FI120977B - Suuren solutiheyden bakteerifermentaatioviljelmä - Google Patents

Suuren solutiheyden bakteerifermentaatioviljelmä Download PDF

Info

Publication number
FI120977B
FI120977B FI20095510A FI20095510A FI120977B FI 120977 B FI120977 B FI 120977B FI 20095510 A FI20095510 A FI 20095510A FI 20095510 A FI20095510 A FI 20095510A FI 120977 B FI120977 B FI 120977B
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
culture
medium
cell density
phosphate
high cell
Prior art date
Application number
FI20095510A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
FI20095510A (fi
Inventor
Craig Erik Curless
Jeffrey Burke Baclaski
Original Assignee
Amgen Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=22886063&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=FI120977(B) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Amgen Inc filed Critical Amgen Inc
Publication of FI20095510A publication Critical patent/FI20095510A/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI120977B publication Critical patent/FI120977B/fi

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/50Fibroblast growth factor [FGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/38Chemical stimulation of growth or activity by addition of chemical compounds which are not essential growth factors; Stimulation of growth by removal of a chemical compound
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Glass Compositions (AREA)
  • Treatment Of Sludge (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Description

Suuren solutiheyden bakteerifermentaatioviljelmä Tämä hakemus on jakamalla erotettu hakemuksesta FI 964208.
5 Keksinnön tausta Tämä keksintö liittyy sellaisiin bakteerifermen-tointiprosesseihin rekombinanttiproteiinin tuottamiseksi, joissa tiettyjä syöttöalustan ravinteita monitoroidaan ja säädetään niin että saadaan säädeltyä metallifosfaatin sa-10 ostumista alustassa. Erityisesti keksintö liittyy fermen- tointiprosessiin, jossa solutiheys on suuri ja joka sisältää menetelmän, jossa alustassa käytetään tiettyjä polyfos-faatteja ja/tai metafosfaatteja ravinteiden saostumisen eliminoimiseksi ja solutiheyden kasvattamiseksi. Erityises-15 ti keksintö koskee patenttivaatimuksen 1 mukaista suuren solutiheyden bakteeritermentointivilj elmää.
Edistysaskeleet molekyylibiologiassa ja geeniteknologisten menetelmien hyödyntäminen on tehnyt mahdolliseksi vieraiden proteiinien merkittävien määrien tuotannon tie-20 tyissä isäntäsolujärjestelmissä. Rekombinanttiproteiineja tuotetaan isäntäsolujärjestelmissä transfektoimalla isän-täsolut haluttua proteiinia koodittavalla DNA:11a, ja kasvattamalla sitten transfektoituja isäntäsoluja olosuhteissa, jotka mahdollistavat uuden rekombinanttiproteiinin eks-25 pression. Tiettyjä bakteeri-isäntäsolujärjestelmiä voidaan käyttää tuottamaan suuria määriä rekombinanttiproteiineja, jotka ovat normaalisti saatavilla rajallisina määrinä luonnollisista lähteistä.
Prokaryootti Escherichia coli on laajalti tutkittu 30 bakteeri. E. coli. valitaan yleisesti käytettäväksi korkean ekspressiotason isäntäsolujärjestelmissä, osaksi koska E. coli -soluilla on taipumus soveltua paremmin rekombinanttiproteiinin äärimmäisen suurten määrien tuotantoon. Isän-täsolujärjestelmät, jotka käyttävät eukaryoottisia isän-35 täsoluja ja hiivaisäntäsoluja, eivät yleensä onnistu tuottamaan rekombinanttiproteiinia sellaisina valtavina määri- 2 nä, joita tuotetaan korkean ekspressiotason isäntäsolujär-jestelmissä kuten E. coli. Lisäksi sellaisten fermentointi-prosessien kehittäminen, joissa solutiheys on suuri, on johtanut rekombinanttiproteiinien kasvaneeseen volymetri-5 seen tuottavuuteen E. colissa. Yee ja Blanc, Biotechnology and Bioengineering, 41:221-230 (1993).
Fermentointiprosessit, joita käytetään tuottamaan rekombinanttiproteiineja isäntäsolujärjestelmissä, kuten E. coli.-järjestelmässä, suoritetaan äärellisissä fysikaali-10 sissa säiliöissä (se on: fermentoreissa, reaktoreissa). Sekoitettavat tankit edustavat suosituinta fermentoreiden geometriaa, vaikka kasvava määrä muulla tavalla fysikaalisesti muotoiltuja säiliöitä onkin kehitteillä. Fermentorin käyttötavat voivat kuulua johonkin seuraavista luokista: 1) 15 epäjatkuva käyttö (panosprosessi), 2) jatkuva käyttö tai 3) monet eri epäjatkuvan käytön tyypit, kuten fed-batch-prosessi.
Käyttötavasta ja käytettävästä isäntäsolujärjestel-mästä riippuen täytyy keksiä määrätty tasapainotettu panos-20 ja/tai syöttöalusta, joka mahdollistaa solujen kasvun ja rekombinanttiproteiinin ekspression. Määrättyä alustaa nimitetään "minimialustaksi", jos se sisältää pelkästään kasvulle välttämättömät ravinteet. E. coli -järjestelmää varten minimialustojen täytyy sisältää hiilen, typen, fosfo-25 rin, magnesiumin lähde sekä pieniä määriä rautaa ja kalsiumia. Gunsalus ja Stanter, The Bacteria, volyymi 1, kappale 1, Academic Press Inc., N.Y. (1960). Useimmat mini-mialustat käyttävät glukoosia hiilenlähteenä, ammoniakkia typenlähteenä ja ortofosfaattia (esim. P04) fosforinlähtee-30 nä. Ideaalinen alusta solujen kasvua varten sisältäisi tarkan määrän kutakin sellaista ravinnetta, joka kulutetaan solujen kasvun aikana, niin että mitkään ravinteet eivät kasaannu inhiboiviksi tasoiksi, eivätkä solut nälkiinny minkään ravinteen suhteen. Thompson ym., Biotechnology and 35 Bioengineering, 27:818 - 824 (1985). Yksi teoreettisesti tasapainotettu minimialusta E. coliIle on suunniteltu ai- 3 kaisemmin käytettäväksi ravistettavissa pulloissa, joissa solutiheys on pieni (solutiheydet korkeintaan 1,5 g solun kuivapainoa/litra). Neidhardt ym., Journal of Bacteriology, 119:736-747 (1974) .
