ES2298582T3 - Agente analgesico para recien nacidos o fetos. - Google Patents
Agente analgesico para recien nacidos o fetos. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2298582T3 ES2298582T3 ES03766483T ES03766483T ES2298582T3 ES 2298582 T3 ES2298582 T3 ES 2298582T3 ES 03766483 T ES03766483 T ES 03766483T ES 03766483 T ES03766483 T ES 03766483T ES 2298582 T3 ES2298582 T3 ES 2298582T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- xenon
- formalin
- use according
- fetus
- air
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
- A61P25/04—Centrally acting analgesics, e.g. opioids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Public Health (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Pain & Pain Management (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Rheumatology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Neurology (AREA)
- Neurosurgery (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Una plancha de impresión en huecograbado que tiene una serie de rebajes de tinta de formación de imagen; y, en cada rebaje, una estructura de retención de tinta incluyendo una o varias series regulares de bloques elevados discontinuos que se extienden desde la base del rebaje a no más de 60% de la altura del rebaje, zanjas de retención de tinta que se extienden entre los bloques elevados, y donde no más de 30% de la zona de la base de rebaje está provisto de bloques elevados.
Description
Agente analgésico para recién nacidos o
fetos.
La presente invención se refiere al campo de la
analgesia. Más particularmente, la invención se refiere a un agente
analgésico adecuado para su utilización en recién nacidos y/o
fetos.
El feto y el recién nacido humanos son conocidos
porque experimentan sensación de dolor [Anand KJS et al.,
New Engl. J. Med. 1987; 317:1321-1329;
Fitzgerald M., Br. Med. Bull 1991;
47:667-75]. Sin embargo, es de mayor interés que el
dolor no tratado en el recién nacido puede afectar desfavorablemente
al desarrollo del sistema nervioso central dando como resultado
consecuencias fisiológicas y psicológicas a largo plazo [Taddio A.,
et al., Lancet 1997; 329:599-603;
Graham Y.P. et al., Dev. Psychopath 1999;
11:545-565; Anand KJS et al., Biol.
Neonate 2000; 77:69-82; Ruda MA. et al.,
Science 2000; 289:628-630]. Como
consecuencia, la terapia analgésica apropiada es aún más importante
en el tratamiento anestésico de los muy jóvenes que en los
adultos.
Se ha utilizado óxido nitroso (N_{2}O) para
anestesia clínica en jóvenes y viejos durante más de 150 años y
continúa siendo el gas anestésico más frecuentemente utilizado. La
utilización de N_{2}O en el paciente quirúrgico pediátrico se
basa en la suposición de que su eficacia anestésica y analgésica
iguala la apreciada en adultos [Eger EI., Nitrons Oxide/N_{2}O;
Elsevier, Nueva York, 1985]. Sin embargo, las expectativas de que
los fármacos analgésicos eficaces en adultos ejerzan los mismos
efectos beneficiosos en los recién nacidos han sido refutadas por
el reciente informe de los autores en el que el óxido nitroso
(N_{2}O) es eficaz en ratas neonatales debido a que las vías de
dolor inmaduro no pueden activar la vía inhibidora descendente en
respuesta a los estímulos nociceptivos [Fitzgerald M. et al.,
Brain Res. 1986; 389:261-70; van Praag H.,
Frenk H., Dev. Brain Res. 1991; 64:71-76].
Los experimentos han demostrado que N_{2}O carece de efectos
antinociceptivos contra la estimulación térmica [Fujinaga M. et
al., Anesth. Analg. 2000; 91:6-10] e
inflamatoria [Ohashi Y. et al., Pain 2002;
100:7-18] en ratas de 3 semanas de vida. Si fuera
extrapolable a seres humanos, esto significaría que el N_{2}O es
eficaz como agente analgésico en pacientes hasta la etapa en que el
niño que empieza a andar e incluyendo ésta. Un razonamiento similar
se pensó aplicar a la utilización del xenón como agente
analgésico.
La presente invención pretende proporcionar un
agente analgésico capaz de proporcionar alivio eficaz al dolor en
recién nacidos y/o fetos que alivie uno o más de los problemas
mencionados anteriormente.
En un primer aspecto, la presente invención se
refiere a la utilización de xenón en la preparación de un
medicamento destinado a proporcionar analgesia en un recién nacido
y/o a un feto.
En un segundo aspecto, la presente invención se
refiere a la utilización de xenón para la preparación de un
medicamento que debe administrarse a la madre de un feto para
proporcionar analgesia al feto, en la que el xenón está en una
cantidad terapéuticamente eficaz tanto para la madre como para el
feto.
Como se mencionó anteriormente, en un amplio
aspecto, la presente invención se refiere a la utilización de xenón
como agente analgésico en recién nacidos y/o fetos.
Más específicamente, la invención se refiere a
la utilización de xenón en la preparación de un medicamento
destinado a proporcionar analgesia en un recién nacido.
Sorprendentemente, se ha descubierto que el
xenón es capaz de proporcionar analgesia eficaz en el recién nacido,
a pesar de las indicaciones de la técnica anterior en sentido
contrario. De hecho, debe observarse que la técnica anterior ni ha
descubierto ni sugerido la utilización de xenón como agente
analgésico en neonatos.
En una forma de realización preferida, el
neonato es un mamífero en las cuatro primeras semanas tras el
nacimiento. Más preferentemente, el recién nacido es un mamífero en
las dos primeras semanas, incluso más preferentemente, la primera
semana tras el nacimiento.
Aún más preferentemente, el recién nacido es un
ser humano.
El xenón es un gas químicamente inerte cuyas
propiedades anestésicas se conocen desde hace más de 50 años
[Lawrence J.H. et al., J. Physiol. 1946; 105:197-204]. Desde su primera utilización en cirugía [Cullen S.C. et al., Science 1951; 113:580-582], numerosos grupos de investigación han demostrado que presenta unas propiedades farmacológicas excelentes, incluyendo la ausencia de subproductos metabólicos, analgesia profunda, comienzo y recuperación rápidos y efectos mínimos sobre el sistema cardiovascular [Lachmann B. et al., Lancet 1990; 335:1413-1415; Kennedy R.R. et al., Anaesth. Intens. Care 1992; 20:66-70; Luttropp H.H. et al., Acta Anaesthesiol. Scand. 1994; 38:121-125; Goto T. et al., Anesthesiology 1997; 86:1273-1278; Marx T. et al., Br. J. Anaesth. 1997; 78:326-327].
