ES2342258T3 - Peptidos administrados oralmente para mejorar la aterosclerosis. - Google Patents

Peptidos administrados oralmente para mejorar la aterosclerosis. Download PDF

Info

Publication number
ES2342258T3
ES2342258T3 ES01966198T ES01966198T ES2342258T3 ES 2342258 T3 ES2342258 T3 ES 2342258T3 ES 01966198 T ES01966198 T ES 01966198T ES 01966198 T ES01966198 T ES 01966198T ES 2342258 T3 ES2342258 T3 ES 2342258T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
baselineskip
peptide
peptides
ldl
mice
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES01966198T
Other languages
English (en)
Inventor
Alan M. Fogelman
Gattadahalli M. Anantharamaiah
Mohamad Navab
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
University of California
UAB Research Foundation
Original Assignee
University of California
UAB Research Foundation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by University of California, UAB Research Foundation filed Critical University of California
Application granted granted Critical
Publication of ES2342258T3 publication Critical patent/ES2342258T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/775—Apolipopeptides
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00—Drugs for disorders of the respiratory system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
    • A61P17/02—Drugs for dermatological disorders for treating wounds, ulcers, burns, scars, keloids, or the like
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/02—Drugs for skeletal disorders for joint disorders, e.g. arthritis, arthrosis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/08—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease
    • A61P19/10—Drugs for skeletal disorders for bone diseases, e.g. rachitism, Paget's disease for osteoporosis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P21/00—Drugs for disorders of the muscular or neuromuscular system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/28—Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/04—Anorexiants; Antiobesity agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/06—Antihyperlipidemics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00—Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/08—Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis
    • A61P3/10—Drugs for disorders of the metabolism for glucose homeostasis for hyperglycaemia, e.g. antidiabetics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04—Antibacterial agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04—Antibacterial agents
    • A61P31/06—Antibacterial agents for tuberculosis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04—Antibacterial agents
    • A61P31/08—Antibacterial agents for leprosy
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/10—Antimycotics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12—Antivirals
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12—Antivirals
    • A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/18—Antivirals for RNA viruses for HIV
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P33/00—Antiparasitic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A61P37/04—Immunostimulants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02—Immunomodulators
    • A61P37/06—Immunosuppressants, e.g. drugs for graft rejection
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P39/00—General protective or antinoxious agents
    • A61P39/06—Free radical scavengers or antioxidants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/08—Vasodilators for multiple indications
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/12—Antihypertensives
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/14—Vasoprotectives; Antihaemorrhoidals; Drugs for varicose therapy; Capillary stabilisers
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55—Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Obesity (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)

Abstract

Un péptido que mejora un síntoma de aterosclerosis, en el que dicho péptido tiene la fórmula: **(Ver fórmula)** y en el que el extremo aminoterminal está protegido por un primer grupo protector (P1) y el extremo carboxiterminal está protegido por un segundo grupo (P2); y dicho péptido comprende al menos un aminoácido D.