5 Alustojen kemiallisen koostumuksen lisäksi täytyy huolella harkita useiden muiden ympäristöparametrien vaikutusta, kuten pH, aika, viljelylämpötila ja liuenneen hapen osapaine. Esimerkiksi E. colin kasvulle optimaalinen pH on 7,0. Fermentointiprosessin aikana alustojen pH voi muuttua 10 ammoniakin kulutuksen vuoksi, tai sen vuoksi että mikro-organismi syntetisoi tiettyjä aineenvaihduntatuotteita, esim. etikkahappoa ja maitohappoa. Koska muuttunut pH voi olla epäsuotuisa optimaalista solujen kasvua ajatellen, on kriittisen tärkeää säilyttää alusta tietyssä pH:ssa ja tämä 15 voidaan saada aikaan lisäämällä happoa ja emästä. pH:ta ja muita prosessin parametreja voidaan monitoroida manuaalisesti tai automaattisilla laitteilla.
Fermentoinneissa, joissa solutiheys on suuri (se on: niissä joissa saavutetaan solutiheyksiä > 20 g solun 20 kuivapainoa/litra) , täytyy käyttää konsentroitua alustaa.
Operaattorit jotka suorittavat fermentointeja, joissa solu-tiheys on suuri, ovat havainneet että kun käytetään konsentroituja alustoja, muodostuu sakkoja kun fosfaatin sisältävä liuos sekoitetaan liuokseen joka sisältää muita ra-25 vinnekomponentteja. Sakkoihin, jotka muodostuvat alustoi hin, kuuluu ortofosfaattien saostuminen, ja näihin kuuluvat NH4MgP04, (Mg)3(P04)2 ja metallit osfaatit joilla on kaava (Me)n(P04)m (jossa Me = Fe, Ca, Zn, Cu, Co) . Näillä yhdisteillä on hyvin matalia liukoisuuksia vedessä. Dean, John 30 A., Lange's Handbook of Chemistry, 12. laitos, McGraw-Hill,
New York, sivut 7 - 12 (1979) . Saostumisen määrä voi vaihdella riippuen pH:sta, glukoosin konsentraatiosta ja alustojen komponenttien konsentraatiosta.
Sakan muodostuminen voi johtaa moniin ongelmiin 35 syöttöalustassa ja fermentorissa. Sakat syöttöalustassa voivat esimerkiksi johtaa ei-homogeeniseen syöttöön (mikä 4 johtuu sakan asettumisesta syöttöastioihin tai syöttölin-joihin) ja solujen näIkiintyrniseen niiden kriittisten ravinteiden suhteen, jotka eivät ole enää liukoisia. Sakat voivat myös naarmuttaa syöttöpumppuja ja putkia ja mahdol-5 lisesti tukkia syöttölinjat täysin.
Fermentorissa tapahtuu saostumista, jos alusta ei ole täysin tasapainossa solujen kasvua ajatellen. Saostuminen fermentorissa voi saada aikaan ilmastuslaitteen tukkeutumisen fermentorissa, johtaa ei-homogeeniseen sekoittumi-10 seen (se on: sakka asettuu alemmille tasoille fermentorissa) ja vähentää liukoisten ravinteiden saatavuutta soluille. Solujen saatavilla olevien ravinteiden konsentraatio tulee riippuvaiseksi sellaisen ravinnekadon nopeudesta, joka johtuu sakan muodostumisesta, verrattuna solujen suorit-15 tämän ravinteiden sisäänoton nopeuteen. Nämä vaikutukset voidaan sovittaa säätämällä pH:ta hapon ja emäksen automaattisen lisäyksen avulla. Kaikki nämä olosuhteet vähentävät fermentointiprosessin toistettavuutta. Lisäksi sakkojen läsnäololla voi olla vaikutusta proteiinin puhdistusvaihei-20 siin ja se voi pakottaa ylimääräisten puhdistusvaiheiden käyttöön sakan erottamiseksi tuotteesta.
Kaupallisessa ympäristössä saostumisongelmaa pitää lievittää jotta fermentointiprosessi olisi käytännöllinen. Yksi ehdotettu tapa estää ravinteiden saostuminen mini-25 mialustassa on EDTA:n ja sitraatin lisääminen metalli- ionien kelatoimiseksi alustassa. Pirt, S.J., Principles of Microbe and Cell Cultivation, sivu 134 (1975). Kelatoivien agenssien lisäyksen tarve ei ole kuitenkaan suotava, koska agenssit eivät metaboloidu. Niinpä ne kasaantuvat ja lisää-30 vät solujen ympäristön osmolaarisuutta. Korkealla osmolaa-risuudella on haitallinen vaikutus solujen aineenvaihduntaan. Gouesbet ym., Journal of Bacteriology, 175:214-221 (1993). Kelatoivien agenssien korkeat konsentraatiot voivat myös vahingoittaa solumembraaneja. Ryan ym., Biotechnology 35 and Bioengineering, 37:430-444 (1991).
5 DE-patenttihakemuksessa nro 290 212 A5 (pantu vireille 28. heinäkuuta 1988) Riesenberg ym. kuvaavat menetelmän jolla voidaan valmistaa glukoosi-minimialusta E. Colin massaviljelmäfermentointia varten yhdistelmä-DNA-5 tuotteiden hankkimiseksi. Riesenbergin ym. kuvaava mini-mialusta suunniteltiin niin että sillä voitettaisiin voimakkaan saostumisen ongelmat joita normaalisti kohdataan työskenneltäessä sellaisilla alustoilla. Patenttihakemuksessa kuvattu alusta hyödyntää ortofosfaatteja fosforinläh-10 teenä eikä eliminoi täysin ravinteiden saostumista, pikemminkin siinä sanotaan ilmenevän vain vähäistä turbulenssia mikä johtuu vähäisestä sakanmuodostuksesta.