[Lawrence J.H. et al., J. Physiol. 1946; 105:197-204]. Desde su primera utilización en cirugía [Cullen S.C. et al., Science 1951; 113:580-582], numerosos grupos de investigación han demostrado que presenta unas propiedades farmacológicas excelentes, incluyendo la ausencia de subproductos metabólicos, analgesia profunda, comienzo y recuperación rápidos y efectos mínimos sobre el sistema cardiovascular [Lachmann B. et al., Lancet 1990; 335:1413-1415; Kennedy R.R. et al., Anaesth. Intens. Care 1992; 20:66-70; Luttropp H.H. et al., Acta Anaesthesiol. Scand. 1994; 38:121-125; Goto T. et al., Anesthesiology 1997; 86:1273-1278; Marx T. et al., Br. J. Anaesth. 1997; 78:326-327].
\global\parskip0.900000\baselineskip
Se ha descubierto recientemente que el xenón
(que se equilibra rápidamente en el cerebro) es un antagonista de
NMDA [Franks N.P. et al., Nature 1998; 396:324]. Los
estudios mecanísticos en neuronas del hipocampo cultivadas han
demostrado que el xenón al 80%, que conservará anestesia quirúrgica,
reduce las corrientes activadas por NMDA hasta en un 60%. Esta
potente inhibición del receptor de NMDA explica algunas de las
características importantes de las propiedades farmacológicas y es
probable que sea instrumental en los efectos anestésicos y
analgésicos de este gas inerte.
La utilización de xenón en una aplicación
farmacéutica se describe en el documento WO 00/76545, en tanto que
la utilización de xenón como neuroprotector se describe en el
documento WO 01/08692. Ninguna solicitud de patente describe la
posibilidad de que el xenón sea un analgésico eficaz para recién
nacidos o fetos.
La ventaja de utilizar un gas inerte y volátil
tal como el xenón como agente analgésico es que la molécula puede
eliminarse rápidamente por la respiración. Se cree actualmente que
el xenón es una sustitución potencial del N_{2}O [Rossaint R.
et al., Anesthesiology 2003; 98:6-13].
En seres humanos, el xenón tiene una concentración alveolar mínima
(MAC) del 71% atm [Lynch C. et al., Anesthesiology
2000; 92:865-70] que es aún inferior en las
pacientes femeninas mayores (51% atm) [Goto T. et al.,
Anesthesiology 2002; 97:1129-32] y por lo
tanto es más potente que el N_{2}O (MAC = 104%) [Hornbein T.F.
et al., Anesth. Analg. 1982;
61:553-6]. El xenón presenta una inducción y
emergencia más rápidas [Goto T. et al., Anesthesiology
1997; 86:1273-8; Rossaint R. et al.,
Anesthesiology 2003; 98:6-13] debido a su
coeficiente de partición bajo del gas en la sangre (0,115) [Goto T.
et al., Br. J. Anaesth. 1998;
80:255-6], carece de efectos teratógenos [Lane G.A.
et al., Science 1980; 210:899-901;
Burov N.E. et al., Anesteziol Reanimatol 1999;
6:56-60], es menos perjudicial para el medio
ambiente [Goto T., Can. J. Anaesth. 2002;
49:335-8] y presenta un riesgo menor de hipoxia de
difusión [Calzia E. et al., Anesthesiology 1999;
90:829-3].
Los estudios realizados por el solicitante
investigaron la eficacia del xenón contra la nocirrecepción
provocada por formalina reflejada por el comportamiento y la
expresión de c-Fos (marcador de activación neuronal)
en las cohortes de ratas de varias edades. Mayores detalles de
estos experimentos se esbozan en los ejemplos adjuntos.
En resumen, se expusieron cuatro cohortes de
ratas Fisher de 7, 19, 28 días de vida y más de 77 días (adultas)
tanto a aire o a xenón al 70%. Se utilizó experimentación plantar en
formalina para simular la estimulación quirúrgica, y ésta se evaluó
utilizando procedimientos inmunohistoquímicos (tinción con
c-Fos) y de comportamiento. La administración de
formalina produjo una respuesta nociceptiva típica observada tanto
en el comportamiento como inmunohistoquímicamente en cada grupo de
edad durante la exposición al aire. Sin embargo, estas respuestas
fueron atenuadas de manera significativa por el xenón; en otras
palabras, se demostró que el xenón ejerce una respuesta
antinociceptiva frente a la inyección de formalina en ratas Fischer
en cada una de las cuatro etapas del desarrollo, es decir, de 7, 19
y 28 días así como en adultos. Estos datos son cualitativamente
diferentes de los descritos recientemente con N_{2}O [Ohashi Y.
et al., Pain 2002; 100:7-18] en el
que no se observó ningún efecto antinociceptiva (ni en el
comportamiento ni por inmunohistoquímica) en animales más jóvenes de
23 días de edad.
La presente invención se refiere además a la
utilización de xenón en la preparación de un medicamento destinado
a proporcionar analgesia en un feto. En esta forma de realización de
la invención, el xenón se administra preferentemente a la madre
antes o durante el parto.
Durante el nacimiento, el feto se somete a
estrés mecánico que produce la activación de series de reacciones
de dolor. La presente invención demuestra que el impacto de la
activación de la vía del tratamiento del dolor en seres fetales
puede mitigarse mediante la administración de xenón.
Es destacable que hasta el momento, no existe
ninguna enseñanza o sugerencia en la técnica anterior que indique
que pueda utilizarse xenón para proporcionar analgesia en fetos.
En una forma de realización preferida, se
utiliza xenón en combinación con uno u otros agentes
farmacéuticamente activos más. El agente puede ser cualquier agente
farmacéuticamente activo adecuado incluyendo agentes anestésicos o
sedantes que favorezcan la actividad GABAérgica. Ejemplos de dichos
agentes GABAérgicos incluyen isoflurano, propofol y
benzodiazapinas.
El xenón puede utilizarse también en combinación
con uno u otros agentes analgésicos más. Los agentes analgésicos
adecuados pueden incluir agonistas alfa-2
adrenérgicos, opioides o fármacos antiinflamatorios no estereoideos.
Ejemplos de agonistas alfa-2 adrenérgicos adecuados
incluyen clonidina, detomidina, medetomidina, brimonidina,
tizanidina, mivazerol, guanabenz, guanfacina o dexmedetomidina.
El medicamento de la presente invención puede
incluir también otros ingredientes activos tales como los
bloqueadores del canal de calcio de tipo L, bloqueadores del canal
de calcio de tipo N, antagonistas de la sustancia P, bloqueadores
del canal del sodio, bloqueadores del receptor purinérgico o
combinaciones de los mismos.
En una forma de realización muy preferida de la
invención, el xenón se administra por inhalación. Más
preferentemente, el xenón se administra por inhalación de una
mezcla de xenón/aire del 20 al 70% v/v.
En otra forma de realización preferida, el
medicamento está en forma líquida. Para la administración
parenteral, puede utilizarse el medicamento en forma de una
solución acuosa esterilizada que puede contener otras sustancias,
por ejemplo suficientes sales o monosacáridos para hacer la solución
isotónica con la sangre.
