ES2337879T3 - Procedimiento de dosificacion de la fibrina soluble. - Google Patents

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Abstract

Procedimiento de dosificación de la fibrina soluble en una muestra, en el que se coloca dicha muestra en presencia de un activador del plasminógeno de fuerte especificidad con la fibrina soluble (PA-Fb sp) específico de la fibrina en las condiciones de utilización del activador seleccionadas para evitar la degradación del fibrinógeno plasmático circulante y se mide el contenido de la muestra en fibrina soluble, midiendo la diferencia entre la proporción de productos de degradación específicos de la fibrina obtenidos después de la degradación de la fibrina soluble por incubación con el PA-Fb sp y la proporción de base de los productos de degradación de la fibrina, determinada sobre dicha muestra antes de su puesta en presencia con el PA-Fb sp.

Description

Procedimiento de dosificación de la fibrina soluble.
La presente invención se refiere a un procedimiento de dosificación de la fibrina soluble mediante la generación de productos de degradación específicos en una muestra sanguínea.
Durante la activación de la coagulación, se genera trombina que provoca la formación de depósitos de fibrina y la formación de fibrina soluble.
En efecto, la trombina desprenderá de la molécula de fibrinógeno el fibrinopéptido A que provoca la generación de monómeros de fibrina sobre los cuales los sitios de polimerización "A" que estaban enmascarados en el fibrinógeno son desenmascarados, provocando con ello una interacción entre los sitios "A" de una molécula de monómero de fibrina con los sitios "a" accesibles tanto en el fibrinógeno como en la fibrina. En 2º tiempo, se produce la liberación del fibrinopéptido B, que provoca un desenmascaramiento de los sitios de polimerización "B" que provoca la interacción entre los sitios "B" de una molécula de fibrina con los sitios "b" accesibles tanto en el fibrinógeno como en los monómeros de fibrina.
Cuando la cantidad de trombina es muy importante (ensayo in vitro), todo el fibrinógeno se transforma en monómeros de fibrina que se polimerizan a consecuencia de la interacción de los sitios "A" y "a" por un lado, y "B" y "b" por otro lado, para dar el coágulo de fibrina. Por el contrario, in vivo, la generación de trombina es mucho menos importante. La generación de monómeros de fibrina resulta así mucho menos explosiva y por ello una parte de los monómeros de fibrina polimerizarán para dar fibrina (trombo) y otra parte reaccionará con fibrinógeno en el que los sitios a y b son accesibles o con unos productos de degradación del fibrinógeno, para dar fibrina soluble en la que unos monómeros de fibrina son asociados con fibrinógeno.
La determinación de la fibrina soluble tiene como objetivo estudiar si existe una activación de la coagulación en un paciente, siendo testigo de esta activación la presencia de fibrina soluble en la sangre, en particular en el plasma.
Esta determinación es un complemento necesario para la dosificación de D-dímeros formados por la fibrinolisis de la fibrina que constituye el trombo, que constituye asimismo un marcador del proceso de activación de la coagulación. En efecto, se aumenta el contenido plasmático en D-dímeros mientras el coágulo se degrada in vivo. Por ello, si el trombo está presente y se está degradando, el porcentaje de D-dímeros aumentará, tanto si persiste la coagulación como si ésta está interrumpida: por el contrario el de fibrina soluble no aumentará si la coagulación es interrumpida y por el contrario aumentará si la coagulación persiste.
La medición específica del contenido plasmático en fibrina soluble con respecto al contenido en D-dímeros permite por lo tanto:
1.
determinar si un proceso de coagulación está presente en un paciente en el momento en que se realiza la extracción.
2.
evaluar el balance coagulo-lítico. En efecto, la proporción de D-dímeros de base es el reflejo de la degradación del trombo IN VIVO; la proporción de D-dímeros obtenida después de añadir el agente trombolítico en el plasma representa la suma de los D-dímeros de base y la que procede de la degradación de la fibrina circulante (o fibrina soluble).
Entre los procedimientos de dosificación de la fibrina soluble más antiguos, se pueden citar el ensayo con etanol (1, 2, 9) o el ensayo con sulfato de protamina (3, 4, 5, 7). Sin embargo, estos ensayos son poco específicos (9, 10) y poco sensibles (10). Además, unas proporciones elevadas de fibrinógeno (> 5 g/l) perturban los resultados obtenidos con los ensayos con etanol y con sulfato de protamina. Por último, los resultados de los ensayos con sulfato de protamina pueden ser difíciles de interpretar (6, 8).
