JP4315249B2 - アポトーシス亢進のための組成物と方法 - Google Patents
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Description
本発明は、哺乳動物のアポトーシス亢進に有用な組成物、および同様の組成物の使用方法に関する。
アポトーシスまたはプログラム細胞死は脊椎動物と同様に無脊椎動物での発達および恒常性に重要な役割を持つ一般的および生化学的な調節機能である。未熟な細胞死を引き起こすアポトーシス異常は様々な発育性疾患に関与している。結果的に細胞死欠乏となるアポトーシス欠損は、癌および慢性ウイルス感染に関与している(Thompson等, (1995) Science 267, 1456-1462)。
アポトーシスにおけるある重要なエフェクター分子の一つがカスパーゼである(アスパラギン酸特異的プロテアーゼを含むシステイン)。カスパーゼはアスパラギン酸残基後を切断する強力なプロテアーゼであり、活性化されると細胞内から生細胞タンパク質を消化する。カスパーゼはとても強力なプロテアーゼなので、未熟な細胞死を予防するためにこのタンパク質ファミリーの厳重なコントロールが重要である。一般に、カスパーゼは主として不活性型チモーゲンとして合成され、活性化されるにはタンパク質分解過程を要する。このタンパク質分解過程はカスパーゼ調節の唯一の手段である。二次的機能はカスパーゼに結合して阻害するタンパク質ファミリーが介する。
一実施態様では、本発明は好ましくは特異的に前記または後記するBIRドメイン(BIRドメイン結合オリゴペプチド;以降、BDBオリゴペプチド)に結合するオリゴペプチドを提供する。任意に本発明のBDBオリゴペプチドは、例えば、メイタンシノイド又はカリケアマイシンを含む毒素のような成長阻害剤又は細胞障害性剤、抗生物質、放射性同位体、核溶解性酵素等と場合によってはコンジュゲートされうる。本発明のBDBオリゴペプチドはCHO細胞または細菌細胞内で任意で産生され、好ましくは結合した細胞の死を誘導する。診断目的のために、本発明のBDBオリゴペプチドを検出可能に標識したり、固形支持体に接着させたりしていてよい。
更なる実施態様では、発明は、ここに示すようにキメラBDBオリゴペプチドを含む組成物に関する。もしくは、キメラBDBオリゴペプチドは細胞膜を越えてBDBオリゴペプチドの輸送を円滑にするペプチド又は小分子に融合したBDBオリゴペプチドに関する。又、発明は、担体と組み合わせたキメラBDBオリゴペプチド、ここに示すBDBオリゴペプチド、又はここに示すBDB小有機分子に関する。場合によっては、担体は製薬学的に許容される担体である。
本発明の他の実施態様では、キメラBDBポリペプチド、BDBオリゴペプチド、又はBDB小有機分子に応答する治療条件で有効な医薬の調製を目的として、ここに示すキメラBDBポリペプチド、ここに示すBDBオリゴペプチド、又はここに示すBDB小有機分子の使用に関し、ML−IAPのBIRドメイン特異的なものである。
本発明の他の実施態様では、BIRドメインを含むIAPポリペプチドを発現する細胞の成長を阻害する方法に関し、該方法は細胞にIAPポリペプチドに結合するBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子を作用させ、BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子のIAPポリペプチドへの結合によりIAPポリペプチドを発現する細胞の成長が阻害されることを含む。好ましい実施態様では、細胞は癌細胞であり、BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子のIAPポリペプチドへの結合によりIAPポリペプチドを発現する細胞のアポトーシスが誘導されるものである。選択的にIAPポリペプチドがML−IAPである。
本発明の方法に用いるBDBオリゴペプチド及びBDB小有機分子は選択的に、例えば、メイタンシノイド又はカリケアマイシンを含む毒素のような成長阻害剤又は細胞障害性剤、抗生物質、放射性同位体、核溶解性酵素等と場合によってはコンジュゲートされうる。本発明の方法に用いるBDBオリゴペプチド及びBDB小有機分子は選択的にCHO細胞、細菌細胞、又は合成物内で生成されうる。
さらに本発明の他の実施態様は、IAPポリペプチドの含有が推測される試料においてIAPポリペプチドの存在を決定する方法に関し、該方法は試料をIAPポリペプチドに結合するBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子に曝し、試料中のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子のIAPポリペプチドへの結合を決定することを含み、この結合の存在により試料中のIAPポリペプチドの存在が示唆されるものである。選択的に試料はIAPポリペプチドの発現が予測される細胞(癌細胞であってもよい)を含みうる。本発明の方法に用いるBDBオリゴペプチド及びBDB小有機分子は選択的に検出可能に標識したり、固形支持体に接着させたりしていてよい。
本発明の他の実施態様は、哺乳動物における腫瘍の存在を診断する方法に関し、該方法は、(a)哺乳動物から得られた組織細胞の試験試料を、IAPポリペプチドと結合する抗体、オリゴペプチド又は小有機分子と接触させ、(b)試験試料中での、BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子とIAPポリペプチドの間で形成される複合体を検出することを含んでなり、複合体の形成が、哺乳動物での腫瘍の存在を示す。場合によっては、用いられるBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子は、検出可能に標識されたり、固体支持体に付着されたりするか、及び/又は組織細胞の試験試料が癌牲腫瘍を有すると思われる個体から得られる。
本発明の他の実施態様は、癌細胞の成長を阻害する方法に関し、ここで、上記癌細胞の成長はIAPポリペプチドの成長増強効果に少なくとも部分的に依存し、該方法は、IAPポリペプチドに結合するBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子にIAPポリペプチドを接触させることを含んでなり、それによってIAPポリペプチドのアポトーシス阻害活性をアンタゴナイズし、次には癌細胞の成長を阻害する。好ましくは癌細胞の成長は完全に阻害される。更により好ましくは、IAPポリペプチドへのBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子の結合は癌細胞のアポトーシスを誘導する。本発明の方法に使用されるBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子は、例えば、メイタンシノイド又はカリケアマイシンを含む毒素のような成長阻害剤又は細胞障害性剤、抗生物質、放射性同位体、核溶解性酵素等と場合によってはコンジュゲートされうる。本発明の方法に用いられるBDBオリゴペプチドは、場合によってはCHO細胞、細菌細胞又は合成物中で産生され得る。
定義
ここで詳述した様々なオリゴペプチドを表すために用いられる「単離した」とは、同定され、天然環境の成分から分離及び/又は回収したオリゴペプチドを意味する。その天然環境の汚染成分とは、一般的にオリゴペプチドを診断又は治療へ用いる際の妨げとなる物質であり、酵素、ホルモン、及び他のタンパク質性又は非タンパク質性の溶質でありうる。好ましい実施態様では、オリゴペプチドは(1)スピンカップシークエネーターを用いてN末端又は内在アミノ酸配列の少なくとも15残基を得るのに十分な程度に、又は(2)クーマシーブルー又は、好ましくは銀染色を用いた非還元又は還元条件下にてSDS−PAGEにより均一になるまで精製される。しかしながら通常単離したポリペプチドは少なくとも一つの精製工程により調製されるであろう。
「コントロール配列」という用語は、特定の宿主生物において作用可能に結合したコード配列を発現するために必要なDNA配列を指す。例えば原核生物に好適なコントロール配列は、プロモーター、場合によってはオペレータ配列と、リボソーム結合部位を含む。真核生物の細胞は、プロモーター、ポリアデニル化シグナル及びエンハンサーを利用することが知られている。
ここでの目的に対する「活性な」又は「活性」とは、天然又は天然に生じるIAP阻害物質の生物学的的活性を保持するBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子の形態を意味し、その中で、「生物学的」活性とは、天然又は天然発生IAPが保持する抗原性エピトープに対する抗体の生成を誘導する能力以外の、天然又は天然発生IAP阻害物質によって引き起こされる生物機能を意味する。
「カスパーゼ」はアスパラギン酸のC末端側でポリペプチド基質を切断するシステインプロテアーゼポリペプチドとして定義する。
「BIRドメイン含有ポリペプチド」は、特異的に結合して阻害することのできるタンパク質構造を含むポリペプチド、カスパーゼである。特に、ML−IAPのBIRドメインは登録番号:BIR7_HUMANで示す配列のアミノ酸87−168である。
「オリゴペプチド」は3〜30アミノ酸残基の長さの短いアミノ酸配列であり、オリゴペプチドに特定の立体配座の特性又はタンパク質分解耐性等の特定の生物学的活性を与えるために、単独又は天然に生じるアミノ酸残基と組み合わせて用いられる天然に生じるアミノ酸残基及び非天然に生じる残基類似体を包含する。
「慢性」投与とは、初期の治療効果(活性)を長期間にわたって維持するようにするために、急性態様とは異なり連続的な態様での薬剤の投与を意味する。「間欠」投与とは、中断無く連続的になされるのではなく、むしろ本質的に周期的になされる処理である。
癌の治療、症状の緩和又は診断のための「哺乳動物」とは、哺乳動物に分類される任意の動物を意味し、ヒト、家畜用及び農場用動物、動物園、スポーツ、又はペット動物、例えばイヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、ウサギなどを含む。好ましくは、哺乳動物はヒトである。
