ES2338220T3 - Endoglucanasa egviii y acidos nucleicos que la codifican. - Google Patents
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Abstract
Polinucleótido aislado seleccionado entre el grupo que consiste en: (a) una secuencia de ácido nucleico que codifica o es complementaria con una secuencia que codifica un polipéptido EGVIII que tiene la actividad biológica de una endoglucanasa, que tiene por lo menos un 85%, por lo menos un 90%, por lo menos un 95% o 100% de identidad de secuencia con la secuencia de aminoácidos presentada en la Figura 2 o en la SEQ ID NO: 2 en toda la longitud de la secuencia de la Figura 2 o SEQ ID NO: 2; (b) una secuencia de ácido nucleico presentada como SEQ ID NO: 4, o su complemento; y (c) una secuencia de ácido nucleico que hibrida, bajo condiciones de alta estringencia a la secuencia presentada como SEQ ID NO: 4, o el complemento o un fragmento de la misma, en el que dicho polinucleótido aislado codifica un polipéptido que tiene la actividad biológica de una endoglucanasa.
Description
Endoglucanasa EGVIII y ácidos nucleicos que la
codifican.
La presente invención se refiere a secuencias de
ácido nucleico egl8 aisladas que codifican polipéptidos con
actividad endoglucanasa. La invención también se refiere a
construcciones de ácido nucleico, vectores y células huésped que
comprenden secuencias de ácido nucleico, así como procedimientos
para la producción de polipéptidos EGVIII recombinantes.
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La celulosa y la hemicelulosa son los materiales
vegetales más abundantes producidos mediante fotosíntesis. Pueden
degradarse y utilizarse como fuente de energía por parte de
numerosos microorganismos, incluidos bacterias, levaduras y hongos,
que producen enzimas extracelulares capaces de hidrólisis de los
sustratos poliméricos de azúcares monoméricas (Aro et al,
2001). Como los límites de los recursos no renovables se acercan, el
potencial de la celulosa para convertirse en un importante recurso
de energía renovable es enorme (Krishna et al, 2001). La
utilización eficaz de la celulosa a través de procesos biológicos,
es un camino para superar la escasez de alimentos, forrajes y
combustibles (Ohmiya et al, 1997).
Las celulasas son enzimas que hidrolizan la
celulosa (enlaces beta-1, 4-glucano
y beta-D glucosídicos), resultando en la formación
de glucosa, celobiosa, celooligosacáridos, y similares. Las
celulasas han sido tradicionalmente divididas en tres clases
principales: endoglucanasas (EC 3.2.1.4) ("EG"), exoglucanasas
o celobiohidrolasas (EC 3.2.1.91) ("CBH") y
beta-glucosidasas
([beta]-D-glucósido glucohidrolasa;
EC 3.2.1.21) ("BG"). (Knowles et al., 1987; Shulein,
1988). Las endoglucanasas actúan principalmente en las partes
amorfas de la fibra de celulosa, mientras que las celobiohidrolasas
también son capaces de degradar la celulosa cristalina (Nevalainen
y Penttila, 1995). Así, la presencia de un celobiohidrolasa en un
sistema de celulasa es necesaria para la solubilización eficiente
de la celulosa cristalina (Suumakki, et al. 2000). La
beta-glucosidasa actúa para liberar a unidades de
D-glucosa a partir de celobiosa, celooligosacáridos,
y otros glucósidos (Freer, 1993).
Las celulasas se sabe que son producidas por un
gran número de bacterias, levaduras y hongos. Algunos hongos
producen un sistema de celulasas completo capaces de degradar las
formas cristalinas de la celulosa, de manera que las celulasas se
producen fácilmente en grandes cantidades a través de la
fermentación. Los hongos filamentosos desempeñan un papel especial,
ya que muchas de levadura, como Saccharomyces cerevisiae,
carecen de la capacidad para hidrolizar la celulosa. Ver, por
ejemplo, Aro et al. 2001; Aubert et al. 1988;
Wood et al, 1988, y Coughlan, et al.
Las clasificaciones de la celulasa fúngica de
CBH, EG y BG pueden ampliarse para incluir múltiples componentes
dentro de cada clasificación. Por ejemplo, CBHs múltiple, EGs y BGs
han sido aisladas de una variedad de fuentes fúngicas incluyendo
Trichoderma reesei que contiene genes conocidos para 2 CBHS,
es decir, CBH I y CBH II, por lo menos 5 EGs, es
decir, EG I, por ejemplo II, EG III, EGIV y EGV, y al menos 2
BGs, es decir, BG1 y BG2.
Con el fin de convertir eficientemente la
celulosa en glucosa cristalina es necesario el sistema celulasa
completo que comprende componentes de cada una de las
clasificaciones CBH, EG y BG, con componentes aislados menos
eficaces en la hidrólisis de la celulosa cristalina (Filho et
al, 1996). Se ha observado una relación sinérgica entre los
componentes de la celulasa de distintas clasificaciones. En
particular, las celulasas tipo EG y las celulasas tipo CBH
interactúan de manera sinérgica para degradar más eficientemente la
celulosa. Ver, por ejemplo, Wood, 1985.
Las celulasas se conocen en la técnica por ser
útiles en el tratamiento de textiles con el fin de mejorar la
capacidad de limpieza de las composiciones de detergente, por su uso
como un agente suavizante, por mejorar el tacto y la apariencia de
los tejidos de algodón y similares (Kumar et al, 1997).
Se han descrito composiciones de celulasa que
contienen detergentes de limpieza con un rendimiento mejorado
(patente US 4.435.307; solicitudes GB 2.095.275 y 2.094.826) y por
su uso en el tratamiento de la tela para mejorar el tacto y la
apariencia de la industria textil (patentes US 5.648.263, 5.691.178,
Y 5.776.757; solicitud GB 1.358.599; The Shizuoka Prefectural
Hammamatsu Textile Industrial Research Institute Report, vol. 24,
pp. 54-61, 1986).
Por lo tanto, las celulasas producidas en hongos
y bacterias han recibido una atención considerable. En particular,
la fermentación de la Trichoderma spp. (por ejemplo,
Trichoderma longibrachiatum o Trichoderma reesei) se
ha demostrado que produce un sistema completo de celulasas capaces
de degradar formas cristalinas de la celulosa. La patente US
5.475.101 describe la purificación y la clonación molecular de una
enzima especialmente útil designada como EGIII que se deriva de la
Trichoderma longibrachiatum.
Aunque composiciones de celulasa han sido
descritas anteriormente, sigue habiendo una necesidad de nuevas y
mejoradas composiciones de celulasa para su uso en detergentes
domésticos, composiciones de lavado a la piedra o detergentes para
ropa, etc. Las celulasas que muestran resistencia a los agentes
tensioactivos (por ejemplo, sulfonatos de alquilo lineales,
LAS), un mejor rendimiento bajo condiciones de estrés térmico, el
aumento o disminución de la capacidad celulolíticas, y/o de alto
nivel de expresión in vitro, son de particular interés.
La invención se refiere a una proteína celulasa
aislada, identificada aquí como EGVIII, y ácidos nucleicos que
codifican EGVIII. Los polipéptidos o las proteínas EGVIII aquí
descritas pueden incluir una secuencia que tenga al menos el 80%,
85%, 90%, 95%, 98% o más de identidad de secuencia a la secuencia
presentada como SEQ ID NO: 2. En consecuencia, en un aspecto, la
invención proporciona un polipéptido EGVIII aislado con la
actividad biológica de una endoglucanasa, que comprende una
secuencia seleccionada del grupo que consiste de: (a) una secuencia
de aminoácidos que tenga al menos el 85%, al menos el 90%, al menos
95% o 100% de identidad de secuencia con la secuencia de
aminoácidos presentada en la Figura 2 o SEQ ID NO: 2 en toda la
longitud de la Figura 2 o secuencia SEQ ID NO: 2, y (b) un
fragmento biológicamente activo sustancialmente purificado de la
secuencia de aminoácidos presentada como SEQ ID NO: 2.
También se describen: (i) fragmentos de EGVIII,
preferiblemente al menos acerca de 20-100
aminoácidos de longitud, más preferiblemente de unos
100-200 aminoácidos de longitud, y (ii) una
composición farmacéutica que comprende EGVIII. El fragmento puede
corresponder al dominio N-terminal de EGVIII o al
dominio C-terminal de EGVIII.
En otro aspecto aquí descrito, hay un
polinucleótido aislado que tiene una secuencia que codifica EGVIII,
una secuencia complementaria a la secuencia de codificación
egl8, y una composición que comprende el polinucleótido. El
polinucleótido puede ser ARNm, ADN, ADNc, ADN genómico, o un análogo
de antisentido del mismo.
Un polinucleótido egl8 puede comprender
una molécula aislada de ácido nucleico que se hibrida con el
complemento de los ácidos nucleicos presentados como SEQ ID NO: 1,
bajo condiciones de rigurosidad moderada a alta, donde la molécula
de ácido nucleico codifica un polipéptido EGVIII que muestra una
actividad endoglucanasa.
El polinucleótido puede codificar una proteína
EGVIII que tiene al menos el 80%, 85%, 90%, 95%, 98% o más de
identidad de secuencia a la secuencia presentada como SEQ ID NO: 1.
En una realización concreta, el polinucleótido comprende una
secuencia sustancialmente idéntica a la SEQ ID NO: 1. La invención
también contempla fragmentos de polinucleótidos, de preferencia, de
al menos aproximadamente 15-30 nucleótidos de
longitud.
En consecuencia, la invención en un aspecto
proporciona un polinucleótido aislado seleccionado del grupo
consistente en: (a) una secuencia de ácido nucleico que codifica o
es complementario a una secuencia que codifica un polipéptido
EGVIII con la actividad biológica de la endoglucanasa y que tenga al
menos el 85%, al menos el 90%, al menos el 95% o 100% de identidad
de secuencia con la secuencia de aminoácidos presentada en la
Figura 2 o en la SEQ ID NO: 2 en toda la longitud de la Figura 2 o
la secuencia SEQ ID NO: 2 (b) una secuencia de ácido nucleico
presentada como SEQ ID NO: 4, o el complemento del mismo, y (c) una
secuencia de ácido nucleico que se híbrida, en condiciones de alta
rigurosidad a la secuencia presentada como SEQ ID NO: 4, o el
complemento o un fragmento de la misma, en la que dicho
polinucleótido aislado codifica un polipéptido que tienen la
actividad biológica de una endoglucanasa.
Se describen aquí vectores de expresión
recombinante que contienen una secuencia de ácido nucleico que
codifica EGVIII o un fragmento o variante de empalme de la misma,
unido operativamente a los elementos reguladores eficaces para la
expresión de la proteína en un huésped seleccionado, y una célula
huésped que contiene el vector.
En consecuencia, la invención proporciona además
una construcción de expresión que incluye una secuencia de ácido
nucleico como se define en la reivindicación 1. También se ofrece un
vector que contiene la construcción de expresión y un vector que
comprende un polinucleótido de la invención como en la
reivindicación 1, unido operativamente a secuencias de control
reconocidas por una célula huésped transformada con el vector, y una
célula hospedadora transformada con un vector de este tipo, así
como una célula huésped recombinante que comprende un
polinucleótido de la invención tal como se establece en la
reivindicación 1.
La invención también incluye un procedimiento
para producir EGVIII mediante técnicas recombinantes, mediante el
cultivo de células huésped procariotas o eucariotas recombinantes
que comprenden la secuencia de ácido nucleico que codifica EGVIII
bajo condiciones eficaces para promover la expresión de la proteína,
y la posterior recuperación de la proteína de la célula huésped o
el medio de cultivo celular.
En consecuencia, la invención también
proporciona un procedimiento para expresar EGVIII en una célula,
comprendiendo el procedimiento: (i) proporcionar células huésped que
han sido transducidas, transformadas o transfectadas con un vector
de expresión que comprende una secuencia de ácido nucleico de
codificación de EGVIII según la reivindicación 1, (ii) el cultivo
de las células.
También se describe aquí un anticuerpo
específicamente inmunorreactivo con EGVIII, y los procedimientos
analíticos para la detección de ácidos nucleicos egl8 y
proteínas EGVIII.
En un aspecto adicional, la invención
proporciona una célula huésped recombinante que comprende una
supresión o inserción u otra modificación en un gen egl8 con
una secuencia de ácido nucleico como se define en la reivindicación
1, cuya eliminación, inserción u otra modificación que inactiva el
gen e impide la producción de polipéptido EGVIII, así como un
oligonucleótido antisentido complementario a un ARN mensajero que
codifica un polipéptido EGVIII teniendo la secuencia presentada
como SEQ ID NO: 2, donde a la exposición a una célula huésped
productora de endoglucanasa, dicho oligonucleótido disminuye o
inhibe la producción de endoglucanasa por dicha célula huésped. La
invención también proporciona una composición de detergente,
comprendiendo dicha composición un polipéptido según la invención.
En otro aspecto, la invención se refiere a una composición
enzimática útil en la conversión de la celulosa en azúcares y/o
etanol, comprendiendo la composición enzimática EGVIII. La
composición puede comprender además enzimas celulasas adicionales,
tales como otras endoglucanasas, beta-glucosidasas
y/o celbiohidrolasas. La composición puede ser enriquecida en
EGVIII. Así, en otro aspecto la invención proporciona un
procedimiento de conversión de celulosa en etanol, comprendiendo el
procedimiento el uso de una composición enzimática que comprende un
polipéptido EGVIII según la invención para hidrolizar la celulosa en
sus componentes azúcar.
La figura 1 es una representación única en
cadena de la secuencia de ácidos nucleicos (SEQ ID NO: 1), de la
T. reesei egl8 ADNc, donde la secuencia de no
codificación se indica en negrita.
La figura 2 muestra la secuencia de aminoácidos
predicha de (SEQ ID NO: 2) y la secuencia de señal (SEQ ID NO: 3)
sobre la base de la secuencia de nucleótidos proporcionada en la
figura 1, donde la secuencia de señal se indica en negrita.
Salvo indicación en contrario, todos los
términos técnicos y científicos utilizados en este documento tienen
el mismo significado que tendrían para un experto en la técnica de
la presente invención. Los profesionales son especialmente
dirigidos a Sambrook et al., 1989, y Ausubel FM et
al., 1993, para las definiciones y los términos de la técnica.
Debe entenderse que esta invención no se limita a la metodología
particular, protocolos y reactivos descritos, ya que estos pueden
variar.
Todas las publicaciones aquí citadas se
incorporan expresamente aquí como referencia con el fin de
describir y divulgar composiciones y metodologías que pueden
utilizarse en relación con la invención. El término
"polipéptido" como se usa aquí se refiere a un compuesto
formado por una sola cadena de residuos de aminoácidos unidos por
enlaces peptídicos. El término "proteína" como se utiliza aquí
puede ser sinónimo del término "polipéptido" o puede
referirse, además, a un complejo de dos o más polipéptidos.