Description

Péptidos administrados oralmente para mejorar la aterosclerosis.
Referencia cruzada a solicitudes relacionadas
La patente es una continuación en parte del documento USSN 09/896,841, presentado el 29 de junio, 2001, que es una continuación con respecto al documento USSN 09/645,454, presentado el 24 de junio, 2000, los cuales se incorporan en el presente documento por referencia en su totalidad para todos los propósitos.
Declaración de derechos a invenciones de investigación y desarrollo con fondos federales
Este trabajo ha sido realizado con subvenciones del Servicio de Salud Pública de los Estados Unidos y las HL230568 y HL34343 del Nacional Heart, Lung, and Blood Institute. El Gobierno de los Estados Unidos de América puede tener ciertos derechos en la patente.
Campo de la invención
La patente se refiere al campo de la aterosclerosis. En particular, la patente está relacionada con la identificación de una clase de péptidos que son oralmente administrables y que mejoran uno o más síntomas de la aterosclerosis.
Antecedentes de la invención
La enfermedad cardiovascular es una causa principal de morbilidad y mortalidad, particularmente en los Estados Unidos y en los países europeos. Están implicados varios factores causantes en el desarrollo de enfermedad cardiovascular, incluyendo la predisposición hereditaria a la enfermedad, género, factores de estilo de vida tales como fumar y dieta, edad, hipertensión e hiperlipidemia, incluyendo hipercolesterolemia. Varios de estos factores, particularmente hiperlipidemia e hipercolesterolemia (concentraciones de colesterol en sangre altas) proporcionan un factor de riesgo significativo asociado con aterosclerosis.
El colesterol está presente en la sangre como colesterol libre y esterificado en partículas de lipoproteínas, conocidas comúnmente como quilomicrones, lipoproteínas de muy baja densidad (VLDL), lipoproteínas de baja densidad (LDL) y lipoproteínas de alta densidad (HDL). La concentración de colesterol total en la sangre está influenciada por (1) absorción de colesterol del tracto digestivo, (2) síntesis de colesterol a partir de constituyentes dietéticos tales como carbohidratos, proteínas, grasas y etanol, y (3) eliminación del colesterol de sangre por tejidos, especialmente el hígado, y conversión subsiguiente del colesterol a ácidos biliares, hormonas esteroides y colesterol biliar.
El mantenimiento de las concentraciones de colesterol en sangre está influenciado también tanto por factores genéticos como por factores ambientales. Los factores genéticos incluyen concentración de enzimas limitadoras de la velocidad en biosíntesis de colesterol, concentración de receptores para lipoproteínas de baja densidad en el hígado, concentración de enzimas que limitan la velocidad para conversión de ácidos biliares de colesteroles, velocidades de síntesis y secreción de lipoproteínas y género de la persona. Los factores ambientales que influyen en la hemostasis de concentración de colesterol en sangre en seres humanos incluyen composición de la dieta, incidencia de fumar, actividad física y uso de una diversidad de agentes farmacéuticos. Las variables de la dieta incluyen cantidad y tipo de grasa (ácidos grasos saturados y poliinsaturados), cantidad de colesterol, cantidad y tipo de fibra y quizás cantidades de vitaminas tales como vitamina C y D y minerales tales como calcio.
Los estudios epidemiológicos muestran una correlación inversa de niveles de lipoproteína de alta densidad (HDL) y apolipoproteína (apo) A-I con la aparición de niveles ateroscleróticos (Wilson y col. (1998) Arteriosclerosis 8: 737-741). La inyección de HDL en conejos que comían una dieta aterogénica ha mostrado inhibir formación de lesiones ateroscleróticas (Badimon y col. (1990) J. Clin. Invest. 85: 1234-1241).
La apo A-I humana ha sido un sujeto de estudio intenso debido a sus propiedades antiaterogénicas. Las alipoproteínas intercambiables, incluyendo apo A-I, poseen dominios de asociación a lípidos (Brouillette y Anantharamaiah (1995) Biochim. Biophys. Acta 1256: 103-129; Segrest y col. (1990) FEBS Lett. 38: 247-253). Se ha postulado que apo A-I posee ocho secuencias 22meras que se repiten en tándem, la mayoría de las cuales tienen el potencial de formar estructuras helicoidales anfipáticas de clase A (Segrest y col. (1974) FEBS Lett. 38: 247-253). Las características de la hélice anfipática de clase A incluyen la presencia de residuos cargados positivamente en la interfase polar-no polar y residuos cargados negativamente en el centro de la fase polar (Segrest y col. (1974) FEBS Lett. 38: 247-253; Segrest y col. (1974) Proteins: Structure, Function, and Genetics 8: 103-117). Se ha mostrado que apo A-I se asocia fuertemente con fosfolípidos para formar complejos y para promover flujo de salida de colesterol de células enriquecidas en colesterol. El desarrollo y mantenimiento de niveles séricos de apo A-I para mitigar de forma efectiva uno o más síntomas de aterosclerosis hasta este momento ha demostrado ser difícil de alcanzar.
La solicitud de patente internacional publicada WO 99/16408 revela un gran número de secuencias peptídicas y evalúa la actividad de estas secuencias con respecto a activación de lecitina:aciltransferasa de colesterol (LCAT). Algunos de los péptidos revelados, aunque no todos, se ponen a prueba en una forma protegida que tiene un grupo acilo en el extremo N-terminal y una amida en el extremo carboxilo terminal. La posibilidad de reemplazar aminoácidos individuales con sus enantiómeros "D" se revela también. La secuencia peptídica D-W-F-K-A-F-Y-D-K-V-A-E-K-F-K-E-A-F se revela sólo en la forma totalmente "L" sin ningún grupo protector, y se evalúa que tiene actividad baja frente a LCAT.
Garber y col. (1992). Arteriosclerosis and Thrombosis 12: 886-894 revela un péptido anfipático, D-18A, sintetizado a partir de aminoácidos D que lleva en posiciones 3 a 14 una leucina en vez de las fenilalaninas en posiciones 3 a 14 del péptido de SEQ ID N.º: 5 en la reivindicación 1. Gerber y col. no describen ni contemplan la protección de los extremos N- y C-terminales de D-18A ni su administración oral.
Sumario de la invención
La patente proporciona péptidos novedosos la administración de los cuales mitiga uno o más síntomas de aterosclerosis. En particular, fue un descubrimiento de la patente que los péptidos que comprenden una hélice anfipática de clase A cuando se formula con residuo(s) de aminoácido(s) "D" y que tienen extremos aminoterminal y carboxilo terminal protegidos se pueden administrar oralmente a un organismo, se asimilan y administran fácilmente al suero, y son efectivos para mitigar uno o más síntomas de aterosclerosis.
Así, en una realización, la patente proporciona un péptido que mejora un síntoma de aterosclerosis donde el péptido tiene la fórmula D-W-F-K-A-F-Y-D-K-V-A-E-K-F-K-E-A-F (SEQ ID N.º: 5) y en el que el extremo aminoterminal está protegido con un primer grupo protector (P^{1}) y el extremo carboxiterminal está protegido con un segundo grupo protector (P^{2}); y dicho péptido comprende al menos un aminoácido D. Los grupos protectores preferidos incluyen, pero no están limitados a, acetilo, amida y grupos alquilo de 3 a 20 átomos de carbono, Fmoc, t-boc, grupo 9-fluorenoacetilo, grupo 1-fluorenocarboxílico, grupo 9-fluorenocarboxílico, grupo 9-fluorenona-1-carboxílico, benciloxicarbonilo, Xantilo (Xan), Tritilo (Trt), 4-metiltritilo (Mtt), 4-metoxitritilo (Mmt), 4-metoxi-2,3,6-trimetil-bencenosulfonilo (Mtr), metilsileno-2-sulfonilo (Mts), 4,4-dimetoxibencidrilo (Mbh), Tosilo (Tos), 2,2,5,7,8-pentametil-croman-6-sulfonilo (Pmc), 4-metilbencilo (MeBzl), 4-metoxibencilo (MeOBzl), Benciloxi (BzlO), Bencilo (Bzl), Benzoílo (Bz), 3-nitro-2-piridinasulfenilo (Npys), 1-(4,4-dimetil-2,6-diaxociclohexilideno)etilo (Dde), 2,6-diclorobencilo (2,6-DiCi-Bzl), 2-clorobenciloxicarbonilo (2-Cl-Z), 2-bromobenciloxicarbonilo (2-Br-Z), Benciloximetilo (Bom), t-butoxicarbonilo (Boc), ciclohexiloxi (cHxO), t-butoximetilo (Bum), t-butoxi (tBuO), t-butilo (tBu), Acetilo (Ac) y Trifluoroacetilo (TFA). Los péptidos particularmente preferidos imitan estrechamente la hélice anfipática de clase A de apo A-I humana o de ratón. En ciertas realizaciones preferidas, al menos aproximadamente el 10%, preferentemente al menos el 20%, más preferentemente al menos aproximadamente el 30%, aún más preferentemente al menos aproximadamente el 50%, incluso más preferentemente al menos aproximadamente el 75%, y lo más preferentemente al menos el 90% e incluso el 100% de los aminoácidos enantioméricos son aminoácidos "D". El péptido se puede combinar con un excipiente farmacológicamente aceptable (por ejemplo un excipiente adecuado para administración oral a un mamífero).
Tales péptidos incluyen también un grupo protector (por ejemplo, amida, acetilo, propionilo, y un alquilo de 3 a 20 átomos de carbono, etc.) acoplado a los extremos aminoterminal y carboxilo terminal. En ciertas realizaciones, el grupo protector acoplado al extremo carboxilo terminal es una amida. En ciertas realizaciones, el grupo protector acoplado al extremo aminoterminal es un acetilo, un propionilo, o un alquilo de 3 a 20 átomos de carbono. En una realización tal, el grupo protector aminoterminal es un grupo protector seleccionado del grupo constituido por acetilo, propionilo, y alquilo de 3 a 20 átomos de carbono; y el grupo protector carboxiterminal es una amida.
En ciertas realizaciones, el péptido es uno que protege a un fosfolípido contra oxidación por un agente oxidante seleccionado del grupo constituido por lípidos tales como peróxido de hidrógeno, 13(S)-HPODE, 15(S)-HPETE, HPODE, HPETE, HODE y HETE. El fosfolípido puede ser un fosfolípido seleccionado del grupo constituido por 1-palmitoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina (PAPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina (SAPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SAPE). Así el péptido evita la formación de lípidos tales como 1-palmitoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina (Ox-PAPC), 1-palmitoil-2-oxovaleroil-sn-glicero-3-fosforilcolina (POVPC), 1-palmitoil-2-glutaroil-sn-glicero-3-fosforilcolona (PGPC), 1-palmitoil-2-epoxiprostano-sn-glicero-3-fosforilcolina (PEIPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina oxidada (Ox-SAPC), 1-estearoil-2-oxovaleroil-sn-glicero-3-fosforilcolina (SOVPC), 1-estearoil-2-glutaroil-sn-glicero-3-fosforilcolina (SGPC), 1-estearoil-2-etoxiprostano-sn-glicero-3-fosforilcolina (SEIPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina oxidada (Ox-SAPE), 1-estearoil-2-oxovaleroil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SOVPE), 1-estearoil-2-glutaroil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SGPE) y 1-estearoil-2-epoxiisoprostano-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SEI PE).
En otra realización, la patente proporciona una composición, adecuada para administración oral, que mejora un síntoma de aterosclerosis. La composición comprende un péptido de acuerdo con un primer aspecto de la invención. La composición puede comprender adicionalmente un excipiente farmacéuticamente aceptable (por ejemplo, un excipiente adecuado para administración oral o un excipiente adecuado para inyección). El péptido puede ser capaz de proteger un fosfolípido [por ejemplo, 1-palmitoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina (PAPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina (SAPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SAPE)] de oxidación por un agente oxidante (por ejemplo peróxido de hidrógeno, 13(S)-HPODE, 15(S)-HPETE, HPODE, HPETE, HODE y HETE). Así el péptido puede evitar la formación de 1-palmitoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina oxidada (Ox-PAPC), 1-palmitoil-2-oxovaleroil-sn-glicero-3-fosforilcolina (POVPC), 1-palmitoil-2-glutaroil-sn-glicero-3-fosforilcolina (PGPC), 1-palmitoil-2-epoxiprostano-sn-glicero-3-fosforilcolina (PEIPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina oxidada (Ox-SAPC), 1-estearoil-2-oxovaleroil-sn-glicero-3-fosforilcolina (SOVPC), 1-estearoil-2-glutaroil-sn-glicero-3-fosforilcolina (SGPC), 1-estearoil-2-etoxiprostano-sn-glicero-3-fosforilcolina (SEIPC), 1-estearoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina oxidada (Ox-SAPE), 1-estearoil-2-oxovaleroil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SOVPE), 1-estearoil-2-glutaroil-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SGPE) y 1-estearoil-2-epoxiisoprostano-sn-glicero-3-fosforiletanolamina (SEI PE).
La patente proporciona también procedimientos de mejorar un síntoma de aterosclerosis. Los procedimientos comprenden administrar a un organismo (por ejemplo mamífero humano o no humano) el péptido descrito en el presente documento. En las realizaciones particularmente preferidas, el péptido comprende una pluralidad de aminoácidos "D" y/o está protegido como se describe en el presente documento. El péptido se administra preferentemente oralmente al organismo y el organismo es preferentemente un organismo diagnosticado como que tiene o que está en riesgo para uno o más síntomas de aterosclerosis. En ciertas realizaciones, el péptido se puede proporcionar como un péptido aislado o combinado con un excipiente farmacológico como se describe en el presente documento. La administración es preferentemente a una dosis suficiente para mejorar uno o más síntomas de aterosclerosis y/o para reducir significativamente la probabilidad de aparición de uno o más síntomas de aterosclerosis.
En aún otra realización, la patente proporciona un kit para mejorar un síntoma de aterosclerosis. Los kits preferidos incluyen un contenedor que contiene el péptido descrito en el presente documento. El péptido comprende preferentemente una pluralidad de aminoácidos "D" y/o está protegido como se describe en el presente documento. En ciertas realizaciones, el kit puede incluir opcionalmente adicionalmente un excipiente farmacéuticamente aceptable y/o el péptido se proporciona combinado con un excipiente farmacéuticamente aceptable (por ejemplo, en una formulación de dosificación unitaria). Los kits preferidos proporcionaron el péptido como una formulación de dosificación unitaria que es para administración oral. Los kits también, opcionalmente, incluyen materiales de instrucciones que enseñan el uso de dicho péptido para mejorar uno o más síntomas de aterosclerosis y/o para reducir la probabilidad de aparición de uno o más síntomas de aterosclerosis.
En ciertas realizaciones, la patente excluye uno cualquiera o más péptidos revelados en la Patente de los Estados Unidos 4,643,988 y/o en Garber y col. (1992) Ateriosclerosis and Trombosis, 12: 886-864. En ciertas realizaciones de la patente excluye uno cualquiera o más péptidos descritos en la Patente de los Estados Unidos 4,643,988 y/o por Garber y col. (1992) que se sintetizaron con todos los aminoácidos enantioméricos que son aminoácidos L o que se sintetizaron con aminoácidos D donde los péptidos son grupos bloqueantes. En ciertas realizaciones, la presente invención excluye péptidos que tienen la fórmula A_{1}-B_{1}-B_{2}-C_{1}-D-B_{3}-B_{4}-A_{2}-C_{2}-B_{5}-B_{6}-A_{3}-C_{3}-B_{7}-C_{4}-A_{4}-B_{8}-B_{9} (SEQ ID N.º: 87) en la que A_{1}, A_{2}, A_{3} y A_{4} son independientemente ácido aspártico o ácido glutámico u homólogos o análogos de los mismos; B_{1}, B_{2}, B_{3}, B_{4}, B_{5}, B_{6}, B_{7}, B_{8} y B_{9} son independientemente triptófano, fenilalanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina o \alpha-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos; C_{1}, C_{2}, C_{3} o C_{4} son independientemente lisina o arginina, y D es serina, treonina, alanina, glicina, histidina, u homólogos o análogos de los mismos; siempre que, cuando A_{1} y A_{2} son ácido aspártico, A_{3} y A_{4} son ácido glutámico, B_{2} y B_{9} son leucina, B_{3} y B_{7} son fenilalanina, B_{4} es tirosina, B_{5} es valina, B_{6}, B_{8}, y D son alanina, y C_{1}, C_{2}, C_{3} y C_{4} son lisina, B_{1} no sea triptófano.
Definiciones
Los términos "polipéptido", "péptido" y "proteína" se usan intercambiablemente en el presente documento para hacer referencia a un polímero de residuos aminoacídicos. Los términos son aplicables a polímeros aminoacídicos en los que uno o más residuos de aminoácidos son un análogo químico artificial de un aminoácido correspondiente que se da de forma natural, así como a polímeros de aminoácidos que se dan de forma natural.
La expresión "hélice anfipática de clase A'' hace referencia a una estructura proteica que forma una hélice \alpha que produce una segregación de caras polares y no polares con los residuos cargados positivamente residiendo en la interfase polar-no polar y los residuos cargados negativamente residiendo en el centro de la fase polar (véase, por ejemplo, "Segrest y col. (1990) Proteins: Structure, Function, and Genetics 8: 103-117).
La expresión "mejorar" cuando se usa con respecto a "mejorar uno o más síntomas de aterosclerosis" se refiere a una reducción, prevención o eliminación de uno o más síntomas característicos de aterosclerosis y/o patologías asociadas. Una reducción tal incluye, pero no se limita a reducción o eliminación de fosfolípidos oxidados, una reducción en formación y ruptura de placa aterosclerótica, una reducción en eventos clínicos tales como ataque al corazón, angina de pecho o apoplejía, una disminución en hipertensión, una disminución en biosíntesis de proteínas inflamatorias, reducción en colesterol plasmático y similares.
El término "aminoácidos enantioméricos" se refiere a aminoácidos que pueden existir en al menos dos formas que son imágenes especulares no superponibles una de la otra. La mayoría de los aminoácidos (salvo glicina) son enantioméricos y existen en una así llamada forma L (aminoácido L) o forma D (aminoácido D). Los aminoácidos que se dan más de forma natural son aminoácidos "L". Los términos "aminoácido D" o "aminoácido L" se usan para hacer referencia a la configuración absoluta del aminoácido, más que a una dirección de rotación particular del plano de luz polarizada. El uso en el presente documento es consistente con el uso estándar por aquellos de habilidad en la técnica.
El término "grupo protector" se refiere a un grupo químico que, cuando se une a un grupo funcional en un aminoácido (por ejemplo una cadena lateral, un grupo amino alfa, un grupo carboxi alfa, etc.) bloquea o enmascara las propiedades de ese grupo funcional. Los grupos protectores aminoterminales incluyen, pero no se limitan a acetilo, o grupos amino. Otros grupos protectores aminoterminales incluyen, pero no se limitan a cadenas de alquilo como en ácidos grasos, propionilo, formilo y otras. Los grupos protectores carboxilo terminales incluyen, pero no se limitan a grupos que forman amidas o ésteres.
La expresión "proteger un fosfolípido de oxidación por un agente oxidante" hace referencia a la capacidad de un compuesto para reducir la velocidad de oxidación de un fosfolípido (o la cantidad de fosfolípido oxidado producido) cuando ese fosfolípido se pone en contacto con un agente oxidante (por ejemplo peróxido de hidrógeno, 13-(S)-HPODE, 15(S)-HPETE, HPODE, HPETE, HODE y HETE, etc.).
La expresión "lipoproteína de baja densidad" o "LDL" se definen de acuerdo con el uso común de aquellos de habilidad en la técnica. Generalmente, LDL se refiere al complejo lípido-proteína que cuando se aísla por ultracentrifugación se encuentra en el intervalo de densidad d = 1,019 a d = 1,063.
La expresión "lipoproteína de alta densidad" o "HDL" se definen de acuerdo con el uso común de aquellos de habilidad en la técnica. Generalmente, "HDL" se refiere al complejo lípido-proteína que cuando se aísla por ultracentrifugación se encuentra en el intervalo de densidad de d = 1,063 a d = 1,21.
La expresión "HDL de Grupo I" hace referencia a una lipoproteína de alta densidad o componentes de la misma (por ejemplo, apo A-I, paraoxonasa, acetilhidrolasa de factor de activación de plaquetas acetilhidrolasa, etc.) que reduce lípidos oxidados (por ejemplo en lipoproteínas de baja densidad) o que protege lípidos oxidados de oxidación por agentes oxidantes.
La expresión "HDL de Grupo II" hace referencia a una HDL que ofrece actividad reducida o que no ofrece ninguna actividad en proteger lípidos de oxidación o en reparar (por ejemplo reduciendo) lípidos oxidados.
El término "componente HDL" se refiere a un componente (por ejemplo moléculas) que comprende una lipoproteína de alta densidad (IDL). Los ensayos para HDL que protege a los lípidos de oxidación o que repara (por ejemplo reduce lípidos oxidados) incluyen también ensayos para componentes de HDL (por ejemplo apo A-I, paraoxonasa, factor acetilhidrolasa de activación de plaquetas, etc.) que muestran tal actividad.
La expresión "péptido apo A-I humano" se refiere a un péptido apo A-I humano de longitud total o a un fragmento o dominio del mismo que comprende una hélice anfipática de clase A.
Una "reacción monocítica" como se usa en el presente documento se refiere a una actividad característica de monocitos de la "respuesta inflamatoria" asociada con formación de placa aterosclerótica. La reacción monocítica se caracteriza por adhesión de monocitos a células de la pared vascular (por ejemplo, células del endotelio vascular), y/o a quimiotaxis dentro del espacio subendotelial, y/o a diferenciación de monocitos en macrófagos.
El término "ausencia de cambio" cuando se refiere a la cantidad de fosfolípidos oxidados se refiere a la falta de un cambio detectable, más preferentemente a la falta de un cambio significativo estadísticamente (por ejemplo al nivel de confianza de al menos el 85%, preferentemente al menos al 90%, más preferentemente al menos al 95%, y lo más preferentemente al menos al 98% o al 99%). La ausencia de un cambio detectable se puede referir también a ensayos en los que cambia el nivel de fosfolípidos oxidados, pero no tanto como en la ausencia de la(s) proteína(s) descritas en el presente documento o con referencia a otros controles positivos o negativos.
Las siguientes abreviaturas se usan en el presente documento: PAPC: L-\alpha-1-palmitoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosfocolina; POVPC: 1-palmitoil-2-(5-oxovaleroil)-sn-glicero-3-fosforilcolina; PGPC: 1-palmitoil-2-glutaroil-sn-glicero-3-fosfolcolina; PEIPC: 1-palmitoil-2-(5,6-epoxisoprostano E_{2})-sn-glicero-3-fosforilcolina; ChC 18:2 linoleato de colesterilo; ChC18:2-OOH: hidroperóxido de linoleato de colesterilo; DMPC: 1,2-ditetradecanoil-rac-glicerol-3-fosfocolina; PON: paraoxonasa; HPF: campo de alta energía estandarizada; PAPC: L-\alpha-1-palmitoil-2-araquidonoil-sn-glicero-3-fosforilcolina; POVPC: 1-palmitoil-2-(5-oxovaleroil)-sn-glicero-3-fosforilcolina; PGPC: 1-palmitoil-2-glutaril-sn-glicero-3-fosforilcolina; PEIPC: 1-palmitoil-2-(5,6-epoxisoprostano E_{2})-sn-glicero-3-fosforilcolina; PON: paraoxonasa; BL/6: C57BL/6J; C3H:C3H/HeJ.
El término "sustitución conservadora" se usa en referencia a proteínas o péptidos para reflejar sustituciones de aminoácidos que no alteran sustancialmente la actividad (especificidad (por ejemplo para lipoproteínas)) o la afinidad de unión (por ejemplo por lípidos o lipoproteínas) de la molécula. Las sustituciones de aminoácidos típicamente conservadoras implican sustitución de un aminoácido por otro aminoácido similar con propiedades químicas similares (por ejemplo carga o hidrofobicidad). Los siguientes seis grupos contienen cada uno aminoácidos que son típicamente sustituciones conservadoras el uno para el otro: 1) Alanina (A), Serina (S), Threonina (T); 2) Ácido aspártico (D), Ácido Glutámico (E); 3) Asparragina (N), Glutamina (Q); 4) Arginina (R), Lisina (K); 5) Isoleucina (I), Leucina (L), Metionina (M), Valina (V); y 6) Fenilalanina (F), Tirosina (Y), Triptófano (W).
Los términos "idéntico" o "identidad" en porcentaje, en el contexto de dos o más ácidos nucleicos o secuencias polipeptídicas, se refieren a dos o más secuencias o subsecuencias que son la misma o que tienen un porcentaje especificado de residuos de aminoácidos o nucleótidos que son el mismo, cuando se comparan y alinean para correspondencia máxima, según se miden usando uno de los siguientes algoritmos de comparación de secuencias o por inspección visual. Con respecto a los péptidos de la presente invención la identidad de secuencia se determina por encima de la longitud total del péptido.
Para comparación de secuencias, típicamente una secuencia actúa como una secuencia de referencia, a la que se comparan las secuencias de prueba. Cuando se usa un algoritmo de comparación de secuencias, las secuencias de prueba y de referencia se introducen en un ordenador, se designan coordinadas de subsecuencias, si es necesario, y se designan parámetros de programa de algoritmo de secuencias. El algoritmo de comparación de secuencias calcula después la identidad de secuencia en porcentaje para la(s) secuencia(s) de prueba en relación a la secuencia de referencia, en base a los parámetros de programas diseñados.
El alineamiento óptico de secuencias para comparación puede llevarse a cabo, por ejemplo, por el algoritmo de homología local de Smith & Waterman, Appl. Math. 2:482 (1981), por el algoritmo de alineamiento de homología de Needleman & Wunsch, J. Mol. Biol. 48:443 (1970), por la búsqueda para procedimiento de similitud de Pearson & Lipman (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 85:2444, por implementaciones computerizadas de estos algoritmos (GAP, BESTFIT, FASTA y TFASTA en el Wisconsin Genetics Software Package; Genetics Computer Group, 575 Science, Dr. Madison, WI), o por inspección visual (véase generalmente Ausubel y col., supra).
Un ejemplo de un algoritmo útil es PILEUP. PILEUP crea un alineamiento de secuencias múltiple a partir de un grupo de secuencias relacionadas usando alineamientos por pares, progresivos para mostrar relación y porcentaje de identidad de secuencia. También representa gráficamente un árbol o dendrograma que muestra las relaciones de agrupamiento usadas para crear el alineamiento. PILEUP usa una simplificación del procedimiento de alineamiento progresivo de Feng & Doolittle (1987) J. Mol. Evol. 35: 351-360. El procedimiento usado es similar al procedimiento descrito por Higgins & Sharp (1989) CABIOS 5: 151-153. El programa puede alinear hasta 300 secuencias, cada una de una longitud máxima de 5.000 nucleótidos o aminoácidos. El procedimiento de alineamiento múltiple comienza por el alineamiento por pares de las dos secuencias más similares, produciendo un agrupamiento de dos secuencias alineadas. Este agrupamiento se alineó después con la siguiente secuencia más relacionada o con el siguiente agrupamiento de secuencias alineadas más relacionado. Se alinearon dos agrupamientos de secuencias por una simple extensión del alineamiento por pares de dos secuencias individuales. El alineamiento final se logra por una serie de alineamientos progresivos, por pares. El programa se hace funcionar diseñando secuencias específicas y sus coordenadas de aminoácidos o nucleótidos para regiones de comparación de comparación de secuencias y diseñando los parámetros de los programas. Por ejemplo, una secuencia de referencia se puede comparar a otras secuencias de prueba para determinar la relación de identidad de secuencia en porcentaje usando los siguientes parámetros: peso de intervalo por defecto (3,00), peso de longitud de intervalo por defecto (0,10), e intervalos finales pesados.
Otro ejemplo de algoritmo que es adecuado para determinar identidad de secuencia en porcentaje y similitud de secuencia es al algoritmo BLAST, que se describe en Altschul y col. (1990) J. Mol. Biol. 215: 403-410. El software para llevar a cabo análisis BLAST está públicamente disponible por el National Center of Biotechnology Information (http://w.w.w.nc-bi.nlm.nih.gov/). Este algoritmo implica primero identificar los pares de secuencia de alta puntuación (HSP) identificando palabras cortas de longitud W en la secuencia que está siendo indagada, que bien equivalen o bien satisfacen alguna puntuación T umbral de valoración positiva cuando se alienan con una palabra de la misma longitud en una secuencia de bases de datos. T se refiere como el umbral de puntuación de palabra de zona (Altschul y col., supra). Estos golpes de palabras de zona iniciales actúan como iniciadores para iniciar búsquedas para encontrar HSP más largas que los contengan. Los golpes de palabras se extienden después en ambas direcciones a lo largo de cada secuencia hasta tan lejos como se pueda incrementar la puntuación de alineamiento acumulativo. Las puntuaciones acumulativas se calculan usando, para secuencias de nucleótidos, los parámetros M (puntuación de recompensa por un par de residuos que se aparean; siempre que > 0) y N (puntuación de penalización por residuos que no se aparean; siempre > 0). Para secuencias de aminoácidos, se usa una matriz de puntuación para calcular la puntuación acumulativa. La extensión de los golpes de palabras en cada dirección se detiene cuando: la puntuación de alineamiento acumulativa disminuye en la cantidad X a partir de su valor logrado máximo; la puntuación acumulativa va hasta cero o por debajo, debido a la acumulación de uno o más alineamientos de residuos que puntúan negativo; o se alcanza el final de cada secuencia. Los parámetros de algoritmo BLAST W, T y C determinan la sensibilidad y velocidad del alineamiento. El programa BLASTN (para secuencias de nucleótidos) usa por defecto una longitud de palabra (W) de 3, una expectativa (E) de 10, M = 5, N = 4, y una comparación de ambas cadenas. Para secuencias de aminoácidos, el programa BLAST usa por defecto una longitud de palabra (W) de 3, una expectativa (E) de 10, y la matriz de valoración de BLOSUM62 (véase Henikoff & Henikoff (1989) Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 89: 10915).
Además de calcular identidad de secuencia en porcentaje, el algoritmo BLAST también lleva a cabo un análisis estadístico de la similitud entre dos secuencias (véase, por ejemplo, Karlin & Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU., 90: 5873-5787). Una medida de similitud proporcionada por el algoritmo BLAST es la probabilidad de suma más pequeña (P(N)), que proporciona una indicación de la probabilidad por la que un apareamiento entre dos secuencias de nucleótidos o de aminoácidos ocurriría por casualidad. Por ejemplo, un ácido nucleico se considera similar a una secuencia de referencia si la probabilidad de suma menor en una comparación del ácido nucleico de prueba para el ácido nucleico de referencia es menos de aproximadamente 0,1, más preferentemente menos de aproximadamente 0,01, y lo más preferentemente menos que aproximadamente 0,001.
El término "péptido D-18A" se refiere a un péptido que tiene la secuencia: D-W-L-K-A-F-Y-D-K-V-A-E-K-L-K-E-A-F (SEQ ID N.º: 1) donde todos los aminoácidos enantioméricos son aminoácidos en forma D.
Breve descripción de los dibujos
Figura 1, paneles A, B, C y D muestran la asociación de ^{14}C-D-5F con componentes de sangre en un ratón con ApoE anulada. Se administró el péptido mimético de ApoA-I unido a D-5F con aminoácidos de ^{14}C por sonda oral a ratones deficientes en apo E (n = 5) o se incubó con su plasma in vitro. Se recogió sangre en ayunas 6 horas después de colocar la sonda y se determinó la asociación de ^{14}C con sangre, plasma y lipoproteínas.
Figuras 2A y 2B ilustran que el péptido D administrado oralmente está activo. Los péptidos miméticos D-5F y L-5F (100 \mug por animal) se administraron a ratones con el receptor de LDL anulado (n = 5) por sonda oral. La sangre se recogió después de 6 horas, se aislaron LDL y HDL por filtración de gel (FPLC) y se examinaron en el sistema de modelos de pared arterial para capacidad protectora de HDL (Figura 2A) y resistencia a LDL (Figura 2B) a oxidación determinando la actividad quimiotáctica monocítica generada. Como se ve, D-5F pero no L-5F volvió a la HDL marcadamente más protectora y LDFL después de D5F llegó a ser altamente resistente a oxidación.
Las figuras 3A y 3B muestran la concentración plasmática de péptido D frente a L después de sondar. Los péptidos miméticos ApoA-I D-4F (Figura 3B) y L-4F (Figura 3B) se marcaron con ^{125}I y se administraron por sonda oral a ratón con el receptor de LDL anulado (n = 4). Se recogió sangre después de 3 horas, se fraccionó plasma por FPLC y se determinó radiactividad en las fracciones eluidas. Menos del 15% del péptido L eluyó como 18-mero intacto mientras que más del 70% del D-4F estuvo intacto. Estos estudios demuestran que el péptido D es drásticamente más resistente a degradación in vivo comparado con el péptido L.
La figura 4 ilustra la ausencia de anticuerpo para D-4F en ratones tratados. No se detectó ningún anticuerpo (línea de precipitación blanca) para D-4F en plasma de ratón con receptor de LDL anulado tras 6 semanas de tratamiento con péptido a 5 mg por día (panel inferior). El control positivo (panel superior) muestra la presencia de una línea de precipitación para apoA-I en plasma de ratón. Panel superior: Centro: anti-ApoA-I de conejo y periferia: plasma de ratones D-4F. Panel inferior: Centro: plasma de ratones R de LDL -/- tratados con D 4F, y Periferia: péptido D-4F puro a 0 a 80 \mug.
La figura 5 muestra la incidencia de lesiones rayadas grasas en la raíz aórtica de de ratones con receptor de LDL anulado en una Dieta de Western. Grupos de ratones con receptor de LDL anulado se pusieron en una dieta de tipo Western y se les dio oralmente, vehículo (Control) (n = 9) ó péptido D-4F (n = 6), dos veces al día durante 6 semanas. Los ratones se sacrificaron subsiguientemente, el arco aórtico se fijó y se seccionó y se cuantificaron lesiones rayadas grasas. Los ratones que recibieron D-4F tuvieron una reducción del 81% en área de lesión (p < 0,01).
Figura 6, paneles A, B y C ilustran las distribuciones en plasma de péptido 5F o de apo A-I tras inyección intraperitoneal. Se marcaron apoA-I humana, apoA-I de ratón y péptido 5F con ^{125}I y se inyectaron intraperitonealmente en ratones C57BL/6 a los que se les había suministrado la dieta aterogénica durante al menos tres semanas. Las muestras se tomaron durante los estudios genéticos descritos en la Tabla 3. Las muestras representativas se analizaron por el procedimiento CLiP, y las fracciones se recogieron para determinación de radiactividad. El volumen de elución estaba basado en la velocidad de bombeo de columna sólo; el volumen contribuido por la bomba de reactivo enzimática no se tuvo en cuenta. Los datos mostrados son colesterol (como absorbancia a 500 nm en unidades arbitrarias; líneas sólidas) y radiactividad (en cuentas por minuto; líneas discontinuas). Los paneles son A: humano (una hora tras inyección); B: apo A-I de ratón (una hora); C: 5F (1,5 horas).
Figura 7, paneles A y B ilustran la interacción de lipoproteínas de ratones con células de la pared arterial humanas. Se aislaron LDL y HDL por FPLC del plasma de ratones alimentados con dieta aterogénica e inyectados con vehículo (PBS), o con péptido 5F a 20 \mug/ratón/día. Los cocultivos se trataron sin (Ninguna Adición) o con LDL humana (hLDL) a 200 \mug/ml de proteína LDL, o LDL de ratón (MoLDL) a 200 \mug/ml o con LDL humana a 200 \mug/ml + HDL humana (hHDL) a 350 \mug/ml de proteína HDL o HDL de ratón (MoHDL) a 300 \mug/ml. Los cocultivos se incubaron con las adiciones anteriores durante 8 horas a 37ºC en presencia de suero deficiente en lipoproteínas al 10% (LPDS). Los sobrenadantes se recogieron y analizaron por equivalentes hidroperóxidos de lípidos de Auerbach (panel A). Los cocultivos se lavaron e incubaron después con medio de cultivo recién preparado sin suero o LPDS durante unas 8 horas adicionales. El medio acondicionado se recogió y se analizó por actividad quimiotáctica monocítica (panel B). Un blanco sin ninguna célula (Blanco Sin Ninguna Célula) se incluye en ambos paneles para comparación.
La figura 8 muestra áreas de secciones transversales de lesiones promedio. Los datos mostrados representan el área de sección transversal promedio de para cada animal (\medcirc) y el promedio \pm EEM de todos los animales en cada grupo (\medbullet) con barras de error. Abreviaturas: PBS, ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados diariamente con 200 \mul de medio salino tamponado con fosfato; 5F, ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados diariamente con 20 \mug de 5F en 200 \mul de PBS; MoAI: ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados diariamente con 50 \mug de apoA-I de ratón en 200 \mul de PBS. * = p < 0,002 según se determina por prueba t en dos dimenrsiones. Se mostró también una diferencia significativa usando análisis de la varianza con un factor en rangos (p < 0,001).
\global\parskip0.900000\baselineskip
La figura 9 muestra que tanto los isómeros D como los isómeros L de peptidos imitadores de apo A-I evitan la actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL suavemente oxidada in vitro. Medio solo (LDL, SIN NINGUNA CÉLULA o CÉLULAS, SIN NINGÚN LDL), LDL control de sujetos normales a 250 \mug/ml (LDL), y LDL más HDL control de sujetos normales a 350 \mug/ml (+HDL). Otros cocultivos se incubaron con la LDL control conjuntamente con cantidades que varían (microgramos mostradas en la abcisa) bien de D-2F, o bien de L-2F (tercer panel desde la izquierda, 2F) o bien de D-37-pA o bien de L37pA (último panel en la derecha, 37pA). Los datos representan promedio \pm desviación estándar de valores obtenidos de cocultivos cuadruplicados. Los valores para HDL o péptidos añadidos fueron todos significativamente diferentes de LDL sola (primer panel de la izquierda) al nivel de p < 0,01.
Las figuras 10A y 10B ilustran que proporcionar los peptidomiméticos de ApoA-1 de ratones de la presente invención vuelven a las células rojas resistentes a la lisis in vitro. Las figuras 10A y 10B muestran los resultados de ensayo de lisis de células rojas in vitro a las 18 horas (Figura 10A) y a las 48 horas (Figura 10B). Los asteriscos reflejan la presencia de una diferencia significativa (p < 0,001) entre la lisis de células rojas para animales que recibieron el vehículo frente a aquellos que recibieron los péptidos.
La figura 11 muestra que proporcionar péptidos D imitadores de ApoA-1 de ratones de la presente invención vuelve a la LDL circulante resistente a oxidación. Se administraron a grupos de ratones deficientes en receptor de LDL (n = 3) los péptidos D o el vehículo de medio salino por sonda. A cada animal se dieron 100 \mul de medio salino, 100 \mug/100 \mul de péptido D-2F o de péptido D-37pA. La sangre se recogió del seno retroorbital con anestesia suave 17 horas más tarde. LDL se aisló de plasma por FPLC. Los cocultivos de células de la pared arterial se incubaron con medio solo (SIN NINGUNA ADICIÓN), LDL control de sujetos normales (LDL), LDL más control HDL de sujetos normales (+HDL). Otros cocultivos se incubaron con LDL murina tras sondar con medio salino (MEDIO SALINO LDL), con D-2F (D-2F LDL) o con péptido D-37pA (D-37pA LDL). Los cocultivos se incubaron durante 4 horas a 37ºC en presencia de LPDS al 10%. Los sobrenadantes se descartaron después, los cocultivos se lavaron y se incubaron con medio de cultivo sin suero o LPDS durante 4 horas adicionales. Este medio acondicionado se recogió y analizó para actividad quimiotáctica de monocitos. Los valores son media \pm desviación estándar de cultivos por cuadruplicado. Los asteriscos indican p < 0,001.
La figura 12 ilustra los resultados de un ensayo de quimiotaxis que compara lipoproteínas de ratones a los que se dan péptidos de forma D y/o péptidos de forma L por sonda.
La figura 13A ilustra los resultados de un ensayo de quimiotaxis comparando HDL control y HDL de ratones a los que se da el péptido D por sonda. La figura 13B ilustra los resultados de un ensayo de quimiotaxis que compara LDL y VDL/IDL de ratones a los que se da el péptido D por sonda.
Las figuras 14A y 14B muestran electroforesis de 2F indicando su autoasociación. Figura 14A: SDS PAGE (18%) de 2F. El carril 1 muestra el peso molecular estándar y el carril 2 muestra la banda correspondiente a 2F (el peso molecular es 2242) que se mueve ligeramente más abajo que el peso molecular estándar más bajo (3,5-2,5 kDa). Figura 14B: PAGE no desnaturalizante (4-12%) que muestra las movilidades de 100 \mug/ml (carril 2) y 250 \mug/ml (carril 1) de 2F indicando autoasociación en solución. El carril 3 muestra la movilidad del peso molecular alto estándar.
La figura 15 muestra que las series homólogas de péptidos estabilizan la transición de la fase hex de bicapas DiPoPE. Cambio en T_{H} de DiPoPE según una función de la fracción molar del péptido añadido. Medido por DSC a una velocidad de exploración calentando de 37º/h. \medbullet 2F; \medcirc 3F^{3}; \ding{110} 4F; \boxempty 5F; \ding{116} 6F; \ding{115} 7F; \Delta apo A-I.