\global\parskip1.000000\baselineskip
En una forma de realización más preferida, se
utiliza xenón en combinación con un vehículo, diluyente o excipiente
farmacéuticamente aceptable.
Los vehículos o diluyentes aceptables para
utilización terapéutica son bien conocidos en la técnica
farmacéutica, y están descritos, por ejemplo, en Remington's
Pharmaceutical Sciences, Mack Publishing Co. [A. R. Gennaro edit.
1985].
La selección del vehículo, excipiente o
diluyente farmacéutico puede realizarse con respecto a la vía de
administración deseada y a la práctica farmacéutica habitual.
Ejemplos de vehículos adecuados incluyen lactosa, almidón, glucosa,
metilcelulosa, estearato de magnesio, manitol, sorbitol y similares.
Ejemplos de diluyentes adecuados incluyen etanol, glicerol y
agua.
El medicamento puede comprender como vehículo,
excipiente o diluyente, o además de éste, cualquier/cualesquiera
aglutinante(s), lubricante(s), agente(s) de
suspensión, agente(s) de recubrimiento, agente(s)
solubilizante(s)
adecuado(s). Ejemplos de dichos excipientes adecuados para las diversas formas diferentes de composiciones farmacéuticas descritas en la presente invención pueden encontrarse en el ``Handbook of Pharmaceutical Excipients, 2ª edición, (1994), editado por A. Wade y P.J. Weller.
adecuado(s). Ejemplos de dichos excipientes adecuados para las diversas formas diferentes de composiciones farmacéuticas descritas en la presente invención pueden encontrarse en el ``Handbook of Pharmaceutical Excipients, 2ª edición, (1994), editado por A. Wade y P.J. Weller.
Pueden proporcionarse conservantes,
estabilizantes, colorantes e incluso agentes saborizantes en la
composición farmacéutica. Ejemplos de conservantes incluyen el
benzoato sódico, ácido sórbico y ésteres del ácido
p-hidroxibenzoico. Pueden utilizarse también
antioxidantes y agentes de suspensión.
Hasta el momento, un problema significativo que
ha impedido la utilización de xenón como nuevo anestésico es su
elevado coste y la necesidad de utilizar aparatos complejos para
minimizar el volumen utilizado (sistemas de flujo bajo), junto con
la necesidad de purificar el gas para su reutilización. Un problema
adicional es que la potencia del xenón es relativamente baja. Como
consecuencia, se ha sugerido que los anestésicos volátiles
generales pueden solubilizarse en una emulsión de lípido y
administrarse por vía intravenosa [Eger R.P. et al., Can.
J. Anaesth. 1995; 42:173-176]. Es sabido en la
técnica que la anestesia local puede provocarse inyectando por vía
intradérmica microgotitas de un anestésico general en forma líquida
[Haynes D.H., patentes US nº 4.725.442 y nº 44.622.219].
Típicamente, estas microgotitas se recubren con una capa
unimolecular de fosfolípido y permanecen estables en soluciones
fisiológicamente compatibles. Un procedimiento similar se describe
en una reciente solicitud de patente que propone que el xenón puede
administrarse de este modo [Georgieff M., solicitud de patente
europea nº 864329-A1].
Por lo tanto, en una forma de realización aún
más preferida, el medicamento está en forma de emulsión lipídica. A
título de ejemplo, una formulación intravenosa contiene típicamente
una emulsión lipídica (tal como las emulsiones Intralipid®10,
Intralipid®20, Intrafat®, Lipofundin®S o Liposyn®, o una formulada
especialmente para maximizar la solubilidad) para aumentar
suficientemente la solubilidad del gas o del anestésico volátil
hasta conseguir el efecto clínico deseado. Información adicional
sobre emulsiones lipídicas de esta clase puede encontrarse en G.
Kleinberger y H. Pamperl, Infusionstherapie,
108-117 (1983) 3.
La fase lipídica de la presente invención que
disuelve o dispersa el gas se forma típicamente a partir de ésteres
de ácido graso de cadena larga y media saturados e insaturados que
contienen 8 a 30 átomos de carbono. Estos lípidos forman liposomas
en solución acuosa. Los ejemplos incluyen aceite de pescado y
aceites vegetales tales como el aceite de soja, el aceite de cardo
o el aceite de semillas de algodón. Las emulsiones lipídicas de la
invención son típicamente emulsiones de aceite en agua en las que la
proporción de grasa en la emulsión es convencionalmente del 5 al
30% en peso, y preferentemente del 10 al 20% en peso. Las emulsiones
de aceite en agua de esta clase se preparan a menudo en presencia
de un agente emulsionante tal como un fosfolípido de soja.
Los lípidos que forman los liposomas de la
presente invención pueden ser naturales o sintéticos e incluyen
colesterol, glicolípidos, esfingomielina, glucolípidos,
glucoesfingolípidos, fosfatidilcolina, fosfatidiletanolamina,
fosfatidilserina, fosfatidilglicerol y fosfatidilinositol.
Las emulsiones lipídicas de la presente
invención pueden comprender también componentes adicionales. Estos
pueden incluir antioxidantes, aditivos que hacen que la osmolaridad
de la fase acuosa que rodea la fase lipídica isotónica con la
sangre, o polímero que modifican la superficie de los liposomas.
Se ha demostrado que pueden añadirse cantidades
apreciables de xenón a una emulsión lipídica. Incluso por los
procedimientos más sencillos, a 20ºC y a presión normal, el xenón
puede disolverse o dispersarse en concentraciones de 0,2 a 10 ml o
más por ml de emulsión. La concentración de gas disuelto depende de
numerosos factores, incluyendo la temperatura, la presión y la
concentración de lípido.
Las emulsiones lipídicas de la presente
invención pueden cargarse con un anestésico gaseoso o volátil. En
general, se rellena un dispositivo con la emulsión y anestésicos
como gases o vapores se pasan a través de burbujas de vidrio
sinterizado sumergido en la emulsión. Se deja que la emulsión se
equilibre con el gas o vapor anestésico a una presión parcial
seleccionada. Cuando se almacenan en recipientes herméticos de gas,
estas emulsiones lipídicas presentan estabilidad suficiente para que
el anestésico no se libere como gas durante periodos de
almacenamiento convencionales.
Las emulsiones lipídicas de la presente
invención pueden cargarse de modo que el xenón esté en el nivel de
saturación. Alternativamente, el xenón puede estar presente en
concentraciones más bajas con la condición, por ejemplo, de que la
administración de la emulsión produzca la actividad farmacéutica
deseada.
En una forma de realización preferida, el
medicamento está en forma adecuada para ser administrado por vía
intravenosa (bien por administración a emboladas o por infusión),
por vía neuraxial (ya sea subdural o subaracnoide) o por vía
transdérmica.
