FR2463931A1 - Methode d'essais immunologiques enzymatique - Google Patents
Methode d'essais immunologiques enzymatique Download PDFInfo
- Publication number
- FR2463931A1 FR2463931A1 FR8017945A FR8017945A FR2463931A1 FR 2463931 A1 FR2463931 A1 FR 2463931A1 FR 8017945 A FR8017945 A FR 8017945A FR 8017945 A FR8017945 A FR 8017945A FR 2463931 A1 FR2463931 A1 FR 2463931A1
- Authority
- FR
- France
- Prior art keywords
- reaction
- polymer
- immunological
- buffer
- enzymatic
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54393—Improving reaction conditions or stability, e.g. by coating or irradiation of surface, by reduction of non-specific binding, by promotion of specific binding
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
METHODE DE REALISATION D'UN TITRAGE IMMUNOLOGIQUE A L'AIDE D'UNE ENZYME, DANS LEQUEL L'UN DES COMPOSANTS QUI PARTICIPENT A LA REACTION EST FIXE A UNE PHASE SOLIDE. ON UTILISE DANS CE BUT, UN TAMPON CONTENANT UN POLYMERE QUI ACCELERE LA REACTION IMMUNOLOGIQUE ANTIGENE-ANTICORPS TEL QUE LE POLYETHYLENEGLYCOL OU LE DEXTRANE. CES METHODES DE TITRAGE IMMUNOLOGIQUE A L'AIDE D'UNE ENZYME PEUVENT ETRE UTILISEES FACILEMENT, DANS DES DOMAINES TRES VARIES.
Description
La présente invention est relative à une méthode de réalisation d'essais
immunologiques à l'aide d'enzymes,
et en particulier à un perfectionnement à la méthode d'es-
sais immunologiques par voie enzymatique en phase solide, connue sous le nom d"'ELISA".
Dans cette méthode, l'un des composants qui parti-
cipent à la réaction est fixé sur une phase solide, et le perfectionnement qui fait l'objet de la présente invention est réalisé en utilisant un tampon contenant un polymère qui
accélère la réaction immunologique antigène-anticorps.
L'utilisation d'un polymère dans les techniques
d'essais immunologiques, telles que les techniques néphélo-
métriques et les techniques d'immuno-précipitation, est déjà connue, mais elle n'a pas été utilisée jusqu'à présent dans les essais immunologiques par voie enzymatique en phase solide. Les essais immunologiques par voie enzymatique en phase solide sont actuellement largement utilisés dans les laboratoires des hôpitaux et des cliniques pour réaliser le dosage quantitatif de différentes sortes de protéines du sérum, d'hormones, d'anticorps viraux et bactériens dans la classe des IgG et IgM, ainsi que de médicaments; dans les
instituts de recherche vétérinaire pour effectuer le diagnos-
tic d'infections virales ou bactériennes chez les animaux
domestiques et le bétail; et dans le domaine de l'agricul-
ture, en particulier pour faire le diagnostic de maladies virales chez les plantes. La sensibilité et la spécificité des techniques radioimmunologiques et immunologiques par voie enzymatique sont du même ordre de grandeur, mais les réactifs utilisés dans les essais immunologiques par voie enzymatique, contrairement à ceux qui sont employés dans les radioimmuno-essais peuvent être conservés pendant de longues durées et ne sont pas nocifs pour la santé (pas de
risques d'irradiation). Comme, de plus, des techniques im-
munologiques impliquant des enzymes ne nécessitent pas un équipement coûteux ni un personnel spécialement entraîné ou
des mesures spéciales prescrites par la loi pour l'élimina-
tion des déchets, elles offrent de très nombreuses possibi-
lités d'application, en plus des domaines d'utilisation in-
diqués plus haut, dans la jurisprudence médicale, l'indus-
trie alimentaire, la recherche des allergies et la sérologie auto-immune. L'utilisation d'essais immunologiques à l'aide d'enzymes est déjà décrite, par exemple dans les brevets suivants d'ORGANON: Brevets américains 3 879 262, 3 791 932, 3 850 752 et 3 839 153. Ces essais immunologiques
sont caractérisés par l'utilisation d'antigènes ou d'anti-
corps fixés à une phase solide et le dosage de leurs anti-
corps ou antigènes, à l'aide d'anti-immunoglobuline marquée par une enzyme. Toutefois, dans ces méthodes, la lenteur des réactions antigèneanticorps constitue un inconvénient, en
particulier dans les cas o un diagnostic rapide est néces-
saire pour permettre de prendre des mesures thérapeutiques
rapides. Jusqu'à présent, la vitesse de réaction a été ac-
célérée en réalisant la réaction à 370C, dans une enceinte
chauffante.