Edellä olevaa pohdintaa lukuun ottamatta kirjallisuudesta ei löydy mitään joka koskisi sellaisten alustojen 15 valmistusta sellaisia fermentointeja varten, joissa soluti-heys on suuri, joissa eliminoitaisiin tehokkaasti ravinteiden saostumisongelma. On olemassa edelleen tarve menetelmälle, jolla voitaisiin vähentää saostumista panos- ja/tai syöttöalustassa, joka ei sisällä saostumista kun kaikki 20 komponentit sekoitetaan yhteen (sekoitetaan neutraalissa pH:ssa E. colia ajatellen), ja joka takaa sen että fermen-torissa ei muodostu mitään sakkaa prosessoinnin aikana. Tämä keksintö tarjoaa sellaisen menetelmän käyttämällä natri-umfosfaattilasia fosforin lähteenä konsentroidussa alustas-25 sa. Toisin kuin edellä siteeratuissa viitteissä esitetyt menetelmät, tämän keksinnön mukaiset menetelmät tarjoavat seuraavan kolminkertaisen edun: 1) mahdollistavat sellaisen konsentroidun, täysin tasapainotetun panos- ja/tai syöttö-alustan suunnittelun, joka ei sisällä sakkaa, 2) ovat E. 30 colin metaboloitavissa, ja 3) mahdollistavat kasvaneen solut iheyden ja kasvunopeudet. Tämän keksinnön käytännön menetelmät ovat hyödyllisiä monissa eri bakteeritermentoin-neissa, erityisesti fermentointiprosesseissa joissa soluti-heys on suuri.
β
Keksinnön yhteenveto Tämä keksintö liittyy sellaiseen bakteerifermen-tointiprosessiin rekombinanttiproteiinin tuottamiseksi, jolle on tunnusmerkillistä että tiettyjä syöttöalustan ra-5 vinteita monitoroidaan ja säädetään niin että prosessin aikana saadaan torjua metallifosfaatin saostumista. Erityisesti keksintö liittyy sellaiseen fermentointiprosessiin, jossa solutiheys on suuri ja jolle on tunnusmerkillistä että konsentroitu ravinneliuos käyttää natriumfosfaattilasia 10 fosforinlähteenä. Yllättävää kyllä tämä menetelmä eliminoi sakan muodostuksen alustoissa ja saa aikaan solutiheyksien kasvua standardioloissa. Erityisesti keksintö koskee patenttivaatimuksen 1 mukaista suuren solutiheyden bakteeri-fermentointiviljelmää.
15 Kuvioiden lyhyt kuvaus
Kuvio 1 esittää solutiheysprofiilit ajosta C ( —) ja ajosta D (o-o), ja osoittaa että fosfaattilasin käyttö fosforinlähteenä alustoissa johtaa solutiheyden kasvuun siihen verrattuna joka saatiin kun fosforinlähteenä käytet-20 tiin ortofosfaattia. Solutiheys mitattiin käyttämällä Per-kin-Elmerin M35 spektrofotometriä ja ODgoo piirrettiin kuvaajaan ajan funktiona.
Yksityiskohtainen kuvaus
Menetelmät, joilla tiettyjä syöttöalustan ravintei-25 ta monitoroidaan ja säädellään niin että fermentointipro-sessin aikana saadaan torjuttua metallifosfaatin saostumista, kuvataan yksityiskohtaisemmin jäljempänä olevassa pohdinnassa ja niitä havainnollistavat jäljempänä tarjotut esimerkit. Esimerkit osoittavat, että vaihtoehtoisia fosfo-30 rinlähteitä voidaan hyödyntää fermentoinneissa, joissa solutiheys on suuri, ravinteiden saostumisen eliminoimiseksi. Tulokset olivat yllättäviä sikäli että panosiermentoinneissa ja fed-batch-fermentoinneissa, joissa solutiheys oli suuri, lasimaisen natriumfosfaatin käyttö fosforinlähteenä 35 konsentroidussa erä- ja/tai syöttöalustassa eliminoi alus- 7 toissa tapahtuvan metallitosfaatin saostumisen, ja tuloksena oli fermentoinneissa olevien solutiheyksien kasvu.
Rekombinanttiproteiinien tuotannossa mukana olevat fermentointiprosessit käyttävät käyttötapaa, joka kuuluu 5 johonkin seuraavista luokista: 1) epäjatkuva (panosproses- si) käyttö 2) jatkuva käyttö ja 3) puolijatkuva ("fed-batch") käyttö. Panosprosessille on tunnusmerkillistä, että steriiliin alustaan (panosalusta) ympätään mikro-organismit prosessin alussa, ja näitä viljellään tietty reaktioaika. 10 Viljelyn aikana solutiheydet, substraattien pitoisuudet (hiilenlähde, ravintosuolat, vitamiinit jne.) ja tuotteiden konsentraatiot muuttuvat. Hyvä sekoittaminen varmistaa, että reaktioseoksen koostumuksessa tai lämpötilassa ei ole merkittäviä paikallisia eroja. Reaktio on ei-stationäärinen 15 ja soluja kasvatetaan kunnes kasvua rajoittava substraatti (yleensä hiilenlähde) on käytetty.
Jatkuvalle käytölle on tunnusmerkillistä, että tuoretta alustaa (syöttöalustaa) lisätään jatkuvasti fermento-riin ja käytettyä alustaa ja soluja otetaan jatkuvasti fer-20 mentorista samalla nopeudella. Jatkuvassa käytössä kasvunopeuden määrää se nopeus jolla alustaa lisätään, ja kasvatuksen saannon määrää kasvua rajoittavan substraatin (se on: hiilenlähden) pitoisuus. Kaikki reaktion muuttujat ja kontrolliparametrit pysyvät vakiona ajan suhteen ja näin 25 ollen fermentorissa saadaan aikaan ajan suhteen vakio tila, mistä seuraa jatkuva tuotantokyky ja tuotto.
Puolijatkuvaa käyttöä voidaan pitää panoskäytön ja jatkuvan käytön yhdistelmänä. Fermentointi aloitetaan pa-nosprosessina ja kun kasvua rajoittava substraatti on kulu-30 tettu, lisätään tietyllä tavalla jatkuva syöttöalusta joka sisältää glukoosia ja mineraaleja ("fed-batch"). Toisin sanoen tässä käytössä käytetään sekä panosalustaa että syöttöalustaa, jotta saadaan solujen kasvu ja halutun proteiinin tehokas tuotto. Mitään soluja ei lisätä eikä oteta pois 35 viljelyaikana ja näin ollen fermentori toimii erä kerrallaan sikäli kuin mikro-organismeista on kyse. Vaikka tätä 8 keksintöä voidaan käyttää monissa eri prosesseissa, mukaan lukien edellä mainitut, edullinen hyötykäyttö on fed-batch-prosessin yhteydessä.
