ES2330007T3 - Nuevo peptido que interactua con proteinas antiapopticas de la familia bcl-2. - Google Patents
Nuevo peptido que interactua con proteinas antiapopticas de la familia bcl-2. Download PDFInfo
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Abstract
Péptido que interactúa con las proteínas antiapoptóticas de la familia Bcl-2 que consiste en la secuencia SEQ. ID. NO. 1: Asp-Thr-Arg-Arg-Ser-Met-Val-Phe-Ala-Arg-His-Leu-Arg-Glu-Val-Gly-Asp-Glu-Phe-Arg-Ser-Arg.
Description
Nuevo péptido que interactúa con proteínas
antiapópticas de la familia Bcl-2.
La presente invención se refiere a un nuevo
péptido que interactúa con Bcl-XL y/o
Bcl-2 y/o Bcl-W, así como a los
métodos de cribado que permiten identificar moléculas capaces de
modular esta interacción.
La mayoría de los procesos biológicos implican
interacciones proteína-proteína. Uno de los
objetivos fijados por la proteómica es la realización de un mapa de
estas interacciones. Éstas, implicadas en la mayoría de los
mecanismos de transducción de señales, son los blancos escogidos en
la elaboración de un medicamento.
Existen numerosas metodologías que permiten
identificar las interacciones proteicas. Una de las más difundidas
es el sistema de doble híbrido, desarrollado y descrito inicialmente
por Fields y col. (US 5.283.173; US 5.468.614; US 5.667.973). Este
sistema se compone básicamente de una prueba in vitro entre
dos proteínas recombinantes. La primera, llamada proteína
"cebo" es una proteína quimérica fusionada a un dominio de
unión a ADN (DNA binding domain/BD) capaz de unirse aguas arriba a
un gen reportero. Los dominios de unión comúnmente utilizados son
los Gal4 o E. coli LexA. La segunda proteína es también una
proteína quimérica comúnmente denominada "presa" que contiene
un dominio de activación (activation domain/AD), que proviene en
general de Gal4. Sin embargo, estos métodos convencionales tienen
sus propios límites. Por ejemplo, es bien conocido que tales
cribados pueden llevar a falsos positivos y/o falsos negativos y es
necesaria la confirmación bioquímica de los resultados obtenidos.
Una técnica más eficaz que permite minimizar los falsos positivos o
negativos se describe en la solicitud de patente WO 9942612 y
utiliza levaduras haploides recombinantes que contienen las
proteínas "cebo" y "presa". Este sistema permite la
detección de un mayor número de "presas" a partir de un
"cebo" de forma más concreta, más reproducible y más sensible
que el resto de los métodos convenciones empleados en este
campo.
La apoptosis es un proceso de muerte celular que
desempeña un papel crucial en los organismos pluricelulares. En
efecto, existen dos formas de muerte celular: la necrosis y la
apoptosis. La necrosis se encuentra en las lesiones tisulares: las
células se hinchan, lo que lleva a la salida de los constituyentes
celulares y después a la lisis de la célula, provocando una
inflamación de los tejidos cercanos. Por el contrario, la apoptosis
es un proceso fisiológico programado y regulado del que no se puede
subestimar su importancia, ya que aproximadamente 10^{9} de
nuestras células mueren todos los días por este mecanismo. Numerosas
patologías están asociadas a la desregulación del equilibrio
existente entre el crecimiento, la supervivencia y la muerte
celular. Se pueden mencionar en particular las enfermedades
autoinmunes, algunas enfermedades neurológicas y el cáncer.
Mantener una célula viva o programar su muerte necesita al menos
diez familias de proteínas diferentes, entre las cuales desempeña
un papel principal la familia Bcl-2. Esta familia
contiene aproximadamente veinte proteínas, entre ellas
Blc-2, Bcl-XL y
Bcl-W, proteínas antiapoptóticas que favorecen la
supervivencia de la célula, al contrario que Bax, Bak y Bid, que
son proteínas proapoptóticas. Durante la apoptosis parece que los
miembros de la familia Bcl-2 modifican sus
interacciones con sus asociadas de forma que inducen cambios
irreversibles en las células, cambios que conducen a la muerte
celular.