Or, la Demanderesse a constaté que la sensibilité de ces essais immunologiques par voie enzymatique peut être
améliorée, et la vitesse de réaction accélérée, par l'utili-
sation d'un tampon contenant un polymère, à titre de réac-
tif. Un avantage supplémentaire de l'objet de la présente invention est représenté par le fait que les réactions antigène-anticorps peuvent être réalisées rapidement à la
température ambiante sans qu'il y ait une réduction quelcon-
que de la sensibilité par rapport à ce que permettent les
méthodes utilisées jusqu'à maintenant. La présente inven-
tion étend les possibilités d'application des essais im-
munologiques par voie enzymatique et les rend possibles même
dans des conditions sommaires.
Par exemple, une réaction effectuée entre une anti-
immunoglobuline marquée par une enzyme et une immunoglobuli-
ne G dans un tampon contenant un polymère, se déroule au moins cinq fois plus vite que la même réaction réalisée dans
les mêmes conditions dans un tampon dépourvu de polymère.
Les polymères exercent un effet favorable sur l'interaction entre les anticorps et les antigènes solubles, apparemment par exclusion stérique des complexes immuns du domaine du polymère. c
Conformément à la présente invention, il est es-
sentiel d'utiliser un tampon contenant un polymère qui
accélère la réaction immunologique antigène-anticorps.
Comme polymère, on peut utiliser par exemple le polyéthylène-
glycol, qui s'est révélé extrêmement avantageux, mais d'au-
tres polymères comme le dextrane, la polyvinylpyrrolidone (PVP), l'alcool polyvinylique (PVA),et certains autres polymères capables d'influencer des réactions immunologiques
peuvent également être utilisés.
Conformément à la présente invention, on utilise, en fonction de la dimension et de la nature de la protéine à déterminer - une expérience pratique dont on ne connaît pas la raison - 0,01 à 20 % (poids/volume) de polymère dans un tampon phosphate 0,01 M, à pH 7,2, contenant 0,9 % (p/v)
de NaCl et 0,1 % (p/v) de NaN3.
Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions qui ressortiront de la
description qui va suivre.
L'invention sera mieux comprise à l'aide du complé-
ment de description qui va suivre, qui se réfère à des
exemples.
Il doit être bien entendu toutefois, que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune
manière une limitation.
EXEMPLE 1
Dosage d'anticorps viraux à l'aide d'un tampon contenant du polyéthylèneglycol (PEG 6000) 1. Le virus ou son composant est fixé sur du polystyrène (par exemple sous forme de tubes, de cuvettes ou de plaques de microtitrage) en le diluant avec du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, contenant 0,9 % (p/v) de NaCl, de telle sorte que le virus ou son composant, présent à raison d'un
volume de 200 pl, est absorbé passivement par le poly-
styrène. Apres une période de 16 à 20 heures, l'antigène ou son composant en excès est éliminé par rinçage des tubes
à deux reprises avec de l'eau distillée.
2. Les spécimens de sérum sont dilués dans un rapport de 1:200 dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, contenant 4 % (p/v) de polyéthylèneglycol (PEG 6000), 0,9 % (p/v) de
NaCl, 0,1-% (v/v) de Tween 20 et 0,1 % (p/v) de NaN3.
3. On fait réagir les spécimens de sérum dilués
(200 pl) avec l'antigène pendant 30 minutes à la températu-
re ambiante, après quoi les tubes sont lavés par rinçage
à deux reprises avec de l'eau distillée.
4. Le produit de conjugaison (anti-IgG humaine marquée
par de la phosphatase alcaline) est dilué suivant un rap-
port de 1:200 dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, con-
tenant 4 % (p/v) de polyéthylèneglycol (PEG 6000), 0,9 % (p/v) de NaCl, 0, 1 % (v/v) de Tween 20 et 0,1 % (p/v) de NaN3. 3' 5. On fait réagir le produit de conjugaison (200 pl)
pendant une heure à la température ambiante avec les anti-
corps spécifiques de l'antigène dans l'échantillon, après
quoi les tubes sont rincés à l'eau distillée.