El término "molécula de ácido nucleico"
incluye ARN, ADN y moléculas de ADNc. Se entenderá que, como
resultado de la degeneración del código genético, puede ser
producida una multitud de secuencias de nucleótidos que codifican
una proteína dada, tal como EGVIII. La presente invención contempla
todas las posibles variantes de secuencias de nucleótidos, que
codifique al EGVIII, todos los cuales son posibles debido a la
degeneración del código genético.
Una construcción o secuencia de ácido nucleico
"heteróloga" tiene una porción de la secuencia que no es
nativa de la célula en la que se expresa. Heteróloga, con respecto a
una secuencia de control se refiere a una secuencia de control
(es decir promotor o potenciador), que no funciona en la
naturaleza para regular el mismo gen cuya expresión esta regulando
actualmente. En general, las secuencias de ácidos nucleicos
heterólogas no son endógenas a la célula o parte del genoma en el
que están presentes, y se han añadido a la célula, mediante
infección, transfección, transformación, microinyección,
electroporación, o similar. Una construcción de ácido nucleico
"heteróloga" puede contener una combinación de secuencia de
control/secuencia de codificación de ADN que es la misma o
diferente de una combinación secuencia de control/secuencia
codificante del ADN encontrado en la célula de origen.
\newpage
Como se usa aquí, el término "vector" se
refiere a una construcción de un ácido nucleico diseñada para la
transferencia entre diferentes células huésped. Un "vector de
expresión" se refiere a un vector que tiene la capacidad de
incorporar y expresar los fragmentos de ADN heterólogo en una célula
extraña. Muchos vectores de expresión procariotas y eucariotas
están comercialmente disponibles. La selección de los vectores de
expresión adecuada está dentro del conocimiento de los que tienen
habilidad en la materia.
En consecuencia, un "casete de expresión" o
"vector de expresión" es una construcción de ácido nucleico
generada de forma recombinante o sintéticamente, con una serie de
elementos de ácido nucleico especificados que permiten la
transcripción de un ácido nucleico particular en una célula
objetivo. El casete de expresión recombinante puede ser incorporado
en un plásmido, cromosomas, ADN mitocondrial, ADN de plastidios,
virus, o un fragmento de ácido nucleico. Normalmente, la parte de
casete de expresión recombinante de un vector de expresión incluye,
entre otras secuencias, una secuencia de ácido nucleico a
transcribir y un promotor.
Como se usa aquí, el término "plásmido" se
refiere a una construcción de ADN de doble cadena (ds) circular que
se usa como vector de clonación, y que forma un elemento genético
auto-replicante extracromosómico en muchas
bacterias y algunos eucariotas.
Como se usa aquí, el término "secuencia de
nucleótidos de codificación de marcador seleccionable" se
refiere a una secuencia de nucleótidos que es capaz de expresión en
las células y donde la expresión del marcador seleccionable
confiere a las células que contienen el gen expresa la capacidad de
crecer en la presencia de un correspondiente agente selectivo, o
bajo condiciones de crecimiento selectivo correspondientes.
Como se usa aquí, el término "promotor"
hace referencia a una secuencia de ácido nucleico que funciona para
dirigir la transcripción un gen downstream. El promotor generalmente
será adecuado para la célula huésped en la que se expresa el gen de
interés. El promotor, junto con otras secuencias de ácido nucleico
reguladoras de la transcripción y de traducción (también llamadas
"secuencias de control") es necesario para expresar un gen
determinado. En general, las secuencias reguladoras de la
transcripción y translación incluyen, pero no están limitadas a,
las secuencias de promotor, los sitios de unión del ribosoma,
secuencias de inicio y de detención de la transcripción, secuencias
de inicio y de detención de traducción y secuencias potenciadoras o
activadoras.
"Gen quimérico" o "construcción de ácido
nucleico heterólogo", tal como se define aquí se refiere a un
gen no nativo (es decir, uno que se ha introducido en un
huésped) que puede estar compuesto de partes de genes diferentes,
incluidos los elementos regulatorios. Una construcción de un gen
quimérico para la transformación de una célula huésped está
típicamente compuesto de una región reguladora de la transcripción
(promotor) operativamente unida a una secuencia de codificación de
proteínas heterólogas, o, en un gen quimérico marcador
seleccionable, a un gen marcador de selección que codifica una
proteína que confiere resistencia a los antibióticos a las células
transformadas. Un gen quimérico típico de la presente invención,
para transformación en una célula huésped, incluye una región
reguladora de la transcripción que es constitutiva o inducible, una
secuencia de codificación de proteína, y una secuencia de
terminación. Una construcción de gen quimérico puede incluir
también una segunda secuencia de ADN que codifica un péptido señal
si se desea la secreción de la proteína objetivo.
Un ácido nucleico está "operativamente
unido" cuando se coloca en una relación funcional con otra
secuencia de ácido nucleico. Por ejemplo, el ADN que codifica un
líder de secreción unido operativamente a un ADN para un
polipéptido si éste se expresa como un preproteína que participa en
la secreción del polipéptido, un promotor o potenciador está unido
operativamente a una secuencia de codificación si afecta a la
transcripción de la de secuencia, o un sitio de unión del ribosoma
está unido operativamente a una secuencia de codificación si se
coloca con el fin de facilitar la traducción. En general, "unido
operativamente" significa que las secuencias de ADN que están
vinculadas son contiguas, y, en el caso de un líder de secreción,
contiguo y en el marco de lectura. Sin embargo, los mejoradores no
tienen que ser contiguos. La vinculación es realizada por ligadura
en los sitios de restricción convenientes. Si dichos sitios no
existen, los adaptadores de oligonucleótidos sintéticos, enlaces o
cebadores para PCR se utilizan de acuerdo con la práctica
convencional.
Como se usa aquí, el término "gen", indica
el segmento de ADN que participa en la producción de una cadena de
polipéptidos, que puede o no incluir las regiones anterior y
posterior a la región de codificación, por ejemplo 5' no
traducido (5' UTR) o secuencias "líder" y 3' UTR o secuencias
"remolque", así como secuencias que intervienen (intrones)
entre los distintos segmentos de codificación (exones).
En general, las moléculas de ácido nucleico que
codifican EGVIII o un análogo u homólogo del mismo se hibridarán,
bajo condiciones de moderada a alta rigurosidad a la secuencia aquí
proporcionada como SEQ ID NO: 1. Sin embargo, en algunos casos se
emplea una secuencia de nucleótidos que codifica EGVIII que posee
un uso de codón sustancialmente diferente, mientras que la proteína
codificada por la secuencia de nucleótidos que codifica EGVIII
tiene la misma o sustancialmente la misma secuencia de aminoácidos
de la proteína nativa. Por ejemplo, la secuencia de codificación
puede ser modificada para facilitar la expresión más rápida de
EGVIII en un sistema particular de expresión procariota o
eucariota, de conformidad con la frecuencia con que un codón
particular es utilizado por el huésped. Te'o, et al. (2000),
por ejemplo, describe la optimización de la expresión de genes en
hongos filamentosos.
Una secuencia de ácido nucleico se considera
"selectivamente hibridable" a una secuencia de ácido nucleico
de referencia, si las dos secuencias específicamente se hibridan
entre sí bajo condiciones de hibridación y de lavado de rigor
moderado a alto. Las condiciones de hibridación se basan en la
temperatura de fusión (Tm) de los complejos de unión de ácidos
nucleicos o de la sonda. Por ejemplo, "un rigor máximo"
normalmente se produce alrededor de Tm-5ºC (5º por
debajo de la Tm de la sonda), "alto rigor", aproximadamente a
5-10º por debajo de la Tm; "rigor intermedio",
aproximadamente a 10-20º por debajo de la Tm de la
sonda, y "rigor bajo", aproximadamente a
20-25º por debajo de la Tm. Funcionalmente, las
condiciones de un máximo de rigor se pueden utilizar para
identificar secuencias que tienen identidad estricta o identidad
casi-estricta con la sonda de hibridación, mientras
que las condiciones de rigor alto se utilizan para identificar
secuencias que tienen aproximadamente el 80% o más de identidad de
secuencia con la sonda.
Condiciones de hibridación de rigor moderado y
alto son bien conocidas en la técnica (véase, por ejemplo,
Sambrook, et al, 1989, capítulos 9 y 11, y en Ausubel, F.M.,
et al, 1993,. Un ejemplo de las condiciones de rigor alto
incluye hibridación a aproximadamente 42ºC en 50% formamida, 5X SSC,
solución Denhardt 5X, 0,5% SDS y 100 \mug/ml de ADN portador
desnaturalizado seguido de un lavado en dos veces en 2X SSC y 0,5%
de SDS a la temperatura ambiente y dos veces más en 0,1X SSC y 0,5%
SDS a 42ºC.
Como se usa aquí, "recombinante" hace
referencia a una célula o un vector, que ha sido modificado por la
introducción de una secuencia de ácido nucleico heteróloga o que la
célula se deriva de una célula así modificada. Así, por ejemplo,
células recombinantes expresan genes que no se encuentran en forma
idéntica en la forma nativa (no recombinante) de la célula o
expresan genes nativos que de otra manera se expresan anormalmente,
se sub-expresan o no se expresan en absoluto como
consecuencia de intervención humana deliberada.
Como se usa aquí, los términos
"transformado", "establemente transformado" o
"transgénicos", con referencia a una célula significa que la
célula tiene una secuencia de ácidos nucleicos
no-nativos (heteróloga) integrada en su genoma o
como plásmido episomal que se mantiene a través de múltiples
generaciones.
Tal como se usa aquí, el término
"expresión" se refiere al proceso mediante el cual un
polipéptido se produce sobre la base de la secuencia del ácido
nucleico de un gen. El proceso incluye tanto la transcripción como
la traducción.
El término "introducido" en el contexto de
la inserción de una secuencia de ácido nucleico en una célula
significa "transfección" o "transformación" o
"transducción", e incluye referencia a la incorporación de una
secuencia de ácido nucleico en una célula eucariota o procariota,
donde la secuencia de ácido nucleico puede incorporarse en el
genoma de la célula (por ejemplo, cromosoma, plásmido, plástido, o
ADN mitocondrial), convertida en una de réplica autónoma, o
expresado de forma transitoria (por ejemplo, ARNm transfectado).
A continuación el término "expresión
EGVIII" se refiere a la transcripción y traducción del gen
egl8, cuyos productos incluyen precursores de ARNm, ARNm,
polipéptido, polipéptidos procesados de manera
post-translacional, y sus derivados, incluidos
EGVIII de especies relacionadas, tal como Trichoderma
longibrachiatum (reeset), Trichoderma viride, Trichoderma koningii,
Hypocrea jecorina y Hypocrea schweinitzii. A modo de
ejemplo, los ensayos de expresión EGVIII incluyen Western blot para
proteínas EGVIII, análisis de Northern blot y ensayos de reacción
en cadena de polimerasa transciptasa inversa
(RT-PCR) para ARNm EGVIII, y ensayos de actividad
de endoglucanasa tal como se describe en Schoemaker S.P. y Brown
R.D. Jr. (Biochim. Biophys. Acta, 1978, 523:133-146)
y Schulein (1988).
El término "empalme alternativo" se refiere
al proceso mediante con el cual se generan varias isoformas del
polipéptido a partir de un solo gen, y consiste en el empalme de
exones no consecutivos juntos durante el procesamiento de algunas,
pero no todas, de las transcripciones de los genes. Así, un exón
particular puede conectarse a uno cualquiera de varios exones
alternativos para formar ARN mensajero. Los ARNm empalmados
alternativamente producen polipéptidos ("variantes de
empalme") en el que algunas partes son comunes, mientras que
otras partes son diferentes.
El término "secuencia de señal" se refiere
a una secuencia de aminoácidos en la porción terminal N de una
proteína que facilita la secreción de la forma madura de la proteína
fuera de la célula. La forma madura de la proteína extracelular
carece de la secuencia de señal que se separa durante el proceso de
secreción.
Mediante el término "célula huésped" se
entiende una célula que contiene un vector y soporta la replicación
y/o la transcripción o la transcripción y la traducción (expresión)
de la construcción de expresión. Las células huésped para su uso en
la presente invención pueden ser células procariotas, tales como
E. coli, o células eucariotas, tales como levadura, planta,
insecto, anfibio, o células de mamífero. En general, las células
huésped son hongos filamentosos.
El término "hongos filamentosos" significa
cualquiera y todos los hongos filamentosos reconocidos por los
expertos en la materia. Un hongo preferido se selecciona del grupo
formado por Aspergillus, Trichoderma, Fusarium, Chrysosporium,
Penicillium, Humicola, Neurospora, o formas sexuales alternativas de
los mismos, tal como Emericella, Hypocrea.
El término "celooligosacárido" se refiere a
grupos de oligosacáridos que contienen 2-8 unidades
de glucosa y tienen enlaces \beta-1,4, por
ejemplo, celobiosa.
El término "celulasa" se refiere a una
categoría de enzimas capaces de hidrolizar polímeros de celulosa
para acortar oligómeros celo-oligosacáridos,
celobiosa y/o glucosa. Numerosos ejemplos de celulasas, tal como
exoglucanasas, exocelobiohidrolasas, endoglucanasas, y glucosidasas
se han obtenido a partir de organismos celulolíticos, incluyendo
particularmente hongos, plantas y bacterias.
El término "dominio de unión de celulosa"
tal como se usa aquí se refiere a la parte de la secuencia de
aminoácidos de una celulasa o de una región de la enzima que
interviene en la actividad de unión de la celulosa de una celulasa
o derivada de la misma. Los dominios de unión de celulosa
generalmente funcionan mediante la unión no covalente de la
celulasa a la celulosa, un derivado de la celulosa u otro
polisacárido equivalente del mismo. Los dominios de unión de
celulosa permiten o facilitan la hidrólisis de las fibras de
celulosa de la región del núcleo catalítico estructuralmente
distinto, y típicamente funcionan independientes del núcleo
catalítico. Así, un dominio de unión de celulosa no tendrá la
actividad hidrolítica significativa atribuible a un núcleo
catalítico. En otras palabras, un dominio de unión de celulosa es un
elemento estructural de la estructura terciaria de la proteína
enzimática de celulasa que es distinto del elemento estructural que
posee la actividad catalítica.
Tal como se usa aquí, el término
"surfactante" se refiere a cualquier compuesto generalmente
reconocido en la técnica como que tiene calidades activas de
superficie. Así, por ejemplo, los surfactantes contienen
surfactantes aniónicos, catiónicos y no iónicos, tal como los que se
encuentran comúnmente en detergentes. Los surfactantes aniónicos
incluyen alquilbenzenosulfonatos lineales o ramificados, sulfatos de
éter de alquilo o alquenilo que tienen grupos alquilo lineales o
ramificados o grupos alquenilo; sulfatos de alquilo o alquenilo;
olefinsulfonatos y alcanosulfonatos. Los surfactantes amfolíticos
incluyen sulfonatos de sal de amonio cuaternario, y surfactantes
amfolíticos de tipo betaína. Estos surfactantes amfolíticos tienen
tanto grupos de carga positiva como negativa en la misma molécula.