Así, es esencial poder identificar moléculas
capaces de modificar estas interacciones para obtener candidatos
reales a medicamentos eficaces para las patologías que implican una
desregulación de la apoptosis, en particular enfermedades
autoinmunes, ciertas enfermedades neurodegenerativas y el
cáncer.
El solicitante ha identificado ahora un nuevo
péptido que interactúa con las proteínas antiapoptóticas de la
familla Bcl-2, y en particular
Bcl-2, Bcl-XL y
Bcl-W.
Este péptido de 22 aminoácidos corresponde al
dominio preciso de interacción con las proteínas antiapoptóticas de
la familia Bcl-2, y en particular
Bcl-2 y/o Bcl-XL y/o
Bcl-W, y posee los criterios estructurales típicos
de un motivo "BH3", un dominio de interacción que permite la
formación de homo- o heterodímeros.
El pequeño tamaño de este péptido hace del mismo
un candidato ideal para el diseño de un ensayo que permita un
cribado altamente eficaz de moléculas capaces de modular las
interacciones entre estas proteínas.
En la literatura se encuentran numerosos ensayos
de cribado de moduladores de interacciones
proteína-proteína, pero a menudo presentan límites
en cuanto a su sensibilidad y factibilidad a alto rendimiento. Los
métodos habitualmente utilizados necesitan de herramientas
complejas (interacciones entre proteínas de fusión, entre proteínas
recombinantes...) poco compatibles con un cribado de alto
rendimiento. En la mayoría de los casos, generan un ruido de fondo
importante y son poco fiables desde un punto de vista cuantitativo:
presentan un marco de lectura reducido que no permite un cribado
óptimo de las moléculas ensayadas.
El solicitante, por el contrario, ha diseñado
una prueba de cribado altamente eficaz que se basa en la
polarización de fluorescencia (Owicki J.C. y col., Journal of
Biomolecular Screening, 5, 2000, 297-306). Esta
técnica permite por ejemplo medir la interacción entre un ligando
marcado por un fluoróforo y un receptor. El principio consiste en
medir el incremento de la polarización de fluorescencia emitida por
el ligando fijado a su receptor comparada con la que emite el
ligando libre. La polarización de fluorescencia del ligando libre
depende de su peso molecular y será mayor cuanto mayor sea el peso
molecular de dicho ligando. Así, cuando se realiza esta prueba con
un ligando de alto peso molecular, con fuerte polarización de
fluorescencia intrínseca, será difícil apreciar fiablemente la
diferencia de polarización de fluorescencia entre el ligando libre y
el ligando fijado. Por el contrario, la utilización de un ligando
de tamaño reducido permitirá exacerbar esta diferencia y, por
consiguiente, aumentar la precisión del ensayo. Así, será posible
evaluar mejor la actividad real de una molécula y llevar a cabo
estos cribados de alto rendimiento.
Más en particular, se describe un péptido que
contiene la secuencia de aminoácidos descritas en SEQ. ID. NO. 1,
así como sus variantes funcionales.
Se entiende por "variantes funcionales"
todo fragmento o mutante puntual del péptido descrito en la SEQ. ID.
NO. 1 capaz de interactuar con las proteínas antiapoptóticas de la
familia Bcl-2 y en particular Bcl-2
y/o Blc-XL y/o Bcl-W.
Este péptido ha sido identificado por el método
del doble híbrido utilizando Bcl-XL,
Bcl-W y Bcl-2 como proteínas
"cebos". Se han cribado tres bancos de cADN humanos (placenta,
cerebro, línea celular CEMC7), y ello ha permitido la
identificación de fragmentos "presas" correspondientes a
secuencias parciales de la secuencia HC21ORF80 (Nº de acceso
NM_015227). Después, se determina experimentalmente mediante la
técnica del doble híbrido que es necesario y suficiente un
fragmento de esta secuencia para obtener la interacción con
Bcl-XL y/o Bcl-2 y/o
Bcl-W, y corresponde al fragmento de 22 aminoácidos
descrito en la SEQ. ID. NO. 1.