Otro tipo de detección de la fibrina soluble se basa en una técnica de hemaglutinación de glóbulos rojos sensibilizados con unos monómeros de fibrina según el procedimiento de Largo (11, 12). Este tipo de ensayo es, por ejemplo, comercializado por la compañía Diagnostica Stago bajo la denominación de FS Test.
Sin embargo esta técnica de realización, aunque fácil, puede carecer a veces de sensibilidad y se presta sobre todo al diagnóstico de coagulaciones intravasculares diseminadas. No permite, por el contrario, detectar contenidos más bajos de fibrina soluble (trombosis localizadas, exploración de la eficacia de una terapia anticoagulante).
En la actualidad, las otras técnicas de dosificación de la fibrina soluble se basan en la utilización de anticuerpos monoclonales que detectan unos epítopos desenmascarados en la fibrina y enmascarados en el fibrinógeno o los productos de degradación de la fibrina o del fibrinógeno (13-14). Sin embargo, las dosificaciones directas utilizando anticuerpos monoclonales dan unas proporciones en fibrina soluble que varían según el anticuerpo comercial utilizado.
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Los autores de la presente invención proponen un enfoque diferente a los preconizados en el estado de la técnica, particularmente sencillo y rápido, para apreciar el balance coagulo-lítico de un paciente. Este enfoque posee una mejor sensibilidad que el procedimiento por hemaglutinación descrito anteriormente. Presenta la ventaja, con respecto a los tests que utilizan anticuerpos monoclonales, de detectar de la misma forma la fibrina circulante (soluble) y la que ya se ha degradado IN VIVO, lo que permite de esta forma obtener una evaluación muy exacta del balance coagulo-lítico.
Según el procedimiento de la presente invención, se mide la fibrina soluble presente en una muestra después de la generación de productos de degradación de la fibrina soluble, durante la incubación de la muestra con un activador del plasminógeno que tiene una fuerte especificidad con respecto a la fibrina (PA-Fb sp). Así, la diferencia entre la proporción de productos de degradación obtenida después de la degradación de la fibrina soluble por el PA-Fb sp y la de los productos de degradación de la fibrina de base, medida antes de la puesta en contacto de la muestra con el PA-Fbsp, permite medir el contenido plasmático en fibrina soluble en la muestra.
Por lo tanto, la invención tiene por objeto un procedimiento de dosificación de la fibrina soluble en una muestra biológica en la que se pone dicha muestra en presencia de un activador del plasminógeno de fuerte afinidad con la fibrina (PA-Fb sp) y se mide el contenido de la muestra en fibrina soluble midiendo la diferencia entre la proporción de los productos de degradación obtenidos después de la degradación de la fibrina soluble por el PA-Fb sp y la proporción de base de los productos de la degradación de la fibrina determinada antes de la puesta en contacto de la muestra con el PA-Fb sp.
El procedimiento de dosificación de la fibrina soluble según la invención en una muestra biológica, comprende las etapas siguientes:
-
dosificar los productos de degradación de la fibrina contenidos en la muestra de plasma extraída,
-
poner contacto la muestra sanguínea con un activador de plasminógeno que tiene una fuerte especificidad con la fibrina (Pa-Fb sp) en unas condiciones que permiten que la fibrina soluble contenida en la muestra, sea degradada en sus productos de degradación, seleccionándose las condiciones de utilización del activador para evitar la degradación del fibrinógeno plasmático circulante,
-
dosificar los productos de degradación de la fibrina en la muestra incubada con el Pa-Fbsp,
-
determinar la fibrina soluble que corresponde a la diferencia entre el contenido en productos de degradación de la fibrina evaluado después de la incubación con el PA-Fb sp y el contenido en productos de degradación de la fibrina, evaluado en la muestra no tratada.
El reactivo utilizado para dosificar los productos de degradación se selecciona para medir un grupo determinado de productos de degradación. Por ejemplo, se utilizan unos anticuerpos de especificidad determinada con respecto a un tipo particular de productos de degradación.
Preferentemente, la muestra biológica es un líquido biológico, por ejemplo una muestra de sangre o de plasma, o incluso un líquido de punción.