Los surfactantes no iónicos pueden comprender éteres de
polioxialquileno, así como alcanolamidas de ácidos grasos mayores o
aductos de óxido de alqueno de las mismas, monoésteres de glicerina
de ácidos grasos, y similares.
Tal como se usa aquí, el término "tejido que
contiene celulosa" se refiere a cualquier tejido cosido o de sin
coser, hilos o fibras de algodón o no de algodón que contienen
celulosa o mezclas de celulosa que contienen algodón o no algodón,
incluyendo celulósicos naturales y celulósicos artificiales (tal
como yute, lino, ramio, rayón, y liocel).
Tal como se usa aquí, el término "tejido que
contiene algodón" se refiere a tejidos cosidos o sin coser,
hilos o fibras de algodón puro o mezclas de algodón con inclusión de
algodón en tejidos tejidos de algodón, ropa vaquera de algodón,
hilos de algodón, algodón en bruto y similares.
Tal como se usa aquí, el término "composición
de lavado a la piedra" se refiere a una formulación para uso en
tejidos que contienen celulosa de lavado a la piedra. Las
composiciones de lavado a la piedra se utilizan para modificar los
tejidos que contienen celulosa antes de su venta, es decir,
durante el proceso de fabricación. Por el contrario, las
composiciones detergentes están pensadas para la limpieza de la ropa
sucia y no se utilizan durante el proceso de fabricación.
Tal como se usa aquí, el término "composición
detergente" se refiere a una mezcla que está destinada para su
uso en un medio de lavado para el lavado de tejidos que contienen
celulosa sucia. En el contexto de la presente invención, las
composiciones pueden incluir, además de celulasas y surfactantes,
enzimas hidrolíticas adicionales, constructores, agentes
blanqueadores, activadores de blanqueo, agentes azulante y tintes
fluorescentes, inhibidores de aglomeración, agentes de
enmascaramiento, activadores de celulasas, antioxidantes y
solubilizantes.
Tal como se usa aquí, el término "reducción o
eliminación de la expresión del gen egl8" significa que
el egl8 gen ha sido eliminado del genoma y, por tanto no
puede ser expresado por el microorganismo huésped recombinante, o
que el gen egl8 ha sido modificado de tal manera que una
enzima EGVIII funcional no es producida por el microorganismo
huésped recombinante.
El término "egl8 alterado" o "gen
egl8 modificado" significa que la secuencia de ácido
nucleico del gen ha sido alterada mediante la eliminación, adición
y/o manipulación de la secuencia de codificación o que la secuencia
de aminoácidos de la proteína expresada ha sido modificada.
Tal como se usa aquí, el término
"purificar" generalmente se refiere a someter a los ácidos
nucleicos o a las proteínas transgénicas que contienen células a
purificación bioquímica y/o a cromatografía de columna.
Tal como se usa aquí, los términos "activo"
y "biológicamente activo" se refieren a una actividad biológica
asociada a una determinada proteína, tal como la actividad
enzimática asociada con una proteasa. De ello se deduce que la
actividad biológica de una proteína se refiere a cualquier actividad
biológica que suele atribuirse a esa proteína por parte de los
expertos en la materia.
Tal como se usa aquí, el término
"enriquecido" significa que el EGVIII se encuentra en una
concentración que es mayor en relación a la concentración de EGVIII
encontrada en un tipo salvaje, o en la composición de celulasa
fúngica que se produce de manera natural. Los términos enriquecida,
elevada y reforzada pueden utilizarse indistintamente aquí.
Un tipo de composición de celulasa fúngica
salvaje es una producida por una fuente fúngica de origen natural y
que comprende uno o más componentes BGL, CBH y EG, donde cada uno de
estos componentes se encuentra en la proporción producida por la
fuente fúngica. Así, una composición EGVIII enriquecida tendría
EGVIII en una relación alterada, en donde la proporción de EGVIII
respecto a otros componentes de celulasa (es decir, CBHs,
beta-glucosidasas y otras endoglucanasas) es
elevada. Esta proporción puede incrementarse ya sea aumentando
EGVIII o disminuyendo (o eliminando) por lo menos uno de los otros
componentes mediante cualquier medio conocido en la técnica.
Así, como ilustración, un sistema de celulasa de
origen natural puede ser purificado en componentes sustancialmente
puros mediante técnicas de separación publicadas en la literatura,
tal como cromatografía de intercambio iónico con un pH adecuado,
cromatografía de afinidad, exclusión de tamaño y similares. Por
ejemplo, en la cromatografía de intercambio iónico (generalmente
cromatografía de intercambio aniónico), es posible separar los
componentes de celulasa por elución con un gradiente de pH, o un
gradiente de sal, o ambos, un gradiente de pH y un gradiente de
sal. La EGVIII purificada se puede agregar a la solución enzimática,
resultando en una solución EGVIII enriquecida. También es posible
elevar la cantidad de EGVIII producida mediante un microbio usando
procedimientos de genética molecular que sobreexpresan el gen que
codifica EGVIII, posiblemente en conjunción con la supresión de uno
o más genes que codifican otras celulasas.
Las celulasas fúngicas pueden contener más de un
componente EG. Los diferentes componentes generalmente tienen
diferentes puntos isoeléctricos que permiten su separación mediante
cromatografía de intercambio iónico y similares. Se puede utilizar
un único componente EG, o una combinación de componentes EG, en una
solución enzimática.
Cuando se utiliza en soluciones enzimáticas, el
componente EG se añade generalmente en una cantidad suficiente para
permitir el mayor índice de liberación de azúcares solubles de la
biomasa. La cantidad de componente EG añadido depende del tipo de
biomasa que se sacarifica que puede determinarse fácilmente por
parte del experto en la materia. Sin embargo, cuando se utiliza, el
porcentaje en peso del componente EGVIII respecto a cualquier tipo
de componente CBH presente en la composición de celulasa es de
aproximadamente 1 preferentemente, preferentemente aproximadamente
5, preferiblemente aproximadamente 10, preferentemente
aproximadamente 15 o, preferiblemente, aproximadamente el 20 por
ciento en peso a preferentemente el 25 aproximadamente,
preferentemente 30 aproximadamente, preferentemente aproximadamente
35, preferentemente aproximadamente 40, preferentemente
aproximadamente 45 o, preferentemente, aproximadamente el 50 por
ciento en peso. Además, los intervalos preferidos puede ser de
aproximadamente 0,5 a aproximadamente el 15 por ciento en peso, de
0,5 a aproximadamente el 20 por ciento en peso, de aproximadamente
1 a aproximadamente 10 por ciento en peso, de aproximadamente 1 a 15
por ciento en peso, de aproximadamente 1 a 20 por ciento en peso,
de 1 a aproximadamente el 25 por ciento en peso, de aproximadamente
5 a aproximadamente 20 por ciento en peso, de aproximadamente 5 a
aproximadamente 25 por ciento en peso, de aproximadamente 5 a
aproximadamente 30 por ciento en peso, de aproximadamente 5 a
aproximadamente 35 por ciento en peso, de aproximadamente 5 a
aproximadamente 40 por ciento en peso, de aproximadamente 5 a 45
por ciento en peso, de aproximadamente 5 a aproximadamente 50 por
ciento en peso, de aproximadamente 10 a aproximadamente 20 por
ciento en peso, de aproximadamente 10 a aproximadamente 25 por
ciento en peso, de aproximadamente 10 a 30 por ciento en peso, de
aproximadamente 10 a 35 por ciento en peso, de aproximadamente 10 a
40 por ciento en peso, de aproximadamente 10 a 45 por ciento en
peso, de aproximadamente 10 a 50 por ciento en peso, de
aproximadamente 15 a 20 por ciento en peso, de aproximadamente 15 a
25 por ciento en peso, de aproximadamente 15 a 30 por ciento en
peso, de aproximadamente 15 a un 35 por ciento en peso, de
aproximadamente 15 a 30 por ciento en peso, de aproximadamente 15 a
45 por ciento en peso, de aproximadamente 15 a 50 por ciento en
peso.
Los hongos filamentosos incluyen todas las
formas filamentosas de la subdivisión Eumycota y Oomycota. Los
hongos filamentosos se caracterizan por tener un micelio vegetativo
que tiene una pared celular compuesta de quitina, glucano,
chitosan, manano y otros polisacáridos complejos, con un crecimiento
vegetativo por la elongación hifal y catabolismo de carbono que es
obligadamente aeróbico.
En la presente invención, la célula madre de los
hongos filamentosos puede ser una célula de una especie de, pero no
limitado a, Trichoderma, por ejemplo, Trichoderma longibrachiatum
(reesei), Trichoderma viride, Trichoderma koningii, Trichoderma
harzianum, Penicillium sp.; Humicola sp., incluyendo Humicola
insolens; Chrysosporium sp., incluyendo lucknowense C.; Sp
catenulatum.; Aspergillus sp.; Fusarium sp., Neurospora sp. Sp
Hypocrea., y Emericella sp. Como se usa aquí, el término
"Trichoderma" o "Trichoderma sp." se refiere
a cualquier cepa de hongos que han sido previamente clasificada
como Trichoderma o está actualmente clasificada como
Trichoderma.
En una realización preferida, la célula madre de
los hongos filamentosos es una célula Aspergillus niger,
Aspergillus awamori, Aspergillus aculeatus, o Aspergillus
nidulans.
En otra realización preferida, la célula madre
de los hongos filamentosos es una célula Trichoderma
reesei.
Las celulasas se conocen en la técnica como
enzimas que hidrolizan la celulosa (enlaces
beta-1,4-glucano y beta
D-glucosídicos), resultando en la formación de
glucosa, celobiosa, celooligosacáridos, y similares. Como se indica
anteriormente, las celulasas tradicionalmente se han dividido en
tres clases principales: endoglucanasas (EC 3.2.1.4) ("EG"),
exoglucanasas o celobiohidrolasas (EC 3.2.1.91) ("CBH") y
beta-glucosidasas (CE 3.2.1.21) ("BG").
(Knowles, et al., 1987; Schulein, 1988).
Algunos hongos producen sistemas de celulasas
completos que incluyen exocelobiohidrolasas o celulasas de tipo
CBH, endoglucanasas o, celulasas de tipo EG y
beta-glucosidasas o celulasas de tipo BG (Schulein,
1988). Sin embargo, a veces estos sistemas carecen de celulasas de
tipo CBH y las celulasas bacterianas también incluyen típicamente
pocas o ningunas celulasas de tipo CBH. Además, se ha demostrado que
los componentes EG y los componentes CBH interactúan de manera
sinérgica para degradar de manera más eficiente la celulosa. Ver,
por ejemplo, Wood, 1985. Los diferentes componentes, es
decir, las diferentes endoglucanasas y exocelobiohidrolasas en
un sistema de celulasa multicomponente o completo, generalmente
tienen propiedades diferentes, tal como punto isoeléctrico, peso
molecular, grado de glucosilación, especificidad de sustrato y
patrones de acción enzimática.
Se cree que las celulasas de tipo endoglucanasa
hidrolizan las uniones internas
beta-1,4-glucosídicas en regiones
de baja cristalinidad de la celulosa y que las celulasas de tipo
exo-celobiohidrolasa hidrolizan celobiosa a partir
del extremo de reducción o de no reducción de la celulosa. De ello
se deduce que la acción de los componentes de endoglucanasa puede
facilitar enormemente la acción de las exocelobiohidrolasas mediante
la creación de nuevos extremos de cadena que son reconocidos
mediante componentes de exo-celobiohidrolasa.
Además, las celulasas de tipo beta-glucosidasa se
han demostrado que catalizan la hidrólisis de
\beta-D-glucósidos alquilo o
arilo, tal como \beta-D-glucósido
metilo y glucósido p-nitrofenil, así como glucósidos
que contienen únicamente residuos de carbohidratos, tales como
celobiosa. Esto hace la glucosa como el único producto para los
microorganismos y reduce o elimina la celobiosa que inhibe las
celobiohidrolasas y las endoglucanasas.
Por consiguiente, las celulasas de tipo
\beta-glucosidasa se consideran una parte
integrante del sistema de celulasa, porque activan la reacción
global a la glucosa. Una mayor expresión de BG en T. reesei
se ha demostrado que mejora la degradación de la celulosa en
glucosa. Ver la patente EP0562003. Además, las
\beta-glucosidasas pueden catalizar la hidrólisis
de una serie de diferentes sustratos, y por lo tanto,son de
utilidad en una gran variedad de aplicaciones diferentes. Algunas
\beta-glucosidasas se pueden añadir a la uva
durante la producción de vino para mejorar el potencial aromático
del producto de vino terminado. Sin embargo, otra aplicación puede
ser el uso de \beta-glucosidasa en la fruta para
mejorar el aroma de la misma. Alternativamente, la
\beta-glucosidasa puede utilizarse directamente en
aditivos alimentarios o en la transformación del vino para realzar
el sabor y el aroma.
Las celulasas también encuentran una serie de
usos en composiciones de detergente incluyendo mejorar la capacidad
de limpieza, como agente suavizante y mejorar el tacto de los
tejidos de algodón (Hemmpel, 1991; Tyndall, 1992; Kumar et
al, 1997). Aunque el mecanismo no es parte de la invención, se
han atribuido propiedades suavizantes y de restauración del color
de la celulasa a los componentes de endoglucanasa alcalina en
composiciones de celulasas, como lo demuestra las patentes
5.648.263, 5.691.178, y 5.776.757, que describen que las
composiciones de detergente que contienen una composición de
celulasa enriquecida en un determinado componente alcalino de
endoglucanasa imparten una restauración del color y suavizan mejor
las prendas de vestir tratadas en comparación con composiciones de
celulasa no enriquecidas con este componente. Además, el uso de
estos componentes de endoglucanasa en las composiciones de
detergente alcalino se ha demostrado que completan los requisitos de
pH de la composición de detergentes (por ejemplo, exhibiendo
su actividad máxima en un pH alcalino de 7,5 a 10, tal como se
describe en las patentes 5.648.263, 5.691.178, y 5.776.757).
Las composiciones de celulasa también se han
mostrado que degradan tejidos que contienen algodón, resultando en
la pérdida de resistencia reducida en el tejido (patente US
4.822.516), contribuyendo a la resistencia al uso de composiciones
de celulasas en aplicaciones comerciales de detergente. Las
composiciones de celulasa con componentes de endoglucanasa se ha
sugerido que presentan una pérdida de resistencia reducida para los
tejidos que contienen algodón, en comparación con las composiciones
que comprenden un sistema completo de celulasa.
Las celulasas también se han mostrado útiles en
la degradación de biomasa de celulasa en etanol (en el que la
celulosa se degrada la celulosa en glucosa y levadura u otros
microbios que también fermentan la glucosa en etanol), en el
tratamiento de pasta mecánica (Pere et al, 1996), para su uso
como aditivo alimenticio (WO 91/04673) y molido en grano
húmedo.