Figura 16: seguimiento de dispersión de la luz en ángulo recto relativo de la disolución de EPC MLV por series homólogas de péptidos como función del tiempo. Se muestra una curva de eliminación de EPC MLV representativa para cada uno de los péptidos homólogos. Se usó una concentración equimolar de péptido y EPC (105 \muM). Ambas longitudes de onda de excitación y emisión fueron 400 nm. El Tritón X-100 logró disolución completa a una concentración final de 1 mM. -\medbulletEPC; -\medcirc-2F; -\ding{110}- 3F^{3}; -\boxempty- 3F^{14}; -\ding{115}-4F; -\Delta-5F; \ding{116} -6F; -\nabla- 7F; -\lozenge- apo A-I humana; -\ding{117}- Tritón X-100.
La figura 17 ilustra la capacidad de activación de LCAT de péptidos homólogos. Los histogramas representan activación de LCAT por los péptidos -F-. La actividad de LCAT se midió usando vesículas unilamelares pequeñas de EPC-colesterol y la actividad se representa como un porcentaje comparado con aquel de la actividad apo A-I, donde la actividad A-I se tomó para ser el 100%. Cada valor representa un valor promedio a partir de triplicados. La concentración peptídica usada fue 20 \mug/ml.
La figura 18 muestra que la quimiotaxis monocítica inducida por LDL se inhibió por las series homólogas de péptidos. LDL sola o LDL incubada bien con HDL humana o bien con las series homólogas de péptidos se añadió a los cocultivos de células de la pared arterial humanas durante 8 horas en presencia de LPDS al 10%. Los sobrenadantes se eliminaron y los cocultivos se lavaron con medio de cultivo sin suero o LPDS. El medio acondicionado se recogió después y se analizó para capacidad quimiotáctica monocítica. Los datos representan valores de promedio \pm EEM (n = 9 en cada caso). Por comparaciones de dos en dos con todos los péptidos LDL salvo los péptidos 3F fueron significativamente más efectivos (al menos p < 0,001, indicado por "\ding{61}" y *). Se analizaron las comparaciones entre todos los péptidos por ANOVA de un factor. El asterisco indica que péptidos 4F, 5F y 6F fueron significativamente más efectivos que los homólogos 2F y 7F (p < 0,05 por comparación de Duckett). El corchete indica que no hay diferencia significativa en la capacidad de inhibir quimiotaxis inducida por LDL entre estos tres péptidos.
La figura 19 muestra que la infección con Influenza A causa un incremento en fosfolípidos oxidados hepáticos dos días después de la infección. Los ratones C57BL/6 a una dieta de pienso se infectaron con una dosis de virus influenza A intranasalmente de tal forma que no resultó ninguna viremia como se describe por Van Lenten y col. (2001) Circulation, 103: 2283-2288. Cero, 2, 3, 5, 7 y 9 días después de la infección los hígados se retiraron y oxidaron contenido en fosfolípidos determinado por IE-EM.
\global\parskip1.000000\baselineskip
La figura 20 muestra que D-4F evita el decrecimiento en actividad paraoxonasa después de infección con Influenza A. Algunos de los ratones descritos en la Figura 19 se inyectaron intraperitonealmente con 20 \mug diariamente de D-4F y los otros se inyectaron con medio salino tamponado con fosfato (PBS). Se midió actividad paraoxonasa (PON) en el plasma a cero, 2, 7, y 9 días después de la infección.
La figura 21 muestra que D-F4 evita la inducción de fosfolípidos oxidados en aortas de ratones infectados con virus de la Influenza A. Algunos de los ratones descritos en la figura 19 se inyectaron intraperitonealmente con 20 \mug diariamente de D-4F y los otros se inyectaron con medio salino tamponado con fosfato (PBS). Las aortas de los ratones se recogieron en los días cero, 2, 7 y 9 días después de la infección y el contenido en fosfolípidos oxidados se determinó por IE-EM.
Las figuras 22A a 22C muestran que, después de administración oral, D-4F, pero no L-4F permanece intacto en la circulación de ratones con el receptor de LDL anulado y potencia la capacidad de HDL para proteger LDL contra la oxidación de la células de la pared arterial humana y reduce la capacidad quimiotáctica monocítica inducida por LDL. Figura 22A: se radiomarcaron los péptidos L-4F y D-4F usando el reactivo de yodo-perlas y se administraron por sonda oral a ratones con el receptor de LDL anulado (100 \mul de medio salino conteniendo 100 \mug de péptido no marcado más péptido marcado con ^{125}I con actividad específica de 11 x 10^{6} cpm por \mug de péptido por animal, n = 3). La sangre se recogió después de 4 horas, el plasma se separó, se deslipidizó y se analizó por HPLC de fase reversa como se describe en referencia 12. Paneles B y C: péptidos L-4F y D-4F (100 \mug en 10 ml de medio salino por animal) se administraron a ratones deficientes en receptor de LDL (n = 5) por sonda oral. La sangre se recogió después de 6 horas, se aislaron plasma HDL y LDL por filtración de gel (FPLC) y se examinaron en los cocultivos. Figura 22B: se muestra la capacidad de HDL de ratones y de seres humanos para proteger una LDL humana control (hLDL) contra oxidación por células de la pared arterial humana y para inhibir actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL. Se añadió LDL humana a 200 \mug de proteína/ml a cocultivos de células de la pared arterial humana conjuntamente con HDL humana (hHDL) a 350 \mug de proteína/ml o con HDL de ratón (mHDL) a 100 \mug de colesterol/ml tomada de ratones que recibieron medio salino (Medio Salino Rx) o L-4F (L-4F Rx) o D-4F (D-4F Rx) y se determinó actividad quimiotáctica monocítica como se describe en el presente documento. Figura 22C: se muestra la capacidad de LDL de ratones para inducir actividad quimiotáctica monocítica. Los controles de ensayo se muestran en la izquierda como en el Panel B. En la derecha, se aisló LDL de ratones (mLDL) a partir de ratones que recibieron medio salino (Medio Salino Rx) o L-4F (L-4F Rx) o D-4F (D-4F Rx) y se añadió a 100 \mug de colesterol/ml a los cocultivos de células de la pared arterial sin HDL y sin actividad quimiotáctica monocítica determinada. Los valores son promedio \pm desviación estándar para cuatro pocillos en dos experimentos independientes.
Las figuras 23 muestran que la administración oral de D-4F reduce lesiones drásticamente en ratones con el receptor de LDL anulado a una dieta Western. Los grupos de ratones con el receptor de LDL anulado se pusieron a una dieta Western y se les administró mediante sonda oral, 100 \mul de medio salino solo (Medio Salino), n = 4 animales, o 100 \mul de liposomas sin D-4F (Liposomas), n= 5 animales, o 2,5 mg de péptido D-4F en 100 \mul de liposomas (D-4F en liposomas), n = 6 animales, dos veces diarias durante 6 semanas. Los ratones se sangraron, y subsiguientemente se sacrificaron, se les fijó la raíz arterial, se seccionó y se cuantificó el grado de tinción con Tintura de Sudán en lesiones rayadas grasas.
La Figura 24 muestra que la administración oral de DF-4 reduce drásticamente lesiones en ratones con la apo E anulada a una dieta de pienso. A las 4 semanas de edad, se añadió D-4F al agua de beber de algunos de los ratones con la apo E anulada dando una concentración de 1 ml/ml de D-4F (ratones n = 4). Se añadió D-4F a una concentración de 2 mg/ml al agua de beber de otro grupo de ratones (n = 4 ratones) y no se añadió ningún péptido al agua de beber de un tercer grupo de ratones (n = 5 ratones). Todos los ratones consumieron aproximadamente 2,5 ml de agua por día de tal forma que un grupo no recibió ningún péptido (Agua), un segundo grupo recibió 2,5 mg de D-4F/ratón/día (2,5 mg D-4F) y el tercer grupo recibió 5,0 mg de D-4F/ratón/día (5,0 mg D-4F). Todos continuaron a la dieta de pienso durante 5 semanas tiempo al que los ratones se sangraron y se sacrificaron subsiguientemente, se fijó su raíz aórtica, se seccionaron y se cuantificó el grado de tinción con Tintura de Sudán en lesiones rayadas grasas.
\vskip1.000000\baselineskip
Descripción detallada I. Mitigación de un síntoma de aterosclerosis
La patente pertenece al descubrimiento de que péptidos sintéticos diseñados para imitar el resto helicoidal anfipático de clase A (Segrest y col. (1990) Proteins: Structure, Function, and Genetics 8: 103-117) son capaces de asociarse con fosfolípidos y de manifestar muchas propiedades biológicas similares a apo-A-I humano. En particular, fue un descubrimiento de la presente invención que cuando tales péptidos se formulan usando aminoácidos D, los péptidos mostraron vidas medias en suero drásticamente elevadas y, particularmente cuando los extremos aminoterminal y carboxiterminal se bloquean, se pueden administrar incluso oralmente.
Además, es un descubrimiento sorprendente de la presente invención el que tales péptidos de forma D retienen la actividad biológica del péptido de forma L correspondiente. Los estudios de animales in vivo que usan tales péptidos de forma D mostraron administración oral efectiva, semivida sérica elevada, y la capacidad para mitigar o evitar/inhibir uno o más síntomas de aterosclerosis.
\newpage
Los inventores descubrieron que la HDL normal inhibe tres etapas en la formación de LDL suavemente oxidada. En esos estudios (véase, solicitud en tramite junto con la presente USN 09/541,468, presentada el 31 de marzo, 2000) los autores de la presente invención demostraron que tratar LDL humana in vitro con péptido apo A-I o con péptido imitador de apo A-I (37pA) retiró las moléculas iniciadoras de la oxidación de la LDL que incluyen HPODE y HPETE. Estas moléculas iniciadoras de la oxidación se requirieron por cocultivos de células de la pared arterial humana para ser capaces de oxidar LDL y para que la LDL induzca a las células de la pared arterial a producir actividad quimiotáctica monocítica. Hemos demostrado que después de la inyección de apo-I en ratones o de la infusión en seres humanos, la LDL aislada de los ratones o de los voluntarios humanos después de inyección/infusión de apo A-I fue resistente a oxidación por células de la pared arterial humana y no indujo actividad quimiotáctica monocítica en los cocultivos de células de la pared arterial.
La función protectora de los péptidos D de la presente invención está ilustrada en las Figuras 1 a 5. La Figura 1, paneles A, B, C y D muestran la asociación de 14C-D-5F con componentes en la sangre en un ratón con la ApoE anulada. Se demostró también en el presente documento, que HDL de ratones que se alimentaron con una dieta aterogénica y se inyectaron con PBS fallan para inhibir la oxidación de LDL humana y fallan para inhibir actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL en cocultivos de paredes arteriales humanas. En contraste, HDL de ratones alimentados con una dieta aterogénica e inyectados diariamente con péptidos descritos en el presente documento fue tan efectiva en inhibir oxidación de LDL humanas y en evitar actividad quimiotáctica monocítica en los cocultivos como lo fue HDL humana normal (Figuras 2A y 2B). Además, LDL tomada de ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados diariamente con PBS se oxidó más fácilmente e indujo más fácilmente actividad quimiotáctica monocítica que LDL tomada de ratones alimentados con la misma dieta pero inyectados con 20 \mug diariamente de péptido 5F. El péptido D no pareció ser inmunógeno (Figura 4).
Las respuestas in vitro de células de las paredes arteriales a HDL y LDL de ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados con un péptido de acuerdo con la presente invención son consistentes con la acción protectora mostrada por tales péptidos in vivo. A pesar de ello, niveles similares de colesterol total, LDL-colesterol, IDL+VLDL-colesterol, y nivel de HDL-colesterol inferior como un porcentaje del colesterol total, los animales alimentados con la dieta aterogénica e inyectados con el péptido tuvieron puntuaciones de lesión significativamente más bajas (Figura 5). Los péptidos de la presente invención evitaron así la progresión de lesiones ateroscleróticas en ratones alimentados con dieta aterogénica.
Así, en una realización, la presente invención proporciona procedimientos para mejorar y/o evitar uno o más síntomas de aterosclerosis. Los procedimientos implican preferentemente administrar a un organismo, preferentemente un mamífero, más preferentemente un ser humano uno o más de los péptidos de la presente invención (o imitadores de tales péptidos). El/los péptido(s) se puede(n) administrar, como se describe en el presente documento, de acuerdo con cualquiera de un número de procedimientos estándar incluyendo, pero no limitados a inyección, supositorio, pulverizador nasal, implante de liberación en el tiempo, parche transdérmico, y similares. En una realización particularmente preferida, el/los péptido(s) se administran/administraron oralmente (por ejemplo como un jarabe, cápsula, o comprimido).
Los procedimientos implican la administración de un polipéptido individual de la presente invención en la administración de dos o más péptidos diferentes. Los polipéptidos pueden proporcionarse como monómeros o en formas diméricas, oligoméricas o poliméricas. En ciertas realizaciones, las formas multiméricas pueden comprender monómeros asociados (por ejemplo ligados iónicamente o hidrófobamente) mientras que ciertas otras formas multiméricas comprenden monómeros unidos covalentemente (unidos directamente o a través de un engarce).
Mientras que la invención se describe con respecto al uso en seres humanos, también es adecuada para uso animal, por ejemplo uso veterinario. Así los organismos preferidos incluyen, pero no se limitan a seres humanos, primates no humanos, cánidos, équidos, félidos, porcinos, ungulados, lagomorfos, y similares.
Los procedimientos de la presente invención no se limitan a animales humanos o no humanos que muestran uno o más síntoma(s) de aterosclerosis (por ejemplo hipertensión, formación de placas y ruptura, reducción en eventos clínicos tales como ataque al corazón, angina de pecho, o apoplejía, niveles altos de colesterol en plasma, niveles altos de lipoproteína de baja densidad, niveles altos de lipoproteína de muy baja densidad, o proteínas inflamatorias, etc.), pero son útiles en un contexto profiláctico. Así, los péptidos de la presente invención (o imitadores de los mismos) se pueden administrar a organismos para evitar la aparición/desarrollo de uno o más síntomas de aterosclerosis. Los sujetos particularmente preferidos en este contexto son sujetos que muestran uno o más factores de riesgo para aterosclerosis (por ejemplo historia familiar, hipertensión, obesidad, consumo de alcohol alto, fumar, colesterol en sangre alto, triglicéridos en sangre altos, LDL en sangre elevada, VLDL en sangre elevada, IDL en sangre elevada, o HDL en sangre baja, diabetes, o una historia familiar de diabetes, lípidos en sangre altos, ataque al corazón, angina de pecho o apoplejía, etc.).
Además de procedimientos de uso de los péptidos inhibidores de aterosclerosis de la presente invención, la presente invención también proporciona los péptidos en sí mismos, los péptidos formulados como productos farmacéuticos, particularmente para administración oral, y kits para el tratamiento y/o para prevención de uno o más síntomas de aterosclerosis.
\vskip1.000000\baselineskip
II. Mitigación de un síntoma de aterosclerosis asociado con una respuesta inflamatoria aguda
Los péptidos que inhiben aterosclerosis de la presente invención son también útiles en un número de contextos diferentes. En particular, los autores de la presente invención han observado que complicaciones cardiovasculares (por ejemplo aterosclerosis, apoplejía, etc.) acompañan o siguen frecuentemente a la aparición de una respuesta inflamatoria a la fase aguda. Tal respuesta inflamatoria de estado agudo está asociada a menudo con una enfermedad inflamatoria recurrente (por ejemplo, lepra, tuberculosis, lupus eritrematoso sistémico, y artritis reumatoide), una infección viral (por ejemplo, gripe), una infección bacteriana, una infección fúngica, un transplante de órganos, una herida u otro trauma, una prótesis implantada, una biopelícula, y similares.
Fue un descubrimiento sorprendente de la patente que la administración de uno o más de los péptidos descritos en el presente documento, puede reducir o evitar la formación de fosfolípidos oxidados durante o tras una respuesta de fase aguda y por lo tanto mitiga o elimina complicaciones cardiovasculares asociadas con una afección tal.
Así, por ejemplo, los inventores han demostrado que una consecuencia de la infección con influenza es la disminución en actividad paraoxonasa y en actividad acetilhidrolasa activadora de plaquetas en la HDL. Sin adherirse a ninguna teoría particular, los autores de la presente invención creen que, como un resultado de la pérdida de estas actividades enzimáticas de HDL y también como un resultado de la asociación de proteínas prooxidantes con HDL durante la respuesta de fase aguda, HDL no es capaz por más tiempo de evitar oxidación de LDL y no fue capaz por más tiempo de evitar la producción inducida por LDL de actividad monocítica quimiotáctica por células endoteliales.
Los inventores han observado que en un sujeto inyectado con dosificaciones muy bajas de los polipéptidos de la presente invención (por ejemplo, 20 microgramos para ratones) diariamente después de la infección con el virus influenza A los niveles de paraoxonasa no cayeron y los fosfolípidos oxidados biológicamente activos no se generaron más allá de los antecedentes. Esto indica que D-4F (y/o otros péptidos de la presente invención) se pueden administrar (por ejemplo oralmente o por inyección) a pacientes con enfermedad arterial coronaria conocida durante la infección con influenza o durante otros eventos que puedan generar una respuesta en fase aguda inflamatoria (por ejemplo debida a infección viral, infección bacteriana, trauma, transplante, diversas afecciones autoinmunes, etc.) y así los autores de la presente invención pueden evitar por este tratamiento a corto plazo la incidencia incrementada de ataque al corazón y apoplejía asociada con patologías que generan tales estados inflamatorios.
Así, en ciertas realizaciones, la patente contempla administrar uno o más de los péptidos de la presente invención a un sujeto en riesgo de, o que sufra, una respuesta inflamatoria aguda y/o en riesgo de o que sufra un síntoma de aterosclerosis.
Así, por ejemplo, una persona que tenga o en riesgo de enfermedad coronaria puede administrarse profilácticamente con un polipéptido de la presente invención durante la temporada de gripe. Una persona (o animal) sujeta a una afección inflamatoria recurrente, por ejemplo artritis reumatoide, diversas enfermedades autoinmunes, etc., puede tratarse con un polipéptido de la presente invención para mitigar o evitar el desarrollo de aterosclerosis o apoplejía. Una persona (o animal) sujeta a trauma, por ejemplo herida aguda, transplante tisular, etc. se puede tratar con un polipéptido de la presente invención para mitigar el desarrollo de aterosclerosis o apoplejía.
En ciertos casos tales procedimientos supondrán un diagnóstico de la aparición de riesgo o de una respuesta inflamatoria aguda. La respuesta inflamatoria aguda típicamente implica alteraciones en metabolismo y regulación génica en el hígado. Es un procedimiento dinámico que implica a todos los sistemas principales del cuerpo, además del sistema inmune, el sistema cardiovascular y el sistema nervioso central. Normalmente, la respuesta a la fase aguda dura sólo unos pocos días, sin embargo, en casos de inflamación crónica o recurrente, una continuación aberrante de algunos aspectos de la fase acuosa puede contribuir al daño tisular subyacente que acompaña la enfermedad, y puede conducir a complicaciones adicionales, por ejemplo a enfermedades cardiovasculares o a enfermedades de deposición proteica tales como amiloidosis.
Un aspecto importante de la respuesta de fase aguda es el perfil biosintético radicalmente alterado del hígado. En circunstancias normales, el hígado sintetiza un intervalo característico de proteínas de plasma a concentraciones en el estado estacionario. Muchas de estas proteínas tienen funciones importantes y niveles en plasma más altos de estos reactivos de fase aguda (APR) o proteínas de fase aguda (APP) se requieren durante la respuesta de fase aguda tras un estímulo inflamatorio. Aunque la mayoría de los APR se sinterizan por hepatocitos, algunos se producen por otros tipos celulares, incluyendo monocitos, células endoteliales, fibroblastos y adipocitos. La mayoría de los APR se inducen entre un 50% y varias veces por encima de los niveles normales. En contraste, los APR principales pueden incrementarse a 1000 veces por encima de los los niveles normales. Este grupo incluye suero amiloide A (SAA) y bien la proteína C-reactiva (CRP) en seres humanos o bien su homóloga en ratones, componente P sérico amiloide (SAP). Los así llamados APR negativos están disminuidos en concentración de plasma durante la respuesta en fase aguda para permitir un incremento en la capacidad del hígado para sintetizar los APR inducidos.
En ciertas realizaciones, la respuesta en fase aguda, o por consiguiente el riesgo se evalúa midiendo una o más APP. Medir tales marcadores se conoce bien por aquellos de habilidad en la técnica, y existen compañías comerciales que proporcionan tal medida (por ejemplo AGP medida por Cardiotech Services, Louisville, KY).
\vskip1.000000\baselineskip
III. Mitigación de un síntoma o afección con calcificación coronaria y osteoporosis
Los inventores han identificado también lípidos oxidados como una causa de calcificación coronaria y osteoporosis. Además, sin adherirse a ninguna teoría en particular, los autores de la presente invención creen que los mismos mecanismos están implicados en la patogénesis de estenosis de calcificación aórtica.
Así, en ciertas realizaciones, la presente invención contempla el uso de los péptidos descritos en el presente documento para inhibir o evitar un síntoma de una enfermedad tal como polimialgia reumática, poliarteritis nodosa, enfermedad de Alzheimer, SIDA, calcificación coronaria, estenosis aórtica calcificante, osteoporosis, y similar.
\vskip1.000000\baselineskip
IV. Péptidos preferidos y su preparación Péptidos preferidos
Fue un descubrimiento de la presente invención que los péptidos de clase A, según el presente documento, son capaces de mitigar uno o más síntomas de aterosclerosis. Los péptidos de clase A se caracterizan por formación de una \alpha-hélice que produce una segregación de residuos polares y no polares formando por lo tanto una cara polar y una no polar con los residuos cargados positivamente que residen en la interfase polar-no polar y los residuos cargados negativamente que residen en el centro de la fase polar (véase, por ejemplo, Anantharamaiah (1986) Met. Enzymol. 128: 626-668). Se destaca que el cuarto exón de Apo-I, cuando se pliega a 3.667 residuos/giro produce una estructura helicoidal anfipática de clase A.
Un péptido de clase A en particular, designado 18A (véase, Tabla 1, y también Anantharamaiah (1996) Met. Enzymol. 128: 626-668) se modificó como se describe en el presente documento para producir péptidos administrables oralmente y altamente efectivos en inhibir o evitar uno o más síntomas de aterosclerosis. Sin adherirse a ninguna teoría en particular, se cree que los péptidos de la presente invención actúan in vivo pueden aumentar la(s) molécula(s)
iniciadora(s) de la oxidación que mitigan la oxidación de LDL.
Los inventores determinaron que incrementar el número de los residuos de Phe en la fase hidrófoba de 18A incrementaría teóricamente la afinidad lipídica según se determina por la computación descrita por Palgunachari y col. (1996) Arteriosclerosis, Trombosis, & Vascular Biology 16: 328-338. Teóricamente, una sustitución sistemática de residuos en la fase no polar de 18A con Phe podría producir 6 péptidos. Péptidos con una Phe en 2, 3 ó 4 adicional tendrían valores de afinidad lipídica teórica (\lambda) de 13, 14 y 15, respectivamente. Sin embargo, los valores de I saltan cuatro unidades si las Phe adicionales se incrementan de 4 a 5 (a 19 unidades \lambda). Incrementar a 6 ó 7 Phe produciría un incremento menos drástico (a 20 y 21 unidades \lambda, respectivamente). Por lo tanto, los autores de la presente invención eligen 5 Phe adicionales (y así la designación de los péptidos como 5F). En un análogo particular, el péptido 5F se bloqueó en que el residuo aminoterminal se acetiló y el residuo carboxilo terminal se amidó.
El nuevo análogo de péptido de clase A, inhibido en 5F, desarrollo de lesión en ratones susceptibles a aterosclerosis. El nuevo análogo de péptido, 5F, se comparó con apo A-I de ratón (MoA-I) en eficacia en inhibir aterosclerosis inducida por la dieta en estos ratones usando dosificaciones peptídicas en base al estudio por Levine y col. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 90: 12040-12044).
Un número de otros péptidos de clase A se produjeron también y mostraron grados variantes, pero significativos de eficacia en mitigar uno o más síntomas de aterosclerosis. Un número de tales péptidos se ilustran en la Tabla 1. Se entenderá que el ámbito de la presente invención está relacionado con aquellos péptidos 4F que tienen la secuencia de aminoácidos designada por el SEQ ID N.º en las reivindicaciones.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página siguiente)
TABLA 1 Péptido 18A y modificaciones de los mismos
1
2
Mientras que diversos péptidos de la Tabla 1, están ilustrados con un grupo acetilo que protege el extremo aminoterminal y un grupo amido que protege el extremo carboxilo terminal, bien uno o bien ambos de estos grupos protectores se pueden eliminar y/o se pueden sustituir con otro grupo protector como se describe en el presente documento. Los péptidos de Tabla 1 pueden comprender uno o uno o más aminoácidos de la forma D como se describen en el presente documento. En ciertos análogos, cada aminoácido (por ejemplo, cada aminoácido enantiomérico) de los péptidos de la Tabla I es un aminoácido de forma D.
Otras modificaciones de los péptidos 18A enumerados en Tabla 1 incluyen sustituciones conservadoras o semiconservadoras de los péptidos enumerados en el presente documento (por ejemplo, D reemplazado por E), extensiones, deleciones y similares. Ciertas modificaciones incluyen truncamientos de uno o más péptidos identificados por SEQ ID N.º^{s}: 2-20 y 39-85. Así, por ejemplo, SEQ ID N.º: 21 ilustra un péptido que comprende 14 aminoácidos a partir del extremo C-terminal de 18A que comprende uno o más aminoácidos, mientras que SEQ ID N.º: 22-38 ilustra otros truncamientos. Los péptidos más largos son también adecuados. Tales péptidos más largos pueden formar enteramente una hélice anfipática de clase A, o la(s) hélice(s) anfipática(s) de clase A puede(n) formar uno o más dominios del péptido. Otras modificaciones incluyen versiones multiméricas de los péptidos. Así, por ejemplo, los péptidos ilustrados en Tabla 1 pueden acoplarse conjuntamente (directamente o a través de un engarce (por ejemplo, un engarce de carbono, o uno o más aminoácidos) con uno o más aminoácidos que intervienen). Los péptidos poliméricos ilustrativos incluyen 18A-Pro-18A y los péptidos de SEQ ID N.º^{s}: 79-85 comprenden preferentemente uno o más aminoácidos D, más preferiblemente con cada aminoácido un aminoácido D como se describe en el presente documento y/o que tiene uno o ambos extremos protegidos.
Fue un descubrimiento sorprendente de la patente que, cuando los péptidos de clase A incorporaron al menos un aminoácido D ellos retuvieron su actividad y, pero podrían administrarse oralmente. Además esta administración oral dio como resultado captación relativamente eficiente y semivida sérica significativa proporcionando por lo tanto un procedimiento eficaz de mitigar uno o más síntomas de aterosclerosis.
El efecto de diversas sustituciones en afinidad lipídica del péptido resultante se puede predecir usando el procedimiento computacional descrito por Palgunachari y col. (1996) Ateriosclerosis, Trombosis, & Vascular Biology 16: 328-338. Los péptidos pueden alargarse o acortarse tanto como se preserve la estructura de \alpha-hélice de clase A. Además, se pueden hacer sustituciones para volver al péptido resultante más similar al/a los péptido(s) producidos endógenamente por las especies sujeto.
Preparación Peptídica
Los péptidos usados en la patente se sintetizan químicamente usando técnicas de síntesis de péptidos químicas estándar o, se expresan recombinantemente. Donde los polipéptidos se expresan recombinantemente, un organismo huésped (por ejemplo, bacterias, planta, células fúngicas, etc.) se cultiva en un ambiente donde uno o más de los aminoácidos se proporcionan al organismo exclusivamente en una forma D. Los péptidos expresados recombinantemente en un sistema tal incorporan después esos aminoácidos D.
En realizaciones preferidas los péptidos están sintetizados químicamente por cualquiera de un número de técnicas de síntesis de péptidos de fase fluida o de fase sólida conocidas por aquellos de habilidad en la técnica. La síntesis de fase sólida en la que el aminoácido C-terminal de la secuencia está unido a un respaldo insoluble seguida por adición secuencial de los restantes aminoácidos en la secuencia en un procedimiento preferido para la síntesis química de los polipéptidos de la presente invención. Las técnicas para síntesis de fase sólida son bien conocidas por aquellos expertos en la técnica y se describen, por ejemplo, por Barany y Merrifield (1963) Solid-Phase Peptide Synthesis; páginas 3-284 en The Peptides; Analysis, Synthesis, Biology. Vol. 2: Special Methods in Peptide Synthesis, Parte A; Merrifield y col. (1963) J. Am. Chem. Soc., 85: 2149-2156, y Stewart y col. (1984) Solid Phase Peptide Synthesis, 2ª ed. Pierce Chem. Co., Rockford, III.
En una realización más preferida, los péptidos se sintetizan por el procedimiento de síntesis peptídica en fase sólida usando una resina bencidrilamina (Beckman Bioproducts, 0,59 mmol de NH_{2}/g de resina) como el soporte sólido. El aminoácido COOH terminal (por ejemplo, t-butilcarbonil-Phe) está unido a un soporte sólido a través de un grupo 4-(oximetil)fenilacetilo. Éste es un enlace más estable que el enlace éster bencílico convencional, todavía el péptido finalizado puede escindirse aún por hidrogenación. Se usa para este propósito hidrogenación de transferencia usando ácido fórmico como el donador de hidrógenos. Se describen protocolos detallados usados para síntesis peptídico y para análisis de péptidos sintetizados en un suplemento por miniprinter que acompaña a Anantharamaiah (1985) J. Biol. Chem., 260 (16): 10248-10255.
Se destaca que en la síntesis química de péptidos, particularmente de péptidos que comprenden aminoácidos D, la síntesis produce usualmente un número de péptidos truncados además del producto de longitud total deseado. El procedimiento de purificación (por ejemplo HPLC) típicamente da como resultado la pérdida de una cantidad significativa del producto de longitud total.
Fue un descubrimiento de la presente invención que, en la síntesis de un péptido D (por ejemplo, D-4) con el fin de evitar pérdida en purificar la forma más larga alguien puede dializar y usar la mezcla y de este modo eliminar la última purificación de HPLC. Una mezcla tal pierde aproximadamente el 50% de la potencia del producto altamente purificado (por ejemplo, por peso de proteína producida), pero la mezcla contiene aproximadamente 6 veces más péptidos y así la actividad total es mayor.
Aminoácidos en forma-D
Los aminoácidos D se incorporan en una o más posiciones en el péptido simplemente usando un residuo de aminoácidos de forma-D derivatizados en la síntesis química. Los residuos de forma-D para la síntesis peptídica en fase sólida están comercialmente disponibles a partir de un número de suministradores (véase, por ejemplo Advanced Chem Tech., Louisville; Nova Biochem, San Diego; Sigma, San Luis, Bachern California Inc., Torrance, etc.). Los aminoácidos de forma-D pueden incorporarse en cualquier posición en el péptido según se desee. Así, por ejemplo, en una realización, el péptido puede comprender un aminoácido-D individual, mientras que en otras realizaciones, el péptido comprende al menos dos, generalmente al menos tres, más generalmente al menos cuatro, lo más generalmente al menos cinco, preferentemente al menos seis, más preferentemente al menos siete y lo más preferentemente al menos ocho aminoácidos D. En realizaciones particularmente preferidas, esencialmente cada aminoácido distinto (enantiomérico) es un aminoácido en forma-D. En ciertas realizaciones al menos el 90%, preferentemente al menos el 90%, más preferentemente el 95% de los aminoácidos enantioméricos son aminoácidos de forma-D. En una realización particularmente preferida, esencialmente cada aminoácido enantiomérico es un aminoácido de forma-D.
Grupos protectores
Sin adherirnos a una teoría particular, fue un descubrimiento de la presente invención que el bloqueo, particularmente de los extremos aminoterminal y/o carboxilo terminal de los péptidos sujeto de la presente invención mejora grandemente la administración oral e incrementa significativamente la semivida en suero.
Un amplio número de grupos protectores son adecuados para este propósito. Tales grupos incluyen, pero no se limitan a grupos acetilo, amida y alquilo con grupos acetilo y alquilo prefiriéndose particularmente para protección N-terminal y grupos amida prefiriéndose para protección carboxilo terminal. En ciertas realizaciones particularmente preferidas, los grupos protectores incluyen, pero no se limitan a cadenas de alquilo como en ácidos grasos, propionilo, formilo y otras. Los grupos protectores carboxilo particularmente preferidos incluyen amidas, ésteres y grupos protectores formadores de éteres. En una realización preferida, se usa un grupo acetilo para proteger el extremo aminoterminal y se usa un grupo amida para proteger el extremo carboxilo. Estos grupos bloqueantes potencian las tendencias formadoras de hélices de los péptidos. Ciertos grupos bloqueantes particularmente preferidos incluyen grupos alquilo de diversas longitudes, por ejemplo grupos que tienen la fórmula: CH_{3}-(CH_{2})_{n}-CO- donde n varía desde aproximadamente 1 hasta aproximadamente 20, preferentemente desde aproximadamente 1 hasta aproximadamente 16 o 18, más preferentemente desde aproximadamente 3 hasta aproximadamente 13, y lo más preferentemente desde aproximadamente 3 hasta aproximadamente 10.
En ciertas realizaciones particularmente preferidas, los grupos protectores incluyen, pero no se limitan a cadenas de anquilo como en ácidos grasos, propionilo, fornilo y otras. Los grupos protectores carboxilo particularmente preferidos incluyen amidas, esteres y grupos protectores formadores de éteres. En una realización preferida, se usa un grupo acetilo para proteger el extremo aminoterminal y se usa un grupo amida para proteger el extremo carboxilo. Estos grupos bloqueantes potencian las tendencias formadoras de hélices de los péptidos. Ciertos grupos bloqueantes particularmente preferidos incluyen grupos de alquilo de diversas longitudes, por ejemplo, grupos que tienen la fórmula: CH_{3}-(CH_{2})_{n}-CO- donde n varía desde aproximadamente 3 hasta aproximadamente 20, preferentemente desde aproximadamente 3 hasta aproximadamente 16, más preferente desde aproximadamente 3 hasta aproximadamente 13, y lo más preferente desde aproximadamente 3 hasta aproximadamente 10.
Otros grupos protectores incluyen, pero no se limitan a Fmoc, t-butoxicarbonilo (t-BOC), grupo 9-fluorenoacetilo, grupo 1-fluorenocarboxílico, grupo 9-fluorenona-carboxílico, benciloxicarbonilo, Xantilo (Xan), Tritilo (Trt), 4-metiltritilo (Mtt), 4-metoxitritilo (Mmt), 4-metoxi-2,3,6-trimetil-bencenosulfonilo (Mtr), Mesitileno-2-sulfonilo (Mts), 4,4-dimetoxibencidrilo (Mbh), Tosilo (Tos), 2,2,5,7,8-pentametil-croman-6-sulfonilo (Pmc), 4-metilbencilo (MeBzl), 4-metoxibencilo (MeOBzl), Benciloxi (BzlO), Bencilo (Bzl), Benzoílo (Bz), 3-nitro-2-piridinasulfenilo (Npys), 1-(4,4-dimetil-2,6-diaxociclihexilideno)etilo (Dde), 2,6-diclorobencilo (2,6-DiCl-Bzl), 2-clorobenciloxicarbonilo (2-Cl-Z), 2-bromobenciloxicarbonilo (2-Br-Z), benciloximetilo (Bom), ciclohexiloxi (cHxO), t-butoximetilo (Bum), t-butoxi (tBuO), t-Butilo (tBu), Acetilo (Ac) y Trifluoroacetilo (TFA).
Los grupos protectores/bloqueantes se conocen bien por aquellos expertos como que son procedimientos de acoplar tales grupos al/a los residuo(s) apropiado(s) que comprenden los péptidos de la presente invención (véase, por ejemplo, Greene y col., (1991) Protective Groups in Organic Synthesis, 2ª edición, John Wiley & Sons, Inc. Somerset, N.J.). En una realización preferida, por ejemplo, se llevó a cabo la acetilación durante la síntesis cuando el péptido está sobre la resina usando anhídrido acético. La protección de amidas se puede lograr por la selección de una resina apropiada para la síntesis. Durante la síntesis de los péptidos descritos en el presente documento en los ejemplos, se usó resina de amida de pista de patinaje. Después de la finalización de la síntesis, los grupos protectores semipermanentes en aminoácidos bifuncionales ácidos tales como Asp y Glu y en aminoácido básico Lys, hidroxilo de Tyr se retiran todos simultáneamente. Los péptidos liberados de una resina tal usando tratamiento ácido salen con el N-terminal protegido como acetilo y con el grupo carboxilo protegido como NH_{2} y con la eliminación simultánea de todos los otros grupos protectores.
\vskip1.000000\baselineskip
V. Mejorar captación de péptidos
Fue también un descubrimiento sorprendente de la presente invención que cuando todos los péptidos de aminoácidos L (por ejemplo teniendo por lo demás la secuencia de los péptidos de la presente invención) se administran en conjunto con la forma-D (es decir un péptido de la presente invención) la captación del péptido de la forma-D se incrementa. Así, en ciertas realizaciones, la presente invención contempla el uso de combinaciones de péptidos de forma D y de forma L en los procedimientos de la invención.
Se descubrió también que los concatámeros de péptidos de hélice anfipática de clase A descritos en el presente documento de la presente invención son también efectivos en mitigar uno o más síntomas de aterosclerosis. Los monómeros que comprenden los concatámeros se pueden acoplar directamente conjuntamente o unidos por un engarce. Los engarces ilustrativos incluyen un engarce aminoacídico (por ejemplo, una prolina) o un engarce peptídico (por ejemplo Gly_{4}Ser_{3}). Los concatámeros ilustrativos incluyen un 2-mero, más preferentemente un 3-mero, aún más preferentemente un 4-mero, y lo más preferentemente 5-mero, 8-mero, o 10-mero.
\vskip1.000000\baselineskip
VI. Formulaciones farmacéuticas
Con el fin de llevar a cabo los procedimientos de la invención, se administran uno o más péptidos o peptidomiméticos de la presente invención, por ejemplo a un individuo diagnosticado según tenga uno o más síntomas de aterosclerosis, o que esté en riesgo de aterosclerosis. Los péptidos se pueden administrar en la forma "nativa" o, si se desea, en la forma de sales, ésteres, amidas, profármacos, derivados, y similares, siempre que la sal, el éster, la amida, el profármaco o el derivado sea adecuado farmacológicamente, es decir, efectivo en el presente procedimiento. Las sales, ésteres, amidas, profármacos y otros derivados de los agentes activos se pueden preparar usando procedimientos estándar conocidos por aquellos expertos en la técnica de química orgánica de síntesis y descritos, por ejemplo, por March (1992) Advanced Organic Chemistry; Reactions, Mechanism an Structure, 4ª Edición, N.Y. Wiley-Interscience.
Por ejemplo, las sales de adición de ácidos se preparan a partir de la base libre usando metodología convencional, que implica típicamente reacción con un ácido adecuado. Generalmente, la forma base del fármaco se disuelve en un disolvente orgánico polar tal como metanol o etanol y el ácido se añade a la misma. La sal resultante bien precipita o bien puede llevarse fuera de la solución por adición de un disolvente menos polar. Los ácidos adecuados para preparar sales de acción ácida incluyen tanto ácidos orgánicos, por ejemplo, ácido acético, ácido propiónico, ácido glicólico, ácido pirúvico, ácido oxálico, ácido málico, ácido malónico, ácido succínico, ácido maleico, ácido fumárico, ácido tartárico, ácido cítrico, ácido benzoico, ácido cinnámico, ácido mandélico, ácido metanosulfónico, ácido etanosulfónico, ácido etanosulfónico, ácido p-toluenosulfónico, ácido salicílico, y similares. Una sal de adición de ácidos se puede reconvertir a la base libre por tratamiento con una base adecuada. Las sales de adición de ácidos particularmente preferidas de los agentes activos en el presente documento son sales de haluros, tales como se pueden preparar usando ácidos clorhídrico o bromhídrico. En cambio, la preparación de sales básicas de los péptidos o miméticos se preparan en una manera similar usando una base farmacéuticamente aceptable tal como hidróxido de sodio, hidróxido de potasio, hidróxido de amonio, hidróxido de calcio, trimetilamina, o similares. Las sales básicas particularmente preferidas incluyan sales de metales alcalinos, por ejemplo, la sal de sodio, y las sales de cobre.
