ES2322297T3 - Elemento de ensayo inmunologico con zona de control perfeccionada. - Google Patents

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ES2322297T3 ES07000476T ES07000476T ES2322297T3 ES 2322297 T3 ES2322297 T3 ES 2322297T3 ES 07000476 T ES07000476 T ES 07000476T ES 07000476 T ES07000476 T ES 07000476T ES 2322297 T3 ES2322297 T3 ES 2322297T3
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Abstract

Elemento de ensayo para la ejecución de un ensayo inmunológico en sándwich, para la determinación de un analito a partir de una muestra líquida, la cual contiene - una zona de reactivo, la cual contiene un conjugado soluble en la muestra líquida, de un socio de unión con el analito y un marcador que puede detectarse directa o indirectamente, visualmente, ópticamente o electroquímicamente; - una zona de detección, la cual contiene un socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito; y - una zona de control, la cual contiene un socio de unión permanentemente inmovilizado para el conjugado del socio de unión con el analito y un marcador, caracterizado porque, la zona de control contiene además uno o varios socios de unión permanentemente inmovilizados para el analito o para los complejos que contienen el analito.

Description

Elemento de ensayo inmunológico con zona de control perfeccionada.
La invención se refiere a un elemento de ensayo para la ejecución de un ensayo inmunológico en sándwich para la determinación de un analito a partir de una muestra líquida, con una zona de control de nueva concepción, de preferencia en forma de dispositivos de ensayo inmunocromatográficos (tiras de ensayo) o elementos de ensayo inmunológicos (elementos de ensayo microfluidos o de ranura capilar).
Los ensayos de diagnóstico para la investigación de muestras líquidas, como la sangre, el suero, el plasma, la orina, la saliva, el sudor, etc., contienen a menudo un mecanismo de control, el cual debe garantizar debidamente la ejecución del ensayo y la capacidad de su función.
En la ejecución de ensayos de diagnóstico en aparatos automáticos de laboratorio, un mecanismo de control interno del ensayo es más bien inusual, puesto que la ejecución del ensayo debidamente efectuado está habitualmente garantizado y/o supervisado por el propio aparato. En los aparatos automáticos de laboratorio se supervisan por ejemplo los volúmenes de pipeteado o los tiempos de incubación y otras magnitudes, la mayor parte de las veces automáticamente, por los aparatos automáticos de análisis. La capacidad de función del ensayo (tanto con respecto a los reactivos como también respecto a los aparatos) se garantiza habitualmente mediante la determinación conjunta de muestras de control dentro de una serie de medición.
En el ámbito del "Point-of-Care" ("punto de cuidado al paciente" (PoC), es decir, en el lugar donde se efectúan las mediciones de muestras del paciente fuera de un laboratorio especializado, se efectúan a menudo determinaciones aisladas. Los elementos de ensayo empleados en las mismas, contienen la mayor parte de las veces reactivos secos, los cuales se disuelven con la muestra de nuevo y de esta forma se reactivan para el análisis propiamente dicho. En particular, en el campo de los inmunoensayos, se han acreditado en el ámbito del PoC, ciertos elementos de ensayo inmunológicos, como por ejemplo las tiras de ensayo inmunocromatográficas o los elementos de ensayo inmunológicos de rendija capilar, como particular-mente idóneos. Los elementos de ensayo inmunológicos se basan a menudo en reacciones ópticamente detectables, las cuales la mayor parte de las veces son detectables visualmente o mediante un aparato de medición (lector). A la persona que ejecuta el ensayo le atañe en este caso una particular responsabilidad, puesto que funciones que en los ensayos de química húmeda son efectuadas por los aparatos automáticos de labora-torio, deben ser ejecutadas en parte por la persona que efectúa el ensayo (por ejemplo el pipeteado correcto del volumen de muestra o el mantenimiento del tiempo de evaluación).
Habitualmente se trata, en el caso del personal que trabaja en el entorno del PoC, la mayor parte de las veces, de colaboradores no especialmente preparados. Los ensayos en el ámbito del PoC se realizan a menudo por médicos, enfermeras, auxiliares de médicos, farmacéuticos o los propios pacientes. En los laboratorios especializados (por ejemplo en los laboratorios centrales de los hospitales, grandes laboratorios), por el contrario, los ensayos son efectuados por ayudantes técnicos especialmente formados (por ejemplo los MTA).
En consecuencia se han desarrollado ofertas de ensayos para estos especiales "controles descentralizados" o aplicaciones PoC, así llamadas "on-board controls" ("controles a bordo"), los cuales, al ser ejecutados incurren en burdos fallos de manipulación (por ejemplo baja dosificación) y/o falta de capacidad funcional del ensayo, y sorprendiendo desagradablemente al usuario con un resultado de ensayo no válido.
En el caso especial de los elementos de ensayo inmunológicos, que trabajan según el llamado "principio sándwich", se efectúan "on board controls" ("controles a bordo") habitualmente en forma de franjas o zonas de control (ambos conceptos se emplean a continuación como sinónimos).
Esas franjas o zonas de control, sirven idealmente, para garantizar que el usuario reconoce, que se ha aplicado un suficiente volumen de la muestra para la correcta ejecución del ensayo, que en el elemento de ensayo los reactivos inmunoquímicos impregnados o secos, se encuentran todavía en una forma con capacidad de migración (es decir movibles en el elemento de ensayo), y que los reactivos con una función decisiva, proporcionan - dentro de un cierto marco - una actividad inmunológica. En otro caso, la franja de control o respectivamente la zona de control, permite reconocer que la la ejecución del ensayo se realiza de forma no experta, o la inutilidad del elemento de ensayo, y de esta forma ayuda a impedir que se reciban falsos resultados de ensayo.
