ES2350576T3 - Métodos y composiciones de ácidos nucleicos inmunomoduladores para prevenir y tratar enfermedades. - Google Patents
Métodos y composiciones de ácidos nucleicos inmunomoduladores para prevenir y tratar enfermedades. Download PDFInfo
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Abstract
Un método para elaborar un vector plasmídico, método que consiste en modificar un vector que contiene un motivo CpG de la fórmula 5'-purina-pirimidina-C-G-pirimidina-pirimidina-3' para sustituir una citosina por una no citosina dentro del dinucleótido CpG, en el que el vector además está compuesto por un polinucleótido que codifica una proteína mielina o una proteína insulina.
Description
Métodos y composiciones de ácidos nucleicos
inmunomoduladores para prevenir y tratar enfermedades.
La presente solicitud reivindica el beneficio
bajo el Título 35 del Código de Estados Unidos, Capítulo
119(e), de la Solicitud Provisional de Patente estadounidense
nº 60/428.643, presentada el 21 de noviembre de 2002.
\vskip1.000000\baselineskip
Esta invención hace referencia a composiciones
para tratar o prevenir enfermedades que comprenden secuencias de
modulación inmunitaria. La solicitud hace referencia de forma
adicional a los medios y métodos para la identificación de las
secuencias de modulación inmunitaria para prevenir o tratar
enfermedades, más específicamente el tratamiento y prevención de
enfermedades autoinmunes o enfermedades inflamatorias. La solicitud
también hace referencia al tratamiento o prevención de enfermedades
que comprende la administración únicamente de las secuencias de
modulación inmunitaria. La solicitud también hace referencia al
tratamiento o prevención de enfermedades que comprende la
administración de las secuencias de modulación inmunitaria en
combinación con un polinucleótido que codifica
auto-proteína(s),
auto-polipéptido(s) o
auto-péptido(s). La solicitud hace
referencia de forma adicional al tratamiento o prevención de
enfermedades que comprende la administración de las secuencias de
modulación inmunitaria en combinación con
auto-moléculas, tales como
auto-lípidos,
auto-proteína(s),
auto-péptido(s),
auto-polipéptido(s),
auto-glicolípido(s),
auto-carbohidrato(s),
auto-glicoproteína(s), y
auto-proteína(s), péptido(s),
polipéptido(s) o glicoproteína(s),
modificado(s) de forma post-traslacional. La
solicitud también hace referencia al tratamiento o prevención de
enfermedades que comprende la administración de las secuencias de
modulación inmunitaria en combinación con una o más terapéuticas
adicionales de modulación inmunitaria.
La presente invención también hace referencia a
composiciones para tratar enfermedades en un sujeto relacionadas
con una o más auto-proteína(s),
auto-polipéptido(s) o
auto-péptido(s) que están presentes en el
sujeto e implicados en un estado no fisiológico. La presente
invención también hace referencia a composiciones para prevenir
enfermedades en un sujeto relacionadas con una o más
auto-proteína(s),
auto-polipéptido(s) o
auto-péptido(s) que están presentes en el
sujeto e implicados en un estado no fisiológico. La solicitud
también hace referencia a la administración de una terapia
combinada que comprende una secuencia de modulación inmunitaria y un
polinucleótido que codifica una(s)
auto-proteína(s), uno(s)
auto-polipéptido(s) o uno(s)
auto-péptido(s) presentes en un estado no
fisiológico y relacionados con una enfermedad. La solicitud también
hace referencia a modular una respuesta inmunitaria para
la(s) auto-molécula(s)
presente(s) en un animal e implicada(s) en un estado
no fisiológico y relacionada(s) con una enfermedad. La
solicitud hace referencia más específicamente a los métodos y
composiciones para tratar o prevenir enfermedades autoinmunes
relacionadas con una o más auto-molécula(s)
presente(s) en el animal en un estado no fisiológico tal como
en la esclerosis múltiple (EM), la artritis reumatoide (AR), la
diabetes mellitus insulinodependiente (DMID), la uveítis autoinmune
(UA), la cirrosis biliar primaria (CBP), la miastenia gravis (MG),
el síndrome de Sjögren, el pénfigo vulgar (PV), la esclerodermia,
la anemia perniciosa, el lupus sistémico eritematoso (LSE) y la
enfermedad de Graves.
La solicitud hace referencia aún más
específicamente a otras enfermedades relacionadas con una o más
auto-molécula(s) presente(s) en el
animal en un estado no fisiológico tal como la osteoartritis, la
lesión de médula espinal, la enfermedad ulcerosa péptica, la gota,
las migrañas, la hiperlipidemia y la enfermedad arterial
coronaria.
\vskip1.000000\baselineskip
Una enfermedad autoinmune es cualquier
enfermedad causada por una inmunidad adquirida que se dirige
erróneamente contra las células y/o tejidos sanos del cuerpo. Las
enfermedades autoinmunes afectan al 3% de la población de los
EE.UU., y probablemente a un porcentaje similar de la población del
mundo industrializado (Jacobson et al., Clin Immunol
Immunolpathol, 84, 223-43, 1997).
Las enfermedades autoinmunes se caracterizan por
linfocitos T y B que se dirigen de forma anómala contra las
auto-moléculas, incluyendo pero sin limitarse a
auto-lípidos,
auto-proteína(s),
auto-péptido(s),
auto-polipéptido(s),
auto-glicolípido(s),
auto-carbohidrato(s),
auto-glicoproteína(s), y
auto-proteína(s), péptido(s),
polipéptido(s) o glicoproteína(s)
modificado(s) de forma post-traslacional, y
derivados de los mismos, causando de ese modo una lesión o mal
funcionamiento de un órgano, tejido, o algún tipo de célula dentro
del cuerpo (por ejemplo, el páncreas, el cerebro, el tiroides o el
tracto gastrointestinal) para causar las manifestaciones clínicas
de la enfermedad (Marrack et al., Nat Med, 7,
899-905, 2001). Entre las enfermedades autoinmunes
se incluyen las enfermedades que afectan a tejidos específicos así
como las enfermedades que pueden afectar a múltiples tejidos. Esto,
en parte, para algunas enfermedades puede depender de si las
respuestas autoinmunes se dirigen al antígeno de una
auto-molécula con limitación a un tejido específico
o al antígeno de una auto-molécula que está
ampliamente distribuido por todo el cuerpo. El rasgo característico
de la autoinmunidad sobre un tejido específico es el ataque
selectivo contra un tejido en particular o un tipo de célula
individual. Sin embargo, ciertas enfermedades autoinmunes que se
dirigen contra antígenos de auto-moléculas ubicuos
también pueden afectar a tejidos específicos. Por ejemplo, en la
polimiositis, la respuesta autoinmune se dirige contra la proteína
histidil-ARNt sintetasa ubicua, aunque las
manifestaciones clínicas fundamentalmente implican la destrucción
autoinmune del músculo.
El sistema inmunitario emplea un mecanismo
enormemente complejo diseñado para generar respuestas para proteger
a los mamíferos contra una diversidad de patógenos extraños y a la
vez prevenir las respuestas contra los
auto-antígenos. Además de decidir si responder
(especificidad de los antígenos), el sistema inmunitario también
debe elegir las funciones adecuadas de los efectores para
enfrentarse a cada patógeno (especificidad de los efectores). Una
célula crítica a la hora de mediar en y regular estas funciones de
los efectores es la célula T CD4+. Además, es la elaboración de
citoquinas específicas a partir de células T CD4+ lo que parece ser
uno de los mecanismos más importantes a través de los que las
células T median en sus funciones. Por consiguiente, el
caracterizar los tipos de citoquinas fabricadas a partir de células
T CD4+ así como la manera en la que se controla su secreción, es
extremadamente importante para comprender cómo se regula la
respuesta inmunitaria.
La caracterización de la producción de
citoquinas a partir de clones de células T CD4+ de ratón de larga
duración se publicó por primera vez hace más de 10 años (Mosmann
et al., J. Immunol., 136: 2348-2357, 1986).
En estos estudios, se mostró que las células T CD4+ producían dos
patrones distintos de producción de citoquinas, que se designaron T
colaborador 1 (Th1) y T colaborador 2 (Th2). Las células Th1 se
descubrió que producían de forma selectiva
interleuquina-2 (IL-2),
interferón-gamma (IFN-gamma) y
linfotoxina (LT), mientras que los clones Th2 producían de forma
selectiva IL-4, IL-5,
IL-6 e IL-13 (Cherwinski et
al., J. Exp. Med., 169: 1229-1244, 1987). Algo
más tarde, se aislaron citoquinas adicionales, IL-9
e IL-10, de los clones Th2 (Van Snick et al.,
J. Exp. Med., 169: 363-368, 1989) (Fiorentino et
al., J. Exp. Med., 170: 2081-2095, 1989). Por
último, se descubrió que citoquinas adicionales, tales como
IL-3, el factor estimulante de colonias de
granulocitos macrófagos (GM-CSF), y el factor de
necrosis tumoral alfa (TNF-alfa) eran secretados
tanto por las células Th1 como por las Th2.
Las enfermedades autoinmunes abarcan un amplio
espectro de enfermedades que pueden afectar a muchos órganos y
tejidos diferentes del cuerpo tal y como viene explicado en la tabla
de más adelante (Véase, por ejemplo, Paul, W.E. (1999)
Fundamental Immunology, Cuarta Edición,
Lippincott-Raven, Nueva York).
Entre las terapias actuales para las
enfermedades autoinmunes humanas se incluyen los glucocorticoides,
los agentes citotóxicos y las terapéuticas biológicas recientemente
desarrolladas. En general, la gestión de enfermedades autoinmunes
sistémicas humanas es empírica y poco satisfactoria. La mayoría de
las veces, se utilizan por lo general fármacos inmunosupresores,
tales como los corticosteroides, en una amplia variedad de
enfermedades inflamatorias y autoinmunes graves. Además de los
corticosteroides, se utilizan otros agentes inmunosupresores en la
gestión de las enfermedades autoinmunes sistémicas. La
ciclofosfamida es un agente alquilante que causa una enorme
disminución de los linfocitos T y B y dificulta la inmunidad mediada
por células. La ciclosporina, el tacrolimus y el micofenolato de
mofetilo son productos naturales con propiedades específicas de
supresión de linfocitos T, y se han utilizado para tratar el LSE,
la AR y, en menor medida, en la vasculitis y la miositis. Estos
fármacos están asociados a una importante toxicidad renal. También
se utiliza el metotrexato como un agente de "segunda línea" en
la AR, con el objetivo de reducir la progresión de la enfermedad.
También se utiliza en la polimiositis y otras enfermedades del
tejido conectivo. Entre otros enfoques que se han probado se
incluyen los anticuerpos monoclonales con la intención de bloquear
la acción de las citoquinas o para reducir los linfocitos. (Fox,
D.A. Am. J. Med., 99: 82-88, 1995). Entre los
tratamientos para la EM se incluyen el interferón Beta y el
copolímero 1, que reducen el porcentaje de recaída en un
20-30% y solamente tienen un pequeño impacto sobre
la progresión de la enfermedad. La EM también se trata con agentes
inmunosupresores incluyendo la metilprednisolona, otros esteroides,
el metotrexato, la cladribina y la ciclofosfamida. Estos agentes
inmunosupresores tienen una eficacia mínima a la hora de tratar la
EM. La terapia actual para la AR utiliza agentes que modulan o
suprimen no específicamente la función inmunitaria tales como el
metotrexato, la sulfasalazina, la hidroxicloroquina, la
leflunomida, la prednisona, así como los recientemente desarrollados
antagonistas del TNF alfa etanercept e infliximab (Moreland et
al., J Rheumatol, 28, 1431-52, 2001). Etanercept
e infliximab bloquean de forma global el TNF alfa, haciendo que los
pacientes sean más propensos a morir por sepsis, empeoramiento de
las infecciones micobacterianas crónicas y el desarrollo de casos de
desmielinización.
En el caso de la autoinmunidad
órgano-específica, se han intentado una serie de
enfoques terapéuticos diferentes. Se han administrado antígenos
proteicos solubles de forma sistémica para inhibir la posterior
respuesta inmunitaria a ese antígeno. Entre dichas terapias se
incluyen la administración de proteína básica de mielina, su péptido
dominante, o una mezcla de proteínas mielina a animales con
encefalomielitis autoinmune experimental (EAE) y seres humanos con
esclerosis múltiple (Brocke et al., Nature, 379,
343-6, 1996); (Critchfield et al., Science,
263, 1139-43, 1994); Weiner et al., Annu Rev
Immunol, 12, 809-37, (1994); la administración de
colágeno tipo II o una mezcla de proteínas de colágeno a animales
con artritis colágeno-inducida y seres humanos con
artritis reumatoide (Gumanovskaya et al., Immunology, 97,
466-73, 1999); (McKown et al., Arthritis
Rheum, 42, 1204-8, 1999), (Trentham et al.,
Science, 261, 1727-30, 1993); la administración de
insulina a animales y seres humanos con diabetes autoinmune
(Pozzilli y Gisella Cavallo, Diabetes Metab Res Rev, 16,
306-7, 2000); y la administración del antígeno S a
animales y seres humanos con uveitis autoinmune (Nussenblatt et
al., Am J Ophthalmol, 123, 583-92, 1997). Un
problema relacionado con este enfoque es la no respuesta de las
células T inducida por la inyección sistémica de antígenos. Otro
enfoque es el intento por diseñar estrategias terapéuticas
racionales para la administración sistémica de un antígeno
peptídico basadas en la interacción específica entre los receptores
de células T y los péptidos unidos a las moléculas del complejo
principal de histocompatibilidad (CPH). Un estudio utilizando el
enfoque peptídico en un modelo de diabetes animal dio por resultado
el desarrollo de la producción de anticuerpos al péptido,
(Hurtenbach U. et al., J Exp. Med, 177: 1499, 1993). Otro
enfoque es la administración de inmunización con péptidos de RCT.
Véase, por ejemplo, (Vandenbark AA et al., Nature,
341: 541, 1989). Aún otro enfoque es la inducción de la tolerancia
oral mediante la ingestión de antígenos peptídicos o proteicos.
Véase, por ejemplo, (Weiner HL, Immunol Today, 18: 335,
1997).
Las respuestas inmunitarias a los patógenos o
tumores se alteran actualmente administrando proteínas, polipéptidos
o péptidos, solos o en combinación con adyuvantes. Por ejemplo, la
vacuna contra el virus de la hepatitis B contiene el antígeno de
superficie del virus de la hepatitis B recombinante, un antígeno
exógeno, formulado en hidróxido de aluminio, que sirve como un
adyuvante. Esta vacuna induce una respuesta inmunitaria contra el
antígeno de superficie del virus de la hepatitis B para proteger
contra la infección. Un enfoque alternativo implica la
administración de una forma atenuada, de duplicación deficiente, y/o
no patógena de un virus o bacteria, cada uno antígenos exógenos,
para provocar una respuesta inmunitaria protectora del huésped
contra el patógeno. Por ejemplo, la vacuna oral contra la polio
está compuesta por un virus vivo atenuado, un antígeno exógeno, que
infecta a las células y se duplica en el individuo vacunado para
inducir una inmunidad efectiva contra el virus de la polio, un
antígeno exógeno o extraño, sin causar una enfermedad clínica. De
manera alternativa, la vacuna inactiva contra la polio contiene un
virus inactivo o "muerto" que es incapaz de infectar o
duplicarse, y que se administra de forma subcutánea para inducir una
inmunidad protectora contra el virus de la polio.
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Enfermedades inflamatorias relacionadas con
"moléculas exógenas": La infección con microorganismos
incluyendo micoplasma, virus, bacterias, parásitos y micobacterias
lleva a la inflamación en los órganos objetivo, y en algunos casos
a la inflamación sistémica. Entre los ejemplos destacados se
incluyen la artritis séptica bacteriana, la artritis de Lyme, la
uveitis infecciosa y el shock séptico. Como parte del sistema
inmunitario innato, los mediadores inflamatorios tales como los
componentes de la cascada de coagulación, las bradiquininas y los
complementos se activan y contribuyen a la inflamación y la
morbosidad. La respuesta inmunitaria en las enfermedades
infecciosas se dirige contra las moléculas exógenas presentes en los
microorganismos, incluyendo las proteínas, lípidos, carbohidratos y
ácidos nucleicos. El ADN bacteriano que contiene ciertos motivos
denominados motivos "CpG", que se definen con más detalle a
continuación, es capaz de iniciar respuestas inflamatorias en
modelos animales. Por ejemplo, la inyección de ADN bacteriano o
motivos CpG, siendo ambos moléculas exógenas, en articulaciones
sinoviales imita muchos de los signos y síntomas inflamatorios que
caracterizan a la artritis séptica.
Enfermedades inflamatorias relacionadas con
"automoléculas": Muchas enfermedades humanas están
relacionadas con una inflamación aguda o crónica con ausencia de
cualquier etiología infecciosa conocida. En estas enfermedades, el
sistema inmunitario está activo, provocando que los tejidos
afectados se inflamen y se infiltren en ellos de forma anormal
leucocitos y linfocitos, pero parece no haber ninguna infección
relacionada. Entre los ejemplos de ello se incluyen la
osteoartritis, la enfermedad arterial coronaria, la enfermedad de
Alzheimer, ciertas formas de dermatitis, la gastritis y la
neumonitis. La respuesta inmunitaria predominante es una respuesta
inmunitaria innata, con ausencia de una respuesta inmunitaria
adquirida.
Enfermedades autoinmunes relacionadas con
"automoléculas": Se han descrito docenas de enfermedades
autoinmunes, incluyendo la artritis reumatoide, el lupus sistémico
eritematoso, la esclerosis múltiple, la diabetes mellitus, la
psoriasis, y muchas otras. Como en el caso de las enfermedades
inflamatorias relacionadas con automoléculas mencionadas
anteriormente, el sistema inmunitario está activo, provocando que
los tejidos afectados se inflamen y se infiltren en ellos de forma
anormal leucocitos y linfocitos, y parece no haber ninguna infección
relacionada. A diferencia de las enfermedades inflamatorias
relacionadas con automoléculas, una característica distintiva de
las enfermedades autoinmunes es la presencia de autoanticuerpos y/o
células T específicas para automoléculas expresados por el huésped.
Los mecanismos mediante los que los linfocitos huésped T y B se
dirigen de forma selectiva contra las automoléculas son poco
claros. Algunos investigadores han sugerido que las enfermedades
autoinmunes las provocan o agravan infecciones con patógenos
microbianos. La estimulación con secuencias CpG microbianas se
asocia con una mayor propensión a desarrollar modelos animales de
enfermedades autoinmunes tales como la EAE (Segal et al., J.
Immunology, 158: 5087, 1997) y el LSE (Gilkeson et al., J.
Immunology, 142: 1482, 1989); sin embargo, hay pocas pruebas que
respalden la hipótesis de que las secuencias CpG o productos
microbianos pueden por sí mismos provocar una enfermedad autoinmune
en, de otro modo, un animal sano, aunque pueden inducirse
enfermedades inflamatorias. Por ejemplo, varios experimentos
importantes que utilizaban sistemas gnotobióticos (es decir,
animales criados en un ambiente libre de gérmenes) han demostrado
que el desarrollo espontáneo de enfermedades autoinmunes ocurre sin
haber exposición a microbios o CpGs microbianas presentes de forma
natural. Entre los ejemplos se incluyen el desarrollo de
enfermedades autoinmunes de la piel y genitales en un modelo con
roedores transgénicos libre de gérmenes de la espondilitis
anquilosante (Taurog, J Exp Med, 180: 2359, 1994); y el desarrollo
de lupus en 2 modelos diferentes del LSE (Maldonadoi et al.,
J Immunol, 162: 6322, 1999; Unni et al., J Rheum, 2: 35,
1975). También se ha descrito un modelo inducible del LSE en el que
una sola inyección de cualquier variedad de ratón con el aceite de
hidrocarburo, el pristano, lleva al desarrollo del LSE,
caracterizado por la producción de autoanticuerpos característicos y
la enfermedad renal mediada por complejos inmunes. Juntos, estos
modelos experimentales sugieren que las enfermedades autoinmunes
espontáneas e inducibles pueden desarrollarse con ausencia de una
exposición a ADN ó CpGs microbianos.
Secuencias inmunoestimuladoras (SIE): Al
sistema inmunitario innato se le considera la primera línea de
defensa contra los microbios y los patógenos. Uno de los
estimulantes más potentes del sistema inmunitario innato es el ADN
microbiano, que contiene secuencias inmunoestimuladoras (SIE). La
activación de la inmunidad innata por secuencias
inmunoestimuladoras específicas en ADN bacteriano requiere un motivo
secuencial hexamérico no metilado central que está compuesto por
5'-purina-purina-citosina-guanina-pirimidina-pirimidina-3'
para la estimulación en ratones y por
5'-purina-pirimidina-citosina-guanina-pirimidina-pirimidina-3'
para la estimulación en seres humanos (Krieg et al., Annu
Rev. Immunol., 20: 709-760, 2002). El ADN bacteriano
y los oligodesoxinucleótidos (ODN) sintéticos que contienen este
motivo dinucleótido, denominados secuencias "CpG", dentro de un
motivo secuencial inmunoestimulador tienen la capacidad de
estimular a las células B para proliferar y secretar
IL-6, IL-7 e inmunoglobulina (Krieg
et al., Nature, 374: 546-549, 1995; Yi et
al., J. Immunol., 157: 5394-5402, 1996). El ADN
de SIE también activa directamente las células dendríticas, los
macrófagos y los monocitos para secretar citoquinas parecidas a Th1
tales como TNF-\alpha, IL-6 e
IL-12 y regula por incremento la expresión del CPH
y las moléculas coestimuladoras (Klinman et al., Proc. Nat.
Acad. Sci. EE.UU., 93: 2879-2883, 1996;
Martin-Orozco et al., Int. Immunol., 11:
1111-1118, 1999; Sparwasser et al., Eur. J.
Immunol., 28: 2045-2054, 1998). En los ratones, se
ha identificado el receptor parecido a Toll-9
(RPT-9) como el receptor clave en el reconocimiento
de los motivos CpG.
En el ADN de los vertebrados, la frecuencia de
los dinucleótidos CpG se suprime en aproximadamente un cuarto del
valor previsto, y la C en el dinucleótido CpG es metilada
aproximadamente el 80% del tiempo. En contraposición, en el ADN
bacteriano, como en los ODN sintéticos, la C no es metilada de forma
preferente en el dinucleótido CpG. Por consiguiente, el ADN
bacteriano es estructuralmente diferente del ADN de los vertebrados
debido a su contenido más de 20 veces mayor de motivos CpG no
metilados. Numeroso estudios han establecido el motivo CpG no
metilado como el patrón molecular dentro del ADN bacteriano que
activa las células inmunitarias (Krieg et al., Annu. Rev.
Immunol., 20: 709-760, 2002).
El ADN CpG se reconoce como un potente adyuvante
por su habilidad para inducir una fuerte respuesta de anticuerpos y
una respuesta de células T parecidas a Th1 ante tales antígenos
exógenos como la ovoalbúmina y la lisozima de los huevos de gallina
(Chu et al., J. Exp. Med., 186: 1623-1631,
1997; Lipford et al., Eur. J. Immunol., 27:
2340-2344, 1997), Actualmente, el ADN CpG y los ODN
CpG se están utilizando como vacunas terapéuticas en diversos
modelos animales de enfermedades infecciosas, tumores, enfermedades
alérgicas y enfermedades autoinmunes (Krieg et al., Annu.
Rev. Immunol., 20: 709-760, 2002). El éxito de la
CpG como vacuna radica enormemente en su eficacia para inducir una
fuerte respuesta parecida a Th1, y en algunos casos, redirigir una
respuesta de Th2 a una respuesta de Th1, tal como pasa en el modelo
de asma alérgico (Kline et al., J. Immunol., 160:
2555-2559, 1998; Broide et al., J. Immunol.,
161: 7054-7062, 1998).
Se ha prestado bastante atención a las
aplicaciones terapéuticas de la activación inmunitaria innata por el
ADN CpG. La potente activación de células inmunitarias innatas
específicas no antigénicas inducida por el ADN CpG es suficiente
para proteger a los ratones contra los desafíos bacterianos, e
incluso para tratar infecciones establecidas con patógenos
intracelulares (Agrawal et al., Trends Mol. Med., 8:
114-121, 2002). El ADN CpG también induce la
resistencia inmunitaria innata ante tumores y la represión de
tumores establecidos en ratones (Dow et al., J. Immunol.,
163: 1552-1561, 1999; Carpenter et al.,
Cancer Res., 59: 5429-5432, 1999; Smith et
al., J. Natl. Cancer Inst., 90: 1146-1154,
1998). El potente efecto adyuvante Th1 del ADN CpG puede incluso
anular respuestas inmunitarias Th2 preexistentes; se ha utilizado
como un adyuvante para las vacunas contra las alergias, donde
induce respuestas Th1 ante antígenos en presencia de una respuesta
Th2 preexistente, llevando a la disminución de los síntomas después
de la posterior inhalación de alérgenos (Van Uden et al., J.
Allergy Clin. Immunol., 104: 902-910, 1999).
Secuencias inmunoinhibidoras (SII): Se
han utilizado inhibidores de oligodesoxinucleótidos con secuencia
inmunoestimuladora (ODN-SIE) para inhibir la
actividad inmunoestimuladora de ODN-SIE, por
ejemplo, para suprimir la actividad inmunoestimuladora de cualquier
ODN-SIE presente en vectores de expresión
recombinantes en particular en el contexto de la terapia génica,
como agentes antiinflamatorios para reducir las respuestas
inmunitarias del huésped ante ODN-SIE en bacterias
y virus, como modulador autoinmune en combinación con un conjugado
de autoantígenos o autoanticuerpos para inhibir la producción de
IL-12 mediada por Th1 y estimulada por
ODN-SIE, para su uso como adyuvante para las
respuestas inmunitarias Th2 ante los antígenos extracelulares, y en
general para cambiar una respuesta inmunitaria del huésped de una
respuesta Th1 a una Th2. Véase la Patente
estadounidense
nº 6.255.292.
nº 6.255.292.