El medicamento de la presente invención puede
administrarse también en forma de pomada o crema (emulsión lipídica
o liposomas) aplicada por vía transdérmica. Por ejemplo el
medicamento de la presente invención puede incorporarse en una
crema constituida por una emulsión acuosa de polietilenglicoles o
parafina líquida. Como alternativa, el medicamento de la presente
invención puede incorporarse, a una concentración entre 1 y 10% en
peso, en una pomada constituida por una cera blanca o una base de
parafina blanca blanda junto con estabilizantes y conservantes
según pueda necesitarse. Estas pomadas o cremas son adecuadas para
el alivio local del dolor y pueden aplicarse directamente al tejido
dañado, con frecuencia con ayuda de un cierre de la herida
opcionalmente hermético al aire.
Las concentraciones empleadas en la formulación
del medicamento pueden ser la concentración mínima requerida para
conseguir el efecto clínico deseado. Es habitual que un médico
determine la dosis existente que sea la más adecuada para cada
paciente, y esta dosis variará con la edad, el peso y la respuesta
de cada paciente. Pueden existir, desde luego, casos individuales
en los que se merezcan intervalos de dosis mayores o menores y
dichos casos estén comprendidos dentro del alcance de la presente
invención.
El medicamento de la presente invención puede
estar destinado a la administración humana o a la administración
animal.
Por lo tanto, el medicamento de la presente
invención puede utilizarse también como medicamento animal. A este
respecto, la invención se refiere además a la utilización de xenón
en la preparación de un medicamento veterinario para proporcionar
analgesia en animales recién nacidos. Preferentemente, el
medicamento de la presente invención comprende además un diluyente,
excipiente o vehículo veterinariamente aceptable.
Para la utilización veterinaria, el medicamento
de la presente invención, o una formulación aceptable desde el
punto de vista veterinario del mismo, se administra típicamente de
acuerdo con la práctica veterinaria normal y el cirujano
veterinario determinará el régimen de dosificación y la vía de
administración que sea la más apropiada para un determinado
animal.
Un aspecto adicional de la invención se refiere
a la utilización de xenón para la preparación de un medicamento que
debe administrarse a la madre de un feto para proporcionar analgesia
en el feto, en la que el xenón está en una cantidad
terapéuticamente eficaz tanto para la madre como para el feto.
En una forma de realización preferida el xenón
se administra a la madre antes del parto o durante el mismo.
Preferentemente, el xenón alivia el dolor asociado al estrés
mecánico experimentado por el feto durante el parto.
De manera ventajosa, la administración de xenón
al feto a través de la madre presenta la utilidad simultánea de
aliviar el dolor por el parto experimentado por la madre la
administración. Por lo tanto, la administración de xenón a la madre
antes o durante el parto presenta el efecto doble de proporcionar
alivio del dolor tanto al feto como a la madre.
La presente invención se describe con mayor
detalle mediante los siguientes ejemplos no limitativos y haciendo
referencia a las siguientes Figuras, en las que:
La Figura 1 presenta las secciones transversales
de la médula espinal a nivel lumbar teñidas con
c-Fos en ratas Fischer de 7 días de vida después de
recibir formalina. La Figura 1A presenta una sección tratada con
aire/formalina, mientras que la Figura 1B presenta una sección
tratada con xenón/formalina.
La Figura 2 presenta las secciones transversales
de la médula espinal a nivel lumbar teñidas con
c-Fos en ratas Fischer de 7 días de vida después de
recibir formalina. La Figura 2A presenta una sección tratada con
aire/formalina, mientras que la Figura 2B presenta una sección
tratada con N_{2}O/formalina.
La Figura 3 presenta un diagrama esquemático del
aparato experimental y del sistema de administración de gas en
círculo cerrado. Este sistema comprendía una cámara anestésica, una
bolsa de caucho, una bomba de aire y un monitor de xenón (modelo
439xe, Air product, UK).
La Figura 4 presenta unas curvas de puntuación
nociceptiva de los grupos de cuatro edades en crías y adultos
Fischer de 7, 19 y 28 días con dos subtratamientos (aire + formalina
y Xe + formalina). La ordenada refleja la intensidad nociceptiva
(los valores menores indican comportamiento menos nociceptiva). La
abscisa indica el periodo de tiempo tras la inyección de formalina
(min.). La respuesta de comportamiento bifásico clásico a la
formalina puede apreciarse en el grupo que recibe aire.
\newpage
La Figura 5 presenta una sección representativa
de las médulas espinales a nivel lumbar de la médula espinal que
muestran la respuesta de c-Fos a la inyección de
formalina en crías de rata neonatas de 7, 19 y 28 días y en un
adulto que recibe aire (columna izquierda) o xenón (columna
derecha).
La Figura 6 presenta el número (media \pm SEM,
n = 4) de células positivas a c-Fos a nivel
lumbar en respuesta a la inyección de formalina de los cuatro
animales de los grupos por edad que reciben aire (barra negra) o
70% dexenón/20% de O_{2}/10% de N_{2} (Xe) (barra de puntos) o
en respuesta a la inyección salina de los cuatro grupos por edad
que reciben aire (barra blanca). *P<0,01, **P<0,001 en
comparación con el grupo de aire + formalina en la zona
correspondiente. +P<0,01, ++P<0,001 en comparación con xenón
+ formalina. Las figuras en la columna de la izquierda representan
la expresión c-Fos homolateral asociada con la
inyección y las de la columna de la derecha representan la expresión
c-Fos del lado contrario asociada con
la inyección. Desde los 19 días de edad hasta adultos, láminas
I-II (área superficial), láminas
II-IV (área del propio núcleo), láminas
V-VI (área del cuello) y láminas
VII-X (área ventral) en la sección de la médula
espinal se presentan por A/B, C, D y E como equivalentes a las cinco
zonas en crías de 7 días de vida.
La Figura 7 presenta el número (media \pm SEM,
n = 3) de células positivas a c-Fos por
sección a nivel lumbar de la médula espinal en respuesta a la
inyección de formalina de los cuatro animales de los grupos por
edad que reciben aire (barra negra) o 70% de xenón/20% de
O_{2}/10% de N_{2} (Xe) (barra de puntos). No se encontraron
diferencias entre el correspondiente grupo de edad.
Se investigó la eficacia analgésica del xenón en
una cría de rata neonata. Es conocido que una cría de rata neonata
de 7 días es equivalente desde el punto de vista del desarrollo a un
feto en términos totalmente humanos con respecto a las series de
reacciones de tratamiento del dolor.
Se inyectó a una rata de 7 días de vida
formalina en la pata trasera durante la exposición a aire o xenón
(70% v/v). 90 minutos después se sacrificó el animal y se extirpó la
médula espinal; se buscaron pruebas de la activación de la vía de
tratamiento de dolor mediante formalina haciendo el recuento del
número de neuronas positivas a cFos en el asta posterior de la
médula espinal.
