ES2344739T3 - Proteina capsidial vp1 modificada del parvovirus b19. - Google Patents
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Abstract
Proteína capsidial VP1 modificada del parvovirus B19 que tiene una actividad enzimática de tipo fosfolipasa A2 reducida en comparación con la proteína capsidial VP1 de tipo silvestre del parvovirus B19 que tiene la secuencia de aminoácidos de la Sec ID Nº: 1, en la que uno o más de los restos aminoacídicos conservados en el centro activo de la fosfolipasa A2 se modifican en la posición 153: histidina; en la posición 157: tirosina; en la posición 162: lisina; y/o en la posición 168: tirosina.
Description
Proteína capsidial VP1 modificada del parvovirus
B19.
La presente invención se refiere a proteínas y
partículas capsidiales del parvovirus B19 modificadas, a sus usos y
a la fabricación de medicamentos que incluyen vacunas para el
tratamiento de enfermedades asociadas al parvovirus B19.
El parvovirus B19 se descubrió en 1975 como
causante de infecciones sistémicas en adultos que eran asintomáticos
o tenían síntomas leves no específicos tales como cefalea, pirexia,
malestar, fatiga y mialgia (1, 2, 3). En 1984 el parvovirus B19 se
identificó como el agente etiológico de eritema infeccioso, también
conocidos como quinta enfermedad (4). El virus se extiende a nivel
mundial pero se limita exclusivamente a huéspedes humanos. Con
respecto a diferencias regionales aproximadamente del 40 al 60 por
ciento de la población presenta anticuerpos contra proteínas
virales a los 20 años. La infección es endémica, sin embargo alcanza
brotes regionales al finalizar el invierno y en la primavera. El
virus es muy estable. En general se transmite por vía oral desde
individuos con infección aguda (5). Además de esta vía de infección
principal el virus puede transmitirse por la sangre y productos
derivados de la sangre por vía parenteral y verticalmente de la
madre al feto (6, 7, 8, 9). La replicación productiva masiva del
parvovirus B19 tiene lugar en las células progenitoras eritroides
(10). Por lo tanto durante la infección aguda la carga viral es
extremadamente alta y pueden presentarse hasta 10^{13} partículas
y/o genomas virales por mililitro de sangre periférica. El virus se
une a las células precursoras de eritrocitos usando el antígeno P
del grupo sanguíneo (globósido) como el receptor celular para la
adsorción (11). Se ha observado que después de la infección y la
eliminación de la sangre periférica los genomas virales están
presentes en las células de la médula ósea y en la piel, en las
células sinoviales, en tejidos hepáticos y en el endotelio del
miocardio (12, 13, 14, 15, 16, 17). Hasta ahora no está claro si
estas células producen las proteínas virales y/o las partículas de
B19 infecciosas y si el genoma viral puede reactivarse para la
replicación productiva.
Habitualmente la infección por parvovirus B19
carece de síntomas clínicos o puede dar como resultado una
enfermedad similar a la gripe. Particularmente los niños pueden
padecen eritema infeccioso (quinta enfermedad), una enfermedad
eruptiva autolimitada (18, 19, 20). También se ha relacionado el
parvovirus B19 con un amplio espectro de enfermedades (Tabla 1):
puede producirse anemia transitoria, leucocitopenia o
trombocitopenia sin necesitar ninguna terapia. Sin embargo, en
algunos pacientes se observó trombocitopenia grave, aplasia
eritrocitaria pura o pancitopenia. Junto con estas secuelas
hematológicas de hepatitis por infección aguda, también puede
producirse ocasionalmente miocarditis, miositosis, lesión pulmonar
aguda y enfermedades neurológicas (12, 21, 22, 23, 24). En
gestantes, como manifestaciones clínicas, se ha descrito aborto
espontáneo, hidrops fetal no inmune y muerte fetal intrauterina
(25, 26). En gestantes no inmunes con infección aguda se ha
observado un índice de mortalidad fetal de aproximadamente el 9%
(9, 27). Sin embargo también hay estudios que describen un mayor
porcentaje para el desarrollo de hidrops fetal en gestantes no
inmunes infectadas por B19 (28). Dependiendo del estado
hematológico del huésped; por ejemplo pacientes con anemia
falciforme o talasemia, la infección por B19 da lugar a una crisis
aplásica. La infección persistente por parvovirus B19 se ha
descrito en pacientes con y sin inmunodeficiencias subyacentes (29,
30).
Además de estas manifestaciones generales la
infección por parvovirus B19 puede inducir un amplio espectro de
fenómenos autoinmunes. Las citopenias autoinmunes son trastornos
hematológicos bien conocidos que pueden afectar a cualquier linaje
celular de la médula ósea. En la inmensa mayoría de casos únicamente
una de las líneas celulares se afecta. Sin embargo, se conoce la
destrucción simultánea mediada autoinmune de granulocitos
neutrófilos y trombocitos debido a la infección persistente por
parvovirus B19 (31). El parvovirus B19 se ha identificado como un
posible desencadenante en algunos casos de trombocitopenia inmune
(32, 33, 34, 35). El espectro clínico de la artropatía autoinmune
varía desde artralgias leves a vasculitis necrotizante severa
(Tabla 1). En algunos brotes de eritema infeccioso, se han descrito
generalmente artralgias y artritis. La infección por B19 puede
producir una poli artropatía periférica simétrica en adultos.
Normalmente los síntomas son autolimitantes pero pueden persistir
durante algunos meses. Ocasionalmente, en pacientes con
poliartralgia/poliartritis de larga duración se ha observado
viremia combinada con anticuerpos IgM/IgG contra las proteínas VP1
y/o VP2 estructurales. Algunos de estos cumplieron con los
criterios de la artritis reumatoide (AR) (26, 37). Sin embargo el
desarrollo de AR después de infección aguda por parvovirus parece
ser inusual (38, 39). En niños se conoce bien la relación de la
infección por B19 con artritis-artralgias. Algunos
de los niños afectados pueden desarrollar artritis crónica
indistinguible de la artritis idiopática juvenil (40, 41, 42, 43).
El espectro clínico incluye mono, oligo y poliartritis.
Adicionalmente se observa frecuentemente viremia persistente en
niños con artritis idiopática juvenil sistémica. En niños con
diversas formas de artritis juvenil se amplificó ADN del B19 en el
57% del suero y/o del líquido sinovial de aquellos con infección
previa por parvovirus B19. En muchos pacientes podría demostrarse
la presencia continua de partículas virales e inmunocomplejos en la
sangre periférica así como en el líquido sinovial (44). A pesar del
desarrollo y de la presencia de inmunoreacción específica del B19
los niños no podían eliminar el virus y mostraron un estado de
viremia prolongado o persistencia viral en el líquido sinovial.
La infección por parvovirus B19 se ha asociado
con diversas formas de vasculitis, colagenosis y puede imitar al
lupus eritematoso sistémico (LES) en niños y adultos (39, 45, 46).
Similar a la situación en pacientes con artritis también se ha
descrito en pacientes con LES infección por parvovirus B19 como
agente causante o desencadenante de la enfermedad reumática (47,
48, 49, 50, 51). Recientemente, se describió una asociación entre
la infección persistente por parvovirus B19 y la producción de
anticuerpos anti-fosfolipídicos en pacientes
pediátricos y adultos con enfermedades reumáticas (52). El síndrome
anti fosfolipídico (SAF) (53) se caracteriza, al igual que algunas
infecciones por parvovirus B19, por una amplia diversidad de
manifestaciones hemocitopénicas y vaso-oclusivas.
Adicionalmente la pérdida fetal recurrente y la asociación con
anticuerpos dirigidos contra fosfolípidos cargados negativamente y
cofactores de proteínas, principalmente
\beta2-glicoproteína-I son
importantes características del SAF. La hipótesis con respecto a una
patogenicidad común del síndrome anti-fosfolipídico
y las características autoinmunitarias observadas en la infección
por B19 no sólo se basa por la estrecha asociación entre la
presencia de anticuerpos anti-fosfolipídicos y la
infección por parvovirus B19 sino también por la similitud en la
presentación de síntomas clínicos en pacientes con infección por
parvovirus B19 y en pacientes con el síndrome anti fosfolipídico
(SAF).
La cápside icosaédrica del parvovirus B19
comprende dos proteínas estructurales, VP1 (83 kDa) y VP2 (58 kDa),
que son idénticas excepto en 227 aminoácidos (aa) en el extremo
amino-terminal de la proteína VP1 (la región única
de VP1).
En la secuencia de aminoácidos de la región
única de VP1 está presente un motivo fosfolipasa A2 que abarca las
posiciones 130 a 195 (centro activo Fosfolipasa A2) (54). Uno de los
mecanismos patogénicos implicado en el desencadenamiento de la
producción de anticuerpos anti-fosfolipídicos podría
ser la actividad de tipo fosfolipasa-A2 observada
en la región única de VP1 de la proteína estructural VP1 del
parvovirus B19 (54). Esta actividad enzimática está presente en las
partículas infecciosas del B19, en las cápsides vacías recombinantes
constituidas por las proteínas VP1/VP2 y en preparaciones de la
región única de VP1 purificada. Esto puede contribuir a los
procesos inflamatorios inducidos por la producción de leucotrienos y
prostaglandinas, pero también puede conducir a la generación de
productos de escisión naturales inusuales a partir de compuestos
fosfolipídicos celulares que pueden inducir anticuerpos aPL en
combinación con un fondo genético distinto.