La interacción con las proteínas
Bcl-2, Bcl-W y
Bcl-XL ha sido validada por técnicas bioquímicas de
coinmunoprecipitación (GST pull-down) y se ha
podido confirmar la actividad biológica de este péptido mediante
transfecciones y/o microinyecciones en células en las que se ha
demostrado que inducía la apoptosis.
Se describen asimismo las secuencias de ácido
nucleicos deducidas según el código genético de la secuencia de
aminoácidos descrita en SEQ. ID. NO. 1, así como de las de las
variantes funcionales descritas anteriormente.
De forma más particular, la invención se refiere
a la secuencia de ácido nucleico SEQ. ID. NO. 2 que codifica para
el péptido descrito en la SEQ. ID. NO. 1.
Se debe entender por "secuencia de ácido
nucleico" una secuencia nucleica aislada de su contexto natural.
Se trata en particular de secuencias aisladas, amplificadas y/o
purificadas y eventualmente modificadas por ingeniería
genética.
La invención se refiere asimismo a un vector
recombinante que comprende una secuencia de ácido nucleico según la
invención. Se debe entender por "vector" todo tipo de vector
que permita la introducción de la secuencia de ácido nucleico en
una célula huésped y la expresión del polipéptido. El vector
recombinante según la invención se caracteriza porque comprende las
secuencias de ADN necesarias para la expresión de los péptidos según
la invención y en particular del péptido descrito en la SEQ. ID.
NO. 1. Se pueden mencionar en particular vectores derivados de
plásmidos bacterianos, bacteriófagos, plásmidos y cromosomas de
levadura, virus, etc.
La invención se refiere también a las células
huésped transformadas por los vectores recombinantes. Estas células
son preferentemente bacterias o células eucariotas. Se pueden
mencionar a modo de ejemplo Escherichia coli, levaduras,
células de insectos o de mamíferos.
La invención se refiere además a un proceso de
cribado de agentes capaces de modular la interacción entre los
péptidos según la invención y en particular del péptido descrito en
la SEQ. ID. NO. 1, y proteínas antiapoptóticas de la familia
Bcl-2, y especialmente Bcl-2,
Bcl-W y Bcl-XL. Los agentes
moduladores de estas interacciones serán ventajosamente moléculas
sintetizadas químicamente o procedentes de bancos de productos.
El proceso de cribado según la invención
comprende los siguientes pasos:
- a)
- la preparación de un péptido según la invención marcado con un marcador de fluorescencia;
- b)
- la incubación con el compuesto a ensayar;
- c)
- la adición de la proteína de fusión que contiene la proteína antiapoptótica;
- d)
- la medida de la polarización de fluorescencia.
La invención se refiere en particular al proceso
de cribado de moléculas capaces de inhibir la interacción entre el
péptido y la proteína antiapoptótica, incluyendo los siguientes
pasos:
- a)
- la preparación de un péptido según la invención marcado con un marcador de fluorescencia;
- b)
- la incubación o no con el compuesto a ensayar;
- c)
- la adición de la proteína de fusión que contiene la proteína antiapoptótica;
- d)
- la medida de la polarización de fluorescencia con y sin el compuesto a ser ensayado;
- e)
- la selección de las moléculas para las que el incremento de la polarización de fluorescencia observada con el compuesto a ser ensayado es notablemente inferior al que se observa sin el compuesto a ensayar.
La invención se refiere en particular al proceso
de cribado de moléculas capaces de aumentar la interacción entre el
péptido y la proteína antiapoptótica, comprendiendo los siguientes
pasos:
- a)
- la preparación del péptido según la invención marcado con un marcador de fluorescencia;
- b)
- la incubación o no con el compuesto a ser ensayado;
- c)
- la adición de la proteína de fusión que contiene la proteína antiapoptótica;
- d)
- la medida de la polarización de fluorescencia con y sin el compuesto a ser ensayado;
- e)
- la selección de las moléculas para las que el incremento de la polarización de fluorescencia observada con el compuesto a ser ensayado es notablemente superior al que se observa sin el compuesto a ensayar.