一又は複数の更なる治療薬と「組み合わせた」投与とは、同時(同時期)及び任意の順序での連続した投与を含む。
「リポソーム」は、哺乳動物への薬物(例えばBDBオリゴペプチド)輸送に有用な、脂質、リン脂質及び/又は界面活性剤を含む種々のタイプの小胞体である。リポソームの成分は、通常は細胞膜の脂質配向に類似した2層構造に配列される。
ここで定義されている「小」分子又は「小」有機分子とは、約500ダルトン未満の分子量である。
「治療的有効量」という用語は、患者又は哺乳動物の疾患又は疾病を「治療」するのに効果的なBDBオリゴペプチド、BDB小有機分子又は他の薬剤の量を指す。癌の場合、治療的に有効量の薬は癌細胞の数を減じ;腫瘍の大きさを減じ;末梢器官への癌細胞の浸潤を阻害(すなわち、ある程度まで減速、好ましくは停止)し;腫瘍転移を阻害(すなわち、ある程度まで減速及び好ましくは停止)し;腫瘍成長をある程度まで阻害し;及び/又は癌に関連する一又は複数の症状をある程度まで緩和する。「治療する」のここでの定義を参照せよ。薬が存在する癌細胞の成長を妨げ及び/又は死滅させる程度まで、それは、細胞分裂停止及び/又は細胞障害性であり得る。
BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子の「細胞障害性量」は、細胞、特に腫瘍、例えば癌細胞をインビトロ又はインビボで破壊できる量である。腫瘍性細胞成長の阻害の目的のためのBDB結合オリゴペプチド又はBDB小有機分子の「細胞障害性量」は、経験的及び常套的な形で決定することができる。
「細胞増殖性疾患」及び「増殖性疾患」という用語は、ある程度の異常な細胞増殖を伴う疾患を意味する。一実施態様では、細胞増殖性疾患は癌である。
ここで用いられる「腫瘍」は、悪性又は良性に関わらず、全ての腫瘍形成細胞成長及び増殖、及び全ての前癌性及び癌性細胞及び組織を意味する。
ここで用いられる「細胞障害性剤」という用語は、細胞の機能を阻害又は阻止し及び/又は細胞破壊を生ずる物質を指す。この用語は、放射性同位体(例えば、At211、I131、I125、Y90、Re186、Re188、Sm153、Bi212、P32及びLuの放射性同位体)、化学治療薬、例えばメトトレキセート、アドリアマイシン、ビンカアルカロイド類(ビンクリスチン、ビンブラスチン、エトポシド)、ドキソルビシン、メルファラン、マイトマイシンC、クロラムブシル、ダウノルビシン又は他の挿入剤、酵素及びその断片、例えば核溶解性酵素、抗生物質、及び毒素、例えばその断片及び/又は変異体を含む小分子毒素又は細菌、糸状菌、植物又は動物起源の酵素的に活性な毒素、そして下記に開示する種々の抗腫瘍又は抗癌剤を含むように意図されている。他の細胞障害性薬が下記に記載されている。殺腫瘍性剤は、腫瘍細胞の破壊を引き起こす。
メイタンシン及びメイタンシノイド
好ましい一実施態様では、本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子は一又は複数のメイタンシノイド分子と結合している。
メイタンシノイドは、チューブリン重合を阻害するように作用する分裂阻害剤である。メイタンシンは、最初、東アフリカシラブMaytenus serrataから単離されたものである(米国特許第3896111号)。その後、ある種の微生物がメイタンシノイド類、例えばメイタンシノール及びC-3メイタンシノールエステルを生成することが発見された(米国特許第4151042号)。合成メイタンシノール及びその誘導体及び類似体は、例えば米国特許第4137230号;同4248870号;同4256746号;同4260608号;同4265814号;同4294757号;同4307016号;同4308268号;同4308269号;同4309428号;同4313946号;同4315929号;同4317821号;同4322348号;同4331598号;同4361650号;同4364866号;同4424219号;同4450254号;同4362663号;及び同4371533号に開示されており、その開示は出典を明示してここに取り込まれる。
対象の他の免疫コンジュゲートには、1つ又は複数のカリケアマイシン分子と結合したBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子が含まれる。抗生物質のカリケアマイシンファミリーはサブ-ピコモルの濃度で二重鎖DNA破壊を生じることができる。カリケアマイシンファミリーのコンジュゲートの調製については、米国特許第5712374号、同5714586号、同5739116号、同5767285号、同5770701号、同5770710号、同5773001号、同5877296号(全て、American Cyanamid Company)を参照のこと。使用可能なカリケアマイシンの構造類似体には、限定するものではないが、γ1 I、α2 I、α3 I、N-アセチル-γ1 I、PSAG及びθI 1(Hinman等, Cancer Research, 53:3336-3342(1993)、Lode等 Cancer Research, 58:2925-2928(1998)及び上述したAmerican Cyanamidの米国特許)が含まれる。BDBオリゴペプチドが結合可能な他の抗腫瘍剤は、葉酸代謝拮抗薬であるQFAである。カリケアマイシン及びQFAは双方とも、細胞内に作用部位を有し、原形質膜を容易に通過しない。よって抗体媒介性インターナリゼーションによるこれらの薬剤の細胞への取込により、細胞障害効果が大きく向上する。
本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子と結合可能な他の抗腫瘍剤には;アドリアマイシン(ドキソルビシン)、4-第三ブチルフェノールエトポシド、タキソール、カンプトセシン、メトトレキセート、ビンクリスチン又はタモキシフェン、BCNU、ストレプトゾイシン、ビンクリスチン及び5-フルオロウラシル、米国特許第5053394号、同5770710号に記載されており、集合的にLL-E33288複合体として公知の薬剤のファミリー、並びにエスペラマイシン(esperamicine)(米国特許第5877296号)が含まれる。
使用可能な酵素活性毒及びその断片には、ジフテリアA鎖、ジフテリア毒素の非結合性活性断片、外毒素A鎖(シュードモナス・アエルギノーサ(Pseudomonas aeruginosa))、リシンA鎖、アブリンA鎖、モデシン(modeccin)A鎖、アルファ-サルシン(sarcin)、アレウライツ・フォルディイ(Aleurites fordii)プロテイン、ジアンシン(dianthin)プロテイン、フィトラッカ・アメリカーナ(Phytolaca americana)プロテイン(PAPI、PAPII及びPAP-S)、モモルディカ・キャランティア(momordica charantia)インヒビター、クルシン(curcin)、クロチン、サパオナリア(sapaonaria)オフィシナリスインヒビター、ゲロニン(gelonin)、マイトゲリン(mitogellin)、レストリクトシン(restrictocin)、フェノマイシン、エノマイシン及びトリコセセンス(tricothecenes)が含まれる。例えば、1993年10月28日公開の国際公開第93/21232号を参照のこと。
放射-又は他の標識が、公知の方法でコンジュゲートに導入される。例えば、BDBオリゴペプチドは生物合成されるか、又は例えば水素の代わりにフッ素-19を含む適切なアミノ酸前駆体を使用する化学的なアミノ酸合成により合成される。標識、例えばTc99m又はI123、Re186、Re188及びIn111は、ペプチドのシステイン残基を介して結合可能である。イットリウム-90はリジン残基を介して結合可能である。IODOGEN法(Fraker等(1978) Biochem. Biophys. Res. Commun. 80:49-57)は、ヨウ素-123の導入に使用することができる。他の方法の詳細は、「Monoclonal Antibodies in Immunoscintigraphy」(Chatal, CRC Press 1989)に記載されている。
別法として、BDBオリゴペプチド及び細胞障害剤を含有する融合タンパク質は、例えば組換え技術又はペプチド合成により作製される。DNAの長さは、コンジュゲートの所望する特性を破壊しないリンカーペプチドをコードする領域により離間しているか、又は互いに隣接しているコンジュゲートの2つの部分をコードする領域をそれぞれ含有する。
さらに他の実施態様において、腫瘍の事前ターゲティングに利用するために、「レセプター」(例えばストレプトアビジン)にBDBオリゴペプチドをコンジュゲートし、ここで抗体-レセプターコンジュゲートを患者に投与し、続いて清澄剤を使用し、循環から未結合コンジュゲートを除去し、細胞障害剤(例えば放射性ヌクレオチド)にコンジュゲートする「リガンド」(例えばアビジン)を投与する。