Kussakin edellä mainitussa prosessissa solujen kas-5 vua ja tuotteen keräämistä voidaan monitoroida epäsuorasti hyödyntämällä korrelaatiota aineenvaihduntatuotteen muodostumisen ja jonkin muun muuttujan välillä, kuten alustan pH, optinen tiheys, väri ja titrattavissa oleva happamuus. Optinen tiheys esimerkiksi tarjoaa osoituksen 1iukenemattorni-10 en solupartikkeleiden kasaantumisesta ja sitä voidaan monitoroida suoraan käyttämällä mikro-OD-yksikköä joka on liitetty näyttöön tai piirturiin, tai irrallisesti ("offline") ottamalla näytteitä. Optisen tiheyden lukemia 600 nanometrin aallonpituudella (OD6oo) käytetään keinona mää-15 rittää solujen kuivapaino.
Fermentoinneiksi, joissa solutiheys on suuri, kuvataan yleensä niitä prosesseja jotka tuottavat saannoksi > 20 g solujen kuivapainoa/litra (OD60o > 30) . Kaikissa fer-mentointiprosesseissa, joissa solutiheys on suuri, käyte-20 tään konsentroitua alustaa joka mitataan asteittain fermen-toriin "fed-batch"-prosessissa. Prosesseihin, joissa solu-tiheys on suuri, tarvitaan konsentroitu syöttöalusta jotta saataisiin minimoitua fermentorin sisällön laimeneminen syötön aikana. Fed-batch-prosessi vaaditaan koska se mah-25 dollistaa sen että operaattori kontrolloi hiilenlähteen syöttöä, mikä on tärkeää koska jos solut altistetaan sellaisille hiilenlähteen pitoisuuksille, jotka ovat tarpeeksi korkeita saamaan aikaan korkeita solutiheyksiä, solut tuottavat niin paljon inhibitorista sivutuotetta, asetaattia, 30 että kasvu loppuu. Majewski ja Domach, Biotechnology and
Bioengineering, 35: 732 - 738 (1990).
Standardireaktio-olosuhteet niitä fermentointipro-sesseja varten, joita käytetään rekombinanttiproteiinien tuottamiseksi, sisältävät yleensä sen että pH pidetään noin 35 arvossa 5,0 - 8,0 ja viljelylämpötilat ovat välillä 20 °C -50 °C E. colia. varten. Tässä keksinnössä edullisessa suori- 9 tusmuodossa, joka käyttää hyödyksi E. colia isäntäjärjes-telmänä, optimaalinen pH on noin 7,0 ja optimaalinen vilje-lylämpötila on noin 37 °C.
Standardinomaiset alustan komponentit näissä fer-5 mentointiprosesseissa sisältävät yleensä energian, hiilen, typen, fosforin, magnesiumin lähteen ja pieniä määriä rautaa ja kalsiumia. Lisäksi alusta voi sisältää kasvutekijöitä (kuten vitamiineja ja aminohappoja), epäorgaanisia suoloja ja muita esiasteita jotka ovat välttämättömiä tuotteen 10 muodostumiselle. Harkittavan mikro-organismin alkuainekoos- tumusta voidaan käyttää laskemaan kunkin sellaisen komponentin suhde, jota tarvitaan solukasvun tukemiseen. Komponentin pitoisuudet vaihtelevat riippuen siitä onko prosessi sellainen jossa solutiheys on matala vai sellainen 15 jossa solutiheys on korkea. Esimerkiksi glukoosin pitoisuudet sellaisissa panosfermentointiprosesseissa, joissa solu-tiheys on alhainen, ovat välillä 1-5 g/1, kun taas panos-prosessit, joissa solutiheys on korkea, käyttävät glukoosin pitoisuuksia jotka ovat välillä 45 - 75 g/1.
20 Tämän keksinnön suorittamisessa alustojen fosfaa- tinlähteenä ajatellaan käytettäväksi laajaa fosfaattilasien kirjoa. Fosfaattilasit ovat lineaarisia polyfosfaatteja, joilla on suhteellisen erikoistuneita sovellutuksia. Lineaarisista polyfosfaateista, mukaan lukien fosfaattilasit, 25 löytyy yleistä pohdintaa teoksessa Corbridge, D.E.C.,
Phosphorus: An Outline of its Chemistry, Biochemistry and Technology, neljäs laitos, kappale 3, sivut 210 - 302 (1990). Fosfaattilaseja voidaan valmistaa monina eri koostumuksina ja ne koostuvat enimmäkseen kationien ja erillis-30 ten polyfosfaattiketjujen seoksesta. Na+-kationeista muodostuneita laseja on tutkittu perusteellisimmin, ja ne ilmenevät jatkuvana sarjana, stabiileina normaalilämpötilois-sa, koostumuksesta P205 jopa 5Na20*100P2C>5:een. Fosfaatti-laseja muodostuu kun ortofosfaattianioneita kondensoidaan, 35 se on: kuumentamalla NaH2P04 noin 650 °C:n lämpötilaan ja sammuttamalla. Sammutetusta sulatteesta peräisin olevalla 10 tyypillisellä lasilla 650 °C:n lämpötilassa ja 55 torrin (7331,5 Pa) vesihöyrypaineessa on ketjun keskipituus n = 60 PC>4-tetrahedriä.
p O Be O He O R* BO—r~~0— — P—*0· Oi Γμχι 5
Natriumpolyfosfaatin lasimaisia muunnoksia on kai-pallisesti saatavilla. Näitä valmistetaan monilla erilaisilla ketjun keskipituuksilla (esim. n = 5 - n = 200).
10 Yleensä tähän keksinntöön liittyvissä menetelmissä hyödylliset polyfosfaatit ovat natriumfosfaattilaseja. Käyttöä ajatellen pohditaan erityisesti natriumfosfaattilaseja, jotka ovat välillä noin h = 2 - n = 100, ja mieluummin noin n = 4 - noin n = 20. Nämä fosfaattilasit ovat 15 hyödyllisiä tässä keksinnössä, koska: 1) niiden liukoisuus-ominaisuudet ovat sellaisia että konsentroituja alustoja voidaan valmistaa ilman sekoittaessa tapahtuvaa saostumista, 2) isäntäsolujärjestelmissä kuten E. coli -järjestelmässä on tarvittavat reitit fosfaattilasien metaboloimisek-20 si, ja 3) koska saostumista ei tapahdu, kaikki ravinteet ovat täysin saatavilla kulutusta varten, mikä täten johtaa kasvaneisiin solutiheyksiin ja kasvunopeuksiin. Edullisessa suoritusmuodossa fosforinlähteenä käytetään lasimaista nat-riumpolyfosfaattia, jonka ketjunpituus h = 11.