En la Figura 1, el xenón atenuó casi
completamente las neuronas positivas a c-Fos
provocadas por formalina (aire). En comparación una dosis
normalmente analgésica de óxido de nitrógeno en la rata adulta no
cambió las neuronas positivas a c-Fos provocadas
por formalina (Figura 2).
De estos resultados, puede sacarse en conclusión
que el xenón interrumpe el tratamiento del dolor de modo que las
señales de dolor no se trasladan al cerebro y por consiguiente el
dolor, así como las consecuencias a largo plazo del dolor no
tratado, se mitigan en la población de neonatos.
El protocolo del estudio fue aprobado por el
Home Office (UK), y se hicieron todos los esfuerzos para minimizar
el sufrimiento animal y el número de animales utilizados. Se
utilizaron ratas Fischer para el estudio completo (B&K
Universal, Grimston Aldbrough Hull, UK). Se proporcionó a las ratas
pienso y agua a discreción, e iluminación artificial entre las 6
a.m. y las 6 p.m. Se determinó la edad de cada animal a partir de
del peso corporal, basándose en una curva de crecimiento creada
previamente (Hashimoto et al., 2002). La fecha de nacimiento
se definió como 0 días de edad). Se realizaron experimentos en crías
de rata de 7, 19 y 28 días de vida y en ratas adultas (11 y 12
semanas de vida).
Dentro de cada grupo de edad, había tres
cohortes (n = 3 - 4) cohortes "aire + formalina",
"xenón + formalina" y "aire + solución salina". En el
grupo aire + formalina, se inyectó a los animales expuestos al aire
con formalina al 5% en la superficie plantar de su pata trasera
izquierda por vía subcutánea. En el grupo xenón + formalina, los
animales expuestos a 70% de Xe/20% de O_{2}/10% de N_{2} se
inyectaron con formalina al 5% como se describió anteriormente. En
el grupo de aire + solución salina, los animales expuestos a aire
se inyectaron con solución salina como anteriormente. Los volúmenes
de formalina o de solución salina inyectados se ajustaron para cada
grupo de edad como se describió anteriormente [Ohashi Y. et
al., Pain 2002; 100:7-18] y fueron los
siguientes: 10 \mul para 7 días de vida; 15 \mul para 19 días de
vida; 20 \mul para 28 días de vida y 50 \mul para adultos.
Se construyó un sistema recirculante para la
exposición al gas con el fin de minimizar el consumo de xenón
(Figura 3). Se roció el circuito con gas (aire o
xenón/oxígeno/nitrógeno) a un caudal de 4 l/min. y una vez
conseguidas las concentraciones de gas deseadas, el caudal se redujo
a 40 ml/min. para el resto del periodo experimental. La
concentración de dióxido de carbono y la humedad se mantuvieron
inferiores a 0,6% y 50% respectivamente con carbonato sódico y gel
de sílice. Se administró formalina o solución salina 15 min. después
de la exposición al gas; a continuación, los animales se expusieron
a la mezcla de gas durante 90 min. más.
Inmediatamente después de la inyección de
formalina, se registró el comportamiento durante 60 min. con una
cámara de vídeo (MegaPixel, Digital Handycam, Sony) colocada
aproximadamente 50 cm por debajo del suelo de la habitación para
permitir una vista no obstruida de las patas (visible en un monitor
de televisión) y para facilitar el registro del comportamiento
animal. La cámara y el área de soporte para las crías que esperan
ser analizadas se mantuvo a temperatura ambiente durante todo el
experimento.
Se evaluó el comportamiento nociceptivo en las
crías de 7 días de vida por la presencia ("1") o ausencia
("0") de flexión, agitación y espasmos corporales totales por
periodos de tiempo [Teng C.J. et al., Pain 1998;
76:337-47] y se calculó como [puntuación nociceptiva
= T/300, en la que T es la duración (s.) de comportamiento
nociceptivo presentado durante los periodos después de la inyección
de 300 s. consecutivos].
Las crías de rata mayores se puntuaron a través
de cuatro categorías de comportamiento de dolor después de la
administración de xenón: sin dolor (la pata inyectada estaba en
contacto continuo con el suelo = "0"), apoyo (la pata
inyectada se apoyaba ligeramente en el suelo = "1"), elevación
(la pata inyectada se elevaba todo el tiempo = "2") y lamido
(lamiendo, golpeando o agitando la pata inyectada = "3") [Teng
C.J. et al., Pain 1998; 76:337-47] y
se calculó como [puntuación nociceptiva =
(T1+[T2\times2]+[T3\times3])/300, en la que T1, T2 y T3 son las
duraciones (s.) transcurridas en las categorías de los periodos de
1, 2 ó 3 por 300 s.].
Noventa minutos después de la inyección de
formalina, se anestesiaron profundamente los animales con
pentobarbital (100 mg/kg, i.p.) y se perfundieron con
paraformaldehído al 4%. Se extirpó la médula espinal completa. Se
seccionó transversalmente el alargamiento lumbar a 30 \mum y a
continuación se tiñó con c-Fos como se describió
anteriormente [Ma D. et al., Br. J. Anaesth. 2002;
89:739-46]. En resumen, se incubaron las secciones
durante 30 min. en H_{2}O_{2} al 0,3% en metanol y a
continuación se lavaron tres veces en solución salina tamponada con
fosfato (PBS) 0,1 M. Después de esto se incubaron las secciones
durante 1 hora en una "solución de bloqueo" constituida por
suero de asno al 3% y Triton X al 0,3% en PBS (PBT) y posteriormente
se incubaron durante la noche a 4ºC en anticuerpo de cabra 1:5.000
anti-c-Fos
(sc-52-G, Santa Cruz Biotechnology,
Santa Cruz, CA) en PBT con suero de asno al 1%. Se enjuagaron a
continuación las secciones 3 veces con PBT y se incubaron con IgG
anti-cabra de asno 1:200 (Vector laboratories,
Burlingame, CA) en PBT con suero de asno al 1% durante 1 hora. Se
lavaron las secciones otra vez con PBT y se incubaron con complejo
avidina-biotina-peroxidasa (Vector
Laboratories) en PBT durante 1 hora. Se enjuagaron 3 veces las
secciones con PBS y se tiñeron con
3,3'-diaminobenzidina (DAB) con sulfato de níquel y
amonio en el que se añadió peróxido de hidrógeno (kit DAB, Vector
Laboratories). Una vez completada la tinción, se enjuagaron las
secciones en PBS seguido de agua destilada y se montaron, se
deshidrataron con etanol al 100%, se limpiaron con xileno al 100% y
se cubrieron con cubreobjetos.