Según un modo de realización preferente de los
procesos descritos anteriormente, el marcado de fluorescencia será
por ejemplo Oregon Green, Bodipy o fluoresceína, especialmente
fluoresceína.
El péptido según la invención utilizado en los
procesos de cribado será preferentemente el péptido descrito en la
SEQ. ID. NO. 1.
Ventajosamente, los procesos según la invención
se realizarán con las proteínas antiapoptóticas de la familia
Bcl-2 y especialmente Bcl-2,
Bcl-W y Bcl-XL.
Por consiguiente, la invención también se
refiere a la utilización de los péptidos según la invención para el
cribado según los procesos de la invención de moléculas activas
capaces de modular la apoptosis.
En especial, la invención se refiere a la
utilización de los péptidos según la invención para el cribado según
los procesos de la invención de moléculas útiles en el tratamiento
de patologías que implican una desregulación de la apoptosis.
Por tanto, la invención se refiere a la
utilización de los péptidos según la invención para el cribado según
los procesos de la invención de moléculas útiles en el tratamiento
de enfermedades autoinmunes, de ciertas enfermedades neurológicas y
del cáncer.
Figura 1: "GST-Pulldown"
GST-Bcl-XL + TBid con competición
por el péptido descrito en la SEQ. ID. NO. 1.
Figura 2: Determinación de K_{d} del péptido
descrito en la SEQ. ID. NO. 1 para Bcl-XL.
Figura 3: Determinación de K_{d} del péptido
descrito en la SEQ. ID. NO. 1 para Bcl-W.
Los siguientes ejemplos ilustran la invención y
no la limitan en modo alguno.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
Se cribaron tres bancos de cADN humano
(placenta, cerebro, línea celular CEMC7) mediante la técnica de
doble híbrido (Fields y col.) en una levadura según el protocolo de
conjugación (Legrain y col., Nature Genetics, 1997, 16,
277-282).
\vskip1.000000\baselineskip
- a)
- Los "cebos" utilizados son:
- -
-
\vtcortauna
- -
-
\vtcortauna
- \quad
- Se expresan en Saccharomyces cerevisiae (CG1945 o L40\DeltaGa14) y se colocan en un precultivo a 30ºC en un medio sintético libre de triptófano (DO-Trp) hasta la obtención de una DO_{600nm} comprendida entre 0,1 y 0,5. Se incuban a 30ºC durante una noche cincuenta ml de una dilución de este precultivo (DO_{600nm} = 0,006).
- b)
- Se obtiene una colección de levaduras que contienen los plásmidos que expresan los bancos de cADN fusionados al dominio de activación de transcripción Gal4 por transformación después de su selección en un medio libre de leucina (DO-Leu). Se fraccionan en partes alícuotas estas levaduras y se conservan a -80ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- La conjugación se lleva a cabo a una relación "cebo"/"presa" igual a 2. Una cantidad de células de "levadura-cebo" obtenidas en el paso 1) a) correspondiente a 50 unidades DO_{600nm} se mezcla con las "levadura-presa" obtenidas en el paso 1) b). Después de su centrifugación, se resuspende el residuo en un medio YPGlu, extendido en cajas de cultivo YPGlu, y se incuba durante 4,5 horas a 30ºC. La selección de las levaduras conjugadas que contienen un "cebo" y una "presa" capaces de interactuar juntas se lleva a cabo en un medio DO-Leu-Trp-His: la ausencia de leucina y de triptófano permite mantener una presión de selección que sólo permite el desarrollo de las levaduras que contienen los dos tipos de plásmidos ("cebos"/"presas"); la ausencia de histidina en el medio permite seleccionar las levaduras conjugadas que contienen un plásmido "cebo" y un plásmido "presa" capaces de interactuar juntos: esta interacción permite activar el gen HIS3 que codifica para una enzima implicada en la biosíntesis de la histidina.