Hasta ahora no hay disponible ninguna vacuna
para prevenir la infección por parvovirus B19. Con respecto a los
transcursos graves que se observan en asociación con la infección,
los problemas asociados con la infección en gestantes y el
potencial viral para inducir una amplia diversidad de respuestas
autoinmunes en el desarrollo de una vacuna segura que protege
contra infecciones por parvovirus B19 se han usado cápsides vacías
recombinantes purificadas constituidas por las proteínas VP1/VP2
expresadas por vectores de baculovirus en un ensayo en fase I y se
demostró la inducción exitosa de anticuerpos neutralizantes contra
B19 en voluntarios (55). Sin embargo, la aplicación de esta vacuna
se combinó con una diversidad de efectos secundarios. Además de
hinchazón en la zona de aplicación de las inyecciones, en más del
50% de los voluntarios se indicaron síntomas malestar general como
fiebre, cefalea y diarrea. Estos efectos secundarios indican que la
aplicación de la vacuna produce la manifestación sistémica de los
efectos secundarios que se sabe que están asociados con la
activación de las reacciones básicas de defensa asociadas con la
inflamación. Durante las reacciones inmunes tempranas después de
infecciones, por ejemplo, estos efectos se asocian principalmente
con la activación de fosfolipasas A2 celulares y citosólicas. Estas
enzimas son responsables de la producción de ácido araquidónico como
precursor de la producción de prostaglandina y leucotrieno, la
inducción de diversas cito- y quimiocinas conduce a fiebre y
malestar general.
Los efectos secundarios observados por Ballou y
colaboradores que usan cápsides vacías de VP1/VP2 producidas por
baculovirus recombinantes (55) se debe probablemente a la actividad
de tipo fosfolipasa-A2 que es parte de la región
única de VP1 de la proteína capsidial viral VP1.
Girod y col. (The Journal of General Virology
83(5) (2000): 973-978) describen la actividad
de la fosfolipasa A2 del parvovirus del virus
adeno-asociado de tipo 2
(VAA-2).
Shields y col. (American Journal of Obstetrics
& Gynaecology 182(1) (2000): 18) describen una proteína
capsidial del parvovirus B19 usada para incubar con diversos
sistemas celulares diferentes que produce reducción del crecimiento
y de la formación de colonias de las células incubadas.
El documento WO 03/006067 describe parvovirus de
animales y sus efectos oncotóxicos.
El documento WO 00/306668 A desvela que el
parvovirus B19 se une al antígeno P en células huésped, por ejemplo
en células hematopoyéticas humanas y otras células sanguíneas y que
las proteínas o fragmentos capsidiales de los mismos pueden inhibir
el crecimiento de las células que poseen el antígeno P.
El problema subyacente de la presente invención
es proporcionar medicamentos tales como una vacuna contra el
parvovirus B19 para la prevención y/o tratamiento de enfermedades
asociadas con el parvovirus B19 con mínimos efectos
secundarios.
La presente invención aborda este problema
cambiando/modificando ventajosamente la proteína capsidial VP1 del
parvovirus B19 reduciendo por lo tanto la actividad de tipo
fosfolipasa A2 en la región única de VP1 de la proteína capsidial
viral VP1.
De acuerdo con un aspecto de la presente
invención, se proporciona una proteína capsidial VP1 del parvovirus
B19 que tiene una actividad enzimática de tipo fosfolipasa A2
reducida en comparación con la proteína capsidial VP1 de tipo
silvestre del parvovirus B19 que tiene la secuencia de aminoácidos
de la SEC ID Nº 1, en la que uno o mas de los restos aminoacídicos
conservados en el centro activo de la fosfolipasa A2 está modificado
en la posición 153: histidina; posición 157: tirosina; posición
162: lisina y/o posición 168: tirosina.
De acuerdo con la presente invención, la
actividad fosfolipasa natural se reduce (lo que incluye la completa
anulación de la actividad). Por lo tanto, las regiones de la
proteína que están implicadas en la reducción de esta actividad
fosfolipasa pueden modificarse de acuerdo con la presente invención.
Estos cambios comparados con la secuencia de tipo silvestre pueden
introducirse por intercambios, deleciones o inserciones de
aminoácidos. Un experto en la materia puede valorar fácilmente la
reducción de la actividad fosfolipasa basándose en la metodología
desvelada en este documento, especialmente con el ensayo descrito en
la Figura 2 de Dorsch y col, 2002 (54). Por otro lado, los cambios
no deben modificar significativamente el rendimiento inmunológico de
la vacuna (es decir que la mutación no debe influir de manera
adversa en las propiedades inmunogénicas).
De acuerdo con la presente invención, los restos
aminoacídicos en la región única de VP1 de la proteína capsidial
VP1 (aminoácidos 100-220, específicamente 130 a 195)
están modificados. Esta región está muy conservada en los tres
genotipos del parvovirus B19 que hasta ahora se han identificado
(60; Fig. 2). Sin embargo aunque obviamente esta región está
conservada, pueden observarse diferencias en la actividad de
diferentes genotipos de parvovirus B19: Genotipo 1: 100%, Genotipo
2: 70%, Genotipo 3: 59%. La referencia en cuando a la actividad de
tipo silvestre significa que para comparar el mutante de tipo
silvestre se selecciona el genotipo más próximo (por ejemplo si se
fabrica un mutante de genotipo 2, la actividad fosfolipasa del
mutante se compara con el tipo silvestre del genotipo 2).
En general, toda la proteína VP1 puede someterse
a la introducción de mutaciones para reducir o eliminar la
actividad de tipo fosfolipasa A2 de esa proteína. Sin embargo, como
las mutaciones fuera de la región única de VP1 (aminoácidos
100-220, específicamente 130 a 195) normalmente
tienen, si lo tienen, un potencial de reducción bajo sobre la
actividad fosfolipasa, las mutaciones dentro de esta región única de
VP1 se realizan de acuerdo con la presente invención. No obstante,
también pueden introducirse mutaciones fuera de la región de la
región única de VP1, por ejemplo, por
amino-truncamientos o por mutaciones en la región de
los aminoácidos 50-90, especialmente
59-81. Si una mutación realiza la reducción esperada
de la actividad fosfolipasa puede tratarse fácilmente por la
combinación de la expresión del mutante con un ensayo de actividad
funcional. Dichos ensayos de actividad fosfolipasa se encuentran
bien disponibles en la técnica y también se describen en este
documento.
Los sitios de mutación específicamente
preferidos están alrededor de los aminoácidos (Tyr(130),
Gly(132), Gly(134), Asp(154)) de unión a
Ca^{2} o alrededor en la red catalítica (His(153),
Tyr(157), Tyr(168)), incluyendo la unión
fosfolipídica (Lys(162)), es decir aminoácidos
125-140 y 50-175, especialmente
127-137, 152-160 y 165 a 171 (véase
también la Sec ID Nº 1 y la Figura 2 para las secuencias).
Los intercambios preferidos son los intercambios
normalmente usados en las estrategias de mutación para reducir la
actividad enzimática, por ejemplo, sustitución de un aminoácido con
una cadena lateral funcional (His, Lys, Tyr, Asp, Glu, Ser, Thr,
Asn, Gln, etc.) por un aminoácido con una cadena lateral no
funcional del mismo o diferente tamaño (Ala, Phe, Leu, Pro, Ile,
etc.) o por una cadena lateral funcional diferente (por ejemplo,
Asn \rightarrow Asp, Gln \rightarrow Ser, etc.). Algunas veces,
también es suficiente una ligera diferencia (Val \rightarrow Ala,
Ser \rightarrow Thr, etc.).
De acuerdo con una realización preferida
adicional de la presente invención, se modifican uno o más de los
restos aminoacídicos conservados en el centro activo de la
fosfolipasa A2. Los restos aminoacídicos en la posición 153:
histidina; 157: tirosina; 162: lisina; 168: tirosina; 195: ácido
aspártico se han descrito como partes de la triada catalítica de la
fosfolipasa A2 pancreática bovina y se han implicado en la
orientación y especificidad del sustrato (58, 59). La modificación
de uno o más de los restos de 153: histidina, 157: tirosina, 162:
lisina, 168: tirosina produce una reducción incluso más pronunciada
de la actividad de tipo fosfolipasa A2, mientras que la
modificación y el cambio del resto de 195: ácido aspártico produce
una actividad potenciada de tipo fosfolipasa A2.
Por tanto de acuerdo con la presente invención,
se modifica uno o más de los restos aminoacídicos en la posición
153: histidina; posición 157: tirosina; posición 162: lisina; y/o
posición 168: tirosina.
De acuerdo con otra realización preferida, la
histidina 153 se modifica a alanina; la tirosina 157 se modifica a
fenilalanina; la lisina 162 se modifica a leucina y/o la tirosina
168 se modifica a fenilalanina.
En general, la mutación de acuerdo con la
presente invención debe ser lo menor posible (para no modificar
demasiado las propiedades inmunogénicas): normalmente una baja
cantidad de sustituciones de aminoácidos (6, 5, 4, 3, 2 o
preferentemente 1) y una corta inserción o deleción (30, 20, 10, 5 ó
1 aminoácido) debe ser suficiente para reducir o eliminar
eficazmente la actividad fosfolipasa. Sin embargo, siempre que las
propiedades inmunogénicas no cambien de manera significativa, no se
excluyen inserciones, deleciones más largas (50, 100, 200
aminoácidos) o un mayor número de sustituciones. Sin embargo, las
últimas, las mutaciones múltiples también son menos preferidas
debido a aspectos económicos.
Si los mutantes tienen propiedades inmunogénicas
similares o no puede determinarse fácilmente por ejemplo por
reacción con anticuerpos específicos o determinando in vitro
o in vivo la capacidad para inducir respuestas inmunes.
Generalmente, los mutantes deberían mostrar (con o sin adyuvantes
específicos) aproximadamente el 50% de inmunogenicidad in
vivo como el tipo silvestre (sin adyuvantes, o preferentemente,
con el mismo adyuvante que el mutante), determinado por al menos un
procedimiento aplicado y aceptado científicamente (revisión por
pares), por ejemplo ensayos ELISpot de unión a anticuerpos, etc.
(véase también: el apartado ejemplos de la presente solicitud).