Se puntuaron las fotomicrografías de tres
secciones por cada animal por las neuronas positivas a
c-Fos que eran ciegas para el tratamiento
experimental. Con el fin de localizar las células positivas a
c-Fos para las zonas funcionales de la médula
espinal, cada sección se dividió en A/B (láminas
I-II o el área superficial), C (láminas
II-IV o área propia del núcleo), D (láminas
V-VI o el área del cuello) y E (láminas
VII-X o el área ventral) [Yi D.K. et al.,
Pain 1995; 60:257-265].
Se representó la puntuación de la intensidad
nociceptiva frente al tiempo en cada animal y se calculó el área
bajo la curva (durante un periodo de tiempo de 60 min.) (AUC) en
cada animal. La media de las neuronas positivas a
c-Fos para tres secciones representativas en cada
zona como se describió anteriormente fue la puntuación agregada
para cada animal. Los resultados de intensidad nociceptiva o las
neuronas positivas a c-Fos se describen como
medias \pm SEM. Se realizó el análisis estadístico mediante
análisis de varianza de una vía, seguido por la prueba de
Newman-Keuls. Un valor p<0,05 se consideró
estadísticamente significativo.
El transcurso de la respuesta nociceptiva de
cada cohorte en cada categoría de edad se presenta en la Figura 4.
Después de la inyección con solución salina, los animales expuestos
al aire presentaban un comportamiento nociceptivo no específico
(puntuación 1) que implica la pata inyectada durante un periodo de
aproximadamente dos minutos de duración. Se produce una respuesta
nociceptiva bifásica mediante inyección de formalina en cada uno de
los grupos de edad a los que se administró aire. En la Tabla 1, se
presentan los datos de AUC.
Durante el periodo antes de la inyección, las
ratas de 7 días de vida expuestas al aire se despertaron y
mantuvieron activas. Tras la inyección con formalina, los animales
presentaban comportamiento nociceptivo intenso (pataleo violento,
flexión y agitación de la pata inyectada) durante hasta 50 minutos,
pero la exhibición del comportamiento doloroso pareció ser menos de
la observada en animales adultos. Las ratas expuestas a xenón
presentaban únicamente comportamiento nociceptivo leve durante los
primeros dos minutos tras la inyección de formalina seguido de
ningún movimiento adicional en el resto del periodo de observación
de 60 min. El AUC para el grupo expuesto a xenón fue
significativamente diferente del grupo expuesto a aire (P<0,001;
Tabla 1).
Tras la inyección de formalina, los animales de
19 días de vida expuestos al aire presentaban un comportamiento
nociceptivo intenso, que era bifásico, persistiendo durante la
mayoría del periodo de observación antes de la disminución gradual
(Figura 4: 19 días de vida). Se produjo una disminución
significativa en el comportamiento nociceptivo presentado por los
animales que estaban expuestos a xenón (P<0,01) (Tabla 1). En los
animales de la cohorte de 28 días de vida expuestos al aire
presentaban un comportamiento nociceptivo bifásico; en presencia de
xenón el comportamiento nociceptivo fue significativamente menos
intenso (P<0,001) (Tabla 1). El comportamiento nociceptivo
presentado por ratas adultas en respuesta a la formalina fue menos
intenso con xenón que la exposición al aire (P<0,001) (Tabla
1).
La expresión de c-Fos producida
por formalina a nivel lumbar de la médula espinal homolateral hasta
el punto de inyección aumentó en todos los grupos de edad. La
exposición al xenón suprimió de manera significativa la expresión
de c-Fos. En las crías de 7 días de vida, la
exposición al xenón redujo la expresión de c-Fos en
respuesta a formalina en el 48% en las láminas A/B (P<0,001), en
el 50% en la lámina C (P<0,001), en el 50% en la lámina D
(P<0,001) y en el 28% en la lámina E (P<0,01). En las ratas de
19 días de vida el xenón suprimió la expresión media de
c-Fos en respuesta al xenón en el 55% en las láminas
I-II (P<0,001), en el 57% en las láminas
III-IV (P<0,001) y en el 62% en las láminas
V-VI (P<0,001). En las ratas de 28 días de vida,
el xenón disminuyó la expresión de c-Fos en
respuesta a la formalina en el 34% en las láminas
I-II (P<0,001), el 27% en las láminas
III-IV (P<0,001) y en el 28% en las láminas
V-VI (P<0,001). En las ratas adultas el xenón
inhibió la expresión de c-Fos en el 41% en las
láminas I-II (P<0,001), en el 45% en las láminas
III-IV (P<0,001) y en el 34% en las láminas
V-VI (P<0,001). La inyección salina también
produjo la expresión de c-Fos homolateral a la
inyección; sin embargo, ésta fue mucho menos intensa que la
provocada por la inyección de formalina (Figuras 5 y 6).
Con el fin de probar si el propio xenón puede
producir la expresión de c-Fos (como es el caso con
óxido nitroso) [Hashimoto T. et al., Anesthesiology
2001; 95:463-9], se expusieron animales naturales al
aire o a un gas con mezcla de xenón (70% de Xe/20% de O_{2}/10%
de N_{2}) durante 90 min. (Figura 7). El número de células
positivas a c-Fos no se diferenció entre estos
grupos en ninguna zona de la médula espinal.
El presente estudio demuestra que el xenón
ejerce una respuesta antinociceptiva frente a la inyección de
formalina en ratas Fischer en cada una de las cuatro etapas de
desarrollo, es decir, las de los días 7, 19 y 28 así como en
adultos. Estos datos son cualitativamente diferentes de los
descritos recientemente con N_{2}O [Ohashi Y. et al.,
Pain 2002; 100:7-18] en los que ningún efecto
antinociceptiva (ni de comportamiento ni por inmunohistoquímica) se
observó en los animales más jóvenes de 23 días de vida.
En varias preparaciones in vitro, se
conoce que el xenón y N_{2}O ejerce efectos similares a la
acetilcolina nicotínica [Yamakura T. et al.,
Anesthesiology 2000; 93:1095-101], serotonina
3A [Suzuki T. et al., Anesthesiology 2002;
96:699-704], GABA [Yamakura T. et al.,
Anesthesiology 2000; 93:1095-101; Mennerick
S. et al., J. Neurosci. 1998;
18:9716-26] y receptores de glicina [Daniels S.
et al., Toxicol. Lett. 1998;
100:71-6] y tanto xenón [Franks N.P. et al.,
Nature 1998; 396:324; de Sousa S.L. et al.,
Anesthesiology 2000; 92:1055-66] como
N_{2}O [Jevtovic-Todorovic V. et al.,
Nat. Medicine 1998; 4:460-63] son
inhibidores del receptor de NMDA. Los estudios anteriores pusieron
de manifiesto que el xenón y N_{2}O suprimía las neuronas de
amplio intervalo dinámico (WDR) dentro de la médula espinal intacta
[Utsumi J. et al., Anesth. Analg. 1997;
84:1372-6]. Sin embargo, el xenón presentó un efecto
inhibidor mayor en estas neuronas en la preparación sección de
médula espinal completa que la que se observó tras la exposición a
N_{2}O [Miyazagi Y. et al., Anesth. Analg. 1999;
88:893-7]. Estos estudios sugieren que el xenón
inhibe directamente las neuronas de WDR a nivel medular para
producir la antinocirrecepción aunque la antinocirrecepción
producida por N_{2}O requiere la implicación de centros
suprarraquídeoes superiores [Fujinaga M. et al., Mol.