6. Du sel disodique de phosphate alcalin est dissous
dans du tampon diéthanolamine MgCl2 (200 mg/100 ml de tam-
pon) et 200 pl de cette solution sont ajoutés dans les tubes
et incubés 30 minutes à la température ambiante.
7. La réaction de l'enzyme est stoppée à l'aide de NaOH 1M (200 pl) et l'intensité de la couleur formée est mesurée par spectrophotométrie ou évaluée à l'oeil (dans une série d'échantillons, on inclut toujours un échantillon de
référence positif et négatif connu, traité de la façon dé-
crite plus haut).
EXEMPLE 2
Dosage d'anticorps viraux à l'aide d'un tampon contenant du dextrane (Dx 150)
1. Le virus ou son composant est fixé sur du poly-
styrène comme décrit dans l'Exemple 1, paragraphe 1.
2. Les spécimens de sérum sont dilués suivant un rap-
port 1:200 dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, conte-
nant 9 % (p/v) de dextrane (Dx 150), 0,9 % (p/v) de NaCl,
0,1 % (v/v) de Tween 20 et 0,1 % (p/v) de NaN3.
3. On fait réagir les spécimens de sérum dilués comme
décrit dans l'Exemple 1, paragraphe 3.
4. Le produit de conjugaison (anti-IgH humaine marquée par une phosphatase alcaline) est dilué suivant un rapport de 1:200 dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, contenant 9 % (p/v) de dextrane (Dx 150), 0,9 % (p/v) de NaCl, 0,1 %
(v/v) de Tween 20 et 0,1 % (p/v) de NaN3.
5. La détermination est poursuivie de la façon décrite
dans l'Exemple 1, paragraphes 5 à 7.
EXEMPLE 3
Détermination de la protéine C-réactive (CRP) à l'aide d'un tampon contenant du polyéthylèneglycol (PEG 6000)
1. De l'anti-CRP humaine de lapin est fixée à la surfa-
ce d'un tube de plastique par dilution suivant un rapport de 1:8000 (200 pl) dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, contenant 0,9 % (p/v) de NaCl. La dilution d'antisérum est incubée à la température ambiante, à laquelle l'anticorps
est absorbé passivement par le polystyrène. La durée d'incu-
bation est de 16 à 20 heures à la température ambiante.
L'anticorps en excès est éliminé par rinçage des tubes à
deux reprises avec de l'eau distillée.
2. Les échantillons de sérum sont dilués suivant un rapport de 1:1000 dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, contenant 3 % (p/v) de polyêthylèneglycol (PEG 6000), 0,9 % (p/v) de NaCl, 0,1 % (v/v) de Tween 20 et 0,1 % (p/v) de
NaN3.
3. Les échantillons de sérum dilués (200 pil) sont incu-
bés avec l'anticorps pendant 30 minutes à la température ambiante, après quoi les tubes sont lavés par un double
rinçage à l'eau distillée.
4. De l'anti-CRP humaine de porc est diluée suivant un rapport de 1:1500 f200 pl) dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, contenant 4 % (p/v) de polyéthylèneglycol (PEG 6000), 0,9 % (p/v) de NaCl, 0,1 % (v/v) de Tween 20 et 0,1 % (p/v) de NaN3. Après une heure d'incubation, l'interaction entre la CRP et l'anti-CRP a lieu à la température ambiante. Les
tubes sont lavés deux fois à l'eau distillée, comme ci-
dessus. 5. Le produit de conjugaison (anti-IgG porcine de mouton marquée par une phosphatase alcaline) est dilué suivant un rapport de 1:200 dans du tampon phosphate 0,01 M, pH 7,2, contenant 4 % (p/v) de polyéthylèneglycol (PEG 6000), 0,9 % (p/v) de NaCl, 0,1 % (v/v) de Tween 20 et 0,1 %
(p/v) de NaN3.
6. On fait réagir le produit de conjugaison (200 pl) avec l'anti-CRP humaine de porc pendant une heure à la température ambiante, après quoi les tubes sont lavés comme ci-dessus. 7. Du sel disodique d'un phosphate alcalin est dissous dans du tampon de diéthanolamine MgCl2 (200 mg/100 ml de tampon) et 200 pil de cette solution sont ajoutés dans les
tubes et incubés pendant 30 minutes à la température am-
biante. 8. La réaction de l'enzyme est stoppée avec du NaOH 1 M (200 p1) et l'intensité de la couleur est mesurée par
spectrophotométrie ou évaluée à l'oeil.
Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'in-
vention ne se limite nullement à ceux de ses modes de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de
façon plus explicite; elle en embrasse, au contraire, tou-
tes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du techni-
cien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée,
de la présente invention.
Claims (2)
1 - Méthode de réalisation de titrages immunolo-
giques par voie enzymatique dans lesquels l'un des compo-
sants qui participent à la réaction est fixé à une phase solide, caractérisée en ce qu'on utilise un tampon conte- nant un polymère qui accélère la réaction immunologique antigène-anticorps.
2 - Méthode selon la Revendication 1, caractérisée
en ce que le polymère est du polyéthylèneglycol ou du
dextrane.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FI792576A FI792576A (fi) | 1979-08-20 | 1979-08-20 | Foerbaettrad metod att utfoera enzymimmunologiska bestaemningar |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
FR2463931A1 true FR2463931A1 (fr) | 1981-02-27 |
Family
ID=8512837
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
FR8017945A Withdrawn FR2463931A1 (fr) | 1979-08-20 | 1980-08-14 | Methode d'essais immunologiques enzymatique |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE3030806A1 (fr) |
FI (1) | FI792576A (fr) |
FR (1) | FR2463931A1 (fr) |
GB (1) | GB2062224A (fr) |
SE (1) | SE8005123L (fr) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0503454A1 (fr) * | 1991-03-15 | 1992-09-16 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Immunoessai à agglutination |
EP0535239A1 (fr) * | 1991-03-18 | 1993-04-07 | Shiseido Company Limited | Procede et materiel de dosage de collagene |
Families Citing this family (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3026665A1 (de) * | 1980-07-14 | 1982-02-11 | Hoechst Ag, 6000 Frankfurt | Verfahren zum binden und trennen fuer den kompetitiven radioimmunoassay und reagenz hierzu |
JPS5960260A (ja) * | 1982-09-29 | 1984-04-06 | Toyobo Co Ltd | 酵素免疫測定法 |
JPH0672881B2 (ja) * | 1982-10-13 | 1994-09-14 | バイオウィッテッカー・インコーポレーテッド | アレルギー反応の蛍光分析法 |
US4931385A (en) * | 1985-06-24 | 1990-06-05 | Hygeia Sciences, Incorporated | Enzyme immunoassays and immunologic reagents |
US4868108A (en) * | 1985-12-12 | 1989-09-19 | Hygeia Sciences, Incorporated | Multiple-antibody detection of antigen |
JPS62159047A (ja) * | 1985-12-31 | 1987-07-15 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | 血漿蛋白定量用試薬 |
US5102788A (en) * | 1988-11-21 | 1992-04-07 | Hygeia Sciences, Inc. | Immunoassay including lyophilized reactant mixture |
DE4034509A1 (de) * | 1990-10-30 | 1992-05-07 | Boehringer Mannheim Gmbh | Immunologisches praezipitationsverfahren zur bestimmung eines bindefaehigen analyten sowie reagenz zur durchfuehrung dieses verfahrens |
GB0312403D0 (en) * | 2003-05-29 | 2003-07-02 | Axis Shield Asa | Assay |
ATE476658T1 (de) | 2004-02-26 | 2010-08-15 | Candor Bioscience Gmbh | Wässrige lösung zur verwendung als medium für die spezifischen bindungsreaktion eines bindespaares |
JP2009530639A (ja) | 2006-03-20 | 2009-08-27 | インバーネス・メデイカル・スウイツツアーランド・ゲゼルシヤフト・ミツト・ベシユレンクテル・ハフツング | 電気化学的検出のための水溶性コンジュゲート |
US20140162294A1 (en) * | 2012-12-06 | 2014-06-12 | General Atomics | Methods and compositions for assaying vitamin d |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2299645A1 (fr) * | 1975-01-29 | 1976-08-27 | Baxter Laboratories Inc | Reactif immunologique et methodes d'utilisation de celui-ci |
FR2403386A1 (fr) * | 1977-09-19 | 1979-04-13 | Hoffmann La Roche | Procede de preparation d'un reactif immunologique comprenant un polymere de latex |
FR2435040A1 (fr) * | 1978-08-28 | 1980-03-28 | Seikagaku Kogyo Co Ltd | Composition pour determiner l'immunoglobuline g humaine, procede pour sa preparation et son emploi |
-
1979