\newpage
De acuerdo con la presente invención, la región
única de VP1 modificada o la proteína capsidial VP1 modificada de
la presente invención produce una actividad enzimática de tipo
fosfolipasa A2 reducida en comparación con la proteína capsidial
VP1 de tipo silvestre. Preferentemente, la reducción es de al menos
el 30% en comparación con el tipo silvestre (es decir el 70% o
menos de la actividad de tipo silvestre). Se prefiere adicionalmente
una reducción del 50% o menor, 30% o menor, 20% o menor, o 10% o
menor de la actividad de tipo silvestre. La actividad de referencia
del tipo silvestre y del mutante se determina preferentemente de
acuerdo con un ensayo de actividad enzimática de tipo fosfolipasa
A2 normalizado, especialmente de acuerdo con la figura 2 de
(54).
Especialmente, estos mutantes que carecen
completamente de esta actividad (es decir inferior al 5%, inferior
al 1%, o inferior a 0,1%, dependiendo de los límites de detección
del procedimiento) son más adecuados para su uso y protección en
vacunas de acuerdo con la presente invención.
Preferentemente, la alternancia de los restos
aminoacídicos se realiza por mutagénesis dirigida.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona una molécula de ácido nucleico aislado
que codifica la proteína capsidial VP1 modificada proporcionada por
la presente invención.
De acuerdo con un aspecto adicional de la
presente invención se proporciona un vector de expresión
recombinante que comprende las moléculas de ácido nucleico que
codifican la región única de VP1 modificada y la proteína capsidial
VP1 modificada proporcionada por la presente invención.
Preferentemente, el vector de expresión
recombinante de acuerdo con la presente invención comprende
adicionalmente la proteína capsidial VP2 del parvovirus B19
especialmente en el que la proteína puede expresarse junto con la
cápside VP1 modificada. Sin embargo, también la expresión combinada
de las proteínas VP1 y VP2 que usan dos vectores que se introducen
en las células tiene sus ventajas para propósitos específicos.
Más preferentemente, el vector de expresión
recombinante de acuerdo con la presente invención comprende un
producto de fusión en el que la región única VP1 modificada o la
proteína capsidial VP1 modificada se fusiona con la proteína
capsidial VP2.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona una célula huésped que comprende el vector
de expresión recombinante de acuerdo con la presente invención.
Preferentemente, la célula huésped es E.
coli, una levadura o una célula animal.
Más preferentemente la célula huésped es
Saccharomyces cerevisiae. Esta especie de levadura se ha
usado durante dos décadas para producir partículas recombinantes de
HBsAg (antígeno de superficie de la hepatitis B) que protegen
contra la infección por el virus de la hepatitis B. Se ha demostrado
que el uso de vacunas del VHB derivadas de S. cerevisiae
recombinante es seguro, observándose efectos secundarios en
escasísimas ocasiones.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona un procedimiento para la producción de la
región única de VP1 modificada o la proteína capsidial VP1
modificada o el producto de fusión de la proteína capsidial VP1
modificada y la proteína capsidial VP2 transformando una célula
huésped, expresando la cápside de VP1 (y opcionalmente la cápside
de VP2), recuperando la proteína (o proteínas), opcionalmente como
partículas similares a virus, usando la célula huésped de acuerdo
con la presente invención.
Preferentemente en dicho procedimiento la región
única de VP1 modificada y/o la proteína capsidial VP1 modificada
y/o el producto de fusión de la proteína capsidial VP1 modificada y
la proteína capsidial VP2 se aíslan y/o purifican.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona la región única de VP1 modificada y/o la
proteína capsidial VP1 modificada o el producto de fusión de la
región única de VP1 modificada y la proteína capsidial VP2 que
pueden obtenerse mediante el procedimiento de acuerdo con la
presente invención.
De acuerdo con otro aspecto más de la presente
invención, se proporciona la región única de VP1 modificada y/o la
proteína VP1 modificada o el producto de fusión de la región única
de VP1 modificada y/o la proteína VP1 modificada y la proteína
capsidial VP2 para su uso como medicamentos.
De acuerdo con un aspecto adicional de la
presente invención, se proporciona el uso de la región única de VP1
modificada, la proteína VP1 modificada con o sin proteína capsidial
VP2 para la fabricación de un medicamento para el tratamiento
contra la infección por parvovirus B19 y/o enfermedades reumáticas y
autoinmunes asociadas con el parvovirus B19.
De acuerdo con otro aspecto adicional de la
presente invención, se proporciona el uso del producto de fusión de
la región única de VP1 modificada, la proteína VP1 modificada y la
proteína capsidial VP2 para la fabricación de un medicamento para
el tratamiento contra la infección por parvovirus B19 y/o
enfermedades reumáticas y autoinmunes asociadas con el parvovirus
B19.
Preferentemente el tratamiento es contra
artralgias; artritis; más preferentemente monoartritis,
oligoartritis, poliartritis, artritis reumatoide y/o artritis
idiopática juvenil; lupus eritematoso sistémico (LES); vasculitis,
más preferentemente vasculitis leucocitoclástica, púrpura de
Henlein-Schoenoch, síndrome papulopurpúrico en
guantes y calcetines (SPPGC), enfermedad de Kawasaki, arteritis de
células gigantes (ACG), poliarteritis nodosa y/o granulomatosis de
Wegener; dermatomiositis; neutropenia autoinmune; trombocitopenia
autoinmune; púrpura trombocitopénica idiopática (PTI); anemia
hemolítica autoinmune; y/o síndrome hemofagocítico asociado a un
virus (SHAV).
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona el uso de la región única de VP1
modificada, la proteína capsidial VP1 modificada o el producto de
fusión de la región única de VP1 modificada y la proteína capsidial
VP2 de acuerdo con la presente invención en un ensayo para detectar
anticuerpos dirigidos contra la proteína VP1 del virus B19 en una
muestra a ensayar.
De acuerdo con un aspecto adicional de la
presente invención, se proporciona el uso de las células huésped de
la presente invención en un ensayo para detectar anticuerpos
dirigidos contra la proteína VP1 del virus B19 en una muestra a
ensayar.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporcionan las partículas recombinantes similares a
un virus constituidas por la proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con la presente invención con o sin proteína capsidial
VP2.
De acuerdo con otro aspecto más de la invención,
se proporcionan las partículas recombinantes similares a un virus
constituidas por el producto de fusión de la región única de VP1
modificada, la proteína capsidial VP1 modificada y la proteína
capsidial VP2 de acuerdo con la presente invención.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, pueden usarse las partículas recombinantes similares a
un virus para la fabricación de un medicamento para el tratamiento
contra la infección por parvovirus B19 y/o enfermedades autoinmunes
y reumáticas asociadas con parvovirus B19.
Preferentemente el tratamiento es contra
artralgias; artritis; más preferentemente monoartritis,
oligoartritis, poliartritis, artritis reumatoide y/o artritis
idiopática juvenil; lupus eritematoso sistémico (LES); vasculitis,
más preferentemente vasculitis leucocitoclástica, púrpura de
Henlein-Schoenoch, síndrome papulopurpúrico en
guantes y calcetines (SPPGC), enfermedad de Kawasaki, arteritis de
células gigantes (ACG), poliarteritis nodosa y/o granulomatosis de
Wegener; dermatomiositis; neutropenia autoinmune; trombocitopenia
autoinmune; púrpura trombocitopénica idiopática (PTI); anemia
hemolítica autoinmune; y/o síndrome hemofagocítico asociado a un
virus (SHAV).
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona el uso de partículas recombinantes
similares a un virus de acuerdo con la presente invención en un
ensayo para detectar anticuerpos dirigidos contra la proteína VP1
del virus B19 en una muestra a ensayar.
De acuerdo con un aspecto adicional de la
presente invención, se proporciona una composición farmacéutica,
especialmente una preparación de vacuna para inducir una respuesta
inmune que proporciona protección contra el parvovirus humano B19,
que comprende la región única de VP1 modificada, la proteína
capsidial VP1 modificada de acuerdo con la presente invención con o
sin la proteína capsidial VP2.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica,
especialmente una preparación de vacuna para inducir una respuesta
inmune que proporciona protección contra el parvovirus humano B19
que comprende el producto de fusión de la proteína capsidial VP1
modificada de acuerdo con la presente invención.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica,
especialmente una preparación de vacuna para inducir una respuesta
inmune que proporciona protección contra el parvovirus humano B19,
que comprende las partículas recombinantes similares a un virus de
acuerdo con la presente invención.
Preferentemente, las composiciones farmacéuticas
de acuerdo con la presente invención comprenden adicionalmente uno
o más transportadores y/o adyuvantes adecuados para los propósitos
de la vacunación.
Por lo tanto, las composiciones proporcionadas
por la presente invención, especialmente en forma de una vacuna,
pueden comprender adicionalmente una sustancia
autoinmunoestimuladora, preferentemente seleccionada del grupo
constituido por un compuesto policatiónico, preferentemente un
polímero policatiónico, más preferentemente un péptido
policatiónico, especialmente poliarginina, polilisina o un péptido
antimicrobiano, polímeros; desoxinucleótidos inmunoestimuladores
(ODN); péptidos que contienen al menos dos motivos LysLeuLys;
compuestos neuroactivos especialmente la hormona de crecimiento
humana; alumbre, adyuvante completo o incompleto de Freund o
combinaciones de los mismos.