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Una típica construcción de un ensayo es por ejemplo la siguiente:
entre la zona de aplicación de la muestra y la zona de detección, se encuentra habitualmente la zona del conjugado (llamada también zona del reactivo), en o sobre, el elemento de ensayo. La zona de aplicación de la muestra y la zona del conjugado pueden ser la misma. La zona del conjugado contiene un socio de unión inmunológica dirigido contra el analito, a través del líquido de muestra de nuevo soluble y rescatable, y de esta forma movilizable (típicamente un anticuerpo o un fragmento del mismo) el cual habitualmente está conjugado a una enzima generadora de una señal (por ello llamado "conjugado"), o un así llamado, marcador directo, (por ejemplo partículas de oro o de látex coloreado, un marcador fluorescente, etc.).
La zona de detección contiene un segundo socio de unión irreversiblemente inmovilizado, independiente, dirigido contra el analito (o un complejo formado por el analito).
En presencia de analito en la muestra, éste se enriquece en forma de un llamado sándwich (es decir un complejo inmunológico formado por el socio de unión inmovilizado, el analito y el socio de unión encargado de dar la señal) en la zona de detección, y se hace visible, eventualmente después de la adición de otros reactivos.
En el caso del principio estreptavidina-biotina (como representativo del llamado principio sándwich indirecto), se encuentra el segundo socio de unión en forma de un conjugado de biotina movilizable en la zona del conjugado. La zona de detección contiene estreptavidina irreversiblemente inmovilizada.
El exceso de conjugado del socio de unión y el marcador o biotina, se transporta juntamente con la muestra, "corriente abajo" a la zona de desperdicios (zona de absorción que sirve para la extracción de la muestra sobrante), que se encuentra en la zona de detección.
Entre la zona de detección y la zona de desperdicios se encuentra habitualmente la zona de control.
Los siguientes principios funcionales en las zonas de control son ya conocidos por el experto, y serán descritos con sus ventajas y desventajas:
1. Zona de control del analito
La zona de control situada entre la zona de detección y la zona de desperdicios, contiene el analito irreversible-mente inmovilizado (o un análogo del analito). El conjugado, socio de unión-marcador, en exceso, se une con el analito inmovilizado, o respectivamente el análogo del analito, y conduce de esta manera a una señal detectable en la franja de control.
Este mecanismo está hoy en día a menudo cubierto mediante zonas de control de polihapteno; por ello se describen ventajas y desventajas en el punto 2, con más detalle.
Una desventaja especial de la franja de control del analito es que el analito, por ejemplo, un antígeno, se ha obtenido a menudo, con dificultad y de forma costosa, en cantidad suficiente.
2. Zona de control de polihapteno
La zona de control situada entre la zona de detección y la zona de desperdicios, contiene un polihapteno dirigido contra el anticuerpo conjugado.
Ventaja: junto a la capacidad de migración de los reactivos y del control del volumen de muestra correcto, garantiza la formación de la señal en la zona de control también la actividad inmunológica del conjugado del socio de unión del analito y el marcador. Desventaja: en el caso de una alta concentración de analito en la muestra, la capacidad de unión al antígeno del conjugado socio de unión-marcador antes de alcanzar la zona de control ya está saturada, y el polihapteno en la zona de control no puede captar ningún conjugado más. El mecanismo de control por consiguiente, no funciona.
En este caso, el usuario debe partir erróneamente, de un resultado de ensayo no válido, en la zona de detección.
Esto es particularmente a menudo, una desventaja cuando entre el valor "cut-off" ("valor de corte") del ensayo (es decir el límite inferior de medición), y el margen superior de concentración debe cubrirse un amplio tramo de concentración. Este es por ejemplo el caso en los ensayos de embarazo, en donde la hormona hCG de la orina debe detectarse con un límite de aproximadamente 10-20 mlU/ml, por otra parte deben observarse también, valores hCG de hasta 500.000 mlU/ml al final del primer trimestre de embarazo. Estas altas concentraciones de analito conducen a resultados negativos en la zona de control y simulan así un resultado no válido del ensayo en la zona de detección.
3. Zona de control anti-IgG (como forma de zona de control indirecta)
La zona de control contiene un anticuerpo dirigido contra el conjugado anticuerpo-marcador. Este principio de zonas de control está muy difundido en las tiras de ensayo del embarazo.
Ejemplo: cuando se emplea un anticuerpo de ratón marca-do, específico para el analito, la zona de control contiene por ejemplo un anticuerpo policlonal dirigido contra el anti-cuerpo de ratón (por ejemplo el PAK<ratónFc\gamma>S-IgG).
Ventaja: la preparación de la franja de control no está influida por las altas concentraciones de analito de la muestra.
Desventaja: la actividad inmunológica correcta del conjugado no está comprendida por este mecanismo. Esto ha conducido últimamente a que las nuevas autorizaciones de elementos de ensayo han provocado con más frecuencia, discusiones con la autoridades de admisión, por ejemplo, la FDA en USA. Otra desventaja reside en que al emplear los anticuerpos anti-interferencias en los ensayos, que trabajan con sangre, la intensidad de la señal en la zona de control disminuye fuertemente. Los anticuerpos anti-interferencias se emplean en el ensayo habitualmente en un exceso de 10 a 500 veces con respecto al anticuerpo del conjugado específico para el analito. Como anticuerpos anti-interferencias se emplean virtualmente anticuerpos sin conjugar de la misma especie, los cuales pueden capturarse igualmente de la franja de control.
En presencia de analito en la muestra, constituye una dificultad, que una gran parte del conjugado en la zona de detección ya está unido, y la cantidad de conjugado restante, a menudo pequeña, en presencia del anticuerpo anti-interferencias conduce a un completo fracaso de la zona de control.