本発明のBDBオリゴペプチドはここで記載される様なIAPポリペプチドに、好ましくは特異的に、結合するオリゴペプチドである。BDBオリゴペプチドは、既知のオリゴペプチド合成法を用いて化学的に合成することができ、あるいは組換え技術を用いて調製及び生成することができる。BDBオリゴペプチドは通常、少なくとも約3のアミノ酸長であり、或いは少なくとも約4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99又は100のアミノ酸長以上であり、このようなオリゴペプチドはここに記載される様なIAPポリペプチドに対して好ましくは特異的に結合する能力がある。BDBオリゴペプチドは、よく知られた技術を用いて過度の実験をすることなしに同定することができる。この点において、ポリペプチド標的に特異的に結合する能力のあるオリゴペプチドのオリゴペプチドライブラリーを検索する技術は当分野でよく知られていることを注記する(例えば、米国特許第5556762号、同第5750373号、同第4708871号、同第4833092号、同第5223409号、同第5403484号、同第5571689号、同第5663143号;PCT公開第WO84/03506号、及びWO84/03564号;Geysen等, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 81:3998-4002 (1984);Geysen等, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 82:178-182 (1985);Geysen等, in Synthetic Peptides as Antigens, 130-149 (1986);Geysen等, J. Immunol. Meth., 102:259-274 (1987);Schoofs等, J. Immunol., 140:611-616 (1988), Cwirla,S.E.等(1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87:6378;Lowman,H.B.等 (1991) Biochemistry, 30:10832;Clackson,T.等 (1991) Nature, 352:624;Marks,J.D.等 (1991) J. Mol. Biol., 222:581;Kang,A.S.等 (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88:8363、及びSmith, G.P. (1991) Current Opin. Biotechnol., 2:668参照)。
現在、基礎的なファージディスプレイ構想の多くの他の改良及び変形が開発されている。これらの改良は、選択された標的分子への結合についてペプチドライブラリーをスクリーニングするための、及びこれらのタンパク質が所望の特性をスクリーニングする潜在能力で機能性タンパク質をディスプレイするためのディスプレイシステムの能力を増強する。ファージディスプレイ反応のための組み換え反応手段について記載があり(WO98/14277)及びファージディスプレイライブラリーは二分子相互作用(WO98/20169;WO98/20159)及び拘束性へリックスペプチドの特性(WO98/20036)を分析及び制御するために使用されている。WO97/35196は、リガンドが標的分子に結合しうる第一の溶液、及び親和性リガンドが標的分子に結合しない第二の溶液とファージディスプレイライブラリーを接触させて結合リガンドを選択的に単離する、親和性リガンドの単離方法を記載する。WO97/46251は、親和性精製抗体でランダムファージディスプレイライブラリーをバイオパニングし、次いで結合ファージを単離し、続いてマイクロプレートのウェルでマイクロパニングして高親和性結合ファージを単離する方法を記載する。黄色ブドウ球菌(Staphlylococcus aureus)タンパク質Aの親和性タグとしての使用も報告されている(Li等, (1998) Mol Biotech., 9:187)。WO97/47314は、ファージディスプレイライブラリーでもよいコンビナトリアルライブラリーを用いて酵素特異性を識別するための基質サブトラクションライブラリーの使用を記載している。ファージディスプレイに用いる洗浄剤における使用に適した酵素を選択する方法はWO97/09446に記載される。特異的に結合するタンパク質を選択する更なる方法は、米国特許第5498538号、同第5432018号、及びWO98/15833に記載されている。
ペプチドライブラリーの作製及びこれらのライブラリーのスクリーニングの方法は、米国特許第5723286号、同第5432018号、同第5580717号、同第5427908号、同第5498530号、同第5770434号、同第5734018号、同第5698426号、同第5763192号、及び同第5723323号に記載される。
BDB小有機分子とは、ここに記載されるようなIAPポリペプチドに、好ましくは特異的に結合する、ここに定義されるようなオリゴペプチド又は抗体以外の有機分子である。BDB小有機分子は既知の方法(例えばPCT公開第WO00/00823及びWO00/39585号参照)を用いて同定され、化学的に合成されうる。BDB小有機分子は通常、約2000ダルトンの大きさ未満であり、あるいは約1500、750、500、250又は200ダルトンの大きさであり、ここに記載される様なIAPポリペプチドに、好ましくは特異的に結合する能力のあるこのような有機分子は、よく知られた技術を用いて過度の実験をすることなしに同定されうる。この点において、ポリペプチド標的に結合する能力のある分子の有機分子ライブラリーを検索する技術は当分野でよく知られていることを注記する(例えばPCT公開第WO00/00823及びWO00/39585号参照)。BDB小有機分子は、例えばアルデヒド、ケトン、オキシム、ヒドラゾン、セミカルバゾン、カルバジド、一級アミン、二級アミン、三級アミン、N置換ヒドラジン、ヒドラジド、アルコール、エーテル、チオール、チオエーテル、ジスルフィド、カルボン酸、エステル、アミド、尿素、カルバミン酸塩、炭酸塩、ケタール、チオケタール、アセタール、チオアセタール、ハロゲン化アリール、アリールスルホン酸、ハロゲン化アルキル、アルキルスルホン酸、芳香族化合物、複素環化合物、アニリン、アルケン、アルキン、ジオール、アミノアルコール、オキサゾリジン、オキサゾリン、チアゾリジン、チアゾリン、エナミン、スルホンアミド、エポキシド、アジリジン、イソシアン酸塩、塩化スルホニル、ジアゾ化合物、酸塩化物等であり得る。
IAPポリペプチドに結合するオリゴペプチド及び有機分子を生成する技術を、上記にて記載した。所望するような、所定の生物学的特性を有する抗体、オリゴペプチド又は有機分子をさらに選択することができる。
本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子の成長阻害効果を、例えば、内因的又はIAP遺伝子によるトランスフェクション後のいずれかでIAPポリペプチドを発現する細胞を用いる当該分野で周知の方法によって評価することができる。例えば、適切な腫瘍細胞株及びIAP形質移入細胞は、数日間(例えば、2−7)、種々の濃度の本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子で処理し、クリスタル・バイオレット又はMTTで染色、又は幾つかの他の比色アッセイによって分析し得る。増殖を測定するその他の方法は、本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子の存在又は非存在下で処理した細胞の3H-チミジン取り込みを比較することによる。処理の後、細胞を収集し、DNAへ取り込まれた放射能をシンチレーションカウンターで定量化した。適切なポジティブコントロールには、細胞株の成長を阻害することが知られている成長阻害抗体、オリゴペプチド又は小有機分子でその選択した細胞株を処理することが含まれる。インビボでの成長阻害は、当該分野で知られている種々の方法で確かめることができる。好ましくは、腫瘍細胞は、IAPポリペプチドを過剰発現するものである。好ましくは、BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子は、ある実施態様では約0.5から30μg/mlの抗体濃度で、未処理腫瘍細胞と比べて約25−100%、より好ましくは約30−100%、そしてさらにより好ましくは約50−100%又は70−100%のIAP発現腫瘍細胞のアポトーシスをインビトロ又はインビボで引き起こす。
(1)疎水性:ノルロイシン, met, ala, val, leu, ile;
(2)中性の親水性:cys, ser, thr;
(3)酸性:asp, glu;
(4)塩基性:asn, gln, his, lys, arg;
(5)鎖配向に影響する残基:gly, pro; 及び
(6)芳香族:trp, tyr, phe。
非保存的置換は、これらの分類の1つのメンバーを他の分類に交換することを必要とするであろう。また、そのように置換された残基は、保存的置換部位、又はより好ましくは、残された(非保存)部位に導入されうる。
変異は、オリゴヌクレオチド媒介(部位特異的)突然変異誘発、アラニンスキャンニング、及びPCR突然変異誘発等のこの分野で知られた方法を用いてなすことができる。部位特異的突然変異誘発[Carter等, Nucl. Acids Res., 13: 4331 (1986); Zoller等, Nucl. Acids Res., 10: 6487 (1987)]、カセット突然変異誘発[Wells等, Gene, 34: 315 (1985)]、制限的選択突然変異誘発[Wells等, Philos. Trans. R. Soc. London SerA, 317: 415 (1986)]又は他の知られた技術をクローニングしたDNAに実施して、BDBオリゴペプチド変異体DNAを作成することもできる。
BDBオリゴペプチドの適切なコンフォメーションを維持することに関与していない任意のシステイン残基も、分子の酸化的安定性を向上させ、異常な架橋を防ぐために、概してセリンと置換され得る。逆に、BDBオリゴペプチドの安定性を向上させるために、それにシステイン結合(複数でも)を加えてもよい。
宿主細胞を、ここに記載したIAPポリペプチド生成のための発現又はクローニングベクターで形質移入又は形質転換し、プロモーターを誘導し、形質転換体を選択し、又は所望の配列をコードする遺伝子を増幅するために適当に変性された常套的栄養培地で培養する。培養条件、例えば培地、温度、pH等々は、過度の実験をすることなく当業者が選ぶことができる。一般に、細胞培養の生産性を最大にするための原理、プロトコール、及び実用技術は、Mammalian Cell Biotechnology: a Practical Approach, M.Butler編 (IRL Press, 1991)及び上掲のSambrook等に見出すことができる。