25 Tämä keksintö on hyödyllinen prosessissa jonka ta voite on tuottaa monia erilaisia rekombinanttiproteiineja. Ajateltuja proteiiniesimerkkejä ovat sytokiinit, mukaan lukien monet erilaiset hematopoieettiset tekijät kuten G-CSF, SCF, EPO, GM-CSF, CSF-1, interleukiinit kuten IL-1- IL-12, 30 IGF:t, M-CSF, TNF tai LIF. Muut terapeuttiset proteiinit kuten interferonit (alfa-, beta-, gamma- tai konsensus-interferonit) ja kasvutekijät tai hormonit ovat myös hyödyllisiä, kuten ihmisen tai muun eläimen kasvuhormonit (esimerkiksi sian tai kanan kasvuhormoni), FGF, KGF, EGF ja 11 PDGF. Proteaasin inhibiittorit, kuten metalliproteinaasin inhibiittorit (kuten TIMP-1, TIMP-2 tai muut proteinaasin inhibiittorit) otetaan lukuun. Hermokasvutekijät, kuten BDNF ja NT-3, otetaan myös lukuun. Otetaan myös lukuun pep-5 tidiosat proteiineista, joissa on koko lähtöproteiinin pri-määrirakenne tai osa siitä, ja ainakin yksi lähtöproteiinin biologinen ominaisuus.
Yleensä tässä keksinnössä hyödyllisellä KGF:llä on ihmisen KGF:n tai sille läheisten analogien sekvenssi. Julio kaistu PCT-hakemus W0 90/08 771 kuvaa KGF:n puhdistusta ihmisen embryonisen fibroblastisolulinjan muokatusta elatus-aineesta, eristetyn polypeptidin osittaisen aminohappose-kvensoinnin, geenin kloonauksen ja ekspression bakteerisoluissa (E. coli) jolloin saatiin rekombinanttinen, bio-15 logisesti aktiivinen KGF.
Edullisessa suoritusmuodossa prosessissa käytetty rekombinanttinen isäntäsolu on E. coli. E. coli on edullinen järjestelmä, koska sen genetiikka on karakterisoitu hyvin, se mahdollistaa korkeat solutiheydet, ja sitä voidaan 20 kasvattaa tehokkaasti normaaleissa olosuhteissa (esim.
pH:ssa ja lämpötilassa).
Muihin elementteihin, jotka tarjoavat keksinnön edullisia suoritusmuotoja, kuuluvat kompleksiset typenläh-teet kuten hiivaekstrakti ja kaseiinin, soijapapujauhon, 25 lihan, veren tai puuvillasiemenjauhon kemialliset diges-tiotuotteet. Kuten ammattimies ymmärtäisi, tämä keksintö käsittää sellaiset menetelmät metallifosfaatin saostumisen torjumiseksi, joissa on monia erilaisia näiden lisäelement-tien yhdistelmiä.
3 0 Esimerkki 1
Tasapainotettuja minimialustoja, jotka olivat tyypillisiä niille joita käytettäisiin tuotettaessa rekombi-nanttiproteiineja E. colissa fermentoinneissa, joissa solu-tiheys on suuri, valmistettiin käyttäen vaihtoehtoisia fos-35 faatinlähteitä. Minimialustan (annettu nimeksi alusta A) , jossa käytettiin ortofosfaattia fosfaatinlähteenä, "stan- 12 dardierää" verrattiin alustaan (annettu nimeksi alusta B) joka hyödynsi fosforinlähteenä Hexaphos™: ia, lasimaista natriumpolyfosfaattia, jonka ketjunpituus on h = 11 ja jota myy FMC Corp.
5 Alusta A sisälsi glukoosia 45 g/1, hiivaekstraktia 3 g/1, (NH4) 2S04: ää 1 g/1, K2HP04: ää 4 g/1, KH2P04:ää 4,56 g/1, MgS04'7H20: ta 0,71 g/1, KCl:ää 0,74 g/1, 4,0 ml/1 hi- venainemetalliliuosta A (FeCl3-6H20: ta 27 g/1, Ζη(3ΐ2·4Η20: ta 2,0 g/1, CoCl2-6H20: ta 2,0 g/1, MnMo04-2H20: ta 2,0 g/1, 10 CaCl2’2H20: ta 1,0 g/1, CuS04-5H20: ta 1,9 g/1, H3BO3: ea 0,5 g/1, MnCl2-4H20: ta 1,6 g/1, natriumsitraatti-H20: ta 73,5 g/1) ja 4 ml/1 vitamiiniliuosta A (biotiinia 0,06 g/1, foolihappoa 0,04 g/1, pyridoksiini-HCl: ää 1,4 g/1, ribofla-viinia 0,42 g/1, pantoteenihappoa 5,4 g/1, niasiinia 6,1 15 g/1). Alusta oli identtinen alustan A kanssa, paitsi että fosfaatinlähteenä käytettiin Hexaphos™: ia (3,33 g/1) K2HP04:n ja KH2P04:n sijasta.
Kunkin alustan steriloinnin aikana glukoosi ja magnesiumsulfaatti steriloidaan yhdessä, hivenainemetalliliuos 20 A steriloidaan erikseen, ja muut alustan komponentit (mukaan lukien ortofosfaatti) steriloidaan erikseen. Tämä tehdään epäsuotavien sivureaktioiden välttämiseksi. Alustaa B varten Hexaphos™ steriloidaan myös erikseen. Alustan A tapauksessa, kun kaikki steriloidut alustan komponentit se-25 koitetaan yhteen, tuloksena oleva liuos muuttui sameaksi.
Sameuden ajateltiin johtuvan saostumisreaktioiden tapahtumisesta. Alusta B pysyi kuitenkin läpinäkyvänä sekoitettaessa .
Tuloksena olevan sakan paino mitattiin ottamalla 30 alustasta 10 ml:n näytteitä ja suodattamalla kahden nailon-suodattimen läpi (huokoskoko 0,2 pm) (Nalgene, 215 -4 020) suodattimenpitimessä (Nalgene, 300 - 4 100). Linjassa olevaa toista suodatinta käytettiin arvioimaan massan kasvu, joka johtui liukoisista kiinteistä aineista jotka jäävät 35 kiinni membraaniin. Suodattimia kuivattiin ilmassa useita tunteja ja sitten ne kuivattiin täydellisesti Labware 9000 13
Microwave -kuivatusuunissa jossa oli vaaka. Labware 9000:ta käytettiin määrittämään suodattimien kuivapaino ennen näytteen laittoa ja sen jälkeen. Tulokset esitetään yhteenvetona taulukossa 1 jäljempänä.
5 Taulukko 1
Alusta Sakan paino A 0,20 g/1 B Ei havaittavissa 10 Esimerkki 2
Suoritettiin fed-batch-fermentointeja, joissa solu-tiheys oli suuri, ja jotka oli suunniteltu tuottamaan re-kombinanttista KGF:ää E. colissa, jotta saataisiin verrattua fosfaattilasin ja ortofosfaatin käyttökelpoisuutta fos-15 forinlähteenä panosalustassa ja konsentroitussa syöttöalus-tassa. Määritettiin vaikutukset metallifosfaatin saostumis-tasoihin alustoissa, samoin kuin yleiseen solutiheyteen. Ajo "standardilla" fed-batch-minimialustalla (nimetty ajoksi C) jossa käytettiin ortofosfaattia fosforinlähteenä, 20 verrattiin ajoon (nimetty ajoksi D) jossa käytettiin He-xaphos™:ia fosforinlähteenä.