4. Franja de control indirecta, no influida por los anti-cuerpos anti-interferencias
La franja de control contiene un socio de unión que está dirigido contra un "marcador independiente" del conjugado. Ejemplo: el socio de unión del conjugado específico para el analito se digoxigeniza adicionalmente y es captado mediante un anticuerpo antidigoxigenina en la franja de control (véase por ejemplo, la patente US-A 2002-0055 126).
Ventaja: la capacidad de unión de la franja de control no disminuye con una alta concentración de analito. Además, la capacidad de unión de la franja de control no disminuye por la presencia de anticuerpos anti-interferencias.
Desventaja: los anticuerpos del conjugado deben además modificarse especialmente, lo cual significa trabajo, costes y tiempo adicionales. Además, en caso de un contenido endógeno alto del marcador seleccionado, la franja de control puede fallar de nuevo.
A partir del actual estado de la técnica descrito, puede deducirse que existe una necesidad de un mecanismo de franja de control perfeccionado.
La tarea de la presente inversión consiste en solventar las desventajas del estado actual de la técnica. En particular, la tarea de la invención consiste en poner a punto un mecanismo de control para los elementos de ensayo inmunológicos, el cual funcione con fiabilidad independientemente de los componentes de la receta del ensayo (en particular respecto al empleo de los llamados anticuerpos anti-interferencias), en un amplio margen de concentración del analito, sin ser influenciado por los componentes endógenos de la muestra.
Esta tarea se resuelve mediante el objeto de la presente invención.
Objeto de la invención es un elemento de ensayo según la reivindicación 1, así como un procedimiento según la reivindicación 10. Las versiones preferidas de la invención son objeto de las reivindicaciones anexas.
Objeto de la invención es en primer lugar un elemento de ensayo para la ejecución de un ensayo inmunológico en sándwich, para la determinación de un analito a partir de una muestra líquida, como ya es conocido en principio - a excepción de la nueva zona de control - a partir del actual estado de la técnica en muchas variantes. Por ejemplo el elemento de ensayo puede estar construido esencialmente a partir de materiales absorbentes, como por ejemplo, napa, membranas, papeles, etc. (véanse por ejemplo las patentes US 4.861.711, US-A 2002-0055126, WO 2005/111607), o efectuar el transporte de líquido mediante estructuras microfluidizadas (parcialmente accionadas por la acción de fuerzas externas como absorción, presión, centrifugación), o canales capilares (ver por ejemplo, la patente US 6.156.270).
El elemento de ensayo contiene una zona de reactivos, que a su vez contiene un conjugado analito-socio de unión, soluble en la muestra líquida (típicamente - caso de que el analito sea un antígeno o hapteno, un anticuerpo o un fragmento de anticuerpo inmunológicamente activo capaz de unirse al analito, o respectivamente - caso de que el analito sea un anticuerpo - a un antígeno o hapteno), y un marcador que sea visible directa o indirectamente, detectable ópticamente o electroquímicamente. Marcadores apropiados son por ejemplo las enzimas, los marcadores fluorescentes, los grupos electroquímicamente activos o los llamados marcadores directos como los marcadores de metal o carbono, o los látex coloreados. Esta zona recibe también el nombre de zona del conjugado.
La zona del conjugado puede servir como zona de trabajo de la muestra, o colocarse antes o después de una zona separada de trabajo de la muestra. Puede contener al lado del conjugado antes descrito, un analito-socio de unión, y el marcador, y también otro conjugado de un segundo socio de unión del analito (de nuevo típicamente un anticuerpo o un fragmento de anti-cuerpo inmunológicamente activo capaz de unirse con el analito) y una substancia marcadora, que es ella misma socia de un par de unión. La sustancia marcadora puede ser por ejemplo la biotina o la digoxigenina, y puede servir para inmovilizar un complejo sándwich formado por, el conjugado marcado, el analito, y el conjugado marcado de la zona de detección y/o la zona de control.
El elemento de ensayo comprende además una zona de detección, la cual contiene un socio de unión permanentemente inmovilizado, es decir, no soluble en la muestra líquida, para el analito o para los complejos que contienen el analito. El socio de unión inmovilizado es de nuevo típicamente un anticuerpo o un fragmento de anticuerpo, inmunológicamente activo, capaz de unirse al analito, o respectivamente un antígeno o un (poli-)hapteno. En el caso de que se emplee un conjugado marcado de los citados más arriba, los cuales llevan por ejemplo, biotina o respectivamente digoxigenina en unión con un socio de unión al analito, el socio de unión inmovilizado puede ser también estreptavidina o poliestreptavidina, o respectivamente un anticuerpo anti-digoxigenina.
Finalmente se encuentra en, o sobre el elemento de ensayo una zona de control, que contiene un socio de unión permanentemente inmovilizado para el conjugado, analito-socio de unión y la marca, por ejemplo en forma de un polihapteno inmovilizado, el cual actúa como un análogo del analito, y está en posición de unirse al analito-socio de unión del conjugado marcado. Es esencial según la invención, que la zona de control contenga además uno o varios socios de unión (n) permanentemente inmovilizados, para el analito o para el complejo que contiene el analito. Los socios de unión citados últimamente pueden escogerse a este respecto entre los mismos compuestos que se han descrito más arriba en conexión con los socios de unión inmovilizados de la zona de detección. Típicamente estos socios de unión inmovilizados son idénticos en la zona de detección y en la zona de control. Sin embargo, es posible también, que sean diferentes, por ejemplo, que en la zona de detección esté inmovilizado un socio de unión para un conjugado marcado con biotina (también por ejemplo, poliestreptavidina), y en la zona de control - junto al polihapteno -
se encuentre un anticuerpo anti-analito. En el caso últimamente citado, el anticuerpo anti-analito, inmovilizado adicionalmente en la zona de control, debe ser dirigido contra un (otro) epítopo independiente y por ello no reconocido por los anticuerpos del conjugado (conjugado marcado con biotina y conjugado marcado).