- 1979-08-20 FI FI792576A patent/FI792576A/fi not_active Application Discontinuation
-
1980
- 1980-07-11 SE SE8005123A patent/SE8005123L/xx not_active Application Discontinuation
- 1980-08-14 DE DE19803030806 patent/DE3030806A1/de not_active Withdrawn
- 1980-08-14 FR FR8017945A patent/FR2463931A1/fr not_active Withdrawn
- 1980-08-19 GB GB8026994A patent/GB2062224A/en not_active Withdrawn
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2299645A1 (fr) * | 1975-01-29 | 1976-08-27 | Baxter Laboratories Inc | Reactif immunologique et methodes d'utilisation de celui-ci |
FR2403386A1 (fr) * | 1977-09-19 | 1979-04-13 | Hoffmann La Roche | Procede de preparation d'un reactif immunologique comprenant un polymere de latex |
FR2435040A1 (fr) * | 1978-08-28 | 1980-03-28 | Seikagaku Kogyo Co Ltd | Composition pour determiner l'immunoglobuline g humaine, procede pour sa preparation et son emploi |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0503454A1 (fr) * | 1991-03-15 | 1992-09-16 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Immunoessai à agglutination |
EP0535239A1 (fr) * | 1991-03-18 | 1993-04-07 | Shiseido Company Limited | Procede et materiel de dosage de collagene |
EP0535239A4 (en) * | 1991-03-18 | 1993-11-18 | Shiseido Company Limited | Collagen assaying method and kit |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB2062224A (en) | 1981-05-20 |
FI792576A (fi) | 1981-02-21 |
SE8005123L (sv) | 1981-02-21 |
DE3030806A1 (de) | 1981-03-12 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
FR2463931A1 (fr) | Methode d'essais immunologiques enzymatique | |
JPS6367661B2 (fr) | ||
EP0189389B1 (fr) | Procédé de dosage immunologique d'anticorps de diverses classes dans un échantillon liquide | |
FR2521303A1 (fr) | Procede de determination immunologique d'anticorps de type immunoglobuline de classe specifique | |
EP0311492B1 (fr) | Trousse et méthode de dosage immunométrique applicables à des cellules entières | |
JPH0748998B2 (ja) | 高ph抽出組成物ならびにクラミジア抗原の抽出および測定方法 | |
JPH04503109A (ja) | アビジン―ビオチン助力のイムノアッセイ | |
EP0804736B1 (fr) | Procede de dosage ultrasensible de la troponine i cardiaque | |
JPH02156157A (ja) | 正荷電イオン性バインディング支持体を使用するクラミジア抗原または淋菌抗原の測定 | |
Holland et al. | Evaluation of diagnostic tests for Trypanosoma evansi in experimentally infected pigs and subsequent use in field surveys in north Vietnam and Thailand | |
EP0055751A1 (fr) | Procede de detection et de dosage d'une substance biologique par erythroadsorption. | |
EP0217845B1 (fr) | Procede de determination immunologique d'une substance biologique dans un echantillon | |
JPH0326965A (ja) | 表面水酸基を有する膜を用いるクラミジア抗原の測定のための診断用試験キット及び方法 | |
FR2640143A1 (fr) | Anticorps polymerises, diriges contre des immunoglobulines - leur utilisation dans des tests de diagnostic | |
EP0132170B1 (fr) | Procédé de détection d'un oligomère dans un milieu liquide contenant des monomères correspondants, dispositif pour la mise en oeuvre de ce procédé, et application notamment à la recherche d'allergènes | |
JP4578401B2 (ja) | 固定化抗体の製造方法 | |
EP0389381B1 (fr) | Trousse et méthode de dosage enzymatique applicables à des cellules entières | |
EP1450160A1 (fr) | Capteur à résonance plasmon de surface pour endotoxine | |
JPH02129550A (ja) | 固相指示薬の赤血球およびその調製法 | |
EP1700128B1 (fr) | Methode de diagnostic serologique et determination de statut vaccinal comprenant differents controles | |
JPS60500548A (ja) | 発色性支持体免疫測定法 | |
US20160370356A1 (en) | Paper-based immunoassay with polymerization-based signal amplification | |
JPH09127114A (ja) | 免疫学的測定用安定化IgM試薬 | |
FR2624613A1 (fr) | Support microspherique de detection immuno-enzymatique, fluorescente, cheminumilescente ou radio-active de substances microdosees dans les milieux biologiques | |
JP2008026161A (ja) | 固定化抗体の製造方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
ST | Notification of lapse |