Neurobiol. 2002; 25:167-89]. N_{2}O modula la
nocirrecepción principalmente por activación de las neuronas
inhibidoras noradrenérgicas en disminución de los centros
suprarraquídeos con poca acción directa, a nivel de la
médula espinal [Fujinaga M. et al., Mol. Neurobiol.
2002; 25:167-89]. Dadas las pruebas para un
requisito absoluto para la conectividad funcional entre las zonas
raquídea y suprarraquídea para la antinocirrecepción provocada por
N_{2}O, los solicitantes previeron y posteriormente confirmaron
que N_{2}O no presenta antinocirrecepción [Ohashi Y. et
al., Pain 2002; 100:7-18] antes del
desarrollo de dicha conectividad, es decir, con una edad inferior a
23 días [Fitzgerald M. et al., Brain Res. 1986;
389:261-70]. Por lo tanto, en contraste con el
xenón, el N_{2}O no es un agente antinociceptivo eficaz en el
grupo de edad neonatal.
El subtipo NMDA del receptor de glutamato ha
estado implicado en la respuesta nociceptiva para los modelos más
inflamatorios de dolor incluyendo el provocado por formalina
[Malmberg A.B. et al., Pain 2003;
101:109-16]. Tanto el xenón como N_{2}O son
antagonistas de NMDA, la razón para las diferencias cualitativas en
la antinocirrecepción que existe entre estos dos compuestos no está
clara. Una explicación posible es que las diferentes combinaciones
de la subunidad del receptor de NMDA presentan diferentes
sensibilidades al xenón o al N_{2}O. Los receptores de NMDA
endógenos humanos están compuestos por una combinación de
subunidades de NR1 y NR2 o NR3 [Dingledine R. et al.
Pharmcol. Rev. 1999; 51:7-61]. Es importante,
que la subunidad NR2B medie en la transmisión nociceptiva en el
asta posterior de la médula espinal [Boyce S. et al.,
Neuropharmacology 1999; 38:611-23] y el
mesencéfalo [Wei F. et al., Nat. Neurosci. 2001;
4:164-9]. Se observa que los antagonistas de NR2B
han estado ligados a la sedación [Chizh B.A. et al.,
Neuropharmacology 2001; 40:212-20] y el
xenón es un agente sedante-hipnótico más potente que
el N_{2}O [Lynch C. et al., Anesthesiology 2000;
92:865-70] con una vigilia por MAC del 33% [Goto T.
et al., Anesthesiology 2000;
93:1188-93].
Basándose en estos descubrimientos, cabe esperar
que el xenón sea un agente antinociceptivo eficaz en seres humanos
de edad muy avanzada. El perfil de seguridad del xenón ha sido
examinado incluso en personas muy jóvenes aunque es un anestésico
notablemente seguro en adultos [Rossaint R. et al.,
Anesthesiology 2003; 98:6-13]. Una causa
principal que se refiere a la utilización clínica de los
antagonistas de NMDA es su neurotoxicidad intrínseca [Olney J.W.
et al., Science 1989; 244:360-2; Olney
J.W. et al., Science 1991; 254:1515-8]
pero no parece que exista en la administración de xenón [Ma D.
et al., Br. J. Anaesth. 2002;
89:739-46], una similitud compartida con los
antagonistas de NMDA selectivo para NR2B [Gill R. et al.,
J. Pharmacol. Exp. Ther. 2002;
302:940-8].
Como resumen, la administración de formalina
produce una respuesta nociceptiva típica observada tanto en el
comportamiento como por inmunohistoquímica homolateral de la
inyección en cada grupo de edad analizado. El xenón suprime tanto
las respuestas nociceptivas de comportamiento como por
inmunohistoquímica incluso en animales muy jóvenes. A diferencia
del N_{2}O, el efecto antinociceptivo del xenón no parece requerir
conectividad funcional entre las series de reacciones del
tratamiento del dolor suprarraquídeo y raquídeo.
Se calculó el área bajo la curva (AUC) (media
\pm SEM, n = 3-4) a partir de las curvas de
puntuación de intensidad nociceptiva (Figura 4).
*P<0,01, **P<0,001 en comparación con el
grupo de aire+formalina en el correspondiente grupo de edad.
Claims (11)
1. Utilización de xenón en la preparación de un
medicamento destinado a proporcionar analgesia en un recién nacido
y/o en un feto.
2. Utilización según la reivindicación 1, en la
que el recién nacido es un mamífero en las primeras cuatro semanas
después del nacimiento.
3. Utilización según la reivindicación 1 ó 2, en
la que el recién nacido o el feto es un ser humano.
4. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que el xenón se utiliza en
combinación con un vehículo, diluyente o excipiente
farmacéuticamente aceptable.
5. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que el xenón se administra en
combinación con un sedante, un agente anestésico o un agente
anestésico adicional.
6. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en la que el medicamento está en forma
gaseosa.
7. Utilización según la reivindicación 6, en la
que el medicamento está en forma de una mezcla de xenón/aire 20 a
70% v/v.
8. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5, en la que el medicamento está en forma
líquida.
9. Utilización según la reivindicación 8, en la
que el medicamento está en forma de emulsión lípida.
10. Utilización según la reivindicación 8 ó 9,
en la que el medicamento está en una forma adecuada para la
administración intravenosa, neuraxial o transdérmica.