La mayoría de CBHs y EGs tienen una estructura
multidominio que consiste en un dominio de núcleo separado de un
dominio de unión de celulosa (CDB) mediante un péptido de enlace
(Suumakki et al, 2000). El dominio de núcleo contiene el
sitio activo mientras que el CDB interactúa con celulosa mediante la
unión de la enzima al mismo (van Tilbeurgh et al., 1986;
Tomme et al, 1988). Las CBDs son particularmente importantes
en la hidrólisis de la celulosa cristalina. Se ha demostrado que la
capacidad de las celobiohidrolasas de degradar la celulosa
cristalina disminuye claramente cuando la CDB está ausente (Linder y
Teeri, 1997). Sin embargo, la función exacta y el mecanismo de
acción de las CBDs siguen siendo un tema de especulación. Se ha
sugerido que la CDB mejora la actividad enzimática meramente
mediante el aumento de la concentración de la enzima efectiva en la
superficie de celulosa (Stahlberg et al, 1991), y/o mediante
el aflojamiento de cadenas de celulosa simples de la superficie de
celulosa (Tormo, et al, 1996). La mayoría de estudios sobre
los efectos de los dominios de celulasa en diferentes sustratos se
han realizado con proteínas de núcleo de celobiohidrolasas, ya que
sus proteínas de núcleo pueden producirse fácilmente mediante
proteólisis limitadas con papaína (Tomme et al, 1988).
Numerosas celulasas han sido descritas en la literatura científica,
ejemplos de los cuales incluyen: de Trichoderma reesei:
Shoemaker, S. et al., Bio/Technology,
1:691-696, 1983, que describe CBHI; Teeri, T.
et al., Gene, 51:43-52, 1987, que describe
CBHII; Penttila, M. et al., Gene,
45:253-263, 1986, que describe EGI;
Saloheimo, M. et al., Gene, 63:11-22, 1988,
que describe EGII; Okada, M. et al., Appl. Environ.
Microbiol., 64:555-563, 1988, que describe
EGIII; Saloheimo, M. et al., EUR. J. Biochem.,
249:584-591, 1997, que describe EGIV;
Saloheimo, A. et al., Molecular Microbiology,
13:219-228, 1994, que describe EGV; Barnett,
CC, et al., Bio/Technology, 9:562-567, 1991,
que describe BGL1, y Takashima, S. et al., J.
Biochem., 125:728-736, 1999, que describe
BGL2. Las celulasas de especies diferentes de Trichoderma
también se han descrito por ejemplo, Ooi et al, 1990, que
describe la secuencia de ADN que codifica endoglucanasa
F1-CMC producida mediante Aspergillus
aculeatus, T Kawaguchi et al., 1996, que describe la
clonación y la secuenciación de ADN que codifica la
beta-glucosidasa 1 de Aspergillus aculeatus;
Sakamoto et al, 1995, que describe la secuencia de ADN que
codifica endoglucanasa CMCase-1 de Kawachii
Aspergillus IFO 4308; Saarilahti et al., 1990, que
describe endoglucanasa de Carotovara amylovora; Spilliaert
R, et al., 1994, que describe la clonación y la secuenciación
de bglA, que codifica una beta-glucanasa
termoestable de Marinu Rhodothermus; y Halldorsdottir S et
al., 1998, que describe la clonación, la secuenciación y la
sobreexpresión de un gen de Marinus Rhodothermus que codifica
una celulasa termoestable de la familia de hidrolasa glicosil 12.
Sin embargo, sigue habiendo una necesidad de identificación y
caracterización de nuevas celulasas, con propiedades mejoradas, tal
como un rendimiento mejorado bajo condiciones de tensión térmica o
en presencia de surfactantes, una actividad específica aumentada,
una alteración del patrón de división de sustrato y/o la expresión
de alto nivel in vitro.
El desarrollo de nuevas y mejoradas
composiciones de celulasa que incluyen cantidades variables de
celulasa de tipo CBH, de tipo EG y de tipo BG es de interés para su
uso: (1) en composiciones de detergentes que presentan una
capacidad de limpieza mejorada, que funciona como un agente
suavizante y/o mejorar el tacto de los tejidos de algodón (por
ejemplo, "lavado a la piedra" o "biopulido"); (2) en
composiciones para degradar pasta de madera u otra biomasa en
azúcares (por ejemplo, para la producción de bioetanol), y/o
(3) en en composiciones de alimen-
tación.
tación.
Marcos de lectura abierta (ORF) se analizaron
siguiendo un secuenciado total o parcial del genoma de T.
reesei o de clones de librerías de ADNc derivados de ARNm de
T. reesei y también se analizan utilizando un software de
análisis de secuencias, y mediante la determinación de la homología
con secuencias conocidas en bases de datos (públicas/privadas).
Las moléculas de ácido nucleico de la presente
invención incluyen la secuencia de codificación nativa para
egl8. En una realización, la secuencia es la secuencia de
ADNc para egl8 presentada aquí como SEQ. ID. NO:1 o SEQ. ID.
NO:4, y homólogos de los mismos en otras especies, variantes
alélicas que se producen naturalmente y de empalme, fragmentos de
ácido nucleico, y derivados biológicamente activos (funcionales) de
los mismos, tales como variantes de secuencia de aminoácidos de la
molécula nativa y secuencias que codifican proteínas de fusión. Las
secuencias se denominan aquí como "secuencias de ácido nucleico
que codifica EGVIII".
Una búsqueda BLASTN Básica
(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST) de la base de datos de
secuencias de ácido nucleico no redundante se realizó el 12 de
septiembre de 2001, con la secuencia del gen egl8 se presenta
en la Figura 1 (SEQ ID NO: 1), indicó que solamente las secuencias
que producen alineaciones significativas (es decir, con un valor E
menor de 10^{-5}) fueron el número de acceso GenBank S45137 (CMC1,
carboximetilcelulasa de Cryptococcus flavus).
Una secuencia de ácido nucleico egl8 de
la presente invención puede ser una secuencia de ADN o ARN,
derivado de ADN genómico, ADNc, ARNm, o se puede sintetizar en su
totalidad o en parte. El ADN puede ser de cadena doble o de cadena
simple, y si la cadena simple puede ser la cadena codificante o la
cadena no codificante (antisentido, complementaria). La secuencia
de ácido nucleico puede clonarse, por ejemplo, mediante el
aislamiento de ADN genómico de una fuente apropiada, y amplificando
y clonando la secuencia de interés usando una reacción en cadena de
polimerasa (PCR). Alternativamente, la secuencia de ácido nucleico
puede sintetizarse, ya sea totalmente o parcialmente, sobre todo
cuando es conveniente proporcionar secuencias huésped preferidas
para la expresión óptima. Así, la totalidad o una parte del gen
estructural deseado (la parte del gen que codifica para un
polipéptido o una proteína) puede sintetizarse usando codones
preferidos mediante un huésped seleccionado.
Debido a la inherente degeneración del código
genético, las secuencias de ácido nucleico diferentes de la forma
nativa que codifican sustancialmente la misma o una secuencia de
aminoácidos equivalente funcional pueden utilizarse para clonar y/o
expresar secuencias de ácido nucleico que codifican EGVIII. Así,
para una determinada secuencia de ácidos nucleicos que codifica
EGVIII, se aprecia que, como consecuencia de la degeneración del
código genético, se pueden producir una serie de secuencias de
codificación que codifican una proteína que tiene la misma
secuencia de aminoácidos. Por ejemplo, el triplete CGT codifica el
aminoácido arginina. La arginina es, alternativamente, codificada
mediante CGA, CGC, CGG, AGA, y AGG. Por lo tanto, se aprecia que
tales sustituciones en la región de codificación incluyen las
variantes de secuencias de ácido nucleico cubiertas por la presente
invención. Todas y cada una de estas variantes de la secuencia se
pueden utilizar de la misma manera tal como se describe aquí para
la forma nativa de una secuencia de ácidos nucleicos que codifica
EGVIII.
Una secuencia del ácido nucleico que codifica
EGVIII "variante" puede codificar una secuencia de aminoácidos
EGVIII "variante" que se altera mediante uno o más aminoácidos
de la secuencia de polipéptido natural o se puede truncar mediante
la eliminación de uno o más aminoácidos de los extremos de la
secuencia de polipéptido, los cuales están incluidos en el ámbito
de la invención. Del mismo modo, el término "forma modificada
de", en relación con EGVIII, significa una forma derivada o
variante de la secuencia de ácido nucleico que codifica la proteína
EGVIII nativa o la secuencia de aminoácidos EGVIII nativa.
De manera similar, los polinucleótidos para su
uso en la práctica de la invención incluyen secuencias que
codifican proteínas nativas EGVIII y variantes de empalme de las
mismas, secuencias complementarias a la secuencia de codificación
de proteínas nativas, y nuevos fragmentos de polinucleótidos que
codifican EGVIII. Una secuencia de ácido nucleico que codifica
EGVIII puede contener una o más secuencias de intrones si es una
secuencia de ADN genómico.
En una realización general, una secuencia de
nucleótidos que codifica EGVIII tiene por lo menos un 70%,
preferentemente un 80%, 85%, 90%, 95%, 98%, o más de identidad de
secuencia con la secuencia de codificación egl8 presentada
aquí como SEQ ID NO: 1.
En otra realización, una secuencia de nucleótido
que codifica EGVIII se hibrida en condiciones de moderada a alta
estringencia a una secuencia de nucleótidos que codifica una
proteína EGVIII. En una realización relacionada, la secuencia de
nucleótidos que codifica EGVIII se hibrida en condiciones de
moderada a alta estringencia a la secuencia de nucleótidos
presentada como SEQ ID NO: 1.
Se apreciará que algunas variantes de secuencias
de ácido nucleico que codifican EGVIII pueden o no hibridar de
manera selectiva la secuencia pariente. A modo de ejemplo, en
situaciones en las que la secuencia de codificación se ha
optimizado sobre la base de la degeneración del código genético, la
secuencia de codificación variante se puede producir de manera que
codifica una proteína EGVIII, pero no se hibrida a una secuencia de
ácido nucleico que codifica EGVIII nativo bajo condiciones de
moderada a alta estringencia. Esto ocurriría, por ejemplo, cuando
la variante de la secuencia incluye un codón diferente para cada uno
de los aminoácidos codificados mediante el nucleótido pariente.
Tal como también se entiende por parte de los
expertos en la materia, en algunos casos puede ser ventajoso
producir secuencias de nucleótidos que poseen codones que se
producen de manera no natural, por ejemplo inosina u otro
nucleótido análogo que se produce de manera no natural. Codones
preferidos por un huésped eucariótico particular se pueden
seleccionar, por ejemplo, para aumentar el índice de expresión de la
proteína EGVIII o para producir transcripciones recombinantes de
ARN con propiedades deseables, tales como una vida media más larga,
que las transcripciones producidas a partir de la secuencia natural.
Por lo tanto, una secuencia de nucleótidos que codifica EGVIII
nativa puede diseñarse con el fin de alterar la secuencia de
codificación por una serie de razones, incluyendo pero no limitado
a, alteraciones que modifiquen la clonación, el procesamiento y/o
la expresión de la proteína EGVIII mediante una célula.
Particularmente preferidas son las
sustituciones, adiciones y supresiones de ácido nucleico que son
silenciosas, de manera que no alteren las propiedades o las
actividades del polinucleótido o polipéptido nativo.
Las variaciones se pueden realizar utilizando
procedimientos conocidos en la técnica, tal como mutagénesis
mediada con oligonucleótido (dirigida al sitio), y mutagénesis de
PCR. La mutagénesis dirigida al sitio (Carter et al, 1986;
Zoller et al, 1987), la mutagénesis de casete (Wells, et
al, 1985), la mutagénesis de selección de restricción (Wells,
et al, 1986) u otras técnicas conocidas se pueden realizar en
el ADN clonado para producir la variante de ADN que codifica el
polipéptido EGVIII.
Sin embargo, en algunos casos puede ser
ventajoso expresar las variantes de egl8 que carecen de las
propiedades o las actividades del polipéptido EGVIII o el
polinucleótido egl8 nativo. En tales casos, las formas
mutantes o modificadas de la secuencia de ácido nucleico de
codificación de EGVIII nativa se pueden generar utilizando las
técnicas habitualmente empleadas por los expertos en la
materia.
En una realización preferida, la invención
proporciona un polipéptido EGVIII, que tiene una secuencia de
polipéptido EGVIII madura o de longitud completa que comprende la
secuencia presentada en la figura 2 (SEQ ID NO: 2). Un polipéptido
EGVIII de la invención puede ser el polipéptido EGVIII maduro, como
parte de una proteína de fusión o un fragmento o variante de la
secuencia del polipéptido EGVIII presentada en la Figura 2 (SEQ ID
NO: 2).
De manera ordinaria, un polipéptido EGVIII puede
tener por lo menos un 80% de identidad con una secuencia de
aminoácidos EGVIII en toda su longitud. Más preferiblemente, son
secuencias de polipéptido EGVIII que comprenden una región que
tiene por lo menos un 85, 90, 95, 98% o más de identidad de
secuencia con la secuencia de polipéptido EGVIII de la figura 2
(SEQ ID NO: 2), utilizando un programa de alineación de secuencias,
tal como se detalla
aquí.
aquí.
Típicamente, una "forma modificada de" una
proteína EGVIII nativa o una "variante" de proteína EGVIII
tiene una secuencia de derivados que contienen por lo menos una
sustitución, adición, supresión o inserción de un aminoácido,
respectivamente.
Es bien conocido en la técnica que algunas
sustituciones de aminoácidos pueden hacerse en secuencias de
proteína sin afectar a la función de la proteína. Generalmente, se
toleran sustituciones conservativas de aminoácidos o sustituciones
de aminoácidos similares sin afectar la función de la proteína.
Aminoácidos similares pueden ser los que son similares en tamaño
y/o propiedades de carga, por ejemplo, aspartato y glutamato, e
isoleucina y valina, son dos pares de aminoácidos similares. La
similitud entre los pares de aminoácidos se ha evaluado en la
técnica de una serie de maneras. Por ejemplo, Dayhoff et al.
(1978) proporciona las tablas de frecuencia de sustituciones de
aminoácidos que pueden ser empleados como una medida de similitud de
los aminoácidos. Las tablas de frecuencia de Dayhoff et al.
se basan en la comparación de las secuencias de aminoácidos de las
proteínas que tienen la misma función de una variedad de fuentes
evolutivamente diferentes.
Fragmentos y variantes de la secuencia de
polipéptido EGVIII de la figura 2 (SEQ ID NO: 2) se consideran una
parte de la invención. Un fragmento es un polipéptido variante que
tiene una secuencia de aminoácidos que es totalmente lo mismo como
parte, pero no toda la secuencia de aminoácidos de los polipéptidos
descritos anteriormente. Los fragmentos pueden ser "libres" o
estar comprendidos dentro de un polipéptido más grande, del cual el
fragmento forma una parte o una región, más preferiblemente como una
región única continua. Los fragmentos son fragmentos biológicamente
activos, que son los fragmentos que median actividades de los
polipéptidos de la invención, incluso aquellos con una actividad
similar o una mejor actividad o con una disminución de la
actividad. Se describen también fragmentos que son antigénicos o
inmunogénicos en un animal, especialmente un ser humano. En este
aspecto, se describen (i) fragmentos de EGVIII, preferiblemente por
lo menos acerca de 20-100 aminoácidos de longitud,
más preferiblemente aproximadamente 100-200
aminoácidos de longitud, y (ii) una composición farmacéutica que
comprende EGVIII. En varias realizaciones, el fragmento corresponde
al dominio N-terminal de EGVIII o el dominio
C-terminal de EGVIII.
