphogen treatment of gastrointestinal ulcers
AU657960B2 (en) * 1991-04-12 1995-03-30 Brigham And Women's Hospital Method of treating gastrointestinal ulcers with platelet derived growth factor
NO921495L (no) * 1991-04-16 1992-10-19 Seikagaku Kogyo Co Ltd Oligosakkarid og fremgangsmaate for dets fremstilling
US6190864B1 (en) * 1991-05-08 2001-02-20 Chiron Corporation HCV genomic sequences for diagnostics and therapeutics
US5348941A (en) * 1992-04-01 1994-09-20 Merck & Co., Inc. Stabilizers for fibroblast growth factors
EP0646174A1 (en) * 1992-06-16 1995-04-05 The Whittier Institute For Diabetes And Endocrinology Recombinant production of saporin-containing proteins
US5464815A (en) * 1993-09-08 1995-11-07 Genentech, Inc. Inhibition of heparin-binding
US6551618B2 (en) 1994-03-15 2003-04-22 University Of Birmingham Compositions and methods for delivery of agents for neuronal regeneration and survival
FR2718023B1 (fr) * 1994-03-30 1996-08-14 Paris Val Marne Universite Médicament et composition pharmaceutique pour le traitement de lésions du tractus digestif.
US5783568A (en) * 1994-06-10 1998-07-21 Sugen, Inc. Methods for treating cancer and other cell proliferative diseases
US5531880A (en) * 1994-09-13 1996-07-02 Microelectronics And Computer Technology Corporation Method for producing thin, uniform powder phosphor for display screens
FR2724665B1 (fr) * 1994-09-16 1996-12-20 Rhone Poulenc Rorer Sa Procede de production de proteines recombinantes, plasmides et cellules modifiees
US5593696A (en) * 1994-11-21 1997-01-14 Mcneil-Ppc, Inc. Stabilized composition of famotidine and sucralfate for treatment of gastrointestinal disorders
US5538737A (en) * 1994-11-30 1996-07-23 Applied Analytical Industries, Inc. Oral compositions of H2 -antagonists
KR100761486B1 (ko) * 2000-08-15 2007-10-04 카디오배스큘러 바이오 떼러퓨틱스, 인크. 파아지를 이용한 생리 활성 단백질 및 펩티드의 대량생산법
AU2001286996A1 (en) * 2000-08-31 2002-03-13 Chiron Corporation Stabilized fgf formulations containing reducing agents
JP2021513563A (ja) * 2018-02-13 2021-05-27 ユニバーシティ オブ フロリダ リサーチ ファンデーション インコーポレーティッド 線維芽細胞成長因子類似体及びその使用

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4296100A (en) * 1980-06-30 1981-10-20 Franco Wayne P Method of treating the heart for myocardial infarction
DE3382562D1 (de) * 1982-09-24 1992-06-25 Us Health Wiederherstellung von gewebe bei tieren.
JPS6034997A (ja) * 1983-05-09 1985-02-22 ジヨージ、ジヨセフ、トダロ 生物学的活性ポリペプチド類
JPS6028999A (ja) * 1983-06-30 1985-02-14 Maruho Kk 細胞増殖促進作用を有するたんぱく質、その組成物と製造方法
US4745098A (en) * 1984-02-24 1988-05-17 The Regents Of The University Of California Compositions and method for improving wound healing
CA1207239A (en) * 1984-08-10 1986-07-08 Upendra K. Banik Gastrointestinal compositions
JPS6172947A (ja) * 1984-09-18 1986-04-15 Takasago Thermal Eng Co Ltd クリ−ンル−ムの形成法およびこの方法に使用する空気調和設備ユニツト
EP0593065B1 (en) * 1985-09-12 2002-08-21 Scios Inc. Recombinant fibroblast growth factors
IL81839A0 (en) * 1986-03-14 1987-10-20 Takeda Chemical Industries Ltd Polypeptide,dna and its use
CA1294546C (en) * 1986-04-23 1992-01-21 John S. Sundsmo Wound healing composition containing collagen
NZ220917A (en) * 1986-07-11 1991-05-28 Merck & Co Inc Human and bovine acidic fibroblast growth factor vectors, hosts and compositions
AU1185488A (en) * 1987-01-16 1988-08-10 Amgen, Inc. Production of fibroblast growth factor
JP2879148B2 (ja) * 1987-07-07 1999-04-05 サイオス インコーポレイテッド 組換え繊維芽細胞成長因子
KR890701607A (ko) * 1987-11-24 1989-12-21 원본미기재 섬유아세포 성장 인자의 유사체
AU614137B2 (en) * 1988-06-06 1991-08-22 Takeda Chemical Industries Ltd. Stabilized fgf composition and production thereof
JPH0240399A (ja) * 1988-07-27 1990-02-09 Takeda Chem Ind Ltd 線維芽細胞増殖因子ムテインの複合体あるいは組成物