La presente vacuna comprende preferentemente
- -
- como antígeno, una proteína capsidial VP1 modificada de acuerdo con la presente invención
- -
- un péptido que comprende una secuencia R_{1}-XZXZ_{N}XZX-R_{2}, en la que N es un número entero entre 3 y 7, preferentemente 5, X es un resto aminoacídico natural y no natural cargado positivamente, Z es un resto aminoacídico seleccionado del grupo constituido por L, V, I, F y/o W, y R_{1} y R_{2} se seleccionan independientemente entre sí del grupo constituido por -H, -NH_{2}, -COCH_{3}, -COH, un péptido con hasta 20 restos aminoacídicos o un grupo peptídico reactivo o un engarce peptídico con o sin un péptido; X-R_{2} puede ser una amida, éster o tioéster del resto aminoacídico C-terminal del péptido (en lo sucesivo denominado también "Péptido A") y/o
- -
- una molécula de ácido oligodesoxinucleico (ODN) inmunoestimulador que tiene la estructura de acuerdo con la fórmula (I)
-
1
en la que
R1 se selecciona de hipoxantina y uracilo,
cualquier X es O ó S,
cualquier NMP es un 2' desoxinucleósido
monofosfato o monotiofosfato, seleccionado del grupo constituido por
desoxiadenosina, desoxiguanosina-, desoxiinosina-, desoxicitosina-,
desoxiuridina-, desoxitimidina-,
2-metil-desoxii-
nosina-, 5-metil-desoxicitosina-, desoxipseudouridina-, desoxirribosapurina-, 2-amino-desoxirribosapurina-, 6-S-de-
soxiguanina-, 2-dimetil-desoxiguanosina- o N-isopentenil-desoxiadenosina-monofosfato o -monotiofosfato, NUC es un 2' desoxinucleósido, seleccionado del grupo constituido por desoxiadenosina-, desoxiguanosina-, desoxiinosi-
na-, desoxicitosina-, desoxiinosina-, desoxitimidina-, 2-metil-desoxiuridina-, 5-metil-desoxicitosina-, desoxipseudou-
ridina-, desoxirribosapurina-, 2-amino-desoxirribosapurina-, 6-S-desoxiguanina-, 2-dimetil-desoxiguanosina- o N-isopentenil-desoxiadenosina,
nosina-, 5-metil-desoxicitosina-, desoxipseudouridina-, desoxirribosapurina-, 2-amino-desoxirribosapurina-, 6-S-de-
soxiguanina-, 2-dimetil-desoxiguanosina- o N-isopentenil-desoxiadenosina-monofosfato o -monotiofosfato, NUC es un 2' desoxinucleósido, seleccionado del grupo constituido por desoxiadenosina-, desoxiguanosina-, desoxiinosi-
na-, desoxicitosina-, desoxiinosina-, desoxitimidina-, 2-metil-desoxiuridina-, 5-metil-desoxicitosina-, desoxipseudou-
ridina-, desoxirribosapurina-, 2-amino-desoxirribosapurina-, 6-S-desoxiguanina-, 2-dimetil-desoxiguanosina- o N-isopentenil-desoxiadenosina,
a y b son números enteros de 0 a 100 con la
condición de que a + b esté entre 4 y 150 y
B y E son grupos comunes para terminaciones 5' ó
3' de moléculas de ácido nucleico (en lo sucesivo denominados
también "I-/U-ODN").
Por supuesto, la presente vacuna puede contener
adicionalmente otras sustancias, por ejemplo diluyentes o
transportadores farmacéuticamente aceptables, sustancias tamponantes
o estabilizantes, etc.
La vacuna de acuerdo con la presente invención
también puede contener otros adyuvantes o adicionales,
específicamente un adyuvante Al(OH)_{3}
(alumbre).
Como se entiende en este documento, el alumbre
incluye todas las formas de adyuvantes basados en Al^{3+} usados
en medicina e investigación humana y animal. Especialmente, incluye
todas las formas de hidróxido de aluminio como se define en Römpp,
10ª Ed. páginas 139/140, formas en gel de los mismos, fosfato de
aluminio, etc.
Los péptidos o compuestos policatiónicos a usar
de acuerdo con la presente invención pueden ser cualquier compuesto
policatiónico que muestre el efecto característico de acuerdo con el
documento WO 97/30721. Los compuestos policatiónicos preferidos se
seleccionan de los polipéptidos básicos, policationes orgánicos,
poliaminoácidos básicos o mezclas de los mismos. Estos
poliaminoácidos deberían tener una longitud de cadena de al menos 4
restos aminoacídicos. Especialmente preferidas son las sustancias
que contienen enlaces peptídicos, como polilisina, poliarginina y
polipéptidos que contienen más del 20%, especialmente más del 50% de
aminoácidos básicos en el intervalo de más de 8, especialmente más
de 20, restos aminoacídicos o mezclas de los mismos. Otros
policationes preferidos y sus composiciones farmacéuticas se
describen en el documento WO 97/30721 (por ejemplo,
polietileneimina) y en el documento WO 99/38528. Preferentemente
estos polipéptidos contienen entre 20 y 500 restos aminoacídicos,
especialmente entre 30 y 200 restos.
Estos compuestos policatiónicos pueden
producirse químicamente o de manera recombinante o pueden proceder
de fuentes naturales.
Los (poli)péptidos catiónicos también
pueden ser péptidos microbianos antibacterianos policatiónicos.
Estos (poli)péptidos pueden ser de origen procariota o
eucariota o pueden producirse químicamente o de manera recombinante.
Los péptidos también pueden pertenecer a la clase de péptidos
antimicrobianos de origen natural. Dichos péptidos de defensa a
huésped o defensivos también son una forma preferida del polímero
policatiónico de acuerdo con la presente invención. Generalmente,
como polímero policatiónico se usa un compuesto que permitido como
una activación del producto final (o regulación negativa) del
sistema inmune adaptativo, preferentemente mediado por las células
presentadoras de antígeno CPA (incluyendo las células
dendríticas).
Adicionalmente, los compuestos neuroactivos,
tales como la hormona de crecimiento (humana) (como se describe por
ejemplo en el documento WO 0124822), pueden usarse como
inmunoestimulantes (Inmunizadores).
Los compuestos policatiónicos derivados de
fuentes naturales incluyen VIH-REV o
VIH-TAT (péptidos catiónicos derivados, péptidos
antennapedia, quitosan u otros derivados de quitina) u otros
péptidos derivados de estos péptidos o proteínas por producción
bioquímica o recombinante. Otros compuestos policatiónicos
preferidos son la catelicidina o sustancias relacionadas o
derivadas de la catelicidina, especialmente catelicidinas de ratón,
bovinas o especialmente humanas y/o catelicidinas. Las sustancias de
catelicidinas relacionadas o derivadas contienen toda o partes de
la secuencia de catelicidina con al menos 15-20
restos aminoacídicos. Las derivaciones pueden incluir la
sustitución o modificación de los aminoácidos naturales por
aminoácidos que no se encuentran entre los 20 aminoácidos
convencionales. Por otra parte, pueden introducirse otros restos
catiónicos en dichas moléculas de catelicidina. Estas moléculas de
catelicidina son las preferidas para combinar con la composición
antígeno/vacuna de acuerdo con la presente invención. Sin embargo,
de manera sorprende estas moléculas de catelicidina han resultado
ser también eficaces como un adyuvante para un antígeno sin la
adición de adyuvantes adicionales. Por lo tanto es posible usar
dichas moléculas de catelicidina como adyuvantes eficaces en las
formulaciones de vacunas con o sin sustancias inmunoactivantes
adicionales.
La vacuna de acuerdo con la presente invención
contiene preferentemente como Péptido A KLKL_{5}KLK y/o como
I-/U-ODN oligo d(IC)_{13}. (La
combinación del Péptido A y del
Oligo-d(IC)_{13} también se denomina
IC31). Estas dos sustancias son específicamente ventajosas de
acuerdo con la presente invención.
La vacuna de acuerdo con la presente invención
puede contener un oligodesoxinucleótido que contiene un motivo CpG
como ácido nucleico inmunomodulador. Los ácidos nucleicos
inmunomoduladores para usar de acuerdo con la presente invención
pueden ser de origen sintético, procariota y eucariota. En el caso
de origen eucariota, el ADN debe proceder de, basándose en el árbol
filogenético, especies menos desarrolladas (por ejemplo insectos,
pero también otras). En una realización preferida de la invención el
oligodesoxinucleótido inmunogénico (ODN) es una molécula de ADN
producida sintéticamente o mezclas de dichas moléculas. También se
incluyen los derivados o modificaciones de los ODN tales como
análogos tiofosfato sustituidos (restos tiofosfato sustituidos por
fosfato) como por ejemplo se describe en las patentes de Estados
Unidos US 5.723.335 y US 5.663.153 y otros derivados y
modificaciones, que estabilizan preferentemente la composición (o
composiciones) inmunoestimuladora pero no cambian sus propiedades
inmunológicas. Un motivo de secuencia preferido es un motivo de ADN
de seis bases que contiene un dinocleótido CpG (no metilado)
flanqueado por dos purinas en 5' y dos pirimidinas en 3'
(5'-Pur-Pur-C-G-Pyr-Pyr-3').
Los motivos CpG contenidos en los ODN de acuerdo con la presente
invención son más comunes en el ADN microbiano que en el de
vertebrados superiores y presentan diferencias en el patrón de
metilación. Sorprendentemente, las secuencias que estimulan las CPA
(células presentadoras de antígeno) de ratón no son muy eficaces
para las células humanas. Los ODN palindrómicos o no palindrómicos
preferidos para usar de acuerdo con la presente invención se
describen por ejemplo en las solicitudes de Patente Australianas A
1973/2000, A 805/2001, EP 0 468 520 A2, WO 96/02555, WO 98/16247, WO
98/18810, WO 98/37919, WO 98/40100, WO 98/52581, WO 98/52962, WO
99/51259 y WO 99/56755 todas ellas incorporadas en este documento
por referencia. Los ADN/ODN pueden producirse químicamente o de
manera recombinante o pueden proceder de fuentes naturales. Las
fuentes naturales preferidas son los insectos.