Los polipéptidos EGVIII de la invención también
incluyen polipéptidos que varían de la secuencia de polipéptido
EGVIII de la figura 2 (SEQ ID NO: 2). Estas variantes pueden ser de
sustitución, inserción o supresión. Las variantes típicamente
presentan la misma actividad biológica cualitativa como el análogo
de origen natural, aunque también se pueden seleccionar variantes
que tienen características modificadas, tal como se describe a
continuación.
Una "sustitución" resulta de la sustitución
de uno o más nucleótidos o aminoácidos mediante diferentes
nucleótidos o aminoácidos, respectivamente.
Una "inserción" o "adición" es ese
cambio en una secuencia de nucleótidos o aminoácidos que ha
resultado en la adición de uno o más nucleótidos o aminoácidos,
respectivamente, en comparación con la secuencia natural.
Una "supresión" se define como un cambio en
una secuencia de nucleótidos o aminoácidos en la que uno o más
nucleótidos o aminoácidos, respectivamente, están ausentes.
Las sustituciones de aminoácidos son típicamente
de residuos simples; las inserciones usualmente serán del orden de
entre 1 a 20 aminoácidos, aunque considerablemente se pueden tolerar
inserciones mayores. Las supresiones van de 1 a 20 residuos, aunque
en algunos casos, las supresiones pueden ser mucho mayores.
Las sustituciones, supresiones, inserciones o
cualquier combinación de éstas pueden utilizarse para llegar a un
derivado final. Generalmente, estos cambios se hacen en algunos
aminoácidos para minimizar la alteración de la molécula. Sin
embargo, cambios mayores pueden tolerarse en ciertas
circunstancias.
Las sustituciones de aminoácidos pueden ser el
resultado de la sustitución de un aminoácido con otro aminoácido
que tiene propiedades estructurales y/o químicas similares, tal como
la sustitución de una isoleucina con una valina, es decir,
sustituciones de aminoácidos conservativas. Las inserciones o
eliminaciones pueden estar opcionalmente entre 1 y 5
aminoácidos.
Las sustituciones se hacen generalmente según
"sustituciones conservativas" conocidas. Una "sustitución
conservativa" se refiere a la sustitución de un aminoácido en una
clase por un aminoácido en la misma clase, donde una clase se
define mediante las propiedades físicoquímicas comunes de la cadena
lateral de aminoácidos y frecuencias de alta sustitución en
proteínas homólogas que se encuentran en la naturaleza (tal como se
determina, por ejemplo, mediante una matriz de intercambio
de frecuencia Dayhoff o matriz BLOSUM). (Ver generalmente,
Doolittle, R.F., 1986).
Una "sustitución no conservativa" se
refiere a la sustitución de un aminoácido en una clase con un
aminoácido de otra clase.
Variantes de polipéptidos EGVIII típicamente
presentan la misma actividad biológica cualitativa que el análogo
de origen natural, aunque las variantes también son seleccionadas
para modificar las características del polipéptido EGVIII, según
sea necesario. Por ejemplo, los sitios de glicosilación, y más
particularmente uno o más sitios de glicosilación
O-enlazados o N-enlazados se pueden
alterar o eliminar. Los expertos en la materia podrán apreciar que
los cambios de aminoácidos pueden alterar los procesos posteriores a
la traducción del polipéptido EGVIII, tal como cambiar el número o
la posición de los sitios de glicosilación o alterar las
características de anclaje de la membrana o las características de
secreción u otras características de localización celular.
También se incluyen en la definición de
polipéptidos EGVIII otros polipéptidos EGVIII relacionados. Por lo
tanto, las secuencias de cebadores de sonda o de reacción de cadena
de polimerasa (PCR) degenerado se pueden utilizar para encontrar
otros polipéptidos relacionados. Secuencias de sonda o cebadoras
pueden diseñarse para: la totalidad o parte de la secuencia de
polipéptido EGVIII, o secuencias fuera de la región de
codificación. Como es generalmente conocido en la técnica, los
cebadores PCR tienen de 15 a 35 nucleótidos de longitud
aproximadamente, prefiriéndose entre 20 y 30 aproximadamente, y
pueden contener inosina según sea necesario. Las condiciones para
la reacción de PCR son generalmente conocidas en la técnica.
Las modificaciones covalentes de polipéptidos
EGVIII también se incluyen dentro del ámbito de aplicación de esta
invención. Por ejemplo, la invención proporciona polipéptidos EGVIII
que son una proteína madura y pueden incluir otros aminoácidos
amino o carboxilo terminal, o aminoácidos en el polipéptido maduro
(por ejemplo, cuando la forma madura de la proteína tiene más de
una cadena de polipéptidos). Estas secuencias pueden, por ejemplo,
desempeñan un papel en el procesamiento de la proteína desde un
precursor a una forma madura, permiten el transporte de proteínas,
acortar o alargar la vida media de las proteínas, o facilitar la
manipulación de la proteína en ensayos o producción.
También se contemplan modificaciones dirigidas a
la alteración de un sitio activo, la alteración del pH óptimo, la
temperatura óptima, y/o la afinidad del sustrato de la enzima
EGVIII.
La figura 2 muestra la secuencia de aminoácidos
predicha (SEQ ID NO: 2) de un polipéptido EGVIII de ejemplo basado
en la secuencia de nucleótidos proporcionada en la Figura 1. El peso
molecular previsto del polipéptido EGVIII codificado es 46,9 kDa.
Un péptido de señal previsto de 19 aminoácidos precede el extremo
amino terminal maduro de EGVIII tal como se proporciona en la
figura, lo que sugiere que el polipéptido EGVIII se segrega
(Nielsen, H., Engelbrecht, J., Brunak, S., von Heijne, G., Protein
Engineering, 10:1-6, 1997). La proteína también se
predice que se fija a la membrana a través de
glucosilfosfatidilinositol (Hartmenn, T A., et al., 1989,
Proc. Natl. Acad. Sci. EE.UU. 86:5786-).
Una búsqueda básica BLASTP
(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST) de la base de datos de proteínas
no redundantes, realizada el 12 de septiembre de 2001 con la
secuencia de aminoácidos EGVIII indicó un 52% de identidad con el
número de acceso GenBank AB021657 (endoglucanasa II de
Trichoderma viride), un 51% de identidad de secuencia con el
número de acceso GenBank M19373 (endoglucanasa EG-II
de precursores de Trichoderma reesei), un 50% de identidad
de secuencia con el número de acceso GenBank X89564 (endoglucanasa 2
de Janthinellum Penicillium), y un 52% de identidad de
secuencia con el número de acceso GenBank U13914
(endo-beta-1,4-glucanasa
de Macrophomina phaseolina). Estas similitudes de secuencia
indican que EGVIII es un miembro de la familia de hidrolasa
glicosilo 5 (Henrissat, B. y Bairoch, A. (1993) Biochem. J.
293:781-788).
También se describen aquí anticuerpos
anti-EGVIII. Los anticuerpos pueden ser anticuerpos
policlonales, monoclonales humanizados, biespecíficos o
heteroconjugados.
Procedimientos de preparación de anticuerpos
policlonales son conocidos por los expertos en la materia. El
agente de inmunización puede ser un polipéptido EGVIII o una
proteína de fusión de la misma. Puede ser útil conjugar el antígeno
a una proteína que se sabe que ser inmunogénica en el mamífero que
se inmuniza. El protocolo de inmunización puede ser determinado por
parte de un experto en la materia basado en protocolos estándar o
experimentación de rutina.
Alternativamente, los anticuerpos
anti-EGVIII puede ser anticuerpos monoclonales. Los
anticuerpos monoclonales pueden ser producidos por células de
inmunización en un animal o usando de procedimientos de ADN
recombinante. (Véase, por ejemplo, Kohler, et al,
1975; Patente US 4.816.567).
Un anticuerpo anti-EGVIII
también puede comprender un anticuerpo humanizado o humano. El
término "anticuerpo humanizado" se refiere a formas
humanizadas de anticuerpos no humanos (por ejemplo murinos)
que son anticuerpos quiméricos, cadenas de inmunoglobulina o
fragmentos de las mismas (tal como Fv, Fab, Fab',
F(ab')_{2} u otras secuencias parciales de unión a
antígenos de anticuerpos), que contienen una parte de la secuencia
derivada de un anticuerpo no humano. Procedimientos para la
humanización de anticuerpos no humanos son bien conocidos en la
técnica, tal como se detalla en Jones et al, 1986; Riechmann
et al, 1988, y Verhoeyen et al, 1988. Procedimientos
para la producción de anticuerpos humanos también son conocidos en
la técnica. Ver, por ejemplo, Jakobovits, A, et al,
1995 y Jakobovits, A, 1995.
Los procedimientos de la invención se basan en
el uso de células para expresar EGVIII, sin ningún procedimiento
particular de expresión EGVIII necesario.
\newpage
La invención proporciona células huésped que se
han transducido, transformado o transfectado con un vector de
expresión que comprende una secuencia de ácido nucleico de
codificación de EGVIII. Las condiciones de cultivo, tales como
temperatura, pH, etc., son las utilizadas anteriormente por la
célula huésped parental antes de la transducción, transformación o
transfección y será evidente para los expertos en la materia.
En una aproximación, una célula de hongos
filamentosos o célula de levadura se transfecta con un vector de
expresión que tiene un promotor o fragmento de promotor
biológicamente activo o uno o más (por ejemplo, una serie) de
potenciadores que funcionan en la línea de la célula huésped, unido
operativamente a un segmento de ADN que codifica EGVIII, de manera
que EGVIII se expresa en la línea celular.
Fragmentos de polinucleótidos naturales o
sintéticos que codifican EGVIII ("secuencias de ácido nucleico de
codificación de EGVIII") pueden incorporarse en construcciones o
vectores de ácido nucleico heterólogo, capaces de introducción y
replicación en un hongo filamentoso o célula de levadura. Los
vectores y los procedimientos aquí descritos son adecuados para su
uso en células huésped para la expresión de EGVIII. Cualquier vector
puede utilizarse siempre que sea replicable y viable en las células
en las que se introduce. Un gran número de vectores y promotores
adecuados son conocidos para los expertos en la materia, y están
disponibles comercialmente. Los vectores de clonación y expresión
también se describen en Sambrook et al., 1989, Ausubel FM
et al, 1989, y Strathem et al, 1981.
Vectores de expresión apropiados para los hongos
se describen en van den Hondel, C.A.M.J.J. et al. (1991) En:
Bennett, J.W. y Lasure, L.L. (eds.) More Gene Manipulations in
Fungi. Academic Press, pp. 396-428. La secuencia de
ADN adecuada puede insertarse en un plásmido o vector (denominados
en lo sucesivo como "vectores") mediante una variedad de
procedimientos. En general, la secuencia de ADN se inserta en un
sitio(s) de endonucleasa de restricción apropiado(s)
mediante procedimientos estándar. Estos procedimientos y los
procedimientos de subclonación relacionados se consideran dentro
del ámbito de aplicación de los conocimientos de los expertos en la
materia.
Los hongos filamentosos recombinantes que
comprenden la secuencia de codificación para EGVIII pueden
producirse mediante la introducción de una construcción de ácido
nucleico heterólogo que comprende la secuencia de codificación
EGVIII en las células de una cepa seleccionada de los hongos
filamentosos.
Una vez que se obtiene la forma deseada de una
secuencia de ácido nucleico egl8, homólogo, variante o
fragmento de la misma, puede modificarse en una variedad de maneras.
Cuando la secuencia implica regiones no codificantes de flanqueo,
las regiones de flanqueo podrán someterse a resección, mutagénesis,
etc. De este modo, pueden realizarse transiciones, transversiones,
supresiones e inserciones en la secuencia natural.
Una secuencia de codificación egl8
seleccionada puede insertarse en un vector adecuado de acuerdo con
técnicas recombinantes bien conocidas y utilizada para transformar
los hongos filamentosos capaces de expresión EGVIII. Debido a la
inherente degeneración del código genético, otras secuencias de
ácido nucleico que codifican sustancialmente la misma secuencia de
aminoácidos o una equivalente funcional pueden utilizarse para
clonar y expresar EGVIII. Por lo tanto, se aprecia que tales
sustituciones en la región de codificación están en las variantes
de la secuencia objeto de la presente invención. Todas y cada una de
estas variantes de la secuencia se puede utilizar de la misma
manera tal como se describe en este documento para una secuencia de
ácido nucleico que codifica EGVIII.
La presente invención también incluye
construcciones de ácido nucleico recombinante que comprenden una o
más secuencias de ácido nucleico de codificación EGVIII, tal como se
describe anteriormente. Las construcciones comprenden un vector,
tal como un plásmido o vector viral, en el que se ha insertado una
secuencia de la invención, en una orientación hacia delante o hacia
atrás.
Las construcciones de ácido nucleico heterólogo
pueden incluir la secuencia de codificación para egl8, o una
variante, fragmento o variante de empalme de las mismas: (i) en
aislamiento, (ii) en combinación con secuencias de codificación
adicionales, tales como proteína de fusión o secuencias de
codificación de péptido señal, donde la secuencia de codificación
egl8 es la secuencia de codificación dominante; (iii) en
combinación con secuencias no codificantes, tal como intrones y
elementos de control, tales como promotor y otros elementos de
terminación o regiones 5' y/o 3'' no traducidas, eficaces para la
expresión de la secuencia de codificación en un huésped apropiado,
y/o (iv) en un vector o entorno huésped en el que la secuencia de
codificación egl8 es un gen heterólogo.
En un aspecto de la presente invención, una
construcción de ácido nucleico heterólogo se utiliza para
transferir una secuencia de ácido nucleico de codificación EGVIII en
una célula in vitro, con hongos filamentosos establecidos y
líneas de levadura preferidas. A largo plazo, se prefiere la
producción de expresión estable de alto rendimiento de EGVIII. De
ello se deduce que cualquier procedimiento eficaz para generar
transformantes estables puede ser utilizado en la práctica de la
invención.
Los vectores apropiados están típicamente
equipados con una secuencia de ácido nucleico que codifica un
marcador seleccionable, sitios de inserción, y elementos de control
adecuados, tales como secuencias de promotor y de terminación. El
vector puede comprender secuencias reguladoras, incluyendo, por
ejemplo, secuencias no codificantes, tal como intrones y elementos
de control, es decir, elementos promotores y de terminación o
regiones 5' y/o 3'' no traducidas, efectivas para la expresión de la
secuencia de codificación en las células huésped (y/o en un vector
o ambiente de células huésped en la que una secuencia de
codificación de antígeno de proteína soluble modificada no se
expresa normalmente), unida operativamente a la secuencia de
codificación. Un gran número de vectores adecuados y promotores son
conocidos para los expertos en la técnica, muchos de los cuales
están disponibles comercialmente y/o se describen en Sambrook, et
al, (supra).