Se describe asimismo en la presente memoria la utilización de un activador del plasminógeno de fuerte afinidad con la fibrina (i.e. que solo activa el plasminógeno en el seno de la fibrina) en un procedimiento de dosificación de la fibrina soluble mediante la generación de productos de degradación específicos. Prevé asimismo un kit para la realización del procedimiento citado anteriormente.
Se conocen numerosos compuestos activadores del plasminógeno. Algunos, sin embargo, degradan tanto el fibrinógeno como la fibrina, tales como por ejemplo la estreptoquinasa y la uroquinasa (15). Estos compuestos no están adaptados al procedimiento de la invención puesto que producen una degradación del fibrinógeno dando lugar a unos productos de degradación del fibrinógeno que interfieren con los que resultan de la degradación de la fibrina.
Un segundo grupo de activadores del plasminógeno está constituido por unos compuestos descritos como que presentan una fuerte especificidad para degradar la fibrina, con respecto al fibrinógeno. El procedimiento de la invención utiliza para su realización, ventajosamente, la especificidad de este segundo grupo de compuestos.
Se han descrito en la bibliografía diferentes compuestos que presentan una especificidad de este tipo (PA Fb sp). Se conocen por ejemplo:
\blacklozenge
el activador tisular del plasminógeno (o t-PA) o sus derivados como, por ejemplo, el TNK-tPA que es un mutante del t-PA que tiene una gran especificidad con respecto a la fibrina (16);
\blacklozenge
el activador procedente de la saliva de Desmodus rotundus (bat-tPA o vPA= Vampire bar salivary plasminogen activator) o sus derivados:
DSPA= Desmodus rotundus salivary PA, FEKP=DSPA alfa 1 y alfa 2, EKP=DSPA beta, KP=DSPA gamma, (17).
\blacklozenge
La Estafiloquinasa, (SAK), polipéptido segregado por el Staphylococcus aureus (18-19) o uno de sus mutantes (20).
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Se realiza el procedimiento según la presente invención preferentemente sobre una muestra de plasma. La proporción de fibrina soluble es determinada por la medición de los productos de degradación resultantes de la acción del PA Fb sp. El procedimiento es validado si es necesario gracias a la utilización de un testigo positivo obtenido a partir de un plasma normal tratado con unas trazas de trombina de manera que se induce una activación de la coagulación responsable de la generación de fibrina soluble, sin desembocar sin embargo en la formación de un coágulo.
Para la obtención del plasma de control positivo, el plasma se incuba en primer lugar con trombina u otro activador de la coagulación durante un tiempo determinado. El proceso de coagulación que ha sido desencadenado de esta forma es bloqueado a continuación mediante la adición de un inhibidor del activador utilizado para evitar que la reacción prosiga. En el caso en que este activador es la trombina, se utiliza por ejemplo como inhibidor la hirudina o la heparina.
El tiempo de incubación del plasma y las concentraciones en activador de la coagulación y en inhibidor para el bloqueo son determinadas ventajosamente de manera que se obtienen todas las etapas de activación de la coagulación que preceden al inicio de la formación del coágulo.
Se lleva a cabo la incubación en presencia de activador de la coagulación (trombina) durante un tiempo de incubación de 2 minutos, a temperatura ambiente. El inhibidor es añadido a continuación en exceso para estar seguros de bloquear la coagulación.
\blacklozenge
Si se trata de la hirudina, ésta se utiliza ventajosamente a una concentración final de 100 \mug/ml para una concentración final en trombina de 0,18 U/ml.
\blacklozenge
Si se trata de la heparina, ésta se utiliza a 500 U/ml en la concentración final cuando la concentración final en trombina utilizada es de 0,18 U/ml.
La evaluación de la fibrina soluble según la presente invención emplea una primera etapa de degradación de la fibrina soluble por el PA Fb sp, seguida de una medición de los productos de degradación específicos resultantes de la acción del PA Fb sp.
Es indispensable que los resultados del procedimiento según la invención puedan ser obtenidos lo más rápidamente posible, siendo al mismo tiempo representativos de la cantidad de fibrina soluble presente en la muestra. Para ello, las condiciones de utilización del PA Fb sp deben ser determinadas de manera que la degradación de la fibrina soluble sea rápida y que no venga acompañada de una degradación "contaminante" del fibrinógeno plasmático circulante, dando lugar a unos productos de degradación que interfieran con los procedentes de la fibrina soluble en la dosificación.