La vacuna de acuerdo con la presente invención
puede contener preferentemente un péptido policatiónico y un
oligodesoxinucleótido que contiene un motivo CpG en combinación. La
combinación de CpG-ODN y péptido policatiónico
tiene efectos de mejora en las composiciones de vacuna, que son
comparables a los efectos de la combinación del Péptido A y los
I-/U-ODN y no solo pueden combinarse con el Péptido
A y los I-/U-ODN sino que incluso pueden usarse en
lugar de estos. Por supuesto, pueden usarse todas las mezclas de
ácidos nucleicos inmunoestimuladores diferentes
(I-/U-ODN, CpG-ODN,...) y variantes
del Péptido A (así como otros Inmunizadores) de acuerdo con la
presente invención.
Previamente se ha demostrado (documento WO
02/13857) que los péptidos antimicrobianos derivados de la
catelicidina, de origen natural o derivados de los mismos tienen
una respuesta inmune que estimula la actividad y por lo tanto
constituyen adyuvantes de inducción de tipo 1 muy eficaces
(Inmunizadores). Las principales fuentes de péptidos
antimicrobianos son gránulos de neutrófilos y células epiteliales
que revisten los tractos respiratorio, gastrointestinal y
genitourinario. En general estos se encuentran en los sitios
anatómicos más expuestos a la invasión microbiana, se secretan en
los fluidos corporales internos o se almacenan en los gránulos
citoplásmicos de los fagocitos profesionales (neutrófilos).
En el documento WO 02/32451 se describe un
adyuvante de inducción de tipo 1 (Inmunizador) que puede potenciar
fuertemente la respuesta inmune contra un antígeno específico
co-administrado y por lo tanto constituye un
adyuvante muy eficaz, el Péptido A que comprende una secuencia
R_{1}-XZXZ_{N}XZX-R_{2}. Un
péptido específicamente preferido es KLKLLLLLKLK. Además de
péptidos antimicrobianos de origen natural, se han producido e
investigado péptidos sintéticos antimicrobianos. El péptido
sintético antimicrobiano KLKLLLLLKLK-NH_{2}
demostró tener actividad quimioterapéutica significativa en ratones
infectados con Staphylococcus aureus; los neutrófilos
humanos se activaron para producir el anión superóxido
(O_{2}^{-}) mediante la calreticulina de la superficie celular.
Se observó que el número y la posición de K y L exactos eran
críticos para la actividad antimicrobiana del péptido
sintético.
La presente invención es especialmente
beneficiosa si la vacuna se administra por vía subcutánea,
intramuscular, intradérmica o transdérmica. Sin embargo, para la
presente invención también son adecuadas otras formas de
aplicación, tales como parenteral, intravenosa, intranasal, oral o
aplicación tópica.
El antígeno contra el parvovirus de acuerdo con
la presente invención puede mezclarse con un adyuvante (Inmunizador)
(composición) o formularse específicamente de otra manera por
ejemplo como liposoma, formulación retardada, etc.
Las vacunas de acuerdo con la presente invención
pueden administrarse a un individuo en cantidades eficaces
conocidas por los expertos en la materia. La optimización de la
cantidad de antígeno y la cantidad de inmunizador puede comenzar a
partir de cantidades establecidas y usando procedimientos
disponibles.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona un kit de diagnóstico que comprende una
región única de VP1 modificada, una proteína capsidial VP1
modificada de acuerdo con la presente invención y reactivos
auxiliares.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona un kit de diagnóstico que comprende un
producto de fusión de la proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con la presente invención y reactivos auxiliares.
De acuerdo con un aspecto adicional de la
presente invención, se proporciona un kit de diagnóstico que
comprende partículas recombinantes similares a un virus de acuerdo
con la presente invención y reactivos auxiliares.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona la región única de VP1 modificada, la
proteína capsidial VP1 modificada de acuerdo con la presente
invención con o sin proteína capsidial VP2 como un agente para
modificar la actividad de una actividad de la fosfolipasa A2
huésped, por ejemplo por terapia génica o usando ARN o ARNi
antisentido.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporciona el producto de fusión de la proteína
capsidial VP1 modificada de acuerdo con la presente invención como
un agente para modificar la actividad de una actividad de la
fosfolipasa A2 huésped.
De acuerdo con otro aspecto de la presente
invención, se proporcionan las partículas recombinantes similares a
un virus de acuerdo con la presente invención como un agente para
modificar la actividad de una actividad de la fosfolipasa A2
huésped.
La presente invención se ilustra adicionalmente
mediante los siguientes ejemplos y figuras, de los que pueden
extraerse características, realizaciones y ventajas adicionales.
Debe entenderse que los presentes ejemplos solo se proporcionan a
modo de ilustración y no a modo de limitación de la divulgación.
La Figura 1 muestra una comparación inmunológica
de una proteína ts (de tipo silvestre) y mutante
La Figura 2 muestra un alineamiento de la
proteína VP1 del parvovirus.
\vskip1.000000\baselineskip
La producción de antígenos contra VP1/VP2 sin
actividad enzimática puede conseguirse por modificación de los
restos que son parte del centro activo por mutagénesis dirigida. A
pesar del hecho de que el tamaño global de las enzimas celulares
con actividad fosfolipasa A2 dependiente de
Ca^{2+}-y la región única de VP1 viral es
diferente, los alineamientos que comparan las secuencias de
aminoácidos revelan diversos restos conservados en la región que
representan el centro activo de la enzima. Se observaron aminoácidos
conservados en las siguientes posiciones:
Resto 153; histidina; resto 157: tirosina; resto
162: lisina; resto 168: tirosina; resto 195: ácido aspártico. Los
aminoácidos respectivos se han descrito como partes de la triada
catalítica de la fosfolipasa A2 pancreática bovina y se han
implicado en la orientación y especificidad del sustrado. Por lo
tanto, la modificación de estos restos en la región única de VP1
por mutagénesis dirigida se realizó usando la reacción en cadena de
la polimerasa con un cebador mutado y una extensión solapada como se
ha descrito inicialmente por Ho y colaboradores (56). Como se
muestran en la tabla 2 la actividad de tipo fosfolipasa A2 de la
región única de VP1 podría reducirse intercambiando ambas tirosinas
157 y 168 por fenilalanina y modificando la lisina 162 por leucina.
Sin embargo el intercambio del ácido aspártico 195 por alanina
conduce a una potenciación inesperada de la actividad de la enzima
viral indicando distintas diferencias entre las enzimas fosfolipasa
A2 viral y celular. Podría conseguirse una destrucción casi total
de la actividad enzimática solamente modificando la histidina 153
por alanina. Se puede llegar a la conclusión de que este resto
aminoacídico es parte del centro activo y es más importante para la
actividad enzimática de la región única de VP1. Su modificación está
asociada con la destrucción completa de la actividad viral de tipo
fosfolipasa A2.
Inoculación de ratones. Se inocularon
grupos de 5 ratones hembra Balc/C con 50 \mug de preparaciones
purificadas de la región única de VP1/de tipo silvestre y la
región única de VP1/H153A en emulsión con adyuvantes de
Freund completos. Se extrajeron muestras sanguíneas retrobulbares
los días 0, 3, 7, 10, 14, 18 y 28 después de la inoculación. Los
sueros se ensayaron para determinar la presencia de anticuerpos IgG
contra la región única de VP1/de tipo silvestre en ensayos
ELISA.
Producción de proteínas. Se clonaron las
secuencias que codifican la región única de VP1/de tipo
silvestre y la región única de VP1/H153A en el vector de
expresión T7 pET21a_int en fusión con una interna y un dominio de
unión a quitina como se ha descrito anteriormente (Dorsch y col.,
2001, Dorsch y col., 2002). Las construcciones se introdujeron en
la cepa de E. coli BL21. Las bacterias se inocularon con
medio CL (caldo de Luria) que contenía 100 \mug/ml de ampicilina
y se incubaron a 37ºC. Se indujo la expresión de la proteína
recombinante añadiendo IPTG 1 mM durante al menos 3 h de cultivo.
Las bacterias se recogieron por centrifugación, se resuspendieron
en 30 ml de HEPES 20 mM, EDTA 1 mM, NaCl 100 mM, pH a 8,5 y se
lisaron usando una Prensa de French. El residuo se sedimentó a
10000 g. El sobrenadante se cargó en una columna de quitina (NEB)
usando el sistema FPLC, (cromatografía líquida de proteína rápida)
(Pharmacia Biosystems, Freiburg). La columna se lavó con 2
volúmenes de HEPES 20 mM, EDTA 1 mM, NaCl 100 mM, pH 8,5, 8
volúmenes de HEPES 20 mM, EDTA 1 mM, NaCl 2 mM, pH 8,5 y 2
volúmenes de HEPES 20 mM, EDTA 1 mM NaCl 100 mM, pH 8,5. Después de
esto la proteína se eluyó usando 3 volúmenes de DTT 50 mM en tampón
HEPES 20 mM, EDTA 1 mM, NaCl 100 mM, pH 8,5. Las fracciones se
ensayaron para determinar las proteínas recombinantes mediante
SDS-PAGE (electroforesis en gel de poliacrilamida -
Dodecil sulfato sódico) y tinción con plata. Las fracciones
positivas se unificaron y se concentraron usando un concentrador
Centriplus (volumen de exclusión 3 kD; Amicon, Beverly, USA). La
concentración de la proteína se determinó después de diálisis
frente a PBS (KH_{2}PO_{4} 0,9 mM, Na_{2}HPO_{2} 0,8 mM
X12H_{2}O; KCl 2,7 mM, NaCl 137 mM) usando un ensayo Bradford
(Bio Rad Laboratories, Hercules, USA).