Promotores de ejemplo incluyen promotores
constituyentes y promotores inducibles, ejemplos de los cuales
incluyen un promotor CMV, un promotor SV40 temprano, un promotor
RSV, un promotor EF-1\alpha, un promotor que
contiene el elemento de respuesta tet (TRE) en el sistema
tet-on, o tet-off tal como se
describe (ClonTech y BASF), el promotor actina beta y el promotor
metalotionina que puede estimularse mediante la adición de sales de
metales determinados. Una secuencia promotora es una secuencia de
ADN que es reconocido por el hongo filamentoso particular para
propósitos de expresión. Está unido operativamente a la secuencia de
ADN que codifica un polipéptido EGVIII. Esa conexión comprende la
posición del promotor en relación con el codón de iniciación de la
secuencia de ADN que codifica el polipéptido EGVIII en los vectores
de expresión descritos. La secuencia promotora contiene la
transcripción y la secuencia de control de la traducción que median
en la expresión del polipéptido EGVIII. Ejemplos incluyen los
promotores de Aspergillus niger, A awamori o A. oryzae
glucoamilasa, alfa-amilasa, o genes que codifican
la alfa-glucosidasa, los genes de A. nidulans
GPDA o trpC, los genes de Neurospora crassa cbh1
o los genes TRP1, los genes que codifican A. niger o
Rhizomucor miehei proteinasa aspártica, los genes T.
reesei cbh1, cbh2, egl1, egl2, u otros genes que codifican
celulasa.
La elección del marcador seleccionable adecuado
dependerá de la célula huésped, y los marcadores adecuados para los
diferentes huéspedes son bien conocidos en la técnica. Genes
marcadores seleccionables típicos incluyen argB de A.
nidulans o T. reesei, amdS de A. nidulans, pyr4 de
Neurospora crassa o T. reesei, pyrG de Aspergillus
niger y A. nidulans. Marcadores seleccionables de ejemplo
adicionales incluyen, pero no se limitan a trpc, trp1, oliC31, niaD
o leu2, que se incluyen en construcciones de ácido nucleico
heterólogo utilizadas para transformar una cepa mutante tal como
trp-, pyr-, leu-, y similares.
Estos marcadores seleccionables confieren a los
transformantes la capacidad de utilizar un metabolito que
normalmente no es metabolizado por los hongos filamentosos. Por
ejemplo, el gen amdS de T. reesei que codifica la enzima
acetamidasa que permite que las células transformantes crezcan en
acetamida como fuente de nitrógeno. El marcador de selección (pyrG
por ejemplo) puede restaurar la capacidad de una cepa mutante
auxotrófica a crecer en un medio mínimo selectivo o el marcador
seleccionable (por ejemplo, olic31) puede conferir a los
transformantes la capacidad de crecer en presencia de un fármaco
inhibidor o antibiótico.
La secuencia de codificación de marcador
seleccionable se clona en cualquier plásmido adecuado utilizando
procedimientos generalmente utilizados en la técnica. Plásmidos de
ejemplo incluyen pUC18, pBR322, y pUC100.
La práctica de la presente invención utilizará,
a menos que se indique lo contrario, técnicas convencionales de
biología molecular, microbiología, ADN recombinante, e inmunología,
que están dentro de la habilidad de la técnica. Estas técnicas se
explican con detalle en la literatura. Véase, por ejemplo, Sambrook
et al, 1989; Freshney, 1987; Ausubel, et al, 1993, y
Coligan et al, 1991.
Así, la presente invención proporciona hongos
filamentosos que comprenden células que han sido modificadas,
seleccionadas y cultivadas de una manera efectiva para resultar en
una producción de EGVIII mejorada o expresión respecto a los
correspondientes hongos parenterales no transformados.
Ejemplos de especies de hongos filamentosos
parenterales que pueden ser tratados y/o modificados para la
expresión de EGVIII mejorada incluyen, pero no se limitan a,
Trichoderma, por ejemplo, Trichoderma reesei, longibrachiatum
Trichoderma, Trichoderma viride, Trichoderma koningii; Penicillium
sp. Sp Humicola., incluyendo Humicola insolens; Aspergillus sp., Sp
Chrysosporium., Fusarium sp., Hypocrea sp., y Emericella
sp.
Las células que expresan EGVIII se cultivan en
condiciones que habitualmente se emplean para el cultivo de la
línea fúngica parenteral. Generalmente, las células son cultivadas
en un medio estándar que contiene sales fisiológicas y nutrientes,
tal como se describe en Pourquie, J. et al., Biochemistry and
Genetics of Cellulose Degradation, eds. Aubert, J. P. et
al., Academic Press, pp. 71-86, 1988 y Ilmen, M.
et al., Appl. Environ. Microbiol.
63:1298-1306, 1997. Las condiciones de cultivo son
también estándar, por ejemplo, los cultivos se incuban a
28ºC en cultivos agitadores o fermentadores hasta que se alcanzan
los niveles deseados de expresión de EGVIII.
Las condiciones de cultivo preferidas para un
hongo filamentoso determinado se pueden encontrar en la literatura
científica y/o de la fuente de los hongos tal como la American Type
Culture Collection (ATCC; "http://www.atcc.org/"). Después de
establecer un crecimiento fúngico, las células están expuestas a
condiciones efectivas para causar o permitir la
sobre-expresión de EGVIII.
\newpage
En los casos en los que una secuencia que
codifica EGVIII está bajo el control de un promotor inducible, el
agente inductor, por ejemplo, un azúcar, sal de metal o
antibióticos, se añade al medio en una concentración efectiva para
inducir un alto nivel de expresión EGVIII.
La presente invención también contempla el uso
de la levadura como célula huésped para la producción de EGVIII.
Varios otros genes que codifican las enzimas hidrolíticas se han
expresado en diversas cepas de la levadura S. cerevisiae.
Estos incluyen secuencias que codifican dos endoglucanasas (Penttila
et al. 1987), dos celobiohidrolasas (Penttila et al.
1988) y una beta-glucosidasa de Trichoderma
reesei (Cummings y Fowler, 1996), una xilanasa de Pullulans
Aureobasidlium (Li y Ljungdahl, 1996), un
alfa-amilasa de trigo (Rothstein, et al.
1987), etc. Además, un casete de genes de celulasa que codifica la
Fibrisolvens Butyrivibrio
endo-[beta]-1,4-glucanasa (END1),
Phanerochaete chrysosporium cellobiohydrolase (CBH1),
Flavefaciens Ruminococcus cellodextrinase (CEL1) y
Fibrilizer Endomyces Celobiasa (Bgl1) fue expresado con éxito
en una cepa de laboratorio de S. cerevisiae (Van Rensburg
et al. 1998).
La invención también proporciona células y
composiciones celulares que han sido genéticamente modificadas para
comprender una secuencia de ácido nucleico que codifica EGVIII
proporciona de manera exógena. Una célula parental o línea celular
puede modificarse genéticamente (es decir, transducirse,
transformarse o transfectarse) con un vector de clonación o un
vector de expresión. El vector puede ser, por ejemplo, en forma de
un plásmido, una partícula viral, un fago, etc., tal como se
describe anteriormente.
Varios procedimientos pueden utilizarse para
suministrar un vector de expresión en células in vitro.
Después de construir un vector adecuado, se utiliza para transformar
las cepas de hongos o levaduras. Procedimientos generales para la
introducción de ácidos nucleicos en células de expresión heterólogas
de secuencias de ácidos nucleicos son conocidas para los expertos
en la materia. Estos procedimientos incluyen, pero no están
limitados a, electroporación, microinyección nuclear o
microinyección directa en las células individuales, fusión de
protoplasto bacteriano con células intactas, uso de policationes,
por ejemplo, polibreno o poliornitina; fusión de membrana
con liposomas, lipofectamina o transfección mediada con lipofección;
bombardeo de alta velocidad con microproyectiles recubiertos con
ADN; incubación con precipitado de fosfato de
calcio-ADN; transfección mediada con
DEAE-dextrano, infección con ácidos nucleicos
virales modificado, y similares.
Los procedimientos preferidos para la
introducción de una construcción de ácido nucleico heterólogo
(vector de expresión) en hongos filamentosos (por ejemplo, T.
reesei) incluyen, pero no se limitan a, la utilización de una
pistola de partículas o genes, permeabilización de las paredes
celulares de hongos filamentosos antes del proceso de
transformación (por ejemplo, por el uso de altas
concentraciones de álcali, por ejemplo, 0,05 M a 0,4 M
CACl_{2} o acetato de litio), fusión de protoplastos o
transformación mediada por agrobacterias. Un procedimiento de
ejemplo para la transformación de hongos filamentosos mediante el
tratamiento de protoplastos o esferoplastos con polietileno glicol
y CaCl_{2} se describe en Campbell, E.I. et al. Curr.
Genet. 16:53-56, 1989 y Penttila, M. et al.,
Gene, 63:11-22, 1988.
Además, las construcciones de ácido nucleico
heterólogo que comprenden una secuencia de ácido nucleico que
codifica EGVIII se pueden transcribir in vitro, y el ARN
resultante introducido en la célula huésped mediante procedimientos
bien conocidos, por ejemplo, mediante inyección.
Después de la introducción de una construcción
de ácido nucleico heterólogo que comprende la secuencia de
codificación para egl8, las células modificadas genéticamente
pueden ser cultivadas en medios de nutrientes convencionales
modificados según sea apropiado para la activación de los
promotores, seleccionando transformantes o amplificando la
expresión de una secuencia de ácidos nucleicos que codifica EGVIII.
Las condiciones de cultivo, tales como temperatura, pH y similares,
son las utilizadas anteriormente para la célula huésped seleccionada
para la expresión, y será evidente para los expertos en la
materia.
La progenie de las células en las que estas
construcciones de ácidos nucleicos heterólogos se han introducido
generalmente se considera que comprenden la la secuencia de ácidos
nucleicos que codifican EGVIII en la construcción de ácido nucleico
heterólogo.
La invención también incluye nuevos y útiles
transformantes de hongos filamentosos tales como Trichoderma
reesei para su uso en la producción de composiciones de celulasa
fúngicas. La invención incluye transformantes de hongos
filamentosos, especialmente hongos que comprenden la secuencia de
codificación egl8, que comprende una forma modificada de la
secuencia de codificación egl8 o la supresión de la secuencia
de codificación egl8.
Los transformantes estables de hongos
filamentosos pueden distinguirse generalmente de los transformantes
inestables por su índice de crecimiento más rápido y la formación de
colonias circulares con un contorno liso más que irregular en un
medio de cultivo sólido. Además, en algunos casos, una prueba
adicional de la estabilidad se puede hacer mediante el crecimiento
de los transformantes sobre un medio sólido no selectivo, cosechando
las esporas de este medio de cultivo y determinando el porcentaje
de estas esporas que posteriormente germinarán y crecerán en medio
selectivo.
Para evaluar la expresión de EGVIII mediante una
línea celular que ha sido transformada con una construcción de
ácido nucleico que codifica EGVIII, los ensayos pueden realizarse a
nivel de proteínas, a nivel de ARN o mediante el uso de bioensayos
funcionales particulares de la actividad y/o la producción de
endoglucanasa.
En una aplicación de ejemplo de las secuencias
de ácido nucleico egl8 y de proteínas aquí descritas, una
cepa modificada genéticamente de hongos filamentosos, por
ejemplo, Trichoderma reesei, está diseñada para producir una
mayor cantidad de EGVIII. Estos hongos filamentosos genéticamente
modificados serían útiles para producir un producto de celulasa con
una mayor capacidad celulolítica. En una aproximación, esto se logra
mediante la introducción de la secuencia de codificación para
egl8 en un huésped adecuado, por ejemplo, un hongo
filamentoso tal como Trichoderma reesei.
En consecuencia, la invención incluye
procedimientos para expresar EGVIII en un hongo filamentos u otro
huésped adecuado mediante la introducción de un vector de expresión
que contiene la secuencia de ADN que codifica EGVIII en las células
de hongos filamentosos u otro huésped adecuado.
En otro aspecto, la invención incluye
procedimientos para modificar la expresión de EGVIII en un hongo
filamentos u otro huésped adecuado. Dicha modificación incluye una
reducción o eliminación de la expresión, o la expresión de una
forma alterada de EGVIII. Una forma alterada de EGVIII puede tener
una secuencia de aminoácidos alterada o una secuencia de ácidos
nucleicos alterada.
En general, los ensayos utilizados para analizar
la expresión de EGVIII incluyen Northern blotting, dot blotting
(análisis de ADN o ARN), RT-PCR (reacción de cadena
de polimerasa de transcripción inversa), o hibridación in
situ, utilizando una sonda debidamente marcada (basada en la
secuencia de codificación de ácido nucleico) y Southern blotting y
autorradiografía convencionales.
Además, la producción y/o la expresión de EGVIII
se pueden medir en una muestra directamente, por ejemplo, mediante
ensayos para la actividad, expresión y/o producción de la
endoglucanasa. Estas determinaciones se describen, por ejemplo, en
Shoemaker, S.P. y Brown, R.D. Jr. (Biochim. Biophys. Acta, 1978,
523:133-146; Schulein (1988) y patente US 5.246.853
y 5.475.101. La capacidad de EGVIII para hidrolizar sustratos
aislados solubles e insolubles se puede medir mediante los ensayos
descritos en Suurnakki et al. (2000) y Ortega et al.
(2001). Los sustratos útiles para ensayar las actividades de
celobiohidrolasa, endoglucanasa o
\beta-glucosidasa, incluyen celulosa cristalina,
papel de filtro, celulosa hinchada con ácido fosfórico, hidroxietil
celulosa, carboximetilcelulosa, celooligosacáridos, lactosido
metilumbeliferil, celobiosido metilumbeliferil, lactosido
ortonitrofenil, lactosido paranitrofenil, celobiosido
ortonitrofenil, celobiosido paranitrofenil, glucósido
ortonitrofenil, glucósido paranitrofenil, metilumbeliferil
glucósido.
Además, la expresión de proteínas se puede
evaluar mediante procedimientos inmunológicos, tal como tinción
inmunohistoquímica de células, cortes de tejido o inmunoensayo del
medio de cultivo de tejidos, por ejemplo, mediante Western
blot o ELISA. Los inmunoensayos pueden utilizarse para evaluar
cualitativa y cuantitativamente la expresión de EGVIII. Los
detalles de estos procedimientos son conocidos por los expertos en
la técnica y los reactivos para la práctica de muchos
procedimientos están disponibles comercialmente.
Una forma purificada de EGVIII puede utilizarse
para producir anticuerpos monoclonales o policlonales o específicos
para la proteína expresada para su uso en inmunoensayos diferentes.