真核生物細胞形質移入及び原核生物細胞形質転換の方法、例えば、CaCl2、CaPO4、リポソーム媒介及びエレクトロポレーションは当業者に知られている。用いられる宿主細胞に応じて、その細胞に対して適した標準的な方法を用いて形質転換はなされる。前掲のSambrook等に記載された塩化カルシウムを用いるカルシウム処理又はエレクトロポレーションが、一般的に原核生物に対して用いられる。アグロバクテリウム・トゥメファシエンスによる感染が、Shaw等, Gene, 23:315(1983)及び1989年6月29日公開の国際公開89/05859に記載されているように、或る種の植物細胞の形質転換に用いられる。このような細胞壁のない哺乳動物の細胞に対しては、Graham及びvan der Eb, Virology, 52:456-457 (1978)のリン酸カルシウム沈降法が用いられる。哺乳動物細胞の宿主系形質転換の一般的な態様は米国特許第4,399,216号に記載されている。酵母菌中への形質転換は、典型的には、Van Solingen等, J. Bact., 130:946 (1977)及びHsiao等, Proc. Natl. Acad. Sci. (USA), 76:3829 (1979)の方法に従って実施される。しかしながら、DNAを細胞中に導入する他の方法、例えば、核マイクロインジェクション、エレクトロポレーション、無傷の細胞、又はポリカチオン、例えばポリブレン、ポリオルニチン等を用いる細菌プロトプラスト融合もまた用いることもできる。哺乳動物細胞を形質転換するための種々の技術については、Keown等, Methods in Enzymology, 185:527-537 (1990)及び Mansour等, Nature, 336:348-352 (1988)を参照のこと。
宿主細胞は、BDBオリゴペプチド生成のために上述の発現又はクローニングベクターで形質転換され、プロモーターを誘発し、形質転換体を選出し、又は所望の配列をコードする遺伝子を増幅するために適切に修正した通常の栄養培地で培養される。
BDBオリゴペプチドをコードする核酸(例えば、cDNA又はゲノムDNA)は、クローニング(DNAの増幅)又は発現のために複製可能なベクター内に挿入される。様々なベクターが公的に入手可能である。ベクターは、例えば、プラスミド、コスミド、ウイルス粒子、又はファージの形態とすることができる。適切な核酸配列が、種々の手法によってベクターに挿入される。一般に、DNAはこの分野で周知の技術を用いて適当な制限エンドヌクレアーゼ部位に挿入される。ベクター成分としては、一般に、これらに制限されるものではないが、一又は複数のシグナル配列、複製開始点、一又は複数のマーカー遺伝子、エンハンサーエレメント、プロモーター、及び転写終結配列を含む。これらの成分の一又は複数を含む適当なベクターの作成には、当業者に知られた標準的なライゲーション技術を用いる。
発現及びクローニングベクターは、典型的には、選べるマーカーとも称される選択遺伝子を含む。典型的な選択遺伝子は、(a)アンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセートあるいはテトラサイクリンのような抗生物質あるいは他の毒素に耐性を与え、(b)栄養要求性欠陥を補い、又は(c)複合培地から得られない重要な栄養素を供給するタンパク質をコードしており、例えばバシリのD-アラニンラセマーゼをコードする遺伝子がある。
酵母宿主との使用に適したプロモーター配列の例としては、3-ホスホグリセラートキナーゼ[Hitzeman 等, J. Biol. Chem., 255:2073 (1980)]又は他の糖分解酵素[Hess 等, J. Adv. Enzyme Reg., 7:149 (1968);Holland, Biochemistry, 17:4900(1978)]、例えばエノラーゼ、グリセルアルデヒド-3-リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース-6-リン酸イソメラーゼ、3-ホスホグリセレートムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオセリン酸イソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、及びグルコキナーゼが含まれる。
哺乳動物の宿主細胞におけるベクターからのBDBオリゴペプチド転写は、例えば、ポリオーマウィルス、伝染性上皮腫ウィルス(1989年7月5日公開の英国特許第2211504号)、アデノウィルス(例えばアデノウィルス2)、ウシ乳頭腫ウィルス、トリ肉腫ウィルス、サイトメガロウィルス、レトロウィルス、B型肝炎ウィルス及びサルウィルス40(SV40)のようなウィルスのゲノムから得られるプロモーター、異種性哺乳動物プロモーター、例えばアクチンプロモーター又は免疫グロブリンプロモーター、及び熱衝撃プロモーターから得られるプロモーターによって、このようなプロモーターが宿主細胞系に適合し得る限り制御される。
組換え脊椎動物細胞培養でのBDBオリゴペプチドの合成に適応化するのに適切な他の方法、ベクター及び宿主細胞は、Gething等, Nature, 293:620-625 (1981); Mantei等, Nature, 281:40-46 (1979); 欧州特許第117060号;及び欧州特許第117058号に記載されている。
本発明のBDBオリゴペプチドを生成するために用いられる宿主細胞は種々の培地において培養することができる。市販培地の例としては、ハム(Ham)のF10(シグマ)、最小必須培地((MEM),シグマ)、RPMI-1640(シグマ)及びダルベッコの改良イーグル培地((DMEM),シグマ)が宿主細胞の培養に好適である。また、Ham等, Meth. Enz. 58:44 (1979), Barnes等, Anal. Biochem. 102:255 (1980), 米国特許第4767704号;同4657866号;同4927762号;同4560655号;又は同5122469号;国際公開第90/03430号;国際公開第87/00195号;又は米国特許再発行第30985号に記載された任意の培地も宿主細胞に対する培養培地として使用できる。これらの培地はいずれも、ホルモン及び/又は他の成長因子(例えばインスリン、トランスフェリン、又は表皮成長因子)、塩類(例えば、塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウム及びリン酸塩)、バッファー(例えばHEPES)、ヌクレオシド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えば、ゲンタマイシン(商品名)薬)、微量元素(マイクロモル範囲の最終濃度で通常は存在する無機化合物として定義される)及びグルコース又は同等のエネルギー源を必要に応じて補充することができる。任意の他の必要な補充物質もまた当業者に知られている適当な濃度で含まれてもよい。培養条件、例えば温度、pH等々は、発現のために選ばれた宿主細胞について以前から用いられているものであり、当業者には明らかであろう。
癌におけるIAP発現を定量するために、種々の診断アッセイが利用可能である。一実施態様では、IAPポリペプチド過剰発現は、免疫組織化学(IHC)によって分析される。腫瘍生検からのパラフィン包埋組織切片をIHCアッセイへ供してもよいし、次のようなIAPタンパク質染色強度基準と合致させてもよい:
スコア0 - 染色が観察されないか、又は腫瘍細胞の10%未満で観察される。
スコア1+ - わずかに/弱く認知できる程度の染色が腫瘍細胞の10%を越えて検出される。
スコア2+ - 弱いないしは中程度の染色が腫瘍細胞の10%を越えて観察される。
スコア3+ - 中程度から強い染色が腫瘍細胞の10%を越えて観察される。
IAPポリペプチド発現に関して0又は1+スコアの腫瘍は、IAPが過剰発現していないことを特徴としうるものであるのに対し、2+又は3+スコアの腫瘍はIAPが過剰発現していることを特徴としうる。
IAP過剰発現又は増幅は、インビボ診断アッセイを使用して評価することができ、例えば検出される分子に結合し、検出可能な標識(例えば、放射性同位体又は蛍光標識)が付けられた分子(例えば抗体、オリゴペプチド又は有機分子)を投与し、標識の局在化について患者を外部スキャニングする。
上に記載したように、本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子には、種々の非治療的用途がある。本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子は、IAPポリペプチドを発現している癌の診断及び染色にとって有用である(例えば、ラジオイメージングで)。また、例えば、他の細胞の精製の工程として混合細胞の集団からIAP発現細胞を死滅させて除去する等の、インビトロでのIAPポリペプチドの検出及び定量化のために、このBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子は有用である。
BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子又はその毒性コンジュゲートは、公知の方法、例えばボーラス、もしくは一定時間にわたる連続注入による静脈内投与、筋肉内、腹腔内、脳脊髄内、皮下、関節内、滑液包内、くも膜下腔内、経口、局所的、又は吸入経路により、ヒトの患者に投与される。BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子の静脈内又は皮下投与が好ましい。
他の実施態様では、本発明の治療方法は、異なる化学療法剤の混合物の同時投与を含む、BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子と一又は複数の化学療法剤又は成長阻害剤との組合せ投与を含む。化学療法剤には、リン酸エストラムスチン、プレドニムスチン、シスプラチン、5-フルオロウラシル、メルファラン、シクロホスファミド、ヒドロキシ尿素及びヒドロキシ尿素タキサン類(hydroxyureataxanes)(例えばパクリタキセル及びドキセタキセル)及び/又はアントラサイクリン抗生物質が含まれる。このような化学療法剤の調製及び投与スケジュールは製造者の注意書きに従い使用されるか、又は熟練した実務者により経験的に決定される。このような化学療法の調製及び投与スケジュールは、Chemotherapy Service編 M.C.Perry, Williams & Wilkins, Baltimore, MD(1992)にも記載されている。
BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子は、抗ホルモン化合物;例えばタモキシフェン等の抗-エストロゲン化合物;抗-プロゲステロン、例えばオナプリストン(onapristone)(欧州特許第616812号を参照);又は抗アンドロゲン、例えばフルタミドを、このような分子に対して既知の用量で組合せてもよい。治療される癌がアンドロゲン非依存性癌である場合、患者は予め抗アンドロゲン治療を受け、癌がアンドロゲン非依存性になった後、BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子(及び場合によってはここに記載した他の薬剤)を患者に投与してもよい。
また、本発明は、BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子の治療的有効量を、哺乳動物に投与することを含む、哺乳動物におけるIAPポリペプチド-発現癌の治療又は癌の一又は複数の徴候を緩和するのに有用な方法を提供する。BDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子治療組成物は、医師の指示通りに、短い期間(急性)又は慢性的に、又は間欠的に投与することができる。また、IAPポリペプチド-発現細胞の成長を阻害し、該細胞を殺傷する方法も提供される。
本発明の他の実施態様は、IAP発現癌の治療に有用な物質を含有する製造品である。この製造品は容器と容器に付与又は添付されるラベル又はパッケージ挿入物を含んでなる。好適な容器は、例えば、ビン、バイアル、シリンジ等を含む。容器は、ガラス又はプラスチックなどの多様な材料から形成されてよい。容器は、癌の状態の治療に有効な組成物を収容し、無菌のアクセスポートを有し得る(例えば、容器は皮下注射針で貫通可能なストッパーを有する静脈内溶液バッグ又はバイアルであってよい)。組成物中の少なくとも一つの活性剤は本発明のBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子である。ラベル又はパッケージ挿入物は、組成物が癌の治療のために使用されることを示す。ラベル又はパッケージ挿入物は、癌患者にBDBオリゴペプチド又はBDB小有機分子組成物を投与する際の注意書きをさらに含む。製造品はさらに、製薬的に許容可能なバッファー、例えば注射用の静菌水(BWFI)、リン酸緩衝塩水、リンガー液及びデキストロース溶液を含む第2の容器を具備してもよい。さらに、他のバッファー、希釈剤、フィルター、針及びシリンジを含む商業的及び使用者の見地から望ましい他の材料を含んでもよい。
このアッセイは、タンパク質-タンパク質結合アッセイ、生化学スクリーニングアッセイ、免疫アッセイ、そして細胞ベースアッセイを含む、当該分野で良く特徴付けられている種々の形式で行うことができる。
アンタゴニストに関する全てのアッセイは、これら両成分が相互作用するのに十分な条件下及び時間にわたって薬候補をIAPポリペプチドと接触させることを必要とする点で共通である。
潜在的アンタゴニストには、IAPポリペプチドのBIRドメインに結合して、それによりIAPポリペプチドの正常な生物学的活性を遮断するBDBオリゴペプチド及びBDB小有機分子が含まれる。このようなペプチドは、化学的に合成でき、及び/又は組換えDNA技術によって生成できる。例えば、Marasco等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90, 7889-7893 (1993)参照。
ここでの製剤は、治療すべき特定の徴候に必要な場合に1つ以上の活性化合物、好ましくは互いに悪影響を及ぼさない相補的活性を持つものも含んでよい。あるいは、又はそれに加えて、組成物は、細胞障害性薬、サイトカイン、化学療法剤、又は成長阻害剤のようなその機能を高める薬剤を含んでもよい。これらの分子は、適切には、意図する目的に有効な量の組み合わせで存在する。
以下の実施例は例示するためにのみ提供されるものであって、本発明の範囲を決して限定することを意図するものではない。
本明細書で引用した全ての特許及び参考文献の全体を、出典明示によりここに取り込む。
ML−IAP BIR(アミノ酸残基63−179)、X−IAP BIR2(C202A及びC213Gの変異を持つアミノ酸残基124−240(Sun等, (1999) Nature 401, 818-822))、及びX−IAP BIR3(アミノ酸残基241−356、Sun等, (2000) J. Biol Chem. 275, 33777-33781))をコードする配列を細菌内発現のためにpET15bベクター(NovagenTM)にサブクローニングした。pET15b−XIAPBIR2C202AC218G、pET15b−XIAPBIR3、及びpET15b−MLIAPBIRベクターを大腸菌(Escherichia coli)系BL21(DE3)に導入した。一晩培養した培養物を1:100に希釈し、50mg/mlのカルベニシリンを添加したLB培地にてA600で0.5〜0.7になるまで30度で勢いよく振盪培養した。イソプロピルb−D−チオガラクトシド(IPTG)を最終濃度1mMとなるように添加し、30度で4時間成育させた。凍結細胞ペレットの1litreを5mMのイミダゾールを加えた緩衝液A100ml(50mM Tris[pH 8.0]、300mM NaCl、5mM b−メルカプトエタノール、0.5mM PMSF、2mMベンザミジン)に懸濁して、30分氷上に置いた。ミクロフルイダイザーに繰返し通すことによって細胞を溶解した。溶解物を30分間15000で遠心分離した。上澄をNi−アガロースカラム(Qiagen)に通し、10mMのイミダゾールを加えた10カラム量の緩衝液Aで洗浄し、300mMのイミダゾールを加えた10カラム量の緩衝液Aにて溶出させた。BIRタンパク質を含む分画を貯蔵した。最終濃度5mM DTT及び100mM酢酸亜鉛となるように添加した。貯蔵物を濃縮して、Superdex 75TM (Pharmacia) サイズカラムに通した。1カラム量あたり50mM Tris 8.0、300mM NaCl、0.5mM PMSF、2mM ベンザミジン、5mM DTT、50mM 酢酸亜鉛、1mM アジ化ナトリウム内にタンパク質を溶出させた。BIRタンパク質を含む分画を貯蔵して、50mM Tris(pH 8.0)、120mM NaCl、5mM DTT、0.5mM PMSF、2mM ベンザミジン、50mM 酢酸亜鉛、1mM アジ化ナトリウムを含む緩衝液の異なる4つを透析した。タンパク質を濃縮して、更なる解析のために−80度で保存した。
前述した方法(Sidhu等, (2000) Methods Enzymology 328, 333-363)により、6、8、14、または20の残基をそれぞれ含む融合タンパク質をコードする翻訳領域の発現を制御するIPTG誘導Ptacプロモーターを含むファジミドベクターを用いてライブラリーを構築した。
免疫吸着プレート(Nunc MaxisorpTM)を室温で1時間、50mM炭酸ナトリウム緩衝液(pH 9.6)中の5μg/mlのBIRドメイン(ML−IAP BIR、又はXIAP−BIR2、又はBIR3)にてコートし、その後1時間リン酸緩衝生理食塩水(PBS)中の0.2% BSAにて遮断した。プレートをPBS、0.05% Tween20にて洗浄した。4つの天然ペプチドファージライブラリーからファージを貯蔵し、BIRドメインでコートした免疫吸着プレート上で結合選択を3工程で行った。第1工程では、4.8 mlのファージ混合液(1mlあたり〜1013ファージのPBS、0.05% Tween20、0.2% BSA(BSA/Tween 緩衝液))を48コーティングウェル(100μl/ウェル)に添加した。室温での2時間の振盪インキュベーション後、プレートを0.05% Tween20のPBSにて洗浄して結合しなかったファージを除去した。結合したファージは0.2Mグリシン,pH2.0(100μl/ウェル)にて溶出させ、ファージ溶出物を1/6量の1.0M Tris, pH 8.0を添加して中和した。溶出したファージをM13−VCSTMヘルパーファージ(Stratagene)と共にXL1−blueTM大腸菌細胞(Stratagene)中での増殖により溶出したファージを一昼夜増幅して、PEG/NaCl沈降法により回収した。選択手法の第2工程は遮断緩衝液及びファージ混合液の両方においてBSAの代わりに0.2%カゼインを用いるのに対して、第3工程は第1工程と同様に行った。各工程で得られた個々のファージクローンを単一ポイントファージELISA(実施例4を参照)によりBIRドメイン特異的結合について解析した。BIRドメインに結合してBSAでは結合が見られないポジティブクローンをDNA配列解析の対象とした。
ファジミドを内部に持つ大腸菌XL1−青色コロニーの各々を96ウェル形状の1.2ml培養チューブ中の成長培地500μl(50μg/mlカルベニシリン及び1010pfu/mlのVCS−M13ヘルパーファージを添加した2YT)に拾い上げる。一昼夜の成育後、チューブ試験管立てを10分間2500rpmで遠心分離した。ファージ上澄(300μl)を96ウェルプレートに移し、単一ポイントファージELISAに直接用いた。ファージELISAに、96−ウェルMaxisorpTM免疫プレート(NUNC)をBSAで遮断した5μg/mlの捕獲標的タンパク質100μlでコートして洗浄した(実施例3に記述)。ファージ上澄(50μl)を各々のウェルに添加し、1時間室温にて振盪培養した。プレートは0.05% Tween20のPBSにて8回洗浄し、1:10000の西洋ワサビペルオキシダーゼ/抗M13抗体コンジュゲート(Pharmacia)を含むBSA/Tween緩衝液50μl中で30分間インキュベーションした後、0.05% Tween20TMのPBSにて8回及びPBSにて2回洗浄した。プレートをテトラメチルベンジジン基質を用いて現像し(TMB, Kirkegaard及びPerry, Gaithersburg, MD)、1.0 M H3PO4 (50μl)にて欠失し、450nmでの分光光度を計測した。