Otro objeto de la invención es un procedimiento para la detección de una analito a partir de una muestra líquida con ayuda del elemento de ensayo según la invención. La muestra (la cual puede ser líquida, o - en caso de que no sea líquida - está disuelta o suspendida en un líquido, por ejemplo, un tampón, y de esta forma pueda ser empleada), se aplica sobre el elemento de ensayo y se deja que alcance la zona de reactivos (zona del conjugado), en donde están presentes los reactivos de forma que sean capaces de migrar. En la zona del conjugado se pone en contacto el analito
- siempre que esté presente en la muestra - con el conjugado marcado, y reacciona con el complejo analito-conjugado. La mezcla de la muestra y el reactivo alcanza a continuación la zona de detección en donde por lo menos una parte del complejo analito-conjugado se une al socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito. El conjugado marcado que no ha reaccionado con el analito se une en la zona de control al socio de unión permanentemente inmovilizado para el conjugado. Además la parte de los complejos analito-conjugado, que no han sido captados en la zona de detección se unen en la zona de control al socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito.
La invención se aclara con más detalle, a la vista del ejemplo que sigue a continuación, y la figura anexa.
En la figura 1 está representada esquemáticamente una versión preferida de un elemento de ensayo según la invención en forma de una tira de ensayo inmunocromatográfica.
Las cifras y las letras de la figura, significan:
A -
zona de trabajo de la muestra y zona del conjugado
B -
zona de separación de los eritrocitos
C -
zona de detección
D -
zona de absorción
1 -
material de soporte
2 -
napa absorbente (desperdicios)
3 -
membrana cromatografía con tira de detección y tira de control
4 -
matriz de separación de los eritrocitos (napa de separación de la sangre)
5 -
napa de conjugado de oro (conjugado marcado)
6 -
napa de conjugado de biotina (conjugado marcado)
7 -
tira de detección (poliestreptavidina inmovilizada)
8 -
tira de control.
La tira de ensayo representada en la figura 1 corresponde - con excepción de la tira de control según la invención -
a la construcción y a la función de la tira de ensayo Roche Cardiac T Quantitative (Roche Diagnostics GmbH, Mannheim, Alemania) Troponin T. Pueden obtenerse tiras de ensayo análogas para la determinación de otros analitos (ver por ejemplo la patente US-2005-0118662-A1, en la cual se describe una correspondiente tira de ensayo NT-probBNP).
Sobre un material de soporte 1 de plástico, se encuentran una después de otra, i) una zona de entrega de la muestra A, la cual tiene un material de napa 5 con anticuerpo anti-analito-conjugado de oro, impregnado soluble, y un material de napa 6 con anticuerpo anti-analito-conjugado de biotina impregnado soluble, ii) una zona de separación de eritrocitos B, que contiene una napa de fibra de vidrio como matriz de separación de eritrocitos 4, el cual está en situación de separar los eritrocitos de la sangre entera y producir gran cantidad de plasma de sangre incoloro, iii) una zona de detección C, la cual contiene una membrana cromatográfica 3 de nitrocelulosa, en la cual o sobre la cual están inmovilizadas respectivamente una franja de detección de poliestreptavidina 7 y una franja de control 8, así como iv) una zona de absorción D con su napa absorbente, la cual facilita la migración de la muestra a través de la membrana cromatográfica 3, y al mismo tiempo sirve para la recepción de la muestra migrada como desperdicio.
El conjugado anticuerpo anti-analito - oro, (llamado también conjugado marcado) en la napa 5, y el conjugado anticuerpo anti-analito - biotina (llamado también conjugado marcado) en la napa 6, sirven para la formación de un sándwich con el analito; la poli estreptavidina inmovilizada en la membrana 3 sirve para la formación de la franja de detección 7.
La franja de control 8 según la invención, contiene en este caso junto al socio de unión permanentemente inmoviliza-do para el conjugado anticuerpo anti-analito - oro (es decir un polihapteno (o analito) específico para el anticuerpo, adicionalmente, un socio de unión permanentemente inmoviliza-do para los complejos que contienen el analito (es decir, en este caso la poliestreptavidina).
Esto tiene como consecuencia, que en el caso de una concentración de pequeña a media de analito, la franja de control 8 capta el conjugado marcado directa e inmunoespecificamente, principalmente vía unión con el conjugado polihapteno/analito. En este caso no funciona todavía la parte de sándwich estreptavidina-biotina de la franja de control 8, puesto que la pequeña cantidad formada de sándwich es captada casi cuantitativamente "corriente arriba" por la franja de detección 7.
En el caso de altas concentraciones de analito, fracasa el mecanismo de unión polihapteno-conjugado de la franja de control 8, puesto que el conjugado está ya saturado con el analito de la muestra. En este caso es captado sin embargo en forma de complejo sándwich (de conjugado marcado, analito y conjugado marcado), el conjugado presente del mecanismo estreptavidina biotina de la franja de control 8. Esto funciona dado que la tira de detección 7 condicionada cinéticamente, no capta el total del complejo sándwich y la parte a cromatografiar "corriente abajo" está unida por la franja de control 8.