La preparación de ésteres implica típicamente funcionalización de grupos hidroxilo y/o grupos carboxilo que pueden estar presentes en la estructura molecular del fármaco. Los ésteres son típicamente derivados acil-sustituidos de los grupos alcohol libres, es decir, restos que se derivan de ácidos carboxílicos de la fórmula RCOOH donde R es alquilo, y preferentemente es alquilo inferior. Los ésteres se pueden reconvertir a los ácidos libres, si se desea, usando procedimientos de hidrogenolisis o de hidrólisis convencionales.
Se pueden preparar también amidas y profármacos usando técnicas conocidas por aquellos expertos en la técnica o descritas en la bibliografía pertinente. Por ejemplo, las amidas pueden prepararse a partir de ésteres, usando reaccionantes amina adecuados, o pueden prepararse a partir de un anhídrido de cloro o un ácido de cloro por reacción con amoniaco o una amina de alquilo inferior. Los profármacos se preparan típicamente por unión covalente de un resto que da como resultado un compuesto que es terapéuticamente inactivo hasta que se modificó por un sistema metabólico del individuo.
Los péptidos identificados en la patente son útiles para administración parenteral, tópica, oral, nasal (o inhalada de otra manera), rectal, o local, tal como por aerosol o transdérmicamente, para tratamiento profiláctico y/o terapéutico de aterosclerosis y/o síntomas de la misma. Las composiciones farmacéuticas se pueden administrar en una diversidad de formas de dosificación unitaria dependiendo del procedimiento de administración. Las formas de dosificación unitaria incluyen, pero no se limitan a polvos, comprimidos, píldoras, cápsulas, pastillas, supositorios, parches, pulverizadores nasales, inyectables, formulaciones de liberación contenida implantables, complejos lipídicos, etc.
Los péptidos de la presente invención se combinan típicamente con un vehículo farmacéuticamente aceptable (excipiente) para formar una composición farmacéutica. Los vehículos farmacéuticamente aceptables pueden contener uno o más compuesto(s) fisiológicamente aceptable(s) que actúan, por ejemplo, para estabilizar la composición o para incrementar o disminuir la absorción del/de los agente(s) activos(s). Los compuestos fisiológicamente aceptables pueden incluir, por ejemplo, carbohidratos, tales como glucosa, sacarosa, o dextranos, antioxidantes, tales como ácido ascórbico o glutatión, agentes quelantes, proteínas de bajo peso molecular, potenciadores de protección y de captación tales como lípidos, composiciones que reducen la eliminación o la hidrólisis de los agentes activos, o excipientes u otros estabilizadores y/o tampones.
Otros compuestos fisiológicamente aceptables incluyen agentes humectantes, agentes emulsionantes, agentes dispersantes o conservantes que son particularmente útiles para evitar el crecimiento o acción de los microorganismos. Diversos conservantes se conocen bien, e incluyen, por ejemplo, fenol y ácido ascórbico. Alguien experto en la técnica apreciaría que la elección de vehículo(s) farmacéuticamente aceptable(s), incluyendo un compuesto fisiológicamente aceptable depende, por ejemplo, de la vía de administración del/de los agente(s) activo(s) y de las características fisicoquímicas del/de los agente(s) activo(s).
Los excipientes son preferentemente estériles y están generalmente libres de materia indeseable. Estas composiciones pueden esterilizarse por técnicas de esterilización bien conocidas, convencionales.
En aplicaciones terapéuticas, las composiciones de la presente invención se administran a un paciente que sufre de uno o más síntomas de aterosclerosis o en riesgo de aterosclerosis en una cantidad suficiente para curar o al menos evitar o detener parcialmente la enfermedad y/o sus complicaciones. Una cantidad adecuada para llevar a cabo esto se define como una "dosis terapéuticamente efectiva". Las cantidades efectivas para este uso dependerán de la gravedad de la enfermedad y del estado general de la salud del paciente. Las administraciones únicas o múltiples de las composiciones se pueden administrar dependiendo de la dosificación y frecuencia con que se requiere y tolera por el paciente. En cualquier evento, la composición proporcionará una cantidad suficiente de los agentes activos de las formulaciones de la presente invención para tratar (mejorar uno o más síntomas) de forma efectiva al paciente.
La concentración de péptidos puede variar ampliamente, y se seleccionará principalmente en base a volúmenes de fluido, viscosidades, peso corporal y similares de acuerdo con el modo particular de administración seleccionado y con las necesidades del paciente. Las concentraciones, sin embargo, se seleccionarán típicamente para proporcionar dosificaciones que varían desde aproximadamente 0,1 o 1 mg/kg/día hasta aproximadamente 50 mg/kg/día y algunas veces más altas. Las dosificaciones típicas varían desde aproximadamente 3 mg/kg/día hasta aproximadamente 3,5 mg/kg/día, preferentemente desde aproximadamente 3,5 mg/kg/día hasta aproximadamente 7,2 mg/kg/día, más preferentemente desde aproximadamente 7,2 mg/kg/día hasta aproximadamente 11,0 mg/kg/día, y lo más preferentemente desde aproximadamente 10 mg/kg/día hasta aproximadamente 50 mg/kg/día. Se apreciará que tales dosificaciones pueden variarse para optimizar un régimen terapéutico en un sujeto o grupo de sujetos particular.
En ciertas realizaciones preferidas, los péptidos de la presente invención se administran oralmente (por ejemplo por medio de un comprimido) o como un inyectable de acuerdo con procedimientos estándar bien conocidos por aquellos de habilidad en la técnica. En otras realizaciones preferidas, los péptidos, pueden administrarse también a través de la piel usando sistemas de administración de fármacos transdérmicos convencionales, es decir, "parches" transdérmicos en los que el/los agente(s) activo(s) está(n) contenido(s) típicamente en una estructura laminada que sirve como un dispositivo de administración de fármacos para fijarse a la piel. En una estructura tal, la composición de fármacos está típicamente contenida en una capa o "reservorio" que subyace a una capa de respaldo superior. Se apreciará que el término "reservorio" en este contexto se refiere a una cantidad de "ingrediente(s) activo(s)" que a la larga está disponible para administración a la superficie de la piel. Así, por ejemplo, el "reservorio" puede incluir el/los ingrediente(s) activo(s) en un adhesivo en una capa de respaldo del parche, o en cualquiera de una diversidad de diferentes formulaciones de matriz conocidas por aquellos de habilidad en la técnica. El parche puede contener un reservorio único, o puede contener múltiples reservorios.
En una realización, el reservorio comprende una matriz polimérica de un material adhesivo de contacto farmacéuticamente aceptable que sirve para fijar el sistema a la piel durante la administración de fármaco. Ejemplos de materiales adhesivos de contacto con la piel adecuados incluyen, pero no se limitan a, polietilenos, polisiloxanos, poliisobutilenos, poliacrilatos, poliuretanos y similares. Alternativamente, el reservorio que contiene fármacos y el adhesivo en contacto con la piel están presentes como capas separadas y distintas, con el adhesivo subyaciendo al reservorio que, en este caso, puede ser bien una matriz polimérica como se describe anteriormente, o puede ser un reservorio de líquido o de hidrogel, o puede tomar alguna otra forma. La capa de respaldo en estos laminados, que sirve como la superficie superior del dispositivo, funciona preferentemente como un elemento estructural primario del "parche" y proporciona el dispositivo con mucha de su flexibilidad. El material seleccionado para la capa de respaldo es preferentemente sustancialmente impermeable al/a los agente(s) activo(s) y a cualesquiera otros materiales que estén presentes.
Otras formulaciones preferidas para la administración de fármacos tópica incluyen, pero no se limitan a, pomadas y cremas. Las pomadas son preparaciones semisólidas que están basadas típicamente en petrolato o en otros derivados del petróleo. Las cremas que contienen el agente activo seleccionado, son típicamente emulsiones de líquido viscoso o semisólidas, a menudo bien de aceite-en-agua o bien de agua-en-aceite. Las bases de crema son típicamente lavables en agua, y contienen una fase aceitosa, un emulsionante y una fase acuosa. La fase aceitosa, también llamada algunas veces la fase "interna", está compuesta generalmente de petrolato y de un alcohol graso tal como alcohol cetílico o alcohol estearílico; la fase acuosa usualmente, aunque no necesariamente, excede a la fase acuosa en volumen, y contiene generalmente un humectante. El emulsionante en una formulación de crema es generalmente un tensioactivo no iónico, aniónico, catiónico o anfótero. La pomada específica o la crema base a usarse, como se apreciará por aquellos expertos en la técnica, es una que proporcionará administración de fármaco óptima. Como con otros transportadores o vehículos, una base de pomada sería inerte, estable, no irritante y no sensibilizante.
A diferencia de las típicas formulaciones de péptidos, los péptidos de la presente invención que comprenden aminoácidos en forma D se pueden administrar, incluso oralmente, sin protección contra proteolisis por ácido estomacal, etc. Sin embargo, en ciertas realizaciones, la administración peptídica puede potenciarse por el uso de excipientes protectores. Esto se lleva a cabo típicamente acomplejando el polipéptido con una composición para volverle resistente a hidrólisis ácida y enzimática o envolviendo el polipéptido en un vehículo apropiadamente resistente tal como un liposoma. Los medios de proteger polipéptidos para administración oral se conocen bien en la técnica (véase, por ejemplo, Patente de los EE.UU. 5,391,377 que describe composiciones lipídicas para administración oral de agentes terapéuticos).
La semivida elevada en suero se puede mantener por el uso de sistemas "que envuelven" proteicos de liberación mantenida. Tales sistemas de liberación mantenida se conocen bien por aquellos de habilidad en la técnica. En una realización preferida, el sistema de administración de microesferas biodegradables ProLease para proteínas y péptidos (Tracy (1998) Biotechnol. Prog. 14: 108; Johnson y col. (1996), Nature Med. 2: 795; Herbert y col. (1998), Pharmaceut. Res. 15, 357) un polvo seco compuesto de microesferas poliméricas biodegradables que contienen la proteína en una matriz polimérica que puede estar compuesta como una formulación seca con o sin otros agentes.
El procedimiento de fabricación de microesferas de ProLease se diseñó específicamente para lograr una eficacia de encapsulación de proteínas alta manteniendo mientras la integridad de las proteínas. El procedimiento consiste en (i) preparación de partículas proteicas secadas por congelación a partir de la mayor parte de las proteínas secando por congelación por pulverización la solución de fármaco con excipientes estabilizadores, (ii) preparación de una suspensión polimérica de fármacos seguida por sonicación u homogeneización para reducir la tamaño de partícula de fármaco, (iii) producción de microesferas de polímero de fármacos congeladas por atomización en nitrógeno líquido, (iv) extracción del disolvente polimérico con etanol, y (v) filtración y secado a vacío para producir el producto en polvo seco final. El polvo resultante contiene la forma sólida de la proteína, que está homogéneamente y rígidamente dispersa en partículas poliméricas porosas. El polímero más comúnmente usado en el procedimiento, poli(láctido-co-glicólido) (PLG), es tanto biocompatible como biodegradable.
La encapsulación puede lograrse a temperaturas bajas (por ejemplo, -40ºC). Durante la encapsulación, la proteína se mantiene en el estado sólido en la ausencia de agua, minimizando así la movilidad conformacional inducida por agua de la proteína, previniendo reacciones de degradación de proteínas que incluyen agua como un reactivo, y evitando las interfases orgánica-acuosa donde las proteínas pueden sufrir desnaturalización. Un procedimiento preferido usa disolventes en los que la mayoría de las proteínas son insolubles, proporcionando así eficiencias de encapsulación altas (por ejemplo, mayores del 95%).
En otra realización, uno o más componentes de la solución se puede proporcionar como un "concentrado", por ejemplo, en un contenedor de almacenamiento (por ejemplo, en un volumen pre-medido) listo para disolución, o en una cápsula soluble lista para adición a un volumen de agua.
Las siguientes formulaciones y procedimientos de administración se desean para ser ilustrativas y no limitantes. Se apreciará que, usando la enseñanza proporcionada en el presente documento, se pueden concebir fácilmente otras formulaciones y modos de administración adecuados.
\vskip1.000000\baselineskip
VII. Formulaciones basadas en lípidos
En ciertas realizaciones, los péptidos de la presente invención se administran conjuntamente con uno o más lípidos. Los lípidos se pueden formular como un excipiente para proteger y/o potenciar el transporte/la captación de los péptidos o se pueden administrar por separado.
Sin adherirse a una teoría en particular, se descubrió de la presente invención que la administración (por ejemplo, administración oral) de ciertos fosfolípidos puede incrementar significativamente las proporciones de HDL/LDL. Además, se cree que ciertos fosfolípididos de longitud media se transportan por un procedimiento diferente del que está implicado en transporte lipídico general. Así, la coadministración de ciertos fosfolípidos de longitud media con los péptidos de la presente invención confiere un número de ventajas: protegen a los fosfolípidos de digestión o hidrólisis, mejoran la captación de péptidos y mejoran las proporciones de HDL/LDL.
Los lípidos se pueden formar en liposomas para encapsular los polipéptidos de la presente invención y/o pueden simplemente completarse/mezclarse con los polipéptidos. Los procedimientos para fabricar liposomas y encapsular reactivos se conocen bien por aquellos expertos en la técnica (véase, por ejemplo, Martin y Papahadjopoulos (1982) J. Biol. Chem., 257: 286-288; Papahadjopoulos y col. (1991) Proc. Natl Acad. Sci. EE.UU., 88: 11460-11464; Huang y col. (1992) Cancer Res., 52: 6774-6781; Lasic y col. (1992) FEBS Lett., 312: 255-258, y similares).
Los fosfolípidos preferidos para usar en estos procedimientos tienen ácidos grasos que varían de aproximadamente 4 carbonos a aproximadamente 24 carbonos en las posiciones sn-1 y sn-2. En ciertas realizaciones preferidas, los ácidos grasos están saturados. En otras realizaciones preferidas, los ácidos grasos pueden estar insaturados. Diversos ácidos grasos preferidos se ilustran en la Tabla 2.
TABLA 2 Ácidos grasos preferidos en la posición sn-1 y/o en la posición sn-2 de los fosfolípidos preferidos para administración de polipéptidos D
3
Los ácidos grasos en estas posiciones pueden ser el mismo o diferentes. Fosfolípidos particularmente preferidos tienen fosforilcolina en la posición sn-3.
\vskip1.000000\baselineskip
VIII. Agentes activos farmacológicamente adicionales
Agentes activos farmacológicamente adicionales se pueden administrar junto con los agentes activos primarios, por ejemplo, los péptidos de la invención. En una realización, tales agentes incluyen, pero no se limitan a agentes que reducen el riesgo de eventos ateroscleróticos y/o complicaciones de los mismos. Tales agentes incluyen, pero no se limitan a beta bloqueantes, combinaciones de beta bloqueantes y de diuréticos de tiazida, estatinas, aspirina, inhibidores de ace, inhibidores de receptor de ace (ARB) y similares.
Los beta bloqueantes adecuados incluyen, pero no están limitados a cardioselectivos (beta 1 bloqueantes selectivos), por ejemplo acebutolol (Sectral^{TM}), atenolol (Tenormin^{TM}), betaxolol (Kerlone^{TM}), bisoprolol (Zebeta^{TM}), metoprolol (Lopressor^{TM}) y similares. Bloqueantes no selectivos adecuados (bloquean igualmente beta 1 y beta 2) incluyen, pero no se limitan a carteolol (Cartrol^{TM}), nadolol (Codgard^{TM}), penbutolol (Levatol^{TM}), pindolol (Visken^{TM}), propanolol (Inderal^{TM}), timolol (Blockadren^{TM}), labetalol (Normodyne^{TM}, Trandate^{TM}) y similares.
Combinaciones de diuréticos de tiazida con beta bloqueantes adecuados incluyen, pero no se limitan a Lopressor HCT, ZIAC, Tenoretic, Corzide, Imolide, Inderal LA 40/25, Inderide, Normozide y similares.
Las estatinas adecuadas incluyen, pero no se limitan a pravastatina (Pravachol/Bristol-Myers Squibb), simvastatina (Zocor/Merk), lovastatina (Mevacor/Merk) y similares.
Los inhibidores de ace adecuados incluyen, pero no se limitan a captoprilo (por ejemplo, Capoten^{TM} por Squibb), benazeprilo (por ejemplo Lotensina^{TM} por Novartis), enalaprilo (por ejemplo, Vasotec^{TM} por Merck), fosinoprilo (por ejemplo, Monopril^{TM} por Bristol-Myers), lisinoprilo (por ejemplo Privinil^{TM} por Merk o Zestril^{TM} por Astra-Zeneca), quinaprilo (por ejemplo Accupril^{TM} por Parke-Davis), ramiprilo (por ejemplo, Altace^{TM} por Hoechst Marion Roussel, King Pharmaceuticals), imidaprilo, erbumina de perindoprilo (por ejemplo, Aceon^{TM} por Rhone-Polenc Rorer), trandolaprilo (por ejemplo, Mavik^{TM} por Knoll Pharmaceutical) y similares. ARB adecuados (Bloqueantes de Receptor de Ace) incluyen pero no se limitan a losartán (por ejemplo Coozar^{TM} por Merk), irbesartán (por ejemplo, Avapro^{TM} por Sanofi), candesartán (por ejemplo, Atacand^{TM} por Astra Merck), valsartán (por ejemplo, Diovan^{TM} por Novartis) y similares.
\vskip1.000000\baselineskip
IX. Kits para la mejora de uno o más síntomas de aterosclerosis
En otra realización la presente invención proporciona kits para la mejora de uno o más síntomas de aterosclerosis o para el tratamiento profiláctico de un sujeto (humano o animal) en riesgo de aterosclerosis. Los kits comprenden un contenedor que contiene uno o más de los péptidos de la presente invención. El péptido se puede proporcionar en una formulación de dosificación unitaria (por ejemplo supositorio, comprimido, comprimido ovalado, parche, etc.) y/o puede estar opcionalmente combinado con uno o más excipientes farmacéuticamente aceptables.
El kit puede, opcionalmente, comprender adicionalmente uno o más agentes usados en el tratamiento de enfermedad cardiaca y/o de aterosclerosis. Tales agentes incluyen, pero no se limitan a, beta bloqueantes, vasodilatadores, aspirina, estatinas, inhibidores de ace o inhibidores de receptor de ace (ARB) y similares, por ejemplo como se describe anteriormente.
Además, los kits incluyen opcionalmente materiales de etiquetado y/o de instrucciones que proporcionan indicaciones (es decir protocolos) para la práctica de los procedimientos o para uso de los "productos terapéuticos" o de los "productos profilácticos" de la presente invención. Los materiales de instrucciones preferidos describen el uso de uno o más polipéptidos de la presente invención para mitigar uno o más síntomas de aterosclerosis y/o para evitar la aparición o el incremento de uno o más de tales síntomas en un individuo en riesgo de aterosclerosis. Los materiales de instrucciones pueden también, opcionalmente, enseñar las dosificaciones/el régimen terapéutico preferidos, contraindicaciones y similares.
Mientras que los materiales de instrucciones comprenden típicamente materiales escritos o impresos no se limitan a tales. Cualquier procedimiento capaz de almacenar tales instrucciones y comunicarlas a un usuario final está contemplado en la presente invención. Tales medios incluyen, pero no están limitados a medios de almacenamiento electrónico (por ejemplo, discos magnéticos, cintas, cartuchos, chips), medios ópticos (por ejemplo, CD ROM), y similares. Tales medios pueden incluir direcciones a sitios de Internet que proporcionan tales materiales de instrucciones.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplos
Los siguientes ejemplos se ofrecen para ilustrar, pero no limitan la invención reivindicada.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo Comparativo 1
Varios análogos de péptidos de clase A sintéticos han mostrado imitar muchas de las propiedades de apo A-I humana in vitro. En este ejemplo, un péptido nuevo (5F) con anfipaticidad incrementada, se dio por inyección intraperitoneal, 20 \mug/diariamente, durante 16 semanas a ratones C57BL/6J alimentados con dieta aterogénica. Se dieron inyecciones de apo A-I de ratón (MoAI) (50 \mug/diariamente) o de tampón fosfato salino a otros ratones como controles. Los niveles de colesterol en plasma totales y los perfiles de lipoproteínas no fueron significativamente diferentes entre el grupo tratado y los grupos control salvo porque los ratones que recibieron 5F o MoAI tuvieron más bajo lipoproteína de alta densidad (HDL)-colesterol cuando se calculó como un porcentaje de todo el colesterol. No se observó ninguna toxicidad o producción de anticuerpos para los materiales inyectados. Cuando LDL se tomó de animales inyectados con 5F y se presentó a células de la pared arterial humana in vitro produjo menos hidroperóxidos de lípidos y menos actividad quimiotáctica inducida por LDL que la LDL tomada de controles. Adicionalmente, cuando se tomó HDL de ratones inyectados con 5F y se presentó a las células de la pared arterial humana in vitro conjuntamente con LDL humana, hubo sustancialmente menos hidroperóxidos de lípidos formados y sustancialmente menos actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL. Los ratones que recibieron péptido 5F tuvieron significativamente menos área de lesión aterosclerótica aórtica comparados con ratones que recibieron PBS. El área de lesión en ratones que recibieron MoAI fue similar a aquella de los animales inyectados con PBS. Los autores de la presente invención concluyen que 5F puede tener potencial en la prevención y el tratamiento de aterosclerosis.
\vskip1.000000\baselineskip
Materiales y Procedimientos Péptidos
Se sintetizó péptido 5F (Ac-18A[Asp Trp Leu Lys Ala Phe Tyr Asp Lys Val Phe Glu Lys Phe Lys Glu Phe Phe]-NH_{2}) por síntesis de péptidos en fase sólida (véase, por ejemplo, Anantharamaiah y Garber (1996) Meth. Enzymol. 263: 267-282; Palgunachari y col. (1996) Arteriosclerosis, Trombosis & Vascular Biology 16: 328-338). La pureza del péptido sintético se estableció por HPLC analítica y espectrometía de masas de pulverización de iones. El péptido se dializó frente a agua destilada y liofilizada antes de usar.
Se aisló MoAI a partir del plasma de ratones C57BL/J6 (el plasma de EDTA se compró de Harlan Bioproducts for Science, Indianápolis, IN). MoAI se aisló usando una combinación de cromatografía de exclusión por tamaño y cromatografía en columna en fase reversa. Brevemente, la densidad de plasma se ajustó a 1,21 g/ml por adición de KBr, y se centrifugó a 50.000 rpm durante 24 horas a 4ºC (rotor Ti70, Beckman, Fullerton, CA). La fracción superior se recogió, se dializó frente a agua eliminando KBr, se liofilizó y se deslipidó. El sedimento se disolvió en solución Gn:DTT:Tris (guanidina HCl 3 M, ditiotreitol 1 mM y Tris 10 mM; pH = 8,0), después se dializó frente a la misma solución usando tubos de diálisis de límite de 12.000 Mw con el fin de retirar mucho de la apo A-I y de las apolipoproteínas C de la muestra. La muestra se dializó después frente a agua y se liofilizó. El sedimento se disolvió en solución Gn:DTT:Tris recién preparada, y las proteínas se separaron por cromatografía en columna de exclusión por tamaño, usando una columna XK26/100 (2,6 X 100 cm) envasada con Superosa 12 de fase de bulto (Pharmacia Biotech, Piscataway, NJ) equilibrada con solución Gn:DTT:Tris. La velocidad de flujo fue 0,5 ml/minuto, y se recogieron fracciones de 2,5 ml. Las fracciones que corresponden al pico apo A-I se analizaron por SDS-PAGE, y se purificaron adicionalmente por HPLC de fase reversa C-18 preparativa (Anantharamaiah y Garber (1996) Meth. Enzymol. 263: 267-282).
\vskip1.000000\baselineskip
Ratones
Todos los experimentos se llevaron a cabo usando ratones C57BL/6J hembra (Jackson Laboratory, Bar Harbor, ME). Los ratones se adquirieron a las seis semanas de edad, y los estudios de la dieta se empezaron con ratones a las ocho semanas de edad. Se usaron ratones que pesaban de 10 a 22 gramos en los estudios de renovación. Todos los estudios en animales se revisaron como posibilidad y se aprobaron por la Comisión de Cuidado y Uso de Animales Institucional de la Universidad de Alabama en Bimingham.
\vskip1.000000\baselineskip
Estudios cinéticos
El péptido 5F, MoAI, y la apo-I humana se marcaron con ^{125}I por el procedimiento de Bilheimer y col. (1972) Biochim. Biophys. Acta 260: 212-221. Los ratones se pusieron a una dieta aterogénica de Thomas-Hartroft modificada (#TD88051; Teklad, Madison, WI) durante cuatro semanas tiempo al que se empezaron inyecciones intraperitoneales diarias de péptido o proteína disuelta en 200 \mul de solución salina tamponada con fosfato (PBS). Los animales inyectados con MoAI o apo A-I humana recibieron 50 \mug por animal; aquellos inyectados con 5F recibieron 20 \mug. Los animales no se sometieron a ayuno para los estudios cinéticos y las muestras de sangre se tomaron con anestesia con xilazina-ketamina desde el seno retroorbital a 15, 30 y 45 minutos, y, 1, 1,5, 2, 3, 4, 68, 12 y 24 horas tras la inyección. Cada animal proporcionó 3 muestras de sangre a diferentes puntos temporales (todas retroorbitales y en ojos alternos), y se recogieron al menos tres muestras (a partir de animales diferentes) a cada punto temporal. Las muestras se recogieron en tubos capilares heparinizados, después se situaron en tubos de microcentrífuga, el plasma se separó por centrifugación. Se tomaron alícuotas de 10 \mul duplicadas de cada muestra para determinación de radioactividad, usando cuenta de gamma (Cobra; Packard Instruments, Downers Grove, IL) durante 10 minutos por muestra. El volumen de plasma total se calculó como 4,2% de peso corporal. Cada muestra se expresa como porcentaje de CPM inyectada en plasma total. El ^{125}I libre se determinó por precipitación de ácido tricloroacético (TCA) (1 ml de TCA al 10% por 10 \mul de muestra de plasma). Se hizo ajuste al modelo cinético usando todos los puntos de datos, más que los promedios en cada punto temporal (PKAnalyst, MicroMath Scientific Software, Salt Lake City, UT).
\vskip1.000000\baselineskip
Protocolo de inyección y recogida de muestras para estudios de lesión
Los ratones se adquirieron a las seis semanas de edad, y se asignaron al azar en grupos de 20, salvo porque un grupo control negativo de 10 no recibió ningún tratamiento y se le dio pienso de roedores estándar. A las ocho semanas de edad, los grupos de tratamiento se pusieron a una dieta aterogénica de Thomas-Hartroft modificada (#TD88051; Teklad, Madison, WI), y se comenzaron las inyecciones. La dieta se mantuvo a 4ºC y se usó durante no más de tres meses después de la fecha de elaboración con el fin de minimizar la oxidación de lípidos. Los animales se inyectaron intraperitonealmente diariamente durante 16 semanas, incluyendo fines de semana y vacaciones. Veinte ratones en cada grupo recibieron inyecciones diarias de 200 \mul de PBS (como controles positivos), o de 20 \mug de 5F en 200 \mul de PBS, o 50 \mug de MoAI en 200 \mul de PBS.
Se preparó péptido 5F liofilizado en viales, conteniendo cada botella suficiente péptido para inyección de un día. El péptido 5F se liofilizó en PBS, y se disolvió en agua Mili-Q autoclavaza (Millipore Corp., Bedford, MA) en el día de la inyección. El volumen de inyección para todos los grupos se mantuvo a 200 \mul/ratón por grupo de animales.
Se tomaron muestras de sangre con anestesia por sangrado reto-orbital en la entrada al estudio (antes de la dieta) y al tiempo de la recogida de órganos. Al final del estudio (semana 16), en el último sangrado, se escindieron el corazón y el hígado. Los corazones se mantuvieron en solución salina al 0,9% durante aproximadamente 1 hora eliminando sangre y permitiendo relajar el músculo cardiaco. Se fijaron después en formaldehído tamponado con fosfato al 4% durante al menos una semana hasta que se seccionaron. Los hígados se retiraron y se pesaron.
\vskip1.000000\baselineskip
Evaluación histológica
Se llevaron a cabo evaluaciones histológicas de acuerdo con el procedimiento de Paigen y col. (Paigen y col. (1990) Ateriosclerosis 10: 316-323) con algunas modificaciones. Brevemente, los corazones se fijaron durante al menos una semana en la solución de formaldehído tamponada con fosfato. Después de retirar los 2/3 inferiores de los corazones, el tejido que queda se congeló en medio OCT (Tissue-Tek, Miles Inc., Elkhart, IN) y se seccionó en un criostato a -20ºC. Se guardaron en cubreobjetos secciones de 20 \mum alternas, y se observaron por el comienzo de la raíz aórtica. Las secciones se recogieron después para unos 600 \mum adicionales, o hasta que la sección transversal aórtica se terminó y las cúspides de la válvula no fueron evidentes más tiempo. Los cubreobjetos se tiñeron con Tintura de Sudán, y se contratiñeron con hematoxilina. Las áreas transversales de lesión teñidas se midieron en cubreobjetos consecutivos separados 80 \mum por análisis de imagen (SigmaScan Pro, SPS Scientific, Chicago, IL) y el área de lesión promedio se determinó para cada seno aórtico a lo largo de los 400 \mum de longitud (cinco cubreobjetos) proporcionando el área de lesión promedio más grande.
\vskip1.000000\baselineskip
Cocultivos, Aislamiento Monocítico, Aislamiento de Lipoproteínas, Determinación de Hidroperóxidos Lipídicos y Actividad Quimiotáctica Monocítica
Cocultivos de células de la pared arterial humana, aislamiento de monocitos, aislamiento de lipoproteínas por ultracentrifugación a partir del plasma de donantes humanos normales o a partir de plasma por FPLC, y se llevaron a cabo determinación de hidroperóxidos lipídicos y actividad quimiotáctica monocítica de acuerdo con procedimientos estándar. Toda la participación de sujetos humanos fue con consentimiento informado aprobado por el UCLA Human Subjects Protection Comitee. El protocolo para realizar pruebas con las lipoproteínas de ratón en el cocultivo se llevó a cabo también como sigue: brevemente, se aislaron LDL y HDL por FPLC de plasma de ratón de ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados con vehículo (PBS), o con péptido 5F a 20 \mug/ratón/día. Los cocultivos se trataron con LDL humanas a 200 \mug/ml de proteína LDL, o LDL de ratón a 200 \mug/ml o con 200 \mug/ml de LDL humanas + HDL humanas a 350 \mug/ml de proteína HDL o HDL de ratón a 300 \mug/ml o con HDL de ratón sólo a 300 \mug/ml. Los cocultivos se incubaron con o sin las adiciones anteriores durante 8 horas a 37ºC en presencia de suero deficiente en lipoproteínas al 10% (LPDS). Los sobrenadantes se recogieron o analizaron por equivalentes de hidroperóxidos de lípidos de Auerbach. Los cocultivos se lavaron después y se incubaron con medio de cultivo recién preparado sin suero o LPDS durante unas 8 horas adicionales. El medio acondicionado se recogió y analizó para actividad quimiotáctica monocítica.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimientos químicos y analíticos-Perfiles de lipoproteínas de colesterol en columna (CLiP)
Se midieron perfiles de lipoproteínas de colesterol en plasma usando el procedimiento CLiP recientemente desarrollado de los autores de la presente invención (Garber y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1020-1026). Brevemente, se analizaron 5 a 10 \mul de plasma usando una columna de Superosa 6 individual (Pharmacia, Piscataway NJ). Inmediatamente tras la columna, el reactivo de colesterol se introdujo a través de tramo de tubo en forma de letra T mezclador, y la mezcla eluyente:reactivo entró en una espiral de reacción posterior a la columna. El contenido en colesterol de la mezcla eluyente se detectó espectrofotométricamente a 500 nm, y los puntos de datos se recogieron en un ordenador. Los perfiles resultantes se descompusieron en picos de componentes y se analizaron por áreas relativas usando PeakFit (SPS Science, Chicago, IL); los valores de colesterol absoluto para colesterol total y cada pico de componente se determinaron por comparación con una muestra control de valores conocidos. En algunos casos las fracciones se recogieron para determinar distribución de radiactividad. El procedimiento de CLiP permitió el análisis de muestras de ratones individuales, permitiendo el uso de las muestras almacenadas.
\vskip1.000000\baselineskip
Detección de anticuerpos
Para determinar si las inyecciones diarias de péptidos facilitaron cualquier respuesta inmune, la valoración de ELISA indirecto (Engwall (1980) Meth. Enzymol. 70: 410-439) se llevó a cabo con plasma tomado de ratones a tiempo de la recogida de órganos (tras seis semanas de inyección diaria). Las placas se recubrieron con los péptidos inyectados o con MoAI (10 \mug/ml). Las placas se incubaron durante toda una noche. Después de lavado cuidadoso con medio salino tamponado con borato (pH 8,2) conteniendo Tween 20 al 0,05%, y bloqueando con tampón (gelatina al 0,1% y BSA al 0,1% en tampón borato) durante 1 hora, muestras de 200 \mul del plasma de ratón diluido (dilución 1:100) se diluyeron de forma seriada 1:1 con medio salino tamponado con borato. Se añadió después anticuerpo de cabra biotinilado para IgG de ratón (0,1 \mug/ml) a los pocillos y las placas se trataron con SA-HRP (peroxidasa de rábano picante-Estreptavidina) durante una hora y se desarrolló con ABTS y peroxido como sustrato. Las placas se incubaron durante toda una noche a temperatura ambiente después de cada adición de antígeno/anticuerpo y se lavaron cuidadosamente con medio salino tamponado con borato (pH 8,2) conteniendo Tween 20 al 0,05%, y se bloquearon con tampón (gelatina al 0,1% y BSA al 0,1% en tampón borato) durante 1 hora antes de la siguiente adición.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimientos estadísticos
Se compararon grupos de tratamiento por dos ensayos t en dos dimensiones o análisis de varianza con un factor (donde los datos se distribuyeron normalmente), o por análisis de varianza con un factor en rangos (SigmaStat: SPSS Science, Chicago, IL). Las cinéticas de movimiento de péptidos o proteínas se analizaron ajustando a un modelo cinético de un compartimiento de primer orden que asume velocidades de entrada y de salida desiguales (PKAanlyst; Micromath Scientific Software, SALT Lake City, UT).
\vskip1.000000\baselineskip
Resultados Estudios de Cinética
Las cinéticas de eliminación de péptido 5F y de apo A-I humana y de ratón a partir de plasma de ratón tras inyección intraperitoneal se resumen en la Tabla 3.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 3 Sumario de los datos ajustados de experimentos cinéticos
5
Apo A-I humana y de ratón tuvieron eliminación prolongada grandemente comparados con el péptido 5F. Apo A-I humana y 5F humano tuvieron tiempos más largos a niveles plasmáticos de pico de lo lo hizo apo A-I de ratón, aunque los niveles de pico logrados fueron generalmente similares (apo A-I humana alcanzó niveles de pico más altos de lo que lo hicieron los otros materiales). El análisis de muestras de plasma por cromatografía en columna demostró que el péptido 5F y la apo A-I (tanto humanos como de ratón) se asociaron con lipoproteínas de plasma, especialmente con partículas en la región de tamaño de HDL (Figura 6). La proporción HDL-VDL de radiactividad peptídica 1,5 horas tras inyección de 5F fue 4,19 \pm 0,58 (n = 3, p < 0,05). Se encontraron resultados similares 5 horas tras la inyección de 5F (6,44 \pm 1,10, p < 0,02). El péptido inyectado tuvo inicialmente menos del 3% de ^{125}I libre por precipitación de TCA. Sin embargo, 1,5 horas después de la inyección, la radiactividad de ^{125}I libre en el plasma como un porcentaje de la radiactividad eluida total fue sustancialmente mayor para 5F siendo 26,9 \pm 9,4% y a las 5 horas 34,4 \pm 4,8%, reflejando la eliminación esperada de lipoproteínas y péptidos asociados a lipoproteínas. La velocidad de incremento en la radiactividad debida a yoduro libre de 1,5 a 5 horas fue menos que de inyección a 1,5 horas, sugiriendo posiblemente degradación final considerable del péptido en la actividad peritoneal.
\vskip1.000000\baselineskip
Supervivencia y morfología de desechos en el pienso o en dietas aterogénicas
Sólo murieron tres ratones por causas inexplicadas durante el curso de los estudios de dieta prolongados. Dos de los animales habían estado recibiendo MoAI y uno estuvo recibiendo péptido 5F. Al tiempo de la recogida de órganos, no se observaron diferencias morfológicas que resaltasen a simple vista entre los grupos. Los hígados se alargaron en todos los animales alimentados con la dieta aterogénica, pero ni los pesos del hígado ni el peso del hígado como porcentaje del peso corporal fueron diferentes entre grupos (Tabla 4). Todos los animales en la dieta aterogénica (incluyendo animales inyectados con PBS) tuvieron pesos corporales menores que los controles alimentados con pienso (Tabla 4).
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 4 Pesos corporales y hepáticos tras el tratamiento
6 
\vskip1.000000\baselineskip
Antigenicidad
Las muestras de sangre tomadas a la conclusión del periodo de inyección de 16 semanas se probaron por la presencia de anticuerpos contra los péptidos. No se detectó ningún anticuerpo contra péptido 5F o contra MoAI (datos no mostrados). Experimentos cruzados, donde las placas de ELISA se cubrieron con péptidos o proteína que no se inyectó en las series de los animales, produjeron resultados esencialmente idénticos a aquellos en la determinación directa de la presencia de anticuerpos (datos no mostrados).
\vskip1.000000\baselineskip
Caracterización de lipoproteínas y apolipoproteínas
Los valores de colesterol totales y los valores de colesterol de lipoproteínas según se determinan por el procedimiento de CLiP se presentan en la Tabla 3. La exactitud de los valores de colesterol totales se confirmó por un ensayo de colesterol manual (Colesterol 1000; Sigma, San Luís, MO) (datos no mostrados). No se vieron diferencias significativas en niveles de colesterol en la fracción total o en la fracción de lipoproteínas entre los grupos de tratamiento. Sin embargo, cuando las fracciones de lipoproteína se expresaron como un porcentaje del colesterol total (Tabla 5), el colesterol HDL comprendió un porcentaje significativamente menor en los grupos de 5F y de MoAI comparados con el grupo de PBS.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 5 Niveles de colesterol totales y de lipoproteínas (mg/dl y porcentaje de colesterol total) después de 16 semanas de pienso o de dieta aterogénica
7
Interacción de Lipoproteínas de Ratón con Células de la Pared Arterial Humana
Los autores de la presente invención han descubierto recientemente que HDL normales inhiben tres etapas en la formación de LDL suavemente oxidado. Es esos estudios (véase, solicitud en trámite con el presente documento USSN 09/541,468, presentada el 31 de marzo, 2000) los autores de la presente invención demostraron que tratar HDL humana, in vitro con apo A-I o un péptido mimético de apo A-I (37pA) retiró moléculas iniciadoras de la LDL que incluyen HPODE y HPETE. Estas moléculas iniciadoras se requirieron para cocultivos de células de la pared arterial humana siendo capaces de oxidar LDL y para el LDL induciendo a las células de la pared celular a producir actividad quimiotáctica monocítica. Los autores de la presente invención demostraron también que después de inyección de apo A-I en ratones o de infusión en seres humanos, la LDL aislada de los ratones o de los voluntarios humanos después de inyección o de infusión de apo A-I era resistente a oxidación por células de la pared arterial humana y no indujeron actividad quimiotáctica monocítica en los cocultivos de células de la pared arterial. La figura 7 demuestra que HDL de los ratones en el presente estudio que se alimentaron con la dieta aterogénica y se inyectaron con PBS fallaron en inhibir la oxidación de LDL humanas (Figura 7A) y fallaron en inhibir actividad quimiotáctica de monocitos inducida por LDL (Figura 7B) en cocultivos de la pared arterial humana. En contraste, HDL de ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados diariamente con péptido 5F era de este modo efectiva en inhibir oxidación de LDL humanas y en evitar actividad quimiotáctica de monocitos inducida por LDL en los cocultivos como HDL humanas normales. La Figura 7 también muestra que LDL tomada de ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados diariamente con PBS se oxidó más fácilmente e indujo más fácilmente la actividad quimiotáctica de monocitos que la LDL tomada de ratones alimentados con la misma dieta pero inyectados con 20 \mug diariamente de péptido 5F. No se observó toxicidad en las células de la pared arterial humana tratadas con cualquiera de las lipoproteínas (datos no mostrados). Se obtuvieron resultados similares en dos o tres experimentos aparte (datos no mostrados).
\vskip1.000000\baselineskip
Formación de lesiones