Yamada et al., J. Immunol., 169:
5590-5594, 2002, utilizando diversos sistemas
celulares de activación inmunitaria in vitro, evaluaron los
oligodesoxinucleótidos de SII en la estimulación inmunitaria
inducida por CpG. Yamada et al. descubrieron que la
supresión por parte de los oligodesoxinucleótidos de SII predomina
sobre la estimulación por los oligodesoxinucleótidos y es
específica para las respuestas inmunitarias inducidas por CpG.
Descubrieron que las secuencias de oligonucleótidos más supresoras
contenían secuencias ricas en G-C ó poliG, pero no
se descubrió ningún motivo hexamérico específico. Krieg et
al., PNAS, 95: 12631-12636, 1998, descubrió que
los oligonucleótidos sintéticos que contenían motivos
neutralizadores definidos por él como dinucleótidos CpG en regiones
de repetición directa o con una C en el lado 5' ó una G en el lado
3', podían bloquear la activación inmunitaria mediante motivos CpG
inmunoestimuladores. De nuevo, no se descubrió ninguna secuencia
inmunoinhibidora hexamérica. En Zeuner et al., Arthritis and
Rheumatism, 46: 2219-2224, 2002, la SII descrita por
Kreig et al. más arriba, demostró que reducía la artritis
inducida por CpG en un modelo animal. En US 6.225.292, Raz et
al. describen un motivo hexamérico específico designado
5'-purina-purina-[Y]-[Z]-pirimidina-pirimidina-3'
donde Y es cualquier nucleótido excepto la citosina, y Z es
cualquier nucleótido, en el que cuando Y no es guanosina o inosina,
Z es guanosina o inosina, que bloquea la actividad estimuladora de
las secuencias inmunoestimuladoras CpG. En cada uno de los ejemplos
anteriores, se demostró que la SII inhibe de forma específica la
activación inmunitaria provocada por las secuencias CpG
estimuladoras.
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Terapia antisentido: Los oligonucleótidos
antisentido se diseñaron originariamente como algo complementario a
los genes objetivo específicos para disminuir su expresión (Krieg,
Annu. Rev. Immunol., 20: 709-760, 2002). Para
impedir la degradación de estos oligonucleótidos, se modificaron en
general las espinas dorsales, tales como a una espina dorsal de
fosforotioato. Aunque en muchos casos los oligonucleótidos
antisentido sí suprimieron la expresión de los genes objetivo en
las células de los cultivos tisulares, los experimentos in
vivo tuvieron menos éxito a la hora de alterar la expresión. En
vez de ello, muchos investigadores descubrieron de forma imprevista
que algunos de estos oligonucleótidos estimulaban la respuesta
inmunitaria in vivo. Por ejemplo, el oligonucleótido
antisentido contra el gen rev del virus de la inmunodeficiencia
humana (VIH) tenía un efecto inmunoestimulador tal y como se
manifestaba por el aumento de la proliferación de células B y la
esplenomegalia (Branda et al., Biochem. Pharmacol., 45:
2037-2043, 1993). Aunque se identificó ningún motivo
secuencial inmunoestimulador inmediato en estos primeros estudios,
estos descubrimientos llevaron a la eventual búsqueda de motivos
inmunoestimuladores específicos.
Terapia génica: Se han utilizado
terapéuticas con polinucleótidos, incluyendo ADN desnudo que
codifica péptidos y/o polipéptidos, ADN formulado en agentes
facilitadores de precipitación - y transfección-, y vectores
virales para la "terapia génica". La terapia génica es la
administración de un polinucleótido para proporcionar la expresión
de una proteína o péptido, para sustituir una proteína o péptido
defectuoso o ausente en el huésped y/o para aumentar una función
fisiológica que se desee. La terapia génica incluye métodos que dan
por resultado la integración del ADN en el genoma de un individuo a
efectos terapéuticos. Ejemplos de terapia génica incluyen la
administración de ADN que codifica factores de coagulación para la
hemofilia, adenina deaminasa para la inmunodeficiencia combinada
grave, el receptor de lipoproteínas de baja densidad para la
hipercolesterolemia familiar, glucocerebrosidasa para la enfermedad
de Gaucher, \alpha1-antitripsina para la
deficiencia de \alpha1-antitripsina, genes de la
globina alfa o Beta para hemoglobinopatías, y los canales de cloruro
para la fibrosis quística (Verma y Somia, Nature, 389,
239-42, 1997).
Inmunización con ADN para tratar
infecciones: En la inmunización con ADN una unidad de
transcripción no replicante puede proporcionar el patrón para la
síntesis de proteínas o segmentos de proteínas que inducen o
proporcionan respuestas inmunitarias específicas en el huésped. La
inyección de ADN desnudo promueve la vacunación contra una
diversidad de microbios y tumores (Robinson y Torres, Semin Immunol,
9, 271-83, 1997). Las vacunas con ADN que codifican
proteínas específicas, presentes en los virus (el virus de la
hepatitis B, el virus de la inmunodeficiencia humana, el rotavirus,
y el virus de la gripe), las bacterias (mycobacterium
tuberculosis), y los parásitos (Malaria), todos ellos antígenos
exógenos, están siendo desarrolladas para prevenir y tratar estas
infecciones (Le et al., Vaccine, 18,
1893-901, 2000); (Robinson y Pertmer, Adv Virus Res,
55, 1-74, 2000).
ADN para tratar la neoplasia: Las vacunas
con ADN que codifican el antígeno principal de histocompatibilidad
de clase I, las citoquinas (IL-2,
IL-12 e IFN-gamma), y los antígenos
tumorales, están siendo desarrolladas para tratar la neoplasia
(Wlazlo y Ertl, Arch Immunol Ther Exp, 49: 1-11,
2001). Por ejemplo, se ha administrado ADN viral que codifica el
idiotipo de la inmunoglobulina de células B (región de unión a
antígeno) para eliminar y proteger contra los linfomas de células B
(Timmerman et al., Blood, 97: 1370-1377,
2001).
Inmunización con ADN para tratar las
enfermedades autoinmunes: Otras personas han descrito terapias
con ADN que codifican moléculas inmunitarias para tratar
enfermedades autoinmunes. Dichas terapias con ADN incluyen ADN que
codifica regiones de unión a antígeno del receptor de células T para
alterar los niveles de células T autoreactivas que conducen la
respuesta autoinmune (Waisman et al., Nat Med, 2:
899-905, 1996) (Patente estadounidense 5.939.400).
El ADN que codifica autoantígenos se adjuntó a partículas y se
administró mediante una pistola génica a la piel para prevenir la
esclerosis múltiple y la artritis colágeno-inducida.
(Patente WO 97/46253) (Ramshaw et al., Immunol. and Cell
Bio., 75: 409-413, 1997). Se han utilizado ADN que
codifica moléculas de adhesión, citoquinas (TNF alfa), quimioquinas
(quimioquinas C-C) y otras moléculas inmunitarias
(ligando Fas) para tratar modelos animales de las enfermedades
autoinmunes (Youssef et al., J Clin Invest, 106:
361-371, 2000); (Wildbaum et al., J Clin
Invest, 106: 671-679, 2000); (Wildbaum et
al., J Immunol, 165: 5860-5866, 2000); (Wildbaum
et al., J Immunol, 161: 6368-7634, 1998);
(Youssef et al., J Autoimmun, 13: 21-9,
1999).
Es un objeto de la presente invención el
proporcionar un método y composición para tratar o prevenir una
enfermedad, en particular una enfermedad autoinmune o inflamatoria,
lo que implica la administración de ácidos nucleicos
inmunomoduladores.
Otro objeto de esta invención es el de
proporcionar los medios de identificación de las secuencias
inmunomoduladores para tratar la enfermedad. Aún otro objeto de
esta invención es el de proporcionar el método y los medios para
tratar una enfermedad relacionada con autoproteína(s),
autopolipéptido(s) o autopéptido(s) que está(n)
presente(s) e implicado(s) en un proceso no
fisiológico en un animal y que implica la administración de una
secuencia inmunomoduladora en combinación con un polinucleótido que
codifica autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
péptido(s). Otro objeto de la presente invención es el de
proporcionar una composición para tratar o prevenir una enfermedad
relacionada
con autoproteína(s), autopolipéptido(s) o autopéptido(s) que está(n) presente(s) de forma no fisiológica en un animal.
con autoproteína(s), autopolipéptido(s) o autopéptido(s) que está(n) presente(s) de forma no fisiológica en un animal.
La invención además hace referencia al
tratamiento o prevención de enfermedades implicando la
administración de los ácidos nucleicos inmunomoduladores en
combinación con automolécula(s). Éstos y otros objetos de
esta invención serán evidentes a partir del conjunto de las
reivindicaciones.
\vskip1.000000\baselineskip
La invención proporciona un método para elaborar
un vector plasmídico, método que consiste en modificar un vector que
contiene un motivo CpG de la fórmula
5'-purina-pirimidina-C-G-pirimidina-pirimidina-3'
para sustituir una citosina por una no citosina dentro del
dinucleótido CpG, en el que el vector además está compuesto por un
polinucleótido que codifica una proteína mielina o una proteína
insulina. La invención además proporciona un vector pVAX1^{TM}
modificado que está compuesto por los siguientes nucleótidos en la
espina dorsal del vector:
- G
- en los nucleótidos 784, 1161, 1218 y 1966;
- A
- en los nucleótidos 1264, 1337, 1829, 1874, 1940 y 1997; y
- T
- en los nucleótidos 1963 y 1987, y
- G
- en los nucleótidos 1831, 1876, 1942 y 1999.
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Además, la invención proporciona una composición
farmacéutica que está compuesta por dicho vector modificado.
Pueden utilizarse composiciones de la invención
en la fabricación de un medicamento para el tratamiento de una
enfermedad autoinmune seleccionada de entre la esclerosis múltiple y
la diabetes mellitus insulinodependiente.
Pueden utilizarse composiciones de la invención
en un método para tratar una enfermedad autoinmune seleccionada de
entre la esclerosis múltiple y la diabetes mellitus
insulinodependiente.
La presente invención está basada en el
descubrimiento de que las secuencias inmunomoduladoras solas o
combinadas podrían utilizarse para prevenir o tratar enfermedades
autoinmunes o inflamatorias relacionadas con las automoléculas. No
se había apreciado hasta esta invención que las secuencias
inmunomoduladoras que contienen un dinucleótido GpG u otro
dinucleótido modulador tal y como se describe en el presente
documento en ciertos motivos secuenciales inmunomoduladores pueden
utilizarse para prevenir o tratar enfermedades autoinmunes o
inflamatorias que no dependen de la estimulación inmediata o
concurrente de SII (p. ej., ADN microbiano o vectores recombinantes
que contienen CpGs). Algunos ejemplos de los motivos secuenciales
inmunomoduladores son:
5'-Purina-Pirimidina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pirimidina-3';
y,
5'-Purina-Purina-[Y]-[Z]-Pirimidina-Pirimidina-3'.
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Los objetos de la presente invención se
consiguen mediante una novedosa composición para tratar o prevenir
una enfermedad, específicamente una enfermedad autoinmune o
inflamatoria, que está compuesta por ácidos nucleicos
inmunomoduladores que tienen una o más secuencias inmunomoduladoras.
Los ácidos nucleicos inmunomoduladores pueden administrarse solos o
en combinación con un polinucleótido que codifica
autoproteína(s), autopolipéptido(s),
autopéptido(s). Los ácidos nucleicos inmunomoduladores
también pueden administrarse en combinación con otras automoléculas
para tratar una enfermedad autoinmune o inflamatoria relacionada con
una o más automoléculas que está(n) presente(s) en el
individuo de forma no fisiológica. La invención además hace
referencia a composiciones farmacéuticas para el tratamiento o
prevención de una enfermedad autoinmune o inflamatoria en las que la
composición farmacéutica está compuesta por una secuencia
inmunomoduladora en forma de un polinucleótido, tal como un
polinucleótido de ADN. La secuencia inmunomoduladora también puede
estar incorporada dentro de un vector, mediante la modificación de
elementos de la secuencia de nucleótidos de un vector para incluir
motivos secuenciales inmunomoduladores que están compuestos además
por un motivo dinucleótido inhibidor cuando se utiliza en el
contexto de enfermedades relacionadas con automoléculas presentes en
el sujeto de forma no fisiológica, tal como en las enfermedades
autoinmunes o inflamatorias.
Otros objetos de la presente invención se
consiguen mediante una novedosa composición para su uso a la hora de
tratar o prevenir la esclerosis múltiple o la diabetes mellitus
insulinodependiente, que son enfermedades relacionadas con una o más
autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
autopéptido(s) presente(s) en el animal de forma no
fisiológica, comprendiendo dicho tratamiento la administración al
animal de una secuencia inmunomoduladora.
La solicitud además hace referencia a un
novedoso método para tratar o prevenir una enfermedad en un animal
relacionada con una o más autoproteína(s),
autopolipéptido(s) o péptido(s) que está(n)
presente(s) en el animal de forma no fisiológica y que
comprende la administración al animal de una secuencia
inmunomoduladora en combinación con un polinucleótido que codifica
la(s) autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
autopéptido(s).
En un aspecto de la invención se proporciona una
composición para tratar o prevenir la esclerosis múltiple, la
diabetes mellitus insulinodependiente, comprendiendo dicho
tratamiento o prevención la administración al animal de una
secuencia inmunomoduladora bien sola o en combinación con un
autovector compuesto por un polinucleótido que codifica
una(s) autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
autopéptido(s) relacionados con la enfermedad autoinmune. En
otro aspecto de la invención la secuencia inmunomoduladora es para
administrarla en combinación con un polinucleótido compuesto por
ADN que codifica la(s) autoproteína(s),
autopolipéptido(s) o péptido(s) presente(s) en
el sujeto en un estado no fisiológico y relacionados con una
enfermedad.
En otro aspecto de la solicitud se proporciona
aquí un método para tratar o prevenir enfermedades inflamatorias
tales como la osteoartritis, la gota, la pseudogota, la enfermedad
de la deposición de hidroxiapatita, el asma, la bursitis, la
tendonitis, la conjuntivitis, la uretritis, la cistitis, la
balanitis, la dermatitis, la enfermedad arterial coronaria o las
migrañas comprendiendo la administración al animal de una secuencia
inmunomoduladora, bien sola o en combinación.
En aún otro aspecto de la solicitud se
proporciona un método para tratar o prevenir enfermedades
relacionadas con el trasplante de células u órganos incluyendo pero
sin limitarse a la EICH o el rechazo a trasplantes que comprende la
administración al animal de una secuencia inmunomoduladora, bien
sola o en combinación con un autovector compuesto por un
polinucléotido que codifica una(s) autoproteína(s),
autopolipéptido(s) o autopéptido(s) relacionados con
la EICH o el rechazo a los trasplantes. La administración de la
secuencia inmunomoduladora y del autovector compuesto por un
polinucléotido que codifica la(s) autoproteína(s),
autopolipéptido(s) o autopéptido(s) modula una
respuesta inmunitaria ante la(s) autoproteína(s),
autopolipéptido(s) o autopéptido(s) expresados por el
autovector.
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Figura 1: La SIM (SIM inhibidora) suprime la
proliferación esplenocítica al completo con mediación de la SIE
(ODN-CpG) y depende de RPT-9.
(A) Se cultivaron esplenocitos completos con ODN-CpG
estimuladores y concentraciones cada vez mayores de SIM inhibidora
tal y como se indica durante 72 h. Se sometió a los pocillos a
impulsos con 1 \muCi[^{3}H]TdR durante las últimas
16 h de cultivo antes de medir la radioactividad incorporada. Cada
punto de datos representa la media de pocillos triplicados +/- SD.
(B) Se aislaron y cultivaron esplenocitos completos de ratones de
tipo salvaje con RPT-9 (barras sombreadas) y KO con
RPT-9 (barras negras) con ODN-CpG
estimuladores, SIM inhibidora o LPS durante 72 h. Se sometió a los
pocillos a impulsos con 1 \muCi[^{3}H]TdR durante
las últimas 16 h de cultivo antes de medir la radioactividad
incorporada. Cada punto de datos representa la media de pocillos
triplicados +/- SD. (C) La SIM inhibe la fosforilación de
l\kappaB-\alpha en Serina 32. Se cultivaron
esplenocitos naive en presencia del oligo indicado a 5 \mug/ml
durante 72 h. La fosforilación de
l\kappaB-\alpha en Serina 32 se determinó
mediante el análisis de inmunoelectrotransferencia de tipo Western
de 20 \mug de cada extracto de proteína.
l\kappaB-\alpha se activa en presencia de la CpG
estimuladora (carril 2) o CpG estimuladora y oligo de control
(carril 6), pero se reduce su activación con la adición de la SIM al
oligo CpG estimulador (carril 5).
Figura 2: La SIM inhibidora reduce el CPH de
clase II de la superficie celular y la expresión molecular
co-estimuladora. (A) Se cultivaron esplenocitos
naive en ausencia o presencia de o bien ODN-CpG
estimuladores (5 \mug/ml) o SIM inhibidora (5 \mug/ml). Las
células se recogieron tras 72 h. El ADNc se sintetizó a partir de
ARN purificado para el análisis de RCP cuantitativo. La cantidad de
ARN para el CPH de clase II se indica como las unidades relativas en
comparación con la cantidad de \beta-actina
presente en cada muestra. (B) Se cultivaron esplenocitos naive en
presencia de la cantidad indicada de cada oligonucleótido (en
\mug/ml). El porcentaje de células positivas para la expresión del
CPH de clase II se analizó mediante FACS, y tal y como se muestra
existe una inhibición dosis-dependiente de la
expresión del CPH de clase II con unas concentraciones cada vez
mayores del oligonucleótido inhibidor. (C a F) Efecto de la SIM
inhibidora (oligo inhibidor) sobre la expresión de los marcadores de
activación de la CPA. Se cultivaron esplenocitos naive con las
concentraciones indicadas de ODN-CpG estimuladores,
SIM inhibidora, u ODN de control. Se recogieron las células tras 72
h. Se utilizó el análisis mediante escáner FACScan para evaluar la
expresión de CD40 (C), CD80 (D), CD86 (E) y CD1d (F). Hay una
reducción dosis-dependiente en la expresión de CD40,
CD80 y CD86, pero un incremento dosis-dependiente en
la expresión de CDId con la SIM inhibidora.
Figura 3: La SIM inhibidora suprime la
producción de citoquinas Th1. Se cultivaron esplenocitos naive
con las concentraciones indicadas de ODN-CpG
estimuladora, SIM inhibidora u ODN de control. Se recogieron los
sobrenadantes tras 72 h. La producción de IL6 (A) e IL12p40 (B) se
midió mediante ELISA. Tal y como se indica, existe una inhibición
dosis-dependiente de la producción tanto de IL6 como
de IL12p40 con concentraciones cada vez mayores de la SIM. Cada
punto de datos representa la media de pocillos triplicados.
Figura 4: La terapia preventiva con SIM
inhibidora suprime la EAE mediada por
PPL_{139-151}. Se inmunizó a ratones SJL/J de
forma subcutánea con 100 \mug de péptido de
PPL_{139-151} en solución salina tamponada con
fosfato (SSTF) emulsionada en adyuvante completo de Freund (ACF). Se
administraron de forma intraperitoneal 50 \mug de la SIM
resuspendida en SSTF catorce y siete días antes de la inmunización
con péptidos. Se clasificó clínicamente a los animales a diario.
Grado 1, parálisis de la cola, grado 2, paraparesia en las patas
traseras, grado 3, parálisis de las patas traseras, grado 4,
parálisis completa (tetraplegia), grado 5, muerte.
Figura 5: La terapia preventiva con SIM
inhibidora suprime la EAE mediada por
PPL_{139-151}. Se inmunizó a ratones SJL/J de
forma subcutánea con 100 \mug de péptido de
PPL_{139-151} en ACF que constaba de adyuvante
incompleto de Freund y 0,5 mg de Mycobacterium tuberculosis
inactivada por calor. Se administraron de forma intraperitoneal 50
\mug de los ODN indicados resuspendidos en SSTF el mismo día (día
0) como la inmunización con péptidos. Se clasificó clínicamente a
los animales a diario. Grado 1, parálisis de la cola, grado 2,
parapesia en las patas traseras, grado 3, parálisis de las patas
traseras, grado 4, parálisis completa (tetraplegia), grado 5,
muerte.
Figura 6: Los efectos de la proliferación
diferencial de la SIM sobre las células T
antígeno-específicas purificadas. (A) La SIM
inhibidora suprime las células Th1. Se co-cultivaron
esplenocitos completos naive con péptido de
PPL_{139-151} y los ODN indicados durante 24 h.
Después de la radiación de los esplenocitos cargados de péptidos, se
añadió una línea celular Th1 específica de
PPL_{139-151} durante otras 72 h. La SIM no
estimula la proliferación celular Th1 y de hecho disminuye
ligeramente la proliferación inducida por ODN-CpG.
(B) Por contraste, la SIM inhibidora no inhibe la proliferación de
una línea celular Th2 específica de PPL_{139-151}.
Se debe tener en cuenta que los ODN-CpG reducen la
proliferación de esta línea celular Th2. En cada uno de estos tres
experimentos, se sometió a los pocillos a impulsos con 1
\muCi[^{3}H]TdR durante las últimas 16 h de
cultivo antes de medir la radioactividad incorporada. Cada punto de
datos representa la media de pocillos triplicados +/- SD.
Figura 7: Las modificaciones en el vector
pBHT1 reducen la actividad proliferativa de los esplenocitos.
(A) Se cultivaron esplenocitos completos con oligonucleótido CpG
estimulador y oligonucleótido GpG inmunomodulador durante 24 h. Se
sometió a los pocillos a impulsos con 1
\muCi[^{3}H]-timidina durante las últimas
4 h de cultivo antes de medir la radioactividad incorporada. El
índice de estimulación se calculó basándose en el grado de
proliferación sobre la proliferación de los esplenocitos incubados
solamente con el medio. (B) Se cultivaron esplenocitos completos con
el vector vacío pVAX1 o el vector vacío pBHT1 en las concentraciones
indicadas durante 24 h. Se sometió a los pocillos a impulsos con 1
\muCi[^{3}H]-timidina durante las últimas
4 h de cultivo antes de medir la radioactividad incorporada. El
índice de estimulación se calculó basándose en el grado de
proliferación sobre la proliferación de los esplenocitos incubados
solamente con el medio.
Figura 8: La activación reducida de las CPA
con el vector pBHT1. Se cultivaron esplenocitos naive con 10
\mug/ml de oligonucléotido CpG o GpG (A) o 100 \mug/ml de pVAX1
o pBHT1 durante 48 horas. Se recogieron las células, se tiñeron o
expresión de CD16/32 y análisis mediante escáner FACScan. La gráfica
sin marcar representa las células incubadas solamente con el
medio.
Figura 9: La producción reducida de
citoquinas con el vector pBHT1. Se cultivaron esplenocitos naive
con 10 \mug/ml de oligo CpG estimulador, oligo GpG
inmunomodulador, 100 \mug/ml de ADN pVAX1 ó 100 \mug/ml de ADN
pBHT1. Se recogieron los sobrenadantes tras los tiempos indicados y
se midió la producción de IL6, IL10 e IFN\gamma mediante sándwich
ELISA. Cada punto de datos representa la media de pocillos
triplicados.
Figura 10: El vector pBHT1 que codifica un
autoantígeno reduce la gravedad de la EAE. El ADN que codifica
el autoantígeno, PPL (proteína proteolipídica) de ratón, se
incorporó dentro del vector pBHT1 y se administró de forma
intramuscular a ratones SJL. Se indujo primero a los ratones para la
EAE con el péptido de PPL_{139-151} en ACF
(adyuvante completo de Freund) en el día 0, y después, varios días
tras la aparición de la enfermedad (en el día 20) se les dividió de
forma aleatoria en diferentes grupos de tratamiento. Se
administraron entonces de forma intramuscular cincuenta \mug de
PPL de ratón codificado dentro del vector pBHT1 o cincuenta \mug
de un vector pBHT1 de control vacío en tres frecuencias de dosis
diferentes: (A) una vez a la semana, (B) una vez cada dos semanas, y
(C) una vez cada cuatro semanas. A los ratones se les clasificó a
diario con referencia a la gravedad de la enfermedad de la EAE en
una escala del 1 al 5 y la puntuación media de la enfermedad de un
grupo del tratamiento es el que aparece la gráfica. Hay una
reducción en la puntuación media de la enfermedad en todos los
grupos del tratamiento, más notablemente en una frecuencia de cada
dos o cada cuatro semanas.
Figura 11: La terapia con polinucleótidos con
SIM inhibidora suprime la EAE mediada por
PPL_{139-151}. En el día 0, se inmunizó de
forma subcutánea a ratones SJL/J hembras de siete semanas de edad
con 100 \mug de PPL_{139-151} en SSTF
emulsionada en ACF, consistiendo en AIF y 0,5 mg de Mycobacterium
tuberculosis inactivada por calor. Se clasificó clínicamente a
los animales a diario comenzando en el día 7. En el día 12, se
inyectó a los ratones en ambos cuádriceps un total de 0,1 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectaron de forma intramuscular a ratones seleccionados
en ambos cuádriceps el polinucleótido de ADN que codifica PPL, MAG,
MOG y PBM murinas completas cada una de ellas en un plásmido pTARGET
diferente (25 \mug de cada) más 50 \mug de plásmido pTARGET que
codifica IL-4 murino completo en un volumen total de
0,2 ml de TE. Las inyecciones de ADN se pusieron en intervalos
semanales durante seis semanas. Al mismo tiempo que el tratamiento
inicial con ADN, se administraron de forma intraperitoneal 50 \mug
de SIM en un volumen de 200 \mul en SSTF solo o con tratamiento
con polinucleótido de ADN. La SIM se administró cada dos semanas
durante seis semanas.