En el caso de una concentración de analito extremada-mente alta, puede ocurrir en el formato sándwich de la franja de detección 7 el llamado "High-Dose-Hook-Effect" ("efecto gancho debido a la alta dosis"). La causa para ello se puede explicar como sigue: en el caso de una cantidad limitada de analito (déficit de antígeno respecto a la cantidad de anticuerpo presente en el elemento de ensayo) se une una molécula de antígeno a ambos socios de unión (anticuerpo con marcador y anticuerpo marcado) al mismo tiempo mediante un epítopo independiente. De esta manera se forma el complejo sándwich deseado y el analito se une tanto a un socio de unión el cual se ocupa de la inmovilización en la zona de detección 7 (aquí: anticuerpo biotinilado, el cual puede unirse a la estreptavidina), como también a un socio de unión marcado (aquí: anticuerpo marcado con oro), el cual cuida de la capacidad de detección del analito. En el caso de un gran exceso de analito (referido a la cantidad de conjugado señalizado y conjugado marcado) los dos socios del sándwich se unen (es decir el conjugado señalizado por un lado y el conjugado marcado por otro lado) cada vez, y dos moléculas de analito presentes independientes, de forma que en la zona de detección 7 se une en verdad al analito mediante el conjugado marcado, aunque éste debido a que no existe la unión con el conjugado marcado, no puede ser detectado.
Cuando aparece el efecto gancho debido a una alta dosis en la franja de detección 7, entonces ésta produce, a pesar de la alta concentración de analito, un resultado de ensayo negativo de analito. Una franja de control independiente del analito 8 (por ejemplo a base de un anticuerpo inmovilizado anticuerpo PAK<Fc\gamma de ratón>S-IgG), muestra en este caso un correcto funcionamiento del ensayo, lo cual finalmente conduce a una interpretación del ensayo falsamente negativa. En este caso sería propiamente deseable que la franja de control 8 se sometiera al mismo "efecto gancho debido a la alta dosis", como la franja de detección 7, y mediante el simultáneo fracaso el resultado de ensayo se mostrara como no válido (y con ello, por lo menos no falsamente negativo).
Este es exactamente el caso en la presente nueva tira de control 8, y debe considerarse como otra ventaja: debido a la alta concentración de analito de la muestra ya no existe al alcanzar la zona de control prácticamente ningún conjugado libre, es decir ningún conjugado marcado unido al analito, de manera que la parte de la franja de control 8 que figura sobre el socio de unión permanentemente inmovilizado para el conjugado marcado (aquí: polihapteno), en la mezcla muestra-reactivo, ya no encuentra ningún socio de unión. En consecuencia actúa tan solo la parte de la franja de control 8, basada sobre el socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o respectivamente los complejos que contienen el analito (aquí: mecanismo estreptavidina-biotina). Si ahora se impide la formación del sándwich mediante el citado efecto gancho debido a una alta dosis, fracasa junto a la franja de detección 7 también la franja de control 8. El resultado del ensayo es reconocido entonces por el usuario como "no válido" y no erróneamente como "negativo".
La invención no puede aplicarse solamente al "principio del sándwich indirecto" descrito en detalle más arriba, mediante el empleo de la unión estreptavidina-biotina. Es posible una generalización del "principio del sándwich directo". En este caso se inmoviliza un socio del sándwich irreversiblemente en la zona de la franja de detección. La franja de control contiene junto al polihapteno (dirigido contra el anticuerpo conjugado), adicionalmente el anticuerpo sándwich inmovilizado en la franja de detección. Hay que hacer notar, que en este caso el empleo alternativo de un antígeno en lugar de un polihapteno como socio de unión inmovilizado en la zona de control no es preferido, puesto que en la zona de la franja de control al mismo tiempo con el antígeno aplicado anticuerpo sándwich y a un complejo antígeno-anticuerpo ya se ha formado y con ello ambos mecanismos parciales de la nueva franja de control por lo menos parcialmente han sido "neutralizados". Por este motivo se prefiere el empleo de un polihapteno, puesto que este "epítopo sintético" está dirigido solamente contra el anticuerpo conjugado capaz de migración pero no contra el segundo anticuerpo sándwich. Con esto se proporciona la capacidad de funcionamiento.
Ejemplo 1
La invención se describe a continuación, a título de ejemplo, en una tira de ensayo para la detección de la troponina I cardíaca (cTn I, ó abreviadamente: Tn I) a partir de sangre completa.
a.) Elemento de análisis
Se preparan tiras de ensayo según la figura 1.
Sobre una lámina soporte de 5 mm de ancho y 78 mm de largo 1, de poliéster, (Melinex, 350 \mum de grueso, de Imperial Chemistry Industries, GB), se pegan con un adhesivo a fusión (Dynapol S 1358 de Hüls AG, Alemania).
- una napa de 1,5 mm de grueso, y 7 mm de largo, de 100 partes de fibra de vidrio (diámetro 0,49 a 0,58 \mum largo 1000 \mum) y 5 partes de fibras de polivinilalcohol (Kuralon VPB 105-2 de Kuraray) con un peso superficial de aproximadamente 180 g/m^{2} como zona de recogida de líquidos (desperdicios) 2 (zona de absorción D).
- una membrana de nitrato de celulosa de 1,5 cm de largo (tipo CN 11301 de Sartorius, Alemania) como zona de detección y zona de control conteniendo la membrana cromatográfica 3 (zona de detección C).
- una napa de 1,5 mm de grueso y 13 mm de largo, de 100 partes de fibras de vidrio y 10 partes de fibras de polivinilalcohol (ambas fibras análogas a las de la zona de recogida de líquidos) con un peso superficial de aproximada-mente 180 g/m^{2} como napa de separación de sangre 4 (zona de separación de los eritrocitos B).
- y dos napas de 18 mm ó respectivamente 20 mm de largo, de 80 partes de fibras de poliéster, 20 partes de lana de celulosa, y 20 partes de fibras de polivinilalcohol con un grueso de aproximadamente 0,32 mm y un peso superficial de aproximadamente 80 g/m^{2} (cuya preparación está descrita en la memoria de la patente europea EP 0 326 135, en el ejemplo 1), el cual contiene el conjugado de oro (napa de conjugado de oro 5), como zona con el socio marcado del par de unión específico y conteniendo el conjugado de biotina (napa de conjugado de biotina 6) como la otra zona con el socio marcado del par de unión específico,
cada vez fijados uno junto a otro ligeramente solapados.