Ensayo ELISA. Se recubrieron placas de
microtitulación (Maxisorb, Nunc, Wiesbaden, FRG) durante una noche
con proteína purificada (región única de VP1/de tipo
silvestre, 10 ng/pocillo) en tampón NaCO_{3} 0,2 M, pH 9,2 que
contenía NaCl 0,15 M. Los sueros se usaron en diluciones de 1:100 en
PBS/Tween-20 al 0,5% y se detectaron anticuerpos
IgG usando IgG de conejo anti-ratón policlonal
acoplado a HRP como anticuerpos secundarios (dilución 1:5000 en
PBS/Tween-20 al 0,5%, da Dako, Hamburg FRG) y TMB
como sustrato, la densidad óptica se determinó a 450 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Comenzando desde el día 7 después de la
inoculación los anticuerpos IgG dirigidos contra la región
única de VP1/de tipo silvestre eran detectables en ratones que
se habían inoculado con las dos preparaciones purificadas de la
región única de VP1/de tipo silvestre y la región única de
VP1/H153A (Figura 1). Las cantidades de anticuerpos aumentaron
de manera continua hasta el día 28 después de la inoculación. No
pudieron observarse diferencias en la reactividad de los ratones
inoculados con la región única de VP1/de tipo silvestre o la
región única de VP1/H153A. Estos resultados indican que las
dos proteínas son muy antigénicas. Los anticuerpos inducidos contra
la variante de la región única de VP1/H153A tienen la
capacidad de unirse a la región única de VP1/de tipo
silvestre que se había usado como antígeno en el ELISA indicando un
elevado grado de reactividad cruzada. Los ratones que se inocularon
con PBS en emulsión con adyuvantes completos de Freund no
desarrollaron ninguna cantidad significativa de anticuerpos
específicos contra VP1.
Se inoculó en ratones el antígeno de la
región única de VP1/de tipo silvestre y el antígeno mutante
(His153Ala). La producción de anticuerpos específicos contra VP1 se
analizó mediante ELISA. No se observaron diferencias en cuanto a
la capacidad de los dos antígenos para provocar la producción de
anticuerpos específicos contra VP1. Los anticuerpos contra el
antígeno mutante His153Ala eran similarmente activos para unirse a
la región única de VP1 de tipo silvestre y viceversa. Esto indica
que la variante mutante His153Ala de la región única de VP1 del
parvovirus B19 tiene una capacidad comparable para provocar la
producción de anticuerpos a la del dominio de la proteína de tipo
silvestre. Puesto que se sabe que los principales epítopes
neutralizantes se localizan en diferentes partes de la proteína del
centro activo de la enzima de tipo fosfolipasa A2 viral y cuando no
se ven afectados por ninguna de las mutaciones introducidas, los
efectos sobre la inmunogenicidad de las proteínas son poco
probables (57).
La combinación de las dos estrategias - la
producción de cápsides de VP1/VP2 en S. cerevisiae
recombinante y la destrucción de la actividad de tipo fosfolipasa
A2- tiene el potencial para producir una vacuna que permita la
prevención de la infección por el parvovirus B19 sin un número de
efectos secundarios reducidos debido a la producción elevada de
leucotrieno y prostaglandina y sin potencial peligroso para inducir
reacciones autoinmunes que pueden derivar en enfermedades
reumáticas de larga duración.
\vskip1.000000\baselineskip
Figura 1. El desarrollo de anticuerpos IgG
contra la región única de VP1/de tipo silvestre. Se
inocularon grupos de 5 ratones con la región única de VP1/de
tipo silvestre, la región única de VP1/H153A o PBS. Las
muestras de suero extraídas los días que se indican después de la
inoculación se ensayaron en ELISA usando como antígeno la región
única de VP1. En cada caso se determinaron los valores promedio
obtenidos del ensayo de muestras individuales de 5 ratones.
\vskip1.000000\baselineskip
1. Cossart Y.E., Cant B.,
Field A.M., Widdows D. 1975, Lancet 1,
72.
2. Paver W.K., Clarke S.K.R.
1976, J. Clin. Microbiol. 4, 67.
3. Shneerson J.M., Mortimer PÁGS.,
Vandervelde E.M. 1980, Br. Med. J., 280,
1580.
4. Anderson M., Lewis E.,
Kidd I.M., Hall S.M., Cohen B.J. 1984,
J. Hyg. (Londres) 93, 85.
5. Chorba T., Coccia P.,
Holman R.C., Tattersall P., Anderson L.J.,
Sudman J., Young, N.S., Kurczynski E.,
Saarinen U.M., Moir R. 1986, J. Infect.
Dis. 154, 383.
\newpage
6. Blümel J., Schmidt I.,
Effenberger W., Seitz H., Willkommen H.,
Brackmann H.H., Lo J.,
Eis-Hübinger A.M. 2002,
Transfusion, 42, 1473.
7. Hayakawa F., Imada K.,
Towatari M., Saito H. 2002, Br. J.
Haematol., 118, 1187.
8. Prowse C, Ludlam C.A.,
Yap P.L. 1997, Vox Sanguinis, 72, 1.
9. Yaegashi N., Niinuma T.,
Chisaka H., Watanabe T., Uehara S.,
Okamura K., Moffat S., Sugamura K.,
Yajima A. 1998, 37, 28.
10. Ozawa K., Young N.
1987, J. Virol., 62, 2508.
11. Brown K.E., Anderson S.M.,
Young N.S. 1993, Science, 262, 114.
12. Bültmann B.D., Klingel K.,
Sotlar K., Bock, C.F., Kandolf R. 2003,
Virchows Arch. 442, 8.
13. Cassinotti P., Siegl G.,
Michel B.A., Bruhlmann P. 1998 J. Med.
Virol., 56, 199.
14. Eis-Hübinger A.M.,
Reber U., Abdul-Nour T.,
Glatzel U., Lauschke H., Putz U. 2001,
J. Med. Virol.; 65, 395.
15. Hokynar K., Brunstein J.,
Söderlund-Venermo M., Kiviluoto O.,
Partio E.K., Konttinen Y., Hedman K.
2000, J. Gen. Virol., 81, 1017.
16. Söderlund M., von Essen R.,
Haapasaari J., Kiistala U., Kiviluoto O.,
Hedman K. 1997, Lancet 349, 1063.
17. Vuorinen T., Lammintausta K.,
Kotilainen P., Nikkari S. 2002 J. Clin.
Virol., 25, 217.
18. Cherry J.D. 1994, Adv.
Pediatr., 46,245.
19. Török T.J. 1997, Anderson LJ,
Young NS (Ed). Human parvovirus B19. Monogr Virol, Vol. 20.
Basel: Karger; 61.
20. Heegard E.D., Brown K.E.
2002, Clin. Microbiol. Rev. 15, 485.
21. Langnas A.N., Markin R.S.,
Cattral M.S., Naides S.J. 1995,
Hepatology 22, 1661
22. Bousvaros A., Sundel R.,
Thorne G.M., McIntosh K., Cohen M.,
Erdman D.D., Perez-Atayde A.,
Finkel T.H., Colin A.A. 1998, Pediatr.
Pulmonol. 26, 365.
23. Wardeh A., Marik P.
1998, J. Internal Med., 244, 257.
24. Yoto Y., Kudoh T.,
Haseyama K., Tsutsumi H. 2001, Lancet,
358, 2168.
25. Rogers B.B., Singer, D.B.,
Mak S.K., Gary G.W., Fikrig M.K.,
McMillan P.M. 1993, Obstet. Gynecol. 81,
402.
26. Nyman M., Tolfvenstam T.,
Petersson K., Krassny C.,
Skjolde-brand-Sparre L.,
Broliden K. 2002, Obstet.
Gyne-col. 99, 795.
27. Miller E., Fairley C.K.,
Cohen, B.J., Seng C. 1998, B.J. Obstet.
Gynaecol. 105, 174.
28. Knöll A., Louwen F.,
Kochanowski B., Plentz A., Stüssel J.,
Beckenlehner K., Jilg W., Modrow S.
2002, J. Med. Virol. 67, 259.
29. Kurtzman G.J., Ozawa K.,
Cohen B., Hanson G., Oseas R., Blase
R.M., Young N.S. 1987, N. Engl. J. Med. 317,
287.
30. Pont J.,
Puchhammer-Stöckl E., Chott A.,
Popow-Kraupágs T., Kienzer I.,
Postner G., Honetz N. 1992, Br. J.
Haematol. 80, 160.
31. Scheurlen W., Ramasubbu K.,
Wachowski O., Hemauer A., Modrow S.
2001, J. Clin. Virol., 20, 173.
32. Hanada T., Koike K.,
Hirano C., Takeya T., Suzuki T.,
Matsunaga Y., Takita H. 1989, Eur. J.
Haematol., 42, 77.
33. Lefrere J.J., Courouce A.M.,
Kaplan C. 1989 Lancet, 1, 279.
34. Murray J.C., Kelley P.K.,
Hogrefe W.R., McClain K.L. 1994, Am. J.
Pediatr. Hematol. Oncol., 16, 314.
35. Hida M., Shimamura J.,
Ueno E., Watanabe 2000, J. Pediatr.
Int., 42, 708.
36. Naides S.J., Scharosch L.L.
Foto F., Howard E.J. 1990, Arthritis.
Rheum. 33, 1297.
37. Murai C., Munakata Y.,
Takahashi Y.; Ishii T., Shibata S.,
Muryoi T., Funato T., Nakamura M.,
Sugamua K., Sasaki F.T. 1999, Ann. Rheum.
Dis 58, 130.
38. Nikkari S., Luukkainen R.,
Möttönen T., Meurman O., Hannonen P.,
Skurnik M., Toivanen P. 1994, Ann. Rheum.
Dis. 53, 106.
39. Moore T.L. 2000, Curr. Opin.
Rheumatol. 12, 289.
40. Lehmann H.W., Kühner L.,
Beckenlehner K., Müller-Godeffroy E.,
Heide K.G., Küster R.M., Modrow S. 2002,
J. Clin. Virol., 25, 135.
41. Nocton J.J., Miller L.C.,
Tucker L.B., Schaller J.G., 1993, J.
Pediat., 122, 186.
42. Mimori A., Misaki Y.,
Hachiya T., Ito K., Kano S. 1994,
Rheum. Int., 14, 87.
43. Oguz F., Akdeniz C.,
Unuvar E., Kucukbasmaci O., Sidal M.
2002, J. Paediatr. Child Health 38, 358.