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- Los fragmentos "presa" de una colonia de levaduras seleccionada según 2) se amplifican por PCR a partir de un lisado bruto de esta colonia, utilizando cebadores específicos del vector "presa":
- \quad
- ABS1 5'-GCTTTGGAATCACTACAGG-3' (SEQ. ID. NO. 3),
- \quad
- ABS2 5'-CACGATGCACGTTGAAGTG-3' (SEQ ID NO. 4).
- \quad
- Después, se secuencian los productos PCR y las secuencias obtenidas se identifican por comparación con los bancos de datos. Entre los clones positivos obtenidos, han podido ser identificados fragmentos de 300 aminoácidos aproximadamente como secuencias parciales de la secuencia HC210RF80 (Número de acceso: NM_015227).
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- Experimentos de doble híbrido realizados según los pasos 1), 2) y 3) descritos anteriormente a partir de fragmentos más pequeños de la secuencia HC21ORF80 permitieron identificar un pequeño péptido de 22 aminoácidos como necesario y suficiente para obtener la interacción con Bcl-XL y/o Bcl-W y/o Bcl-2: Asp-Thr-Arg-Arg-Ser-Met-Val-Phe-Ala-Arg-His-Leu-Arg-Glu-Val-Gly-Asp-Glu-Phe-Arg-Ser-Arg (SEQ. ID. NO. 1).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
- \quad
- La interacción entre el péptido obtenido en el Ejemplo 1 y Bcl-W y/o Bcl-XL y/o Bcl-2 se valida mediante la medida del desplazamiento de la interacción entre una proteína hacia un motivo "BH3" Bid y la proteína de fusión GST-Bcl-XL, GST-Bcl-W o GST-Bcl-2.
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- La proteína marcada se obtiene mediante el kit TNT Quick Master (Promega). Se incuban cuarenta \mul de mezcla TNT durante 90 minutos a 30ºC con 2 \mul (equivalente a 20 \muCi) de ^{35}S-metionina (Amersham), 1 \mug de ADN plasmídico que codifica para Bid y agua en una cantidad suficiente para alcanzar un volumen 50 \mul. El número de fmoles/\mul de proteína radioactiva producida se calcula a partir del número de metioninas en la proteína.
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- Se incuban cuatro fmoles de proteína Bid radioactiva a 4ºC durante 3 horas con 3 \mug de la proteína de fusión glutatión-S-transferasa-Bcl-XL (GST-Bcl-XL) o glutatión-S-transferasa-Bcl-2 (GST-Bcl-2) o glutatión-S-transferasa-Bcl-W (GST-Bcl-W) o GST sola en 300 \mul de tampón de unión (142 mM KCl, 5 mM MgCl_{2}, 10 mM tampón Hepes, 0,5 mM DTT, 1 mM EDTA, inhibidor de proteasas, pH 7,4) y un 0,4% de Triton x 100. Se lavan 3 veces bolas de "glutatión-sefarosa 4 fast flow" (Amersham) en el tampón de unión y se vuelven a suspender en este tampón para obtener una solución al 50%. Se añaden 20 \mul a cada muestra y se incuban bajo rotación a 4ºC durante 1 hora. Luego se lavan las bolas 3 veces en el tampón de unión, después se añaden 25 \mul de tampón 2 x SDS, Laemmli (Sigma). Se colocan las muestras durante 5 minutos a 95ºC, después se depositan en un gel al 12% de Tris-Glycine (Invitrogen). Después de la electroforesis, se incuba el gel en una solución de secado (Invitrogen) durante 30 minutos, luego se seca durante 150 minutos a 70ºC. Las proteínas radioactivas se revelan mediante exposición de una película Kodak BioMax MS-1 (Sigma). Para realizar la prueba de competición con el péptido a ensayar, éste se añade a la solución inicial a concentraciones que oscilan entre 5 y 20 \muM.
\vskip1.000000\baselineskip
- \quad
- Cuando se añade a la solución inicial el péptido obtenido en el Ejemplo 1, la señal autorradiográfica de Bid desaparece. Este resultado demuestra que el péptido obtenido en el Ejemplo 1 inhibe la interacción entre Bcl-W y Bid, entre Blc-XL y Bid y entre Bcl-2 y Bid.