Sobre la membrana de nitrato de celulosa anteriormente descrita de la zona de detección 3 se aplica mediante dosificación graduada una solución de estreptavidina acuosa (4,5 mg/ml). Para ello se selecciona la dosificación de tal manera (cantidad dosificada 0,1 ml/minuto, velocidad de la cinta 3 m/minuto), que aparece una franja con un ancho de aproximadamente 0,4 mm. Esta franja 7 sirve para la detección del analito a determinar, y contiene aproximadamente 0,8 \mug de estreptavidina por tira de ensayo.
A una distancia de aproximadamente 4 mm corriente abajo de la franja de estreptavidina, se aplica en idénticas condiciones de dosificación, una solución acuosa de Tn 1-polihapteno con 1 mg/ml (ver preparación del polihapteno más adelante), una solución de estreptavidina con 1 mg/ml ó una mezcla 1:1 de solución de polihapteno y solución de estreptavidina (1 mg/ml de cada uno). Esta franja 8 sirve como control de funcionamiento de la tira de ensayo y contienen o bien aproximadamente 0,15 \mug de polihapteno, y/o bien 0,15 \mug de estreptavidina por tira de ensayo.
La membrana se seca a continuación, al aire.
El polihapteno se obtiene como sigue: se prepara un péptido con una secuencia de aminoácidos, la cual corresponde al epítopo con los aminoácidos (aa) 27-43 de la troponina I cardíaca (véase FEBS, vol. 270; nº 1,2; página 57-61: "Molecular cloning of human cardiac troponin I using polymerase chain reaction" ("clonación molecular de la troponina I cardíaca humana, empleando la reacción en cadena de la polimerasa"), mediante una síntesis de péptidos clásica en fase sólida ya conocida por el experto. Como espaciador N- terminal para la unión a la proteína soporte se emplea un radical péptico compuesto de \beta-alanina, ácido \varepsilon-amino-caprónico, \beta-alanina y cisteína, de manera que el péptido tenga un peso molecular de 1716,13.
El péptido se copula a continuación en una relación molar 10:1 (péptido a proteína soporte) mediante una copulación MH(RPLA)/SH-péptido en albúmina de plasma de buey como proteína soporte.
El polihapteno se liofiliza a continuación en presencia de 40 mg/ml de trehalosa, y se disuelve en agua desmineralizada para la dosificación graduada.
El polihapteno se designará en adelante como PH, TnI (27-43)[UZU-Cys-43]amida.
La napa de conjugado de oro 5 se prepara como sigue: un sol de oro con un diámetro medio de partícula de aproximadamente 40 nm se prepara según el método de Frens (Frens, G., "Preparation of gold dispersions varying particle size: controlled nucleation for the regulation of the particle size in monodisperse gold suspensions" ("preparación de dispersiones de oro con tamaño de partícula variable: nucleación controlada para la regulación del tamaño de partícula en suspensiones monodispersas de oro") en Nature: Physical Science ("Naturaleza: Física"), 241 (1973), 20-22) mediante reducción de una solución de ácido tetracloroáurico al 0,01 por ciento en peso a ebullición con citrato trisódico.
La preparación del conjugado anticuerpo-oro se efectúa de acuerdo con el método de Roth, J. ("The colloidal gold marker system for light and electron microscopic cytochemistry" ("sistema de marcado con oro coloidal para la citoquímica microscópica con luz y electrónica"), en Bullock, G.R. y Petrusz, P., Eds., "Techniques in immunocytochemistry" ("Técnicas en inmunocitoquímica"), vol 2, Nueva York, Academic Press 1983, 216-284).
Para ello, después de enfriar la solución de sol de oro a temperatura ambiente, se ajusta el valor del pH del sol de oro con K_{2}CO_{3} 0,2 M de manera que resulte alrededor de 0,5 unidades del pH por encima del punto isoeléctrico del anticuerpo <cTn>. El anticuerpo monoclonal de ratón <cTnI>, con la denominación clónica M155, puede adquirirse comercialmente a partir del catálogo nº 4T21 de la firma HyTest (Turku, Finlandia). Este anticuerpo monoclonal reconoce el epítopo cTnI aa 27-43º.
La densidad óptica (OD) del sol de oro (extinción a 525 nm y 1 cm de iluminación) es típicamente de 1,0. El anti-cuerpo <cTnI> se añade en forma de solución acuosa, de forma que esta concentración después de la adición a la solución del sol de oro, sea de 1,2 \mug/ml. Después de 30 minutos de agitación a temperatura ambiente, se satura el conjugado de oro mediante la adición de una solución de albúmina de plasma de buey de alta concentración (concentración final en la solución de conjugado, 1 mg/ml).
Después de 30 minutos más de agitación a temperatura ambiente, se concentra el conjugado de oro saturado mediante ultrafiltración sobre una membrana de 30 KDa frente a un tampón de Tris 20 mM de pH 7,0, con una densidad óptica típicamente de 20. La solución del conjugado se guarda finalmente sobre 100 \muM de Brij 35 y 0,05% en peso de NaN_{3}, y se almacena enrollándola a 4ºC, hasta que es usada.
La napa de conjugado de oro 5 se impregna con la siguiente solución de impregnación: 50 mM de HEPES de pH 7,5; 1,0% en peso de albúmina de plasma de buey; 1,0% de sacarosa; 0,1% de Tween 20; conjugado de MAK<cTnI>M155-IgG-40 nm de sol de oro OD 4,5.