Así, las dosis de PA Fb sp se seleccionan de manera que se induce el aumento de la proporción de productos de degradación de la fibrina más importante en los testigos positivos y un aumento prácticamente nulo en los testigos negativos (i.e. que no han sido sometidos a un tratamiento mediante un activador de la coagulación).
Se pueden utilizar, en el marco de la presente invención, diferentes activadores de la fibrinolisis que permiten la degradación específica de la fibrina. Ventajosamente, se selecciona el PA Fb sp de entre el grupo constituido por los activadores citados anteriormente, a saber: el tPA o sus derivados, el VPA o sus derivados, la estafiloquinasa o uno de sus mutantes. Preferentemente se utiliza el tPA o la estafiloquinasa, y más preferentemente, el tPA.
En unas condiciones de incubación de las muestras de 15 minutos a 37ºC, la concentración final de estafiloquinasa utilizada está comprendida entre 1 y 12 \mug/ml. La concentración final considerada es de 10 \mug/ml. El tiempo de incubación puede ser modificado y su variación estará determinada en función de la naturaleza y de la concentración de la PaFbsp utilizada.
Se utiliza ventajosamente el tPA en un intervalo de concentraciones finales comprendido entre 1 y 2,5 \mug/ml. Preferentemente, el tPA se utiliza a 2 \mug/ml.
Existen diferentes productos de degradación de la fibrina soluble que pueden ser detectados específicamente. Según un modo de realización preferido, se miden la proporción de D-dímeros resultantes de la acción del PA Fb sp sobre la fibrina soluble, i.e. se evalúa la concentración en D-dímeros resultante de la acción del PA Fb sp sobre la fibrina soluble (D-dímeros después de la acción del PA Fb sp-D-dímeros de base antes de la acción del PA Fb sp).
Los D-dímeros resultantes de la degradación de la fibrina soluble en presencia de PA Fb sp, pueden ser dosificados según cualquier técnica habitual de dosificación de analito tales como por ejemplo unos procedimientos de tipo ELISA, unos procedimientos sensibles por aglutinación de bolas de látex, unos procedimientos de inmunocromatografía, etc. Entre los diferentes ensayos de dosificación de los D-dímeros disponibles en el mercado, se pueden citar por ejemplo el ASSERACHROM D-Di o el STA LIATEST D-Di, ambos comercializados por Diagnostica Stago. Sin embargo, en el marco de la presente invención, las condiciones de utilización del ensayo ELISA del ASSERACHROM D-Di han sido modificadas ventajosamente para acortar el ensayo (15 min. de incubación con el anticuerpo inmovilizado y 15 minutos con el anticuerpo marcado con peroxidasa).
Además del fragmento DD/E, existen otros productos de degradación de la fibrina tales como los complejos YD/DY, YD/DXD que pueden ser evaluados.
Como se ha ilustrado en los siguientes ejemplos (véase el ejemplo 3), el procedimiento de la invención se puede realizar en enfermos que presentan una activación de la coagulación o bien antes del inicio de una terapia, o bien durante un tratamiento anticoagulante, o bien después de la interrupción de la terapia anticoagulante. Así, permite apreciar no solo la evolución de un proceso de activación de la coagulación, en particular en el marco del diagnóstico de activación de la coagulación, sino también la eficacia de una terapia anticoagulante.
Según otro aspecto, se describe en la presente memoria un kit (conjunto) de dosificación de la fibrina soluble en una muestra, caracterizado porque comprende:
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un control positivo para la presencia de fibrina soluble obtenido según el protocolo descrito anteriormente,
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un control negativo constituido por un plasma testigo.
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PA-Fb sp en cantidad individual para una extracción o en cantidad suficiente para unas extracciones múltiples,
\blacklozenge
un reactivo para la dosificación de los D-dímeros, y
\blacklozenge
eventualmente un tampón de dilución de las muestras tal como un tampón fosfato pH 7,4 que contiene 0,1% de suero bovino albúmina y 0,05% de Tween 20.
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Los plasmas de control positivos y negativos se encuentran de manera ventajosa en forma liofilizada.
El PA-Fb sp utilizado preferentemente es el tPA.