Figura 12: El perfil de las citoquinas de los
grupos tratados de EAE. Cincuenta y siete días después de la
inducción de la enfermedad de la EAE, los ratones fueron
sacrificados y se extrajeron nódulos linfáticos inguinales y
axilares de cada ratón y se agruparon de conformidad con los grupos
respectivos. Se aislaron las células y se estimularon con 10
\mug/ml en PPL_{139-151} en medios RPMI
enriquecidos y SFB al 10%. Tres días más tarde, se recogieron los
sobrenadantes de las células y se sometieron a ensayo en busca de
los perfiles de las citoquinas mediante sándwich ELISA utilizando
kits ELISA de (A) IFN-gamma, (B)
IL-4 y (C) IL-10 murinos estándar
de BD Pharmingen.
Figura 13: El análisis de dispersión de
epítopos de autoanticuerpos de mielina utilizando tecnología de
microsecuencia proteica. Catorce días tras la aparición de y
después de la recuperación parcial de la EAE paralítica aguda
inducida con PPL_{139-151}, se trató a los ratones
SJL/J semanalmente con vehículo de SSTF, SIM, pTARGET que expresa
PBM, PPL, MOG, y MAG (DPT) e IL-4; DPT e
IL-4 más SIM; DPT e IL-4 más CpG.
Después de las seis semanas de tratamiento, se obtuvo suero de cada
grupo del tratamiento incluyendo suero normal de ratón (SNR), se
llevó a cabo el análisis de microsecuencia proteica de mielina y se
utilizó SAM para identificar y crear un análisis conjunto
jerárquico para ordenar las características del antígeno.
Figura 14: La SIM inhibidora sola y en
combinación con la terapia con polinucleótidos suprime la EAE
mediada por PPL_{139-151}. En el día 0, se
inmunizó de forma subcutánea a ratones SJL/J hembras de siete
semanas de edad con 100 \mug de PPL_{139-151} en
SSTF emulsionada en ACF, consistente en AIF y 0,5 mg de
Mycobacterium tuberculosis inactivada por calor. Se clasificó
clínicamente a los animales a diario comenzando en el día 7. En el
día 14, se inyectó a los ratones en ambos cuádriceps un total de 0,1
ml de Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectaron de forma intramuscular a ratones seleccionados
en ambos cuádriceps el polinucleótido de ADN que codifica PPL, MAG,
MOG y PBM murinas completas cada una de ellas en un plásmido pTARGET
diferente (25 \mug de cada) más 50 \mug de plásmido pTARGET que
codifica IL-4 murino completo en un volumen total de
0,2 ml de TE. Las inyecciones de ADN se pusieron en intervalos
semanales durante seis semanas. Al mismo tiempo que el tratamiento
inicial con ADN, se administraron de forma intraperitoneal 50 \mug
de SIM en un volumen de 200 \mul en SSTF solo (A), o con
tratamiento con polinucleótido de ADN (B). La SIM se administró cada
dos semanas durante seis semanas.
Figura 15: La terapia con polinucléotido de
ADN y SIM trata la diabetes en los ratones NOD. Se obtuvieron
ratones hembras NOD/Lt a las 7 semanas de edad y se metieron en una
habitación de acceso restringido. Los ratones se sometieron a ensayo
semanal en busca de niveles elevados de glucosa en sangre (BGL)
comenzando a las 10 semanas de vida y utilizando el Sistema de
Monitorización de la Glucosa Sanguínea One Touch Ultra. Se inició el
tratamiento cuando el BGL estaba entre 200 y 250 mg/dl. Se fueron
añadiendo ratones de forma secuencial a cada grupo a medida que
estaban disponibles, comenzando a la edad de 15 semanas. Se inyectó
a los ratones en ambos cuádriceps un total de 0,2 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectó a los ratones de forma intramuscular en ambos
cuádriceps bien con: 1) polinucleótido de ADN que codifica
preproinsulina-1 y preproinsulina-2
murinas completas cada una en un vector pVAX1 diferente a 50
\mug/dosis; o, 2) polinucléotido de ADN que codifica
preproinsulina-1 y preproinsulina-2
murinas completas cada una en un vector pVAX1 diferente a 50
\mug/dosis más un plásmido pVAX1 que codifica IL4 en un volumen
total de 0,2 ml de SSTF. Las inyecciones se pusieron en intervalos
semanales durante cuatro semanas. Al mismo tiempo que el tratamiento
inicial con ADN, se administraron de forma intraperitoneal 50 \mug
de SIM en un volumen de 200 \mul en SSTF solo o con tratamiento
con polinucleótido de ADN. La SIM se administró en intervalos
semanales durante cuatro semanas. Se examinó el porcentaje de
supervivencia sobre la progresión de la diabetes observada durante
nueve semanas tras el tratamiento inicial (A). El porcentaje
diabético en la semana 29 de edad se define como los ratones con un
BGL constante de más de 250 mg/dl (B).
Figura 16: La terapia con polinucléotido de
ADN y SIM trata la diabetes en los ratones NOD. Se obtuvieron
ratones hembras NOD/Lt a las 7 semanas de edad y se metieron en una
habitación de acceso restringido. Los ratones se sometieron a ensayo
semanal en busca de niveles elevados de glucosa en sangre (BGL)
comenzando a las 10 semanas de vida y utilizando el Sistema de
Monitorización de la Glucosa Sanguínea One Touch Ultra. Se inició el
tratamiento cuando el BGL estaba entre 200 y 250 mg/dl. Se fueron
añadiendo ratones de forma secuencial a cada grupo a medida que
estaban disponibles, comenzando a la edad de 15 semanas. Se inyectó
a los ratones en ambos cuádriceps un total de 0,2 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectó a los ratones de forma intramuscular en ambos
cuádriceps bien con: 1) SSTF tratado, 2) plásmido pVAX1 vacío a 200
ug/dosis, 3) SIM a 50 ug/dosis administrado de forma intramuscular,
4) la combinación de plásmido pVAX1 vacío más SIM (de forma
intramuscular), 5) la combinación de polinucleótido de ADN que
codifica preproinsulina-1 y
preproinsulina-2 murinas completas cada una en un
vector pVAX1 diferente a 50 \mug/dosis, 6) la combinación de
polinucleótido de ADN más SIM (de forma intramuscular), 7) la
combinación de polinucleótido de ADN más 50 \mug/dosis de un
plásmido pVAX1 que codifica IL-4, 8) la combinación
de polinucleótido de ADN más IL-4 más SIM (de forma
intramuscular), 9) la combinación de polinucleótido de ADN más
IL-4 y una inyección intraperitoneal por separado de
50 \mug/dosis de SIM con un volumen total de 0,2 ml en SSTF.
Todas las inyecciones se pusieron en intervalos
semanales durante ocho semanas. El porcentaje diabético se define
como los ratones con un BGL constante de más de 250 mg/dl. Se
examinó el porcentaje de supervivencia sobre la progresión de la
diabetes observada durante ocho semanas tras el tratamiento
inicial.
Figura 17: La terapia con ADN con SIM
inhibidora suprime la ACI inducida por colágeno de Tipo II. Se
pre-trataron grupos de 20 ratones DBA/1 machos de
seis semanas de vida de forma intramuscular con 50 \mug de las
vacunas de ADN indicadas 14 y 7 días antes de inducir la ACI con CII
emulsionado en Adyuvante Completo de Freund. Los ratones recibieron
una tercera dosis de la vacuna tolerizante de ADN 1 semana después
de la inducción de la ACI. A los ratones se les dio una dosis de
refuerzo 2 semanas más tarde con CII emulsionado en Adyuvante
Incompleto de Freund. Se puntuó la artritis utilizando el sistema de
clasificación visual tal y como se describe en Current Protocols in
Immunology (los protocolos actuales de inmunología). (A) El ADN que
codifica el colágeno de tipo II (CII) al completo en combinación con
el ADN que codifica IL-4 con y sin SIM, dio por
resultado reducciones significativas en la gravedad media de la
artritis en comparación con los grupos de control tratados con el
vector de la vacuna de ADN (pTarget) +
IL-4 con o sin SIM. (B) El porcentaje global de incidencia de la enfermedad era equiparable en todos los grupos.
IL-4 con o sin SIM. (B) El porcentaje global de incidencia de la enfermedad era equiparable en todos los grupos.
Figura 18: Ensayo de proliferación de grupos
tratados de ACI. Veintisiete días después de la dosis de
refuerzo de inmunización a ACI, los ratones fueron sacrificados y se
extrajeron nódulos linfáticos inguinales y axilares de cada ratón y
se agruparon de conformidad con los grupos respectivos. Se aislaron
las células y se estimularon con 100 \mug/ml de colágeno de tipo
II desnaturalizado en medios RPMI enriquecidos y SFB al 10% durante
72 horas. Se sometió a las células a impulsos con 1
\muCi[^{3}H]TdR durante las últimas 16 h de
cultivo antes de medir la radioactividad incorporada. Cada punto de
datos representa la media de pocillos triplicados +/- SD.
Figura 19: Perfil de citoquinas de grupos
tratados de ACI. Veintisiete días después de la dosis de
refuerzo de inmunización a ACI, los ratones fueron sacrificados y se
extrajeron nódulos linfáticos inguinales y axilares de cada ratón y
se agruparon de conformidad con los grupos respectivos. Se aislaron
las células y se estimularon con 100 \mug/ml de colágeno de tipo
II desnaturalizado en medios RPMI enriquecidos y SFB al 10% durante
72 horas. Se recogieron los sobrenadantes y se sometieron a ensayo
en busca de los perfiles de las citoquinas mediante sándwich ELISA
utilizando kits ELISA de (A) IL-6, (B)
IL-4, (C) IFN-gamma y (D)
TNF-alfa murinos estándar de BD Pharmingen.
Figura 20: La terapia con ADN con SIM
inhibidora suprime la ACI inducida por colágeno de Tipo II. Se
pre-trataron grupos de 20 ratones DBA/1 machos de
seis semanas de vida de forma intramuscular con 50 \mug de las
vacunas de ADN indicadas y de forma intraperitoneal con SIM 14 y 7
días antes de inducir la ACI con CII emulsionado en Adyuvante
Completo de Freund. Los ratones recibieron una tercera dosis de la
vacuna tolerizante de ADN y SIM 1 semana después de la inducción de
la ACI. A los ratones se les dio una dosis de refuerzo 2 semanas más
tarde con CII emulsionado en Adyuvante Incompleto de Freund. Se
puntuó la artritis utilizando el sistema de clasificación visual tal
y como se describe en Current Protocols in Immunology (los
protocolos actuales de inmunología). (A) Los ratones tratados con
SIM, dieron por resultado reducciones significativas en la gravedad
media de la artritis en comparación con el grupo de control no
tratado y el grupo tratado con ADN que codifica el colágeno de tipo
II (CII) al completo en combinación con SIM. (B) El porcentaje
global de incidencia de la enfermedad disminuyó en el grupo tratado
con SIM en comparación con los otros dos grupos equiparables.
Figura 21: La SIM inhibidora suprime la
proliferación de células B mediada por SIE
(ODN-CpG). Se aislaron células B primarias del
bazo mediante una técnica de lavado en batea de células B estándar
utilizando IgG e IgM anti-ratón de cabra, anticuerpo
específico de cadena ligera y pesada con gammaglobulina de cabra
como proteína portadora, y se determinó una pureza >97% de
células B220+ mediante análisis de escáner FACScan. Se cultivaron
las células B con 5 ug/ml del oligo indicado durante 72 h. Se
co-cultivó LPS a 100 ng/ml. Se sometió a los
pocillos a impulsos con 1 pCi[^{3}H]TdR durante las
últimas 16 h de cultivo antes de medir la radioactividad
incorporada. Cada punto de datos representa la media de pocillos
triplicados +/- SD.
Figura 22: La SIM inhibidora suprime la
producción de citoquinas Th1 de las células B. Se cultivaron
células B primarias naive con las concentraciones indicadas de
ODN-CpG estimuladores, SIM inhibidora u ODN de
control. Se recogieron los sobrenadantes tras 72 h. La producción de
IL6 (A), IFN-gamma (B), IL-10 (C) e
IL12p40 (D) se midió mediante ELISA. Cada punto de datos representa
la media de pocillos triplicados.
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Antes de describir la presente invención en
detalle, se debe comprender que esta invención no se limita a
parámetros de proceso o formulaciones específicos ya que pueden, por
supuesto, variar. También debe comprenderse que la terminología
utilizada en el presente documento es solamente a efectos de
describir las realizaciones concretas de la invención y no se
pretende que sea restrictiva.
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"Ácido nucleico" y "polinucleótido"
tal y como se utilizan en el presente documento son sinónimos y
hacen referencia a un polímero de nucleótidos (p. ej.
desoxinucleótidos, ribonucleótidos o análogos de los mismos).
"Oligonucleótido" tal y como se utiliza en
el presente documento hace referencia a un subconjunto de ácido
nucleico de desde aproximadamente 6 a aproximadamente 175
nucleótidos o más de largo. Los oligonucleótidos habituales poseen
una longitud de hasta aproximadamente 100 nucleótidos. Con
oligonucleótido se hace referencia tanto a los oligorribonucleótidos
como a los oligodesoxirribonucleótidos, denominados en lo sucesivo
ODNs. Los ODNs incluyen oligonucleósidos y otras bases orgánicas que
contienen polímeros.
Los nucleótidos son moléculas que constan de un
azúcar (preferentemente ribosa o desoxirribosa) unido a un grupo
fosfato y una base orgánica intercambiable, que puede ser o bien una
purina sustituida (guanina (G), adenina (A) o inosina (I)) o una
pirimidina sustituida (timina (T), citosina (C) o uracil (U)).
Secuencias Inmunomoduladoras (SIM). "Secuencia
inmunomoduladora" o "SIM" tal y como se utiliza en el
presente documento hace referencia a una secuencia de nucleótidos de
un ácido nucleico o región de un ácido nucleico que es capaz de
modular una enfermedad autoinmune o inflamatoria. Una SIM puede ser,
por ejemplo, un oligonucleótido o una secuencia de nucleótidos
incorporados a un vector. Un "ácido nucleico inmunomodulador"
tal y como se utiliza en el presente documento significa una
molécula de ácido nucleico que está compuesta de una o más SIMs.
Los términos "identidad" o "porcentaje de
identidad", en el contexto de dos o más secuencias polipeptídicas
o de ácido nucleico, hacen referencia a dos o más secuencias o
subsecuencias que son iguales o poseen un porcentaje específico de
residuos de aminoácidos o nucleótidos que son iguales, cuando se
comparan y alinean en busca de la máxima correspondencia, tal y como
se mide utilizando o bien un algoritmo de comparación de secuencias
tal como, por ejemplo, PILEUP ó BLAST o un algoritmo similar
(Véase, p. ej. Higgins y Sharp, CABIOS, 5:
151-153, 1989; Altschul et al., J. Mol.
Biol., 215: 403-410, 1990). La alineación óptima de
secuencias para la comparación puede llevarse a cabo, por ejemplo,
mediante el algoritmo de homología local de Smith y Waterman, Adv.
Appl. Math., 2: 482, 1981, mediante el algoritmo de alineación de la
homología de Needleman y Wunsch, J. Mol. Biol., 48: 443, 1970,
mediante el método de búsqueda de la similitud de Pearson y Lipman,
Proc. Nat'l. Acad. Sci. EE.UU., 85: 2444, 1988, mediante
implementaciones informatizadas de estos algoritmos (GAP, BESTFIT,
FASTA y TFASTA en el Paquete de Software de Genética de Wisconsin,
Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, Wisconsin) o
mediante inspección visual (véase, en general, Ausubel et
al., supra).
La frase "sustancialmente idénticas", en el
contexto de dos ácidos nucleicos o polipéptidos, hace referencia a
dos o más secuencias o subsecuencias que poseen al menos un 60%,
preferentemente al menos un 70%, más preferentemente al menos un
80%, y lo más preferentemente al menos un 90% o al menos un 95% de
identidad de nucleótidos o residuos de aminoácidos, cuando se
comparan y alinean en busca de la máxima correspondencia.
Preferentemente, la identidad sustancial existe sobre una región de
las secuencias que es al menos de aproximadamente 50 residuos de
largo, más preferentemente sobre una región de al menos
aproximadamente 100 residuos, y lo más preferentemente las
secuencias son sustancialmente idénticas sobre al menos
aproximadamente 150 residuos. En una realización preferente, las
secuencias son sustancialmente idénticas sobre la longitud total de
un ácido nucleico o polipéptido determinado. En ciertas
realizaciones de la invención, un ácido nucleico o polipéptido (p.
ej. autoproteína, autopolipéptido o autopéptido o un ácido nucleico
que codifica la autoproteína, autopolipéptido o autopéptido) es
sustancialmente idéntico a un ácido nucleico o polipéptido
específico que se revela en el presente documento.
"Automoléculas" tal y como se utiliza en el
presente documento incluye autolípidos,
autoproteína(s),
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificado(s) de forma post-traslacional. "Autoproteína(s), polipéptido(s), o péptido(s), o fragmento(s) o derivado(s)" incluyen proteína(s), polipéptido(s) o péptido(s) codificados dentro del genoma del animal; se producen o generan en el animal; pueden modificarse de forma post-traslacional en algún momento de la vida del animal; o están presentes en el animal de forma no fisiológica. El término "no fisiológico" o "de forma no fisiológica" cuando se utiliza para describir las autoproteínas, autopolipéptidos o autopéptidos de esta invención significa un cambio o desviación del rol o proceso normal en el animal para esa autoproteína, autopolipéptido o autopéptido. Cuando se hace referencia a la autoproteína, autopolipéptido o autopéptido como "relacionado con una enfermedad" o "implicado en una enfermedad" se entiende que significa que la autoproteína, autopolipéptido o autopéptido pueden modificarse en su forma o estructura y por consiguiente ser incapaces de llevar a cabo su rol o proceso fisiológico; o pueden estar implicados en la patofisiología del estado o enfermedad bien induciendo la patofisiología, mediando o facilitando un proceso patofisiológico; y/o siendo el objetivo de un proceso patofisiológico. Por ejemplo, en las enfermedades autoinmunes, el sistema inmunitario ataca de forma anómala las automoléculas tales como los autolípidos, autoproteína(s), autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s),
y la(s) autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificado(s) de forma post-traslacional, causando daños y disfunción de las células y tejidos en los que la automolécula se expresa y/o está presente. De manera alternativa, la molécula puede ella misma expresarse a niveles no fisiológicos y/o funcionar de forma no fisiológica. Por ejemplo, en las enfermedades neurodegenerativas las autoproteínas se expresan de forma anómala y se agrupan en lesiones en el cerebro causando de ese modo la disfunción neural. En otros casos, la automolécula agrava un estado o proceso no deseado. Por ejemplo en la osteoartritis, las autoproteínas incluyendo las colagenasas y las metaloproteinasas de matriz degradan de forma anómala el cartílago que cubre la superficie articular de las articulaciones. Ejemplos de modificaciones post-traslacionales de autoproteína(s), autopolipéptido(s) o autopéptido(s) son la glicosilación, la adición de grupos lipídicos, la defosforilación mediante fosfatasas, la adición de residuos de dimetilarginina, la citrulinación de filagrina y fibrina mediante peptidilarginina deiminasa (PAD); la fosforilación de alfa B-cristalina; la citrulinación de PBM; y la proteolisis de autoantígenos del LSE mediante caspasas y granzimas. Inmunológicamente, la autoproteína, autopolipéptido o autopéptido se considerarían todos ellos autoantígenos huésped y en condiciones fisiológicas normales son ignorados por el sistema inmunitario huésped a través de la eliminación, inactivación o falta de activación de las células inmunitarias que poseen la capacidad de reconocer los autoantígenos a través de un proceso designado "tolerancia inmunitaria". Autoproteína, autopolipéptido o autopéptido no incluye a las proteínas, polipéptidos o péptidos inmunitarios que son moléculas expresadas fisiológica, específica y exclusivamente por células del sistema inmunitario a efectos de regular la función inmunitaria. El sistema inmunitario es el mecanismo de defensa que proporciona los medios para producir respuestas rápidas, protectoras y enormemente específicas contra la miríada de microorganismos potencialmente patógenos que habitan el mundo animal. Ejemplos de proteína(s), polipéptido(s) o péptido(s) inmunitarios son las proteínas que comprenden el receptor de células T, las inmunoglobulinas, las citoquinas incluyendo las interleuquinas de tipo I, y las citoquinas de tipo II, incluyendo los interferones e IL-10, el TNF-\alpha, la linfotoxina, y las quimioquinas tales como la proteína-1alfa y beta inflamatoria macrófaga, la proteína monocito-quimiotáctica y RANTES, y otras moléculas directamente implicadas en la función inmunitaria tal como el ligando Fas. Existen ciertas proteínas, polipéptido(s) o péptido(s) inmunitarios que están incluidos en la autoproteínas, autopolipéptido o péptido de la invención y son los siguientes: glicoproteínas de membrana del CPH de clase I, glicoproteínas del CPH de clase II y osteopontina. La autoproteína, el autopolipéptido o autopéptido no incluyen proteínas, polipéptidos y péptidos que están ausentes en el sujeto, bien completamente o sustancialmente, debido a una deficiencia genética o adquirida causando así una afección metabólica o funcional, y se sustituyen o bien mediante la administración de dicha proteína, polipéptido o péptido o mediante la administración de un polinucleótido que codifica dicha proteína, polipéptido o péptido (terapia génica). Ejemplos de dichas afecciones incluyen la distrofia muscular de Duchenne, la distrofia muscular de Becker, la fibrosis quística, la fenilcetonuria, la galactosemia, la enfermedad de la orina de jarabe de arce y la homocistinuria. La autoproteína, autopolipéptido o péptido no incluyen proteínas, polipéptidos y péptidos expresados específica y exclusivamente por células que poseen características que las distinguen de sus homólogos normales, incluyendo: (1) la clonalidad, que representa la proliferación de una única célula con una alteración genética para formar un clon de células malignas, (2) la autonomía, que indica que el crecimiento no se está regulando de la forma adecuada, y (3) la anaplasia, o la falta de diferenciación celular coordinada normal. Las células poseen uno o más de los tres criterios antes mencionados y se denominan células neoplásicas, cancerígenas o malignas.
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificado(s) de forma post-traslacional. "Autoproteína(s), polipéptido(s), o péptido(s), o fragmento(s) o derivado(s)" incluyen proteína(s), polipéptido(s) o péptido(s) codificados dentro del genoma del animal; se producen o generan en el animal; pueden modificarse de forma post-traslacional en algún momento de la vida del animal; o están presentes en el animal de forma no fisiológica. El término "no fisiológico" o "de forma no fisiológica" cuando se utiliza para describir las autoproteínas, autopolipéptidos o autopéptidos de esta invención significa un cambio o desviación del rol o proceso normal en el animal para esa autoproteína, autopolipéptido o autopéptido. Cuando se hace referencia a la autoproteína, autopolipéptido o autopéptido como "relacionado con una enfermedad" o "implicado en una enfermedad" se entiende que significa que la autoproteína, autopolipéptido o autopéptido pueden modificarse en su forma o estructura y por consiguiente ser incapaces de llevar a cabo su rol o proceso fisiológico; o pueden estar implicados en la patofisiología del estado o enfermedad bien induciendo la patofisiología, mediando o facilitando un proceso patofisiológico; y/o siendo el objetivo de un proceso patofisiológico. Por ejemplo, en las enfermedades autoinmunes, el sistema inmunitario ataca de forma anómala las automoléculas tales como los autolípidos, autoproteína(s), autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s),
y la(s) autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificado(s) de forma post-traslacional, causando daños y disfunción de las células y tejidos en los que la automolécula se expresa y/o está presente. De manera alternativa, la molécula puede ella misma expresarse a niveles no fisiológicos y/o funcionar de forma no fisiológica. Por ejemplo, en las enfermedades neurodegenerativas las autoproteínas se expresan de forma anómala y se agrupan en lesiones en el cerebro causando de ese modo la disfunción neural. En otros casos, la automolécula agrava un estado o proceso no deseado. Por ejemplo en la osteoartritis, las autoproteínas incluyendo las colagenasas y las metaloproteinasas de matriz degradan de forma anómala el cartílago que cubre la superficie articular de las articulaciones. Ejemplos de modificaciones post-traslacionales de autoproteína(s), autopolipéptido(s) o autopéptido(s) son la glicosilación, la adición de grupos lipídicos, la defosforilación mediante fosfatasas, la adición de residuos de dimetilarginina, la citrulinación de filagrina y fibrina mediante peptidilarginina deiminasa (PAD); la fosforilación de alfa B-cristalina; la citrulinación de PBM; y la proteolisis de autoantígenos del LSE mediante caspasas y granzimas. Inmunológicamente, la autoproteína, autopolipéptido o autopéptido se considerarían todos ellos autoantígenos huésped y en condiciones fisiológicas normales son ignorados por el sistema inmunitario huésped a través de la eliminación, inactivación o falta de activación de las células inmunitarias que poseen la capacidad de reconocer los autoantígenos a través de un proceso designado "tolerancia inmunitaria". Autoproteína, autopolipéptido o autopéptido no incluye a las proteínas, polipéptidos o péptidos inmunitarios que son moléculas expresadas fisiológica, específica y exclusivamente por células del sistema inmunitario a efectos de regular la función inmunitaria. El sistema inmunitario es el mecanismo de defensa que proporciona los medios para producir respuestas rápidas, protectoras y enormemente específicas contra la miríada de microorganismos potencialmente patógenos que habitan el mundo animal. Ejemplos de proteína(s), polipéptido(s) o péptido(s) inmunitarios son las proteínas que comprenden el receptor de células T, las inmunoglobulinas, las citoquinas incluyendo las interleuquinas de tipo I, y las citoquinas de tipo II, incluyendo los interferones e IL-10, el TNF-\alpha, la linfotoxina, y las quimioquinas tales como la proteína-1alfa y beta inflamatoria macrófaga, la proteína monocito-quimiotáctica y RANTES, y otras moléculas directamente implicadas en la función inmunitaria tal como el ligando Fas. Existen ciertas proteínas, polipéptido(s) o péptido(s) inmunitarios que están incluidos en la autoproteínas, autopolipéptido o péptido de la invención y son los siguientes: glicoproteínas de membrana del CPH de clase I, glicoproteínas del CPH de clase II y osteopontina. La autoproteína, el autopolipéptido o autopéptido no incluyen proteínas, polipéptidos y péptidos que están ausentes en el sujeto, bien completamente o sustancialmente, debido a una deficiencia genética o adquirida causando así una afección metabólica o funcional, y se sustituyen o bien mediante la administración de dicha proteína, polipéptido o péptido o mediante la administración de un polinucleótido que codifica dicha proteína, polipéptido o péptido (terapia génica). Ejemplos de dichas afecciones incluyen la distrofia muscular de Duchenne, la distrofia muscular de Becker, la fibrosis quística, la fenilcetonuria, la galactosemia, la enfermedad de la orina de jarabe de arce y la homocistinuria. La autoproteína, autopolipéptido o péptido no incluyen proteínas, polipéptidos y péptidos expresados específica y exclusivamente por células que poseen características que las distinguen de sus homólogos normales, incluyendo: (1) la clonalidad, que representa la proliferación de una única célula con una alteración genética para formar un clon de células malignas, (2) la autonomía, que indica que el crecimiento no se está regulando de la forma adecuada, y (3) la anaplasia, o la falta de diferenciación celular coordinada normal. Las células poseen uno o más de los tres criterios antes mencionados y se denominan células neoplásicas, cancerígenas o malignas.