11. Utilización de xenón para la preparación de
un medicamento que debe administrarse a la madre de un feto para
proporcionar analgesia al feto, en la que el xenón está en una
cantidad terapéuticamente eficaz tanto para la madre como para el
feto.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB0218153 | 2002-08-05 | ||
GBGB0218153.5A GB0218153D0 (en) | 2002-08-05 | 2002-08-05 | An analgesic agent for newborn or retal subjects |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2298582T3 true ES2298582T3 (es) | 2008-05-16 |
Family
ID=9941759
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES03766483T Expired - Lifetime ES2298582T3 (es) | 2002-08-05 | 2003-08-05 | Agente analgesico para recien nacidos o fetos. |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US7632872B2 (es) |
EP (1) | EP1534304B1 (es) |
JP (1) | JP5536970B2 (es) |
AT (1) | ATE382357T1 (es) |
AU (1) | AU2003252977B2 (es) |
BR (1) | BR0313305A (es) |
CA (1) | CA2494569C (es) |
DE (1) | DE60318453T2 (es) |
ES (1) | ES2298582T3 (es) |
GB (1) | GB0218153D0 (es) |
MX (1) | MXPA05001474A (es) |
WO (1) | WO2004012749A1 (es) |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB0418540D0 (en) | 2004-08-19 | 2004-09-22 | Protexeon Ltd | Use |
WO2006105670A1 (en) * | 2005-04-08 | 2006-10-12 | Neuromed Pharmaceuticals Ltd. | Combination therapy comprising an n-type calcium channel blocker for the alleviation of pain |
WO2010129686A1 (en) * | 2009-05-05 | 2010-11-11 | Vapogenix, Inc. | Novel formulations of volatile anesthetics and methods of use for reducing inflammation |
FR2948878B1 (fr) * | 2009-08-04 | 2012-08-31 | Air Liquide | Utilisation du xenon pour traiter l'hypersensibilite a la douleur |
CN110464709A (zh) | 2012-08-10 | 2019-11-19 | 德克萨斯州大学系统董事会 | 用于治疗中风的神经保护性脂质体组合物和方法 |
CA3132914C (en) | 2013-03-15 | 2023-11-07 | The Board Of Regents Of The University Of Texas System | Liquids rich in noble gas and methods of their preparation and use |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5099834A (en) * | 1991-07-16 | 1992-03-31 | Union Carbide Industrial Gases Technology Corporation | Method for anesthesia |
DE19709704C2 (de) * | 1997-03-10 | 1999-11-04 | Michael Georgieff | Verwendung einer flüssigen Präparation von Xenon zur intravenösen Verabreichung bei Einleitung und/oder Aufrechterhaltung der Anaesthesie |
DE19910986C2 (de) * | 1999-03-11 | 2001-06-07 | Aga Ab | Verwendung von Xenon bei der Behandlung von Neurointoxikationen |
US6653354B2 (en) * | 1999-07-29 | 2003-11-25 | Protexeon Limited | NMDA antagonist comprising xenon |
GB9917822D0 (en) * | 1999-07-29 | 1999-09-29 | Imperial College | Nmda antagonist |
-
2002
- 2002-08-05 GB GBGB0218153.5A patent/GB0218153D0/en not_active Ceased
-
2003
- 2003-08-05 CA CA2494569A patent/CA2494569C/en not_active Expired - Fee Related
- 2003-08-05 ES ES03766483T patent/ES2298582T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2003-08-05 JP JP2004525573A patent/JP5536970B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2003-08-05 BR BR0313305-2A patent/BR0313305A/pt not_active Application Discontinuation
- 2003-08-05 EP EP03766483A patent/EP1534304B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2003-08-05 MX MXPA05001474A patent/MXPA05001474A/es active IP Right Grant
- 2003-08-05 WO PCT/GB2003/003391 patent/WO2004012749A1/en active IP Right Grant
- 2003-08-05 AT AT03766483T patent/ATE382357T1/de not_active IP Right Cessation
- 2003-08-05 US US10/524,316 patent/US7632872B2/en not_active Expired - Fee Related
- 2003-08-05 AU AU2003252977A patent/AU2003252977B2/en not_active Ceased
- 2003-08-05 DE DE60318453T patent/DE60318453T2/de not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP1534304A1 (en) | 2005-06-01 |
US7632872B2 (en) | 2009-12-15 |
EP1534304B1 (en) | 2008-01-02 |
AU2003252977B2 (en) | 2008-02-21 |
GB0218153D0 (en) | 2002-09-11 |
JP5536970B2 (ja) | 2014-07-02 |
CA2494569A1 (en) | 2004-02-12 |
DE60318453T2 (de) | 2008-12-24 |
US20060233885A1 (en) | 2006-10-19 |
WO2004012749A1 (en) | 2004-02-12 |
DE60318453D1 (de) | 2008-02-14 |
AU2003252977A1 (en) | 2004-02-23 |
MXPA05001474A (es) | 2005-12-06 |
JP2005539004A (ja) | 2005-12-22 |
BR0313305A (pt) | 2005-06-14 |
ATE382357T1 (de) | 2008-01-15 |
CA2494569C (en) | 2012-04-03 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2427976T5 (es) | Composición de sal de fentanilo para administración nasal | |
PT966291E (pt) | Composicao medicinl que contem um gas inerte lipofilo | |
Eger | Characteristics of anesthetic agents used for induction and maintenance of general anesthesia | |
ES2298582T3 (es) | Agente analgesico para recien nacidos o fetos. | |
ES2298815T3 (es) | Uso de xenon con hipotermia para tratar asfixia neonatal. | |
Hanusch et al. | Anaesthesia of small rodents during magnetic resonance imaging | |
ES2323582T3 (es) | Utilizacion de xenon para el control de deficits neurologicos asociados con una derivacion cardiopulmonar. | |
BRPI0616144A2 (pt) | composiÇço terapÊutica, uso de uma composiÇço terapÊutica,composiÇço farmacÊutica, e, uma primeira composiÇço terapÊutica compreendendo um composto s-nitrosotiol e uma segunda composiÇço terapÊutica compreendendo um segundo composto que nço o composto s-nitrosotiol | |
Charlton et al. | Ventilation, ventilatory carbon dioxide and hormonal response during halothane anaesthesia and surgery in children after midazolam premedication | |
RU2389493C2 (ru) | Композиция и способ для повышения уровня глюкозы в крови | |
Meyer | Anesthesia of pediatric small animal patients | |
World Health Organization | WHO model prescribing information: drugs used in anaesthesia | |
Peyton et al. | Physics and anesthesia equipment | |
Shreya et al. | Considerations of general anesthetics in pediatric dentistry-A review. | |
Marcus et al. | Sleep and breathing in children: developmental changes in breathing during sleep | |
Hata | Preparation and intraoperative management of the pediatric patient | |
ES2565653T3 (es) | Uso de betanecol para tratamiento de xerostomía | |
Moline et al. | Midazolam as a pediatric premedicant in the ambulatory setting | |
Lett | Anaesthesia | |
Jamil et al. | Effect of midazolam premedication on induction dose requirement of propofol in combination with fentanyl in adult patients | |
Safeeba Burveen | Comparative study of the Cuff Pressure between Air and Alkalinized Lignocaine in General Anaesthesia | |
Auer et al. | Sevoflurane mask induction in puppies to perform audiometry: a clinical study | |
WEYL et al. | CLINICAL EVALUATION OF A NEW ULTRASHORT-ACTING OXYGEN BARBITURATE FOR INTRAVENOUS ANESTHESIA |