Para ello se trata la napa mixta poliesterlana de celulosa-polivinilalcohol, en primer lugar en una tina que contiene una solución de impregnación, a continuación se estruja mediante dos cilindros de acero inoxidable colocados a una distancia de 250 \mum, y finalmente se seca mediante un secador de circulación de aire a 60ºC. En las condiciones descritas, la absorción por impregnación de la napa es típicamente de 240 ml/m^{2}.
La napa de conjugado de biotina (6) se prepara como sigue: para la preparación del conjugado de biotina se emplea el anticuerpo monoclonal de ratón <cTnI> con la denominación de clon 16A11 (adquirible comercialmente mediante el catálogo nº 4T21 de la firma HyTest). Este anticuerpo monoclonal reconoce el epítopo cTn 1 aa 87-91.
A una solución de 10 mg/ml de IgG en 0,1 M de fosfato de potasio de pH 8,5, se añade un derivado éster de succinimida de la biotina en un exceso 8 veces molar. La mezcla se incuba durante 90 minutos a 25ºC con agitación. La reacción se interrumpe almacenando la solución con lisina a una concentración final de 10 mM. El reactivo sobrante de la biotinación se elimina mediante diálisis y se almacena en presencia de 6% en peso de sacarosa, hasta que se emplea, a -70ºC.
La napa de conjugado de biotina 6, se impregna con la siguiente solución de impregnación: 20 mM de Tris de pH 7,2; 50 mM de NaCl; 1,0% en peso de albúmina de plasma de buey; 1,0% en peso de sacarosa; 0,1% en peso de Tween 20 y 7 mg/litro de MAK<cTnI>M-16A11-IgG-biotina (XOSu 8:1). La impregnación y el secado tienen lugar de forma análoga a las condiciones empleadas en la preparación de la napa de conjugado de oro.
b.) Evaluación de las tiras de ensayo
Según el procedimiento descrito en a.) se prepararon las siguientes variantes de tiras de ensayo 3, que se diferencian solamente en la composición de la franja de control 8. En las tres variantes están contenidas las soluciones para la preparación de la franja de control 8.
Variante 1: 1 mg/ml de polihapteno [PH, TnI (27-43)]; tiras de ensayo con la clásica franja de control.
Variante 2: 1 mg/ml de estreptavidina; tiras de ensayo con dos franjas de detección con reactivo como franja de control.
Variante 3: 1 mg/ml de polihapteno y 1 mg/ml de estreptavidina; tiras de ensayo con franja de control según la invención.
Como ya se ha descrito anteriormente, todas las variantes de tiras de ensayo contienen una idéntica franja de detección 7 con 4,5 mg/ml de estreptavidina.
Para la evaluación de las tiras de ensayo se emplea una sangre de donante cTnI negativa, a la cual se añadieron cantidades crecientes del complejo cTnI-C-T (adquirible comercialmente del catálogo nº 8T62 de HyTest). Para ello se añadieron mediante pipeta, 150 \mul de sangre de donante almacenada, por tira de ensayo como muestra sobre la napa de conjugado de biotina 6, la cual sirve al mismo tiempo como zona de aplicación de la muestra, y el resultado del ensayo después de 15 minutos se evaluó visualmente por la aparición de una franja de detección y una franja de control así como para la cuantificación de la intensidad de la franja por medio de un aparato de medición (lector cardíaco Roche, Roche Diagnostics GmbH, nº de catálogo 1902229) fotométrica de reflexión. Se observa además un 100% de remisión por la falta de una franja en la zona de la franja de detección o la zona de la franja de control, mientras que por el contrario existe un 20% de remisión para las franjas de un rojo oscuro intenso, en la intensidad de las cuales, el sistema de detección del aparato de medición se encuentra en la saturación de color.
Los resultados están resumidos en la siguiente tabla:
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1
\vskip1.000000\baselineskip
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Los resultados se interpretan como sigue:
Franja de detección
Según lo esperado, la intensidad de la franja de detección aumenta en primer lugar con una concentración creciente de analito (disminución de los valores de remisión entre 1 ng/ml y 50 ng/ml de cTnI) se observa un máximo de intensidad (18% de remisión, es decir una saturación del color), para a continuación en extremadamente altas concentraciones de analito debido a su efecto gancho debido a la alta dosis condicionada por un formato sándwich, descender de nuevo. El citado efecto gancho debido a las dosis altas, conduce a una franja de detección de la tira de ensayo a 1000 ng/ml de cTnI a valores de la remisión cercanos al 100% (visualmente negativos) y con ello a una franja de detección falsamente negativa.
\newpage
Variante 1
Franja de control clásica
En ausencia de analito, el conjugado de oro mediante la unión M155-anticuerpo/polihapteno (aa 27-43) se enriquece casi cuantitativamente en la franja de control (20% de remisión). Con una concentración de analito creciente la intensidad del color de la franja de control disminuye, puesto que por un lado una gran parte del conjugado de oro en forma del complejo sándwich es captado en la franja de detección y por otro lado la parte de conjugado de oro que no ha sido captada en la franja de detección por la creciente concentración del analito presente ya está saturada, por todo lo cual ya no puede unirse más suficientemente al polihapteno de la franja de control. En este caso el conjugado de oro cromatografiado migra por encima de la franja de detección y por encima de la franja de control, a la napa de desperdicios 2, que se halla corriente abajo.
A partir de 50 ng/ml de cTnI en la muestra, esto conduce a un fracaso de la franja de control (visualmente negativa), aunque la franja de detección a esta concentración, y también a 250 ng/ml, es todavía claramente positiva.
Debido a que no aparece la franja de control, el usuario debe partir en este caso, aunque erróneamente, de un resultado de ensayo no válido.
Este hallazgo se corresponde con el estado actual de la técnica y aclara con ello las limitaciones de una franja de control de polihapteno, clásica.