ペプチド合成。手動又は自動(Milligen 9050TM)何れかの固相合成法にてFmoc化学性を利用したPEGポリスチレン樹脂の0.2mMスケールでペプチドを合成した。0.1%トリフルオロ酢酸を添加したH2Oアセトニトリル勾配のHPLCを用いて精製を行った。熱スプレー質量分析法により各ペプチドの質量を求めた。
合成したペプチドの解析のために、AnalystTMHT 96−384(Molecular Devices Corp.)にて分極実験を行った。蛍光分極親和性測定のために、分極緩衝液(50mM Tris[pH 7.2]、120mM NaCl、1%ウシグロブリン及び0.05%オクチルグルコシド)中のML−IAP−BIR、XIAP−BIR3、又はXIAP−BIR2の何れかを5−カルボキシ蛍光色素結合ペプチド[AVPFAK(5−FAM)K(Hid−FAM)又はAVPIAQKSEK(5−FAM)(SMAC−FAM)]に対して1:2、3〜5nMの最終濃度となるように加えて試料を調整した。室温で10分間インキュベーションした後、96ウェル黒色HE96TMプレート(Molecular Devices Corp.)中で蛍光色素(λex=485nm;λem=530nm)について標準的なカットオフフィルターを用いて反応液を測定した。見かけのKd値をEC50値より決定した。ML−IAP−BIR、XIAP−BIR3又はXIAP−BIR2タンパク質をSMAC−FAMに対してはそれぞれ1、1〜2、又は30μMで、Hid−FAMに対してはそれぞれ0.2、0.5、又は30μMで、分極緩衝液中の連続的に希釈したアンタゴニストとプローブを含むウェルに添加することによって競合実験を行った。10分間のインキュベーションの後、試料を計測した。ペプチドに対する阻害係数(Ki)を以前に記載したように決定した(Keating等, (2000) Proceedings of SPIE: In vitro diagnostic instrumentation Cohn, G.E., Ed. p128-137)。ペプチド結合アッセイの結果を以下の表1に示す。
10mM MES, pH6.5中の凍結乾燥粉末からペプチドを元に戻した。ML−IAP−BIRタンパク質(貯蔵緩衝液中で20mg/ml)に2:1モル以上でペプチドを添加した。ペプチド/タンパク質複合体を1:1の割合でウェル溶液(50 mM Na酢酸塩、pH5.0、5%(v/v) PEG300、5mM DTT)に混合し、ウェル溶液に対して蒸気拡散することによって平衡化した。混合により速効性沈殿物が形成され、1日で油性の泡沫状の膜が生じ、続く1週間で小さな桿状の結晶に成長する。また、沈殿剤としてエタノール、イソプロパノール、又はt−ブタノールを用いて大きくした;PEG300は凍結防止剤としても働くので好ましい。
結晶は結晶化ドロップの膜から分離し、50mM 酢酸Na、pH5.0及び10%(v/v) PEG300を含む安定剤に移し、20分後に20%PEGを含む同様の溶液に移した。第二低温安定剤に移してさらに20分後に液体窒素にて結晶を凍結した。HKL2000TM(又はそれぞれDENZOTM及びSCALEPACKTM)を用いてデータ集積と処理を行った。
タンパク質内の天然亜鉛結合の変則的散乱を利用したMAD相を用いて、AEAVPWKSE(配列番号:9)ペプチド複合体の構造を解析した。亜鉛部位はMADデータから予想されるパターソンマップにおいて明らかに変則的かつ分散して存在しており、5つの部位はCNXTM(Accelrys, Inc.)のパターソン検索方法にて見つけられた。溶媒フリッピング(CNXTMを使用)を含む集積修飾により容易に解釈可能な密度を生成した。次にDIAP(PDB登録コード1JD4)のBIRドメイン(217〜310残基)を非対称性単位の5つの各コピーの集積に手動で置き、強固体(rigid-body)を精製した。モデルのアミノ酸配列をML−IAPのものに変え、その結果生じたモデルを、CNXTM、分散したマップの検討、モデルの再構築(結合ペプチドの構築を含む)を用いて、擬似アニーリング、ポジショナル精製、及び個々の原子B因子精製といったいくつかの工程の対象とした。AVPIAQKSE(配列番号:1)及びAEVVAVKSE(配列番号:10)の両方の複合体構造はMADフェーズ(phase)データ(15%より小さい交差R因子)と十分同形で、Fo(新しいペプチド)−Fo(MADピーク波長)マップ, 精製した AEAVPWKSE(配列番号:9)複合体構造を用いたフェーズの検討により、明らかに新しいペプチドを求めるためにはモデルが必須であることを示した。これらの変化 (主に結合ペプチド内の新しいアミノ酸への置換と、Lys121の高次構造の調節) を起こして、その結果生じたモデルをポジショナル精製及びB因子精製の一工程に用いる。
ML−IAP及びXIAPのBIRドメインに結合するペプチド配列の多様性を確認するために、遺伝子VIIIファージコートタンパク質上に線状ペプチドを表出する多価M-13ファージライブラリをML−IAP−BIR、XIAP−BIR2、及びXIAP−BIR3について選別する。線状X6、X8、X14、及びX20ライブラリーを用意し、8×1010メンバーをライブラリーに与えて結合させた。各タンパク質標的について4工程の選別を行い、計96個のクローンが単一ポイントファージELISA解析のために単離された。XIAP−BIR2及び−BIR3によりBSAへの結合がみられないがBIRドメインに対して強い結合を示すクローンが得られた。シークエンスにより、ポジティブクローンの95%がX6及びX8ライブラリーに由来していることが明示され、このことからペプチドはタンパク質ドメイン内の局在したエピトープに結合していることが示唆された。
新たに結合したX6及びX8ライブラリー(4×1010メンバー)を用いて選別と増幅を4工程行った後、ML−IAPについての単一ポイント解析にポジティブを示し、BSAへの結合を示さないクローンを単離した(図3)。
これらの実験において、ライブラリーの大きさはX6及びX8ライブラリーの理論的多様性よりも大きい。よって、8N末端部位のすべてのポジティブアミノ酸結合体を含むライブラリーからコンセンサス配列が得られた。ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3の両方についての選別から類似の配列を得た(図3)。両者の場合において、アラニン残基はN末端に一つだけみられる。クローンのおよそ50%は2番目がValであり、90%以上は3番目にProを持つ。4番目の位置には強い選択的バイアスである芳香の疎水性残基として最も一般的にはフェニルアラニン、二番目に一般的な残基としてトリプトファンが存在する。その他の部位にはバイアスが認められないことから、4つのN末端残基がBIR結合に最も重要であることが示唆される。ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3、AVPFのコンセンサス配列はHidのN末端と一致している(図1)。
XIAP−BIR2についての選別結果は、ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3のものと有意に異なる。アラニンは先と同様にN末端に高い保存性を有するが、2番目には酸性アミノ酸であるグルタミン酸が位置する。ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3の3番目の位置には多くの場合プロリンが配位するのに対して、小さい疎水性残基であるグリシン、アラニン、及びバリンは選択的に位置する。4番目には、疎水性残基のバリン及びイソロイシンよりML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3にあるようなより大きな芳香性アミノ酸が配位する。
異なるBIRドメインに対するこれらペプチドの相対的親和性を比較するために、代表的ペプチドを合成し、プローブとしてSMAC由来5-カルボキシ蛍光色素標識ペプチド(SMAC−FAM)を用いた蛍光色素局在化に基づく競合アッセイにより親和性を決定した(表1)。それら標識タンパク質に対するファージ選択ペプチドの親和性は一般的にSMAC由来ペプチドに対するものよりもわずかに高い。XIAP−BIR2への結合について選択されたペプチドはXIAP−BIR3に比較してML−IAP−BIRに対して10倍より大きい特異性を示す。これらペプチドはML−IAP−BIRへの結合に対してSMAC由来ペプチドよりおよそ10倍弱いが、XIAP−BIR3への結合に対しては100倍よりも弱い。
さらに、いくつかのファージ由来ペプチドにみられる特異性の相違を理解するために、SMAC由来ペプチド(AVPIAQKSE (配列番号:1))及び対象とする2つの異なるペプチド(AEAVPWKSE (配列番号:9)及びAEVVAVKSE (配列番号:10))それぞれとの複合体におけるML−IAPのBIRドメインを結晶化した。分解能2.2〜2.8Åの構造を決定した(表2)。それぞれの場合で、結晶の非対称性単位においてML−IAP−BIRの5つのコピーがあり(図2);最終的な原子モデルにはタンパク質残基72−169(プロトマーA)、 72−171(プロトマーB−D)、及び78−171(プロトマーE)を含む。驚くことに、5つのBIRドメインのうちの一つ(プロトマーE)しかSMAC結合ポケットのペプチドに結合しない;結合したペプチドは残基1’−4’に強い電子集積を有し、C末端の5つの残基には集積を有さない。プロトマーA−Dは近接したプロトマーと残基Ala73−Thr74−Leu75−Ser76を介してSMAC結合ポケットである四量体を形成する。さらに、ヘプタエチレングリコール分子により中心にある多くのチロシンと相互作用してこの四量体を安定化する。