(Véase, por ejemplo, Hu et al, 1991). Ensayos de
ejemplo incluyen ELISA, inmunoensayos competitivos,
radioinmunoensayos, Western blot, ensayos de inmunofluorescencia
indirecta y similares. En general, se pueden utilizar anticuerpos
y/o equipos disponibles comercialmente para el inmunoensayo
cuantitativo del nivel de expresión de las proteínas de
endoglucanasa.
En general, una proteína EGVIII producida en
cultivo celular es secretada en el medio y se puede purificar o
aislar, por ejemplo, eliminando los componentes no deseados
del medio de cultivo celular. Sin embargo, en algunos casos, una
proteína EGVIII pueden producirse en una forma celular que requiere
la recuperación de un lisado celular. En tales casos, la proteína
EGVIII se purifica de las células en las que se producen utilizando
técnicas habitualmente empleadas por los expertos en la técnica. Los
ejemplos incluyen, pero no limitados a, cromatografía de afinidad
(Tilbeurgh et al. 1984), procedimientos cromatográficos de
intercambio de iones (Goyal et al, 1991; Fliess et
al, 1983; Bhikhabhai et al. 1984; Ellouz et al.
1987), incluido el intercambio iónico utilizando materiales con
alto poder de resolución (Medve et al, 1998), cromatografía
de interacción hidrofóbica (Tomaz y Queiroz, 1999), y partición de
dos fases (Brumbauer, et al. 1999).
Típicamente, la proteína EGVIII se fracciona
para separar las proteínas que tienen propiedades seleccionadas,
tales como la afinidad de unión a agentes de unión particulares,
por ejemplo, anticuerpos o receptores, o que tienen un
intervalo de peso molecular seleccionado, o un intervalo de puntos
isoeléctricos.
Una vez que se consigue la expresión de una
proteína EGVIII determinada, la proteína EGVIII así producida se
purifica a partir de células o cultivo celular. Procedimientos de
ejemplo adecuados para esta purificación incluyen los siguientes:
cromatografía de columna de afinidad de anticuerpos, cromatografía
de intercambio iónico, precipitación con etanol, HPLC,
cromatografía de sílice o en una resina de intercambio catiónico,
como DEAE; cromatofocalización; SDS-PAGE;
precipitación de sulfato de amonio; y filtración en gel utilizando,
por ejemplo, Sephadex G-75. Varios
procedimientos de purificación de proteínas pueden utilizarse y
estos procedimientos son conocidos en la técnica y se describen
por ejemplo en Deutscher, 1990; Scopes, 1982. La(s)
fase(s) de purificación seleccionada(s) dependerán,
por ejemplo, de la naturaleza del proceso de producción
utilizado y de la proteína particular producida.
Se puede apreciar que el nucleótido egl8,
la proteína EGVIII y las composiciones que comprenden actividad de
la proteína EGVIII encuentran utilidad en aplicaciones de gran
variedad, algunas de las cuales se describen a continuación.
Las nuevas y mejoradas composiciones de celulasa
que comprenden cantidades variables de celulasas de tipo CBH, tipo
EG y tipo BG encuentran utilidad en composiciones detergentes que
presentan una capacidad de limpieza mejorada, función como agente
suavizante y/o mejoran el tacto de los tejidos de algodón (por
ejemplo, "lavado de piedra" o "biopulido"), en las
composiciones para degradar la pasta de madera en azúcares (por
ejemplo, para la producción de bioetanol), y/o en composiciones
de alimentación. El aislamiento y la caracterización de la celulasa
de cada tipo proporcionan la capacidad de controlar los aspectos de
estas composiciones.
En una aproximación preferida, la celulasa de la
invención encuentra utilidad en las composiciones de detergente o
en el tratamiento de tejidos para mejorar el tacto y la
apariencia.
Como el índice de hidrólisis de los productos
celulósicos podrá incrementarse mediante el uso de un transformante
que tenga por lo menos una copia adicional del gen egl8
insertado en el genoma, los productos que contienen celulosa o
heteroglicanos pueden degradarse a un ritmo más rápido y en mayor
medida. Los productos hechos a base de celulosa, tal como papel,
algodón, pañales de celulosa y similares se puede degradar de manera
más eficiente en un vertedero. Así, el producto de la fermentación
que se puede obtener a partir de los transformantes o los
transformantes en solitario pueden utilizarse en composiciones para
acelerar la descomposición mediante licuefacción de una gran
variedad de productos de celulosa que se añaden a los vertederos de
hacinamiento.
La sacarificación y la fermentación separada es
un proceso mediante el cual la celulosa presente en la biomasa, por
ejemplo, residuos de maíz, se convierte en glucosa y,
posteriormente, las cepas de levadura convierten la glucosa en
etanol. La sacarificación y fermentación simultánea es un proceso
mediante el cual la celulosa presente en la biomasa, por ejemplo,
residuos de maíz, se convierte en glucosa y, al mismo tiempo y en
el mismo reactor, las cepas de levadura convierten la glucosa en
etanol. Por lo tanto, en otra aproximación preferida, el tipo de
celulasa glucosidasa de la invención encuentra utilidad en la
degradación de la biomasa en etanol. La producción de etanol a
partir de fuentes fácilmente disponibles de celulosa proporciona una
fuente de combustible renovable estable.
La materia prima con base de celulosa comprende
residuos agrícolas, pastos y bosques y otra biomasa de bajo valor,
tal como residuos municipales (por ejemplo, reciclado de papel,
recortes de jardín, etc.). El etanol puede ser producido a partir
de la fermentación de cualquiera de estas materias primas
celulósicas. Sin embargo, la celulosa debe convertirse primero en
azúcares, antes de que pueda haber la conversión en etanol.
Una gran variedad de materias primas se pueden
utilizar con la endoglucanasa inventiva y la seleccionada para su
uso puede depender de la región en la que la conversión se está
haciendo. Por ejemplo, en el medio oeste de Estados Unidos los
residuos agrícolas tales como paja del trigo, rastrojos de maíz y
bagazo pueden predominar, mientras que en California puede
predominar la paja de arroz de. Sin embargo, debe entenderse que
cualquier biomasa disponible de celulosa se puede utilizar en
cualquier región.
Una composición de celulasa que contenga una
cantidad mayor de endoglucanasa encuentra utilidad en la producción
de etanol. El etanol a partir de este proceso también se puede
utilizar como potenciador de octanaje o directamente como
combustible en lugar de la gasolina, lo que es ventajoso porque el
etanol como fuente de combustible es más ecológico que los
productos derivados del petróleo. Es sabido que el uso de etanol
mejorará la calidad del aire y posiblemente reducirá los niveles
locales de ozono y de contaminación. Por otra parte, la utilización
de etanol en lugar de gasolina puede ser de importancia estratégica
en la amortiguación del impacto de los cambios repentinos en las
energías no renovables y los suministros petroquímicos.
El etanol puede producirse a través de procesos
de sacarificación y fermentación de biomasa de celulosa, tal como
árboles, plantas herbáceas, residuos sólidos municipales y residuos
agrícolas y forestales. Sin embargo, la proporción de las enzimas
de celulasa individuales con una mezcla celulasa producida de manera
natural mediante un microbio puede no ser la más eficaz para la
rápida conversión de la celulosa de la biomasa en glucosa. Se sabe
que las endoglucanasas actúan para producir nuevos extremos en la
cadena de celulosa que por sí mismos son sustratos para la acción
de celobiohidrolasas y mejorar así la eficiencia de la hidrólisis
del sistema de celulasa entero. Por lo tanto, la utilización una
actividad de endoglucanasa aumentada u optimizada mejoraría
considerablemente la producción de etanol.
Así, la endoglucanasa inventiva encuentra uso en
la hidrólisis de la celulosa en sus componentes de azúcar. En una
realización, la endoglucanasa se añade a la biomasa antes de la
adición de un organismo de fermentación. En una segunda
realización, la endoglucanasa se añade a la biomasa al mismo tiempo
como un organismo de fermentación. Opcionalmente, puede haber otros
componentes de celulasa presentes en cualquier realización.
En otra realización, la materia prima de
celulosa se puede tratar previamente. El tratamiento previo puede
ser por la temperatura elevada y la adición de cualquiera de una
solución de ácido diluido, ácido concentrado o solución álcali
diluida. La solución de tratamiento previo se añade durante un
tiempo suficiente para, por lo menos parcialmente, hidrolizar los
componentes de la hemicelulosa y luego neutralizalos.
En una aproximación alternativa, una composición
de celulasa que es deficiente o libre de endoglucanasa puede
utilizarse. La supresión del gen de la endoglucanasa de esta
invención sería particularmente útil en la preparación de
composiciones de celulasa para su uso en detergentes. Además, estas
composiciones son útiles para la producción de celooligosacáridos.
La supresión de los genes egl8 de las cepas T. reesei sería
particularmente útil en la preparación de composiciones de celulasa
para su uso en detergentes y en celooligosacáridos de aislamiento.
Las enzimas de celulasa se han utilizado en una variedad de
composiciones de detergente para lavar ropa enzimáticamente. Sin
embargo, se sabe en esta técnica que el uso de enzimas celulasas
puede impartir degradación a las fibras de celulosa en la ropa. Una
posibilidad para disminuir el efecto de la degradación es producir
un detergente que no contenga endoglucanasa. Por lo tanto, la
supresión de esta proteína haría que el sistema de celulasa inhiba
los otros componentes a través de la acumulación de celobiosa. Los
microorganismos modificados de la presente invención son
especialmente adecuados para la preparación de estas composiciones,
porque el gen egl8 se puede eliminar dejando a los restantes
componentes CBH y EG, resultado en la limpieza y mejora de los
beneficios de ablandamiento en la composición, sin efectos de
degradación.
Las composiciones de detergente aquí descritas
pueden emplear, además de la composición de celulasa
(independientemente del contenido de endoglucanasa, es decir,
endoglucanasa libres, endoglucanasa sustancialmente libre, o
endoglucanasa mejorada), un tensioactivo, tal como como sulfactantes
aniónicos, no iónicos y amfolíticos, una hidrolasa, agentes de
construcción, agentes blanqueadores, agentes de tintado azul y
tintes fluorescentes, inhibidores de la aglomeración,
solubilizantes, sulfactantes catiónicos y similares. Todos estos
componentes son conocidos en la técnica de los detergentes. La
composición de celulasa tal como se describe anteriormente se puede
añadir a la composición de detergente, ya sea en un diluyente
líquido, en gránulos, en emulsiones, en geles, en pastas, y
similares. Estas formas son bien conocidas por parte de los expertos
en la materia. Cuando se utiliza una composición de detergente
sólido, la composición de celulasa se formula preferentemente como
gránulos. Preferentemente, los gránulos pueden formularse de manera
que contengan un agente protector de celulasa. Para una descripción
más completa, véase la patente US 6162782, titulada "Composiciones
de detergentes que contienen compuestos de celulasa deficientes en
componentes CBH de tipo I".
En otra realización, las composiciones de
detergentes también pueden contener mayores niveles de endoglucanasa
o endoglucanasa alterada. En este sentido, realmente depende del
tipo de producto que se desea utilizar en composiciones detergentes
para dar los efectos adecuados.
Preferiblemente, las composiciones de celulasas
se utilizan entre aproximadamente un 0,00005 por ciento en peso y
aproximadamente un 5 por ciento en peso en relación a la composición
total de detergente. Más preferentemente, las composiciones de
celulasas se utilizan entre aproximadamente un 0,0002 por ciento en
peso y aproximadamente un 2 por ciento en peso en relación al total
de la composición del detergente.
Las porciones de la secuencia de ácido nucleico
egl8 que son capaces de unirse a la celulosa pueden
utilizarse para generar proteínas de superficie quimérica
bacteriana, lo que permite la inmovilización de la célula completa
en filtros de celulosa u otros soportes sólidos fibrosos, tal como
se describe en Lehtio et al. 2001.
Además, la secuencia de ácidos nucleicos
egl8 encuentra utilidad en la identificación y
caracterización de las secuencias de ácido nucleico relacionadas.
Una serie de técnicas útiles para determinar (predecir o confirmar)
la función de genes relacionados o productos génicos incluyen, pero
no están limitados a: (A) análisis de ADN/ARN, tal como (1)
sobreexpresión, expresión ectópica y expresión en otras especies,
(2) "knock-out" génico (genética inversa,
knock-out dirigido, silenciado génico inducido viral
(VIGS, ver Baulcombe, 1999), (3) análisis del estado de metilación
del gen, especialmente flanqueo de regiones reguladoras, y (4)
hibridación in situ; (B) análisis de productos génicos tales
como (1) expresión de proteína recombinante, (2) producción de
antisueros, (3) inmunolocalización; (4) ensayos bioquímicos para la
actividad catalítica o de otra índole; (5) estado de fosforilación;
y (6) interacción con otras proteínas de levadura a través de
análisis de dos híbridos; (C) análisis de vías, tal como la
colocación de un gen o producto génico dentro de un producto
bioquímico particular o vía de señalización basado en su fenotipo o
su fenotipo de sobreexpresión o mediante homología de secuencia con
los genes relacionados; y (D) otros análisis que también se pueden
realizar para determinar o confirmar la participación del gen
aislado y de su producto en una vía metabólicas o de señalización
particular, y ayudar a determinar la función del gen.
Endoglucanasas y
beta-glucosidasas pueden ser responsables de la
producción de los disacáridos, tal como soforosa, de
cellooligosacáridos y glucosa mediante reacciones de
transglicosilación. La soforosa se sabe que es un inductor muy
potente de expresión de los genes de las celulasas (Ilmen, M. et
al., 1997, Appl. Environ. Microbiol.
63:1298-1306 y sus referencias). De esta manera, EGs
y BGLs pueden desempeñar un papel importante en el proceso de
inducción de la expresión génica de las celulasas. La sobreexpresión
de determinados EGs o BGLs en una cepa fúngica puede provocar a una
mayor productividad general de celulasa mediante esa cepa.
La función de una secuencia de ácidos nucleicos
que codifica EGVIII puede determinarse mediante homología con genes
conocidos que tienen una función particular. Por ejemplo, una
comparación de la secuencia de codificación de una molécula de
ácido nucleico identificada con bases de datos públicas de
secuencias de ácidos nucleicos se utiliza para confirmar la función
por homología con genes conocidos o por extensión de la secuencia de
ácido nucleico identificada.
El término "% homología" se utiliza aquí de
manera intercambiable con el término "% identidad" y se
refiere al nivel de ácido nucleico o identidad de secuencia de ácido
amino entre la secuencia de ácido nucleico que codifica EGVIII o la
secuencia de aminoácidos EGVIII, cuando son alineados mediante un
programa de alineación de secuencias.
Por ejemplo, tal como aquí se utiliza, el 80% de
homología significa lo mismo que el 80% de identidad de secuencia
determinada mediante un algoritmo definido, y en consecuencia un
homólogo de una secuencia dada tiene más de 80% de identidad de
secuencia en una longitud de la secuencia dada. Los niveles de
ejemplo de la secuencia de identidad incluyen, pero no están
limitados a, 80, 85, 90, 95, 98% o más de identidad de secuencia de
una secuencia dada, por ejemplo, la secuencia de codificación
para egl8, tal como se describe aquí.