Áreas transversales de lesiones promedio se presentan en la Figura 8. Como se esperaba, no se observó ninguna lesión en el grupo al que se dio pienso de ratones normal (datos no mostrados). Como se comunicó previamente (Paigen y col. (1990) Arteriosclerosis 10: 316-323), se observaron variaciones considerables en el área de lesiones en todos los grupos que reciben la dieta aterogénica. Sin embargo, los animales inyectados con 5F tuvieron área de lesiones promedio significativamente más baja que los animales inyectados con PBS, si se analizaron por prueba en dos dimensiones (p < 0,002) o por análisis de varianza con un factor en rangos (p < 0,001; determinado debido a la distribución no normal de las áreas de lesiones promedio). La inyección de MoAI no produjo ninguna diferencia en el área de lesiones comparada con la inyección de PBS, y el área de lesión fue significativamente mayor que en animales inyectados con 5F, tanto por prueba-t (p < 0,002) como por análisis de varianza con un factor en rangos (p < 0,001).
\vskip1.000000\baselineskip
Discusión
Los inventores demostraron previamente que los péptidos sintéticos que se diseñaron imitando el resto helicoidal anfipático de clase A fueron capaces de asociarse con fosfolípidos, y mostraron muchas propiedades biológicas similares al apo A-I humano (3, 8, 10, 14, 15, 20). Los autores de la presente invención han mostrado también que cuando estos péptidos se administran intravenosamente en animales, se encuentra que están asociados con lipoproteínas de plasma (11). Este estudio se diseñó para abordar la hipótesis de que un nuevo péptido, 5F, con afinidad lipídica teórica incrementada, poseería propiedades anti-aterogénicas.
Los estudios presentados aquí demostraron que este péptido 5F entró en el plasma después de inyección intraperitoneal y logró niveles en plasma que fueron aproximadamente comparables a MoAI, pero menos que apo A-I humana (Tabla 3 y Figura 6). El tiempo medio de eliminación en plasma de 5F fue más corto que bien el de la apo A-I de ratón o bien el de la apo A-I humana después de inyección peritoneal. Después de inyección la mayoría de 5F se encontró en la región de HDL (Figura 6), a pesar del hecho de que la preponderancia del colesterol circulante estuvo en las regiones de tamaño de VLDL, de tamaño de IDL y de tamaño de LDL en la dieta aterogénica.
Los niveles y distribuciones de colesterol en plasma no fueron significativamente diferentes entre los grupos inyectados en la dieta aterogénica (Tabla 5). Sin embargo, cuando las fracciones de lipoproteínas se expresaron como un porcentaje de colesterol total (Tabla 5), el HDL-colesterol comprendió un porcentaje significativamente más bajo en los grupos 5F y MoAI comparados con el grupo PBS.
La HDL normal inhibe tres etapas en la formación de LDL oxidada suavemente. Los autores de la presente invención demostraron que tratar LDL humana in vitro con apo A-I o con péptido mimético de apo A-I retiró moléculas iniciadoras de la LDL que incluyeron HPODE y HPETE. Estas moléculas iniciadoras se requirieron para que cocultivos de células de la pared arterial humana fueran capaces de oxidar LDL y para que la LDL indujera a las células de la pared arterial humana a producir actividad quimiotáctica monocítica (véase la solicitud en trámite junto con el presente documento USN 09/541,468, presentada el 31 de marzo, 2000). Los autores de la presente invención demostraron también que después de inyección de apo A-I en ratones o de infusión de apo A-I en seres humanos, la LDL aislada de ratones o de voluntarios humanos después de inyección/infusión de apo A-I fue resistente a oxidación por células de la pared arterial humana y no indujeron actividad quimiotáctica monocítica en los cocultivos de células de la pared arterial humana. En los presentes estudios, HDL de ratones que se alimentaron con la dieta aterogénica y se inyectaron con PBS falló inhibiendo la oxidación de LDL humanas (Figura 7A) y falló inhibiendo actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL (Figura 7B) en los cocultivos de pared arterial humana. En evidente contraposición, se encontró que HDL de ratones alimentados con la misma dieta aterogénica pero inyectados con péptido 5F fue tan efectiva en inhibir oxidación de LDL humanas y en evitar actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL en los cocultivos como lo fue HDL humana normal (Figura 7). LDL tomada de ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados con 5F fue rápidamente oxidada e indujo menos actividad quimiotáctica monocítica que LDL tomada de ratones alimentados con la misma dieta pero inyectados con PBS (Figura 7). Es posible que 5F interactuase con LDL en la circulación (bien antes o bien después de asociación con HDL) y retirase las moléculas iniciadoras necesarias para oxidación de LDL y la actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL en una manera similar a aquella descrita in vitro para un péptido relacionado, 37pA (solicitud en trámite junto con la presente USN 09/541,468, presentada el 31 de marzo, 2000).
Las respuestas in vitro de células de la pared arterial humana para HDL y LDL de ratones alimentados con la dieta aterogénica e inyectados con péptido 5F son consistentes con la acción protectora de 5F in vivo. A pesar de ello, niveles similares de colesterol total, LDL-colesterol, IDL+VLDL-colesterol, y HDL-colesterol inferiores como un porcentaje del colesterol total, los animales alimentados con la dieta aterogénica e inyectados con el péptido 5F tuvieron puntuaciones de lesiones significativamente inferiores (Figura 8). Estos resultados son algo análogos a aquellos de Shah y col. (Shah y col. (1998) Circulation 97: 780-785) quienes encontraron que, a pesar de la persistencia de hipercolesterolemia, apo A-I_{Milano} evitó la progresión de lesiones ateroscleróticas en ratones deficientes en apo E.
La razón de que la apo A-I humana se haya usado exitosamente evitando/reduciendo aterosclerosis en animales (Wilson y col. (1998) Arteriosclerosis 8: 737-741; Rubin y col. (1991) Nature 353: 265-267; Paszty y col. (1994) J. Clin. Invest. 94: 899-903; Plump y col. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 91: 9607-9611; Shah y col. (1998) Circulation 97: 780-785) pero la inyección de MoAI a una dosis de 50 \mug diariamente no hecha en estos estudios no está clara. Se ha mostrado que MoAI no forma complejos proteína:lípidos tan estables como lo hace apo A-I humana (Gong y col. (1994) Biochim. Biophys. Acta 1213: 335-342). HDL de ratón también ha mostrado ser más fácilmente desnaturalizada por clorhidrato de guanidina que HDL humana (Gong y col. (1994) Biochim. Biophys. Acta 1213: 335-342) sugiriendo que péptidos helicoidales anfipáticos podrían desplazar MoAI más fácilmente de HDL de ratón que apo A-I humana de HDL humana. Estas diferencias pueden o pueden no explicar porqué MoAI no redujo significativamente lesiones en este estudio. También puede ser que se requiera una dosis más alta de MoAI según las condiciones que emplean los autores de la presente invención. En cualquier caso, el péptido 5F fue altamente efectivo según estas condiciones y MoAI no lo fue.
El análisis de ELISA de plasma en la conclusión del protocolo de inyección indicó que los anticuerpos no se formaron contra el péptido 5F. Esto no fue sorprendente en que los péptidos asociados a lípidos no han mostrado producir anticuerpos, presumiblemente debido a que estos péptidos unen lípidos de tal manera que evitan la exposición de epitopes necesarios para facilitar una respuesta inmune (Muranishi (1997) J. Pharm. Soc. Japan 117: 394-404; Fricker y Drewer (1996) J. Peptide Sci. 2: 195-211).
Un estudio preliminar realizado por los autores de la presente invención sugirió que los ratones transgénicos que expresan un péptido helicoidal anfipático de clase A (37pA) con teóricamente menos afinidad lipídica que el péptido usado en este estudio pueden haber sido resistente a aterosclerosis (Garber y col. (1997) Circulation 96: I-490). El estudio actual sugiere que el péptido 5F probablemente tiene gran potencial para elucidar los mecanismos implicados en aterogénesis y también tiene potencial terapéutico.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo Comparativo 2
Eficacia de Péptidos D
Este ejemplo demuestra la eficacia de los péptidos D de la presente invención. Los cocultivos de pared aórtica humana se incubaron con medio solo (LDL, SIN NINGUNA CÉLULA o CÉLULAS, SIN LDL), LDL control de sujetos normales a 250 \mug/ml (LDL) y LDL más HDL control de células normales a 350 \mug/ml (+HDL). Se incubaron otros cocultivos con el LDL control conjuntamente con cantidades que varían (microgramos mostrados en la abcisa) bien de D-2F, o bien de L-2F (tercer panel desde la izquierda, 2F) o D-37-pA o L-37pA (panel final en la derecha, 37pA). Los datos representan promedio \pm Desviación Estándar de valores obtenidos a partir de cultivos cuadruplicados. Los valores para HDL o péptidos añadidos fueron todos significativamente diferentes de LDL solo (primer panel en la izquierda) al nivel de p < 0,01.
Los cocultivos se incubaron durante 4 horas a 37ºC en la presencia de LPDS al 10% produciendo LDL suavemente oxidado. Los sobrenadantes se descartaron después, los cocultivos se lavaron e incubaron con medio de cultivo sin suero o LPDS durante 4 horas adicionales. Este medio acondicionado se recogió y analizó para actividad quimiotáctica monocítica. Como se muestra en la Figura 9, tratar LDL con los péptidos D in vitro evita su oxidación por células de la pared arterial.
La Figura 10 demuestra que dar los péptidos D a ratones vuelve sus células rojas de la sangre resistentes a hemolisis (un fenómeno debido a la oxidación ya que puede evitarse con Vitamina E, datos no mostrados). Los grupos de ratones deficientes en receptor de LDL (n = 3) usados comúnmente como un modelo animal de formación de lesión aterosclerótica fueron administrados con los péptidos D o el vehículo de solución salina mediante sonda. A cada animal se administraron 100 \mul de solución salina, 100 \mug/100 \mul de péptido D-2F o péptido D-37pA. La sangre se recogió de seno retroorbital con anestesia suave 17n y 48 horas después. Las células rojas se separaron mediante centrifugación, se diluyeron a hematocrito del 10% con PBS y se incubaron a 37ºC con agitación suave. La alícuotas se eliminaron en los puntos temporales t = 0, 2, 6 y 18 horas, los sedimentos celulares se centrifugaron hacia abajo y se determinó la densidad óptica debida a la hemoglobina liberada.
La Figura 11 demuestra que administrar los péptidos D a ratones por sonda y después aislar sus LDL vuelve a las LDL resistentes a oxidación de células de la pared arterial según se mide por el bioensayo de quimiotaxis monocítica.
Otro experimento demostró que el D-péptido se absorbió desde el estómago y volvió a LDL incapaz de inducir actividad quimiotáctica monocítica en el modelo de cocultivo de células de la pared arterial humana de los autores de la presente invención mientras que el L-péptido de 2F no tiene esta propiedad. Se instiló bien solución salina o 2F sintetizado a partir de aminoácidos D o a partir de aminoácidos L en los estómagos de ratones por sonda (instilación en el estómago mediante tubo). Después de la sonda los ratones se sangraron y sus LDL se aislaron y se añadieron a los cocultivos de células de pared arterial humana. El D-péptido cuando se dio por sonda protegió las LDL como se evidencia por la quimiotaxis monocítica reducida inducida por las LDL tomadas de ratones que recibieron el péptido D-2F (D2FLDL) (sintetizado a partir de aminoácidos D), mientras que LDL tomado de ratones que recibió el L-2F (sintetizado a partir de los aminoácidos L naturales) (L2FLDL) indujo fácilmente quimiotaxis monocítica (véase Figura 12).
2F sintetizado a partir de aminoácidos L cuando se presentó a LDL in vitro fue tan efectivo como el 2F sintetizado a partir de los aminoácidos D (véase Figura 9). Así, la diferencia en los resultados con este experimento donde los péptidos se dieron in vivo por sonda indica que el 2F sintetizado a partir de aminoácidos D debe haberse absorbido intacto desde el estómago mientras que el péptido 2F sintetizado a partir de los aminoácidos L naturales debe haber sido degradado en el estómago en el procedimiento de digestión y/o en el plasma como plantearon la hipótesis los autores de la presente invención de que sería el caso. En otros estudios los autores de la presente invención no han visto evidencia de formación de anticuerpos contra el péptido D-2F.
La Figura 13A y la Figura 13B son dos gráficas de experimentos en las que se dio a ratones que tienen desactivado el receptor de LDL 50 microgramos de D-5F por sonda. Los animales se sangraron 1,5, 3 o 6 horas más tarde y se aislaron sus HDL, LDL y VLDL/IDL. Como se indica en la gráfica, HDL tomadas 1,5 horas después de la sonda no protegieron LDL control (cont.) de modificación pero el HDL tomado después de 3 horas y ligeramente menos después de 6 horas tras sonda fueron tan protectores contra producción de actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL por células de la pared arterial humana como un HDL control (Figura 13A). En la otra gráfica (Figura 13B), 1,5, 3, o 6 horas después de 50 microgramos de D-5F por sonda se aislaron LDL de ratón y VLDL/IDL de ratón. En el panel izquierdo se añadió una LDL control a las células de la pared arterial humana sin o con un HDL control y se midió la actividad quimiotáctica monocítica producida por las células de la pared arterial. En el panel medio se añadió la LDL de ratón tomada después de 1,5, 5 ó 6 horas de sonda de 50 microgramos de D-5F a las células de la pared arterial. Los resultados indican que después de 3 horas y después de 6 horas la LDL indujo significativamente menos actividad quimiotáctica monocítica. En el lado derecho de la gráfica se añadió la fracción de VLDL/IDL de lipoproteínas (V/I LDL) y según muestra el punto temporal de 3 horas indujo significativamente menos actividad quimiotáctica de monocitos.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo y Ejemplo Comparativo 3
Efectos de Hidrofobicidad Creciente en las Propiedades Físico-Químicas y Biológicas de Un Péptido Helicoidal Anfipático de Clase A Lista de Abreviaturas
Ac_{2}O, anhídrido acético, apo A-I, apolipoproteína A; BSA, seroalbúmina bovina; CAD, enfermedad cardiaca coronaria; CD, dicroismo circular; DMPC, dimiristoil-fosfatidilcolina; DiPoPE, Di (16:1) palmitoleoil-fosfatidiletanolamina; DSC, Calorimetría de Exploración Diferencial; EDTA; ácido etileno-diamina-tetraacético; EPC, fosfatidilcolina de huevo; FMOC, Fluorinilmetoxicarbonilo; Gdn HCl, Clorhidrato de Guanidina; HAEC, células endoteliales humanas aórticas; HASMC, células musculares lisas aórticas humanas; HBTU, hexafluorofosfato de 2-(H-benzotriazol-1-il)-1,1,3,3-tetrametiluronio; HDL, lipoproteína de alta densidad; HPLC, Cromatografía Líquida de Alta Resolución; LCAT, lecitina-colesterol aciltransferasa; MCP-1, proteína-1 quimiotáctica de monocitos; M-CSF, factor estimulador de colonias de macrófagos; MLV vesículas multilamelares; NMM, N-metilmorfolina; PBS, solución salina tamponada con fosfato; PIPES, piperazina-N,N'-bis[ácido 2-etanosulfónico]; RP-HPLC, cromatografía líquida de alta realización en fase reversa; TFA, ácido trifluoroacético.
\vskip1.000000\baselineskip
Resumen
Los autores de la presente invención muestran que un péptido 5F anfipático de clase A con anfipaticidad incrementada protegió ratones de aterosclerosis inducida por dieta. Los autores de la presente invención han examinado ahora los efectos de incrementar la hidrofobicidad de una serie de péptidos anfipáticos de clase A homólogos, incluyendo 5F, en propiedades físicas y funcionales relacionadas con inhibición de aterosclerosis reemplazando sistemáticamente los aminoácidos no polares existentes con fenilalanina. Los péptidos, basados en la secuencia Ac-D-W-L-K-A-F-Y-D-K-V-A-E-K-L-K-E-A-F-NH_{2} (SEQ ID N.º: 1, Ac-18A-NH_{2} o 2F) fueron: 3F^{3}(Ac-F^{3}18A-NH_{2}), 3F^{14}(Ac-F^{14}18A-NH_{2}), 4F(Ac-F^{3,14}18A-NH_{2}), SF(Ac-F^{11,14,17}18A-NH_{2}), 6F(Ac-F^{10,11,14,17}18A-NH_{2}) y 7F(Ac-F^{3,10,11,14,17}18A-NH_{2}). Medidas de solubilidad acuosa, tiempo de retención de HPLC, presión de exclusión para penetración dentro de una monocapa de PC de huevo, y velocidades de solubilización de PC de huevo revelaron un incremento abrupto en la hidrofobicidad entre péptidos 4F y 5F; esto se acompañó por capacidad incrementada para asociarse con fosfolípidos. Los péptidos 6F y 7F fueron menos efectivos, indicando un límite para hidrofobicidad incrementada para promover interacción lipídica en estos péptidos. A pesar de este marcado incremento en afinidad lipídica, estos péptidos fueron menos efectivos que apo A-I en activar la enzima plasmática, lecitina: colesterol-acetil-transferasa (LCAT) con 5F siendo la mejor activando LCAT (80% de la apo A-I). Los péptidos 4F, 5F y 6F fueron igualmente potentes en inhibir actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL. Estos estudios sugieren que se requiere un equilibrio apropiado entre interacciones péptido-péptido y péptido-lípido para actividad biológica óptima de péptidos anfipáticos. Estos estudios proporcionan una base lógica para el diseño de imitadores de apo A-I pequeños con potencia incrementada para inhibición de aterosclerosis.
\vskip1.000000\baselineskip
Introducción
Los niveles plasmáticos de lipoproteínas de alta densidad (HDL) y de apolipoproteína A-I (apo A-I), el constituyente proteico principal de HDL, están inversamente correlacionados con enfermedad arterial coronaria (CAD) (Sprecher y col. (1993) Arterioscler. Thromb. 13: 495-504; Phillips y col. (1993) Circulation 88: 2762-2770). La apo A-I humana es una proteína de 243 residuos, que contiene ocho repeticiones anfipáticas 22-meras, la mayoría de las cuales han estado mostrando poseer el resto de Clase A (Segrest y col. (1990) Proteins 8: 103-117; Anantharamaiah y col. (1993) páginas 109-142 En: The Anphipathic Helix (Epand, R.M., ed.), CRC Press, Boca Ratón, FL). Las héluces anfipáticas de calse A tienen una distribución de cargas característica; tienen un agrupamiento de aminoácidos cargados positivamente en el límite polar/no polar de la hélice \alpha y residuos cargados negativamente en el centro de la cara polar (Segrest y col. (1990) Proteins 8: 103-117; Anantharamaiah y col. (1993) páginas 109-142 En: The Anphipathic Helix (Epand, R.M., ed.), CRC Press, Boca Ratón, FL; Segrest y col. (1992) J. Lipid Res. 33: 141-66). Este resto estructural secundario único se ha postulado para ser responsable de la propiedad de asociación con lípidos de apo A-I (Segrest y col. (1990) Proteins 8: 103-117). Muchos estudios con análogos sintéticos de hélices anfipáticas de Clase A han respaldado este concepto (Segrest y col. (1994) Adv. Prot. Chem., 45: 303-369; Broulliette y Anantharamaiah (1995) Biochim. Biophys. Acta 1256: 103-129). Recientemente, los autores de la presente invención han sintetizado cada una de las hélices 22-meras teóricas presentes en apo A-I humana como monómeros y dímeros en tándem y mostrado que las hélices anfipáticas N-terminales y C-terminales poseen la capacidad de asociación con lípidos máxima (Mishra y col. (1998) Biochemistry 37: 10313-10324). Los estudios de estructura cristalina de rayos X y los estudios de modelización moleculares del exón 4 (residuos 44-243) de apo A-I sugieren que un estado autoasociado de la apo A-I entera es necesario para asociación lipídica (Borran y col. (1999) Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 94: 12291-12296; Segrest y col. (2000) Current Opin. Lipidol. 11: 105-115). En este modelo, se disponen dos moléculas de apo A-I en forma de un dímero de la cabeza a la cola con los monómeros interaccionando entre sí unos con otros estabilizando la estructura asociada a lípidos de apo A-I.
La evidencia experimental sugiere que el efecto protector de apo A-I y HDL contra enfermedad arterial coronaria podría deberse a su papel en "transporte de colesterol inverso" (Fielding y Fielding (1995) J. Lipid Res. 36: 211-228; Glomset (1968) J. Lipid Res. 9: 155-167). El transporte de colesterol inverso es la suma de tres etapas que implican HDL/apo A-I, a) flujo de salida de colesterol a partir de células xx (Johnson y col. (1991) Biochim. Biophys. Acta. 1085: 273-298; Oram y Yokohama (1996) J. Lipid Res. 37: 2473-2491), b) esterificación por LCAT de colesterol asociado a HDL (Fielding y col. (1972) Biochem. Biophys. Res. Comm. 46: 1493-1498; Jonas (1991) Biochim. Biophys. Acta. 1084: 205-220) y c) administración mediada por receptor de éster de colesterol al hígado (Kreiger (1999) Ann. Rev. Biochem. 68: 523-558). Los estudios in vivo han mostrado que tanto apo A-I humana como un péptido helicoidal anfipático sistémico de clase A inhiben aterosclerosis sin alterar niveles de colesterol plasmático por un mecanismo que es independiente de transporte de colesterol inverso (Shah y col. (1998) Circulation 97: 780-785). Recientemente, los autores de la presente invención han sugerido que la inhibición de quimiotaxis monocítica inducida por LDL en células de la pared arterial ha estado sugiriendo ser otro papel principal jugado por apo A-I y HDL en evitar aterosclerosis (Navab y col. (2000) J. Lipid Res.: 41: 1481-1494; Navab y col. (2000) J. Lipid Res.: 41: 1495-1508).
Un péptido que ha mostrado imitar las propiedades de la apo A-I humana, 18A, ha estado mostrando también poseer capacidades de activar LCAT (Anantharamaiah y col. (1990) Arteriosclerosis 10: 95-105; Epand y col. (1987) J. Biol. Chem. 262: 9389-9396) y capacidades de flujo de salida de colesterol (Davidson y col. (1994) J. Biol. Chem. 269: 22975-22982; Yancey y col. (1995) Biochemistry, 34: 7955-7965). Se mostró la neutralización de las cargas terminales de 18A formando Ac-18A-NH_{2} incrementando su afinidad lipídica, y actividades biológicas (Yancey y col. (1995) Biochemistry, 34: 7955-7965; Venkatachalapathi y col. (1993) Proteins: Structure, Funtion and Genetics. 15: 349-359). Se han hecho varias modificaciones de la secuencia de aminoácidos de esta molécula "parental", 18A, en un intento de incrementar sus propiedades que imitan apo A-I (Brouillette y Anantharamaiah (1995) Biochim. Biophys. Acta 1256: 103-1291; Mishra y col. (1994) J. Biol. Chem. 269: 7185-7191; Mishra y col. (1995) J. Biol. Chem. 270: 1602-1611). Nuestros estudios anteriores (Brouillette y Anantharamaiah (1995) Biochim. Biophys. Acta 1256: 103-1291; Epand y col. (1987) J. Biol. Chem. 262: 9389-9396) han mostrado que un incremento en la hidrofobicidad de este péptido incrementa su afinidad por lípidos y las propiedades que imitan a apo A-I. Un péptido 5F sintético, un análogo de Ac-18A-NH_{2} con anfipaticidad incrementada ha mostrado inhibir aterosclerosis inducida por dieta en ratones (véanse, por ejemplo, Ejemplos 1 y 2). Sin embargo, el péptido 2F no inhibió significativamente formación de lesiones inducidas por dieta en ratones C57 CL6 (Garber y col. (1999) Circulation 100: I538). Un estudio de péptidos diméricos de 18A indicó que la asociación péptido-péptido incrementada disminuyó la asociación péptido-lípido (Mishra y col. (1995) J. Biol. Chem. 270: 1602-1611). Para determinar el máximo grado al que la afinidad lipídica del péptido 18A puede incrementarse con un efecto positivo en las propiedades de asociación con lípidos y de imitación de apo A-I, los autores de la presente invención diseñaron una serie homóloga de péptidos en la que los residuos de Phe estuvieron significativamente incrementados sustituyendo aminoácidos hidrófobos tales como, Leu y Ala en la cara no polar con Phe. De acuerdo con la escala de hidrofobicidad determinada experimentalmente de Wimley y White (Wimley y White (1996) Nature Struc. Biol. 3: 842-848), Trp y Phe son los aminoácidos más hidrófobos en el sentido de que ellos presentan la mayor división dentro de la membrana de la fase acuosa. Los autores de la presente invención eligieron usar Phe para incrementar la hidrofobicidad del péptido debido a que es el aminoácido hidrófobo más resistente en los péptidos activos de membrana y los péptidos que contienen Phe pueden sintetizarse más fácilmente que los péptidos que contienen Trp. Se estudiaron los efectos de este incremento en hidrofobicidad sobre las propiedades físicas y sobre las propiedades de asociación con lípidos, y sobre las propiedades biológicas de imitación de apo A-I tales como activación de LCAT e inhibición de actividades quimiotácticas
inducidas por LDL.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimientos experimentales Síntesis de péptidos
Los péptidos se sintetizaron por el procedimiento en fase sólida usando un sintetizador de fase sólida automatizado (PS3 Protein Technologies, Wonurn, MA). Los FMOC-aminoácidos se acoplaron a una resina de amida de pista de patinaje [0,536 mEq/g], (Peninsula Laboratorios, Inc. Belmont, CA) en la presencia de HTBU y NMM, y se acetilaron con anhídrido acético en el extremo N-terminal. Los péptidos se escindieron del soporte sólido usando TFA al 70% en diclorometano en presencia de anisol (al 1%), mercaptoetanol (al 0,1%) y triptófano (al 20% en peso de la resina peptídica) y se purificaron en una columna de HPLC de fase reversa (RP-HPLC) VYDAC C-4 (22 mm x 25 cm, tamaño de partícula 10 \mum) usando un gradiente de acetonitrilo del 25% al 58% en agua conteniendo TFA al 0,1% en 66 minutos con una velocidad de flujo de 4,8 ml/minuto. La pureza de los péptidos se verificó por RP-HPLC analítica usando una columna C_{18} (VYDAC, 4,6 mm x 25 cm, 5 \muM) y un gradiente de acetonitrilo-agua (en presencia de TFA al 0,1%) lineal del 25% al 58% en 33 minutos, y por el análisis espectral de masas.
\vskip1.000000\baselineskip
Dicroismo circular
Los espectros de CD se registraron en un espectropolarímetro AVIV 62DS como se describe en Mishra y col. (1994) J. Biol. Chem. 269: 7185-7191. Brevemente, se obtuvieron espectros usando una célula con 0,1 cm de longitud de recorrido, y se tomaron medidas cada nm de 260 nm a 190 nm a 25ºC. Todos los espectros de CD se promediaron en su señal añadiendo cuatro exploraciones, se corrigieron a partir de línea base y se suavizaron. Las soluciones de péptidos en PBS, pH 7,4, se usaron a una concentración de 11 \muM. Los complejos péptido-DMPC (1:20 mol:mol) se usaron para determinar el efecto de unión de lípidos en la helicidad de estos péptidos. Estos complejos se prepararon añadiendo el volumen apropiado de la solución peptídico de las vesículas multilamelares de DMPC. Las vesículas multilamelares de DMPC se prepararon como sigue: se disolvió una cantidad conocida de lípidos en etanol y el disolvente se eliminó evaporando lentamente bajo una corriente fina de nitrógeno. El disolvente residual se eliminó almacenando la película lipídica a vacío durante toda una noche. Se añadió un volumen apropiado de PBS, pH 7,4 a la película de lípidos fina dando la concentración final requerida de DMPC. Los complejos péptido-lípido se prepararon añadiendo el volumen requerido de soluciones peptídicas dando una proporción molar péptido:lípido de 20:1. Debido a la pobre solubilidad de estos péptidos, se usó una concentración peptídica de 0,11 \muM. La elipticidad del residuo promedio, [\theta]_{MRE} (grados \cdot cm^{2} \cdot dmol^{-1}) a 222 nm se calculó usando la siguiente ecuación:
[\theta]_{MRE} = MRW[\theta]/10cl
donde, MRW es el peso de residuo promedio del péptido, \theta es la elipticidad observada en grados, c es la concentración del péptido en g/ml, y 1 es la longitud de recorrido de la célula en centímetros. El porcentaje de helicidad del péptido se estimó a partir de la siguiente ecuación como se describe por Morrisett y col. (1973) Biochemistry, 12: 1290-1299.
% de helicidad \alpha = ([\theta]_{222} + 3.000)/(36.000 + 3.000)
en la que, [\theta]_{222} es la elipticidad del residuo promedio a 222 nm.
\vskip1.000000\baselineskip
Calorimetría de Exploración Diferencial
Los estudios de DSC se llevaron a cabo usando un calorímetro de rastreo Microcal MC-2 (Microcal, Inc., Amerst, MA) a una velocidad de rastreo de 20º h^{-1} para DMPC, y 37ºC h^{-1} para DiPoPE, usando el procedimiento descrito por Mishra y col. (1994) J. Biol. Chem. 269: 7185-7191. Se disolvió en cloroformo una cantidad conocida de fosfolípido. Para un grupo de muestras, se disolvió péptido en metanol y se añadió a una solución de DiPoPE en cloroformo/metanol (2:1, v:v). Para ambas, las muestras de lípidos puros y las soluciones orgánicas de lípido y péptido, el disolvente se eliminó con una corriente lenta de nitrógeno. El disolvente residual se retiró en agitación. Se añadió tampón (PBS, pH 7,4 para DMPC o PIPES 20 nM, EDTA 1 mM, NaCl 150 mM y NaN_{3} al 0,002%, pH 7,4, para DiPoPE) solo o una concentración conocida de solución peptídica en tampón dando una proporción molar lípido/péptido a la película secada y se hidrató agitando a temperatura ambiente durante 30 minutos. Para DMPC, se tomaron cuatro exploraciones consecutivas con un tiempo de equilibrio de 60 minutos entre exploraciones. Los termogramas de DSC se analizaron usando el software proporcionado por MicroCal Inc., Amherts, MA, y Origin, versión 5.0.
\vskip1.000000\baselineskip
Medidas de Presión de Superficie
Las medidas de presión de exclusión en monocapa dan la afinidad de los péptidos por una interfase lípido-agua; se siguió el procedimiento de Phillips y Krebs (Phillips y Krebs (1986) Methods Enzymol. 128: 387-403; Ibda y col. (1989) Biochim. Biophys. Acta 1004: 300-308). Se diseminó una monocapa insoluble de fosfatidilcolina de huevo (EPC) en la interfase aire-agua en una placa de Teflón a temperatura ambiente dando una presión de superficie inicial (\pi_{i}) en el intervalo de 0,00005-0,0045 N/cm (5-45 dinas/cm). Una solución de péptidos en PBS conteniendo Gdn. HCl 1,5 M se inyectó cuidadosamente a la subfase dando una concentración final de 50 \mug/dl. El Gdn. HCl se diluyó en la subfase a una concentración final de \leq 1 mM permitiendo a los péptidos renaturalizarse. La subfase se agitó continuamente y el incremento en presión de superficie de monocapa de EPC (\Delta\pi) se registró hasta que se obtuvo un valor de estado estacionario. El valor de la presión de superficie inicial (\pi_{i}) al que los péptidos no penetran más en la monocapa de EYPC es decir la presión de exclusión (\pi_{e}) se calculó extrapolando el ajuste de regresión lineal de \pi_{i} frente a \Delta\pi para An = 0 N/cm (0 dinas/cm).
\vskip1.000000\baselineskip
Medidas de Dispersión de Luz en Ángulo Recto
La asociación de estos péptidos con fosfatidilcolina de huevo se determinó siguiendo la disolución de vesículas multilamelares de EPC (MLV) por suspensión de luz en ángulo recto usando un espectrofluorímetro de cuentas de fotón SLM 8000C como se describe en (Mishra y col. (1994) J. Biol. Chem. 269: 7185-7191). Se preparó EPC MLV evaporando una solución de EPC (Avanti Polar, AL) en nitrógeno e hidratando la película lipídica con solución salina tamponada con fosfato (pH 7,4). La muestra que contiene EPC 105 \muM y una cantidad equimolecular de péptido se mantuvo a 25ºC y se agitó continuamente. La eliminación de turbidez se controló durante 30 minutos. La disolución completa de vesículas de EPC se logró por adición de Tritón X-100 a una concentración final de 1 mM.
\vskip1.000000\baselineskip
Purificación de Lecitina:Aciltransferasa de Colesterol (LCAT)
LCAT se aisló a partir de plasma normolipidémico recién preparado por el procedimiento de Albers y col. (1986) Methods Enzymol. 129: 763-783, con algunas modificaciones. La densidad del plasma se ajustó a 1,21 g/ml y se centrifugó a 175.000 g durante 24 horas. La fracción que contiene LCAT se sometió a cromatografía de Affi-Gel Blue seguida por cromatografía DE-52. LCAT se eluyó a partir de la columna de DE-52 usando un gradiente de NaCl de 75 a 200 mM en tampón de Tris (10 mM, pH 7,6). SDS-PAGE mostró pureza mayor del 90% del enzima sin ninguna contaminación humana de apo A-I.
\vskip1.000000\baselineskip
Ensayo de actividad de LCAT
Se preparó el sustrato sonicando PC de huevo/colesterol (90:20 mol/mol) conteniendo cantidades traza de 7\alpha-^{3}H colesterol en un sonicador Branson 250 durante 12 minutos obteniéndose vesículas unilamelares pequeñas. El sustrato (50 \mul) se incubó con 5 \mug de péptido o con apo A-I humana y 50 \mul de BSA (40 \mug/ml) durante 1 hora 37ºC. El volumen total se llevó hasta 150 \mul. Después de incubar durante 1 hora, se añadieron 100 \mul de LCAT y se incubaron durante 1 hora a 37ºC y la reacción se desactivó trasladando 10 \mul en una tira de sílice. Se separaron colesterol y éster de colesterilo por cromatografía en capa fina de la tira de sílice en mezcla hexano:cloroformo (2:1 v/v). Se visualizaron estándares de colesterol y oleato de colesterilo sumergiendo la placa de TLC en un 3% de acetato cúprico, tampón de ácido fosfórico al 8% y calentándola. Las posiciones de los estándares se usaron para cortar la tira en dos y las dos partes se contaron en fluido de centelleo en un Packard Tri Carb 4530. Todas las reacciones se hicieron por triplicado. La activación de LCAT por los péptidos se expresa como porcentaje de la activación total por apo A-I.
\vskip1.000000\baselineskip
Electroforesis
Se llevó a cabo SDS-PAGE no desnaturalizante, y usando el procedimiento de Laemmli (1970) Nature 227: 680-685. Se usaron los geles Premade Novex y el gel se tiñó con azul de Coomasie para identificar las bandas de
proteína.
\newpage
Actividad Quimiotáctica Monocítica inducida por LDL
Se llevaron a cabo cocultivos de células de la pared arterial humana, aislamiento de monocitos, aislamiento de lipoproteínas por ultracentrifugación a partir del plasma de donantes humanos normales o a partir del plasma de ratón por FPLC, y determinación de hidroperóxidos de lípidos y actividad quimiotáctica monocítica como se describe por Navab y col. (Navab y col. (1991) J. Clin. Invest. 88: 2039-2046; Navab y col. (1977) J. Clin. Invest. 99: 2005-2019). Brevemente, LDL y HDL se aislaron a partir de plasma humano por el procedimiento de Havel y col. (Havel y col. (1955) J. Clin. Invest. 43: 1345-1353). Las células endoteliales aórticas humanas (HAEC) y las células musculares lisas humanas (HASMC) se aislaron como se describe por Navab y col. (1991) J. Clin. Invest. 88: 2039-2046. Las placas de microvaloración se trataron con gelatina al 0,1% a 37ºC durante toda una noche. Se añadieron HASM a una densidad confluyente de 1 x 10^{5} células/cm^{2}. Las células se cultivaron durante dos días, tiempo al que habían cubierto la superficie completa del pocillo y habían producido una cantidad sustancial de matriz extracelular. Se añadieron HAEC subsiguientemente a 2 x 10^{5} células/cm^{2} y se dejaron crecer, formando una monocapa completa de HAEC confluyentes en dos días. En todos los experimentos, las HAEC y las HASMC autólogas (del mismo donante) se usaron a niveles de paso de cuatro a seis. Los monocitos se aislaron de sangre de donantes normales como se describe por Fogelman y col. (1988) J. Lipid Res. 29: 1243-1247. Los cocultivos se trataron con LDL nativo (250 \mug proteína/ml) de presencia de HDL (350 \mug proteína/ml) o péptidos durante 8 horas. Los cocultivos se lavaron después y se incubaron con medio 199 durante unas 8 horas adicionales. Los sobrenadantes de cocultivos resultantes se ensayaron por actividad quimiotáctica monocítica como se describe por Navab y col. (1997) J. Clin. Invest., 99: 2005-2019.
\vskip1.000000\baselineskip
Resultados Análisis de los péptidos
La Tabla 6 muestra las secuencias de los diversos análogos de 18A que se sintetizaron. El péptido Ac-18A-NH_{2}, que tiene dos residuos de Phe en las posiciones 6 y 18 (cerca de los residuos de Lys de la interfase) se refiere como 2F. Se sintetizaron dos péptidos 3F, 3F^{3} o 3F^{4}, donde Leu en posición 3 y 14 (ambos presentes en el centro de la fase no polar) se reemplazan por Phe, respectivamente. El péptido 4F tiene dos residuos de Phe en el centro de la fase no polar lo que es el resultado de sustitución de dos residuos de Leu centrales. Las sustituciones en los péptidos (3F a 7F) se muestran en la Tabla 6. Con un incremento en el número de residuos de Phe la hidrofobicidad teórica por residuo en la fase no polar se incrementa desde 2,05 para el péptido, 2F, hasta 3, 15 para 7F.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 6 Modificaciones de Ac-18A-NH_{2} para incrementar hidrofobicidad
8 
\newpage
Los péptidos se purificaron en una columna Vydac C_{4} por HPLC de fase reversa (RP-HPLC) usando agua (con ácido trlifluoroacético al 0,1%) y acetonitrilo (ácido trlifluoroacético al 0,1%). La pureza y los tiempos de retención de los péptidos se determinaron en una columna analítica Vydac C_{18} usando un gradiente de acetonitrilo al 25%-28% en agua conteniendo TFA al 0,1%. La pureza de estos péptidos se confirmó también por espectrometría de masas. La masa estuvo de acuerdo con el peso molecular calculado. Los tiempos de retención de los péptidos se enumeran en la Tabla 7. Aunque tanto los péptidos 3F como los péptidos 4F tienen residuos Phe adicionales comparados con 2F, los tiempos de retención de estos péptidos en la columna C_{18} no son muy diferentes (\sim 22 min.). Un incremento repentino en el tiempo de retención es patente con 5F, 6F y 7F (-26 minutos). Con números crecientes de los residuos de Phe, la solubilidad de estos péptidos en PBS disminuye. Como se puede ver a partir de la Tabla 7, las solubilidades de 2F, 3F^{3}, 3F^{14} y 4F (1, 25 a 1,4 mg/ml) son significativamente más altas que aquellas de 5F, 6F y 7F (0,03 a 0,1 mg/ml).
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 7 Propiedades Físicas de los Péptidos F
10 
\vskip1.000000\baselineskip
La autoasociación de estos péptidos anfipáticos se examinó por electroforesis en gel de poliacrilamida no desnaturalizante (PAGE). La Figura 14 mostró la movilidad de 2F tanto en geles desnaturalizantes (Figura 14A) como en geles no desnaturalizantes (14B). El peso molecular de 2F es 2242 y puede verse como una banda única en el gel SDS (Figura 14A) que se mueve ligeramente más bajo que el estándar de peso molecular más bajo (3,5-2,5 kDa). Sin embargo, según condiciones no desnaturalizantes forma agregados en una manera dependiente de concentración como se ve en la Figura 14B. A concentraciones más bajas (100 \mug/ml) forma agregados de dos tamaños mientras que a una concentración mayor (250 \mug/ml) sólo se observan los agregados más grandes (Figura 14B). Todos los otros péptidos estudiados presentaron también agregación en condiciones no desnaturalizantes sugiriendo que los péptidos poseen una fuerte tendencia a la autoasociación.
\vskip1.000000\baselineskip
Dicroismo Circular
La estructura secundaria de los péptidos se determinó por espectroscopía de dicroismo circular. La tabla 8 mostró el porcentaje de helicidad de los péptidos en PBS y en la presencia de DMPC. En PBS, los homólogos 2F, 4F, 5F, 6F, 7F tienen un porcentaje de helicidad más alto que 3F^{3} y 3F^{14} (Tabla 8). Dado que 5F, 6F y 7F son solubles en poca cantidad en PBS, los estudios de CD se llevaron a cabo usando 11 \muM de los péptidos (una concentración a la que todos ellos son solubles). El péptido 2F mostró helicidad al 55%, comparable a 5F en solución. Tanto 6F como 7F fueron ligeramente más helicoidales (al 67% y al 58% respectivamente) mientras que 4F lo fue ligeramente menos (45%). Ambos péptidos 3F fueron mucho menos (= 20%) helicoidales. Sin embargo, la unión a DMPC incrementó considerablemente la helicidad de todos los péptidos salvo para 6F (Tabla 8). En un ambiente lipídico, 2F, 5F y 7F mostraron un contenido helicoidal alto (68% a 76%). Aunque los péptidos 3F^{3} y 3F^{14} tuvieron un contenido helicoidal muy pequeño en PBS, hubo un incremento significativo en helicidad en un ambiente lipídico, desde aproximadamente el 22% al 42% para 3F^{3}, y desde el 19% hasta el 55% para 3F^{14}. La helicidad de los péptidos 6F y 4F no cambió apreciablemente en la presencia de lípidos. Sin embargo, estos péptidos fueron aún menos helicoidales que los péptidos 2F y 5F. Los resultados de CD sugieren que no hay cambio sistemático en las helicidades de los péptidos con sustitución creciente por Phe; los péptidos 2F y 5F presentaron helicidad máxima en solución y en la presencia de fosfolípidos.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 8 Helicidades de los péptidos F en ambientes acuosos y lipídicos
12 
\vskip1.000000\baselineskip
Estudios de DSC con DMPC y DiPoPE
El efecto de estos análogos de 18A en la transición de fusión en cadena de vesículas multilamelares de DMPC se estudió por DSC usando mezclas péptido-lipídicas a una proporción molar de 100:1 lípidos/péptidos. La Tabla 9 muestra las temperaturas de transición y las entalpías de la transición de fusión en cadena de DMPC en la presencia y en la ausencia de péptidos. El lípido puro sufre una pretransición a 13ºC y una transición de fusión de cadena principal a 23ºC. La adición de los péptidos a DMPC dio como resultado un ensanchamiento del gel a la transición líquido-cristalina y a una disminución de la entalpía de transición (Tabla 9). La presentación no se vio en presencia de cualquiera de los péptidos. Entre los péptidos estudiados, 2F, 3F^{3}, 5F y 6F redujeron la entalpía de transición al grado máximo (Tabla 9). Ninguno de los péptidos cambió la temperatura de transición en más de 0,2ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 9 Efecto de los F-péptidos en los parámetros de transición de fusión de cadena de DMPC