Ajo C:tä varten panosalusta sisälsi glukoosia 5 g/1, (NH4) 2S04: ää 1,68 g/1, K2S04:ää 0,05 g/1, NaH2P04· H20: ta 0,36 g/1, MgS04'7H20: ta 0,136 g/1, KCl:ää 0,008 g/1, 25 0,78 ml/1 hivenainemetalliliuosta A (FeCl3-6H20: ta 27 g/1,
ZnCl2-4H20: ta 2,0 g/1, CoCl2-6H20: ta 2,0 g/1, MnMo04-2H20: ta 2,0 g/1, CaCl2'2H20: ta 1,0 g/1, CuS04-5H20: ta 1,9 g/1, H3B03:a 0,5 g/1, MnCl2'4H20: ta 1,6 g/1, natriumsitraatti· H20:ta 73,5 g/1) . Ajo D oli identtinen ajon C kanssa paitsi että 30 NaH2P04-H20:n sijasta käytettiin 0,28 g/1 Hexaphos™:a.
Ajo C:tä varten syöttöalusta sisälsi glukoosia 651,5 g/1, K2S04:ää 6,52 g/1, NaH2P04-H20: ta 46,91 g/1,
MgS04-7H20: ta 17,69 g/1, KCl:ää 1,08 g/1 ja hivenainemetalliliuosta A 102 ml/1. Syöttöalusta ajo D oli identtinen 35 ajon C syöttöalustan kanssa paitsi että NaH2P04-H20:n sijasta käytettiin 37,2 g/1 Hexaphos™: ia. Kutakin ajoa varten 14 syöttöalustan pH säädettiin arvoon 7,0 lisäämällä 36 ml/1 NaOH-liuosta (40 %, v/v).
Kuten oli tilanne esimerkin 1 tasapainotettujen syöttöminimialustojen kanssa, ortofosfaatin käyttö fosfo-5 rinlähteenä johti sakan muodostumiseen kun steriloidut alustakomponentit sekoitettiin. Hexaphos™:n käyttö ei toisaalta saanut aikaan sellaista saostumista. Tuloksena olevan sakan paino mitattiin käyttämällä esimerkissä 1 kuvattua menetelmää ja tulokset esitetään yhteenvetona taulukos-10 sa 2 jäljempänä.
Taulukko 2
Aj o Sakan paino C 0,33 g/1 15 D Ei havaittavissa
Monitoroitiin myös solutiheyksiä ajoissa C ja D. Kussakin ajossa solut kasvatetaan alun perin erinä pa-nosalustassa. Sen jälkeen kun glukoosi on kulutettu, aloi-20 tetaan jatkuva syöttö käyttämällä syöttöalustaa. Tämän fer-mentoinnin fed-batch-osuuden aikana syöttönopeutta kasvatetaan kahden tunnin välein solutiheyden mukaan. Ajossa C kasvunopeus alkoi 0,08 h-1:sta ja laski 0,04 tf-'ueen 42 tuntia syötön alkamisesta kun saatiin solutiheys OD 65. Sitten 25 OD laski. Ajossa D fermentointi kasvoi tasaisella nopeudella 0,09 h-1 43 tuntia, kun saatiin solutiheys OD 92. Sitten OD laski (katso kuvio 1). Tuloksena oli lopullinen solutiheys 61 g solukuivapainoa/litra ajolle D, verrattuna vain 43 g:aan solukuivapainoa/litra ajolle C. Tuloksena ajo D 30 tuotti 180 mg/litra KGF:ää kun taas ajo C tuotti 120 mg/litra KGF:ää.
Esimerkki 3
Useita muita polyfosfaatteja (joiden ketjunpituudet olivat välillä n = 2 - n = 19) kuin Hexaphos™ käytettiin 35 fosforinlähteenä alustapreparaateissa, jotka olivat tyypillisiä niille joita käytettiin E. colissa fermentoinneissa 15 joissa solutiheys on suuri. Useita alustoja, jotka sisälsivät glukoosi:fosfori- ja glukoosi:magnesium-suhteita, jotka olivat tyypillisiä niille suhteille, jotka ovat välttämättömiä fermentoinneissa, joiden solutiheys on suuri, formu-5 loitiin siten että sekoitettiin glukoosi/magnesiumsulfaatin väkevä kantaliuos (joka sisälsi glukoosia 888 g/1) eri fosforia sisältävien yhdisteiden konsentroitujen vesiliuosten kanssa. Kunkin tuloksena olevan liuoksen pH säädettiin pH-arvoon 7,0 käyttämällä joko 40 % NaOH:ta tai 30 % HCl:ää.
10 Kunkin liuoksen visuaalisia tutkimuksia suoritet tiin päivittäin viiden päivän ajan sakan muodostumisen tutkimiseksi. Tulokset esitetään yhteenvetona jäljempänä taulukossa 3. Tulokset osoittavat, että Hexaphos™:n käyttö fosforinlähteenä alustassa mahdollistaa niinkin korkeiden 15 glukoosikonsentraatioiden käytön kuin 800 g/1 ilman saostu-misen ilmenemistä. Glass H™:n, lasimaisen natriumpolyfos-faatin, jonka ketjunpituus on n = 19, ja Sodaphos™:n, lasimaisen natriumpolyfosfaatin, jonka ketjunpituus on n=4, käyttö mahdollistaa niinkin korkeiden glukoosikonsentraati-20 oiden käytön kuin 600 g/1. Toisaalta ortofosfaatin käyttö sallii maksimiglukoosikonsentraatioksi vain 462 g/1.
_Taulukko 3_
Fosforilähde Ketjun- Sakan muodostumiseen tarvittava päivien määrä __Pituus__
800 g/L 600 g/L 400 g/L 200 g/L 100 g/L
___glukoosi__glukoosi__glukoosi__glukoosi__glukoosi
Glass H™__19__2__Ei mitään Ei mitään Ei mitään__Ei mitään
Hexaphos™__11__Ei mitään Ei mitään Ei mitään Ei mitään__Ei mitään
Sodaphos™__4__2__Ei mitään Ei mitään Ei mitään__Ei mitään
Tripolyfosfaatti__1__1__1__1__Ei mitään__Ei mitään
Ortofosfaatti__N/A__N/A__O*__Ei mitään Ei mitään__Ei mitään 1 Nämä tulokset osoittavat, että monet eri lasimaiset natriumpolyfosfaatit eliminoivat tehokkaasti ravinteiden saostumista konsentroiduissa alustoissa, joita käytetään 16 tuotettaessa rekombinanttiproteiineja fermentoinneissa, joissa solutiheys on suuri.
Tässä esitetyt tulokset osoittavat käytännöllisen menetelmän, jolla voidaan torjua metallifosfaatin saostu-5 misreaktioita alustassa jota käytetään bakteeritermentoin-tiprosesseissa, joissa solutiheys on suuri, ja ne tarjoavat parantuneen solujen kasvun ja proteiinintuotannon monissa erilaisissa bakteeritermentointiprosesseissa, joissa solutiheys on suuri.