Los "plásmidos" y "vectores" se
designan mediante una p minúscula seguida por letras y/o números.
Los plásmidos iniciales están disponibles comercialmente, a
disposición del público sin limitaciones o pueden construirse a
partir de plásmidos disponibles de acuerdo con procedimientos
publicados. Además, hay plásmidos equivalentes a los que se
describen que son conocidos en la técnica y serán evidentes para los
medianamente expertos en la técnica. Un "vector" o
"plásmido" hace referencia a cualquier elemento genético que es
capaz de replicarse al constar de elementos reguladores y de
control adecuados cuando están presentes en una célula huésped. A
efectos de esta invención, entre los ejemplos de vectores o
plásmidos se incluyen, pero sin limitarse a ellos, los plásmidos,
fagos, transposones, cósmidos, virus y similares.
"Ácido nucleico desnudo" tal y como se
utiliza en el presente documento hace referencia a una molécula de
ácido nucleico que no se encapsula (tal como, p. ej., dentro de una
partícula viral, célula bacteriana o liposoma) y no forma complejo
con una molécula que se une al ácido nucleico (tal como, p. ej.,
DEAE-dextrano) ni se conjuga de otra manera con el
ácido nucleico (p. ej., partículas de oro o soportes basados en
polisacáridos).
"Tratar", "tratamiento" o
"terapia" de una enfermedad o afección significará ralentizar,
detener o invertir la progresión de una enfermedad establecida, tal
y como queda evidenciado por una disminución, cese o eliminación de
los síntomas clínicos o diagnósticos, mediante la administración del
ácido nucleico inmunomodulador de esta invención. "Enfermedad
establecida" significa que el sistema inmunitario está activo,
causando que los tejidos afectados se inflamen y se infiltren en
ellos de forma anormal leucocitos y linfocitos. "Tratar",
"tratamiento" o "terapia" de una enfermedad o afección
también significará ralentizar, detener o invertir la progresión de
la enfermedad mediante la administración de un ácido nucleico
inmunomodulador en combinación con una automolécula.
"Automoléculas" tal y como se utiliza en el presente documento
hace referencia a autolípidos, autoproteína(s),
autopéptido(s), autopolipéptido(s),
autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s),
autoglicoproteína(s) y autoproteína(s),
péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s)
modificados de forma post-traslacional.
"Tratar", "tratamiento" o "terapia" de una
enfermedad o afección significará además ralentizar, detener o
invertir la progresión de la enfermedad mediante la administración
de un ácido nucleico inmunomodulador en combinación con una
terapéutica inmunomoduladora. "En combinación con" cuando se
hace referencia a un régimen terapéutico compuesto por un ácido
nucleico inmunomodulador y otro compuesto, por ejemplo ADN que
codifica una autoproteína, autopéptido o autopolipéptido, incluye
dos o más compuestos administrados por separado pero juntos
físicamente como co-administración en un vial,
unidos por ejemplo mediante conjugación, codificados por ADN en uno
o más vectores, o administrados por separado en diferentes
ubicaciones pero temporalmente tan cerca uno del otro como para que
una persona medianamente experta en la técnica considere que se
administran "en combinación". Tal y como se utilizan en el
presente documento, mejorar una enfermedad y tratar una enfermedad
son equivalentes.
"Prevenir", "profilaxis" o
"prevención" de una enfermedad o afección tal y como se utiliza
en el contexto de esta invención hace referencia a la
administración de una secuencia inmunomoduladora bien sola o en
combinación con otro compuesto tal y como se describe en el
presente documento, para prevenir la incidencia o aparición de una
enfermedad o afección o algunos o todos los síntomas de una
enfermedad o afección o reducir la probabilidad de aparición de una
enfermedad o afección. "Prevenir", "profilaxis" o
"prevención" de una enfermedad o afección tal y como se
utiliza en el contexto de esta invención hace referencia a la
administración de una secuencia inmunomoduladora en combinación con
automoléculas para prevenir la incidencia o aparición de una
enfermedad o afección o algunos o todos los síntomas de una
enfermedad o afección o reducir la probabilidad de aparición de una
enfermedad o afección. "Prevenir", "profilaxis" o
"prevención" de una enfermedad o afección tal y como se
utiliza en el contexto de esta invención hace referencia a la
administración de una secuencia inmunomoduladora en combinación con
una terapéutica inmunomoduladora para prevenir la incidencia o
aparición de una enfermedad o afección o algunos o todos los
síntomas de una enfermedad o afección o reducir la probabilidad de
aparición de una enfermedad o afección.
Tal y como se utiliza en el presente documento
"terapéuticas inmunomoduladoras" hace referencia a las
moléculas que poseen una función reguladora o inmunomoduladora
cuando se administran a un sujeto. Dichas terapéuticas
inmunomoduladoras incluyen las citoquinas, quimioquinas, esteroides
o anticuerpos a los antígenos o autoantígenos. "Sujetos"
significará cualquier animal, tal como, por ejemplo, un ser humano,
un primate no humano, un caballo, una vaca, un perro, un gato, un
ratón, una rata, una cobaya o un conejo.
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Las composiciones y métodos descritos en el
presente documento son útiles para el tratamiento o prevención de
enfermedades autoinmunes. Varios ejemplos de enfermedades
autoinmunes relacionadas con automoléculas incluyendo autolípidos,
autoproteína(s), autopéptido(s),
autopolipéptido(s), autoglicolípido(s),
autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y
autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s),
glicoproteína(s) o derivados de automoléculas modificados de
forma post-traslacional presentes en el animal de
forma no fisiológica se exponen en la tabla siguiente y se describen
a continuación.
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(Continuación)
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(Continuación)
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Esclerosis múltiple: La esclerosis
múltiple (EM) es la afección desmielinizante más común del sistema
nervioso central (SNC) y afecta a 350.000 americanos y a un millón
de personas en todo el mundo. La aparición de los síntomas
normalmente se produce entre los 20 y 40 años y se manifiesta como
un ataque agudo o subagudo de dificultad visual unilateral,
debilidad muscular, parestesias, ataxia, vértigo, incontinencia
urinaria, disartria o alteración mental (ordenadas en frecuencia
decreciente). Dichos síntomas son el resultado de lesiones focales
de desmielinización que causan tanto anomalías de conducción
negativa debido a conducción axonal ralentizada como anomalías de
conducción positiva debido a la generación de impulsos ectópicos (p.
ej. el síntoma de Lhermitte). El diagnóstico de la EM está basado
en un historial que incluya al menos dos ataques distintos de
disfunción neurológica que estén separados en el tiempo, presenten
pruebas clínicas objetivas de disfunción neurológica e impliquen
áreas diferentes de la materia blanca del SNC. Entre los estudios de
laboratorio que proporcionan pruebas objetivas adicionales que
respaldan el diagnóstico de la EM se incluyen las imágenes por
resonancia magnética (IRM) de las lesiones de la materia blanca del
SNC, la formación de bandas oligoclonales de IgG en el líquido
cefalorraquídeo (LCR) y respuestas provocadas anómalas. Aunque la
mayoría de los pacientes experimentan un curso de la enfermedad
gradualmente progresivo de recaídas y remisiones, el curso clínico
de la EM varía enormemente de unos individuos a otros y puede ir de
estar limitado a varios ataques leves a lo largo de la vida a una
enfermedad progresiva crónica fulminante. Un aumento cuantitativo en
las células T mielina-reactivas con la capacidad
para secretar IFN-gamma está relacionado con la
patogénesis de la EM y la EAE.
Artritis reumatoide: La artritis
reumatoide (AR) es una sinovitis inflamatoria autoinmune crónica que
afecta al 0,8% de la población mundial. Se caracteriza por una
sinovitis inflamatoria crónica que causa destrucción erosiva de las
articulaciones. La AR está mediada por células T, células B y
macrófagos.
Entre las pruebas de que las células T juegan un
papel crítico en la AR se incluyen el (1) predominio de células T
CD4+ que infiltran el sinovio, (2) la mejora clínica relacionada con
la supresión de la función de las células T con fármacos tales como
la ciclosporina, y (3) la asociación de la AR con ciertos alelos
HLA-DR. Los alelos HLA-DR
relacionados con la AR contienen una secuencia similar de
aminoácidos en las posiciones 67-74 en la tercera
región hipervariable de la cadena beta que están implicados en la
unión peptídica y la presentación a las células T. La AR está
mediada por células T autoreactivas que reconocen una automolécula
tal como autolípidos, autoproteína(s),
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional o una autobiomolécula no identificada presente en las articulaciones sinoviales o en cualquier otra parte del huésped. La(s) autoproteína(s), autopolipéptido(s)
o péptidos de esta invención también designados autoantígenos son el objetivo en la AR y constan de epítopos del colágeno de tipo II; hnRNP; A2/RA33; Sa; filagrina; queratina; citrulina; proteínas cartilaginosas incluyendo gp39; colágenos de tipo I, III, IV, V, IX, XI; HSP-65/60; IgM (factor reumatoide); ARN polimerasa; hnRNP-B1; hnRNP-D; cardiolipina; aldolasa A; fibrina y filagrina modificadas por citrulina. Se han identificado autoanticuerpos que reconocen los péptidos de filagrina que contienen un residuo de arginina modificado (deiminado para formar citrulina) en el suero de una gran proporción de pacientes con AR. Las respuestas de las células B y T autoreactivas se dirigen ambas contra el mismo péptido 257-270 del colágeno de tipo II (CII) inmunodominante en algunos pacientes.
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional o una autobiomolécula no identificada presente en las articulaciones sinoviales o en cualquier otra parte del huésped. La(s) autoproteína(s), autopolipéptido(s)
o péptidos de esta invención también designados autoantígenos son el objetivo en la AR y constan de epítopos del colágeno de tipo II; hnRNP; A2/RA33; Sa; filagrina; queratina; citrulina; proteínas cartilaginosas incluyendo gp39; colágenos de tipo I, III, IV, V, IX, XI; HSP-65/60; IgM (factor reumatoide); ARN polimerasa; hnRNP-B1; hnRNP-D; cardiolipina; aldolasa A; fibrina y filagrina modificadas por citrulina. Se han identificado autoanticuerpos que reconocen los péptidos de filagrina que contienen un residuo de arginina modificado (deiminado para formar citrulina) en el suero de una gran proporción de pacientes con AR. Las respuestas de las células B y T autoreactivas se dirigen ambas contra el mismo péptido 257-270 del colágeno de tipo II (CII) inmunodominante en algunos pacientes.
Diabetes mellitus insulinodependiente: La
diabetes mellitus insulinodependiente (DMID) o de tipo I humana se
caracteriza por la destrucción autoinmune de las células Beta en los
islotes pancreáticos de Langerhans. La reducción de células Beta da
por resultado en una incapacidad para regular los niveles de glucosa
en la sangre. La diabetes manifiesta se produce cuando el nivel de
glucosa en la sangre se eleva por encima de un nivel específico,
normalmente de aproximadamente 250 mg/dl. En los seres humanos un
largo periodo presintomático precede a la aparición de la diabetes.
Durante este periodo se produce una pérdida gradual de la función de
las células beta pancreáticas. El desarrollo de la enfermedad se
insinúa por la presencia de autoanticuerpos contra la insulina, la
descarboxilasa del ácido glutámico y la tirosina fosfatasa IA2
(IA2), cada una un ejemplo de una autoproteína, autopolipéptido o
péptido de conformidad con esta invención.
Los marcadores que pueden evaluarse durante la
fase presintomática son la presencia de insulitis en el páncreas,
el nivel y frecuencia de anticuerpos contra las células de los
islotes, los anticuerpos contra la superficie celular de los
islotes, la expresión anómala de las moléculas del CPH de Clase II
sobre las células beta pancreáticas, la concentración de glucosa en
la sangre y la concentración de insulina en plasma. Un aumento en el
número de linfocitos T en el páncreas, anticuerpos contra las
células de los islotes y glucosa en sangre es indicativo de la
enfermedad, como también lo es la disminución de la concentración de
insulina.
El ratón no obeso diabético (NOD) es un modelo
animal con muchas características clínicas, inmunológicas e
histopatológicas en común con la DMID humana. Los ratones NOD
desarrollan de forma espontánea la inflamación de los islotes y la
destrucción de las células Beta, lo que lleva a la hiperglicemia y
la diabetes manifiesta. Tanto las células T CD4+ como las CD8+ son
necesarias para que se desarrolle la diabetes, aunque los papeles
de cada una continúan estando poco claros. Se ha mostrado tanto con
insulina como con GAD que cuando se administran como proteínas bajo
condiciones tolerizantes, la enfermedad puede prevenirse y pueden
reducirse las respuestas a los otros autoantígenos.
Lo que es más importante, los ratones NOD
desarrollan diabetes autoinmune en jaulas para ratones limpias y
libres de patógenos, y en entornos libres de gérmenes.
La DMID humana se trata actualmente controlando
los niveles de glucosa en sangre para guiar la inyección, o
administración a base de bomba, de insulina recombinante. Los
regímenes a base de dieta y ejercicio contribuyen a conseguir un
control adecuado de la glucosa en sangre.
Uveitis autoinmune: La uveitis autoinmune
es una enfermedad autoinmune de los ojos que se calcula que afecta
a 400.000 personas, con una incidencia de 43.000 nuevos casos al año
en los EE.UU. La uveitis autoinmune se trata actualmente con
esteroides, agentes inmunosupresores tales como el metotrexato y la
ciclosporina, la inmunoglobulina intravenosa y los antagonistas del
TNF-alfa. La uveitis autoinmune experimental (UAE)
es una enfermedad autoinmune mediada por células T que ataca la
retina neural, la úvea y los tejidos relacionados en los ojos. La
UAE comparte muchas características clínicas e inmunológicas con la
uveitis autoinmune humana y es inducida por la administración
periférica del péptido uveitogénico emulsionado en Adyuvante
Completo de Freund (ACF).
Las autoproteínas atacadas por la respuesta
autoinmune en la uveitis autoinmune humana pueden incluir el
antígeno S, la proteína de unión del retinoide interfotoreceptor
(IRBP), la rodopsina y la recoverina.
Cirrosis biliar primaria: La Cirrosis
Biliar Primaria (CBP) es una enfermedad autoinmune
órgano-específica que afecta predominantemente a
las mujeres de entre 40 y 60 años. La prevalencia de la que se ha
informado en este grupo se acerca al 1 por 1.000. La CBP se
caracteriza por la destrucción progresiva de las células
epiteliales biliares intrahepáticas (CEBI) que revisten los
conductos biliares intrahepáticos pequeños (Nishio et al.,
Semin Liver Dis, 22: 291, 2002). Esto lleva a la obstrucción e
interferencia con la secreción de bilis, causando una eventual
cirrosis. Se ha informado de la relación con otras enfermedades
autoinmunes caracterizadas por daños al revestimiento
epitelial/sistema secretor, incluyendo el Síndrome de Sjögren, el
Síndrome de CREST, la Enfermedad del Tiroides Autoinmune y la
Artritis Reumatoide.
Un modelo murino de colangitis autoinmune
experimental (CAE) utiliza la sensibilización intraperitoneal (ip)
con CDP de mamíferos en ratones SJL/J hembras, induciendo la
colangitis destructiva no supurativa (CDNS) y la producción de AAM
(Jones, J Clin Pathol, 53: 813-21, 2000). También se
ha mostrado que el modelo de ratón MRL/lpr del LSE desarrolla una
enfermedad parecida a la CBP caracterizada por el desarrollo de
autoanticuerpos dirigidos contra el complejo alfa cetoglutarato
deshidrogenasa.
Otras enfermedades autoinmunes y la(s)
autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
autopéptido(s) relacionados: Los autoantígenos de la
miastenia gravis pueden incluir epítopos dentro del receptor de
acetilcolina. Los autoantígenos atacados en el pénfigo vulgar
pueden incluir la desmogleína-3. Los antígenos del
síndrome de Sjogren pueden incluir el SSA (ro); SSB (La); y la
fodrina. El autoantígeno dominante para el pénfigo vulgar puede
incluir la desmogleína-3. Los paneles para la
miositis pueden incluir sintetasas de ARNt (p. ej. treonilo,
histidilo, alanilo, isoleucilo y glicilo); Ku; Scl;
SS-A; proteínas
U1-sn-ribonucleares;
Mi-1; Mi-1; Jo-1;
Ku y la PRS. Los paneles para la esclerodermia pueden incluir
Scl-70; centrómero; proteínas
U1-sn-ribonucleares y fibrilarina.
Los paneles para la anemia perniciosa pueden incluir el factor
intrínseco y la subunidad beta de la glicoproteína de la ATPasa H/K
gástrica. Los epítopos de los antígenos para el lupus sistémico
eritematoso (LSE) pueden incluir ADN; fosfolípidos; antígenos
nucleares; ribonucleoproteína U1; Ro60 (SS-A); Ro52
(SS-A); La (SS-B); calreticulina;
Grp78; Scl-70; histona; proteína Sm; factores de
empalme serina-arginina y cromatina, etc. Para la
enfermedad de Graves los epítopos pueden incluir el simportador
Na+/l-; el receptor de tirotropina; Tg; y la POT.
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En la tabla se exponen diversos ejemplos de
otras enfermedades relacionadas con autoproteína(s),
autopolipépti-
do(s) o autopéptido(s) presentes en el animal de forma no fisiológica y que se describen a continuación.
do(s) o autopéptido(s) presentes en el animal de forma no fisiológica y que se describen a continuación.
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Osteoartritis y enfermedades degenerativas de
las articulaciones: La osteoartritis (OA) afecta al 30% de las
personas mayores de 60 años y es la enfermedad de las articulaciones
más común en los seres humanos. La osteoartritis representa la
degeneración y fallo de las articulaciones sinoviales e implica el
deterioro del cartílago articular.
El cartílago está compuesto principalmente por
proteoglicanos, que proporcionan rigidez y la capacidad para
soportar cargas, y colágenos que proporcionan tracción y resistencia
a la pura fuerza. Los condrocitos dan la vuelta y remodelan el
cartílago normal produciendo y secretando colagenasas latentes,
estromelisina latente, gelatinasa latente, activador del
plasminógeno tisular y otras enzimas relacionadas, cada uno de los
cuales solos o en combinación son autolípidos,
autoproteína(s), autopéptido(s),
autopolipéptido(s), autoglicolípido(s),
autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y
autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o
glicoproteína(s) modificados de forma
post-traslacional de esta invención. Los condrocitos
también producen diversos inhibidores, incluyendo el inhibidor
tisular de la metaloproteinasa (ITMP) y el inhibidor del activador
del plasminógeno (IAP-1), y limitan la actividad
degradativa de las metaloproteinasas neutrales, el activador tisular
del plasminógeno y otras enzimas. Estas enzimas e inhibidores
degradativos, solos o en combinación, son la(s)
autoproteína(s), polipéptido(s) o péptido(s) de
esta invención. Estas enzimas e inhibidores degradativos coordinan
la remodelación y mantenimiento del cartílago normal. En la OA, la
desregulación de este proceso da por resultado el deterioro y
degradación del cartílago. La mayoría de los pacientes con OA
también sufren algún grado de inflamación, incluyendo el
calentamiento e hinchazón de las articulaciones. En el comienzo de
la OA se producen alteraciones anómalas en la disposición y tamaño
de las fibras de colágeno. Las metaloproteinasas, catepsinas,
plasmina y otras automoléculas solas o en combinación son
autolípidos, autoproteína(s),
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional de esta invención, causan una significativa pérdida de la matriz del cartílago. La producción condrocítica inicialmente incrementada de proteoglicanos y cartílago da por resultado que el cartílago articular sea más grueso de lo normal. El cartílago articular entonces reduce el grosor y se ablanda como resultado de la acción de las enzimas degradativas incluyendo las colagenasas, la estromelisina, la gelatinasa, el activador tisular del plasminógeno y otras enzimas relacionadas, solas o en combinación son automoléculas tales como los autolípidos, autoproteína(s), autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional de esta invención. Las moléculas inflamatorias tales como IL-1, las catepsinas y la plasmina pueden potenciar la degeneración y deterioro del cartílago, solas o en combinación, y son autolípidos, autoproteína(s),
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional de esta invención. El cartílago más blando y delgado es mucho más propenso a sufrir daños debido al esfuerzo mecánico. Estos factores llevan al deterioro de la superficie del cartílago y a la formación de grietas verticales (fibrilación). Se forman erosiones en la superficie del cartílago y se extienden al hueso en la última fase de la enfermedad. Los condrocitos se duplican inicialmente y forman grupos, y en la última fase el cartílago se vuelve hipocelular. La remodelación y la hipertrofia del hueso son características importantes de la OA.
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional de esta invención, causan una significativa pérdida de la matriz del cartílago. La producción condrocítica inicialmente incrementada de proteoglicanos y cartílago da por resultado que el cartílago articular sea más grueso de lo normal. El cartílago articular entonces reduce el grosor y se ablanda como resultado de la acción de las enzimas degradativas incluyendo las colagenasas, la estromelisina, la gelatinasa, el activador tisular del plasminógeno y otras enzimas relacionadas, solas o en combinación son automoléculas tales como los autolípidos, autoproteína(s), autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional de esta invención. Las moléculas inflamatorias tales como IL-1, las catepsinas y la plasmina pueden potenciar la degeneración y deterioro del cartílago, solas o en combinación, y son autolípidos, autoproteína(s),
autopéptido(s), autopolipéptido(s), autoglicolípido(s), autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional de esta invención. El cartílago más blando y delgado es mucho más propenso a sufrir daños debido al esfuerzo mecánico. Estos factores llevan al deterioro de la superficie del cartílago y a la formación de grietas verticales (fibrilación). Se forman erosiones en la superficie del cartílago y se extienden al hueso en la última fase de la enfermedad. Los condrocitos se duplican inicialmente y forman grupos, y en la última fase el cartílago se vuelve hipocelular. La remodelación y la hipertrofia del hueso son características importantes de la OA.
Entre las terapias actuales para tratar la OA se
incluyen el descanso, la terapia física para fortalecer los músculos
que soportan la articulación, férulas y otros dispositivos de
soporte para estabilizar la articulación, agentes antiinflamatorios
no esteroideos, acetaminofeno y otros analgésicos. En la última fase
hueso con hueso de la OA de las articulaciones fundamentales para
las actividades de la vida cotidiana, tales como las rodillas o las
caderas, se lleva a cabo una sustitución quirúrgica de las
articulaciones.
Lesión de la médula espinal: Se calcula
que se producen aproximadamente 11.000 nuevos casos de lesiones de
médula espinal cada año en los EE.UU. y que la prevalencia general
es de un total de 183.000 a 230.000 casos en los EE.UU. actualmente
(Stover et al., Arch Phys Med Rehabil, 80,
1365-71, 1999). Las recuperaciones de las lesiones
de médula espinal son muy escasas y dan por resultado una
discapacidad neurológica irreversible devastadora. El tratamiento
actual para la lesión de médula espinal aguda consiste en la
estabilización mecánica del sitio de la lesión, por ejemplo mediante
intervención quirúrgica, y la administración de esteroides
parenterales. Estas intervenciones han hecho muy poco por reducir la
incidencia de la parálisis permanente que sigue a la lesión de
médula espinal. El tratamiento de la lesión de médula espinal
crónica se centra en el mantenimiento de la calidad de vida tal como
el manejo del dolor, la espasticidad y la función de la vejiga. No
hay ningún tratamiento actualmente disponible que afronte la
recuperación de la función neurológica. En la fase aguda que sigue
inmediatamente a la lesión, la inflamación es prominente, y la
hinchazón relacionada con el daño medular es una causa importante de
morbosidad. Esta inflamación se controla en parte con altas dosis de
corticoesteroides sistémicos.