Los programas de ordenador ejemplar que se
pueden utilizar para determinar la identidad entre dos secuencias
incluyen, pero no están limitados a, el conjunto de programas BLAST,
por ejemplo, BLASTN, BLASTX, y TBLASTX, BLASTP y TBLASTN, a
disposición del público en Internet en
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/. Véase también, Altschul,
et al, 1990 y Altschul, et al. 1997.
Las búsquedas de secuencias se realizan
típicamente utilizando el programa BLASTN cuando se evalúa una
determinada secuencia de ácido nucleico en relación con las
secuencias de ácido nucleico en las secuencias de ADN GenBank y
otras bases de datos públicas. El programa BLASTX se prefiere para
la búsqueda de secuencias de ácidos nucleicos que se han traducido
en todos los marcos de lectura en contra de las secuencias de
aminoácidos en las secuencias de proteínas GenBank y otras bases de
datos públicas. BLASTN y BLASTX se ejecutan utilizando los
parámetros por defecto de una sanción de separación abierta 11,0, y
una sanción de separación ampliada de 1.0, y utilizan matriz
BLOSUM-62. (Véase, por ejemplo, Altschul,
et al., 1997).
Una alineación preferida de secuencias
seleccionadas para determinar el "% de identidad" entre dos o
más secuencias, se realiza utilizando, por ejemplo, el programa de
CLUSTAL-W en MacVector versión 6.5, que funciona
con los parámetros por defecto, incluyendo una sanción de separación
abierta de 10,0, una sanción de separación extendida de 0,1, y una
matriz de similitud 30 BLOSUM.
En una aproximación de ejemplo, la extensión de
secuencia de ácido nucleico que codifica egl8 se puede
realizar utilizando procedimientos convencionales de extensión tal
como se describe en Sambrook et al., supra, para
detectar precursores egl8 y sustancias intermedias de
procesamiento de ARNm que pueden no haber sido transcritas de
manera inversa en ADN y/o identificar ORFs que codifican una
proteína de longitud completa.
En otro aspecto, la presente invención incluye
la secuencia de nucleótidos total o parcial de la secuencia del
ácido nucleico de egl8 para su uso como sonda. Esta sonda
puede utilizarse para identificar y clonar secuencias homólogas de
ácido nucleico de los organismos relacionados.
El cribado de una librería de ADNc o genómica
con la sonda seleccionada se puede realizar utilizando
procedimientos estándar, tal como se describe en Sambrook et
al. (1989). Las condiciones de hibridación, incluyendo una
estringencia moderada y una estringencia alta, se proporcionan en
Sambrook et al., supra.
Las sondas o porciones de las mismas también se
pueden utilizar en técnicas PCR para generar un conjunto de
secuencias para la identificación de las secuencias egl8 muy
relacionadas. Cuando las secuencias egl8 están destinadas
para utilizarse como sondas, se puede utilizar una porción
particular de una secuencia que codifica EGVIII, por ejemplo, una
porción muy conservada de la secuencia de codificación.
Por ejemplo, una secuencia de nucleótidos
egl8 puede utilizarse como sonda de hibridación para una
librería de ADNc para aislar los genes, por ejemplo, los que
codifican variantes de origen natural de EGVIII de otras especies
de hongos, bacterias o plantas, que tienen un nivel deseado de
identidad de secuencia con la secuencia de nucleótidos egl8
descrita en la Figura 1 (SEQ ID NO: 1). Las sondas de ejemplo tienen
una longitud de aproximadamente 20 a aproximadamente 50 bases.
Las proteínas identificadas mediante la presente
invención pueden utilizarse en el sistema de dos híbridos de
levadura para "capturar" la proteína que se une a proteínas que
son proteínas de vía de señal putativa. El sistema de dos híbridos
de levadura se describe en Fields y Song, Nature
340:245-246 (1989). En resumen, en un sistema de
dos híbridos, se construye una fusión de un dominio egl8 de
unión de ADN (por ejemplo, fusión GAL4-egl8) y se
transfecta en células de levadura. Todo el gen egl8, o
subregiones del gen egl8, pueden utilizarse. Una segunda
construcción que contiene la librería de potenciales socios de
unión fusionados con el dominio de activación de ADN se
co-transfecta. Las proteínas que albergan
co-transformantes de levadura que se unen a la
proteína EGVIII se identifican mediante, por ejemplo, la producción
de beta-galactosidasa o luciferasa (un cribado), o
mediante la supervivencia en placas a las que les falta de un
nutriente esencial (una selección), como sea apropiado para los
vectores usados.
Además, el análisis de microarrays, también
conocido como perfil de expresión o perfil de transcripción, se
puede utilizar para evaluar simultáneamente la presencia o la
expresión de secuencias de ADN determinadas, o cambios en la
expresión de muchos genes diferentes. En una aproximación, un gran
conjunto de secuencias de ADN (sondas), usualmente una amplia gama
de etiquetas de secuencias expresadas, ADNc, fragmentos de ADNc, o
oligonucleótidos de secuencia específica, se colocan sobre un
soporte sólido tal como una lámina de vidrio o membrana de nylon.
El objetivo etiquetado para la hibridación con las sondas se genera
mediante el aislamiento de ARNm de control y el tejido inducido, a
continuación, cada grupo de ARNm se etiqueta, ya sea directamente o
a través de un ADNc o ARNc intermedio, con un marcador distinto, por
lo general un tinte fluorescente. El chip se hibrida con las sondas
complejas, y la relativa intensidad de la señal de hibridación
asociada a cada ubicación en la matriz puede ser cuantificada para
cada tinte marcador. Se pueden medir las diferencias en la
expresión entre los estados de control e inducido como proporción de
la señal entre los dos tintes marcadores. (Véase Baldwin, D et
al, 1999.)
Pueden realizarse análisis de microchips del
organismo fuente del cual se derivó egl8, para facilitar la
comprensión de la función de los genes mediante la identificación de
otros genes que son regulados de forma coordinada, como
consecuencia de la sobreexpresión de egl8. La identidad de
los genes regulados de forma coordinada puede ayudar a colocar el
gen egl8 en una ruta particular. Alternativamente, este
análisis puede ser usado para identificar otros genes implicados en
la misma ruta utilizando el análisis de microchips.
Aunque la invención ha sido descrita con
referencia a procedimientos y realizaciones específicas, se aprecia
que varias modificaciones y los cambios pueden realizarse sin
apartarse de la invención.
\vskip1.000000\baselineskip
En una aproximación de ejemplo, un fragmento de
ADNc para su uso como sonda se aísla mediante la extracción de ARN
total de micelios de una cepa de T. reesei cultivadas en
condiciones conocidas que inducen la producción de celulasa y la
obtención de la fracción poliadenilada (poliA) de la misma. El ARN
poliA se utiliza para producir un conjunto de ADNc que luego es
amplificado utilizando cebadores específicos basados en la secuencia
de ácido nucleico egl8 aquí proporcionada.
El ARN total se aísla de los micelios utilizando
procedimientos conocidos en la técnica, por ejemplo, tal como se
describe en Timberlake et al., 1981; Maniatis, et al.,
1989; Ausubel, et al. 1993 y Sambrook et al, 1989, cada uno
de los cuales ha sido expresamente incorporado por referencia en
este documento. Una vez aislados, se realizan Northern blots para
confirmar la expresión de la celulasa y seleccionar un tiempo óptimo
para la inducción de la expresión de la celulasa y el aislamiento
del ARN correspondiente.
El ARN mensajero (ARNm), que tiene una cola poli
(A) en el extremo 3', se puede purificar a partir de ARN total,
utilizando procedimientos conocidos en la técnica.
El ARN T. reesei se utiliza como plantilla para
RT-PCR, utilizando los procedimientos conocidos en
la técnica (Loftus, J. et al., Science,
249:915-918, 1990). Durante este procedimiento, el
ARNm se transcribe inverso para producir una primera cepa de ADNc.
El ADNc sirve posteriormente como plantilla para la amplificación
mediante PCR de secuencias de ADNc egl8 utilizando cebadores
específicos de olionucleótidos diseñados según SEQ ID Nº 1 o SEQ ID
Nº 4.
Esta lista de referencias citadas por el
solicitante está prevista únicamente para ayudar al lector y no
forma parte del documento de patente europea. Aunque se ha puesto
el máximo cuidado en su realización, no se pueden excluir errores u
omisiones y la OEP declina cualquier responsabilidad al
respecto.
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Claims (30)
1. Polinucleótido aislado seleccionado entre el
grupo que consiste en:
(a) una secuencia de ácido nucleico que codifica
o es complementaria con una secuencia que codifica un polipéptido
EGVIII que tiene la actividad biológica de una endoglucanasa, que
tiene por lo menos un 85%, por lo menos un 90%, por lo menos un 95%
o 100% de identidad de secuencia con la secuencia de aminoácidos
presentada en la Figura 2 o en la SEQ ID NO: 2 en toda la longitud
de la secuencia de la Figura 2 o SEQ ID NO: 2;
(b) una secuencia de ácido nucleico presentada
como SEQ ID NO: 4, o su complemento; y
(c) una secuencia de ácido nucleico que hibrida,
bajo condiciones de alta estringencia a la secuencia presentada
como SEQ ID NO: 4, o el complemento o un fragmento de la misma, en
el que dicho polinucleótido aislado codifica un polipéptido que
tiene la actividad biológica de una endoglucanasa.
2. Polinucleótido aislado según la
reivindicación 1(a) o (b).
3. Polinucleótido aislado según la
reivindicación 1 ó 2, en el que dicho polinucleótido es una molécula
de ARN.
4. Polinucleótido aislado según la
reivindicación 1 ó 2, que codifica una enzima que tiene actividad de
endoglucanasa, en donde la enzima se deriva de una fuente de
Trichoderma.
5. Polinucleótido aislado según la
reivindicación 4, en el que la enzima se deriva de Trichoderma
reesei.
6. Construcción de expresión que incluye una
secuencia de ácido nucleico tal como se define en la reivindicación
1 ó 2.
7. Vector que incluye la construcción de
expresión de la reivindicación 6.
8. Vector que comprende un polinucleótido
aislado según la reivindicación 1 ó 2, enlazado de manera operativa
con secuencias de control reconocidas por una célula huésped
transformada con el vector.
9. Célula huésped transformada con el vector
según la reivindicación 7 o la reivindicación 8.
10. Célula huésped recombinante que comprende un
polinucleótido según la reivindicación 1 ó 2.
11. Célula huésped según la reivindicación 9 ó
10, que es una célula procariota o una célula eucariota.
12. Polipéptido EGVIII aislado con la actividad
biológica de una endoglucanasa, que comprende una secuencia
seleccionada entre el grupo que consiste en:
(a) una secuencia de aminoácidos que tiene por
lo menos un 85%, por lo menos un 90%, por lo menos un 95% o 100% de
identidad de secuencia con la secuencia de aminoácidos presentada en
la Figura 2 o SEQ ID NO: 2 en toda la longitud de la secuencia de
la Figura 2 o SEQ ID NO: 2; y
(b) un fragmento biológicamente activo
substancialmente purificado de la secuencia de aminoácidos
presentada como SEQ ID NO: 2.
13. Polipéptido EGVIII aislado según la
reivindicación 12(a).
14. Célula huésped recombinante que comprende
una supresión o inserción u otra alteración en un gen egl8
que tiene una secuencia de ácido nucleico tal como se define en la
reivindicación 1, cuya eliminación, inserción u otra alteración
inactiva el gen y evita la producción de polipéptido EGVIII.
15. Oligonucleótido antisentido complementario a
un ARN mensajero que codifica un polipéptido EGVIII que tiene la
secuencia presentada como SEQ ID NO: 2, donde bajo la exposición a
una célula huésped productora de endoglucanasa, dicho
oligonucleótido disminuye o inhibe la producción de endoglucanasa
por parte de dicha célula huésped.
16. Oligonucleótido antisentido según la
reivindicación 15, en el que la célula huésped es un hongo
filamentoso.
17. Composición detergente, comprendiendo dicha
composición un polipéptido según la reivindicación 12 ó 13.
18. Procedimiento para expresar EGVIII en una
celda, comprendiendo el procedimiento:
(i) proporcionar células del huésped que han
sido transducidas, transformadas o transfectadas con un vector de
expresión que comprende una secuencia de ácido nucleico que codifica
EGVIII según la reivindicación 1 ó 2;
(ii) cultivar las células.
19. Procedimiento según la reivindicación 18,
donde la secuencia de ácido nucleico que codifica EGVIII incluye
una secuencia de codificación de un péptido de señal adicional.
20. Procedimiento según la reivindicación 18, en
el que las células huésped son Aspergillus sp.
21. Procedimiento según la reivindicación 18,
que también comprende:
(a) transformar de manera estable las células
huésped con un vector de expresión que comprende un polinucleótido
según la reivindicación 1 ó 2 para proporcionar las células huésped
en (i), y
(b) recuperar dicha endoglucanasa de las células
cultivadas en (ii).
22. Procedimiento según la reivindicación 21, en
donde la célula huésped es un hongo filamentoso o célula de
levadura.
23. Procedimiento para convertir celulosa en
etanol, comprendiendo el procedimiento la utilización de una
composición enzimática que comprende un polipéptido EGVIII según la
reivindicación 12 ó 13 para hidrolizar la celulosa en sus
componentes de azúcar.
24. Procedimiento según la reivindicación 23, en
donde la composición se enriquece en EGVIII.
25. Procedimiento según la reivindicación 23 ó
24, en el que la composición que comprende EGVIII se añade a la
biomasa de celulosa antes de la adición de un organismo de
fermentación.
26. Procedimiento según la reivindicación 23 ó
24, en el que la composición que comprende EGVIII se añade a la
biomasa de celulosa al mismo tiempo como un organismo de
fermentación.
27. Procedimiento según la reivindicación 26,
que comprende una sacarificación y fermentación simultáneas
mediante las cuales la celulosa presente en la biomasa se convierte
en glucosa y, al mismo tiempo y en el mismo reactor, las cepas de
levadura convierten la glucosa en etanol.
28. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 23 a 27, en el que la composición también comprende
además enzimas celulasas adicionales seleccionados entre: otras
endoglucanasas; beta-glucosidasas y/o
celobiohidrolasas.
29. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 23 a 28, en el que la celulosa se proporciona
mediante: pulpa de madera, papel, algodón, pañales de celulosa,
residuos de maíz, árboles, plantas herbáceas, residuos sólidos
urbanos o residuos agrícolas y forestales.
30. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 23 a 29, en el que la celulosa se proporciona
mediante una materia prima celulósica que se trata previamente
mediante un tratamiento previo seleccionado entre: temperatura
elevada; la adición de un ácido diluido, ácido concentrado o
solución álcali diluida.
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