Claims (8)

1. Suuren solutiheyden bakteerifermentointiviljelmä, tunnettu siitä, että se käsittää fosfaattilasia fosfo- 5 rinlähteenä, jolloin fosfaattilasi vähentää fosfaatin saostumista verrattuna soluihin, joita kasvatetaan kasvatus-alustassa ilman fosfaattilaseja.
2. Patenttivaatimuksen 1 mukainen viljelmä, tunnettu siitä, että mainittu fosfaattilasi valitaan ryhmäs- 10 tä, joka koostuu natriumfosfaattilaseista, joilla on kaava PO4 - (PO3) n - PO4, jolloin ketjun pituudet vaihtelevat välillä noin n = 2 - noin n = 100.
3. Patenttivaatimuksen 2 mukainen viljelmä, tunnettu siitä, että mainitulla natriumfosfaattilasilla on 15 ketjunpituus noin n = 4 - noin n = 20.
4. Patenttivaatimuksen 3 mukainen viljelmä, tunnettu siitä, että mainitulla natriumfosfaattilasilla on ketjunpituus n = 11.
5. Patenttivaatimuksen 1 mukainen viljelmä, tun- 20 nettu siitä, että suuren solutiheyden fermentointiviljelmä valitaan ryhmästä, joka koostuu panosfermentointiviljelmäs-tä, jatkuvan fermentoinnin viljelmästä tai fed-batch-fermentointivil j elmästä .
6. Patenttivaatimuksen 1 mukainen viljelmä, tun- 25 nettu siitä, että suuren solutiheyden viljelmä tuottaa saannon, joka on enemmän kuin 20 grammaa solun kuivapai-noa/litra kasvatusalustaa.
7. Patenttivaatimuksen 1 mukainen viljelmä, tunnettu siitä, että kasvatusalusta käsittää glukoosia kon- 30 sentraatiossa, joka on 45 g/litra - 75 g/litra.
8. Patenttivaatimuksen 1 mukainen viljelmä, tunnettu siitä, että bakteerifermentointiviljelmä käsittää E. colin, joka ilmentää rekombinanttiproteiinia.
FI20095510A 1994-04-28 2009-05-05 Suuren solutiheyden bakteerifermentaatioviljelmä FI120977B (fi)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US23557394A 1994-04-28 1994-04-28
US23557394 1994-04-28
US9505294 1995-04-27
PCT/US1995/005294 WO1995029986A1 (en) 1994-04-28 1995-04-27 Method for controlling metallophosphate precipitation in high cell density fermentations