Enfermedad injerto contra huésped: Una de
las grandes limitaciones del trasplante de tejidos y órganos en los
seres humanos es el rechazo del trasplante tisular por el sistema
inmunitario del receptor. Está muy demostrado que cuanto mayor sea
la compatibilidad de los alelos del CPH de clase I y II
(HLA-A, HLA-B y
HLA-DR) entre el donante y el receptor mayor será
la supervivencia del injerto. La enfermedad injerto contra huésped
(EICH) causa una morbosidad y mortalidad significativas en pacientes
que reciben trasplantes que contienen células hematopoyéticas
alogeneicas. Esto es debido en parte a la inflamación en la piel y
en otros órganos objetivo. Las células hematopoyéticas están
presentes en los trasplantes de médula ósea, los trasplantes de
células madre y en otros trasplantes. Aproximadamente el 50% de los
pacientes que reciben un trasplante procedente de un hermano con
HLA compatible desarrollará EICH de moderada a grave, y la
incidencia es mucho mayor en injertos con HLA no compatible. Un
tercio de los pacientes que desarrollan EICH de moderada a grave
morirá como resultado de ello. Los linfocitos T y otras células
inmunitarias del injerto del donante atacan las células del
receptor que expresan variaciones polipeptídicas en sus secuencias
de aminoácidos, en particular variaciones en proteínas codificadas
en el complejo principal de histocompatibilidad (CPH), complejo
génico en el cromosoma 6 de los seres humanos. Las proteínas más
influyentes para la EICH en los trasplantes que implican células
hematopoyéticas alogeneicas son las proteínas de clase I altamente
polimórficas (amplia variación de aminoácidos de unas personas a
otras) (HLA-A, -B y -C) y las proteínas de clase II
(DRB1, DQB1 y DPB1) (Appelbaum, Nature, 411:
385-389, 2001). Incluso cuando los alelos del CPH de
clase I son "compatibles" serológicamente entre el donante y
el receptor, la secuenciación del ADN revela que hay
incompatibilidades a nivel de los alelos en el 30% de los casos, lo
que proporciona una base para la EICH dirigida contra la clase I
incluso en parejas compatibles de donante-receptor
(Appelbaum, Nature, 411, 385-389, 2001). La EICH a
menudo provoca daños en la piel, el intestino, el hígado, el pulmón
y el páncreas. La EICH se trata con glucocorticoides, ciclosporina,
metotrexato, fludarabina y OKT3.
Rechazo a los trasplantes tisulares: El
rechazo inmunitario a los trasplantes tisulares, incluyendo el
pulmón, corazón, hígado, riñón, páncreas y otros órganos y
tejidos, es mediado por las respuestas inmunitarias en el receptor
del trasplante dirigidas contra el órgano trasplantado. Los órganos
alogeneicos trasplantados contienen proteínas con variaciones en
sus secuencias de aminoácidos en comparación con las secuencias de
aminoácidos del receptor del trasplante. Dado que las secuencias de
aminoácidos del órgano trasplantado difieren de aquellas del
receptor del trasplante con frecuencia provocan una respuesta
inmunitaria en el receptor contra el órgano trasplantado. La
respuesta inmunitaria engloba respuestas tanto por el sistema
inmunitario innato como por el adquirido y se caracteriza por
inflamación del órgano objetivo.
El rechazo de los órganos trasplantados es una
complicación y limitación importantes del trasplante tisular y puede
causar el fallo del órgano trasplantado en el receptor. La
inflamación crónica que resulta del rechazo con frecuencia lleva a
la disfunción del órgano trasplantado. Actualmente se trata a los
receptores de trasplantes con una diversidad de agentes
inmunosupresores para prevenir y suprimir el rechazo. Estos agentes
incluyen los glucocorticoides, la ciclosporina A, Cellcept,
FK-506 y OKT3.
\vskip1.000000\baselineskip
En un aspecto, los ácidos nucleicos
inmunomoduladores de la invención comprenden el siguiente hexámero
central:
5'-purina-pirimidina-[X]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3'.
\vskip1.000000\baselineskip
También se han revelado los ácidos nucleicos
inmunomoduladores que comprenden el siguiente hexámero central:
5'-purina-purina-[X]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3'.
en el que X e Y son cualesquiera nucleótidos
sintéticos o presentes de forma natural, con la excepción de que X e
Y no pueden ser citosina-guanina.
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El hexámero central de las SIMs, denominado en
el presente documento el motivo secuencial inmunomodulador
compuesto por un motivo dinucleótido, puede estar flanqueado en 5'
y/o 3' por cualquier composición o número de nucleótidos o
nucleósidos. Preferentemente, los ácidos nucleicos inmunomoduladores
compuestos por motivos secuenciales inmunomoduladores son
oligonucleótidos que poseen entre 6 y 100 pares de bases en tamaño,
y más preferentemente 16-50 pares de bases en
tamaño. Los ácidos nucleicos inmunomoduladores también pueden
administrarse como parte de porciones más largas de ADN, que van de
100 a 100.000 pares de bases. Las SIMs pueden incorporarse a, o ya
producirse en, plásmidos de ADN, vectores virales y ADN genómico.
Los ácidos nucleicos inmunomoduladores también pueden tener entre 6
(sin secuencias flanqueadoras) a 10.000 pares de bases, o más, en
tamaño. Las secuencias presentes que flanquean el centro del
hexámero pueden construirse para que se correspondan sustancialmente
con las secuencias flanqueadoras presentes en cualesquiera
secuencias inmunoinhibidoras conocidas. Por ejemplo, la SIM que
posee la secuencia
TGACTGTG-Purina-Pirimidina-X-Y-Pirimidina-Pirimidina-AGAGATGA,
comprende las secuencias flanqueadoras TGACTGTG y AGAGATGA. Otra
secuencia flanqueadora preferente incorpora una serie de
pirimidinas (C, T y U), bien como una pirimidina individual repetida
dos o más veces, o una mezcla de diferentes pirimidinas de dos o
más en longitud. Se han utilizado diferentes secuencias
flanqueadoras a la hora de someter a ensayo las secuencias
moduladoras inhibidoras. Se incluyen más ejemplos de secuencias
flanqueadoras para los ácidos nucleicos inhibidores en las
siguientes referencias: Patente estadounidense nº 6.225.292 y
6.339.068; Zeuner et al., Arthritis and Rheumatism, 46:
2219-24, 2002.
SIMs concretas de la invención comprenden las
siguientes secuencias hexaméricas:
SIMs
5'-purina-pirimidina-[x]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3'
que contienen centros dinucleótidos GG: GTGGTT, ATGGTT, GCGGTT,
ACGGTT, GTGGCT, ATGGCT, GCGGCT, ACGGCT, GTGGTC, ATGGTC,
GCGGTC,
ACGGTC, etcétera.
ACGGTC, etcétera.
También se han revelado SIMs
5'-purina-pirimidina-[X]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3'
que contienen centros dinucleótidos GC: GTGCTT, ATGCTT, GCGCTT,
ACGCTT, GTGCCT, ATGCCT, GCGCCT, ACGCCT, GTGCTC, ATGCTC, GCGCTC,
ACGCTC, etcétera;
3. Sustitución de la adenina por guanina e
inosina y/o sustitución de la citosina o timina por uridina y esas
sustituciones pueden realizarse tal y como se expone basándose en
las directrices anteriores.
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Una secuencia inmunoinhibidora o SII que se ha
revelado anteriormente se vio que inhibía la actividad de las
secuencias inmunoestimuladoras (SII) que contenían un dinucleótido
central, CpG. Patente estadounidense 6.225.292. Esta invención
mostró por primera vez que esta SII, en ausencia de una SIE,
prevenía y trataba las enfermedades autoinmunes bien sola o en
combinación con la terapia con polinucleótidos de ADN. Esta SII
contenía la región hexamérica central con la secuencia AAGGTT. Esa
secuencia se denomina en el presente documento una secuencia
inmunomoduladora o SIM. Otras SIIs relacionadas con un motivo
similar incluidas dentro de las SIMs de esta invención son:
1. SIMs
5'-purina-purina-[X]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3'
que contienen centros dinucleótidos GG: GGGGTT, AGGGTT, GAGGTT,
AAGGTT, GGGGCT, AGGGCT, GAGGCT, AAGGCT, GGGGTC, AGGGTC, GAGGTC,
AAGGTC, etcétera;
2. SIMs
5'-purina-purina-[X]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3'
que contienen centros dinucleótidos GC: GGGCTT, AGGCTT, GAGCTT,
AAGCTT, GGGCCT, AGGCCT, GAGCCT, AAGCCT, GGGCTC, AGGCTC,
GAGCTC,
AAGCTC, etcétera;
AAGCTC, etcétera;
3. Las sustituciones de la adenina por guanina e
inosina y/o las sustituciones de la citosina o timina por uridina
pueden realizarse tal y como se expone basándose en las directrices
anteriores.
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En ciertas realizaciones de la presente
invención, la región hexamérica central de la SIM está flanqueada
en el extremo 5' o en el 3', o tanto en el extremo 5' como en el 3',
por una región poliG. Una "región poliG" o "motivo poliG"
tal y como se utiliza en el presente documento se refiere a una
región de ácido nucleico que consiste en al menos dos (2) bases de
guanina contiguas, normalmente de entre 2 y 30 o de entre 2 y 20
guaninas contiguas. En algunas realizaciones, la región poliG posee
entre 2 y 10, entre 4 y 10, o entre 4 y 8 bases de guanina
contiguas. En ciertas realizaciones preferentes, la región poliG
flanqueadora es adyacente al hexámero central. En aún otras
realizaciones, la región poliG está unida al hexámero central
mediante una región que no es poliG (enlazador no poliG);
habitualmente, la región enlazadora no poliG no posee más de 6, más
habitualmente no más de 4 nucleótidos, y lo más habitualmente no más
de 2 nucleótidos.
Pueden obtenerse ácidos nucleicos
inmunomoduladores a partir de fuentes existentes de ácido nucleico,
incluyendo ADN genómico, ADN plasmídico, ADN viral y ADNc. En
ciertas realizaciones preferentes, los ácidos nucleicos
inmunomoduladores son oligonucleótidos sintéticos producidos
mediante la síntesis de los oligonucleótidos. La SIM puede ser
parte de ADN, ARN y/o oligonucleósidos de hebra única o de hebra
doble.
Los ácidos nucleicos inmunomoduladores son de
forma preferente ácidos nucleicos que poseen una o más regiones de
SIM que contienen oligonucleótidos GpG no metilados. En
realizaciones alternativas, uno o más residuos de adenina o
citosina de la región de SIM están metiladas. En las células
eucarióticas, habitualmente pueden estar metilados los residuos de
citosina y adenina.
Los ácidos nucleicos inmunomoduladores pueden
ser oligonucleótidos estabilizados y/o no estabilizados.
Oligonucleótidos estabilizados significa oligonucleótidos que son
relativamente resistentes a la degradación in vivo por
exonucleasas, endonucleasas y otros medios de degradación. Los
oligonucleótidos estabilizados preferentes poseen espinas dorsales
de fosfato modificadas, y los oligonucleótidos más preferentes
poseen espinas dorsales de fosfato modificadas con fosforotioato en
las que al menos uno de los oxígenos fosfáticos es sustituido por
sulfuro.
Las modificaciones del grupo fosfático de las
espinas dorsales, incluyendo los enlaces internucleótidos de
fosforoditionato, fosforoamidato, fosforotioato y metilfosfonato,
pueden proporcionar propiedades antimicrobianas a las SIMs. Los
ácidos nucleicos inmunomoduladores son preferentemente
oligonucleótidos estabilizados, utilizando de forma preferente
oligonucleótidos estabilizados de fosforotioato.
Entre los oligonucleótidos estabilizados
alternativos se incluyen: los alquilfosfotriesters y los
fosfodiesters, en los que el oxígeno cargado está alquilado; los
arilfosfonatos y alquilfosfonatos, que son análogos de ADN no
iónicos en los que el oxígeno de fosfonato cargado se sustituye por
un grupo arilo o alquilo; o/y oligonucleótidos que contienen
hexaetilenglicol o tetraetilenglicol, u otro diol, en uno de los dos
extremos terminales o en ambos. Se pueden utilizar configuraciones
estéricas alternativas para unir las partes de la molécula de azúcar
a las bases de nucleósidos en las regiones de SIM.
Las bases de nucleótidos de la región de SIM que
flanquean los dinucleótidos moduladores pueden ser las bases
presentes de forma natural o las bases sintéticas no naturales
conocidas. Los oligonucleótidos pueden incorporarse a la región
interna y/o los extremos terminales de los ON-SIM
utilizando técnicas convencionales para su uso como puntos de
enlace, esto es, como un medio de enlazar o unir otras moléculas,
para otros compuestos, incluyendo las automoléculas o como puntos
de enlace para terapéuticas inmunomoduladoras adicionales.
La(s) base(s), la parte de la molécula de azúcar, los
grupos fosfato y los extremos terminales de los
ON-SIM también pueden modificarse de cualquier
manera conocida para las personas medianamente expertas en la
técnica para construir un ON-SIM que tenga
propiedades deseadas además de la actividad moduladora del
ON-SIM. Por ejemplo, las partes de la molécula de
azúcar pueden enlazarse con las bases de nucleótidos de los
ON-SIM en cualquier configuración estérica.
Las técnicas para realizar estas modificaciones
de los grupos fosfato en los oligonucleótidos son conocidas en este
campo y no requieren una explicación detallada. Para revisar una de
tales útiles técnicas, el producto intermedio triéster fosfato para
el producto oligonucleótido objetivo se prepara y oxida al triéster
fosfato presente de forma natural con yodo acuoso o con otros
agentes, tales como las aminas anhidras. Los fosforamidatos de
oligonucleótido resultantes pueden tratarse con sulfuro para
producir fosforotioatos. La misma técnica general (exceptuando el
paso del tratamiento con sulfuro) puede aplicarse para producir
metilfosfoamiditos a partir de metilfosfonatos. Para más detalles
referentes a las técnicas de modificación de los grupos fosfato,
aquellas personas medianamente expertas en la técnica podrían desear
consultar las Patentes estadounidenses nº 4.425.732; 4.458.066;
5.218.103 y 5.453.496, así como el Tetrahedron, Lett. en 21: 4149 25
(1995), 7: 5575 (1986), 25: 1437 (1984) y el Journal Am. Chem Soc.,
93: 6657 (1987), los descubrimientos de los cuales se han
incorporado al presente documento a efectos de ilustrar el nivel de
conocimientos en la técnica referentes a la composición y
preparación de ácidos nucleicos inmunomoduladores.
Una modificación de los grupos fosfato
particularmente útil es la conversión a las formas fosforotioato o
fosforoditioato de los oligonucleótidos ON-SIM. Los
fosforotioatos y fosforoditioatos son más resistentes a la
degradación in vivo que sus homólogos oligonucleótidos no
modificados, haciendo que los ON-SIM de la invención
estén más disponibles para el huésped.
El ON-SIM puede sintetizarse
utilizando técnicas y equipos para la síntesis de ácidos nucleicos
que son bien conocidos en la técnica. Para referencia a este
respecto, véase, p. ej., Ausubel, et al., Current
Protocols in Molecular Biology, Capítulos 2 y 4 (Wiley
Interscience, 1989); Maniatis, et al., Molecular Cloning: A
Laboratory Manual (Cold Spring Harbor Lab., Nueva York, 1982); la
Patente estadounidense nº 4.458.066 y la Patente estadounidense nº
4.650.675. Estas referencias se han incorporado al presente
documento como referencia a efectos de demostrar el nivel de
conocimientos en la técnica con respecto a la producción de
oligonucleótidos sintéticos.
De forma alternativa, los ON-SIM
pueden obtenerse mediante la mutación de ODN-SIE
microbianos aislados para sustituir el motivo CpG presente de forma
natural y los nucleótidos flanqueadores por un dinucleótido
competidor. Los procedimientos de criba que dependen de la
hibridización de los ácidos nucleicos hacen que sea posible aislar
cualquier secuencia de polinucleótidos de cualquier organismo,
siempre y cuando esté a disposición el anticuerpo o sonda adecuado.
Las sondas de oligonucleótidos, que corresponden a una parte de la
secuencia que codifica la proteína en cuestión, pueden sintetizarse
químicamente. Esto requiere conocer tramos oligopeptídicos cortos
de la secuencia de aminoácidos. La secuencia de ADN que codifica la
proteína también puede deducirse del código genético, sin embargo,
se debe tener en cuenta la degeneración del código.
Por ejemplo, una biblioteca de ADNc que se cree
que contiene un polinucleótido con SIE puede cribarse inyectando
diversos ARNm derivados de ADNcs en oocitos, permitiendo un tiempo
suficiente para que se produzca la expresión de los productos
génicos de ADNc, y sometiéndolo a ensayo para comprobar la presencia
del producto de expresión de ADNc deseado, por ejemplo, utilizando
un anticuerpo específico para un péptido codificado por el
polinucleótido de interés o utilizando sondas para los motivos de
repetición y una característica de patrón de expresión tisular de
un péptido codificado por el polinucleótido de interés. De forma
alternativa, se puede cribar una biblioteca de ADNc indirectamente
en busca de la expresión de los péptidos de interés haciendo que al
menos un epítopo utilice anticuerpos específicos para los péptidos.
Tales anticuerpos pueden derivarse policlonal o monoclonalmente y
utilizarse para detectar el producto de expresión indicativo de la
presencia del ADNc de interés.
Una vez que se ha obtenido el polinucleótido que
contiene SIE, puede acortarse para adquirir la longitud deseada
mediante, por ejemplo, digestión enzimática utilizando técnicas
convencionales. El motivo CpG en el producto de oligonucleótido
ODN-SIE se muta entonces para sustituir el motivo
CpG por un dinucleótido "inhibidor" - identificado utilizando
los métodos de esta invención-. Las técnicas para realizar
mutaciones de sustitución en sitios concretos del ADN con una
secuencia conocida son bien conocidas, por ejemplo la mutagénesis
del cebador M13 a través de RCP. Dado que la SIM no es
codificadora, no hay interés por mantener un marco abierto de
lectura a la hora de realizar la mutación de sustitución. Sin
embargo, para el uso in vivo, el material de inicio
polinucleótido, el producto intermedio oligonucleótido
ODN-SIE o el producto de mutación de SIM deberían
considerarse sustancialmente puros (esto es, tan libres de
contaminantes presentes de forma natural y LPS como sea posible
utilizando las técnicas disponibles familiares para y elegidas por
una persona medianamente experta en el campo).
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Los ácidos nucleicos inmunomoduladores de la
presente invención pueden contener SIMs solas o incorporadas en cis
o en trans con otras regiones de ácido nucleico tales como, por
ejemplo, en un autovector recombinante (plásmido, cósmido, virus o
retrovirus) que puede a su vez codificar cualquier/cualesquiera
autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
péptido(s) suministrables mediante un vector de expresión
recombinante. En ciertas realizaciones, las SIMs se administran sin
incorporarlas en un vector. De forma alternativa, en otras
realizaciones, las SIMs se incorporan en un vector tal como, por
ejemplo, un vector de expresión, lo que puede conseguirse utilizando
técnicas convencionales conocidas para una persona medianamente
experta en la técnica (véase, por ejemplo, Ausubel,
Current Protocols in Molecular Biology, supra).
Por ejemplo, la construcción de vectores de
expresión recombinantes emplea técnicas de ligación estándar. Para
que el análisis confirme las secuencias correctas en los vectores
construidos, pueden utilizarse las mezclas de ligación para
transformar una célula huésped y seleccionar los transformados
satisfactorios por la resistencia antibiótica según sea apropiado.
Los vectores de los transformados se preparan, analizan mediante
restricción y/o secuencian mediante, por ejemplo, el método de
Messing, et al., Nucleic Acids Res., 9: 309, 1981, el método
de Maxam, et al., Methods in Enzymology, 65: 499, 1980, u
otros métodos adecuados que serán conocidos para aquellas personas
expertas en la técnica. La separación por tamaño de los fragmentos
partidos se lleva a cabo utilizando electroforesis en gel
convencional tal y como se describe, por ejemplo, en Maniatis, et
al., Molecular Cloning, pp. 133-134, 1982.
Las células huésped pueden transformarse con los
vectores de expresión de esta invención y cultivarse en medios
nutrientes convencionales tal y como es adecuado para inducir
promotores, seleccionar transformados o amplificar genes. Las
condiciones de cultivo, tales como la temperatura, el pH y similares
son aquellas previamente utilizadas con la célula huésped
seleccionada para la expresión, y serán evidentes para la persona
medianamente experta en la técnica.
Si se utiliza un vector recombinante como
portador para los ON-SIM de la invención, se
prefieren en especial los plásmidos y cósmidos debido a su falta de
patogenicidad. Sin embargo, los plásmidos y cósmidos están sujetos
a degradación in vivo más rápidamente que los virus y por
consiguiente puede que no suministren una dosis adecuada de
ON-SIM para prevenir o tratar una enfermedad
inflamatoria o autoinmune.
En un aspecto relacionado, se proporciona un
vector de ácido nucleico en el que uno o más dinucleótidos CpG de
la fórmula
5'-purina-pirimidina-C-G-pirimidina-pirimidina-3'
ó
5'-purina-purina-C-G-pirimidina-pirimidina-3'
se sustituye(n) por un dinucleótido que no es CpG,
produciendo de ese modo un vector en el que se reduce la actividad
inmunoestimuladora relacionada con la SII. Dichos vectores son
útiles, por ejemplo, en métodos para administrar ácidos nucleicos
inmunomoduladores y/o para administrar un autovector que codifica
una o más autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
autopéptido(s). Por ejemplo, la citosina del dinucleótido CpG
puede sustituirse con guanina, produciendo de ese modo una región
de SIM que posee un motivo GpG de la fórmula
5'-purina-pirimidina-G-G-pirimidina-pirimidina-3'
ó
5'-purina-purina-G-G-pirimidina-pirimidina-3'.
La citosina puede ser sustituida también con cualquier otro
nucleótido que no posea citosina. La sustitución puede conseguirse,
por ejemplo, utilizando mutagénesis sitiodirigida. Habitualmente,
los motivos CpG sustituidos son aquellos CpGs que no están ubicados
en regiones de control importantes del vector (p. ej., las regiones
promotoras). Además, cuando el CpG está ubicado dentro de una
región codificadora de un vector de expresión, normalmente se
selecciona la sustitución de no citosinas para producir una
mutación silenciosa o un codón correspondiente a una sustitución
conservadora del aminoácido codificado.
Por ejemplo, en ciertas realizaciones, se
proporciona un vector pVAX1 modificado en el que se mutan(n)
uno o más dinucleótidos CpG de la fórmula
5'-purina-pirimidina-C-G-pirimidina-pirimidina-3'
sustituyendo la citosina del dinucleótido CpG con un nucleótido que
no posea citosina. El vector pVAX1 es conocido en la técnica y está
disponible comercialmente a través de Invitrogen (Carlsbad,
California). En una realización de ejemplo, el vector pVAX1
modificado posee las siguientes sustituciones de citosina a no
citosina dentro de un motivo CpG:
citosina a guanina en los nucleótidos 784, 1161,
1218 y 1966;
citosina a adenina en los nucleótidos 1264,
1337, 1829, 1874, 1940 y 1997; y
citosina a timina en los nucleótidos 1963 y
1987;
con mutaciones adicionales de citosina a guanina
en los nucleótidos 1831, 1876, 1942 y 1999. (Las designaciones de
los números de los nucleótidos tal y como se han expuesto
anteriormente se hacen de conformidad con el sistema de numeración
para pVAX1 proporcionado por Invitrogen). (Véase el Ejemplo 3,
infra).
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Existen diversos mecanismos para explicar las
propiedades inmunomoduladoras de las SIMs, y entre éstos se incluyen
mecanismos independientes de la estimulación inmunitaria mediada por
SIE (CpG).
"Modulación de, que modula o altera una
respuesta inmunitaria" tal y como se utiliza en el presente
documento hace referencia a cualquier alteración de una(s)
respuesta(s) inmunitaria(s) existente(s) o
potencial(es) contra automoléculas, incluyendo, pero sin
limitarse a, los ácidos nucleicos, lípidos, fosfolípidos,
carbohidratos, autoproteína(s), autopolipéptido(s),
autopéptido(s), complejos proteicos, complejos
ribonucleoproteicos, o derivado(s) de los mismos que se
producen como resultado de la administración de un ácido nucleico
inmunomodulador. Dicha modulación incluye cualquier alteración en
la presencia, capacidad o función de cualquier célula inmunitaria
implicada en o capaz de verse implicada en una respuesta
inmunitaria. Entre las células inmunitarias se incluyen las células
B, células T, células NK, células T NK, células profesionales
presentadoras de antígenos, células no profesionales presentadoras
de antígenos, células inflamatorias o cualquier otra célula capaz de
verse implicada o influir en una respuesta inmunitaria. La
modulación incluye cualquier cambio impartido en una respuesta
inmunitaria existente, una respuesta inmunitaria en desarrollo, una
respuesta inmunitaria potencial o la capacidad de inducir, regular,
influir en o responder a una respuesta inmunitaria. La modulación
incluye cualquier alteración en la expresión y/o función de genes,
proteínas y/u otras moléculas en células inmunitarias como parte de
una respuesta inmunitaria.
La modulación de una respuesta inmunitaria
incluye, pero sin limitarse a ello: la eliminación, supresión o
secuestro de células inmunitarias; la inducción o generación de
células inmunitarias que pueden modular la capacidad funcional de
otras células tales como los linfocitos autoreactivos, las células
presentadoras de antígenos o las células inflamatorias; la
inducción de un estado indiferente en las células inmunitarias,
llamado anergia,; el aumento, disminución o cambio de la actividad o
función de las células inmunitarias o la capacidad para hacerlo,
incluyendo, pero si limitarse a ello, la alteración del patrón de
las proteínas expresadas por estas células. Entre los ejemplos se
incluyen la producción y/o secreción de ciertas clases de moléculas
tales como las citoquinas, las quimioquinas, los factores de
crecimiento, los factores de transcripción, las quinasas, las
moléculas coestimuladoras u otros receptores de superficie celular;
o cualquier combinación de estos casos moduladores.
Las respuestas inmunitarias se caracterizan por
células T colaboradoras y respuestas inmunitarias que producen
citoquinas incluyendo IL-12 e IFN gamma, y están
relacionadas con células B que producen anticuerpos de ciertos
isotipos (generalmente, IgG2a en los ratones; generalmente, IgG1 e
IgG3 en los seres humanos). Las respuestas inmunitarias de tipo Th1
predominan en las enfermedades autoinmunes y están relacionadas con
lesiones tisulares mediadas de forma autoinmune. Por contraste, las
respuestas inmunitarias Th2 se caracterizan por células T
colaboradoras y respuestas inmunitarias que producen citoquinas
incluyendo IL-4 e IL-10 y están
relacionadas con células B que producen anticuerpos de ciertos
isotipos (generalmente, IgG1 en los ratones; generalmente, IgG2 e
IgG4 en los seres humanos). Las respuestas inmunitarias de tipo Th2
están relacionadas con la protección contra las lesiones tisulares
mediadas de forma autoinmune en la autoinmunidad de los roedores y
de los seres humanos.