ペプチド結合ドメイン、2つの異なる高次構造にみられる残基116−119において障害となるN末端領域を除いて、各非対称性単位内の5つのBIRドメインは残基79−115及び120−168の重合に0.45Å以下の平均バックボーンペアワイズRMS偏差(average backbone pairwise RMS deviations)でとても類似している。ML−IAPのBIRドメインは5つのαヘリックス、3本鎖のβシート、及び3システインと1ヒスチジン残基によってキレート化される亜鉛原子を含む(図4)。よって、構造がXIAP−BIR3/SMAC(Wu等, (2000) Nature 408, 1008-1012)、XIAP−BIR2/カスパーゼ−3(Riedl等., (2001) Cell 104, 791-800)、及びDIAP1-BIR2/GrimとHid (Wu等, (2001) Mol. Cell 8, 95-104)との複合体を含むペプチド結合BIRドメインのものと、すべてのC-α原子に対して0.7Åより小さいRMS偏差で類似している。
さらに、ペプチドとML−IAP−BIR間の疎水性作用により相互作用が安定化される。Ala1’のメチル基はLeu131、Trp134、及びGlu143の側鎖により形成される疎水性ポケットに囲まれる。ペプチド残基2’(Val/Glu2’)の側鎖は各々3つの複合体内のSer133のβメチレンとファンデルワールス作用を生じる。3複合体において残基3’は異なり、それぞれの場合において異なる疎水性作用を生じる。SMAC由来ペプチドでのPro3’はVal2’の側鎖と同様にTrp147とファンデルワールス作用を生じる。AEVVAVKSE (配列番号:10)のVal3’の側鎖はTrp147及びPhe148の側鎖により限定される疎水性溝に容易に適応するのに対して、AEAVPWKSE(配列番号:9)ペプチドのAla3’のメチル基側鎖はタンパク質と有意なファンデルワールス作用を有さない。また、結晶構造でみられるML−IAP分子間の相互作用にみられるように、ML−IAP−BIRではペプチドのこの部位にLeuが容認される(図2)。最終的にペプチド残基4’(Ile/Val4’)の側鎖は、Gly130−Gln132により限定される疎水性ポケット、及びThr116、Lys121、及びArg123の脂肪族性部位を相互作用する。ファージ由来ペプチドとの複合体において、Ile4’がより小さいVal4’へと置き換わることにより空位のスペースを埋めるためにLys121がSMACペプチド複合体内の位置から移動していたことから、このポケットにいくらかの自由度があることが示唆される。
a各例での空間群及び単位細胞はP32、a=83.8、b=83.8、c=94.3。括弧内の数は最も高い分解能殻の統計である。全てのデータはBijvoet mates separateを保つ大きさであった。AVPIAQKSE(配列番号:1)構造は非対称ユニットの5分子を有し、全部で3997のタンパク質原子、368の水、5の亜鉛原子、及び1のヘプタエチレングリコール分子を持つ。また、他の構造も非対称ユニットの5分子を有し、ほぼ同じ数の原子を持つ。
b Rcryst = Σ|(Fobs) - (Fcalc)|/Σ(Fobs)。
c RfreeはRcrystと同様に定義されるが、モデル精製に用いられなかった全反射の試験的セット5%を含む。
ファージ選択及び続くML−IAP−BIR/ペプチド複合体の構造解析により、ペプチド修飾によりXIAP−BIR3に比較してML−IAPに対する結合親和性及び選択性が増すであろうことが示唆される。より系統的な方法で2’、3’及び4’位での置換の影響を試験するために、SMAC由来ペプチドAVPIAQKSE (配列番号:1)に一連の単一点突然変異を入れて合成し、ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3両方に対する結合を測定した。ML−IAP−BIRへ結合するAVPIAQKSE (配列番号:1)のKi値に対して相対的な変異型ペプチドのKi値をプロットしたものを図6に、ML−IAP−BIR、XIAP−BIR2及びXIAP−BIR3へ結合するペプチドのKi値を表3に示す。ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3の両方へ結合するこれらの残基は、アラニンに置換したときにはその親和性が10倍以下になることからその重要性が強調される。他の天然アミノ酸置換の中には、4’位のPhe及びTrpは結果的にSMAC由来ペプチドに比較して親和性が増加する。
いくつかの変異は結果としてXIAP−BIR3に比較してML−IAP−BIR特異性を改善する。特に、2’位でのGlu又はAspを持つ変異型ペプチドはML−IAP−BIR選択性を7〜8倍にする。Pro3’をVal、Ile又はLeuへ置換すると、ML−IAP−BIR特異性が10倍より大きく上がる。構造を元にしたモデリングにより、Pro3’を(2S, 3S)-3-メチルピロリジン-2-カルボキシル酸[(3S)-メチル-プロリン]に置換すると、Val、Ile又はLeu置換ペプチドに比較してML−IAP−BIR親和性が改善される一方でこれらアミノ酸により与えられた特異性の利点を維持したペプチドとなるであろうことが示唆された。結果としてできたペプチドは初めのSMAC由来ペプチドよりML−IAP−BIRへの親和性を7倍以上有し(0.5μMと比較したときのKi=70nM)、XIAP−BIR3と比較してML−IAP−BIR特異性を100倍有する。
4’位での非天然アミノ酸置換の多くも又結果的にML−IAP−BIR特異性を改善する。ホモフェニルアラニン(X12)(〜7倍)に続いて、2−ナフチルアラニン(X1)、4−アミノ−フェニルアラニン(X4)、及び4−フェニル−フェニルアラニン(X14)に大きな特異性亢進がみられる。4つすべての場合においてXIAP−BIR3への結合親和性を減少させたのに対して、これらの置換のうち2−ナフチルアラニンのみがSMAC由来ペプチド(〜3倍減少)と比較してML−IAP−BIR親和性を著しく減少させた。
a 非天然アミノ酸は以下のように表す:X、 (3S)-メチル-プロリン;X1、 2-ナフチルアラニン;X2、フェニルアラニン-4-スルホン酸;X3、4-ニトロ-フェニルアラニン;X4、4-アミノ-フェニルアラニン;X5、3-メトキシ-フェニルアラニン;X6、シクロヘキシルアラニン;X7、シクロペンチルアラニン;X9、3,5-ジブロモ-チロシン;X10、4-ヨード-フェニルアラニン;X12、ホモフェニルアラニン;X13、4-ケトフェニル-フェニルアラニン;X14、4-フェニル-フェニルアラニン。
一連のフェネチルアミン誘導体(表4)を手動又は自動何れかの合成機(QuestTM)により合成した。N−メチルピロリジン中の2%酢酸のシアノホウ化水素ナトリウム(3等価)を用いて12時間でフェネチルアミンを還元的にArgoGel−MB−CHOTM樹脂(0.45mmol/g)にアミン化した。アミノ酸であるアラニン、バリン、及びプロリンは標準的Fmoc化学法を用いて付加した。フェネチルアミンペプチドはトリフルオロ酢酸を用いて樹脂から切断し、0.1%トリフルオロ酢酸とH2Oアセトニトリル勾配を用いたHPLCにより精製した。各物質の質量は熱スプレー質量分析法により確認した。
ファージディスプレイデータ、ペプチドアラニンスキャンデータ(データは示していない)、及びML-IAP-BIR/ペプチド複合体のX線結晶構造により、4つのN末端ペプチド残基がML-IAP-BIRへの高い結合親和性を十分有することが示され、XIAP−BIR3についての以前の結果と一致する(Wu等, (2000) Nature 408, 1008-1012、Liu等, (2000) Nature 408, 1004-1008、Kipp等,. (2002) Biochemistry 41, 7344-7349)。
また、結晶構造の検討により、そのような4残基ペプチドのC末端カルボキシル基がペプチド結合に有意に関与していないことが示唆された。さらに、4’位での置換の効果を探求するために、アミノ酸を選択的にフェニルエチルアミン誘導体に置換した一連の化合物を合成し、ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3への結合についてペプチドAVPI及びAVPFと比較した。ML−IAP−BIRへ結合するAVPIのKi値と比較した化合物のKi値をプロットしたものを図7に示す(また、ML−IAP−BIR、XIAP−BIR2及びXIAP−BIR3へ結合する化合物のKi値を表4に示す)。
ペプチド残基4’を2,2-ジフェニルエチルアミンに置換することによって生じる特異性及び親和性の改善をより完全に理解するために、SMAC由来とファージ由来ペプチドとの複合体に用いたのと同様な手順によりML−IAP−BIRをAVPX24と結晶化した。ML−IAP−BIR/AVPX24複合体についてのデータはスタンフォードシンクロトロン照射実験(Stanford Synchrotron Radiation Laboratory)の9−1線(beamline)で集積した。AEAVPWKSE(配列番号:9)複合体からあらかじめ決定したML−IAP−BIRの構造(ペプチドを含まない)を用いて、AVPX24分子を容易に配置できるFo − Fcの異なる電子密度マップを作製した。2,2-ジフェニルエチルアミン分子部分の2つのフェニルリングの位置はあいまいであった。そして、複合体をRefmacを用いた位置的及び個々の原子B因子精製の一工程の対象とした。
aフェニルエチルアミン誘導体は以下に示すとおりである:X24、2,2-ジフェニル・エチルアミン;X25、(1S,2S)−(+)-2-アミノ-1-フェニル-1,3-プロパンジオール;X26、3-トリフルオロメチルフェニルエチルアミン;X27、(1R,2R)-(-)-2-アミノ-1-フェニル-1,3-プロパンジオール;X28a、トランス-(1R,2S)-2-フェニルシクロプロピル-1-アミン;X28b、トランス-(1S,2R)-2-フェニルシクロプロピル-1-アミン;X29、(1R,1S)-(+)-ノルエフェドリン;X31、β-メチルフェニルエチルアミン;X32、(S)-(-)-2-アミノ-3-フェニル-1-プロパノール;X33、(R)-(-)-2-アミノ-1-フェニルエタノール;X34、3-エトキシフェニルエチルアミン;X36、5-ブロモ-2-メトキシフェニルエチルアミン;X37、3-フルオロフェニルエチルアミン;X38、(S)-(+)-α-(メトキシメチル)-フェニルエチルアミン;X39、3-クロロフェニルエチルアミン;X40、2-エトキシフェニルエチルアミン。すべてのデータ(AVPX24を除く)はBijvoet mates separateを保つ大きさであった。