Los D-Dímeros son dosificados por ejemplo con un reactivo para un procedimiento de tipo ELISA, tal como ASSERACHROM D-Di, o un reactivo para un ensayo sensible de aglutinación de partículas de látex tal como STA LIATEST D-Di, ambos comercializados por Diagnostica Stago.
Los siguientes ejemplos ilustran la presente invención.
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Ejemplo 1 Elección de la concentración de trombina utilizada para la obtención de un plasma de control positivo que contiene fibrina soluble
El plasma de control positivo se prepara según el siguiente protocolo:
Plasma normal
300 \mul
Trombina humana (Stago ref. 00896) a 2 U/ml
30 \mul
Incubación de 2 min. a la temperatura del laboratorio.
Hirudina (Knoll)
100 \mug/ml (concentración final)
o heparina (Choay)
500 ug/ml (concentración final)
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Verificar:
-
que no se ha formado ningún coágulo en el tubo.
-
que un ensayo de detección de la fibrina soluble disponible en el mercado sea positivo (por ejemplo FS test del laboratorio Stago).
Se pueden considerar dos posibilidades presentadas en la tabla I.
\newpage
TABLA I
I-A: Tubo 2 considerado
1
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I-A: Tubo 3 considerado
2
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Ejemplo 2 Determinación de la cantidad de PA Fb a utilizar en unas condiciones de incubación definidas
Para realizar el procedimiento de la invención, la cantidad de activador a añadir a la muestra debe ser tal que induzca una generación de D-dímeros importante en el plasma de control positivo, tal como el obtenido en el ejemplo nº 1, y una generación de los D-dímeros no significativa en un plasma de control negativo (testigo no tratado con trombina).
Por lo tanto, se ha realizado una incubación de los plasmas testigo y de plasmas de control positivos (n=21) con diferentes dosis de PA Fb sp durante 15 minutos a 37ºC. Al final del tiempo de incubación, se determinan los D-dímeros mediante Liatest o mediante ELISA rápido (D-Di Stago) (incubación de 15 minutos a 37ºC con el anticuerpo de captura y de 15 minutos a 37ºC con el anticuerpo de revelación).
Los resultados presentados en la tabla I se han obtenido con el ensayo ELISA.
Se obtienen unos resultados sustancialmente análogos con el Liatest (n=5).
TABLA II Degradación de la fibrina soluble por cantidades crecientes de t-PA y de SAK
3
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La dosis de pA Fb sp escogida es la que induce:
-
un aumento <300 ng/ml en los plasmas de control no tratados (testigos negativos),
-
el aumento más importante en los plasmas de control positivos.
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De estos resultados se desprende que las concentraciones finales preferidas de PA Fb sp a utilizar son:
-
2 \mug/ml para el t-PA: en estas condiciones, la dosis de t-PA susceptible de ser neutralizada por los PAI es despreciable.
-
10 \mug/ml para la SAK (dosis inferiores de SAK han inducido una mala degradabilidad de la fibrina soluble en ciertos enfermos o ciertos controles positivos, debido seguramente a la presencia de antiestafiloquinasa en la muestra, antiestafiloquinasa que puede aparecer como consecuencia de una infección por estafilococos.
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Ejemplo 3 Resultados obtenidos en unos voluntarios sanos y en unos enfermos que presentan una posible de activación de la coagulación (debido a un aumento de los D-dímeros)
Se realiza el procedimiento sobre unas muestras de plasma, según el protocolo indicado anteriormente: incubación de los plasmas durante 15 minutos a 37ºC en presencia de tPA (2 \mug/ml) o de SAK (10 \mug/ml).
Los D-dímeros generados son dosificados mediante un ensayo ELISA tal como se ha descrito anteriormente.
A. Resultados obtenidos en el voluntario sano TABLA III
4
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B. Resultados obtenidos en los enfermos que presentan una proporción de D-dímeros elevada
Experimento realizado mediante Elisa rápido.
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TABLA IV Ejemplos encontrados en el estudio
5
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Conclusiones
El procedimiento según la invención permite separar los enfermos en tres grupos, en función de sus contenidos plasmáticos en fibrina soluble y en D-dímeros. Las características de cada uno de estos tres grupos se resumen en la tabla V siguiente.
6
Como se ha indicado anteriormente, el procedimiento de la invención permite así no solo seguir la evolución de un proceso de activación de la coagulación sino también evaluar la eficacia de una terapia anticoagulante, y apreciar si con la interrupción de la terapia se produce de nuevo la activación de la coagulación.