Los ácidos nucleicos inmunomoduladores podrían
modular respuestas inmunitarias eliminando, secuestrando o
desactivando las células inmunitarias que median o son capaces de
mediar una respuesta inmunitaria no deseada; induciendo, generando
o activando las células inmunitarias que median o son capaces de
mediar una respuesta inmunitaria protectora; cambiando las
propiedades físicas o funcionales de las células inmunitarias (por
ejemplo suprimiendo una respuesta de tipo Th1 y/u induciendo una
respuesta de tipo Th2); o una combinación de estos efectos. Entre
los ejemplos de las mediciones de la modulación de una respuesta
inmunitaria se incluyen, pero sin limitarse a ello, el examen de la
presencia o ausencia de poblaciones de células inmunitarias
(utilizando la citometría de flujo, la inmunohistoquímica, la
histología, la microscopía de electrones, la reacción en cadena de
polimerasa); la medición de la capacidad funcional de las células
inmunitarias incluyendo la habilidad o resistencia para proliferar
o dividir en respuesta a una señal (por ejemplo utilizando ensayos
de proliferación de células T y análisis pepscan basados en la
incorporación de 3H-timidina tras la estimulación
con anticuerpo anti-CD3, anticuerpo
anti-receptor de células T, anticuerpo
anti-CD28, ionoforos de calcio, PMA, células
presentadoras de antígenos cargadas con un antígeno peptídico o
proteico; ensayos de proliferación de células B); la medición de la
habilidad para matar o provocar la lisis de otras células (como por
ejemplo los ensayos con células T citotóxicas); las mediciones de
las citoquinas, las quimioquinas, las moléculas de la superficie
celular, los anticuerpos y otros productos de las células (mediante
citometría de flujo, ensayos inmunoabsorbentes ligados a enzimas,
análisis de inmunoelectrotransferencia de tipo Western, análisis de
microsecuencias proteicas, análisis de inmunoprecipitación); la
medición de los marcadores bioquímicos de la activación de las
células inmunitarias o vías de señalización dentro de las células
inmunitarias (análisis de inmunoelectrotransferencia de tipo
Western y de inmunoprecipitación de la fosforilación de tirosina,
serina o treonina, división polipeptídica y formación o disociación
de complejos proteicos; análisis de secuencias proteicas; perfilado
transcripcional de ADN utilizando secuencias de ADN o hibridización
sustractiva); las mediciones de la muerte celular mediante
apoptosis, necrosis u otros mecanismos (tinción con anexina V,
ensayos TUNEL, electroforesis en gel para medir la fragmentación
del ADN, histología; ensayos con caspasas fluorogénicas, análisis de
inmunoelectrotransferecia de tipo Western de los sustratos de
caspasa); la medición de los genes, proteínas y otras moléculas
producidas por las células inmunitarias (análisis de
inmunoelectrotransferencia de tipo Northern, reacción en cadena de
polimerasa, microsecuencias de ADN, microsecuencias proteicas,
electroforesis en gel en 2 dimensiones, análisis de
inmunoelectrotransferencia de tipo Western, ensayos
inmunoabsorbentes ligados a enzimas, citometría de flujo); y la
medición de resultados clínicos tales como la mejora de resultados
autoinmunes, neurodegenerativos y otros resultados de las
enfermedades (puntuaciones clínicas, requisitos para el uso de
terapias adicionales, estado funcional, estudios de imágenes).
Otros investigadores han llevado a cabo
experimentos para evaluar los mecanismos de acción de las SIIs. Esos
investigadores demostraron que los motivos de SIIs neutralizadores
o supresores (GpGs), bloquean la estimulación inmunitaria de SIE
(CpG) (Krieg et al., PNAS, 95: 12631, 1998; Patentes
estadounidenses 6.225.292 y 6.339.068). Las SIIs en esos
experimentos se utilizaron para contrarrestar, inhibir, competir
contra o superar los efectos de las SIEs (de tales fuentes como las
bacterias, virus, parásitos y ADN administrados de forma exógena tal
como en la vacunación con ADN o la terapia génica). Las SIEs y las
SIIs han mostrado que se introducen en la misma célula, lo que
sugiere que un mecanismo por el que las SIIs inhiben SIEs es a
través de la competición directa dentro de la misma célula (Yamada
et al., J. Immunology, 2002, 169: 5590).
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Los ácidos nucleicos inmunomoduladores se
preparan como una composición que comprende un portador
farmaceúticamente aceptable. Los portadores farmaceúticamente
aceptables preferentes para el uso con el ácido nucleico
inmunomodulador de la invención pueden incluir soluciones,
suspensiones y emulsiones acuosas o no acuosas esterilizadas.
Ejemplos de disolventes no acuosos son el propilenglicol, el
polietilenglicol, los aceites vegetales tales como el aceite de
oliva, y ésteres orgánicos inyectables tales como el oleato de
etilo. Entre los portadores acuosos se incluyen el agua, las
soluciones, emulsiones o suspensiones alcohólicas/acuosas,
incluyendo los medios salinos y tamponados. Entre los vehículos
parenterales se incluyen la solución de cloruro sódico, la dextrosa
de Ringer, el cloruro de sodio y dextrosa, la solución de Ringer
lactatada o los aceites fijos. Entre los vehículos intravenosos se
incluyen los regeneradores de fluidos y nutrientes, los
regeneradores de electrolitos (tales como los basados en la
dextrosa de Ringer) y vehículos similares. También pueden estar
presentes conservantes y otros aditivos tales como, por ejemplo,
antimicrobianos, antioxidantes, agentes quelatantes y gases inertes
y similares. Una composición de ácidos nucleicos inmunomoduladores
puede también liofilizarse utilizando medios bien conocidos en la
técnica, para una reconstitución y uso posteriores de conformidad
con la invención. Los ácidos nucleicos inmunomoduladores pueden
mezclarse para formar una composición farmacéutica que contenga
múltiples copias de una SIM individual, una combinación de
diferentes SIMs, una combinación de SIMs donde cada una esté
presente en la misma concentración molar relativa, una combinación
de SIMs donde cada una esté presente en diferentes concentraciones
molares relativas, o SIMs individuales y/o diferentes incorporadas
a plásmidos vector de expresión recombinantes, polinucleótidos
lineales, virus y vectores virales, bacterias, y otras composiciones
vivas, inactivadas o sintéticas que contengan oligonucleótidos.
Los ácidos nucleicos inmunomoduladores de esta
invención pueden formularse con sales para su uso como productos
farmacéuticos. Los ácidos nucleicos inmunomoduladores pueden
prepararse con bases orgánicas o inorgánicas no tóxicas. Entre las
sales con base inorgánica se incluyen el sodio, el potasio, el zinc,
el calcio, el aluminio, el magnesio, etc. Entre las bases orgánicas
no tóxicas se incluyen las sales de aminas primarias, secundarias y
terciarias, y similares. Dichos ácidos nucleicos inmunomoduladores
pueden formularse con forma liofilizada para su reconstitución
antes de su administración, tal como el agua esterilizada o una
solución salina. De manera alternativa, los ácidos nucleicos
inmunomoduladores pueden formularse en soluciones, suspensiones o
emulsiones que implican vehículos con base acuosa o de aceite para
su administración. Los ácidos nucleicos inmunomoduladores pueden
liofilizarse y después reconstituirse con agua esterilizada antes de
su administración.
Como es conocido para las personas medianamente
expertas en la técnica, existe una gran variedad de métodos para
administrar ácidos nucleicos a los sujetos. En algunas
realizaciones, el ácido nucleico inmunomodulador se administra como
un ácido nucleico desnudo. Por ejemplo, en ciertas realizaciones, se
mezclan partículas virales (p. ej. partículas de adenovirus,
véase, p. ej., Curiel et al., Am. J. Respir. Cell Mol.
Biol., 6: 247-52, 1992, supra) con el ácido
nucleico desnudo antes de administrarlo para producir una
formulación que contenga partículas virales sin encapsular el ácido
nucleico pero que aún así facilitará su administración. De manera
alternativa, en otras realizaciones, el ácido nucleico
inmunomodulador se encapsula o forma complejo con una molécula que
se une al ácido nucleico tal como, por ejemplo, las substancias
catiónicas (p. ej., lípidos catiónicos o
DEAE-dextrano). Por ejemplo, los liposomas
representan los medios efectivos para formular y administrar los
oligonucleótidos y/o autopolinucleótidos. En otras realizaciones
específicas, el ácido nucleico inmunomodulador se incorpora a un
vector viral, partícula viral o bacteria para su administración
farmacológica. Los vectores virales pueden ser competentes desde el
punto de vista de la infección, atenuados (con mutaciones que
reducen la capacidad para inducir la enfermedad) o deficientes
desde el punto de vista de la replicación. En otras realizaciones,
el ácido nucleico se conjuga con soportes sólidos incluyendo
partículas de oro, soportes con base de polisacáridos u otras
partículas o perlas que pueden inyectarse, inhalarse o administrarse
mediante el bombardeo de partículas (administración balística).
Los métodos para administrar preparados de ácido
nucleico son conocidos en la técnica. Véanse p. ej., las
Patentes estadounidenses nº 5.399.346, 5.580.859 y 5.589.466. Se han
desarrollado cierto número de sistemas con base viral para la
transferencia a las células de mamíferos. Por ejemplo, se han
descrito sistemas retrovirales (Patente estadounidense nº
5.219.740); (Miller et al., Biotechniques, 7:
980-990, 1989); (Miller, A.D., Human Gene Therapy,
1: 5-14, 1990); (Scarpa et al., Virology,
180: 849-852, 1991); (Bums et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 90: 8033-8037, 1993) y
(Boris-Lawrie y Temin, Cur. Opin. Genet. Develop.,
3: 102-109, 1993). También se han descrito cierto
número de vectores de adenovirus, véanse, p. ej.,
(Haj-Ahmad et al., J. Virol., 57:
267-274, 1986); (Bett et al., J. Virol., 67:
5911-5921, 1993); (Mittereder et al., Human
Gene Therapy, 5: 717-729, 1994); (Seth et
al., J. Virol., 68: 933-940, 1994); (Barr et
al., Gene Therapy, 1: 51-58, 1994); (Berkner,
K.L., BioTechniques, 6: 616-629, 1988) y (Rich
et al., Human Gene Therapy, 4: 461-476,
1993). También se han desarrollado sistemas de vectores de virus
adeno-asociado (VAA) para la administración de ácido
nucleico. Los vectores de VAA pueden elaborarse fácilmente
utilizando métodos bien conocidos en la técnica. Véanse, p.
ej., las Patentes estadounidenses nº 5.173.414 y 5.139.941; las
Publicaciones Internacionales nº WO 92/01070 (publicada el 23 de
enero de 1992) y WO 93/03769 (publicada el 4 de marzo de 1993);
(Lebkowski et al., Molec. Cell. Biol., 8:
3988-3996, 1988); (Vincent et al., Vaccines,
90 (Cold Spring Harbor Laboratory Press) 1990); (Carter, B.J.,
Current Opinion in Biotechnology, 3: 533-539, 1992);
(Muzyczka, N., Current Topics in Microbiol. and Immunol., 158:
97-129, 1992); (Kotlin, R.M., Human Gene Therapy, 5:
793-801, 1994); (Shelling et al., Gene
Therapy, 1: 165-169, 1994) y (Zhou et al., J.
Exp. Med., 179: 1867-1875, 1994).
Las SIMs de esta invención también pueden
administrarse sin un vector. Por ejemplo, la molécula puede
introducirse en liposomas antes de administrarla al sujeto. La
encapsulación lipídica se consigue generalmente utilizando
liposomas que son capaces de unir de forma estable o atrapar y
retener el ácido nucleico. Para una revisión del uso de los
liposomas como portadores a la hora de administrar los ácidos
nucleicos, véanse, (Hug et al., Biochim. Biophys.
Acta., 1097: 1-17, 1991); (Straubinger et
al., en Methods of Enzymology, Vol. 101, pp.
512-527, 1983). Por ejemplo, los lípidos que pueden
utilizarse de conformidad con la invención incluyen, pero sin
limitarse a ello, DOPE (dioleoil fosfatidiletanolamina), colesterol
y CUDMEDA
(N-(5-calostro-3-ol
3
uretanil)-N',N-dimetiletilendiamina).
Como ejemplo, el ADN puede administrarse en una solución que
contenga una de las siguientes formulaciones de liposomas
catiónicos: Lipofectin^{TM} (LTI/BRL), Transfast^{TM} (Promega
Corp), Tfx50^{TM} (Promega Corp), Tfx.10^{TM} (Promega Corp) ó
Tfx20^{TM} (Promega Corp).
Se administran "cantidades terapéuticamente
efectivas" de los ácidos nucleicos inmunomoduladores de
conformidad con las enseñanzas de esta invención y será suficiente
para tratar o prevenir la enfermedad por ejemplo mejorando o
eliminando los síntomas y/o la causa de la enfermedad. Por ejemplo,
las cantidades terapéuticamente efectivas están dentro de una
amplia gama y son determinadas mediante ensayos clínicos y para un
paciente en concreto se determinan basándose en factores conocidos
por el médico medianamente experto en la técnica incluyendo la
gravedad de la enfermedad, el peso del paciente, la edad y otros
factores. Las cantidades terapéuticamente efectivas de los ácidos
nucleicos inmunomoduladores están dentro de la gama de
aproximadamente 0,001 microgramos a aproximadamente 1 gramo. Una
cantidad terapéutica preferente de ácido nucleico inmunomodulador se
encuentra dentro de la gama de aproximadamente 5 microgramos a
aproximadamente 1000 microgramos de cada. Una cantidad terapéutica
más preferente de un ácido nucleico inmunomodulador se encuentra
dentro de la gama de aproximadamente 50 a 200 microgramos. La
terapia con ácido nucleico inmunomodulador se administra a diario,
cada dos días, dos veces a la semana, una vez a la semana, cada dos
semanas o una vez al mes de forma continuada. Si se administra en
conjunción con terapias de polinucleótidos que codifican
autoproteínas, autopolipéptidos o péptidos, entonces, el régimen
terapéutico puede administrarse durante diversos periodos tales como
6-12 meses, y después cada 3-12
meses como dosis de mantenimiento. Pueden desarrollarse regímenes de
tratamiento alternativos dependiendo de la gravedad de la
enfermedad, la edad del paciente, el oligonucleótido y/o
polinucleótido que codifica autoproteína(s),
autopolipéptido(s)
o autopéptido(s) que se esté administrando y tales otros factores que el médico que haga el tratamiento ordinario considere.
o autopéptido(s) que se esté administrando y tales otros factores que el médico que haga el tratamiento ordinario considere.
En una realización, los ácidos nucleicos
inmunomoduladores se administran mediante una inyección
intramuscular. En otra realización, los ácidos nucleicos
inmunomoduladores se administran de forma intranasal, oral,
subcutánea, intradérmica, intravenosa, aplicados a través de la
piel, intraocular, intraarticular, intravaginal, intrarectal, a
través de las mucosas o unidos a partículas de oro administradas a o
a través de la dermis (véase, p. ej., WO 97/46253). De
manera alternativa, el ácido nucleico puede administrarse a las
células de la piel mediante una aplicación tópica con o sin
liposomas o lípidos cargados (véase, p. ej., la Patente
estadounidense nº 6.087.341). Aún otra alternativa es la de
administrar el ácido nucleico como un agente inhalado. En el caso
de la terapia de combinación que comprende la administración de
ácidos nucleicos inmunomoduladores y polinucleótidos que codifican
autoproteína(s), autopolipéptido(s) o
autopéptido(s), el ácido nucleico inmunomodulador y el
polinucleótido pueden administrarse en el mismo sitio, o en
diferentes sitios, así como al mismo tiempo, o en momentos
diferentes.
Antes de administrar los ácidos nucleicos
inmunomoduladores, el sitio de administración puede precondicionarse
mediante el tratamiento con bupivacaína, cardiotoxina u otro agente
que puede mejorar la administración de una posterior terapia con
polinucleótidos. Tales regímenes precondicionantes se administran
generalmente de 12 a 96 horas antes de la administración del
polinucleótido terapéutico, más frecuentemente de 24 a 48 horas
antes de la administración de los ácidos nucleicos inmunomoduladores
terapéuticos. De manera alternativa, no se da ningún tratamiento
precondicionante antes de la terapia con SIM.
Los ácidos nucleicos inmunomoduladores y/o el
autovector que comprenden un polinucleótido que codifica
la(s) autoproteína(s), el/los
autopolipéptido(s) o autopéptido(s) pueden
administrarse en combinación con otras substancias, tales como
agentes farmacológicos, adyuvantes, citoquinas, autolípidos,
autoproteína(s), autopéptido(s),
autopolipéptido(s), autoglicolípido(s),
autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s) y
autoproteína(s), péptido(s),
polipéptido(s)
y glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional y terapias basadas en ADN, o en conjunción con la administración de vectores que codifican citoquinas.
y glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional y terapias basadas en ADN, o en conjunción con la administración de vectores que codifican citoquinas.
En otra realización, los ácidos nucleicos
inmunomoduladores se administran en combinación con otras terapias.
Dichas terapias podrían incluir, por ejemplo, ácidos nucleicos
inmunomoduladores administrados en combinación con automoléculas
incluyendo, pero sin limitarse a ello, ADN que codifica
automoléculas, por ejemplo en el caso de la terapia con
polinucleótidos (véase la Publicación de la Solicitud de
Patente USA 20030148983), o con autolípidos,
autoproteína(s), autopéptido(s),
autopolipéptido(s), autoglicolípido(s),
autocarbohidrato(s), autoglicoproteína(s)
y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional, o cualquier otro compuesto terapéutico utilizado para tratar enfermedades autoinmunes.
y autoproteína(s), péptido(s), polipéptido(s) o glicoproteína(s) modificados de forma post-traslacional, o cualquier otro compuesto terapéutico utilizado para tratar enfermedades autoinmunes.
Se conseguirá una comprensión más profunda de la
presente invención con la referencia de la siguiente descripción que
presenta realizaciones ilustrativas.
\vskip1.000000\baselineskip
Se llevaron a cabo una serie de experimentos que
confirman diversos estudios previos que indicaban que una SIM puede
inhibir la estimulación por secuencias que contienen SIE (CpG). Esos
experimentos son los siguientes:
Se sabe que los ODN-CpG
estimuladores activan las células inmunitarias derivadas del bazo
incluyendo las células dendríticas, los macrófagos, las células T y
las células B (véanse, Krieg et al., Nature, 374:
546-549, 1995; Yi et al., J. Immunol., 157:
5394-5402, 1996; Klinman et al., Proc Nat.
Acad. Sci. USA, 93: 2879-2883, 1996;
Martin-Orozco et al., Int. Immunol., 11:
1111-1118, 1999; Sparwasser et al., Eur. J.
Immunol., 28-2045-2054, 1998). Se
evaluaron los efectos de la SIM midiendo la proliferación global de
los esplenocitos naive. Elaboramos una secuencia de
oligonucleótidos 22-mer que contenía una única
secuencia 5'-AACGTT-3'
(ODN-CpG) o una secuencia de SIM
5'-AAGGTT-3' con una espina dorsal
de fosforotioato para proteger el ADN de la degradación por
nucleasas. Para determinar si la adición de la SIM contrarrestaría
los efectos de los ODN-CpG estimuladores; se
cultivaron esplenocitos completos naive aislados con 5 \mug/ml de
ODN-CpG estimuladores solo y con concentraciones
cada vez mayores de SIM. Tras 48 horas, la proliferación de
esplenocitos completos disminuyó a la mitad ante la adición de 1
\mug/ml de SIM, y disminuyó a un tercio con la adición de 5
\mug/ml y 10 \mug/ml de SIM (Figura 1A).
Se ha mostrado que el RPT-9
reconoce los motivos CpG de ADN bacteriano (Hemmi et al.,
Nature, 408: 740-745, 2000). Para determinar si un
simple cambio de C a G en un par de bases alteraría este
reconocimiento, se cultivaron por separado esplenocitos completos
naive aislados de ratones de tipo salvaje (WT) con
RPT-9 y de tipo knockout (KO) con
RPT-9 con ODN-CpG, SIM y
combinaciones de ambos. Como control independiente, se añadió
lipopolisacárido (LPS) para mostrar que los esplenocitos KO con
RPT-9 aún eran capaces de proliferar ante un
estímulo mitogénico no específico. La adición de
ODN-CpG estimuladores dio por resultado una fuerte
respuesta proliferativa que se suprimió de forma significativa
mediante la adición de SIM (Figura 1B). La combinación de LPS con
ODN-CpG estimuladores incrementó la proliferación
de los esplenocitos en comparación con la estimulación con LPS solo.
Sin embargo, los efectos moduladores de la SIM eran aún evidentes
incluso con la adición de LPS.
La ausencia del receptor RPT-9
de los esplenocitos KO con RPT-9 derogó los efectos
proliferativos de los ODN-CpG en comparación con
los esplenocitos WT con RPT-9. De manera similar,
los esplenocitos KO con RPT-9 no respondieron a la
SIM. Al añadir LPS a los esplenocitos KO con RPT-9,
la SIM sola y en combinación con ODN-CpG
estimuladores no influyó en la respuesta proliferativa cuando se
compara con los esplenocitos WT con RPT-9. Esto
implica que la SIM puede que esté impidiendo que los
ODN-CpG estimuladores continúen a través de la vía
de señalización de RPT-9.
El reconocimiento de ODN-CpG
estimuladores mediante RPT-9 desencadena la
inducción de las vías de señalización celular que culmina en la
activación de NF-\kappaB (Krieg, Ann. Rev.
Immunol., 20: 709-760, 2002). Para esclarecer el
mecanismo de la SIM sobre los ODN-CpG estimuladores,
se investigó el papel de la actividad de
NF-\kappaB a través de la fosforilación de
l\kappaB-\alpha en Serina 32. El análisis por
inmunoelectrotransferencia de tipo Western de extractos de
esplenocitos activados con el oligo indicado confirma la
fosforilación de l\kappaB-\alpha en Serina 32
por parte de los ODN-CpG estimuladores (Figura 1C,
fila 2). En consecuencia, la SIM no indujo la fosforilación de
l\kappaB-\alpha en Serina 32 (Figura 1C, fila
3). Curiosamente, la combinación de ODN-CpG
estimuladores y SIM dio por resultado una marcada reducción en la
fosforilación de l\kappaB-\alpha en Serina 32
(Figura 1C, fila 5). Este resultado indica que un mecanismo por el
que las SIMs funcionan es el de competir con los
ODN-CpG estimuladores por el reconocimiento y la
unión por parte de elementos de la vía de señalización de
RPT-9.
Se ha mostrado que los ODN-CpG
incrementan la expresión del CPH de clase II
(Martin-Orozco et al., Int. Immunol., 11:
1111-1118, 1999). Para cuantificar la concentración
relativa del mensaje para la molécula del CPH de clase II, se llevó
a cabo un análisis de RCP cuantitativo (RCPC) en ADNc a partir de
muestras de ARN purificado de cultivos de esplenocitos completos.
Se normalizaron las señales en relación con la cantidad de mensaje
para la \beta-actina. Se incrementó el ARNm del
CPH de clase II en los esplenocitos estimuladores incubados con
ODN-CpG, pero no en los esplenocitos incubados con
SIM (Figura 2A). La disminución de la expresión de la superficie
celular del CPH de clase II por la SIM se confirmó mediante análisis
con escáner celular activado por fluorescencia (FACScan). La SIM
suprimió la activación de la expresión de la superficie celular del
CPH de clase II por los ODN-CpG estimuladores de
una manera dosis-dependiente (Figura 2B).
Para determinar si la SIM reducía la activación
de las células presentadoras de antígenos (CPA), también se analizó
la expresión de la superficie celular de diversos marcadores de
activación de CPA. Se incubaron esplenocitos naive durante 72 horas
con las concentraciones indicadas de oligonucleótidos de control
irrelevantes, estimuladores o inhibidores. El análisis con FACScan
indica que la SIM suprimía la expresión de la superficie celular
inducida por ODN-CpG estimuladores de CD40 (Figura
2C), CD80 (Figura 2D) y CD86 (Figura 2E) de una manera
dosis-dependiente. Por contraste, se incrementó la
expresión de la molécula de presentación glicolipídica, CDId (Figura
2F) mediante la SIM de una manera
dosis-dependiente.
Para perfilar el efecto sobre la producción de
citoquinas de las células inmunitarias por el oligonucleótido
inmunomodulador, se extrajeron esplenocitos naive de animales y se
incubaron durante 72 horas con las concentraciones indicadas de
SIM, ODN-CpG estimuladores u oligonucleótido de
control irrelevante. La SIM sola no indujo la producción de IL6
(Figura 3A) e IL12p40 (Figura 3B), pero cuando se combinó con
ODN-CpG estimuladores, suprimió la producción de
citoquinas de una manera dosis-dependiente.
La encefalomielitis autoinmune experimental
(EAE) es un modelo de enfermedad animal mediada por Th1 de la
esclerosis múltiple. La inflamación del sistema nervioso central
inducida en la enfermedad de EAE da por resultado una parálisis
incremental como resultado de la desmielinización y la infiltración
inflamatoria de la materia blanca. La inducción activa de la EAE
requiere la inmunización del animal con péptido o antígeno de
mielina en adyuvante completo de Freund, que contiene micobacterias
inactivadas por calor.
Después investigamos la administración de SIM
in vivo como un método de prevención de la inducción de la
EAE. Se inmunizó a ratones SJL/J de forma subcutánea contra la
inducción de la enfermedad con péptido de
PPL_{139-151} en ACF. Simultáneamente, se
administró de forma intraperitoneal el oligonucleótido indicado
resuspendido en solución salina tamponada con fosfato como una única
inyección. Los ratones tratados con solamente una única inyección
de SIM inhibidora mostraron una disminución de la gravedad global de
la enfermedad en comparación con los ratones tratados con SSTF y los
ratones tratados con ODN-CpG estimulador (Figura
4).