ML−IAP−BIR/ペプチド複合体の結晶構造に基づく分子モデル研究により、Smac由来ペプチドAVPIAQKSE(配列番号:1)のVal2’及びPro3’が、タンパク質のVal2’及びGln132間にみられる主鎖対主鎖の水素結合を維持するジペプチドアイソスターに置き換わっていることが示唆された。この仮説を試験するために図10Aに示す化合物を合成した。
IAQKSEアミノ酸配列を標準的なFmoc化学法を用いて樹脂上に合成した。(3S)-Fmoc-3-アミノ-1-カルボキシメチル-カプロラクタム(NeosystemTM)をPyBopカップリング(12時間)を用いてこの配列に添加した。アラニンは標準的なペプチド化学法を用いて付加し、ペプチドはトリフルオロ酢酸を用いて樹脂から切断し、0.1%トリフルオロ酢酸とH2Oアセトニトリル勾配を用いたHPLCにより精製した。この結果、配列A(Xaa)IAQKSE(配列番号:53)、Xaaはこの実施例で示す一のジペプチドアイソスターである配列となった。各物質の質量は熱スプレー質量分析法により確認した。この結果できた化合物をML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3への結合について試験するために、プローブとして5−カルボキシ蛍光色素コンジュゲートHidペプチド[AVPFAK(5−FAM)K, Hid−FAM]を用いた蛍光色素局在化に基づく競合アッセイを用いた。ML−IAP−BIR及びXIAP−BIR3への結合に対するKi値はそれぞれ15.3及び39.8μMであった。よって、そのようなジペプチドアイソスターを含むペプチドはIAPタンパク質に対する結合能及びアンタゴナイズ能を有する。Smac由来ペプチドAVPIAQKSE(配列番号:1)と比較してこの化合物が有するML−IAP−BIRへの結合親和性における30倍未満への減少が結果的に、Pro3’の側鎖とタンパク質間の作用の減少を部分的にもたらしているようである。よって、関連したジペプチドアイソスター、例として[3R,6S,10R]-6-アミノオクタヒドロ-5-オキソ-チアゾロ[3,2-a]アゼピン-3-カルボキシル酸、又は[3R,6S,9R]-6-アミノヘキサヒドロ-5-オキソ-チアゾロ[3,2-a]ピリジン-3-カルボキシル酸がSmac由来ペプチドAVPIAQKSE(配列番号:1)のPro3’とタンパク質間にみられるのと同様な作用を再導入することによってML−IAP−BIRへの結合親和性を改善したと予測される。さらに、構造に基づくモデリングにより、図10B−10Eに示すような[3R,6S,10R]-6-アミノオクタヒドロ-5-オキソ-2,2-ジメチル-チアゾロ[3,2-a]アゼピン-3-カルボキシル酸、又は[3R,6S,9R]-6-アミノヘキサヒドロ-5-オキソ-2,2-ジメチル-チアゾロ[3,2-a]ピリジン-3-カルボキシル酸等のジペプチドアイソスターにメチル基を導入するとXIAP−BIR3と比較してML−IAP−BIRへの親和性及びML−IAP−BIR特異性がさらに改善されるであろうことが示唆される(実施例11に記載のようにSmac由来ペプチドAVPIAQKSE(配列番号:1)内のPro3’を(3S)-メチル-プロリンに置換した)。
核磁気共鳴(NMR)に基づく方法は、ML−IAP−BIRに弱く結合する化合物を同定し、薬剤発見過程におけるリード化合物として用いられるより強力なアンタゴニスト開発の助けとなりうる。特に、SAR−by−NMR(NMRによる構造的活性関係(structure-activity relationship by NMR))法及びその変法は薬剤発見NMRに広く適用されている(Shuker等, (1996) Science 274, 1531-1534)。
そのような方法は、タンパク質の化学変化を利用して、タンパク質上の結合部位を標的とした低親和性のリガンドを同定することに基づく。そのような化学変化マッピング法の必須条件は、二次元異核集積スペクトル(15N,1H− 又は13C,1H−集積スペクトルの何れか)におけるタンパク質共鳴の適度な分解能、及び好ましくは配列特異的な配置である。残念なことに、ML−IAP−BIRドメインはNMR分光法に必要な濃度範囲に著しく集積しているため質の悪いNMRスペクトルしか得られず、低親和性リガンドを同定するためのタンパク質化学変化マッピング法を行うことができない。
しかし、ML−IAP−BIRの結晶の非対称性単位の検討により、溶液相にみられる集積の原因となっているプロトマーA−Dにより形成される四量体内の疎水性領域が明らかとなる。よって、疎水性アミノ酸を持つX線結晶構造によって同定される領域内の疎水性アミノ酸のいくつかが置換すると、溶液集積が減少し、したがってML−IAP−BIRのNMRスペクトルの質が改善することが予測される。この仮説を試験するために、ML−IAP−BIR残基Phe81及びLeu89(図2)をそれぞれGlu及びAspに変異させた。野生型及びPhe81Glu/Leu89Asp変異型ML−IAP−BIRタンパク質の15N,1H−異核単一量子干渉性(HSQC)スペクトルを比較すると、四量体領域の残基の変異により劇的にスペクトルの質が改善した(図9)。このような変異の結果、NMRを元としたスクリーニング法に使用可能なML−IAP−BIR変異型となる。
0.2μgのレポータープラスミドpCMV−βgal+0.2μgのFas、TNFR1、DR4又はDR5をコードするプラスミド及び1.6μgのバキュロウイルスP35又はヒトIAPベクターをコードするプラスミドを過渡的にMCF7細胞に形質移入した。アドリアマイシン又は4−TBP処理のため、レポータープラスミドpCMV−βgal及び対照ベクター又はIAPを過渡的にMCF7細胞に形質移入した。形質移入から4時間後、アドリアマイシン(ドキソルビシン、Sigma)又は4−TBP(Aldrich)を指示濃度で培地に添加した。Pan等, (1997) Science 277:815-818に記載の通りにアポトーシスアッセイを16時間後に行った。黒色腫細胞系(888,624)又はメラニン細胞(NHEM細胞)を指示濃度の4−TBPで5時間処理して、プロピジウムヨウ化物及びアネキシンV(Clontech)染色によるFACS分析によりその生存を評価した。このアッセイを用いてML−IAPの抗アポトーシス活性を遮断するSMACペプチドを検索した(Vucic等, (2002) J.Biol. Chem. 277; 12275-12279)。SMAC様ペプチドはML−IAPの抗アポトーシス活性を遮断する。0.15mgのレポータープラスミドpCMV−βgal(β−ガラクトシダーゼ)及び0.85mgのベクター単独、ML−IAP又はX−IAPの何れかをコードするプラスミドを過渡的にMCF7細胞に形質移入した。形質移入後、SMAC-アンテナペディア(ペネトラチン(penetratin);RQIKIWFQNRRMKWKK−NH2(配列番号:54))融合タンパク質又は他の示したペプチド−アンテナペディア融合(50mM)を添加し、3時間後に細胞をアドリアマイシン(0.5mg/ml)に曝した。形質移入の24時間後、5-ブロモ-4-クロロ-3-インドキシル-b-D-ガラクトピラノシド(X−Gal)で染色された細胞の形態について調べた。データ(平均±標準偏差)は全β-ガラクトシダーゼ陽性細胞(n=3)のうちの機能としての活発なアポトーシス細胞の割合を表す。このデータを図11に示す。
Claims (9)
- N2 はGluまたはAsp
N3 はVal、Ile、Leuまたは(2S, 3S)-3-メチルピロリジン-2-カルボン酸[(3S)-メチル-プロリン]
N4はホモフェニルアラニン、4-アミノ-フェニルアラニン、4-フェニル-フェニルアラニン、2,2-ジフェニルエチルアミン、(1S,2S)-(+)-2-アミノ-1-フェニル-1,3-プロパンジオール、3-トリフルオロメチルフェニルエチルアミン、(1R,2R)-(-)-2-アミノ-1-フェニル-1,3-プロパンジオール、トランス-2-フェニルシクロプロピルアミン、(1R,1S)-(+)-ノルエフェドリン、β-メチルフェニルエチルアミン、(S)-(-)-2-アミノ-3-フェニル-1-プロパノール、(R)-(-)-2-アミノ-1-フェニルエタノール、3-エトキシフェニルエチルアミン、5-ブロモ-2-メトキシフェニルエチルアミン、3-フルオロフェニルエチルアミン、(S)-(+)-α-(メトキシメチル)-フェニルエチルアミン、3-クロロフェニルエチルアミン、または、2-エトキシフェニルエチルアミンである、
配列AN2N3N4を含んでなる単離したBDBオリゴペプチド。 - 細胞のアポトーシスを増加させる方法であって、請求項1に記載のオリゴペプチドの有効量を前記細胞に作用させ、該アポトーシスが増加する方法。
- 前記細胞が癌細胞である、請求項2に記載の方法。
- 前記細胞が黒色腫細胞、乳がん細胞、結腸直腸癌細胞、肺癌細胞、卵巣癌細胞、中枢神経系癌細胞、肝臓癌細胞、膀胱癌細胞、膵臓癌細胞、頸部癌細胞および白血病細胞よりなる群から選択したものである、請求項3に記載の方法。
- 第二細胞障害性薬剤を投与することを含んでなる、請求項2に記載の方法。
- APO2/TRAILポリペプチドを投与することを含んでなる、請求項2に記載の方法。
- 第二細胞障害性薬剤がアドリアマイシン(ドキソルビシン)、4-第三ブチルフェノール、エトポシド、タキソール、カンプトセシン、メトトレキセート、ビンクリスチン、タモキシフェン、BCNU、ストレプトゾイシン、ビンクリスチン、5‐フルオロウラシルまたはエスペラミシンである、請求項5に記載の方法。
- 担体と混合した請求項1の物質の組成物。
- 前記担体が製薬学的に許容される担体である、請求項8の組成物。
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