13
El cambio en la bicapa a temperatura de transición de fase hexagonal (T_{H}) se ha usado evaluando los efectos de los péptidos sobre las propiedades de curvatura intrínsecas de fosfolípidos (Epand (1998) Biochim. Biophys. Acta, 1376: 356-368). Se ha mostrado previamente que 2F eleva T_{H} de DiPoPE (Tytler y col. (1993) J. Biol. Chem. 268: 22112-22118). En el estudio actual los autores de la presente invención prepararon las mezclas péptido-lipídicas de dos maneras. Una fue añadir el péptido en disolvente orgánico al lípido en disolvente orgánico seguido por depositar el material como una película e hidratar subsiguientemente con tampón. En el otro procedimiento, el péptido y el lípido se mezclaron después de que cada uno se hidratara por separado. Si la mezcla llega al equilibrio antes del análisis de DSC, no debería importar como el péptido y el lípido se mezclaron originalmente. Sin embargo, los sistemas de membrana se pueden equilibrar lentamente, caso en el que puede haber más péptido en el lípido cuando se incorpora a altas concentraciones dentro de la película lipídica. En general los resultados de ambos procedimientos de preparación de la muestra son similares (no mostrados) pero el cambio en T_{H} tiende a ser más grande para muestras en las que el péptido se incorporó en una película compuesta de lípido y péptido. La variación de la T_{H} con fracción molar de péptido se muestra para diversos péptidos y apo A-I (Figura 15). Se observa un incremento lineal en T_{H} para 2F y 5F mientras 4F se comporta más como apo A-I en que se observa un incremento más rápido a concentraciones peptídicas más bajas. Por otro lado, los análogos 3F así como 6F y 7F no afectan significativamente TH.
\vskip1.000000\baselineskip
Interacción de péptidos con monocapas de fosfolípidos
La presión de exclusión de monocapas, \pi_{e}, es la presión de superficie a la que los péptidos no son más capaces de penetrar una monocapa de EPC. El valor de \pi_{e}, refleja la afinidad lipídica teórica del péptido. La presión de exclusión de los péptidos F se incrementó con número creciente de los residuos de Phe (Tabla 7). Todos los péptidos estudiados aquí tuvieron presiones de exclusión más altas que apo A-I y el péptido parental 18A. El valor de \pi_{e} se incrementó gradualmente desde 2F hasta 4F (0,00038 a 0,0004 N/cm (38 a 40 dinas/cm)). Este es el intervalo visto para 37A, una repetición en tándem de 18A interrumpida por una prolina. El valor de la presión de exclusión se incrementa significativamente para 5F, 6F y 7F (0,0004 a 0,00045 N/cm (40 a 45 dinas/cm)). Es patente que los homólogos de 5F, 6F y 7F poseen una capacidad similar para interaccionar con monocapas de EPC, como se determina por la presión de exclusión. Es interesante que los tiempos de retención de HPLC y las presiones de exclusión de monocapa para los péptidos F enumerados en Tabla 7 muestren tendencias paralelas, con un incremento brusco entre 4F y 5F.
\vskip1.000000\baselineskip
Dispersión de Luz en Ángulo Recto
Como se puede ver en la Figura 16, todos los péptidos son capaces de eliminar EPC MLV, menos apo A-I, que no elimina EPC MLV. Los dos péptidos homólogos 3F fueron los menos efectivos en eliminar las EPC MLV. Los péptidos homólogos 2F, 5F, 6F y 7F, eliminaron todos las EPC MLV en unos grados similares. El péptido 4F fue el más efectivo en eliminar EPC MLV con actividad similar a aquella de Tritón X-100. El tiempo para eliminación al 50% de la turbidez de EPC MLV fue también el más corto para el homólogo 4F. El péptido 7 tomó el tiempo más largo para lograr el 50% de eliminación; esto se debió a un periodo de demora inicial largo de -300 segundos (Figura 16). Esto se debe probablemente al requerimiento de las moléculas 7F autoasociadas para disociarse antes de que puedan interaccionar con EPC MLV y solubilizarse. Las velocidades más bajas de eliminación exhibidas por los homólogos 2F, 5F y 6F se pueden deber también una autoasociación más alta de estos péptidos.
\vskip1.000000\baselineskip
Activación de la Enzima LCAT de Plasma
La capacidad de estos péptidos para activar la enzima LCAT de plasma se determinó midiendo la velocidad inicial de la reacción de LCAT con vesículas de PCcolesterol de huevos como sustrato (Figura 17). La activación de LCAT se expresa en relación a aquella por apo A-I, que se considera que es el 100%. La activación de LCAT por 20 \mug/ml de péptidos y apo A-I se muestra en la Figura 4. A esta concentración, apo A-I activa LCAT mejor que cualquiera de los péptidos. Entre los péptidos estudiados aquí, sin embargo, 5F es el mejor activador (80% de apo A-I). Hasta el punto en que la activación de LCAT está afectada, tanto 3F^{3} como 3F^{14} tienen actividades activadoras similares. Por lo tanto, se han representado como una barra (Figura 17).
\vskip1.000000\baselineskip
Actividad Quimiotáctica Monocítica inducida por LD
Cuando LDL se incuba con el sistema de cocultivo de la pared arterial humana, está atrapada en el espacio subendotelial y llega a oxidarse produciendo lípidos biológicamente activos. Estos lípidos inducen quimiotaxis monocítica. Así, la quimiotaxis de cocultivo de monocitos es un ensayo bien establecido para la formación de lípidos biológicamente activos. Se ha mostrado que la inhibición de quimiotaxis está directamente correlacionada con la eliminación de "moléculas iniciadoras" que son responsables de la secreción de proteína-1 quimiotáctica monocítica (MCP-1) (Navab y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1481-1494; Navab y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1495-1508) y del factor de diferenciación factor estimulador de colonias de macrófagos (M-CSF). La Figura 18 muestra que LDL después de incubación con péptidos presentó efectos variados con homólogos 4F, 5F y 6F reduciendo las propiedades quimiotácticas de la mayoría de las LDL. Los péptidos 3F no fueron todos efectivos comparados con 2F y 7F, que fueron menos efectivos que los péptidos 4F, 5F y 6F.
\vskip1.000000\baselineskip
Discusión Efecto de incrementar hidrofobicidad de un análogo peptídico helicoidal anfipático de clase A en sus propiedades físico-químicas y de unión de lípidos
Los péptidos estudiados en esta publicación son homólogos del péptido parental, 18A. La hidrofobicidad calculada por residuo (de acuerdo con la escala de GES modificada (Palgunachari y col. (1996) Arterioscler. Thomb. Vasc. Biol. 16: 328-338)) en la cara no polar se incrementó según se incrementó el número de residuos de Phe. Este incremento en hidrofobicidad (Tabla 6) se refleja en la afinidad lipídica teórica, A (Ibid.). Sin embargo, el valor de A se incrementa gradualmente de 2F a 4F (desde 13,03 hasta 14,59) con un incremento repentino en el valor de 14,59 (para 4F) a 19,07 para 5F. Un incremento gradual en A se observó de nuevo después de 5F en los valores para 6F y 7F (Tabla 6). Esto se debe a la sustitución de Leu en las posiciones 3 y 14 en Ac-18A-NH_{2} con Phe que da como resultado un ligero incremento la hidrofobicidad de la fase no polar y así, da como resultado un ligero incremento en valores de A para los dos análogos 3F y 4F. En homólogos 5F, 6F y 7F sin embargo, además de las sustituciones de Leu por Phe, Ala en posiciones 11 y 17 están también sustituidas por Phe, dando como resultado un incremento significativo en los valores de A (Tabla 6). Dado que Ala es menos hidrófoba que Leu y Leu es menos hidrófoba que Phe, la sustitución de Ala por Phe causa un gran cambio en hidrofobicidad y afinidad lipídica teórica del péptido resultante que una sustitución Leu por Phe.
El tiempo de retención en una columna de HPLC de fase reversa C_{18}, la solubilidad de estos péptidos y su capacidad para penetrar una monocapa de EPC, presentaron todos una tendencia similar a aquella vista en los valores de afinidad teórica (Tabla 7). Los tiempos de retención de los péptidos 2F, 3F^{3}, 3F^{14} y 4F son aproximadamente los mismos (21-22 min.) y son significativamente menores que aquellos de 5F, 6F y 7F, que comprenden un segundo grupo (26-27 minutos). Los péptidos 2F a 4F tienen solubilidad acuosa considerablemente más alta que homólogos 5F a 7F, que son solubles en poca cantidad (Tabla 7). Se observó un incremento gradual en presión de exclusión de 2F a 4F después de lo que hay un incremento brusco de 0,0004 a 0,00045 N/cm (40 a 45 dinas/cm). Las presiones de exclusión para los péptidos 5F, 6F y 7F no son muy diferentes unas de otras y son significativamente más altas que aquellas de apo A-I (Tabla 7). El péptido parental 18A (0,0003 N/cm (30 dinas/cm)) e incluso el dímero de 18A, 37pA (0,00004 N/cm (4 dinas/cm)) fueron también significativamente menos efectivos en penetrar dentro de una monocapa de PC de huevo dispersa en la interfase aire-agua. En base a las propiedades físicas los péptidos F se pueden separar en dos grupos; grupo I con 2F, 3F^{3}, 3F^{14}, 4F y grupo II con péptidos 5F, 6F y 7F.
Los datos de CD (Tabla 8) indican que el valor de helicidad en porcentaje de todos los péptidos se incrementa en la presencia de DMPC sugiriendo que todos los péptidos están asociados con lípidos. La unión de estos péptidos a DPCM parece ser similar a como se sugiere por DSC (Tabla 9). Sin embargo, el efecto de estos péptidos en la estabilización de la estructura bicapa de de DiPoPE es diferente. 4F y 5F parecen interaccionar mejor con DiPoPE debido a que parecen ser mejores estabilizadores que los otros péptidos.
Mientras que apo A-I no es capaz de eliminar EPC MLV, todos los análogos de péptidos son capaces de hacerlo, pero en diferentes grados. Entre los péptidos de grupo I que son fácilmente solubles en tampón acuoso y que presentan un valor de presión de exclusión de monocapa en el intervalo 0,00038 a 0,00040 N/cm (38 a 40 dinas/cm) (2F, análogos de 3F y 4F), 4F parece ser el más eficiente y en la proporción péptido:lípido en investigación, presenta cinéticas similares a aquellas de Tritón X-100 (Figura 16). Mientras las presiones de exclusión de monocapa de los péptidos 2F y 3F son similares, los homólogos 3F son los más lentos en eliminar EPC MLV. La razón para la capacidad eliminadora de EPC reducida de los homólogos 3F no está clara en este momento. Los péptidos de grupo II (5F, 6F y 7F) que no son fácilmente solubles en tampón acuoso y que poseen valores de presión de superficie de 0,00045 N/cm (45 dinas/cm) solubilizan EPC MLV de forma relativamente lenta. Estos resultados son consistentes con agregados peptídicos que tienen que disociarse y después tienen que interaccionar con EPC. La reactividad superior de 4F se puede explicar por el hecho de su hidrofobicidad es óptima de tal forma que las interacciones hidrófobas péptido:péptido que favorecen su autoasociación no evitan interacciones péptido:lípido.
\vskip1.000000\baselineskip
Efecto de la hidrofobicidad incrementada en activación de LCAT
La activación de LCAT es un procedimiento complejo y no sólo es dependiente de afinidad lipídica sino también de la interacción de la proteína helicoidal anfipática con la enzima LCAT (Jonas (2000) Biochim. Biophys. Acta 1529: 245-256). De acuerdo con esto, la capacidad para activar LCAT se encuentra que es diferente para los péptidos homólogos. El péptido 5F mostró la capacidad de activación de LCAT máxima, de acuerdo con las propiedades físicas estudiadas en Tabla 7 en las que se vio un incremento abrupto de 4F a 5F, incluyendo valores de presión de exclusión en la interfase PC de huevos-agua. El hecho de que los péptidos 6F y 7F no sean tan efectivos como 5F podría explicarse por la interacción péptido-péptido incrementada (como se refleja en la baja solubilidad acuosa de estos péptidos) que no permitirá interacción péptido:lípido o péptido:LCAT. Estos resultados están de acuerdo con las observaciones anteriores de los autores de la presente invención con los péptidos diméricos de 18A en los que la autoasociación potenciada del péptido dimérico 18A-18A (36A) redujo su capacidad para interaccionar con lípidos comparado con péptido 18A-Pro-18A (Jonas (2000) Biochim. Biophys. Acta 1529: 245-256). Aunque la activación de LCAT con los péptidos se ha comparado con aquella de apo A-I, se destacaría que apo A-I y los péptidos interaccionan de forma diferente con el sustrato dado que tienen reactividades diferentes a EPC (Figura 16). Se han hecho observaciones similares por Chung y col. quienes mostraron que un péptido sintético 18A-Pro-18A y apo A-I interacciona de forma diferente con EPC (Chung y col. (1985) J. Biol. Chem. 260: 10256-10262).
\vskip1.000000\baselineskip
Efectos de hidrofobicidad incrementada de la cara no polar en quimiotaxis monocítica inducida por LDL
Dado que la eliminación de "moléculas iniciadoras" depende de la anfipaticidad del péptido como se comunica por los autores de la presente invención (Navab y col. (2000) J. Lipid. Res. 41: 1481-1494; Navab y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1495-1508), los autores de la presente invención examinaron la capacidad de estos péptidos para inhibir quimiotaxis monocítica inducida por LDL. En este ensayo, los péptidos 4F, 5F y 6F a nivel de 100 \mug/ml, mostraron inhibición significativa y similar de quimiotaxis inducida por LDL en base a análisis de varianza con un factor. Aunque el homólogo de 2F mostró alguna actividad inhibidora, por razones que no están claras, los análogos del péptido 3F no mostraron ninguna inhibición comparados con LDL sola. Estos resultados estuvieron de acuerdo con el hecho de que el péptido 3F no fue capaz de eliminar los hidroperóxidos de litio (resultados no mostrados) y con la capacidad reducida de eliminar EPC MLV. El péptido 7F fue significativamente menos efectivo que los péptidos 4F, 5F y 6F (P < 0,001). La capacidad reducida de 7F puede de nuevo explicarse por autoasociación incrementada del péptido que disminuye su capacidad para interaccionar con el lípido como se ve en los estudios de eliminación de EPC MLV. Estos resultados demuestran de nuevo que el balance delicado que existe entre las contribuciones de la hidrofobicidad del péptido a la autoasociación puede afectar críticamente propiedades de imitación de apo A-I.
La administración in vivo de péptido 5F, que posee capacidad de activación de LCAT incrementada y capacidad incrementada para retirar las "moléculas iniciadoras" protegió a los ratones de aterosclerosis inducida por dieta. En contraste, la administración de 2F, que es similar a la capacidad de activación de LCAT de 4F, pero menos efectiva que 4F y 5F en retirar "moléculas iniciadoras" de LDL, no inhibió significativamente la formación de lesiones inducidas por dieta en ratones C57BL6 (área de lesión promedio para ratones control administrados con PBS 14,7 \pm 1,8 \mum^{2} X 10^{-3} comparados con ratones administrados con 2F 13,2 \pm 1,7 \mum^{2} X 10^{-3}, n = 15). Se deduce que en este modelo de ratón, la inhibición de quimiotaxis monocítica inducida por LDL es más anti-aterogénica que activación de LCAT. Dado que los péptidos 2F y 4F son similares en activar LCAT, y 4F y 5F son similares en eliminar "moléculas iniciadoras" de LDL, el péptido 4F puede servir como un reactivo para distinguir entre la importancia de la activación de LCAT y la inhibición de quimiotaxis monocítica inducida por LDL en diferentes modelos de ratón sensibles a aterosclerosis. En la inhibición de quimiotaxis inducida por LDL es más importante que la capacidad activadora de LCAT, luego 4F sería mejor péptido para usar como un inhibidor de aterosclerosis dado que este péptido es más soluble que los péptidos 5F, 6F y 7F.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 1 Los Péptidos D-4F Mantienen Niveles de Paroxinasa y Bloquean Producción de Fosfolípidos Oxidados Durante una Respuesta Inflamatoria Aguda
Los inventores han observado que la instilación intranasal del virus influenza A en ratones causó una pérdida dependiente del tiempo en las propiedades antiinflamatorias de HDL, alcanzó un máximo de 7 a 9 días después de la inoculación. La dosis escogida fue una que no causó viremia y así los cambios no se debieron directamente al virus sino que se debieron al estado inflamatorio inducido por la respuesta sistémica del huésped a la infección viral. Esta respuesta es parte del sistema inmune innato y se conoce como la reacción de fase aguda o la respuesta de fase aguda.
Una de las consecuencias fue la disminución en paraoxonasa y actividad acetilhidrolasa activadora de plaquetas en la HDL de los ratones después de la infección por influenza. Como un resultado de la pérdida de estas actividades enzimáticas de HDL y también como un resultado de la asociación de proteínas pro-oxidantes con HDL durante la fase de respuesta aguda, HDL no fue capaz más de evitar oxidación de LDL y no fue capaz más de evitar la producción inducida por LDL de actividad quimiotáctica de monocitos por células endoteliales. La HDL normal es capaz de prevenir la producción inducida por la LDL de actividad quimiotáctica monocítica por células endoteliales debido a que la HDL normal contiene suficientes actividades paraoxonasa y acetilhidrolasa activadora de plaquetas para destruir los fosfolípidos oxidados biológicamente activos.
En este ejemplo, los inventores demostraron que pronto (dos días) tras la infección con influenza A los hígados de ratones infectados generaron estos fosfolípidos oxidados (Figura 19) y después (7 a 9 días después de la infección) estos fosfolípidos oxidados biológicamente activos aparecieron en la aorta de ratones. Sin embargo, si los ratones se inyectaron con 20 microgramos de D-4F diariamente después de la infección con el virus de la influenza A los niveles de paraoxonasa no cayeron (Figura 20) y los fosfolípidos biológicamente activos oxidados no se generaron más allá de los antecedentes (Figura 21).
Estos datos indican que D-4F (y/o otos péptidos de la presente invención) se pueden dar bien oralmente o bien por inyección a pacientes con enfermedad arterial coronaria conocida durante la infección con influenza u otros eventos que pueden generar una respuesta inflamatoria de fase aguda (por ejemplo debido a infección viral, infección bacteriana, traumatismo, transplante, diversas afecciones autoinmunes, etc.) y así los autores de la presente invención pueden evitar por este tratamiento a corto plazo la incidencia incrementada de ataque al corazón y apoplejía asociada con patologías que general tales estados inflamatorios.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo Comparativo 4 y Ejemplo 2
La Administración Oral de Péptidos Imitadores de Apo A-I Sintetizados a partir de Aminoácidos-D Reduce Drásticamente Aterosclerosis en Ratones
Los péptidos imitadores de Apo A-I sintetizados bien a partir de aminoácidos D o bien a partir de aminoácidos L fueron efectivos in vitro en proteger lipoproteína de baja densidad (LDL) contra oxidación por células de la pared arterial. Sin embargo, cuando los péptidos se dieron oralmente a ratones con el receptor de LDL anulado y su HDL se aisló y ensayó por su capacidad para proteger LDL contra oxidación in vitro, sólo los péptidos sintetizados a partir de aminoácidos-D fueron efectivos. El péptido sintetizado a partir de aminoácidos-D fue estable en la circulación y se encontró en fracciones asociado con las lipoproteínas de alta densidad (HDL). El péptido sintetizado a partir de aminoácidos L se degradó rápidamente y se excretó en la orina. Cuando los péptidos sintetizados a partir de aminoácidos-D conocidos como D-4F se administraron oralmente, dos veces al día, a ratones con el receptor de LDL anulado a una dieta de Western, las lesiones decrecieron en un 79%. Cuando se añade al agua de beber de ratones con apo E anulada, D-4F disminuyó las lesiones en más del 84%. Los autores de la presente invención concluyen que los péptidos que imitan apo A-I administrados oralmente sintetizados a partir de aminoácidos-D son útiles para la prevención y tratamiento de aterosclerosis y otras enfermedades inflamatorias crónicas que están causadas por lípidos oxidados.
\vskip1.000000\baselineskip
Antecedentes
Las concentraciones de HDL-colesterol están inversamente relacionadas con el riesgo de enfermedad arterial coronaria aterosclerótica (Miller y Miller (1975) Lancet, 1: 16-19). La infusión (Badimon y col. (1990) J. Clin Invest. 85: 1234-1241) o expresión transgénica (Plump y col. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU., 91: 9607-9611) de apo A-I, la apolipoproteína principal de HDL, ha estado mostrando proteger contra aterosclerosis en modelos animales. Los mecanismos por los que apo A-I protege contra el desarrollo de aterosclerosis se han postulado para incluir transporte de colesterol inverso (Shah y col. (2001) Circulation, 103: 3047-3050) y eliminación de niveles bajos de lípidos oxidados, "moléculas iniciadoras" que se requieren para oxidar LDL (Navab y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1481-1494; Navab y col. (2000) J. Lipid. Res. 41: 1495-1508; Navab y col. (2001) Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 21: 481-488). Los análogos peptídicos helicoidales anfipáticos de clase A han estado mostrando imitar varias propiedades in vitro de apo A-I incluyendo la eliminación de las "moléculas iniciadoras" que se requieren para oxidación de LDL (Navab y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1481-1494; Navab y col. (2000) J. Lipid. Res. 41: 1495-1508). La administración intraperitoneal de péptidos helicoidales anfipáticos de clase A ha estado mostrando recientemente proteger ratones de aterosclerosis inducida por la dieta sin cambiar sus niveles de colesterol en plasma (Garber y col. (2001) J. Lipid Res. 42: 545-552). La reducción en lesiones estuvo asociada con un incremento significativo en la capacidad de HDL para inhibir oxidación de LDL in vitro (Id.). Hasta ahora, la limitación principal para el uso de apo A-I o péptidos imitadores de apo A-I como agentes farmacológicos ha sido la necesidad de una vía parenteral de administración.
Las enzimas de mamíferos tales como proteasas reconocen péptidos y proteínas sintetizadas a partir de aminoácidos L pero raramente reconocen aquellas sintetizadas a partir de aminoácidos D. Los autores de la presente invención demuestran aquí que las formulaciones específicas de péptidos imitadores de apo A-I sintetizadas a partir de aminoácidos D se pueden administrar oralmente y pueden inhibir drásticamente aterosclerosis en ratones.
\vskip1.000000\baselineskip
Procedimientos Ratones
Se adquirieron ratones con el receptor de LDL anulado hembras o ratones con apo E anulada hembras en un antecedente C57BL/6J del Jackson Laboratory, Bar Harbor, ME. Los ratones con el receptor de LDL anulado se mantuvieron a dieta de pienso de Purina (Ralston Purina Co.) hasta que fueron de 4 semanas de edad cuando se cambiaron a una dieta Western (Teklad, Madison, WI, dieta n.º: 88137) durante 6 semanas. Los ratones con apo E anulada se mantuvieron a dieta de pienso de Purina a lo largo de todo el estudio. Los ratones con el receptor de LDL anulado recibieron el péptido de prueba o un vehículo control mediante sonda gástrica dos veces al día durante los periodos indicados en las leyendas de la figura. A las cuatro semanas de edad el péptido de prueba se añadió al agua de beber de algunos de los ratones con apo E anulada a las concentraciones indicadas en las leyendas de la figura y los ratones con apo E anulada se continuaron a la dieta de pienso.
Los ratones se sangraron con anestesia a partir del plexo venoso retroorbital, de acuerdo con protocolos aprobados por el Comité de Investigación Animal de UCLA. Las lesiones ateroscleróticas se midieron como se describe previamente^{9}.
\vskip1.000000\baselineskip
Lipoproteínas
LDL y HDL se aislaron como se describe (Navab y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1481-1494, y ejemplos en el presente documento) después de obtener consentimiento informado de los voluntarios humanos y a partir de la sangre de los ratones como se destaca anteriormente.
\vskip1.000000\baselineskip
Cocultivos, Oxidación Celular de LDL, aislamiento Monocítico, y Ensayo de Quimiotaxis Monocítica
Se aislaron y cultivaron células endoteliales aórticas humanas y células musculares lisas humanas como se describe previamente (Id). La oxidación celular de LDL en la presencia y ausencia de HDL se determinó como se describe (Id). Los monocitos de sangre humana se aislaron después de obtener consentimiento informado y la quimiotaxis de monocitos se determinó como se describe previamente^{5}.
\vskip1.000000\baselineskip
Síntesis y preparación de péptidos imitadores de apo A-I
Los péptidos miméticos de apo A-I se sintetizaron como se describe^{11} previamente salvo porque en algunos ejemplos cada aminoácido en el péptido fue el estereoisómero-D del aminoácido. Los péptidos están basados en la secuencia Ac-D-W-L-K-A-F-Y-D-K-V-A-E-KL-K-E (SEQ ID N.º: 1) (Ac-18A-NH_{2} o 2F). Se usó 2F (Ejemplo comparativo 4) o un análogo de 2F con la secuencia de aminoácidos primaria Ac-D-W-L-K-A-F-Y-D-K-V-A-E-K-F-K-E-A-F-NH_{2} (SEQ ID N.º: 5, también designada 4F) en los estudios comunicados aquí. Los péptidos sintetizados a partir de los aminoácidos-L se designaron con una L (por ejemplo L-4F) (también parte del Ejemplo Comparativo 4) y los péptidos sintetizados a partir de los aminoácidos D se designaron con una D (por ejemplo D-4F) (Ejemplo 2). En algunos casos los péptidos se yodaron usando reactivo YODO-BEAD (Pierce Rockford, IL) de acuerdo con las recomendaciones hechas por el fabricante. Los liposomas hechos de L-\alpha-1-palmitoil-2-oleil-sn-glicero-3-fosfocolina (Avanti Polar Lipids, Alabaster, AL) con y sin D-4F se fabricaron de acuerdo con las recomendaciones del fabricante. La extracción y la detección de péptidos intactos a partir de plasma de ratón se llevó a cabo como se describe por Garber y col. (1992) Arterioscler. Thromb. 12: 886-894, usando HPLC de fase reversa.
\vskip1.000000\baselineskip
Otros Procedimientos
Se llevaron a cabo análisis de contenido en proteínas (Navab y col. (2000) J. Lipid Res. 41: 1481-1494) y en colesterol (Van Lenten y col. (2001) Circulation, 103: 2283-2288) de lipoproteínas y análisis estadísticos como se describen por Van Lenten y col. (2001) Circulation, 103: 2283-2288, con la significancia definida como P < 0,05.
\vskip1.000000\baselineskip
Resultados
In vitro, tanto L-2F y D-2F fueron igualmente capaces de bloquear oxidación de LDL y actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL en cocultivos de células de la pared arterial humana (datos no mostrados). In vivo sin embargo, como se muestra en la Figura 22A después de administración oral, sólo D-4F permaneció intacta en la circulación y fue capaz de potenciar capacidad protectora de HDL (Figura 22B) y de disminuir actividad quimiotáctica monocítica inducida por LDL (Figura 22C). Dos horas después de la administración oral de ^{125}I-L-4F o, ^{125}I-D-4F la orina de ratones a los que se dio L-4F tuvo aproximadamente 15 veces más radiactividad que lo que fue el caso para ratones a los que se dio D-4F (datos no mostrados).
Figura 23, demuestra que la administración dos veces diarias de D-4F por sonda redujo lesiones ateroscleróticas en ratones con el receptor de LDL anulado a una dieta Western en el 79%. Los niveles de colesterol en plasma totales no difirieron significativamente en los ratones con el receptor de LDL anulado los que se dio D-4F y en aquellos a los que se dio liposomas solo o medio salino solo. El colesterol total fue 761 \pm 69 mg/dl para el grupo de DF-4, 677 \pm 52 mg/dl para el grupo de liposomas y 699 \pm 31 para el grupo de solución salina. El nivel de HDL-colesterol promedio fue ligeramente superior en el grupo de D-4F, 73 \pm 8,7 mg/dl, comparado con 65,9 \pm 9,2 para el grupo de liposomas y 67 \pm 6,3 para el grupo de solución salina, pero estas diferencias no alcanzaron significancia estadística.
La figura 24 demuestra que los ratones con apo E anulada a los que se dio D-4F en su agua de beber tuvieron más de un 84% de reducción en lesiones y no fueron significativamente diferentes si se dio a los ratones 2,5 mg/día/ratón o 5,0 mg/día/ratón. No hubo diferencias significativas en la cantidad de agua consumida (2,5 ml/día/ratón) entre los ratones con apo E anulada que no recibieron ningún péptido, o entre aquellos que recibieron 2,5 mg de D-4F/ratón/día o 5,0 mg de D-4F/ratón/día y no hubo ninguna diferencia significativa en pesos corporales, cardiacos o hepáticos de los ratones con apo E anulada en los tres grupos (datos no mostrados). Además, la concentración de colesterol total en plasma no fue significativamente diferente en los ratones con apo E anulada que recibieron D-4F (478 \pm 149 mg/dl para ratones que recibieron agua sin péptido, 534 \pm 12,3 mg/dl para ratones que recibieron D-4F a 2,5 mg/ratón/día y 579 \pm 4,6 mg/dl para ratones que reciben D-4F a 5,0 mg/ratón/día). El HDL-colesterol promedio se incrementó suavemente en los ratones que recibieron D-4F pero las diferencias no alcanzaron significancia estadística (32,2 \pm 7 mg/dl para ratones que recibieron agua sin péptido, 38,7 \pm 5 mg/dl para ratones que recibieron D-4F a 2,5 mg/ratón/día, y 43,4 \pm 6 mg/dl para ratones que recibieron DF-4 a 5,0 mg/ratón/día).
\vskip1.000000\baselineskip
Discusión
Hasta ahora, el uso de apo A-I y de péptidos que imitan apo A-I como agentes farmacológicos ha estado limitado por la necesidad de administración parenteral. La reducción marcada en lesiones ateroscleróticas en el presente estudio ocurre a pesar de la ausencia de cambios significativos en colesterol de plasma total. Aunque hubo una tendencia hacia niveles de HDL-colesterol ligeramente más altos en los ratones que recibieron D-4F, ésta no alcanzó significancia estadística. Los estudios presentados aquí sugieren que los péptidos que imitan apo A-I administrados oralmente sintetizados a partir de aminoácidos-D pueden ser útiles para la prevención y tratamiento de aterosclerosis y otras enfermedades inflamatorias crónicas que están causadas por lípidos oxidados.
\global\parskip0.000000\baselineskip
<110> Los Rectores de la Universidad de California
\vskip0.400000\baselineskip
<120> PÉPTIDOS ADMINISTRADOS ORALMENTE PARA MEJORAR ATEROSCLEROSIS
\vskip0.400000\baselineskip
<130> 407T-911220PC
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 09/896,841
\vskip0.400000\baselineskip
<151> 29-6-2001
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 09/645,454
\vskip0.400000\baselineskip
<151> 24-8-2000
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn version 3.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\hskip1cm
14 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\hskip1cm
15 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\hskip1cm
16 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
17 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\hskip1cm
18 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\hskip1cm
19 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\hskip1cm
20 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\hskip1cm
21 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\hskip1cm
22 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\hskip1cm
23 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\hskip1cm
24 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\hskip1cm
25 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\hskip1cm
26 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\hskip1cm
27 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\hskip1cm
28 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\hskip1cm
29 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\hskip1cm
30 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\hskip1cm
31 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\hskip1cm
32 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
33 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\hskip1cm
34 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\hskip1cm
35 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\hskip1cm
36 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\hskip1cm
37 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\hskip1cm
38 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\hskip1cm
39 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\hskip1cm
40 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\hskip1cm
41 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\hskip1cm
42 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\hskip1cm
43 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\hskip1cm
44 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
\hskip1cm
45 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\hskip1cm
46 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\hskip1cm
47 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\hskip1cm
48 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\hskip1cm
49 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\hskip1cm
50 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\hskip1cm
51 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\hskip1cm
52 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
\hskip1cm
53 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\hskip1cm
54 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\hskip1cm
55 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\hskip1cm
56 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
\hskip1cm
57 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 45
\hskip1cm
58 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\hskip1cm
59 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\hskip1cm
60 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\hskip1cm
61 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\hskip1cm
62 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\hskip1cm
63 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\hskip1cm
64 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\hskip1cm
65 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\hskip1cm
66 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\hskip1cm
67 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 55
\hskip1cm
68 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 56
\hskip1cm
69 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 57
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 57
\hskip1cm
70 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 58
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 58
\hskip1cm
71 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 59
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 59
\hskip1cm
72 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 60
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 60
\hskip1cm
73 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 61
\hskip1cm
74 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 62
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 62
\hskip1cm
75 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 63
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 63
\hskip1cm
76 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 64
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 64
\hskip1cm
77 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 65
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 65
\hskip1cm
78 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
\hskip1cm
79 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 67
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 67
\hskip1cm
80 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 68
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 68
\hskip1cm
81 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 69
\hskip1cm
82 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 70
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\hskip1cm
83 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\hskip1cm
84 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\hskip1cm
85 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\hskip1cm
86 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 74
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
\hskip1cm
87 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 75
\hskip1cm
88 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 76
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 76
\hskip1cm
89 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 77
\hskip1cm
90 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 78
\hskip1cm
91 
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\hskip1cm
92 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 80
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
\hskip1cm
93 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\hskip1cm
94 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\hskip1cm
95 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 83
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 83
\hskip1cm
96 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 84
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 84
\hskip1cm
97 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 85
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 85
\hskip1cm
98 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 86
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)..(3)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, a-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4)..(4)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es lisina o arginina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5)..(5)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es serina, treonina, alanina, glicina, histidina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (6)..(7)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, \alpha-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (8)..(8)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (9)..(9)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es lisina o arginina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (10)..(11)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, a-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (12)..(12)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (13)..(13)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es serina, treonina, alanina, glicina, histidina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (14)..(14)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, a-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (15)..(15)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es serina, treonina, alanina, glicina, histidina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (16)..(16)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (17)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, a-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 86
\hskip1cm
99 
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PROTEÍNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> péptido de clase A sintético o recombinante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)..(1)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (8)..(8)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (12)..(12)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (16)..(16)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es ácido aspártico o ácido glutámico, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)..(3)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, alfa-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (6)..(7)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, alfa-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (10)..(11)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, alfa-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (14)..(14)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, alfa-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (17)..(18)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es triptófano, fenilalanina, alanina, leucina, tirosina, isoleucina, valina, alfa-naftilalanina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4)..(4)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es lisina o arginina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (9)..(9)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es lisina o arginina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (13)..(13)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es lisina o arginina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (15)..(15)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es lisina o arginina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5)..(5)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Xaa es serina, treonina, alanina, glicina, histidina, u homólogos o análogos de los mismos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 87
\hskip1cm
100