\vskip1.000000\baselineskip
Habiendo demostrado que la SIM suprimía las
células T mielina-específicas naive no
comprometidas, analizamos si podría tener efectos diferenciales en
las células Th1 o Th2 comprometidas en ausencia y presencia de
ODN-CpG. Los ODN-CpG estimuladores
incrementaban la proliferación de una línea celular Th1 específica
de PPL_{139-151}, mientras que la SIM suprimía su
proliferación (Figura 5A). La combinación de SIM y
ODN-CpG estimulador disminuía el aumento de la
proliferación de células Th1 específicas de
PPL_{139-151} causada por ODN-CpG
solo.
Se emprendieron investigaciones similares con
una línea celular Th2 específica de PPL_{139-151}.
Los ODN-CpG estimuladores suprimían la
proliferación de la línea celular Th2 específica de
PPL_{139-151} (Figura 5B). Sorprendentemente, la
SIM aumentó la proliferación de la línea celular Th2. Por
consiguiente, los ODN-CpG actúan como un inhibidor
de las células Th2 específicas de PPL_{139-151},
mientras que la SIM sola, esto es, en ausencia de SIE, modula las
células Th2 específicas de PPL_{139-151}. En su
conjunto, estos inesperados y sorprendentes resultados establecen
que la SIM de esta invención inhibe las células Th1 autoinmunes y
aumenta la función protectora de las células Th2,
independientemente de los ODN-SIE (CpG).
Se administraron SIM a ratones SJL 14 y 7 días
antes de la inducción de la EAE con PPL_{139-151}
en ACF. Este protocolo introduce la SIM en el sistema inmunitario
durante dos semanas en ausencia de cualquier SIE añadida. Los
ratones tratados con SIM sufrieron un retraso en la aparición de la
enfermedad y una disminución de la gravedad global de la enfermedad
en comparación con los ratones sin tratar (Figura 6).
\vskip1.000000\baselineskip
Basándonos en los resultados del oligonucleótido
de SIM demostrando el beneficio de las secuencias GpG a la hora de
reducir la gravedad de una enfermedad y a la hora de producir un
cambio de Th2 en la población de células T autoreactivas, hemos
creado un vector modificado incorporando secuencias GpG dentro de la
espina dorsal del vector. Comenzamos con el vector pVAX1
(Invitrogen, Carlsbad, California) que es el vector plasmídico
utilizado de forma predominante en nuestros experimentos de la EAE y
que ha sido diseñado para satisfacer todos los requisitos
reglamentarios para su uso en seres humanos. Entonces examinamos el
vector en busca de los motivos CpG que se corresponden con el motivo
CpG humano consenso conocido para analizar la estimulación
inmunitaria, esto es,
Pu-Py-C-G-Py-Py.
Determinamos que en una hebra del pVAX1, existen 16 de dichos
elementos CpG. Utilizando la mutagénesis
sitio-dirigida modificamos 12 de esos sitios tal y
como se resume en la Tabla 1. Los sitios CpG restantes tenían lugar
dentro de regiones de control importantes del vector y, por
consiguiente, no se modificaron. Donde fue posible, se cambió la C
en el motivo CpG a una G para que se correspondiera con el motivo
secuencial de las secuencias oligo GpG utilizadas en el
oligonucleótido de SIM. Esto se hizo en cuatro de los 12 sitios
modificados. Los otros ocho sitios se modificaron no a GpG sino de
tal manera que la C dentro del motivo CpG se cambiara a o bien una A
ó una T. De esta forma, se eliminó el motivo CpG inmunoestimulador
potencialmente impulsor de Th1. El vector así construido se ha
denominado pBHT1.
El vector pBHT1 se examinó mediante ensayos
in vitro para determinar si existe de hecho un grado reducido
de inmunoestimulación en comparación con el pVAX1 no modificado.
Los ensayos se llevaron a cabo utilizando esplenocitos frescos
completos de ratones SJL/J como una fuente de células inmunitarias.
Se utilizaron esplenocitos completos porque se sabe que los
oligonucleótidos CpG estimuladores activan las células inmunitarias
derivadas del bazo incluyendo las células dendríticas, los
macrófagos, las células T y las células B. Entre los ensayos que se
llevaron a cabo estaban incluidos el ensayo de proliferación, el
análisis con FACS y el ELISA para medir la producción de
citoquinas. Se utilizaron oligonucleótidos CpG como un control de la
activación inmunitaria y se utilizaron oligonucleótidos de SIM GpG
como control de la inhibición inmunitaria.
En los ensayos de control, la proliferación se
llevó a cabo incubando esplenocitos aislados con 10 \mug/ml de o
bien oligo CpG u oligo de SIM GpG durante 24 horas. Además, los
esplenocitos se incubaron durante 24 horas con tres concentraciones
diferentes de vector vacío pVAX1 o vector vacío pBHT1 como en la
Figura 7. Tal y como muestran los índices de estimulación, el
vector pVAX1 tenía un grado mayor de proliferación en comparación
con el vector pBHT1 en cada una de las concentraciones del vector.
Aunque la magnitud de la estimulación es menor (probablemente
porque la cantidad molar de las secuencias estimuladoras es mayor en
una concentración dada de oligo que en el plásmido), la tendencia
resultante en la estimulación guardaba correlación con la observada
con los dos oligos. Esto es, que existe menos estimulación con el
oligo de SIM GpG y también hay menos estimulación con el vector
pBHT1.
Para determinar si el oligonucleótido de SIM GpG
reducía la activación de las células presentadoras de antígenos
(CPA), se analizó la expresión de la superficie celular de CD16/32
como un marcador de para la activación de CPAs. Se incubaron
esplenocitos naive durante 48 horas con 10 \mug/ml de o bien oligo
CpG u oligos de SIM GpG. Se recogieron las células y se midieron
mediante análisis con FACScan en busca de la expresión de CD16/32.
Mientras que los oligos CpG causan la activación de CD16/32, el
oligo de SIM GpG inmunomodulador suprimía la expresión de la
superficie celular de CD16/32 casi al nivel del de los medios solos
(Figura 8A). Entonces determinamos si el vector pBHT1 modificado se
comportaba de una manera similar en términos de activación de
CD16/32. Los esplenocitos se incubaron durante 48 horas con 100
\mug/ml de o bien vector vacío pVAX1 o vector vacío pBHT1. De
nuevo, se produjo una reducción en la activación de CD16/32 con el
vector pBHT1, indicado por una reducción en la activación de las
CPAs (Figura 8B).
Se sabe que los oligonucleótidos CpG causan la
activación de las células inmunitarias de tal manera que se
incrementa la secreción de múltiples citoquinas. Llevamos a cabo
ensayos de la forma antes mencionada en los que los esplenocitos se
incubaron con oligo CpG u oligo de SIM GpG durante el tiempo
indicado y la secreción de diversas citoquinas se midió mediante
sándwich ELISA. Además, los esplenocitos se incubaron con vector
vacío pVAX1 y pBHT1 para determinar si las modificaciones en pBHT1
tenían un efecto similar en la producción de citoquinas. Tal y como
se muestra en la Figura 9, el oligo CpG causa la inducción de la
secreción de IL6, IL10 e IFN-\gamma a partir de
esplenocitos naive. El oligo de SIM GpG, sin embargo, no induce la
producción de ninguna de estas citoquinas. Cuando la producción de
citoquinas inducida por el vector pVAX1 se compara con la del
vector pBHT1, existe una tendencia similar en la reducción de
producción de IL6, IL10 e IFN-\gamma con pBHT1.
Aunque sigue existiendo una inducción algo mayor de la producción de
citoquinas por pBHT1 en contraste con la SIM GpG en la que no había
casi ninguna inducción de las citoquinas, el grado de inducción es
mucho menor que el que existe con pVAX1. Este pequeño grado de
inducción es probablemente debido a las secuencias CpG que no
pudieron modificarse y que permanecen en la espina dorsal del
vector. De hecho, probablemente no querríamos un vector
completamente inocuo que no causara ninguna inducción inmunitaria,
como tal, un vector puede que no tenga ninguna eficacia a la hora
de causar que el sistema inmunitario reaccione de una manera
favorable ante la vacuna con ADN.
En el modelo de la EAE se han llevado a cabo
experimentos in vivo que evalúan la eficacia del enfoque
terapéutico con ADN polinucleótido tolerizante utilizando un
autoantígeno dentro del vector pBHT1. El ADN que codifica el
autoantígeno, PPL (proteína proteolipídica) de ratón, se incorporó
dentro del vector pBHT1 y se administró de forma intramuscular a
ratones SJL (véase la Figura 10). El modelo utilizado en el presente
documento es un modelo de tratamiento en vez de un modelo de
prevención en que en los ratones primero se indujo la EAE con el
péptido PPL_{139-151} en ACF (adyuvante completo
de Freund), y después, varios días después de la aparición de la
enfermedad (en el día 20) éstos se repartieron de forma aleatoria en
diferentes grupos de tratamiento. Después se administraron de forma
intramuscular cincuenta \mug de PPL de ratón codificado dentro
del vector pBHT1 o cincuenta \mug de un vector de control vacío
pBHT1 en tres frecuencias de dosis diferentes. Tal y como se
muestra en la Figura 10, existe una reducción en la clasificación
media de la enfermedad de la EAE en todos los grupos de
tratamiento, más notablemente en una frecuencia de cada dos o cada
cuatro semanas. Estudios previos que utilizaban terapia
polinucleótida con autoantígenos con un vector que no es pBHT1 han
demostrado una reducción en las tasas de recaída en este tipo de
modelo de tratamiento de la EAE. Sin embargo, esos estudios previos
no han demostrado una reducción de este parámetro de la gravedad de
la EAE (esto es, la clasificación media de la enfermedad) en un
modelo de tratamiento, tal y como se demuestra aquí con la terapia
polinucleótida con autoantígenos en el vector pBHT1.
Nuestra conclusión es que el vector pBHT1 actual
está ahora más optimizado para su uso en el tratamiento de
enfermedades autoinmunes mediadas por Th1 tales como la EM. Por
consiguiente, los genes de autoantígenos humanos están clonados en
el vector pBHT1 para su uso como terapia polinucleótida en las
enfermedades humanas.
\vskip1.000000\baselineskip
Una terapia polinucleótida con ADN compuesta de
ADNcs de longitud completa que codifican los cuatro componentes más
importantes de la mielina, PBM, MAG, MOG y LPL trató la enfermedad
recidiva en el modelo animal de la EAE cuando se administró tras la
aparición inicial de la enfermedad. Además, con la adición de ADN
que codifica IL-4 a la terapia polinucleótida con
ADN de mielina, la eficacia del tratamiento aumenta más aún al
producirse un descenso en la tasa de recaídas. Sin embargo, a pesar
de la reducción en las recaídas, la gravedad global de la enfermedad
es aún comparable a la del grupo de control.
Se inmunizó a ratones SJL/J hembras de forma
subcutánea con 100 \mug de PPL_{139-151} en SSTF
emulsionada en ACF, consistente en AIF y 0,5 mg de Mycobacterium
tuberculosis inactivada por calor. Doce días después de la
inmunización, en el momento de la aparición de la enfermedad, se
inyectó a los ratones en ambos cuádriceps con un total de 0,1 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectó de forma intramuscular en ambos cuádriceps a
ratones seleccionados con una mezcla de ADN que contenía 25 \mug
de cada uno de los cuatro plásmidos pTARGET diferentes (Promega
Corp. Wisconsin) que codifican PPL, MAG, MOG y PBM murinas de
longitud completa más 50 \mug de plásmido pTARGET que codifica
IL-4 murino de longitud completa en un volumen
total de 0,2 ml. Se administraron inyecciones de ADN en intervalos
semanales a lo largo de seis semanas. Al mismo tiempo que la
vacunación con ADN inicial, se administraron de forma
intraperitoneal 50 \mug de SIM en un volumen de 200 \mul de
SSTF solo o con vacunación con ADN. La SIM se administró cada dos
semanas durante seis semanas. En comparación con los ratones no
tratados y los ratones tratados con terapia polinucleótida con ADN
más un plásmido que codifica IL-4, los ratones
tratados con SIM solo experimentaron una disminución en la gravedad
global media de la enfermedad a lo largo de todo el curso de la
enfermedad (Figura 11). La reducción de la gravedad global media de
la enfermedad era significativamente más espectacular cuando los
ratones se trataban con un cocktail de ADN más IL-4
en combinación con SIM (Figura 11).
Cincuenta y siete días tras la inducción de la
enfermedad de la EAE, los ratones fueron sacrificados y se
extrajeron nódulos linfáticos inguinales y axilares de los ratones y
se agruparon de conformidad con los grupos respectivos. Se aislaron
las células y se estimularon con 10 \mug/ml en
PPL_{139-151} en medios RPMI enriquecidos y SFB
al 10%. Tres días después de la re-estimulación, se
recogieron los sobrenadantes y se cribaron en busca de la
producción de IFN-\gamma, IL-4 e
IL-10 mediante sándwich ELISA. Los perfiles de las
citoquinas para los ratones no tratados y los ratones tratados con
SIM solo o con terapia polinucleótida con ADN más
IL-4 tenían todos una inclinación hacia Th1 con un
incremento de la producción de IFN-\gamma (Figura
12). El grupo tratado con terapia polinucleótida con ADN más
IL-4 en combinación con SIM tenía una inclinación
hacia Th2 con un incremento en la producción de IL-4
e IL-10.
Se aislaron los cerebros y médulas espinales de
este experimento in vivo para realizar un análisis
histológico perfundiendo en los ratones formalina tamponada al 10%,
tras lo cual se extraerán el cerebro y médula espinal y se fijarán
adicionalmente en formalina tamponada al 10%. Se tiñeron muestras
embebidas en parafina con hematoxilina-eosina y
tinción de azul Luxol rápido e impregnación de Bielschowsky. Tal y
como se resume en la Tabla 2, el número total de focos
inflamatorios en las meninges y parénquima y el número de focos de
desmielinización se vieron disminuidos de forma significativa en el
grupo tratado con SIM en comparación con el grupo de control. El
número total de focos inflamatorios en las meninges y parénquima y
el número de focos de desmielinización en los ratones tratados con
terapia polinucleótida con ADN e IL-4 más CpG se
vieron aumentados de forma significativa en comparación con el grupo
de control.
Se produjo una disminución tanto en el número
total de focos inflamatorios como en el número de focos de
desmielinización en el grupo tratado con terapia polinucleótida con
ADN e IL4. El número de focos inflamatorios y el número de focos de
desmielinización se vieron disminuidos adicionalmente en el grupo
tratado con polinucleótidos de ADN e IL4 más SIM.
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Las muestras de suero recogidas en el día
cincuenta y siete de ratones tratados en la Figura 11 se analizó
mediante una novedosa tecnología de microsecuencias proteicas que
permite la perfilación a gran escala de la especificidad de las
respuestas de autoanticuerpos de mielina entre las muestras de la
enfermedad y las de control. Se llevó a cabo un análisis secuencial
y se utilizó SAM para identificar y crear un análisis de grupo
jerárquico para ordenar las características de los antígenos. En la
Figura 13, hubo un incremento significativo en la dispersión de
epítopos de autoanticuerpos de mielina mediante el tratamiento con
terapia polinucleótida con ADN e IL-4 más CpG en
comparación con los ratones de control y los ratones tratados con
SIM solo y terapia polinucleótida con ADN e IL-4.
El tratamiento con terapia polinucleótida con ADN e
IL-4 más SIM incrementó adicionalmente la dispersión
de epítopos de autoanticuerpos de mielina.
Este experimento in vivo se repitió con
resultados similares. En la Figura 14A, en el momento máximo de la
EAE aguda, los ratones fueron tratados con 50 \mug/dosis de o bien
SIM o CpG cada dos semanas. A lo largo de cincuenta y siete días,
hubo una disminución significativa en la gravedad global media de la
enfermedad en los ratones tratados con SIM en comparación con los
ratones tratados con SSTF y los ratones tratados con CpG. En la
Figura 14B, en el momento máximo de la EAE aguda, los ratones fueron
tratados con inyecciones semanales de terapia polinucleótida con
ADN e IL-4, terapia polinucleótida con ADN e
IL-4 más CpG, o terapia polinucleótida con ADN e
IL-4 más SIM. A lo largo de cincuenta y siete días,
la gravedad global media de la enfermedad de los ratones tratados
con terapia polinucleótida con ADN e IL-4 más CpG
era comparable a la de los ratones tratados con SSTF. Hubo una
disminución significativa en la gravedad global media de la
enfermedad en los ratones tratados con terapia polinucleótida con
ADN e IL-4 en comparación con los ratones tratados
con SSTF. La gravedad global media de la enfermedad se vio reducida
más aún en los ratones tratados con terapia polinucleótida con ADN e
IL-4 más SIM.
\vskip1.000000\baselineskip
Los ratones no obesos diabéticos (NOD)
desarrollan diabetes autoinmune espontánea y comparten muchas
características clínicas, inmunológicas e histopatológicas con la
diabetes mellitus insulinodependiente humana (DMID). La enfermedad
se caracteriza por la inflamación de los islotes pancreáticos de
Langerhans y la destrucción de las células \beta, lo que lleva a
la hiperglicemia y la diabetes manifiesta. Tanto las células T CD4+
como las CD8+ son necesarias para que se desarrolle la enfermedad.
Se ha identificado la reactividad ante diversos autoantígenos,
incluyendo la insulina, IA-2 y la descarboxilasa del
ácido glutámico.
La eficacia del tratamiento con SIM en
combinación con ADN que codifica la autoproteína insulina se había
puesto en marcha durante la insulitis invasiva pero antes de la
aparición completa de la DMID. Se obtuvieron ratones hembras NOD/Lt
a las 7 semanas de edad y se metieron en una habitación de acceso
restringido. Los ratones se sometieron a ensayo semanal en busca de
niveles elevados de glucosa en sangre (BGL) comenzando a las 10
semanas de vida y utilizando el Sistema de Monitorización de la
Glucosa Sanguínea One Touch Ultra. Se inició el tratamiento cuando
el BGL estaba entre 200 y 250 mg/dl. Se fueron añadiendo ratones de
forma secuencial a cada grupo a medida que estaban disponibles,
comenzando a la edad de 15 semanas. Se inyectó a los ratones en
ambos cuádriceps un total de 0,2 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectó a los ratones de forma intramuscular en ambos
cuádriceps un vector pVAX1 a 50 \mug/dosis o una mezcla de ADN
conteniendo 50 \mug de cada uno de los tres plásmidos pVAX1
diferentes que codifican Preproinsulina-1,
Preproinsulina-2 murinas de longitud completa e IL4
en un volumen total de 0,2 ml de SSTF. Las inyecciones se pusieron
en intervalos semanales durante cuatro semanas. Al mismo tiempo que
la vacunación inicial con ADN, se administraron de forma
intraperitoneal 50 \mug de SIM en un volumen de 200 \mul en SSTF
solo o con vacunación con ADN. La SIM se administró en intervalos
semanales durante cuatro semanas.
El porcentaje diabético se define como los
ratones con un BGL constante de más de 250 mg/dl. Tras cuatro
inyecciones del tratamiento, se observó la tasa de supervivencia de
cada grupo (Figura 15A). Para la semana 9, la tasa de supervivencia
del grupo de control era del 10%, la del grupo con solo SIM era del
20%, la del grupo con solo plásmido era del 54%, la de la
combinación de polinucleótidos de ADN más IL-4 era
del 45% y la de la combinación de polinucleótidos de ADN más IL4 y
SIM era del 73%. Cuando se compara la edad de los ratones con
respecto a los protocolos de tratamiento correspondientes, los
ratones que recibieron SIM solo sufrieron una incidencia de la
diabetes del 80,0% para la semana 29 (Figura 15B). Los ratones que
recibieron plásmido vacío pVAX1 (Invitrogen, California) sufrieron
una incidencia de la diabetes del 45,4% (p = 0,635). Los ratones
tratados con una combinación de polinucleótidos de ADN que codifican
autoantígenos y la citoquina IL-4, junto con
secuencias inmunomoduladoras, desarrollaron una incidencia de la
diabetes de solamente el 27,3% (p = 0,0075) en comparación con la
incidencia de la diabetes del 90% en el grupo no tratado para la
semana 29 (Figura 15B). En este experimento, se inyectaron
plásmidos de ADN de forma intramuscular, mientras que se inyectaron
SIMs de forma intraperitoneal, sugiriendo enérgicamente que los
plásmidos de ADN (SIEs) y las SIMs se dirigían a poblaciones
celulares diferentes. Además, en este estudio no se expuso a los
ratones NOD a las SIEs. En su conjunto, este sorprendente e
inesperado resultado demuestra que las SIMs tratan de manera
efectiva una enfermedad autoinmune presente de forma natural.
Este estudio se repitió para incluir grupos de
tratamiento adicionales y el curso del tratamiento se modificó a
intervalos semanales durante 8 semanas. Los grupos de tratamiento
fueron 1) tratados con SSTF, 2) plásmido vacío pVAX1 a 200 ug/dosis,
3) SIM a 50 ug/dosis administrada de forma intramuscular, 4) la
combinación de plásmido vacío pVAX1 más SIM (de forma
intramuscular), 5) la combinación de polinucleótido de ADN, 6) la
combinación de polinucleótido de ADN más SIM (de forma
intramuscular), 7) la combinación de polinucleótido de ADN más
IL-4, 8) la combinación de polinucleótido de ADN más
IL-4 más SIM (de forma intramuscular), 9) la
combinación de polinucleótido de ADN más IL-4 y una
inyección intraperitoneal por separado de SIM. Tal y como se indica
en la Figura 16, el porcentaje de supervivencia de cada grupo fue 1)
tratados con SSTF (0%), 2) plásmido vacío pVAX1 (36%), 3) SIM
administrada de forma intramuscular (14%), 4) la combinación de
plásmido vacío pVAX1 más SIM (47%), 5) la combinación de
polinucleótido de ADN (36%), 6) la combinación de polinucleótido de
ADN más SIM (25%), 7) la combinación de polinucleótido de ADN más
IL-4 (31%), 8) la combinación de polinucleótido de
ADN más IL-4 más SIM (38%), 9) la combinación de
polinucleótido de ADN más IL-4 y una inyección
intraperitoneal por separado de SIM (54%).
\vskip1.000000\baselineskip
\global\parskip0.850000\baselineskip
La artritis colágeno-inducida
(ACI) murina es un modelo animal de la artritis reumatoide (AR). La
ACI se induce inyectando cepas genéticamente susceptibles de ratón
con colágeno completo de tipo II (CII) emulsionado en adyuvante
completo de Freund (ACF). El CII, la principal proteína
constituyente de los cartílagos en las articulaciones diartrodiales,
es el sitio predominante de inflamación en la AR (Myers et
al., Life Sciences, 61: 1861-1878, 1997). La
artritis poliarticular severa resultante se caracteriza por la
sinovitis y la erosión crónica de cartílagos y huesos que se parecen
histológicamente al ARN (Courtenay et al., Nature,
283(5748): 666-668, 1980). Como en la AR, la
propensión a padecer ACI en los roedores está vinculada con la
expresión de moléculas específicas del complejo principal de
histocompa-
tibilidad de clase II (Wooley et al., J. Exp. Med., 154: 688-700, 1981; Griffiths, Int. Rev. Immunol., 4: 1-15, 1988).
tibilidad de clase II (Wooley et al., J. Exp. Med., 154: 688-700, 1981; Griffiths, Int. Rev. Immunol., 4: 1-15, 1988).
Se examinó la eficacia del tratamiento con SIM
en combinación con ADN que codifica la autoproteína colágeno
completo de tipo II (CII) e IL-4. Se inyectó de
forma intramuscular (IM) a grupos de 20 ratones DBA/1 machos de
seis semanas de vida en ambos cuádriceps un total de 0,2 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectaron de forma intramuscular a los ratones en ambos
cuádriceps 50 \mug/dosis de cada una de las vacunas con ADN
indicadas y al mismo tiempo que la vacunación inicial con ADN, se
administraron de forma intraperitoneal 50 \mug de SIM en un
volumen de 200 \mul de SSTF. Los grupos de tratamiento fueron: 1)
SSTF solo, 2) plásmido pTarget e IL-4 en pTarget, 3)
plásmido pTarget e IL-4 en pTarget más SIM, 4) CII
completo en pTarget e IL-4 en pTarget, 5) CII
completo en pTarget e IL-4 en pTarget más SIM. El
tratamiento se administró 14 y 7 días antes de la inducción de la
ACI con CII emulsionado en Adyuvante Completo de Freund. Los
ratones recibieron una tercera dosis de la vacuna tolerizante de ADN
y/o dosis de SIM 1 semana después de la inducción de la ACI. A los
ratones se les dio una dosis de refuerzo 2 semanas más tarde con CII
emulsionado en Adyuvante Incompleto de Freund. Se puntuó la
artritis utilizando el sistema de clasificación visual tal y como
se describe en Current Protocols in Immunology (los protocolos
actuales de inmunología). Los ratones tratados con ADN que codifica
el colágeno completo de tipo II (CII) más ADN que codifica
IL-4, con y sin SIM, dieron por resultado unas
reducciones significativas en la gravedad media de la artritis si se
compara con los grupos de control tratados con vector de la vacuna
de ADN (pTarget) + IL-4 con o sin SIM (Figura 17A).
El porcentaje global de incidencia de la enfermedad era comparable
en todos los grupos (Figura 17B). La proliferación de células T
ante el CII completo desnaturalizado indicaba la presencia de
células T CII-reactivas en todos los grupos de
tratamiento (Figura 18). El análisis de citoquinas indicó que el
tratamiento con plásmidos de ADN con y sin SIM tenía una eficacia
significativa a la hora de suprimir la producción de
IL-6 e TNF-alfa a la vez que
aumentaba la producción de IL-4 (Figura 19).