Publications (2)

Publication Number Publication Date
FI20095510A FI20095510A (fi) 2009-05-05
FI120977B true FI120977B (fi) 2010-05-31

Family

ID=22886063

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI964208A FI120405B (fi) 1994-04-28 1996-10-18 Menetelmä metallofosfaatin saostumisen kontrolloimiseksi fermentoinneissa, joissa solutiheys on suuri
FI20095510A FI120977B (fi) 1994-04-28 2009-05-05 Suuren solutiheyden bakteerifermentaatioviljelmä

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI964208A FI120405B (fi) 1994-04-28 1996-10-18 Menetelmä metallofosfaatin saostumisen kontrolloimiseksi fermentoinneissa, joissa solutiheys on suuri

Country Status (18)

Country Link
US (2) US7118884B1 (fi)
EP (1) EP0755438B1 (fi)
JP (1) JP3592330B2 (fi)
CN (1) CN1105776C (fi)
AT (1) ATE199166T1 (fi)
AU (1) AU699554B2 (fi)
CA (1) CA2188434C (fi)
DE (1) DE69520098T2 (fi)
DK (1) DK0755438T3 (fi)
ES (1) ES2153896T3 (fi)
FI (2) FI120405B (fi)
GR (1) GR3035808T3 (fi)
IL (2) IL113497A0 (fi)
MX (1) MX9604878A (fi)
NO (1) NO323554B1 (fi)
PT (1) PT755438E (fi)
WO (1) WO1995029986A1 (fi)
ZA (1) ZA953452B (fi)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2535562A1 (en) 2003-08-13 2005-03-03 Chiron Corporation Improved method of purifying tfpi and tfpi analogs
GB0522303D0 (en) 2005-11-01 2005-12-07 Chiron Srl Culture method
GB0818453D0 (en) 2008-10-08 2008-11-12 Novartis Ag Fermentation processes for cultivating streptococci and purification processes for obtaining cps therefrom
US10237679B2 (en) * 2008-06-27 2019-03-19 Here Global B.V. Method, apparatus, and computer program product for location sharing
US8213591B2 (en) * 2008-11-13 2012-07-03 At&T Intellectual Property I, L.P. Methods, systems, and products for providing ring tones
MX2011013417A (es) 2009-06-25 2012-03-29 Amgen Inc Procesos de purificacion por captura para proteinas expresadas en un sistema no mamifero.
CN115867641A (zh) 2020-07-01 2023-03-28 龙沙有限公司 微生物培养基

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE290212C (fi)
US3640827A (en) * 1968-10-09 1972-02-08 Fmc Corp Phosphate glass bodies
US4727031A (en) * 1984-11-08 1988-02-23 International Technology Corporation Nutrient for stimulating aerobic bacteria
US4906575A (en) * 1987-03-06 1990-03-06 Chevron Research Company Phosphate compound that is used in a microbial profile modification process
US4947932A (en) * 1987-03-06 1990-08-14 Chevron Research Company Phosphate compound that is used in a microbial profile modification process
DD290212A5 (de) 1988-07-28 1991-05-23 Zi Fuer Mikrobiologie Und Experimentelle Therapie,De Verfahren zur herstellung eines glukose-minimalmediums fuer escherichia coli-massenkulturfermentation
US5128260A (en) * 1989-01-12 1992-07-07 Sanofi Bio Ingredients, Inc. Process for preparing culture concentrates for direct vat set dairy products production
CA2078054A1 (en) 1991-09-13 1993-03-14 Sun Yukun High-yield fermentation processes

Also Published As

Publication number Publication date
JPH09512439A (ja) 1997-12-16
AU2369195A (en) 1995-11-29
MX9604878A (es) 1998-01-31
CA2188434C (en) 1999-08-31
EP0755438A1 (en) 1997-01-29
PT755438E (pt) 2001-07-31
WO1995029986A1 (en) 1995-11-09
FI120405B (fi) 2009-10-15
EP0755438B1 (en) 2001-02-14
IL113497A0 (en) 1995-07-31
FI20095510A (fi) 2009-05-05
US20070026497A1 (en) 2007-02-01
ZA953452B (en) 1996-01-17
NO964368L (no) 1996-12-30
ATE199166T1 (de) 2001-02-15
CA2188434A1 (en) 1995-11-09
DE69520098T2 (de) 2001-07-19
JP3592330B2 (ja) 2004-11-24
FI964208A (fi) 1996-10-18
AU699554B2 (en) 1998-12-10
NO323554B1 (no) 2007-06-11
ES2153896T3 (es) 2001-03-16
FI964208A0 (fi) 1996-10-18
CN1151182A (zh) 1997-06-04
US7381545B2 (en) 2008-06-03
DE69520098D1 (de) 2001-03-22
CN1105776C (zh) 2003-04-16
US7118884B1 (en) 2006-10-10
DK0755438T3 (da) 2001-03-19
GR3035808T3 (en) 2001-07-31
IL113497A (en) 2001-01-11
NO964368D0 (no) 1996-10-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI120977B (fi) Suuren solutiheyden bakteerifermentaatioviljelmä
EP2247737B1 (en) Fermentation medias and processes thereof
CA2417689C (en) Improved methods for growing mammalian cells in vitro
US11401499B2 (en) Fermentation medium for growth of methanotrophic bacteria and method for producing said medium
JPH08116964A (ja) L−アスコルビン酸含有バイオマス
KR20150063541A (ko) 관류 세포배양 시스템을 최적화하기 위한 방법 및 시스템
MXPA96004878A (en) Method for controlling the precipitation of meta phosphate in cell density fermentations eleva
Curless et al. Phosphate glass as a phosphate source in high cell density Escherichia coli fermentations
CN109182438B (zh) 利用芽孢杆菌发酵生产维生素b2的培养基及培养方法
EP0511226B1 (de) Verfahren zur hochzelldichte-fermentation von escherichia coli in einem rührkesselfermentor
CN117222668A (zh) 制备spesolimab的方法
WO2017186327A1 (en) Bacterial strain and method for high throughput of sugar in the microbial conversion into biosynthetic products
IL299373A (en) Microbial culture medium
SU907072A1 (ru) Способ получени лимонной кислоты
Pöhland et al. High performance fermentation process using methanol utilizing bacteria
CN117701459A (zh) 一种大肠杆菌高密度发酵培养基及发酵工艺
CN117187199A (zh) 一种活性增强的谷胱甘肽合成酶及应用
JP2020162544A (ja) 微生物培養用液体培地及び液体培地を用いた微生物の培養方法
CN116064698A (zh) 一种四氢甲基嘧啶羧酸发酵方法
Altamirano et al. Bi-Phasic Culture Strategies Based on Medium Formulation: Substitution of Glucose by Galactose in CHO Culture
CZ249993A3 (en) Fermentation process of l-threonine by cultivating production strain escherichia coli 472 t - 23
CS232830B1 (cs) Způsob výrcby kvasnic s vyšším obsahem bílkovin

Legal Events

Date Code Title Description
FG Patent granted

Ref document number: 120977

Country of ref document: FI

MA Patent expired