Claims (13)

1. Un péptido que mejora un síntoma de aterosclerosis, en el que dicho péptido tiene la fórmula:
101
y en el que el extremo aminoterminal está protegido por un primer grupo protector (P^{1}) y el extremo carboxiterminal está protegido por un segundo grupo (P^{2}); y
dicho péptido comprende al menos un aminoácido D.
\vskip1.000000\baselineskip
2. El péptido de la reivindicación 1, en el que todos los aminoácidos que comprenden dicho péptido son aminoácidos D.
3. El péptido de la reivindicación 1 ó 2, en el que P^{1} y P^{2} están seleccionados independientemente del grupo constituido por, amida, grupos alquilo de 3 a 20 carbonos, Fmoc, grupo 9-fluorenoacetilo, grupo 1-fluorenocarboxílico, grupo 9-fluorenocarboxílico, grupo 9-fluorenona-1-carboxílico, Xantilo (Xan), Tritilo (Trt), 4-metiltritilo (Mtt), 4-metoxitritilo (Mmt), 4-metoxi-2,3,6-trimetil-bencenosulfonilo (Mtr), Mesitileno-2-sulfonilo (Mts), 4,4-dimetoxibenzhidrilo (Mbh), Tosilo (Tos), 2,2,5,7,8-pentametilo-croman-6-sulfonilo (Pmc), 4-metilbencilo (MeOBzl), Benciloxi (BzlO), Bencilo (Bzl), Benzoílo (Bz), 3-nitro-2-piridinasulfenilo (Npys), 1-(4,4-dimetil-2,6-diclorociclohexilideno)etilo (Dde), 2,6-diclorobencilo (2,6-DiCl-Bzl), 2-clorobenciloxicarbonilo (2-Cl-Z), 2-bromobenciloxicarbonilo (2-Br-Z), Benciloximetilo (Bom), t-butoxicarbonilo (Boc), ciclohexiloxi (cHxO), t-butoximetilo (Bum), t-butoxi (tBuO), t-butilo (tBu), Acetilo (Ac), un grupo carbobenzoxi, un grupo propilo, un grupo butilo, un grupo pentilo, un grupo hexilo, y Trifluoroacetilo (TFA).
4. El péptido de la reivindicación 1 o 2, en el que:
P^{1} está seleccionado del grupo constituido por un grupo benzoílo, un acetilo, un propionilo, un carbobenzoxi, un propilo, un butilo, un pentilo, un hexilo, y un alquilo de 3 a 20 átomos de carbono; y
P^{2} es una amida.
\vskip1.000000\baselineskip
5. El péptido de la reivindicación 4, en el que P^{1} es un acetilo.
6. El péptido de cualquier reivindicación precedente, en el que dicho péptido está combinado con un excipiente farmacológicamente aceptable.
7. El péptido de la reivindicación 6 en el que dicho excipiente farmacológicamente aceptable es un excipiente para administración oral.
8. El péptido de la reivindicación 6, el que dicho excipiente farmacológicamente aceptable es un excipiente para inyección.
9. El péptido de la reivindicación 7, el que dicho péptido está formulado en una formulación de dosificación unitaria.
10. El uso de un péptido de acuerdo con cualquier reivindicación precedente para la producción de una composición farmacéutica para el tratamiento de aterosclerosis.
11. El uso de la reivindicación 10, en el que dicho tratamiento es por administración oral.
12. Un kit para mejorar un síntoma de aterosclerosis, comprendiendo dicho kit:
un recipiente que contiene un péptido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-9, y
materiales de instrucciones que enseñan el uso de dicho péptido para mitigar un síntoma de aterosclerosis.
\vskip1.000000\baselineskip
13. El uso de un péptido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1-9 para la producción de una composición farmacéutica para el tratamiento de los síntomas de aterosclerosis.
ES01966198T 2000-08-24 2001-08-23 Peptidos administrados oralmente para mejorar la aterosclerosis. Expired - Lifetime ES2342258T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US645454 1991-01-24
US09/645,454 US6664230B1 (en) 2000-08-24 2000-08-24 Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2342258T3 true ES2342258T3 (es) 2010-07-05