Variante 2
Segunda franja de detección como franja de control
La segunda franja de detección de estreptavidina considerada como franja de control, no funciona naturalmente en ausencia de analito (en su función como franja de control), puesto que no se ha formado ningún complejo sándwich. El resultado del ensayo tendría que considerarse por ello no válido, aunque la primera franja de detección negativa confirma correctamente la ausencia de analito.
En presencia de analito, la franja de control de estreptavidina detecta, análogamente a la franja de detección, el complejo sándwich formado, aunque menos intensivamente, puesto que la mayor parte del complejo sándwich formado ya ha sido unido corriente arriba por la franja de detección.
A muy altas concentraciones de analito (1000 ng/ml de cTnI) no funciona tampoco, junto a la franja de detección, la franja de control, puesto que ambas están sujetas al mismo mecanismo (véase más arriba, el efecto gancho debido a la alta dosis).
Variante 3
Franja de control según la invención
Como puede deducirse de los valores medidos y las asignaciones visuales de la tabla, la franja de control muestra en ausencia de analito, un correcto resultado de ensayo (mediante el mecanismo polihapteno-conjugado de oro).
En la zona media de concentraciones, la franja de control genera sobre ambos mecanismos inmunológicos, señales que se suman.
Por encima de la zona superior de concentraciones (50-250 ng/ml de cTnI) la franja de control genera la señal de medición, esencialmente mediante el mecanismo estreptavidina-biotina (la "clásica" franja de control de polihapteno, se encuentra en este caso ya en la saturación del analito y por ello no funciona). Si existe un efecto gancho debido a la alta dosis, en la franja de detección (1000 ng/ml de cTnI), fracasa también la franja de control, como era deseable.
A partir de la suma de estas propiedades se desprende que este nuevo mecanismo de la franja de control es mejor que las versiones técnicas conocidas hasta ahora.

Claims (10)

1. Elemento de ensayo para la ejecución de un ensayo inmunológico en sándwich, para la determinación de un analito a partir de una muestra líquida, la cual contiene
- una zona de reactivo, la cual contiene un conjugado soluble en la muestra líquida, de un socio de unión con el analito y un marcador que puede detectarse directa o indirectamente, visualmente, ópticamente o electroquímicamente;
- una zona de detección, la cual contiene un socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito; y
- una zona de control, la cual contiene un socio de unión permanentemente inmovilizado para el conjugado del socio de unión con el analito y un marcador,
caracterizado porque,
la zona de control contiene además uno o varios socios de unión permanentemente inmovilizados para el analito o para los complejos que contienen el analito.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Elemento de ensayo según la reivindicación 1, caracterizado porque,
los socios de unión permanentemente inmovilizados para el analito o para los complejos que contienen el analito en la zona de detección y en la zona de control, son iguales.
\vskip1.000000\baselineskip
3. Elemento de ensayo según la reivindicación 1, caracterizado porque,
los socios de unión permanentemente inmovilizados para el analito o para los complejos que contienen el analito en la zona de detección y en la zona de control, son distintos.
\vskip1.000000\baselineskip
4. Elemento de ensayo según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque,
el socio de unión permanentemente inmovilizado para el conjugado de un socio de unión con el analito y un marcador en la zona de control, es un polihapteno.
\vskip1.000000\baselineskip
5. Elemento de ensayo según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque,
el socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito en la zona de detección, se ha escogido del grupo formado por:
- los anticuerpos o un fragmento inmunológicamente activo de un anticuerpo contra el analito;
- los antígenos, los haptenos o los polihaptenos; y
- la estreptavidina o la poliestreptavidina.
\vskip1.000000\baselineskip
6. Elemento de ensayo según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque,
el socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito en la zona de control se ha escogido del grupo formado por:
- los anticuerpos o un fragmento inmunológicamente activo de un anticuerpo contra el analito;
- los antígenos, los haptenos o los polihaptenos; y
- la estreptavidina o la poliestreptavidina.
\vskip1.000000\baselineskip
7. Elemento de ensayo según una cualquiera que de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque,
el socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito en la zona de detección es un anticuerpo o un fragmento inmunológicamente activo de un anticuerpo contra el analito; y
el socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito en la zona de control es un anticuerpo o un fragmento inmunológicamente activo de un anticuerpo contra el analito.
\vskip1.000000\baselineskip
8. Elemento de ensayo según una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, caracterizado porque,
el socio de unión permanentemente inmovilizado para los complejos que contienen el analito, en la zona de detección es la estreptavidina o la poliestreptavidina; y
el socio de unión permanentemente inmovilizado para los complejos que contienen el analito en la zona de control es la estreptavidina o la poliestreptavidina.
\vskip1.000000\baselineskip
9. Elemento de ensayo según la reivindicación 1, caracterizado porque, el socio de unión permanentemente inmovilizado para los complejos que contienen el analito en la zona de detección, es la estreptavidina o la poliestreptavidina; y
el socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito y/o para los complejos que contienen el analito en la zona de control
- es un anticuerpo o un fragmento inmunológicamente activo de un anticuerpo contra el analito; y/o
- es la estreptavidina o la poliestreptavidina.
\vskip1.000000\baselineskip
10. Procedimiento para la detección de un analito a partir de una muestra líquida, en donde
- la muestra se entrega sobre un elemento de ensayo según una de las reivindicaciones 1 a 9;
- el analito - en tanto está presente en la muestra - reacciona con el conjugado marcado para dar un complejo analito-conjugado;
- el complejo analito-conjugado en la zona de detección se une al socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito; y
- el conjugado marcado que no ha reaccionado con el analito en la zona de control, se une al socio de unión permanentemente inmovilizado para el conjugado; y
- el complejo analito-conjugado en la zona de control, se une al socio de unión permanentemente inmovilizado para el analito o para los complejos que contienen el analito.
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