En un segundo experimento in vivo, se
examinó la eficacia del tratamiento con SIM solo y en combinación
con ADN que codifica la autoproteína colágeno completo de tipo II
(CII). Se inyectó de forma intramuscular (IM) a grupos de 20
ratones DBA/1 machos de seis semanas de vida en ambos cuádriceps un
total de 0,2 ml de Bupivacaína-HCL al 0,25% en
SSTF. Dos días más tarde, se inyectaron de forma intramuscular a los
ratones en ambos cuádriceps 50 \mug/dosis de cada una de las
vacunas con ADN indicadas y al mismo tiempo que la vacunación
inicial con ADN, se administraron de forma intraperitoneal 50
\mug de SIM en un volumen de 200 \mul de SSTF. Los grupos de
tratamiento fueron: 1) SSTF solo, 2) SIM solo, y 3) CII completo en
pTarget más SIM. El tratamiento se administró 14 y 7 días antes de
la inducción de la ACI con CII emulsionado en Adyuvante Completo de
Freund. Los ratones recibieron una tercera dosis de la vacuna
tolerizante de ADN y/o dosis de SIM 1 semana después de la
inducción de la ACI. Se puntuó la artritis utilizando el sistema de
clasificación visual tal y como se describe en Current Protocols in
Immunology (los protocolos actuales de inmunología). El tratamiento
con SIM solo dio por resultado unas reducciones significativas en
la gravedad media de la artritis en comparación con el grupo de
control y el grupo tratado con CII completo con SIM (Figura 20A) así
como una reducción en la incidencia de la enfermedad (Figura
20B).
\vskip1.000000\baselineskip
En las células B maduras primarias, se ha
mostrado que el ADN CpG funciona como un factor coestimulador en
presencia de un antígeno específico amplificando la producción de
inmunoglobulina y la proliferación de células B (Krieg et
al., Nature, 374: 546, 1995; Yi et al., J. Immunol., 157:
5394, 1996). Las células B primarias se aislaron de los bazos SJL/J
mediante una técnica de lavado en batea de células B estándar
utilizando IgG e IgM anti-ratón de cabra, anticuerpo
específico de cadena ligera y pesada con gammaglobulina de cabra
como proteína portadora, y se determinó una pureza >97% de
células B220+ mediante análisis de escáner FACScan. Se cultivaron
las células B primarias con 5 ug/ml del oligo indicado durante 72 h.
Se co-cultivó LPS a 100 ng/ml. Se sometió a los
pocillos a impulsos con 1 \muCi[^{3}H]TdR durante
las últimas 16 h de cultivo antes de medir la radioactividad
incorporada. Cada punto de datos representa la media de pocillos
triplicados +/- SD. Tal y como se describe en la Figura 21, un
ensayo de proliferación de células B enriquecidas confirmó que los
CpGs pueden provocar una fuerte proliferación mientras que la SIM
fue capaz de suprimir los efectos de los ODN-CpG
sobre las células B maduras. El co-cultivo de
células B con LPS y ODN-CpG parecía tener un efecto
proliferativo aditivo que fue suprimido por la adición de SIM pero
no del oligo de control. El análisis de citoquinas indicó que el
incremento en la producción de IL-6 (Figura 22A),
IFN-gamma (Figura 22B), IL-10
(Figura 22C) e IL-12(p40) (Figura 22D) por
parte de ODN-CpG se vio reducido de forma efectiva
mediante la adición de SIM.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Existen diversos modelos murinos de una
enfermedad parecida al lupus espontánea e inducida que comparten
muchas características con el lupus humano. Entre estos se incluyen
el modelo híbrido espontáneo de Nueva Zelanda (híbrido NZB/NZW F1),
el modelo MRL-lpr/lpr espontáneo, y el modelo Balb/c
inducido por pristano. La producción de autoanticuerpos dirigidos
contra macromoléculas intracelulares tales como los nucleosomas, el
ADN y las ribonucleoproteínas nucleares pequeñas juega un papel
importante en el mecanismo de patogénesis de las lesiones tisulares
y la glomerulonefritis.
Se analizó la eficacia del tratamiento con SIM
solo y en combinación con ADN que codifica las autoproteínas
ribonucleoproteínas nucleares pequeñas U1A o U1C en ratones hembras
Balb/c. Se inyectó de forma intramuscular (IM) a grupos de 10
ratones Balb/c hembras de seis semanas de vida en ambos cuádriceps
un total de 0,2 ml de Bupivacaína-HCL al 0,25% en
SSTF. Dos días más tarde, se inyectaron de forma intramuscular a los
ratones en ambos cuádriceps las vacunas con ADN indicadas; 1)
plásmido pTarget (100 \mug/dosis); 2) U1A en pTarget más pTarget
vacío (cada uno a 50 \mug/dosis); 3) U1C en pTarget más pTarget
vacío (cada uno a 50 \mug/dosis); y 4) la combinación de U1A y
U1C (cada uno a 50 \mug/dosis). Al mismo tiempo que la vacunación
inicial con ADN, se administraron de forma intraperitoneal 50
\mug de SIM o CpG en un volumen de 200 \mul de SSTF solo o con
vacunación con ADN. Las inyecciones se administraron semanalmente
durante dos semanas. La inducción del LSE se hizo mediante una
única inyección intraperitoneal de 0,5 ml de Pristano. Los ratones
después recibieron una tercera dosis de la vacuna tolerizante de
ADN y/o dosis de oligo 1 semana después de la inducción del LSE.
Las inyecciones mensuales del mismo régimen de tratamiento deben
continuar durante un periodo total de 9 meses. La progresión del
LSE se evalúa mediante una comprobación mensual de los niveles de
proteína en la orina. A la conclusión del experimento, se evalúan
los daños en los tejidos renales mediante tinción histológica con
hematoxilina y eosina, ácido periódico-Schiff,
tricromo y tinciones de reticulina con base de plata. Se clasifican
las lesiones renales para medir la gravedad de la hipercelularidad
mesangial, el aumento de la matriz mesangial, la acentuación lobular
y el alcance de la tinción de IgG y C3.
Se analiza la eficacia del tratamiento con SIM
solo y en combinación con ADN que codifica las autoproteínas
ribonucleoproteínas nucleares pequeñas U1A, U1C y U170, y las
histonas nucleosomales H2B y H3 en ratones hembras
MRL-MpJFAS lpr. Se inyecta de forma intramuscular
(IM) a grupos de 10 ratones MRL-MpJFAS lpr hembras
de seis semanas de vida en ambos cuádriceps un total de 0,2 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectan de forma intramuscular a los ratones en ambos
cuádriceps 50 \mug/dosis de cada una de las vacunas con ADN
indicadas (pBHT1, U1A en pBHT1, U1C en pBHT1, H2B en pBHT1 y H3 en
pBHT1) durante 3 semanas consecutivas. El vector pBHT1 se describe
en el Ejemplo 3. Al mismo tiempo que la vacunación inicial con ADN,
se administran de forma intraperitoneal 50 \mug/dosis de SIM o
CpG en un volumen de 200 \mul de SSTF solo o con vacunación con
ADN. Los ratones reciben dos inyecciones mensuales más de dosis de
la vacuna tolerizante de ADN y/o dosis de oligo. La progresión del
LSE se evalúa mediante una comprobación mensual de los niveles de
proteína en la orina. A la conclusión del experimento, se evalúan
los daños en los tejidos renales mediante tinción histológica con
hematoxilina y eosina, ácido periódico-Schiff,
tricromo y tinciones de reticulina con base de plata. Se clasifican
las lesiones renales para medir la gravedad de la hipercelularidad
mesangial, el aumento de la matriz mesangial, la acentuación lobular
y el alcance de la tinción de IgG y C3.
Se analiza la eficacia del tratamiento con SIM
solo y en combinación con ADN que codifica las autoproteínas
histonas nucleosomales H2B o H3 en ratones hembras híbridos (NZB x
NZW) F1. Se inyecta de forma intramuscular (IM) a grupos de 10
ratones híbridos (NZB x NZW) F1 hembras de cinco meses de vida en
ambos cuádriceps un total de 0,2 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectan de forma intramuscular a los ratones en ambos
cuádriceps 50 \mug/dosis de cada una de las vacunas con ADN
indicadas (plásmido pBHT1, H2B en pBHT1, H3 en pBHT1, y la
combinación de H2B y H3) durante 3 semanas consecutivas. Al mismo
tiempo que la vacunación inicial con ADN, se administran de forma
intraperitoneal 50 \mug/dosis de SIM o CpG en un volumen de 200
\mul de SSTF solo o con vacunación con ADN. La progresión del LSE
se evalúa mediante una comprobación mensual de los niveles de
proteína en la orina. A la conclusión del experimento, se evalúan
los daños en los tejidos renales mediante tinción histológica con
hematoxilina y eosina, ácido periódico-Schiff,
tricromo y tinciones de reticulina con base de plata. Se clasifican
las lesiones renales para medir la gravedad de la hipercelularidad
mesangial, el aumento de la matriz mesangial, la acentuación lobular
y el alcance de la tinción de IgG y C3.
\vskip1.000000\baselineskip
La cirrosis biliar primaria (CBP) es una
enfermedad colestásica crónica autoinmune del hígado mediada por
células T CD4+. La colangitis autoinmune experimental (CAE) es el
modelo de enfermedad animal que produce lesiones parecidas a las de
la CBP en las células epiteliales biliares que revisten los
conductos biliares intrahepáticos pequeños en ratones SJL
sensibilizados ante el autoantígeno, complejo piruvato
deshidrogenasa (CPD).
\global\parskip0.900000\baselineskip
Se analizó la eficacia del tratamiento con SIM
solo y en combinación con ADN que codifica las autoproteínas
dihidrolipoamida acetiltransferasa (E2) y los componentes proteicos
de unión de E3 del CPD en ratones hembras SJL/J. Se inyectó de forma
intramuscular (IM) a grupos de 15 ratones SJL/J hembras de ocho
semanas de vida en ambos cuádriceps un total de 0,2 ml de
Bupivacaína-HCL al 0,25% en SSTF. Dos días más
tarde, se inyectaron de forma intramuscular a los ratones en ambos
cuádriceps 50 \mug/dosis de cada una de las vacunas con ADN
indicadas (plásmido pTarget, CPD-E2 en pTarget, y la
combinación de CPD-E2 e IL-4)
ascendiendo a tres dosis semanales. Al mismo tiempo que la
vacunación inicial con ADN, se administraron de forma
intraperitoneal 50 \mug de SIM o CpG en un volumen de 200 \mul
de SSTF solo o con vacunación con ADN. A los ratones se les indujo
con péptido de CPD-E2
GDLLAEIETD-KATI (500 \mug en 100 \mul de SSTF)
emulsionado 1:1 (v/v) con ACF (conteniendo 10 mg/ml de la cepa H37RA
de Mycobacterium tuberculosis) con una única inyección
intraperitoneal de 200 \mul. La CAE se evalúa 30 semanas después
de la sensibilización. Las secciones del hígado con tinción de
hematoxilina y eosina se utilizan para la evaluación morfológica de
la necroinflamación y las lesiones de los conductos hepáticos.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prevé que los oligonucleótidos de SIM
adicional tendrán una eficacia similar o mejorada a la hora de
alterar el curso de una enfermedad autoinmune. La secuencia de estos
oligonucleótidos de SIM adicional está basada en los datos sobre
eficacia obtenidos con el oligonucleótido de SIM descrito
anteriormente (esto es,
5'TGACTGTGAAGGT
TAGAGATGA-3'). Los oligonucleótidos de SIM adicional que se prevé tienen una eficacia similar o mejorada siguen el patrón siguiente: 5'-TGACTGTGTGRR\alpha\betaYYAGAGATGA-3', donde R representa las purinas (A ó G), Y representa las purimidinas (C ó T), y q y \beta son dinucleótidos o bien GpG o no GpG. Estos oligonucleótidos se prevé que tienen la eficacia más sólida en los ensayos con roedores ya que el consenso se basa en lo que se ha informado como lo que resulta más activo en los sistemas con roedores. Se ofrece un listado completo de estos oligonucleótidos de SIM en la Tabla 4. En la tabla, "I" representa la inosina.
TAGAGATGA-3'). Los oligonucleótidos de SIM adicional que se prevé tienen una eficacia similar o mejorada siguen el patrón siguiente: 5'-TGACTGTGTGRR\alpha\betaYYAGAGATGA-3', donde R representa las purinas (A ó G), Y representa las purimidinas (C ó T), y q y \beta son dinucleótidos o bien GpG o no GpG. Estos oligonucleótidos se prevé que tienen la eficacia más sólida en los ensayos con roedores ya que el consenso se basa en lo que se ha informado como lo que resulta más activo en los sistemas con roedores. Se ofrece un listado completo de estos oligonucleótidos de SIM en la Tabla 4. En la tabla, "I" representa la inosina.
De forma similar, los oligonucleótidos de SIM
adicional que se prevé tienen una eficacia similar o mejorada siguen
el patrón siguiente:
5'-TGACTGTGTGRY\alpha\betaYYAGAGATGA-3'
donde R representa las purinas (A ó G), Y representa las purimidinas
(C ó T), y \alpha y \beta son dinucleótidos o bien GpG o no GpG.
Estos oligonucleótidos se prevé que tienen la eficacia más sólida en
los ensayos con seres humanos ya que el consenso se basa en lo que
se ha informado como lo que resulta más activo en los sistemas con
seres humanos. Se ofrece un listado completo de estos
oligonucleótidos de SIM en la Tabla 5. En la tabla, "I"
representa la inosina.
Todos los oligonucleótidos se sintetizan con una
espina dorsal de fosfotioato en todos y cada uno de los nucleótidos
para incrementar la estabilidad del oligonucleótido. Estos
oligonucleótidos se criban individualmente mediante ensayos in
vitro para ver los efectos sobre la activación de las células
inmunitarias. Estos cribados incluyen ensayos de proliferación
celular, perfiles de secreción de citoquinas y análisis de expresión
de los marcadores de la superficie celular mediante FACS. Los
oligonucleótidos de SIM candidatos que muestran actividad
inmunoinhibidora se someten a ensayo después utilizando ensayos
in vivo para ver la inmunomodulación. Estos ensayos in
vivo incluyen el análisis de las células inmunitarias mediante
los parámetros de activación anteriores tras la administración del
oligonucleótido de SIM al animal, así como los modelos de enfermedad
autoinmune (p. ej., EAE, NOD, LSE y ACI).
Tanto en la Tabla 4 como en la Tabla 5, se
ofrecen ejemplos de secuencias flanqueadoras tanto 5' como 3'
alrededor del hexámero central (esto es, RR\alpha\betaYY ó
RY\alpha\betaYY). Se crean secuencias flanqueadoras adicionales
que rodean este hexámero central sustituyendo las secuencias
flanqueadoras por cualquier secuencia nucleótida de cualquier
longitud. Esto viene representado en las siguientes secuencias:
5'-NNNNNNNNNNRY\alpha\betaYYNNNNNNNNNN-3'
y
5'-NNNNNNNNNNRR\alpha\betaYYNNNNNNNNNN-3',
donde N representa cualquier nucleótido. Entre
los ejemplos específicos se incluyen, pero sin limitarse a ello, los
siguientes oligonucleótidos:
\global\parskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Los ejemplos anteriores son realizaciones
específicas para llevar a cabo la presente invención. Los ejemplos
se ofrecen solamente a efectos ilustrativos, y no tienen la
intención de limitar el alcance de la presente invención de ninguna
manera. Otras variantes de la invención serán muy evidentes para
aquellas personas medianamente expertas en la técnica y están
englobadas en las reivindicaciones adjuntas.
\global\parskip0.000000\baselineskip
<110> Bayhill Therapeutics, Inc.
\hskip1cmEl Consejo de Administración de la Universidad Leland Stanford Junior
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Métodos y composiciones de ácido
nucleico inmunomodulador para prevenir y tratar enfermedades
\vskip0.400000\baselineskip
<130> AHB/FP6303689
\vskip0.400000\baselineskip
<140> EP 03789883.0
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
21-11-2003
\vskip0.400000\baselineskip
<150> PCT/US2003/037157
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
21-11-2003
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 60/428,643
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
21-11-2003
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 296
\vskip0.400000\baselineskip
<170> Version PatentIn 3.3
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtggtt
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipatggtt
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgcggtt
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipacggtt
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtggct
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipatggct
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgcggct
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipacggct
\hfill6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtggtc
\hfill6
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
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\hskip-.1em\dddseqskipaaggtt
\hfill6
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<210> 51
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<211> 14
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<212> PRT
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<213> antígeno peptídico
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<400> 51
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\hskip1cm
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<210> 52
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<211> 22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgaa ggttagagat ga
\hfill22
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<210> 53
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<211> 24
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> varios_característica
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<223> nn es GpG o no GpG
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\hfill24
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<210> 54
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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<220>
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<221> varios_característica
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<222> (13)..(14)
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<223> nn es GpG o no GpG
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\hfill24
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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<220>
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<221> varios_característica
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<220>
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<223> nn es GpG o no GpG
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<220>
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<221> varios_característica
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<222> (17)..(26)
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<223> n es cualquier nucleótido
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\hfill26
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<211> 26
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill26
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\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hskip-.1em\dddseqskipcccccccccc acgcttcccc cccccc
\hfill26
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 69
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
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<211> 22
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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<212> ADN
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\hfill22
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<212> ADN
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\hfill22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 78
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgga gctcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgga gcctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 80
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgga gcccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggg gcttagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggg gctcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 83
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 83
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggg gcctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 84
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 84
\vskip1.000000\baselineskip
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggg gcccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 85
\vskip0.400000\baselineskip
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 184
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat gctcagagat ga
\hfill22
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<210> 185
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<211> 22
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<212> ADN
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<400> 185
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<211> 22
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 188
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 194
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 198
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 204
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac ggtcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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<211> 22
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<400> 205
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac ggctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac ggccagagat ga
\hfill22
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\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
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<400> 208
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\vskip0.400000\baselineskip
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 209
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt ggctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 210
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt ggccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc ggttagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 212
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc ggtcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 213
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<211> 22
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc ggctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 214
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 214
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc ggccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 215
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 215
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat agttagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 216
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 216
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat agtcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 217
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 217
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat agctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 218
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat agccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 219
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 219
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac agttagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 220
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 220
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac agtcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 221
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 221
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac agctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 222
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 222
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac agccagagat ga
\hfill22
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 223
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<211> 22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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<400> 223
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<212> ADN
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc agccagagat ga
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<212> ADN
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<220>
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<220>
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<221> varios_característica
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<222> (11).. (11)
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\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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<213> oligonucleótido
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<220>
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<221> varios_característica
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<222> (11)..(11)
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<223> n es Inosina
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat ngtcagagat ga
\hfill22
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<210> 233
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<211> 22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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<220>
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<221> varios_característica
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<222> (11)..(11)
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\hfill22
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<212> ADN
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<213> oligonucleótido
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<221> varios_característica
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<222> (11)..(11)
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<223> n es Inosina
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\hfill22
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<213> oligonucleótido
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<220>
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<221> varios_característica
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<222> (11).. (11)
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<223> n es Inosina
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac ngttagagat ga
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<221> varios_característica
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<222> (11)..(11)
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\hfill22
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\hfill22
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<221> varios_característica
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<222> (11).. (11)
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<223> n es Inosina
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac ngccagagat ga
\hfill22
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<221> varios_característica
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<222> (11)..(11)
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt ngttagagat ga
\hfill22
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<211> 22
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<213> oligonucleótido
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> varios_característica
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<222> (11)..(11)
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<223> n es Inosina
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt ngtcagagat ga
\hfill22
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<221> varios_característica
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<223> n es Inosina
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt ngctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
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<222> (11)..(11)
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<223> n es Inosina
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc ngtcagagat ga
\hfill22
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<222> (11)..(11)
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc ngctagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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<222> (11)..(11)
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\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc ngccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill22
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\hfill22
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<222> (11)..(11)
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<223> n es Inosina
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\hfill22
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\hfill22
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<400> 282
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat taccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 283
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 283
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac tattagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 284
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 284
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac tatcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 285
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 285
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac tactagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 286
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 286
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac taccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 287
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 287
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt tattagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 288
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 288
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt tatcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 289
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 289
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt tactagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 290
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 290
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggt taccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 291
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 291
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc tattagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 292
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 292
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc tatcagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 293
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 293
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc tactagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 294
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 294
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtggc taccagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 295
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 295
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgat cgttagagat ga
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 296
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> oligonucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 296
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgactgtgac cgttagagat ga
\hfill22
Claims (23)
1. Un método para elaborar un vector plasmídico,
método que consiste en modificar un vector que contiene un motivo
CpG de la fórmula
5'-purina-pirimidina-C-G-pirimidina-pirimidina-3'
para sustituir una citosina por una no citosina dentro del
dinucleótido CpG, en el que el vector además está compuesto por un
polinucleótido que codifica una proteína mielina o una proteína
insulina.
2. El método de la reivindicación 1, en el que
la sustitución de una citosina por una no citosina es de citosina
por guanina.
3. El método de la reivindicación 1, en el que
se realizan una multitud de sustituciones de una citosina por una no
citosina.
4. El método de la reivindicación 1, en el que
el vector que se modifica es el vector pVAX1^{TM}.
5. El método de la reivindicación 4, en el que
el vector pVAX^{TM} se modifica para comprender las siguientes
sustituciones de una citosina por una no citosina:
C a G en los nucleótidos 784, 1161, 1218 y
1966;
C a A en los nucleótidos 1264, 1337, 1829, 1874,
1940 y 1997; y
C a T en los nucleótidos 1963 y 1987, y
C a G en los nucleótidos 1831, 1876, 1942 y
1999.
\vskip1.000000\baselineskip
6. El método de cualesquiera de las
reivindicaciones 1-5, en el que el vector plasmídico
es para utilizarlo en el tratamiento de la diabetes mellitus
insulinodependiente (DMID) y en el que el mencionado polinucleótido
codifica una proteína insulina.
7. El método de la reivindicación 6, en el que
la proteína insulina se selecciona de entre la insulina, la
proinsulina o la preproinsulina.
8. El método de cualesquiera de las
reivindicaciones 1-5, en el que el vector plasmídico
es para utilizarlo en el tratamiento de la esclerosis múltiple y en
el que el mencionado polinucleótido codifica una proteína
mielina.
9. El método de la reivindicación 8, en el que
la proteína mielina es una proteína básica de mielina.
10. Un vector pVAX1^{TM} modificado que está
compuesto por los siguientes nucleótidos en la espina dorsal del
vector:
G en los nucleótidos 784, 1161, 1218 y 1966;
A en los nucleótidos 1264, 1337, 1829, 1874,
1940 y 1997; y
T en los nucleótidos 1963 y 1987, y
G en los nucleótidos 1831, 1876, 1942 y
1999.
\vskip1.000000\baselineskip
11. El vector de la reivindicación 10 que además
está compuesto por un polinucleótido que codifica una proteína
mielina o una proteína insulina.
12. El vector de la reivindicación 11, en el que
la proteína mielina es una proteína básica de mielina
(PBM).
(PBM).
13. El vector de la reivindicación 11, en el que
la proteína insulina es la insulina, la proinsulina o la
preproinsu-
lina.
lina.
14. Una composición farmacéutica que está
compuesta por el vector de cualesquiera de las reivindicaciones 10 a
la 13 y un portador farmaceúticamente aceptable.
15. El uso de una composición que comprende:
- a)
- un vector plasmídico que está compuesto por un ácido nucleico inmunomodulador que consta de una región hexamérica de la fórmula 5'-purina-pirimidina-[X]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3' en la que X e Y son cualesquiera nucleótidos sintéticos o presentes de forma natural con la excepción de que X e Y no pueden ser citosina-guanina, y una región polinucleótida que codifica una proteína mielina o una proteína insulina; y
- b)
- un portador farmaceúticamente aceptable;
- en la elaboración de un medicamento para el tratamiento de una enfermedad autoinmune seleccionada de entre la esclerosis múltiple y la diabetes mellitus insulinodependiente.
\vskip1.000000\baselineskip
16. Una composición que comprende:
- a)
- un vector plasmídico que está compuesto por un ácido nucleico inmunomodulador que consta de una región hexamérica de la fórmula 5'-purina-pirimidina-[X]-[Y]-pirimidina-pirimidina-3' en la que X e Y son cualesquiera nucleótidos sintéticos o presentes de forma natural con la excepción de que X e Y no pueden ser citosina-guanina, y una región polinucleótida que codifica una proteína mielina o una proteína insulina; y
- b)
- un portador farmaceúticamente aceptable;
- para su uso en un método para tratar una enfermedad autoinmune seleccionada de entre la esclerosis múltiple y la diabetes mellitus insulinodependiente.
\vskip1.000000\baselineskip
17. El uso de la reivindicación 15 o la
composición de la reivindicación 16 donde el vector plasmídico es un
vector pVAX1^{TM} modificado.
18. El uso o la composición de la reivindicación
17 donde el vector pVAX1^{TM} modificado está compuesto por los
siguientes nucleótidos en la espina dorsal del vector:
G en los nucleótidos 784, 1161, 1218 y 1966;
A en los nucleótidos 1264, 1337, 1829, 1874,
1940 y 1997; y
T en los nucleótidos 1963 y 1987, y
G en los nucleótidos 1831, 1876, 1942 y
1999.
\vskip1.000000\baselineskip
19. El uso de la reivindicación 15 o la
composición de la reivindicación 16 donde la enfermedad autoinmune
es la diabetes mellitus insulinodependiente (DMID) y la autoproteína
es una proteína insulina.
20. El uso o la composición de la reivindicación
19 donde la proteína insulina se selecciona de entre la insulina, la
proinsulina y la preproinsulina.
21. El uso de la reivindicación 15 o la
composición de la reivindicación 16 donde la enfermedad autoinmune
es la esclerosis múltiple y la autoproteína es una proteína
mielina.
22. El uso o la composición de la reivindicación
21 donde la proteína mielina es una proteína básica de mielina.
23. El uso de la reivindicación 15 o la
composición de la reivindicación 16 donde X e Y son ambos
guanina.
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