A modo de ejemplo, el resultado obtenido entre
Bcl-XL y Bid se muestra en la Figura 1.
\vskip1.000000\baselineskip
Se mezcla una solución que contiene 15 nM del
péptido obtenido en el Ejemplo 1 marcado con fluoresceína en el
extremo N-terminal con una solución que contiene la
proteína de fusión GST-Bcl-XL o
GST-Bcl-W a una concentración que
oscila entre 1 nM y 5 \muM, en un tampón que contiene 20 mM
Na_{2}HPO_{4}, pH 7,4, 1 mM EDTA, 50 mM NaCl, ácido plurónico
F-68 al 0,05%. La polarización de fluorescencia se
mide entonces con el aparato En Vision (Packard
Perkin-Elmer). Los resultados obtenidos se muestran
en las Figuras 2 y 3.
Resultado: Se observa un incremento
significativo de la polarización de fluorescencia cuando el péptido
obtenido en el Ejemplo 1 se incuba con las proteínas de fusión que
contienen Bcl-XL y Bcl-W, lo que
demuestra su fijación a estas proteínas.
La K_{d} obtenida con Bcl-XL
es 2,15\cdot10^{-7} M (Figura 2) y la K_{d} obtenida con
Bcl-W es 4,11\cdot10^{-7} M (Figura 3).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
Los productos a ensayar se distribuyen en placas
de 384 pocillos (Coming Flat Bottom) a una concentración final de
10 \mug/ml. Un pocillo se rellena con una cantidad equivalente de
tampón/disolvente sin compuesto a ensayar y constituirá el control.
El péptido obtenido en el Ejemplo 1 marcado con fluoresceína se
añade en cada pocillo para obtener una concentración final de 15
nM. Después, se añade la proteína de fusión
GST-Bcl-XL,
GST-Bcl-W o
GST-Bcl-2 para obtener una
concentración final de 500 nM (Bel-XL,
Bcl-2) y de 1 \muM (Bcl-W) en un
tampón que contiene 20 mM Na_{2}HPO_{4}, pH 7,4, 1 mM EDTA, 50
mM NaCl, ácido plurónico F-68 al 0,05%. Luego se
mide la polarización de fluorescencia mediante un aparato En Vision
(Packard Perkin-Elmer). Una reducción significativa
de la polarización de fluorescencia registrada en la prueba
realizada con el compuesto a ensayar, comparada con la que se
obtiene sin el compuesto a ensayar (pocillo control), permite
concluir una actividad inhibidora de la molécula. A la inversa, un
aumento significativo de la polarización de fluorescencia en la
prueba con el producto a ensayar comparado con el control permite
concluir una actividad activadora de la molécula.
<110> LABORATORIOS SERVIER
HYBRIGENICS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Nuevo péptido que interactúa con
las proteínas antiapoptóticas de la familia
Bcl-2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> Péptido-1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> FR 03.09697
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<151> 06.08.2003
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,8cm
Claims (20)
1. Péptido que interactúa con las proteínas
antiapoptóticas de la familia Bcl-2 que consiste en
la secuencia SEQ. ID. NO. 1:
Asp-Thr-Arg-Arg-Ser-Met-Val-Phe-Ala-Arg-His-Leu-Arg-Glu-Val-Gly-Asp-Glu-Phe-Arg-Ser-Arg.
2. Péptido según la reivindicación 1 que
interactúa con las proteínas antiapoptóticas Bcl-2,
Bcl-XL y/o Bcl-W.
3. Péptido según la reivindicación 1 ó 2,
caracterizado porque corresponde a un fragmento o a un
mutante puntual del péptido descrito en la SEQ ID. NO. 1.
4. Secuencia de ácidos nucleicos que codifican
para un péptido según la reivindicación 1 que consiste en la
secuencia SEQ. ID. NO. 2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
5. Secuencias de ácidos nucleicos deducidas
según el código genético de la secuencia de aminoácidos según la
reivindicación 1 ó 2.
6. Secuencias de ácidos nucleicos deducidas
según el código genético de la secuencia de aminoácidos según la
reivindicación 3.