Grupo 1:
activación de la coagulación precoz con aumento de la fibrina soluble, sin aumento de los D-Dímeros.
Grupo 2:
enfermos para los que se interrumpe la activación de la coagulación (terapia eficaz), pero el trombo ya formado continúa degradándose (contenido en fibrina soluble normal, proporción de D-dímeros aumentada)
Grupo 3:
enfermos que presentan una activación de la coagulación con degradación del coágulo in vivo (aumento simultáneo de la fibrina soluble y de los D-Dímeros): terapia insuficientemente eficaz.
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Ejemplo 4 Recapitulación de la técnica utilizada Reactivos
Tampón pH 7,4
Trombina humana purificada (Stago Ref. 00896)
t-PA (Boehringer)
Aprotinina. Conservar la solución a 4ºC.
Kit de D-Dímeros.
El procedimiento utilizado se resume en la tabla VI.
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TABLA VI Protocolo utilizado para la dosificación de la fibrina soluble por generación de D-Dímeros
7
8
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16. CANNON CP, GIBSON CM, MCCABE CH, ADGEY AA, SCHWEIGER MJ, SEQUEIRA RF, GROLLIER G, GIUGLIANO RP, FREY M, MUELLER HS, STEINGART RM, WEAVER WD, VAN DE WERF F, BRAUNWALD E.: "TNK-tissue plasminogen activator compared with front-loaded altephase in acute myocardial infarction results of the TIMI 10B trial". Thrombolysis in Myocardial Infarction (TIMI) 10B Investigators, Circulation 98 (25), 2805-14, 1998.
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Claims (14)

1. Procedimiento de dosificación de la fibrina soluble en una muestra, en el que se coloca dicha muestra en presencia de un activador del plasminógeno de fuerte especificidad con la fibrina soluble (PA-Fb sp) específico de la fibrina en las condiciones de utilización del activador seleccionadas para evitar la degradación del fibrinógeno plasmático circulante y se mide el contenido de la muestra en fibrina soluble, midiendo la diferencia entre la proporción de productos de degradación específicos de la fibrina obtenidos después de la degradación de la fibrina soluble por incubación con el PA-Fb sp y la proporción de base de los productos de degradación de la fibrina, determinada sobre dicha muestra antes de su puesta en presencia con el PA-Fb sp.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque los productos de degradación de la fibrina medidos son los D-dímeros.
3. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque el PA-Fb sp se selecciona de entre el grupo constituido por: el tPA o sus derivados, el VPA o sus derivados, la estafiloquinasa o uno de sus mutantes.
4. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque el PA-Fb sp es el tPA o la estafiloquinasa.
5. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque la muestra sanguínea es plasma.
6. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque los productos de degradación de la fibrina se dosifican según un procedimiento de tipo ELISA, o LIATEST.
7. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, caracterizado porque la muestra a ensayar se incuba durante 15 minutos a 37ºC en presencia de PA-Fb sp.
8. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado porque el PA-Fb sp es el t-PA utilizado en un intervalo de concentraciones finales comprendido entre 1 y 2,5 \mug/ml.
9. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado porque el PA-Fb sp es el tPA a una concentración final de 2 \mug/ml de muestra.
10. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado porque el PA-Fb sp se selecciona de entre la Estafiloquinasa, la bat-tPA, VPA, la DSPA, la FEKP, el EKP y la KP.
11. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado porque el PA-Fb sp es la estafiloquinasa a una concentración final de 10 \mug/ml de muestra.
12. Procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, caracterizado porque las proporciones de productos de la degradación de la fibrina soluble que resultan de la activación del PA-Fb sp se aprecian con respecto a un testigo positivo preparado a partir de un plasma normal tratado mediante un activador de la coagulación y a continuación por un inhibidor de dicho activador para evitar la formación de un coágulo.
13. Procedimiento según una de las reivindicaciones 1 a 12, caracterizado porque el testigo positivo se prepara a partir de un plasma normal tratado con trombina de manera que se induce una activación de la coagulación in vitro y a continuación con hirudina o heparina, para evitar la formación de un coágulo.
14. Utilización del procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13, para seguir la evolución de un proceso de activación de la coagulación y evaluar la eficacia de una terapia anticoagulante.
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