Family

ID=24589089

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES10002402.5T Expired - Lifetime ES2438779T3 (es) 2000-08-24 2001-08-23 Péptidos administrados oralmente para mejorar aterosclerosis
ES01966198T Expired - Lifetime ES2342258T3 (es) 2000-08-24 2001-08-23 Peptidos administrados oralmente para mejorar la aterosclerosis.

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES10002402.5T Expired - Lifetime ES2438779T3 (es) 2000-08-24 2001-08-23 Péptidos administrados oralmente para mejorar aterosclerosis

Country Status (16)

Country Link
US (2) US6664230B1 (es)
EP (3) EP1864675B1 (es)
JP (6) JP3822167B2 (es)
CN (6) CN100579984C (es)
AT (2) ATE506958T1 (es)
AU (4) AU2001286732B2 (es)
CA (3) CA2639651C (es)
CY (1) CY1110204T1 (es)
DE (2) DE60141842D1 (es)
DK (1) DK1318828T3 (es)
EA (2) EA006488B1 (es)
ES (2) ES2438779T3 (es)
HK (2) HK1055400A1 (es)
IL (3) IL154545A0 (es)
PT (1) PT1318828E (es)
WO (1) WO2002015923A1 (es)

Families Citing this family (86)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7166578B2 (en) * 2000-08-24 2007-01-23 The Regents Of The University Of California Orally administered peptides synergize statin activity
US8568766B2 (en) 2000-08-24 2013-10-29 Gattadahalli M. Anantharamaiah Peptides and peptide mimetics to treat pathologies associated with eye disease
US7144862B2 (en) * 2000-08-24 2006-12-05 The Regents Of The University Of California Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis
US7199102B2 (en) * 2000-08-24 2007-04-03 The Regents Of The University Of California Orally administered peptides synergize statin activity
US7723303B2 (en) * 2000-08-24 2010-05-25 The Regents Of The University Of California Peptides and peptide mimetics to treat pathologies characterized by an inflammatory response
US6664230B1 (en) * 2000-08-24 2003-12-16 The Regents Of The University Of California Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis
US7148197B2 (en) * 2000-08-24 2006-12-12 The Regents Of The University Of California Orally administered small peptides synergize statin activity
US6930085B2 (en) * 2002-04-05 2005-08-16 The Regents Of The University Of California G-type peptides to ameliorate atherosclerosis
DE10222234A1 (de) * 2002-05-16 2003-11-27 Roche Diagnostics Gmbh Kontroll- und Kalibrationsmaterial für Blutgerinnungstests
US20090011974A1 (en) * 2002-10-30 2009-01-08 Bocharov Alexander V Scavenger Receptor B1 (Cla-1) Targeting for the Treatment of Infection, Sepsis and Inflammation
EP3254673A1 (en) * 2002-11-13 2017-12-13 The UAB Research Foundation Synthetic single domain polypeptides mimicking apolipoprotein e and methods of use
EP1615954A2 (en) * 2003-04-22 2006-01-18 Avanir Pharmaceuticals Mediators of reverse cholesterol transport for the treatment of hypercholesterolemia
US20050159362A1 (en) * 2003-04-22 2005-07-21 Sircar Jagadish C. Mediators of reverse cholesterol transport for the treatment of hypercholesterolemia
GB0311081D0 (en) * 2003-05-14 2003-06-18 Btg Internat Limted Treatment of neurodegenerative conditions
WO2005018632A1 (en) * 2003-08-18 2005-03-03 Btg International Limited Treatment of neurodegenerative conditions
JP4625812B2 (ja) 2003-12-05 2011-02-02 ザ クリーブランド クリニック ファウンデーション 心臓血管疾患に対するリスクマーカー
GB0329958D0 (en) 2003-12-24 2004-01-28 Univ Manchester Treatment of viral infections
GB0404374D0 (en) 2004-02-27 2004-03-31 Univ Manchester Treatment of bacterial infections
JP4891228B2 (ja) * 2004-04-15 2012-03-07 アテラ バイオテクノロジーズ エービー 新規組成物
PL1750862T3 (pl) * 2004-06-04 2011-06-30 Teva Pharma Kompozycja farmaceutyczna zawierająca irbesartan
UY28951A1 (es) * 2004-06-09 2006-01-31 Avanir Pharmaceuticals Pequenas moleculas para el tratamiento de hipercolesterolemia y enfermedades relacionadas
KR20070026598A (ko) * 2004-06-09 2007-03-08 아바니르 파마슈티컬스 고지혈증 및 관련 질환의 치료를 위한 헤테로사이클 유도체
UY28952A1 (es) * 2004-06-09 2006-01-31 Avanir Pharmaceuticals Mediadores del transporte inverso de colesterol para el tratamiento de la hipercolesterolemia
CN101076541A (zh) * 2004-07-16 2007-11-21 塔夫茨大学信托人 载脂蛋白a1模拟物及其用途
WO2006020498A2 (en) * 2004-08-11 2006-02-23 The Cleveland Clinic Foundation Therapeutic agents and methods for cardiovascular disease
WO2006020652A2 (en) * 2004-08-11 2006-02-23 The Regents Of The University Of California Orally administered small peptides synergize statin activity
WO2006034056A2 (en) * 2004-09-16 2006-03-30 The Regents Of The University Of California G-type peptides and other agents to ameliorate atherosclerosis and other pathologies
WO2006053754A1 (en) * 2004-11-19 2006-05-26 Novartis Ag COMBINATIONS OF ANTI-ATHEROSCLEROTIC PEPTIDES AND AN mTOR INHIBITING AGENT AND THEIR METHODS OF USE
GB0425932D0 (en) * 2004-11-25 2004-12-29 Btg Int Ltd Structured phospholipids
NZ555826A (en) * 2004-12-06 2009-11-27 Univ California Methods for improving the structure and function of arterioles
GB0504333D0 (en) * 2005-03-02 2005-04-06 Btg Int Ltd Treatment of cytokine dysregulation
GB0504362D0 (en) * 2005-03-02 2005-04-06 Btg Int Ltd Cytokine modulators
US8206750B2 (en) 2005-03-24 2012-06-26 Cerenis Therapeutics Holding S.A. Charged lipoprotein complexes and their uses
KR20080007491A (ko) * 2005-04-29 2008-01-21 더 리전트 오브 더 유니버시티 오브 캘리포니아 염증성 반응을 특징으로 하는 병리를 치료하기 위한 펩티드및 펩티드 모방체
US20080293639A1 (en) * 2005-04-29 2008-11-27 The Regents Of The University Of California Peptides and peptide mimetics to treat pathologies characterized by an inflammatory response
GR1005428B (el) * 2005-05-27 2007-02-01 Χαραλαμπος Αλεξοπουλος Συνθετικα λιποπεπτιδια με αντιαθηρογονο δραση, που εμποδιζουν την οξειδωση της λιποπρωτεϊνης χαμηλης πυκνοτητας (ldl) και αναστελλουν την απενεργοποιηση του ενζυμου της paf ακετυλοϋδρολασης (paf-ah)
GB0513096D0 (en) 2005-06-28 2005-08-03 Strathclyde Treatment of microbial infections
WO2007055873A2 (en) * 2005-11-04 2007-05-18 Avanir Pharmaceuticals Process for the manufacture of peptide facilitators of reverse cholesterol transport
WO2007059372A2 (en) * 2005-11-09 2007-05-24 St. Jude Children's Research Hospital Use of chloroquine to treat metabolic syndrome
CA2653840A1 (en) * 2006-06-01 2007-12-06 Institut De Cardiologie De Montreal Use of a peptide/phospholipid complex acting as a reverse lipid transport agonist for treatment of valvular stenosis
EP2041174A2 (en) * 2006-06-16 2009-04-01 Lipid Sciences, Inc. Novel peptides that promote lipid efflux
US20080227686A1 (en) * 2006-06-16 2008-09-18 Lipid Sciences, Inc. Novel Peptides that Promote Lipid Efflux
US20080206142A1 (en) * 2006-06-16 2008-08-28 Lipid Sciences, Inc. Novel Peptides That Promote Lipid Efflux
AU2007284801A1 (en) * 2006-08-08 2008-02-21 The Regents Of The University Of Californina Salicylanilides enhance oral delivery of therapeutic peptides
WO2008039843A2 (en) * 2006-09-26 2008-04-03 Lipid Sciences, Inc. Novel peptides that promote lipid efflux
CA2672131C (en) * 2006-12-13 2016-06-07 The Regents Of The University Of California Potent and selective mediators of cholesterol efflux
US20080268038A1 (en) * 2007-04-26 2008-10-30 Wolfe Robert R Compositions and Approaches for Increasing Diet Induced Thermogenesis, Inducing Weight Loss and Maintaining Muscle Mass and Strength
US20100331264A1 (en) * 2007-07-09 2010-12-30 Thitiwan Buranachokpaisan Preserving secondary peptide structure
US8557767B2 (en) 2007-08-28 2013-10-15 Uab Research Foundation Synthetic apolipoprotein E mimicking polypeptides and methods of use
DK2682400T5 (da) 2007-08-28 2017-11-27 Uab Research Foundation Syntetiske apolipoprotein E-efterlignende polypeptider og fremgangsmåder til anvendelse
NZ599755A (en) * 2007-08-30 2013-08-30 Curedm Group Holdings Llc Compositions and methods of using proislet peptides and analogs thereof
EP2245061A2 (en) * 2007-12-11 2010-11-03 Coda Therapeutics, Inc. Impaired wound healing compositions and treatments
WO2009073984A1 (en) * 2007-12-12 2009-06-18 University Health Network High-density lipoprotein-like peptide-phospholipid scaffold ('hpps') nanoparticles
WO2010014830A2 (en) * 2008-07-30 2010-02-04 Cosmix Therapeutics Llc Peptide therapeutics that bind vegf and methods of use thereof
ITTO20080894A1 (it) * 2008-12-02 2010-06-03 Bioindustry Park Del Canavese S P A Uso dell'aptoglobina, peptidi leganti l'aptoglobina, polimeri contenenti gli stessi e loro uso
PT2939683T (pt) 2009-02-16 2017-04-07 Cerenis Therapeutics Holding Sa Miméticos da apolipoproteína a-i
EP2484692A4 (en) * 2009-09-30 2013-03-06 Snu R&Db Foundation MIMETIC APOLIPOPROTEIN A-1-PEPTIDES AND THERAPEUTICS FOR THE TREATMENT OF HYPERLIPIDEMIA AND DISEASES RELATED TO HYPERLIPIDEMIA THEREWITH
WO2011044545A2 (en) 2009-10-09 2011-04-14 Sigalov Alexander B Methods and compositions for targeted imaging
US10894098B2 (en) 2012-04-09 2021-01-19 Signablok, Inc. Methods and compositions for targeted imaging
NO2385374T3 (es) 2010-05-05 2014-06-07
CN103154742B (zh) * 2010-06-20 2017-11-21 佐拉生物科学公司 用于鉴定高风险冠状动脉疾病患者的脂质组学标志
LT2767546T (lt) 2011-02-07 2019-02-25 Cerenis Therapeutics Holding Sa Lipoproteino kompleksai ir jų gamyba bei panaudojimai
US9518088B2 (en) * 2011-02-07 2016-12-13 Indiana University Research And Technology Corporation Peptide-phospholipid conjugates
US9539300B2 (en) 2012-03-31 2017-01-10 The Regents Of The University Of California Modulating disease through genetic engineering of plants
CN104768970B (zh) * 2012-11-06 2019-11-15 日内瓦大学 模拟肽
BR112015022624A2 (pt) 2013-03-14 2017-10-31 Uab Research Foundation regime de dose, e, método para tratamento de aterosclerose
AU2014228815B2 (en) 2013-03-15 2019-04-18 The Regents Of The University Of California Peptides having reduced toxicity that stimulate cholesterol efflux
US9850278B2 (en) 2013-04-25 2017-12-26 Carmel-Haifa University Economic Corp. Synthetic anti-inflammatory peptides and use thereof
EP2853259A1 (en) 2013-09-30 2015-04-01 Université Pierre et Marie Curie (Paris 6) Reconstituted high density lipoproteins composition and uses thereof
SG11201609084QA (en) 2014-05-02 2016-11-29 Cerenis Therapeutics Holding Sa Hdl therapy markers
CA2954475C (en) * 2014-07-31 2023-05-16 Uab Research Foundation Apoe mimetic peptides and higher potency to clear plasma cholesterol
EA201890271A1 (ru) 2015-07-10 2019-01-31 ПЕПТИНОВО БАЙОФАРМА, ЭлЭлСи Составы для повышения эффективности гидрофобных лекарственных средств
CN105061579B (zh) * 2015-08-18 2018-08-28 北京大学人民医院 脂多糖结合蛋白在制备类风湿关节炎相关药物中的应用
WO2018002673A1 (en) 2016-07-01 2018-01-04 N4 Pharma Uk Limited Novel formulations of angiotensin ii receptor antagonists
US20190167767A1 (en) 2016-07-27 2019-06-06 Hartis-Pharma Sa Therapeutic combinations to treat red blood cell disorders
US10905736B2 (en) 2016-09-28 2021-02-02 The Regents Of The University Of California Ezetimibe-associated ApoA-I mimetic peptides showing enhanced synergism
US10426817B2 (en) 2017-01-24 2019-10-01 Macregen, Inc. Treatment of age-related macular degeneration and other eye diseases with apolipoprotein mimetics
KR20230004605A (ko) 2020-04-16 2023-01-06 아비오닉스 파마 에스에이 지질 결합 단백질-기반 복합체를 사용하여 급성 상태를 치료하는 방법
AU2021354095A1 (en) 2020-10-01 2023-06-08 Abionyx Pharma Sa Compositions comprising lipid binding protein-based complexes for use for treating eye diseases
RU2760498C1 (ru) * 2021-02-09 2021-11-25 Вахтанг Владимирович Гобеджишвили Способ прогнозирования развития избыточного рубцеобразования у больных после проктологической операции
EP4322746A1 (en) 2021-04-15 2024-02-21 Abionyx Pharma SA Use of lipid binding protein-based complexes in organ preservation solutions
WO2023168350A2 (en) * 2022-03-03 2023-09-07 University Of Maryland, Baltimore Synthetic amphipathic helical peptides and treatment methods using synthetic amphipathic helical peptides
WO2023194797A1 (en) 2022-04-06 2023-10-12 Abionyx Pharma Sa Methods for treating eye diseases using lipid binding protein-based complexes
WO2023194798A1 (en) 2022-04-06 2023-10-12 Abionyx Pharma Sa Methods for treating leukocytosis, endothelial dysfunction and carditis using lipid binding protein-based complexes
WO2023237935A2 (en) 2022-06-10 2023-12-14 Abionyx Pharma Sa Methods for treating acute conditions using lipid binding protein-based complexes
WO2023237927A2 (en) 2022-06-10 2023-12-14 Abionyx Pharma Sa Methods for treating hyperinflammatory conditions using lipid binding protein -based complexes

Family Cites Families (30)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3767040A (en) 1971-03-01 1973-10-23 Minnesota Mining & Mfg Pressure-sensitive polyurethane adhesives
US4155913A (en) 1973-02-08 1979-05-22 Hoffmann-La Roche Inc. Thienotriazolodiazepine derivatives
NO812612L (no) 1980-08-06 1982-02-08 Ferring Pharma Ltd Enzym-inhibitorer.
US4643988A (en) 1984-05-15 1987-02-17 Research Corporation Amphipathic peptides
US5182261A (en) * 1989-07-13 1993-01-26 The Rockefeller University Modified transforming growth factor alpha oligopeptides and pharmaceutical compositions thereof
AU662885B2 (en) 1990-06-07 1995-09-21 Scripps Research Institute, The APO AI polypeptides, antibodies, and immunoassays
GB9022788D0 (en) 1990-10-19 1990-12-05 Cortecs Ltd Pharmaceutical formulations
US5646119A (en) * 1991-11-01 1997-07-08 Periodontix, Inc. D-amino acid histatin-based peptides as anti-fungal and anti-bacterial agents
SE9103701D0 (sv) * 1991-12-13 1991-12-13 Kabi Pharmacia Ab Apolipoprotein
JPH07507554A (ja) 1992-06-12 1995-08-24 エヌ・ブイ・イノゲネテイクス・エス・エイ 新規ペプチドおよびタンパク質，それらの調製方法，ならびにコレステロール受容体としてのそれらの使用
US5344822A (en) 1992-08-12 1994-09-06 The Rogosin Institute Methods useful in endotoxin prophylaxis and therapy
AU672028B2 (en) 1992-08-14 1996-09-19 Shino-Test Corporation Peptides containing respective amino acid sequences selected from among those of lipoprotein(a) and apolipoprotein(a), antibodies respectively recognizing these amino acid sequences, and method of assaying with these antibodies
US5721138A (en) 1992-12-15 1998-02-24 Sandford University Apolipoprotein(A) promoter and regulatory sequence constructs and methods of use
PT735893E (pt) * 1993-09-14 2009-03-06 Pharmexa Inc Péptidos que se ligam aos alelos pan dr para aumentar a resposta imunitária
US6169073B1 (en) * 1995-02-16 2001-01-02 Bayer Corporation Peptides and peptidomimetics with structural similarity to human p53 that activate p53 function
ATE230600T1 (de) 1995-09-09 2003-01-15 Hoffmann La Roche Verwendung eines thienotriazoldiazepins zur erhöhung des apolopoproteins a-i niveaus
US5912014A (en) 1996-03-15 1999-06-15 Unigene Laboratories, Inc. Oral salmon calcitonin pharmaceutical products
CN1109047C (zh) 1996-03-29 2003-05-21 D·博菲利 作为胆固醇和其它脂类摄取抑制剂的两亲分子
US6200955B1 (en) * 1996-06-11 2001-03-13 Commonwealth Biotechnologies, Inc. Heparin binding peptides
US6156727A (en) * 1996-09-05 2000-12-05 Uab Research Foundation Anti-atherosclerotic peptides and a transgenic mouse model of antherosclerosis
US6696545B1 (en) * 1997-04-11 2004-02-24 Sangstat Medical Corporation Cytomodulating lipophilic peptides for modulating immune system activity and inhibiting inflammation
WO2000006599A1 (en) * 1998-07-30 2000-02-10 Whitehead Institute For Biomedical Research Inhibitors of hiv membrane fusion
IN185761B (es) 1997-05-13 2001-04-28 Council Scient Ind Res
US6046166A (en) 1997-09-29 2000-04-04 Jean-Louis Dasseux Apolipoprotein A-I agonists and their use to treat dyslipidemic disorders
US6004925A (en) 1997-09-29 1999-12-21 J. L. Dasseux Apolipoprotein A-I agonists and their use to treat dyslipidemic disorders
US6518412B1 (en) * 1997-09-29 2003-02-11 Jean-Louis Dasseux Gene therapy approaches to supply apolipoprotein A-I agonists and their use to treat dyslipidemic disorders
US6037323A (en) * 1997-09-29 2000-03-14 Jean-Louis Dasseux Apolipoprotein A-I agonists and their use to treat dyslipidemic disorders
US6287590B1 (en) 1997-10-02 2001-09-11 Esperion Therapeutics, Inc. Peptide/lipid complex formation by co-lyophilization
WO1999047566A1 (en) 1998-03-17 1999-09-23 The Uab Research Foundation Synthetic peptides that enhance ldl uptake
US6664230B1 (en) 2000-08-24 2003-12-16 The Regents Of The University Of California Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis

Also Published As

Publication number Publication date
EP1864675A1 (en) 2007-12-12
CA2718348A1 (en) 2002-02-28
PT1318828E (pt) 2010-06-11
CN1931359B (zh) 2014-10-15
HK1110011A1 (en) 2008-07-04
HK1055400A1 (en) 2004-01-09
CY1110204T1 (el) 2015-01-14
EA009528B1 (ru) 2008-02-28
EP2198877B1 (en) 2013-10-16
CA2718348C (en) 2012-07-17
IL206114A (en) 2014-05-28
JP2007277250A (ja) 2007-10-25
CA2420222A1 (en) 2002-02-28
EP1318828A4 (en) 2005-04-27
CN1911439A (zh) 2007-02-14
EA200300289A1 (ru) 2003-08-28
CN1943781A (zh) 2007-04-11
DK1318828T3 (da) 2010-08-09
WO2002015923A1 (en) 2002-02-28
CN1943781B (zh) 2011-01-12
AU2006200035A1 (en) 2006-02-02
EP1864675B1 (en) 2011-04-27
JP2010280718A (ja) 2010-12-16
ES2438779T3 (es) 2014-01-20
AU2001286732B2 (en) 2005-10-06
ATE464060T1 (de) 2010-04-15
EP2198877A3 (en) 2010-12-01
CA2639651C (en) 2011-02-08
JP2006056899A (ja) 2006-03-02
AU2006200035B2 (en) 2007-09-13
JP2008150358A (ja) 2008-07-03
AU2009202705A1 (en) 2009-07-23
EP1318828A1 (en) 2003-06-18
CN1931358A (zh) 2007-03-21
US6933279B2 (en) 2005-08-23
AU8673201A (en) 2002-03-04
CN1469754A (zh) 2004-01-21
AU2009202705B2 (en) 2013-01-10
CN100579984C (zh) 2010-01-13
CA2639651A1 (en) 2002-02-28
IL154545A (en) 2011-10-31
CN1931359A (zh) 2007-03-21
DE60141842D1 (de) 2010-05-27
CN1739787A (zh) 2006-03-01
JP3822167B2 (ja) 2006-09-13
EP2198877A2 (en) 2010-06-23
JP4205713B2 (ja) 2009-01-07
JP4364222B2 (ja) 2009-11-11
CN1224419C (zh) 2005-10-26
US6664230B1 (en) 2003-12-16
DE60144543D1 (de) 2011-06-09
JP5241790B2 (ja) 2013-07-17
US20030045460A1 (en) 2003-03-06
CA2420222C (en) 2009-03-03
EP1318828B1 (en) 2010-04-14
AU2009202705C1 (en) 2013-10-17
EA006488B1 (ru) 2005-12-29
ATE506958T1 (de) 2011-05-15
JP2004506693A (ja) 2004-03-04
IL154545A0 (en) 2003-09-17
JP2006312650A (ja) 2006-11-16
EA200501744A1 (ru) 2006-06-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2342258T3 (es) Peptidos administrados oralmente para mejorar la aterosclerosis.
US7144862B2 (en) Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis
US7638494B2 (en) G-type peptides to ameliorate atherosclerosis
AU2001286732A1 (en) Orally administered peptides to ameliorate atherosclerosis
BRPI0610983A2 (pt) peptìdeos e miméticos de peptìdeos para tratar patologias caracterizadas por uma resposta inflamatória
JP2008513479A (ja) アテローム性動脈硬化症および他の病理を改善するためのｇ型ペプチドおよび他の薬剤
AU2007237157B2 (en) Peptides that ameliorate atherosclerosis