7. Vector recombinante caracterizado
porque comprende una secuencia de ácidos nucleicos según una de las
reivindicaciones 4 a 6.
8. Vector recombinante según la reivindicación
7, caracterizado porque el vector es un plásmido que
comprende las secuencias necesarias para la expresión del péptido
en una célula huésped.
9. Célula huésped caracterizada porque es
transformada por el vector recombinante según una de las
reivindicaciones 7 ú 8.
10. Procedimiento de identificación de moléculas
capaces de modular la interacción entre un péptido según una de las
reivindicaciones 1, 2 ó 3 y una proteína antiapoptótica de la
familia Bcl-2, caracterizado porque
comprende los siguientes pasos:
- a)
- la preparación de un péptido según una de las reivindicaciones 1, 2 ó 3 marcado con un marcador de fluorescencia;
- b)
- la incubación con el compuesto a ser ensayado;
- c)
- la adición de la proteína de fusión que contiene la proteína antiapoptótica de la familia Bcl-2;
- d)
- la medida de la polarización de fluorescencia.
\vskip1.000000\baselineskip
11. Procedimiento de identificación de moléculas
capaces de inhibir la interacción entre un péptido según una de las
reivindicaciones 1, 2 ó 3 y una proteína antiapoptótica de la
familia Bcl-2, caracterizado porque
comprende los siguientes pasos:
- a)
- la preparación de un péptido según una de las reivindicaciones 1, 2 ó 3 marcado con un marcador de fluorescencia;
- b)
- la incubación con o sin el compuesto que a ser ensayado;
- c)
- la adición de la proteína de fusión que contiene la proteína antiapoptótica de la familia Bcl-2;
- d)
- la medida de la polarización de fluorescencia;
- e)
- la selección de las moléculas para las que el incremento de la polarización de fluorescencia observada con el compuesto a ser ensayado es notablemente inferior al que se observa sin el compuesto a ensayar.
\newpage
12. Procedimiento de identificación de moléculas
capaces de incrementar la interacción entre un péptido según una de
las reivindicaciones 1, 2 ó 3 y una proteína antiapoptótica de la
familia Bcl-2, caracterizado porque
comprende los siguientes pasos:
- a)
- la preparación del péptido según una de las reivindicaciones 1, 2 ó 3 marcado con un marcador de fluorescencia;
- b)
- la incubación con o sin el compuesto a ser ensayado;
- c)
- la adición de la proteína de fusión que contiene la proteína antiapoptótica de la familia Bcl-2;
- d)
- la medida de la polarización de fluorescencia;
- e)
- la selección de las moléculas para las que el incremento de la polarización de fluorescencia observada con el compuesto a ser ensayado es notablemente superior al que se observa sin el compuesto a ensayar.
\vskip1.000000\baselineskip
13. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 10 a 12 en el que la proteína antiapoptótica es
Bcl-2.
14. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 10 a 12 en el que la proteína antiapoptótica es
Bcl-XL.
15. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 10 a 12 en el que la proteína antiapoptótica es
Bcl-W.
16. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 10 a 12 en el que el péptido utilizado se
caracteriza por la secuencia SEQ. ID. NO. 1.
17. Procedimiento según una de las
reivindicaciones 10 a 12 en el que el marcador de fluorescencia
utilizado es fluoresceína.
18. Utilización de un péptido según una de las
reivindicaciones 1, 2 ó 3 para la identificación según el
procedimiento de una de las reivindicaciones 10 a 17 de moléculas
moduladoras de la apoptosis.
19. Utilización de un péptido según una de las
reivindicaciones 1, 2 ó 3 para la identificación según el
procedimiento de una de las reivindicaciones 10 a 17 de moléculas
útiles en el tratamiento de patologías que implican una
desregulación de la apoptosis.
20. Utilización de un péptido según una de las
reivindicaciones 1, 2 ó 3 para la identificación según el
procedimiento de una de las reivindicaciones 10 a 17 de moléculas
útiles en el tratamiento de enfermedades autoinmunes, de ciertas
enfermedades neurológicas y del cáncer.
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