44. Lehmann H.W., Knöll A.,
Küster R.M., Modrow S. 2003, Arthritis
Rheum. 48, 1631.
45. Negro A., Regolisti G.,
Perazzoli F., Coghi P., Tumiati B.,
Rossi E. 2001, Ann. Ital. Med. Int., 16,
125.
46. Tovari E., Mezey I.,
Hedman K., Czirjak L. 2002, Ann. Rheum.
Dis., 61, 662.
47. Cope A.P., Jones A.,
Brozovic M., Shafi M.S., Maini R.N.
1992, Ann. Rheum. Dis., 51, 803.
48. Trapani S., Ermini M.,
Falcini F. 1999, Semin. Arthr. Rheum. 28,
319.
49. Hemauer A., Beckenlehner K.,
Wolf H., Lang B., Modrow S. 1999, J.
Clin. Virol., 14, 73.
50. Hsu T.-C., Tsay G.J.
2001, Rheumatol., 40, 152.
51. Diaz F., Collazos J.,
Mendoza F., de la Viuda J.M., Cazallas J.,
Urkijo J.C., Flores M. 2002, Clin Microbiol
Infect., 8, 115.
52. Landenberg v. P., Lehmann
H.W., Knöll A., Dorsch S., Modrow S.
2003, Arthritis Rheum. 48, in press.
53. Cervera R., Piette J.C.,
Font J., Khamashta M.A., Shoenfeld Y.,
Camps M.T., Jacobsen S., Lakos G.,
Tincani A., Kontopoulou-Griva I.,
Galeazzi M., Meroni P.L., Derksen R.H., de
Groot P.G., Grommnica-Ihle E.,
Baleva M., Mosca M., Bombardieri
dez-Nebro A., Boffa M.C., Hughes
G.R., Ingelmo M. 2002, Arthritis Rheum., 46,
1019.
54. Dorsch S., Liebisch G.,
Kaufmann B., von Landenberg P., Hoffmann J.H.,
Drobnik W., Modrow S. 2002, J. Virol.
76, 2014.
55. Ballou W.R., Reed, J.L.,
Noble, W., Young N.S. 2003, J. Infect.
Diseases, 187, 675.
56. Ho S.N., Hunt H.D.,
Horton R.M., Pullen J.K., Pease L.R.
1989, Gene 77, 51.
57. Gigler A., Dorsch S.,
Hemauer A., Williams C., Young N.S.,
Zolla-Pazner S., Gorny M.K.,
Modrow S. 1999, J. Virol., 73, 1974.
58. Arni R.K., and R. J. Ward.
1996. Phospholipase A2 - a structural review. Toxicon
34: 827-841.
59. Moore, T. L., R. Bandlamudi,
S. M. Alam, and G. Nesher. 1999. Parvovirus
infection mimicking systemic lupus erythematosus in a pediartric
population. Semin. Arthritis Rheum. 28:
314-318.
60. Servant A, Laperche S,
Lallemand F, Marinho V, De Saint Maur G,
Meritet JF, Garbarg-Chenon A. Genetic
diversity within human erythroviruses: identification of three
genotypes. J Virol. 2002
76:9124-34.
61. Liefeldt, L., Plentz, A.,
Klempa, B., Kershaw, O., Endres, A.S.,
Raab, U., Neumayer, H.H., Meisel, Hans
G. Faßbender, H., Modrow, S. Recurrent high level
parvovirus B19/genotype 2 viremia in a renal transplant recipient
analyzed by real-time PCR for simultaneous detection
of genotypes 1 to 3. J. Med. Virol., en prensa.
62. Dorsch, S., Kaufmann, B.,
Schaible, U., Prohaska, E., Wolf, H.,
Modrow, S. (2001) The VP1-unique
region of parvovirus B19: Amino acid variability and antigenic
stablity. J. Gen. Virol., 82, 191-199.
63. Dorsch, S., Liebisch, G.,
Kaufmann, B., Hoffmann, J.H., v. Landenberg,
P., Dropnik, W., Modrow, S. (2002) The
VP1-unique region of parvovirus B19 and its
constituent phospholipase A2-like activity. J.
Virol., 76, 2014-2018.
<110> AG inter celular
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Parvovirus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> r49100
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140> EP05799042.6
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
23-09-2005
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> EP04450180.7
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
24-09-2004
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> Patent In version 3. 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 781
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Parvovirus B19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\hskip1cm
\hskip1cm
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 781
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<212> PRT
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<213> Parvovirus B19
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 2
\hskip1cm
\hskip1cm
\hskip1cm
\hskip1.2cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 781
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Parvovirus B19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\hskip1cm
\hskip1cm
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> adyuvante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\hskip1cm
Claims (37)
1. Proteína capsidial VP1 modificada del
parvovirus B19 que tiene una actividad enzimática de tipo
fosfolipasa A2 reducida en comparación con la proteína capsidial
VP1 de tipo silvestre del parvovirus B19 que tiene la secuencia de
aminoácidos de la Sec ID Nº: 1, en la que uno o más de los restos
aminoacídicos conservados en el centro activo de la fosfolipasa A2
se modifican en la posición 153: histidina; en la posición 157:
tirosina; en la posición 162: lisina; y/o en la posición 168:
tirosina.
2. La proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con la reivindicación 1 caracterizada porque la
histidina 153 se modifica a alanina.
3. La proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con la reivindicación 1 caracterizada porque la
tirosina 157 se modifica a fenilalanina.
4. La proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con la reivindicación 1 caracterizada porque la
lisina 162 se modifica a leucina.
5. La proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con la reivindicación 1 caracterizada porque la
tirosina 168 se modifica a fenilalanina.
6. La proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5,
caracterizada porque la sustitución de los restos
aminoacídicos se realiza por mutagénesis dirigida.
7. Una molécula de ácido nucleico aislada que
codifica la proteína capsidial VP1 modificada de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6.
8. Un vector de expresión recombinante que
comprende la molécula de ácido nucleico de acuerdo con la
reivindicación 7.
9. Un vector de expresión recombinante de
acuerdo con la reivindicación 8 caracterizado porque
adicionalmente comprende una proteína capsidial VP2 del parvovirus
B19.
10. Un vector de expresión recombinante de
acuerdo con la reivindicación 9, caracterizado porque la
proteína capsidial VP1 modificada se fusiona con la proteína
capsidial VP2.
11. Una célula huésped que comprende el vector
de expresión recombinante de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 8 a 10.
12. La célula huésped de acuerdo con la
reivindicación 11 que es E. coli, una levadura,
preferentemente Saccharomyces cerevisiae o células
animales.
13. Un procedimiento de producción de la
proteína capsidial VP1 modificada de acuerdo con una cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 6 o el producto de fusión de la proteína
capsidial VP1 modificada y la proteína capsidial VP2 de acuerdo con
la reivindicación 10, usando la célula huésped de acuerdo con la
reivindicación 11 ó 12.
14. El procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 13, en el que la proteína capsidial VP1 modificada
y/o el producto de fusión de la proteína capsidial VP1 modificada y
la proteína capsidial VP2 están aislados y/o purificados.
15. La proteína capsidial VP1 modificada o el
producto de fusión de la proteína capsidial VP1 modificada y la
proteína capsidial VP2 que pueden obtenerse usando el procedimiento
de acuerdo con la reivindicación 13 ó 14.
16. La proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 y 15, o el
producto de fusión de la proteína capsidial VP1 modificada y la
proteína capsidial VP2 de acuerdo con la reivindicación 15 para su
uso como medicamentos.
17. El uso de la proteína capsidial VP1
modificada de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1
a 6, 15 y 16, con o sin proteína capsidial VP2 para la fabricación
de un medicamento para el tratamiento contra una infección por
parvovirus B19 y/o enfermedades autoinmunes y reumáticas asociadas
al parvovirus B19.
18. El uso del producto de fusión de la proteína
capsidial VP1 modificada y de la proteína capsidial VP2 de acuerdo
con la reivindicación 15 ó 16 para la fabricación de un medicamento
para el tratamiento contra una infección por el parvovirus B19 y/o
enfermedades autoinmunes y reumáticas asociadas al parvovirus
B19.
19. El uso de acuerdo con la reivindicación 17 ó
18, caracterizado por que el tratamiento es contra
artralgias; artritis; más preferentemente monoartritis,
oligoartritis, poliartritis, artritis reumatoide y/o artritis
idiopática juvenil; lupus eritematoso sistémico (LES); vasculitis,
más preferentemente vasculitis leucocitoclástica, púrpura de
Henlein-Schoenoch, síndrome papulopurpúrico en
guantes y calcetines (SPPGC), enfermedad de Kawasaki, arteritis de
células gigantes (ACG), poliarteritis nodosa y/o granulomatosis de
Wegener; dermatomiositis; neutropenia autoinmune; trombocitopenia
autoinmune; púrpura trombocitopénica idiopática (PTI); anemia
hemolítica autoinmune; y/o síndrome hemofagocítico asociado a un
virus (SHAV).
20. El uso de la proteína capsidial VP1
modificada de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1
a 6, 15 y 16 o el producto de fusión de la proteína capsidial VP1
modificada y la proteína capsidial de VP2 de acuerdo con la
reivindicación 15 ó 16, en un ensayo para detectar anticuerpos
dirigidos contra la proteína VP1 del virus B19 en una muestra a
ensayar.
21. El uso de las células huésped de acuerdo con
la reivindicación 11 ó 12 en un ensayo para detectar anticuerpos
dirigidos contra la proteína VP1 del virus B19 en una muestra a
ensayar.
22. Partículas recombinantes similares a un
virus constituidas por la proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 ó 15 a 16
con o sin proteína capsidial VP2.
23. Partículas recombinantes similares a un
virus constituidas por el producto de fusión de la proteína
capsidial VP1 modificada y la proteína capsidial VP2 de acuerdo con
la reivindicación 15 ó 16.
24. El uso de las partículas recombinantes
similares a un virus de acuerdo con la reivindicación 22 ó 23 para
la fabricación de un medicamento para el tratamiento contra la
infección por parvovirus B19 y/o enfermedades autoinmunes y
reumáticas asociadas al parvovirus B19.
25. El uso de acuerdo con la reivindicación 24
caracterizado porque el tratamiento es contra tratamiento es
contra artralgias; artritis; más preferentemente monoartritis,
oligoartritis, poliartritis, artritis reumatoide y/o artritis
idiopática juvenil; lupus eritematoso sistémico (LES); vasculitis,
más preferentemente vasculitis leucocitoclástica, púrpura de
Henlein-Schoenoch, síndrome papular purpúrico en
guantes y calcetines (SPPGC), enfermedad de Kawasaki, arteritis de
células gigantes (ACG), poliarteritis nodosa y/o granulomatosis de
Wegener; dermatomiositis; neutropenia autoinmune; trombocitopenia
autoinmune; púrpura trombocitopénica idiopática (PTI); anemia
hemolítica autoinmune; y/o síndrome hemofagocítico asociado a virus
(SHAV).
26. El uso de las partículas recombinantes
similares a un virus de acuerdo con la reivindicación 22 ó 23 en un
ensayo para detectar anticuerpos dirigidos contra la proteína VP1
del virus B19 en una muestra a ensayar.
27. Una composición farmacéutica, especialmente
una preparación de vacuna para inducir una respuesta inmune que
proporciona protección contra el parvovirus humano B19, que
comprende la proteína capsidial VP1 modificada de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, 15 y 16, con o sin la
proteína capsidial VP2.
28. Una composición farmacéutica, especialmente
una preparación de vacuna para inducir una respuesta inmune que
proporciona protección contra el parvovirus humano B19, que
comprende el producto de fusión de la proteína capsidial VP1
modificada de acuerdo con la reivindicación 15 ó 16.
29. Una composición farmacéutica, especialmente
una preparación de vacuna para inducir una respuesta inmune que
proporciona protección contra el parvovirus humano B19, que
comprende las partículas recombinantes similares a un virus de
acuerdo con la reivindicación 22 ó 23.
30. La composición farmacéutica de acuerdo con
una cualquiera de las reivindicaciones 27 a 29, que comprende
adicionalmente uno o más transportadores y/o adyuvantes adecuados
para los propósitos de vacunación.
31. La composición farmacéutica de acuerdo con
una cualquiera de las reivindicaciones 27 a 30, que comprende
adicionalmente una sustancia inmunoestimuladora, seleccionada
preferentemente del grupo que comprende polímeros policatiónicos,
especialmente polipéptidos policatiónicos, desoxinucleótidos
inmunoestimuladores (ODN); péptidos que contienen al menos dos
motivos LysLeuLys; compuestos neuroactivos, especialmente una
hormona de crecimiento humana; alumbre, adyuvantes completos o
incompletos de Freund o combinaciones de estos.
32. Un kit de diagnóstico que comprende:
- i)
- una proteína capsidial VP1 modificada de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, 15 ó 16 y
- ii)
- reactivos complementarios.
\vskip1.000000\baselineskip
33. Un kit de diagnóstico que comprende:
- i)
- un producto de fusión de la proteína capsidial VP1 modificada de acuerdo con las reivindicaciones 15 ó 16, y
- ii)
- reactivos complementarios.
\vskip1.000000\baselineskip
34. Un kit de diagnóstico que comprende:
- i)
- partículas recombinantes similares a un virus de acuerdo con la reivindicación 22 ó 23 y
- ii)
- Reactivos complementarios.
\vskip1.000000\baselineskip
35. Una proteína capsidial VP1 modificada de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, 15 ó 16
con o sin proteína capsidial VP2 como un agente para modificar la
actividad de una actividad de la fosfolipasa A2 huésped.
36. Un producto de fusión de la proteína
capsidial VP1 modificada de acuerdo con la reivindicación 15 ó 16
como un agente para modificar la actividad de una actividad de la
fosfolipasa A2 huésped.
37. Partículas recombinantes similares a un
virus de acuerdo con la reivindicación 22 ó 23 como un agente para
modificar la actividad de una actividad de la fosfolipasa A2
huésped.
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Families Citing this family (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2009108274A2 (en) * | 2008-02-26 | 2009-09-03 | The University Of North Carolina At Chapel Hill | Methods and compositions for adeno-associated virus (aav) with hi loop mutations |
EP2396343B1 (en) | 2009-02-11 | 2017-05-17 | The University of North Carolina At Chapel Hill | Modified virus vectors and methods of making and using the same |
WO2011127316A1 (en) | 2010-04-07 | 2011-10-13 | Novartis Ag | Method for generating a parvovirus b19 virus-like particle |
EP2446898A1 (en) * | 2010-09-30 | 2012-05-02 | Laboratorios Del. Dr. Esteve, S.A. | Use of growth hormone to enhance the immune response in immunosuppressed patients |
WO2012055814A1 (en) | 2010-10-25 | 2012-05-03 | Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Inserm) | Compound inducing lbpa accumulation for inhibiting cell-to-cell transmission of hiv |
EP3854413A1 (en) | 2011-07-06 | 2021-07-28 | GlaxoSmithKline Biologicals SA | Immunogenic combination compositions and uses thereof |
EP2736921B1 (en) * | 2011-07-25 | 2018-06-27 | GlaxoSmithKline Biologicals SA | Compositions and methods for assessing functional immunogenicity of parvovirus vaccines |
WO2017197355A2 (en) | 2016-05-13 | 2017-11-16 | 4D Molecular Therapeutics Inc. | Adeno-associated virus variant capsids and methods of use thereof |
RU2770922C2 (ru) | 2017-09-20 | 2022-04-25 | 4Д Молекьюлар Терапьютикс Инк. | Капсиды вариантов аденоассоциированных вирусов и методы их применения |
CA3083472A1 (en) | 2017-11-27 | 2019-05-31 | 4D Molecular Therapeutics Inc. | Adeno-associated virus variant capsids and use for inhibiting angiogenesis |
CR20210444A (es) | 2019-02-25 | 2021-11-02 | Novartis Ag | Composiciones y métodos para tratar distrofia cristalina de bietti |
WO2020174369A2 (en) | 2019-02-25 | 2020-09-03 | Novartis Ag | Compositions and methods to treat bietti crystalline dystrophy |
Family Cites Families (18)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0468520A3 (en) | 1990-07-27 | 1992-07-01 | Mitsui Toatsu Chemicals, Inc. | Immunostimulatory remedies containing palindromic dna sequences |
WO1995026204A1 (en) | 1994-03-25 | 1995-10-05 | Isis Pharmaceuticals, Inc. | Immune stimulation by phosphorothioate oligonucleotide analogs |
ATE420171T1 (de) | 1994-07-15 | 2009-01-15 | Univ Iowa Res Found | Immunomodulatorische oligonukleotide |
US6207646B1 (en) | 1994-07-15 | 2001-03-27 | University Of Iowa Research Foundation | Immunostimulatory nucleic acid molecules |
CO4600681A1 (es) | 1996-02-24 | 1998-05-08 | Boehringer Ingelheim Pharma | Composicion farmaceutica para la modulacion inmunitaria |
ATE292980T1 (de) | 1996-10-11 | 2005-04-15 | Univ California | Immunostimulierende oligonucleotidekonjugate |
WO1998037919A1 (en) | 1997-02-28 | 1998-09-03 | University Of Iowa Research Foundation | USE OF NUCLEIC ACIDS CONTAINING UNMETHYLATED CpG DINUCLEOTIDE IN THE TREATMENT OF LPS-ASSOCIATED DISORDERS |
DK1005368T3 (da) | 1997-03-10 | 2010-01-04 | Ottawa Hospital Res Inst | Anvendelse af nukleinsyrer, der indeholder ikke-metyleret CpG dinukleotid i kombination med alun som hjælpestoffer |
CA2289741A1 (en) | 1997-05-19 | 1998-11-26 | Merck & Co., Inc. | Oligonucleotide adjuvant |
EP1003531B1 (en) | 1997-05-20 | 2007-08-22 | Ottawa Health Research Institute | Processes for preparing nucleic acid constructs |
DE19803453A1 (de) | 1998-01-30 | 1999-08-12 | Boehringer Ingelheim Int | Vakzine |
AU760549B2 (en) | 1998-04-03 | 2003-05-15 | University Of Iowa Research Foundation, The | Methods and products for stimulating the immune system using immunotherapeutic oligonucleotides and cytokines |
CA2328602A1 (en) | 1998-05-06 | 1999-11-11 | University Of Iowa Research Foundation | Methods for the prevention and treatment of parasitic infections and related diseases using cpg oligonucleotides |
SE520177C2 (sv) * | 1998-11-24 | 2003-06-03 | Kristina Broliden | Användning av tomma, icke-infektiösa, rekombinanta parvoviruskapsidpartiklar, eller P-antigenblockerande delar därav, för framställning av läkemedel för ihibering av hematopoietiska stamceller |
AT408721B (de) | 1999-10-01 | 2002-02-25 | Cistem Biotechnologies Gmbh | Pharmazeutische zusammensetzung enthaltend ein antigen |
CA2418854A1 (en) | 2000-08-17 | 2002-02-21 | Jorg Fritz | A vaccine which comprises at least one antigen and a cathelididin derived antimicrobial peptide or a derivative thereof |
AT410635B (de) | 2000-10-18 | 2003-06-25 | Cistem Biotechnologies Gmbh | Vakzin-zusammensetzung |
DE60124523T2 (de) * | 2001-07-10 | 2007-09-06 | Deutsches Krebsforschungszentrum Stiftung des öffentlichen Rechts | Zusammensetzung einer Parvovirus VP1-Proteinvariante und eines arvovirus NS1-Proteins zur Induktion von Zytolyse |
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