Also Published As

Publication number Publication date
CN1040741A (zh) 1990-03-28
IE892664L (en) 1990-02-19
NO901710L (no) 1990-04-18
IL91322A0 (en) 1990-03-19
EP0360006B1 (en) 1993-07-21
DE68907679T2 (de) 1994-01-27
AU630111B2 (en) 1992-10-22
ATE91628T1 (de) 1993-08-15
NO901710D0 (no) 1990-04-18
AU4218989A (en) 1990-03-23
IE63046B1 (en) 1995-03-22
FI901949A0 (fi) 1990-04-18
US5175147A (en) 1992-12-29
DK93890A (da) 1990-04-17
WO1990001941A1 (en) 1990-03-08
DK93890D0 (da) 1990-04-17
EP0360006A3 (en) 1990-04-04
CA1330757C (en) 1994-07-19
HU895785D0 (en) 1990-12-28
IL91322A (en) 1994-12-29
KR920700040A (ko) 1992-02-19
FI943028A0 (fi) 1994-06-22
EP0360006A2 (en) 1990-03-28
FI943028A (fi) 1994-06-22
DE68907679D1 (de) 1993-08-26
JPH03505736A (ja) 1991-12-12
US5401721A (en) 1995-03-28
HUT55638A (en) 1991-06-28
ES2058423T3 (es) 1994-11-01
JP2501480B2 (ja) 1996-05-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU207227B (en) Process for producing pharmaceutical compositions containing acid-resistant fibroblast growth factor for treating gastrointestinal ulcers
EP0706398B1 (en) Pharmaceutical composition containing heparin, heparin fragments or their derivatives in combination with glycerol esters
HU208635B (en) Process for production of stabilized medical preparatives containing fibroblast growing factor
US5234908A (en) Method of treating gastrointestinal ulcers with platelet derived growth factor
US20070254828A1 (en) Pharmaceutical composition with healing activity comprising at least one soluble dextran derivative and at least one platelet-derived growth factor
EA013369B1 (ru) Модифицированная композиция фактора роста кератиноцитов и способ ее применения
US5482929A (en) Composition of stabilized fibroblast growth factor
BG64458B1 (bg) Използване на цинков хиалуронат срещу пептична язва
JP3860415B2 (ja) 骨代謝異常症治療剤
Fukunaga et al. Aluminium β‐cyclodextrin sulphate as a stabilizer and sustained‐release carrier for basic fibroblast growth factor
JPH06506939A (ja) 血小板由来の成長因子に依る消化管潰瘍の治療方法
CZ20022231A3 (cs) Komplex skládající se z osteoklastogenezi inhibujícího faktoru a polysacharidu
AU630111C (en) Acid-resistant FGF composition and method of treating ulcerating diseases of the gastrointestinal tract
HU200277B (en) Process for producing pharmaceutical composition comprising human xiii factor as active ingredient
RU2020931C1 (ru) Способ получения лекарственного средства для лечения язвенной болезни желудочно-кишечного тракта млекопитающих
JPH05331199A (ja) 凍結乾燥した酸性線維芽細胞成長因子
CA2616125A1 (en) Truncated oxidized thymosin .beta.4 and derivatives thereof
JP2688733B2 (ja) 消化管粘膜障害の予防及び治療剤
Garner Enhancing mucosal defence and repair mechanisms
JP2020143036A (ja) リポソーム、およびそれを含有する抗マラリア薬
WO1994004175A1 (en) Hgf production promoter
JPH0640940A (ja) 線維芽細胞成長因子安定化組成物
JPH10251153A (ja) アスピリンおよび抗−Xaオリゴ糖の組合せを含有する組成物ならびにアスピリンと任意的に組み合わせた抗−Xaオリゴ糖の使用
MXPA97001943A (en) Compositions containing an acetilsalicilic acid association and an anti-xa oligosacarid and use of an anti-xa oligosacaride optionally in combination with acetilsalicil acid
JPH10251162A (ja) 上部消化管疾患の予防および/または治療剤

Legal Events

Date Code Title Description
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee